UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE … · Figura N° 1. Estructura de la pared de los...

I

UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR

FACULTAD DE ODONTOLOGÍA

CARRERA DE ODONTOLOGÍA

INSTITUTO SUPERIOR DE INVESTIGACIÓN Y PREGRADO

UNIDAD DE INVESTIGACIÓN, TITULACIÓN Y GRADUACIÓN

“ESTAFILOCOCOS, ENTEROCOCOS Y ESTREPTOCOCOS EN LAS TURBINAS

QUE SE UTILIZAN EN LA CLINICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”

PROYECTO PREVIO LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE ODONTÓLOGA

AUTORA: MARÍA TERESA ORQUERA SERRANO

TUTOR: DR. ROBERTO STEVEN ZURITA ROBALINO

DISRITO METROPOLITANO DE QUITO

MAYO, 2015

II

DEDICATORIA

Dedico el presente trabajo de investigación a mi familia por el apoyo incondicional durante

estos años de estudio, en especial a mis padres Tere y Edwin que han sido el pilar

fundamental para terminar mi carrera. Mamita y Papito cada uno de mis logros y triunfos son

para ustedes, porque me han dado las fuerzas, el ánimo y el amor que necesitaba durante toda

mi vida. Los amo infinitamente, ustedes fueron la razón principal para perseverar tanto por

conseguir esta carrera, sin sus manos de ayuda, sin su palabras de aliento no lo hubiera

logrado.

III

AGRADECIMIENTO

Quiero agradecer en primer lugar a Dios por darme la fuerza día con día para culminar mis

estudios, por enseñarme que la vida es de quien persevera, de quien lucha y sueña.

En segundo lugar mi agradecimiento es para mi familia que son el motor de mi vida, gracias a

mis padres por su apoyo incondicional, gracias a mi amado esposo por su ánimo y ayuda. Por

último quiero agradecer a quienes son la luz de mi vida mis sobrinos Milena y Matías quienes

con sus besos, abrazos y palabras de aliento me daban una razón para continuar.

Durante estos años de estudio conocí grandes amigos (Lily, Deysi, Gaby, Stalin, Vivi y Pao)

a quienes agradezco por todo lo compartido, por la complicidad, por el compañerismo y por

esa linda amistad que me llevo en mi corazón.

Un agradecimiento especial a quien fue la guía para terminar este trabajo de investigación Dr.

Roberto Zurita gracias infinitas por su tiempo, dedicación y ayuda, sin esto no hubiera sido

posible finiquitar este proyecto.

Para finalizar quiero dar un profundo agradecimiento a quien ha sido mi ejemplo y mi

maestra Dra. Giomara Silva gracias por cada enseñanza, por su amistad y por su ayuda

durante estos años.

Universidad Central del Ecuador

Facultad de Odontología

AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL

Yo, María Tersa Orquera Serrano en calidad de autora del trabajo de investigación o tesisrealizada sobre "ESTAFILOCOCOS, ENTEROCOCOS Y ESTREPTOCOCOS EN LASTURBINAS QUE SE UTILIZAN EN LA CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DEODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR" por la presenteautorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos loscontenidos que me pertenecen o de parte de los que contienen esta obra, con finesestrictamente académicos o de investigación.

Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente autorización,seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los artículos 5.6.8; 19 ydemás pertenecientes de la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento

Quito, a 25 de mayo del 2015

María Teresa Orquera Serrano

C.I. 1720924479

[email protected]

IV



INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR

En mi carácter de Tutor del Trabajo de Grado, presentado por la señorita María Teresa

Orquera Serrano, para optar por el Título de Odontóloga, cuyo tema es: "ESTAFILOCOCOS,

ENTEROCOCOS Y ESTREPTOCOCOS EN LAS TURBINAS QUE SE UTILIZAN EN LA

CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD

CENTRAL DEL ECUADOR". Considero que dicho trabajo reúne los requisitos y méritos

suficientes para ser sometido a la presentación pública y evaluación por parte del jurado

examinador que se designe.

En la ciudad de Quito a los 04 días del mes de mayo del 2015.

oberto Steven Zurita RobaMno.

C.I. 1708976665.

Tutor de Tesis.

V



CERTIFICADO DEL TRIBUNAL

"ESTAFILOCOCOS, ENTEROCOCOS Y ESTREPTOCOCOS EN LAS TURBINAS

QUE SE UTILIZAN EN LA CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR"

AUTOR: María Teresa Orquera Serrano.

El presente Trabajo de Investigación, luego de cumplir con todos los requerimientos

normativos, en nombre de la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, FACULTAD

DE ODONTOLOGÍA, es aprobado; por lo tanto el jurado que se detalla a continuación,

autoriza a la postulante presentación a efectos de la sustentación pública.

Quito, 04 de mayo del 2015.

Dra. Sandra Magdalena Macías CeballosPRESIDENTA DEL TRIBUNAL

Dr. Roberto/Javier Romero CazaresVOC

Dr. Marco Vihicio Mediría VegaVOCAL DEtTTRTBUNAL

VI

VII

ÍNDICE DE CONTENIDOS.

CARÁTULA

DEDICATORIA

AGRADECIMIENTO

AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL

INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR

CERTIFICADO DEL TRIBUNAL

ÍNDICE DE CONTENIDOS

ÍNDICE DE FIGURAS

ÍNDICE DE TABLAS

RESUMEN

ABSTRACT

INTRODUCCIÓN

CAPÍTULO I

1. PROBLEMA

1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

1.2. OBJETIVOS

1.2.1. OBJETIVO GENERAL

1.2.2.OBJETIVOS ESPECÍFICOS

1.3. JUSTIFICACIÓN

1.4.HIPÓTESIS

CAPÍTULO II

2. MARCO TEÓRICO

2.1. ESTAFILOCOCOS

2.1.1. CARACTERÍSTICAS GENERALES

I

II

III

IV

V

VI

VII

VIII

IX

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XI

1

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2

2

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5

5

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VIII

2.1.2. CULTIVO Y CRECIMIENTO

2.1.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA

2.1.4. ENZIMAS Y TOXINAS

2.1.5. EPIDEMIOLOGÍA

2.1.6. CLASIFICACIÓN

2.1.6.1. STAPHYLOCOCCUS AUREUS

2.1.6.1.1 PATOGENIA

2.1.6.1.2. MANIFESTACIONES CLÍNICAS

2.1.6.1.2.1. INTOXICACIÓN ALIMENTARIA POR ESTAFILOCOCOS

2.1.6.1.2.2. SÍNDROME DE SHOCK TÓXICO

2.1.6.1.2.3. SÍNDROME DE LA PIEL ESCALDADA ESTAFILOCÓCICA

2.1.6.2. STAPHYLOCOCCUS EPIDERMIDIS

2.1.6.3. STAPHYLOCOCCUS SAPROFÍTICO

2.2. ENTEROCOCOS



2.2.3. PATOGENIA E INMUNIDAD

2.2.4. EPIDEMIOLOGÍA


2.2.5.1. ENTEROCOCO FAECALIS

2.3. ESTREPTOCOCOS



2.3.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA

2.3.4. ENZIMAS Y TOXINAS

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IX


2.3.5.1. STREPTOCOCO VIRIDANS

2.3.6. MANIFESTACIONES CLÍNICAS

2.3.6.1. SINDROME DEL SHOCK TÓXICO ESTREPTOCÓCICO

2.3.6.2. FARINGITIS

2.3.6.3. IMPÉTIGO

2.4. OTROS MICROORGANISMOS

2.4.1. LACTOBACILLUS

2.4.1. ESCHERICHIA COLI

2.5. BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGÍA

2.6. ESTERILIZACIÓN Y DESINFECCIÓN DE PIEZAS DE MANO

CAPÍTULO III

3.1. METODOLOGÍA

3.1.1. TIPO Y DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN

3.2. POBLACIÓN O MUESTRA

3.2.1. CRITERIOS DE INCLUSIÓN

3.2.2. CRITERIO DE EXCLUSIÓN

3.3. DISEÑO DE VARIABLES

3.4. PROCEDIMIENTO

3.4.1. SELECCIÓN DE MUESTRAS

3.4.2. TOMA DE MUESTRAS

3.4.3. ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE DE MUESTRAS

3.4.4. CRECIMIENTO DE MICROORGANISMOS

3.4.5. SIEMBRA DE MICROORGANISMOS

3.4.6. CRECIMIENTO Y CONTEO DE MICROORGANISMOS

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X

3.4.7.IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS MEDIANTE PRUEBAS

QUÍMICAS

3.5. ASPECTOS ÉTICOS

CAPÍTULO IV

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1 RESULTADOS

4.2. DISCUSIÓN

CAPÍTULO V

5.1. CONCLUSIONES

5.2. RECOMENDACIONES

CAPÍTULO VI

6.1. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

6.2 ANEXOS

30

31

32

32

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42

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44

46

XI

ÍNDICE DE FIGURAS.

Figura N° 1. Estructura de la pared de los microorganismos del género

Staphylococcus.

Figura N° 2. Colonia de Staphylococcus aureus.

Figura N° 3. Staphylococcus aureus.

Figura N° 4. Síndrome estafilocócico de la piel escaldada en un neonato.

Figura N° 5. Proceso para obtener las muestras para el estudio.

Figura N° 6. Transporte de muestras.

Figura N° 7. Estufa para el cultivo.

Figura N° 8. Turbidez después de 48 horas de incubación de las muestras en

tioglicolato.

Figura N° 9. Incubación de cajas Petri.

Figura N° 10. Prueba de Coagulasa.

Figura N° 11. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en

las cabezas de las turbinas en la clínica de séptimo semestre.


los mangos de las turbinas en la clínica de séptimo semestre.


las cabezas de las turbinas en la clínica de octavo semestre.


los mangos de las turbinas en la clínica de octavo semestre.


las cabezas de las turbinas en la clínica de noveno semestre.


los mango de las turbinas en la clínica de noveno semestre.

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XII

Figura N° 17. Presencia y ausencia de microorganismos en general encontrados en

tioglicolato a las 48 horas después de haber tomado la muestra.

Figura N° 18. Microorganismos que se encontraron en general.

38

39

XIII

INDICE DE TABLAS.

TABLA N°1. Clasificación de estreptococos β hemolíticos comunes.

TABLA N°2. Variables.

TABLA N°3. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las

cabezas de las turbinas en la clínica de séptimo semestre.

TABLA N°4. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en los

mangos de las turbinas en la clínica de séptimo semestre.


cabezas de las turbinas en la clínica de octavo semestre.


mangos de las turbinas en la clínica de octavo semestre.


cabezas de las turbinas en la clínica de noveno semestre.


mangos de las turbinas en la clínica de noveno semestre.

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37

XIV

RESUMEN

“ESTAFILOCOCOS, ENTEROCOCOS Y ESTREPTOCOCOS EN LAS TURBINAS

QUE SE UTILIZAN EN LA CLÍNICA INTEGRAL DE LA FACULTAD DE

ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”

La cavidad bucal es un medio rico en microorganismos por ello es fundamental la utilización

de normas de bioseguridad en la consulta odontológica, siendo las turbinas uno de los

elementos que al entrar en contacto con los tejidos duros y blandos de la boca, puede ser el

vehículo transmisor de microorganismos.

El objetivo del siguiente trabajo fue determinar la existencia de estafilococos, enterococos y

estreptococos en las turbinas, antes de su utilización para la atención odontológica en las

clínicas de séptimo, octavo y noveno semestre de la Facultad de Odontología de la

Universidad Central del Ecuador, mediante un análisis microbiológico.

La investigación se realizó tomando 90 muestras, 30 muestras de séptimo semestre, 30

muestras de octavo semestre, y 30 de noveno semestre; 15 pertenecían a la cabeza de la

turbina, y 15 al mango de la turbina; estas muestras fueron tomadas antes de la utilización en

boca del paciente.

Los resultados que dio esta investigación fue que se encontró la existencia de

microorganismos en los siguientes porcentajes; clínica de séptimo semestre presencia de

microorganismos de 23,33 %, en la clínica de octavo existió 46,67% de presencia de

microrganismos y en la clínica de noveno pudimos apreciar un porcentaje de 33,33% de

presencia de microorganismos.

En conclusión se determinó la existencia de estafilococos en mayor proporción y en cambio

no se encontró más no se encontró más que en solo tres turbinas enterococos.

PALABRAS CLAVES: ESTAFILOCOCOS, ENTEROCOCOS, ESTREPTOCOCOS,

CLÍNICA INTEGRAL, FACULTAD DE ODONTOLOGÍA.

XV

ABSTRACT

“STAPHYCOCOCCI, ENTEROCCI AND STREPTOCOCCI IN TURBINES USED IN

INTEGRATED CLINIC OF THE FACULTY OF DENTISTRY OF THE

UNIVERSITY OF CENTRAL ECUADOR"

The oral cavity is a medium rich in microorganisms therefore it is essential the use of

biosafety standards in dentistry, where the turbines being one of the elements in contact with

the hard and soft tissues of the mouth, can be the vehicle for transmitting microorganisms.

The aim of this study was to determine the existence of staphylococci, enterococci and

streptococci in the turbines before its use for dental care in clinics of seventh, eighth and ninth

semester of the Faculty of Dentistry, in “Universidad Central Del Ecuador”, by

microbiological analysis.

The research was made on 90 samples, 30 samples of seventh semester, 30 samples of eighth

semester, and 30 of ninth semester; 15 belong to the turbine head and 15 to the handle of the

turbine; these samples were taken before using then in the patient’s mouth.

The results that this investigation delivered in the existence of microorganisms in percentage

were: in the clinic of seventh semester presence of microorganisms 23.33%; in the clinic of

eight semester the presence was 46,67% and in the clinic of ninth semester the presence of

microorganisms was 33,33%.

In conclusion the investigation determined the existence of staphylococci in a greater

percentage and enterococci microorganisms were found only in three turbines.

KEYWORDS: STAPHYCOCOCCI, ENTEROCCI, STREPTOCOCCI, INTEGRATED

CLINIC, FACULTY OF DENTISTRY.

1

INTRODUCCIÓN.

Los pacientes actualmente están enterados del peligro que implica ser atendidos con

instrumental contaminado, sin las debidas normas de seguridad, por ello como profesionales

estamos obligados a proteger a nuestros pacientes, a protegernos nosotros mismos y a

proteger al personal q trabaja a nuestro alrededor.

Algunas veces, el desconocimiento, la premura del tiempo para la atención al paciente dentro

de la Clínica Integral de la Facultad de Odontología nos puede llevar a cometer errores frente

al campo de bioseguridad, evadiendo ciertas normas o reglas, sin entender el beneficio que

obtenemos al tomarnos el tiempo y la molestia necesaria para evitar el contagio de infecciones

cruzadas e infecciones nosocomiales, además de evitar el riesgo de infectarnos o enfermarnos.

La cavidad bucal es un ecosistema que lo constituye varios microorganismos y tejidos, por

esta razón cualquier instrumental que tome contacto con boca debe ser esterilizado antes de

ser usado. Las turbinas o piezas de mano de alta velocidad, por estar en contacto con tejidos

duros y blandos son consideradas como instrumental crítico y semicrítico, por esta razón es

fundamental la desinfección y esterilización antes de su utilización (Reyes et al. 2012).

2

CAPÍTULO I

1. PROBLEMA.

1.1.PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA.

El desconocimiento y la mala aplicación de técnicas de bioseguridad en las turbinas por

parte de los estudiantes que atienden en las clínicas de séptimo, octavo y noveno semestre de

la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador contribuye a la presencia

de estafilococos, enterococos y estreptococos.

1.2. OBJETIVOS.

1.2.1. OBJETIVO GENERAL.

Determinar la existencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las turbinas,

que se utilizan en la Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad

Central del Ecuador.

1.2.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS.

Conocer el porcentaje existente de estafilococos en las turbinas que utilizan los

estudiantes de séptimo, octavo y noveno semestre que atienden en Clínica Integral de

la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador mediante un

análisis microbiológico.

Establecer el porcentaje existente de enterococos en las turbinas que utilizan los


3



Evaluar el porcentaje existente de estreptococos en las turbinas que utilizan los




Conocer el porcentaje de estudiantes que esterilizan las turbinas antes de la utilización

en las clínicas de séptimo, octavo y noveno semestre de la Facultad de Odontología de

la Universidad Central del Ecuador.

Determinar si las bacterias encontradas en el análisis microbiológico son iguales en la

cabeza o en el mango de la turbina.

Identificar la presencia de otros microorganismos que aparecieron en las turbinas.

1.3. JUSTIFICACIÓN.

El instrumento de mayor utilización en la práctica odontológica actual es la turbina, pero

como profesionales no tomamos las correctas medidas de asepsia y antisepsia, razón por la

cual permitimos la transmisión de enfermedades.

Este trabajo pretende concientizar a los estudiantes que atienden en la Clínica Integral de la

Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador y evidenciar la realidad que

se vive en la atención odontológica sobre la presencia de estafilococos, enterococos y

4

estreptococos en las turbinas y al mismo tiempo cuidar la salud, tanto de nuestros pacientes,

como la de nosotros mismos.

Los pacientes están conscientes del peligro que pueden correr cuando son atendidos con

instrumental contaminado y sin las debidas normas de protección y el avance continuo de

información lo que nos obliga y nos exige cuidarnos y cuidarlos a ellos. Se revisarán las

medidas necesarias que debemos seguir para la prevención y control de enfermedades infecto-

contagiosas haciendo énfasis en la adecuada esterilización y desinfección tanto del

instrumental como del ambiente de trabajo.

Todo lo que se haga por protegernos y proteger a nuestros pacientes, redundará en una

práctica odontológica cada vez sea más exitosa y confiable tanto para nosotros como para la

comunidad.

1.4. HIPÓTESIS.

Las turbinas que utilizan los estudiantes de séptimo, octavo y noveno semestre en la clínica

integral no pasan por un correcto proceso de esterilización debido al desconocimiento para la

eliminación de estafilococos, enterococos y estreptococos.

5

CAPÍTULO II

2. MARCO TEÓRICO.

2.1. ESTAFILOCOCOS.

2.1.1. CARACTERISTICAS GENERALES.

Estafilococos es una palabra que se deriva del griego que significa racimos de cocos

porque ellos tienden a agruparse de esa manera, aunque también se los encuentra de forma

única, en pareja o en cadenas cortas. Los estafilococos son cocos grampositivos cuyo

diámetro varía de 0,5 a 1,5 um, aerobios facultativos, catalasa positvo, no móviles, son

capaces de crecer en un medio de 10 % de cloruro de sodio, en una temperatura de 18 a 40 °C.

Se pueden encontrar en la piel y las mucosas del ser humano (Murray, Kobayashi, Pfaller, &

Rosenthal, 1997).

Los estafilococos presentan un metabolismo muy activo, crecen rápidamente

en varios medios de cultivo y producen algunos pigmentos de color blanco y amarillo. Los

estafilococos patógenos producen coagulación del plasma y hemólisis, también fabrican

varias toxinas y enzimas extracelulares (Brooks, Carroll, Butel, & Morse, 2008).

2.1.2. CULTIVO Y CRECIMIENTO.

Los estafilococos crecen de una forma efectiva en casi todos los medios bacteriológicos a

una temperatura de 37 °C. En los medios sólidos las colonias se presentan en formas

redondas, lisas, brillantes y prominentes. Además se habla de que los estafilococos producen

catalasa, ácido láctico y fermentan carbohidratos; son relativamente resistentes a la

desecación al calor (resisten 50 °C durante 30 min) y también al cloruro de sodio al 9 %, así

6

mismo pueden inhibirse con facilidad ante sustancia como el hexaclorofeno al 3 % (Brooks et

al.).

2.1.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA.

Figura N°1. Estructura de la pared de los microorganismos del género

Staphylococcus.

Fuente: (Negroni, 2004).

Los estafilococos en la pared celular contienen polisacáridos, proteínas antígenas y otras

sustancias. El peptidoglucano que es un polímero polisacárido proporciona el exoesqueleto

rígido de la pared celular, cuando este se expone a un ácido fuerte o lisozima la destruye, de

aquí la importancia que este tiene para la patogénesis de la infección puesto que induce la

producción de interleucina-1 y de anticuerpos opsónicos en los monocitos, tienen una

actividad parecida a endotoxina y activa el complemento (Brooks et al. 2008).

7

La mayoría de estafilococos producen una capa de limo o biopelícula que es hidrosoluble y

laxa formada por monosacáridos, proteínas y pequeños péptidos en una cantidad que es

dependiente de condiciones de crecimiento y factores genéticos. Esta sustancia une las

bacterias a cuerpos extraños (prótesis valvulares, injertos, catéteres) y tejidos, de ahí la

importancia de esta propiedad para la supervivencia de los estafilococos coagulasa negativos.

(Murray et al. 2014).

Los ácidos teicoicos son polímeros de glicerol o fosfato que también forman parte de la

pared celular, mediante una unión lipofílica se unen al peptidoglucano estimulando la

respuesta humoral específica según explicó (Murray et al.).

La proteína A también forma parte de la pared celular de muchas cepas de estafilococo

esta se une a la porción Fc de las moléculas IgG. La proteína A es un reactivo importante para

diagnóstico e inmunología porque la proteína A unida con moléculas IgG dirigidas contra un

antígeno bacteriano específico aglutinan las bacterias que poseen este antígeno. (Brooks et al.

2008).

2.1.4. ENZIMAS Y TOXINAS.

La enzima más conocida es la coagulasa que actúa formando un coágulo que hace que el

microorganismo se internalice, siendo de esta manera más fácil fagocitarlo, mediante estudios

se ha comprobado que la coagulasa aumenta la permeabilidad capilar y estimula la

contracción del músculo liso. La toxina α daña las células de la piel, el músculo liso, las

plaquetas y los macrófagos. La toxina β o esfingomielinasa C es tóxica para células que tienen

esfingomielina, La toxina γ actúa sobre los fosfolípidos de la membrana. La toxina δ es

tóxica para varias células polimorfonucleares, macrófagos, linfocitos y plaquetas. (Negroni,

2004).

8

2.1.5. EPIDEMIOLOGÍA.

Los staphylococcus son parásitos humanos q viven en continuo movimiento y en todas

partes formando parte de la biota habitual razón por la cual pueden originar infecciones

endógenas y exógenas. Los niños recién nacidos, los pacientes con quemaduras, los enfermos

quirúrgicos, los inmunodeprimidos, los individuos tratados con inmunosupresores, los

enfermos con virosis del aparato respiratorio y quienes tiene enfermedad granulomatosa

crónica son susceptibles a la contaminación con estafilococos (Negroni).

Figura N° 2. Colonia de Staphylococcus aureus.

Fuente: Elaborada por la autora

9

2.1.6. CLASIFICACIÓN.

Los estafilococos comprenden 45 especies y 24 subespecies de las cuales los

staphylococcus capitis se reproducen en regiones con glándulas sebáceas como por ejemplo

en las regiones como la frente, los staphylococcus aureus coloniza las narinas anteriores, los

staphylococcus haemolyticus y hominis se encuentran en lugares donde hay glándulas

apócrinas como las axilas. (Murray, 2014).

Los estafilococos conforman un importante grupo de patógenos en el ser humano y originan

un amplio espectro de enfermedades sistémicas que pueden poner en peligro la vida,

infecciones de la piel, los tejidos blandos, los huesos y el aparato genitourinario e infecciones

oportunistas. (pag.174).

2.1.6.1. STAPHYLOCOCCUS AUREUS.

Figura N° 3. Staphylococcus aureus.

Fuente: (Ryan & Ray, 2010).

10

El staphylococcus aureus también llamado staphylococcus dorado es el principal patógeno

de este grupo, la mayoría de personas alguna vez en su vida podrían presentar alguna

infección causada por este tipo de estafilococo que podría ir desde una intoxicación

alimentaria, infecciones cutáneas leves hasta infecciones complejas que pueden llegar a poner

en peligro la vida. (Brooks, Carroll, Butel, & Morse, 2008).

El staphylococcus aureus se encuentra presente mayoritariamente en las fosas nasales

humanas, pero también se localizan en el tracto gastrointestinal y urogenital, en heridas

infectadas, en quemaduras o en la piel simplemente se podría afirmar que este tipo de

estafilococo está presente en casi todo el cuerpo y sus secreciones. Se cree que entre 25% y

50% de seres humanos son portadores de Staphylococcus Aureus. (Achón, Cabral & Walde,

2012).

Uno de los microorganismos fundamentales en la medicina es el Staphylococcus aureus

porque es el responsable de desencadenar algunas de enfermedades, producidas por acción

directa o mediante la acción de sus toxinas. (Álvarez & Ponce, 2012).

2.1.6.1.1 PATOGENIA.

El staphylococcus aureus es hemolítico, produce coagulasa y un pigmento amarillo. La

capacidad patógena de este microorganismo tiene un efecto combinado de toxinas, factores

extracelulares y propiedades invasivas de las cepas, razón por la cual varia de gran manera las

enfermedades que llega a causar por un lado la intoxicación alimentaria estafilocócica por

ingestión de la toxina pre elaborada, por otro lado en cambio tenemos los abscesos

diseminados en los órganos y la bacteriemia estafilocócica. (Brooks et al. 2008).

11

2.1.6.1.2. MANIFESTACIONES CLÍNICAS.

2.6.1.2.1. INTOXICACIÓN ALIMENTARIA POR ESTAFILOCOCOS.

Es una enfermedad frecuente más grave que una infección, se debe a la acción de una

toxina bacteriana presente en los alimentos como por ejemplo las carnes curadas (cerdo

curados con sal, jamón), bollas rellenos con crema, helados y ensalada de patatas. (Murray et

al. 2014).

Al ingerir alimentos que están contaminados con enterotoxinas estafilococas se puede

producir síntomas como vómitos y diarrea agudos después de una a cinco horas.

Generalmente el paciente no presenta fiebre, pero si malestar corporal, la recuperación de esta

intoxicación es rápida, se puede complicar cuando afecta a personas ancianas o que padecen

alguna otra enfermedad. (Ryan & Ray, 2010).

El tratamiento de esta enfermedad se centra en aliviar los dolores abdominales, la diarrea y

reponer los líquidos perdidos. Los antibióticos no están indicados en este tipo de intoxicación

porque es causada por una toxina preformada y no por microorganismos en procesos de

replicación. (Murray et al. 2014).

2.1.6.1.2.2. SÍNDROME DE SHOCK TÓXICO.

En 1928 en Australia es donde se produce el primer brote de este síndrome en niños, 50

años más tarde aparecieron casos pero en mujeres menstruantes que padecían esta enfermedad

porque las cepas de staphylococcus aureus se multiplicaban rápidamente en tampones

12

superabsorbentes. Después de retirar estos tampones del mercado la incidencia de esta

enfermedad descendió de manera acelerada. (Murray et al. 2014).

Esta enfermedad tiene la característica de presentar fiebres muy elevadas, vómitos, dolores

musculares, diarrea, irritación faríngea, existe la posibilidad de que el paciente pueda

desarrollar una erupción cutánea con descamación (Ryan & Ray, 2010).

2.1.6.1.2.3. SÍNDROME DE LA PIEL ESCALDADA ESTAFILOCÓCICA

También llamada enfermedad de Ritter, que se caracteriza por un enrojecimiento e

inflamación se extiende por el resto del cuerpo en alrededor de 48 horas. Después se forman

ampollas y vesículas cutáneas que contienen líquido claro sin microorganismos ni leucocitos.

Al pasar 7 días más o menos se recupera el epitelio de una forma intacta, sin dejar cicatrices

porque solamente se desprende la capa superior de la epidermis (Murray et al. 2014).

Figura N° 4. Síndrome estafilocócico de la piel escaldada en un neonato.

Fuente: (Ryan & Ray, 2010).

13

2.1.6.2. STAPHYLOCOCCUS EPIDERMIDIS.

El estafilococo epidermis es la causa menos común de infecciones oportunistas, su

crecimiento no produce hemólisis, es coagulasa negativo, puede inventar válvulas cardíacas

naturales (causada por la inoculación de microorganismos en una estructura valvular dañada)

o protésicas (los microorganismos son introducidos el momento de la cirugía) (Murray et al.

2014).

2.1.6.3. STAPHYLOCOCCUS SAPROFÍTICO.

El estafilococo saprofítico produce infecciones en el tracto urinario sobre todo de mujeres

que presentan síntomas como dolor al orinar, pus en orina y un gran número de bacterias en

la orina. Este tipo de infecciones responden rápido a los antibióticos apropiados (Murray et

al.).

2.2. ENTEROCOCOS.

2.2.1. CARACTERÍSTICAS GENERALES.

Los enterococos son cocos grampositivos que se agrupan en parejas y en cadenas cortas,

crecen en ambientes aerobios y anaerobios en una amplia gama de temperatura y pH, son

bacterias ácido lácticas porque fermentan la glucosa con ácido láctico como producto

terminal. Los enterococos se clasificaron antes como estreptococos del grupo D porque

poseen el antígeno de la pared celular que también tienen los de este grupo (Murray et al.

2014).

14


Los enterococos crecen con mucha facilidad en agar sangre y producen colonias blancas

grandes que pueden tener un aspecto α hemolítico y rara vez un aspecto β hemolítico después

de las 24 horas de incubación (Murray et al.).

2.2.3. PATOGENIA E INMUNIDAD.

Los enterococos no poseen los mismos factores de virulencia que los estafilococos y

estreptococos pero en pacientes hospitalizados es un grave problema por las cepas resistentes

a antibióticos. La virulencia esta mediada por dos propiedades 1) capacidad para adherirse a

los tejidos y 2) resistencia a los antibióticos. Los pacientes inmunocomprometidos son

particularmente susceptibles a sufrir infecciones enterocócicas porque la depuración de

enterococos de los tejidos y sangre esta mediada por una rápida entrada de neutrófilos

(Murray et al.).

2.2.4. EPIDEMIOLOGÍA.

Los enterococos se aíslan normalmente a partir de heces del ser humano y de algunos

animales, pero tienen la capacidad de producir enfermedades en muchos entornos como en

ambientes hospitalarios, los pacientes que se han sometido a una cirugía abdominal extensa,

implante de catéteres permanentes, trasplantes, o procedimientos como diálisis están en mayor

riesgo De todas las infecciones intrahospitalarias el 10 o 15% se debe a enterococos esto

indicó (Ryan & Ray, 2010).

15


Se conoce alrededor de 37 especies de enterococos según indicó (Brooks et al. 2008) de las

cuales la más frecuente es el enterococcus faecalis. Los enterococos se transmiten

generalmente entre pacientes por las manos del personal que trabaja en el hospital que muchas

veces tienen enterocococos en su tracto digestivo.

2.2.5.1. ENTEROCOCO FAECALIS.

Es una bacteria Gram positiva, que presenta forma de coco y se agrupa en cadenas o pares,

anaerobia facultativa, inmóvil. En la actualidad ha cautivado la atención de varios

investigadores porque se ha descubierto que es la causa habitual de infección del sistema de

conductos radiculares en dientes con fracaso en el tratamiento de conducto. (Pardi, Guilarte,

Cardozo, & Briceño, 2008).

2.3. ESTREPTOCOCOS.

2.3.1. CARACTERÍSTICAS GENERALES.

Los estreptococos son cocos grampositivos según describe (Murray 2008) se disponen en

cadenas o parejas, son anaerobios facultativos y varios de estos crecen en un ambiente que

posea dióxido de carbono. Fermentan carbohidratos, por lo que producen ácido láctico y son

catalasa negativos. Las células ovaladas que conforman los estreptococos miden alrededor de

0,5 a um.

16


Los estreptococos crecen de preferencia en agar sangre porque cubre las necesidades para

el crecimiento y además nos demuestra la hemólisis, las colonias son pequeñas y es posible

encontrar una hemólisis que las rodea. Los estreptococos degradan diversos aminoácidos,

carbohidratos y proteínas ya que son metabólicamente activos (Ryan & Ray, 2010).

2.3.3. ESTRUCTURA ANTÍGENA.

La proteína M bloquea la vía alternativa del complemento es decir que se comporta como

un factor antifagocítico, las fimbrias sirven como adherencias y están recubiertas por

proteínas M y ácido teicoico, la sustancia P es una nucleoproteína que forma parte del cuerpo

celular. El ácido lipoteicoico actúa de forma similar como factor de adherencia uniéndose a la

fibronectina de las células del huésped (Negroni, 2004).

2.3.4. ENZIMAS Y TOXINAS.

Las toxinas eritrogénicas son elaboradas por cepas lisogénicas de los estreptococos, que

actúan como superantígenos y se piensa que son las responsables de ciertas manifestaciones

clínicas en enfermedades producidas por estreptococos, como por ejemplo el síndrome del

shock tóxico estreptocócico, la fascitis necrosante o el exantema observado en pacientes con

escarlatina (Murray et al. 2014).

La estreptolisina S es la responsable de la β-hemólisis que se puede ver en el agar sangre,

es una hemolisina estable en presencia del oxígeno, no inmunogénica y ligada a la cédula que

17

puede lisar plaquetas, leucocitos y eritrocitos. La S significa que son estables en suero

(Murray et al.).

La estreptolisina O es una hemolisina frágil al oxígeno, que puede lisar células en cultivo,

eritrocitos, plaquetas, leucocitos. Incita la producción de anticuerpos por ello se lo utiliza

como una herramienta diagnóstica (Anticuerpos anti-estreptolisina O [ASLO]) (Murray et

al.).

Estreptocinasa (A y B) estas son enzimas que cumplen el papel de degradar el

plasminógeno al liberar la proteína plasmina, por esta razón pueden lisar coágulos de sangre y

los depósitos de fibrina y facilitan la rápida diseminación de estreptococo pyogenes por los

tejidos infectados (Murray et al.).


Hay varias clasificaciones de los estreptococos pero la más conocida toma en cuenta los

antígenos polisacáridos de la pared celular, la que realizo la Doctora Lancefield ubicando a las

bacterias en grupos con letras que van desde la A hasta la G, después se fueron agregando

más grupos hasta llegar a la W. Los patógenos humanos pertenecen a los grupos A, C y G.

(Negroni, 2004).

18

TABLA N° 1. Clasificación de estreptococos β hemolíticos comunes.

Grupo Especie representativa Enfermedades

A S. pyogenes Faringitis, infecciones de la piel y los tejidos

blandos, bacteriemia, fiebre reumática,

glomerulonefritis aguda.

B S. agalactiae Enfermedad neonatal, endometritis, infecciones

de heridas, infecciones del tracto urinario,

bacteriemia, neumonía, infecciones de la piel y de

los tejidos blandos

C S. dysgalactiae Faringitis, glomerulonefritis aguda

F y G Grupo S. anginosus

S. dysgalactiae

Abscesos

Faringitis, glomerulonefritis aguda

Fuente: (Murray, Rosenthal, & Pfaller, Microbiología Médica, 2014).

2.3.5.1. STREPTOCOCO VIRIDANS.

Los estreptococos viridans son α hemolíticos, prevalecen en la flora normal del tracto

respiratorio alto, pueden ingresar a la circulación como resultado de traumatismos y son la

principal causa de endocarditis en válvulas cardíacas anormales como lo explica (Brooks et al.

2008).

19

2.3.6. MANIFESTACIONES CLÍNICAS.

2.3.6.1. SÍNDROME DEL SHOCK TÓXICO ESTREPTOCÓCICO.

Los pacientes que presentan este síndrome tienen una inflamación de tejidos blandos en el

sitio de la infección y síntomas como fiebre, malestar, escalofríos vómitos, nauseas, diarrea.

El dolor va en aumento conforme avanza la enfermedad y las personas con enfermedades

sistémicas, o pacientes inmunodeprimidos tienden a padecer con mayor facilidad de estas

enfermedades. (Murray et al. 2014).

2.3.6.2. FARINGITIS.

Esta enfermedad es producida por estreptococos del grupo A y es más común en niños

entre 5 y 15 años. Se transmite mediante la tos, estornudos, o también durante una

conversación (Murray et al.).

2.3.6.3. IMPÉTIGO.

Es una infección cutánea frecuente en los niños que se presenta como lesiones ampollares

en la piel, luego de que sigue avanzando la presentan pus por ultimo terminan como costras.

Se contagian fácilmente y se presentan alrededor de la boca y de las comisuras labiales

(Negroni, 2004).

20

2.4. OTROS MICROORGANISMOS.

2.4.1. LACTOBACILLUS.

Los lactobacillus son bacilos anaerobios facultativos, forman parte de la flora normal de la

cavidad bucal, del intestino, del aparato genito urinario y del estómago, las cepas de

lactobacillus se usan como probióticos y tienen relación con algunas infecciones que se

presentan en el ser humano, esto es más común en pacientes inmunodeprimidos. (Murray, et

al. 2014).

2.4.2. ESCHERICHIA COLI.

Este microorganismo está relacionado con enfermedades gástricas e intestinales, tiene una

gran variedad de factores de virulencia que se pueden clasificar en dos categorías generales

adhesinas y exotoxinas. En el tubo digestivo hay gran cantidad de escherichia coli, por ello

pueden comportarse como microorganismos oportunistas, pero la mayor parte de escherichia

coli produce enfermedad digestiva y extraintestinal así nos explica (Murray et al.).

2.5. BIOSEGURIDAD EN ODONTOLOGÍA.

En el consultorio odontológico, se debe tener una atención rigurosa con las normas de

bioseguridad, esta protección debe abarcar tanto al paciente como al profesional para así

evitar que se arrastren microorganismos que produzcan después lo que se denomina infección

cruzada. Esta transmisión de enfermedades puede darse, través de sangre, secreciones orales,

respiratorias del paciente al profesional o asistentes y de estos al paciente o entre pacientes,

así nos explicó (Zenteno, 2011).

21

2.6. ESTERILIZACIÓN Y DESINFECCIÓN DE PIEZAS DE MANO.

Las piezas de mano deben ser esterilizadas de preferencia en autoclave a una temperatura

de 135°C, antes de la esterilización deben ser lavadas con detergente para eliminar restos de

sangre y saliva, luego se las desinfecta con alcohol de 70 grados o hipoclorito de sodio en

solución al 10 %, por último se seca bien la turbina y se expulsa toda el agua que han quedado

en su interior, para esto se recomienda hacer funcionar la turbina por 30 segundos, así (Otero,

2002).

Para la esterilización y desinfección de las piezas de mano existe un procedimiento que

cumple las normas básicas de bioseguridad y es el siguiente:

Opere la pieza de mano con una fresa por unos 30 segundos para limpiar la línea de agua.

Mueva la fresa y separe la pieza de mano de las salidas de agua y aire.

Lave con agua y detergente la turbina, cepillándola durante 20 a 30 segundos.

Enjuague la turbina.

Seque con papel absorbente.

Aplique el lubricante limpiador según las indicaciones del fabricante.

Coloque la turbina con la fresa y acciónela durante 30 segundos para retirar el excedente

del lubricante.

Esterilice la turbina y el saca fresa en autoclave.

Siga las indicaciones del tiempo de esterilización en autoclave recomendado por el

fabricante.

Antes de usar la pieza de mano se recomienda volver a lubricar según recomendación del

fabricante.

Coloque la pieza de mano para su uso.

22

Accione por el lapso de 30 segundos la pieza de mano con una fresa antes de utilizarla

dentro de boca del paciente. (Gálvez et al. 2006).

23

CAPÍTULO III

3.1. METODOLOGÍA.

El presente trabajo de investigación se utilizó el método científico a nivel descriptivo

porque se identificó la presencia de estafilococos, enterococos y estreptococos presentes en el

mango y la cabeza de las turbinas utilizadas por los estudiantes que atienden en la Clínica

Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

3.1.1. TIPO Y DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN.

El tipo de estudio que se utilizó en este trabajo fue un estudio de campo, porque permitió

tomar los datos directamente de la realidad donde ocurren los hechos, este tipo de

investigación facilitó la oportunidad de realizar observaciones fundamentales que sirvieron de

base del proceso investigativo para la recopilación de datos los cuales permitieron cumplir

con los objetivos planteados de esta manea dar a las respectivas conclusiones y

recomendaciones.

La observación admitió evaluar de una mejor forma los factores de riesgos biológicos en la

Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

Además se utilizó un diseño bibliográfico porque se recopila y organiza información

científica sobre cada uno de los microorganismos que han sido parte de este estudio.

3.2 POBLACIÓN O MUESTRA.

El universo para este estudio fue finito, es decir que se tomaron 30 muestras por ciclo, en

turbinas antes de ser utilizadas para la atención odontológica en Clínica Integral de la

Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.

24

Las muestras se tomaron en los tres ciclos de estudio:

30 EN SÉPTIMO NIVEL:

o 15 muestras de la cabeza de la turbina y 15 muestras del mango.

30 EN OCTAVO NIVEL:


30 EN NOVENO NIVEL:


3.2.1. CRITERIOS DE INCLUSIÓN.

Turbinas de cualquier marca.

Turbinas de cuyos estudiantes nos permitieron tomar la muestra.

Turbinas próximas a ser utilizadas en boca de los pacientes.

3.2.2. CRITERIOS DE EXCLUSIÓN.

Turbinas de cuyos estudiantes se negaron a permitirnos tomar las muestras.

Turbinas que estén dañadas o rotas.

25

3.3 DISEÑO DE VARIABLES.

TABLA N° 2. Variables.

VARIABLE

DEFINICIÓN

DIMENSIÓN

OPERACIONAL

TIPO

INDICADORES

Independiente

Staphylococcus Microorganismo

Patógeno

Identificar

microrganismos con las

pruebas bioquímicas

Cualitativa Staphylococcus

Enterococos Microorganismo

Patógeno

Identificar



Cualitativa Enterococos

Streptococcus Microorganismo

Patógeno

Identificar



Cualitativa Streptococcus

Dependiente

Turbina Instrumento de

muestreo

Muestra tomada antes de

su utilización

Cuantitativa Turbina de los

alumnos que usan

en la atención

odontológica

Fuente: Elaborada por la Autora.

3.4. PROCEDIMIENTO.

Los pasos que se siguieron para la realización de este trabajo de investigación llevaron la

siguiente estructura con el respectivo orden.

26

3.4.1. SELECCIÓN DE MUESTRAS.

Para la toma de muestras se seleccionaron 15 turbinas de séptimo, 15 turbinas de octavo y

15 turbinas de noveno. Se tomó dos muestras por cada turbina: una muestra de la cabeza y

otra muestra del mango.

3.4.2. TOMA DE MUESTRAS.

Para la recolección de muestras se utilizó hisopos previamente esterilizados por la doctora

Rachide Acosta guardados en tubos de ensayo cerrados con su respectivas tapas, estos fueron

humedecidos en tioglicolato, la muestra se tomó realizando un frotis con un hisopo en la

cabeza de la turbina, después se procedió a colocar la muestra en tioglicolato que estaba en

tubo de ensayo, luego se cerró la muestra con una gasa estéril y por último se etiquetó la

muestra; este procedimiento se repitió tomando la muestra del mango de la turbina. Dichas

muestras se tomaron antes de que la turbina se use para la atención odontológica en la Clínica

Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central.

FIGURA N° 5. Proceso para obtener las muestras para el estudio.

27

Fuente: Elaborada por la autora.

3.4.3. ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE DE MUESTRAS.

Después de tomar las muestras de las turbinas pertenecientes a los estudiantes que atienden

en Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad Central, los tubos de

ensayo ya identificados se llevan al laboratorio de microbiología de la Facultad de Química de

la Universidad Central del Ecuador, estas muestras son llevadas dentro de una caja plástica

cerrada herméticamente a una temperatura de 7 °C para cuidar que se mantenga esta

temperatura se colocó dentro de la caja una bolsa congelada, las muestras fueron llevadas a

los treinta minutos de haber sido tomadas.

FIGURA N ° 6. Transporte de muestras.


28

3.4.4. CRECIMIENTO DE MICROORGANISMOS.

Cuando las muestras ya se encontraban en el laboratorio se procedió a la preparación del

medio de cultivo agar sangre que se utilizó como medio de cultivo para el crecimiento de

microorganismos.

FIGURA N° 7. Estufa para el cultivo.


Los tubos de ensayo que contenían los hisopos con la respectiva muestra fueron llevados a

la estufa del cultivo, a una temperatura de 35°C por un tiempo de 48 horas.

Después de las 48 horas de que las muestras pasaron en la estufa, se procedió a ver si había

o no crecimiento bacteriano, para esto se utilizó un tubo testigo de tioglicolato y así poder

definir con las muestras si existía o no turbidez.

FIGURA N° 8. Turbidez después de 48 horas de incubación de las muestras en tioglicolato.

29


3.4.5. SIEMBRA DE MICROORGANISMOS.

Se escogieron lo tubos que aparentemente tenían crecimiento bacteriano y se procedió a la

siembra en el agar sangre, se sembró en el primer cuadrante del cultivo, se depositó la muestra

del caldo de tioglicolato y luego se estrió para obtener colonias puras para tener colonias que

luego serán sometidas a pruebas bioquímicas para identificar qué tipo de microorganismo

creció.

30

3.4.6. CRECIMIENTO Y CONTEO DE MICROORGANISMOS.

Después de realizar la siembra en el agar, se colocó las cajas Petri en la estufa por 48 horas

a una temperatura de 35 °C después se sacó de la estufa para proceder a ver si existió o no

crecimiento bacteriano.

FIGURA N° 9. Incubación de cajas Petri.


3.4.7. IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS MEDIANTE PRUEBAS

QUÍMICAS.

Las colonias que crecieron en agar sangre fueron sometidas a varias pruebas bioquímicas

para identificar los microorganismos. La prueba de la Catalasa que nos ayuda a determinar la

existencia de estafilococos, se realizó colocando una colonia que creció en agar sangre sobre

un portaobjetos con una gota de agua oxigenada al 3 %. La prueba fue positiva porque se vio

que esta mezcla produjo burbujas de gas.

31

A las pruebas que resultaron positivas se les realizó otra prueba, que es la coagulasa para

determinar la presencia de staphylococcus aureus, entonces se tomó una colonia de las que se

encontraron en el agar sangre y se colocó en el tubo de ensayo que tenía un medio líquido de

plasma sanguíneo, se mezcló a baño María y luego se incubó a una temperatura de 37°C por

un lapso de 4 horas más o menos, luego se procede a ver si se formó o no el coágulo.

FIGURA N° 10. Prueba de Coagulasa.


3.5. ASPECTOS ÉTICOS.

En este trabajo se tomaron muestras de superficies inertes y por esta razón no se necesitó

la aprobación del comité de ética.

32

CAPÍTULO IV

4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.

4.1 RESULTADOS.

TABLA N° 3. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las


ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS

PRESENCIA AUSENCIA TOTAL

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCOS 0 0% 15 100% 15 100%

ENTEROCOCOS 0 0% 15 100% 15 100%

ESTREPTOCOCOS 2 13,33% 13 86,67% 15 100%

Elaboración: María Teresa Orquera.

FIGURA N°11. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las



INTERPRETACIÓN: Estos fueron los resultados obtenidos de 15 muestras de las cabezas

de las turbinas de la Clínica Integral de séptimo semestre, en esta tabla y figura se puede

apreciar un 13, 33% de estreptococos y la ausencia de estafilococos y enterococos.

0%

20%

40%

60%

80%

100%

ESTAFILOCOCOS ENTEROCOCOS ESTREPTOCOCOS

0% 0%

13,33%

100% 100%

86,67%

PRESENCIA AUSENCIA

33

TABLA N° 4. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en los


ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS


FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCOS 1 6,67% 14 93,33% 15 100%

ENTEROCOCOS 1 6,67% 14 93,33% 15 100%

ESTREPTOCOCOS 2 13,33% 13 86,67% 15 100%


FIGURA N° 12. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en los



INTERPRETACIÓN: Estos fueron los resultados obtenidos de 15 muestras de los mangos

de las turbinas de la Clínica Integral de séptimo semestre, donde se ve un 6,67 % de

estafilococos y enterococos; además de un 13,33% de estreptococos.

0,00%

20,00%

40,00%

60,00%

80,00%

100,00%


6,67% 6,67% 13,33%

93,33% 93,33% 86,67%

PRESENCIA AUSENCIA

34



ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS


FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EU

EN

CIA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCOS 3 20% 12 80% 15 100%

ENTEROCOCOS 1 6,67% 14 93,33% 15 100%

ESTREPTOCOCOS 2 13,33% 13 86,67% 15 100%


FIGURA N° 13. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las




de las turbinas de la Clínica Integral de octavo semestre, en esta tabla y figura se puede

apreciar un 20% de estafilococos, un 6,67 de enterococos y un 13,33% de estreptococos.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%


20%

6,67% 13,33%

80%

93,33% 86,67%

PRESENCIA AUSENCIA

35

TABLA N° 6. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en los







de las turbinas de la Clínica Integral de octavo semestre, en esta tabla y gráfico se puede

apreciar un 13, 33% de estafilococos, 26,67% de estreptococos y la ausencia de enterococos.

0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%


13,33%

0%

26,67%

86,67%

100%

73,33%

PRESENCIA AUSENCIA

ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS


FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCOS 2 13,33% 13 86,67% 15 100%

ENTEROCOCOS 0 0% 15 100% 15 100%

ESTREPTOCOCOS 4 26,67% 11 73,33% 15 100%

36



ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS


FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCOS 0 0% 15 100% 15 100%

ENTEROCOCOS 1 6,67% 14 93,33% 15 100%

ESTREPTOCOCOS 2 13,33% 13 86,67% 15 100%


FIGURA N° 15. Presencia y ausencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las




de las turbinas de la Clínica Integral de noveno semestre, en esta tabla y gráfico se puede

apreciar un 13,33 % de estreptococos, un 6,67% de enterococos y la ausencia de

estafilococos.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%


0% 6,67%

13,33%

100% 93,33%

86,67%

PRESENCIA AUSENCIA

37


mangos de las turbinas en la clínica de noveno semestre.

ALTERNATIVA

MICROORGANISMOS


FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

FR

EC

UE

NC

IA

PO

RC

EN

TA

JE

ESTAFILOCOCO 3 20% 12 80% 15 100%

ENTEROCOCO 0 0% 15 100% 15 100%

ESTREPTOCOCO 1 6,67% 14 93,33% 15 100%



mango de las turbinas en la clínica de noveno semestre.



de las turbinas de la Clínica Integral de noveno semestre, en esta tabla se puede apreciar un

20 % de estafilococo, un 6,67% de estreptococos y ausencia de enterococos.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%


20%

0% 6,67%

80%

100% 93,33%

PRESENCIA AUSENCIA

38

TABLA N° 9. Presencia y ausencia de microorganismos en general encontrados en


SÉPTIMO OCTAVO NOVENO

F % F % F %

PRESENCIA 7 23,33% 14 46,67% 10 33,33%

AUSENCIA 23 76,67% 16 53,33% 20 66,77%

TOTAL 30 100% 30 100% 30 100%


FIGURA N° 17. Presencia y ausencia de microorganismos en general encontrados en



INTERPRETACIÓN: En esta tabla y gráfico se realizó una recopilación de las noventa

muestras que se tomó para este estudio identificando si se encontró o no microorganismos así

tenemos que en séptimo semestre hubo una presencia de microorganismos de 23,33 %, en la

clínica de octavo existió 46,67% de presencia de microorganismos y en la clínica de noveno

pudimos apreciar un porcentaje de 33,33% de presencia de microorganismos.

0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%

SÉPTIMO OCTAVO NOVENO

23,33%

46,67%

33,33%

76,67%

53,33%

66,77%

PRESENCIA AUSENCIA

39

TABLA N°10. Microorganismos que se encontraron en general.


FIGURA N° 18. Microorganismos que se encontraron en general.


INTERPRETACIÓN: En este gráfico y tabla se realizó una identificación de todos los

microorganismos que se encontraron así tenemos la presencia de estreptococo viridans 4 en

séptimo, 5 en octavo, 3 en noveno; estafilococo aureus 1 en séptimo, 2 en octavo y 2 en

noveno; estafilococo epidermis 2 en octavo y 1 en noveno; estafilococo saprófitico 1 en

octavo semestre; enterococo fecal 1 en séptimo, 1 en octavo y 1 en noveno; lactobacilos 2 en

séptimo, 2 en octavo y 2 en noveno; escherichia coli 3 de octavo y 2 en noveno.

4

1 1

2

0

5

2 2

1 1

2

3 3

2

1 1

2 2

0

1

2

3

4

5

6

Estreptococoviridans

Estafilococoaureus

Estafilococoepidermis

Estafilococosaprofítico

Enterococofecal

Lactobacilos Escherichiacoli

7MO 8VO SEMESTRE 9NO SEMESTRE

MICROORGANISMOS 7MO SEMESTRE

8VO SEMESTRE

9NO SEMESTRE

Estreptococo viridans 4 5 3

Estafilococo aureus 1 2 2

Estafilococo epidermis 2 1

Estafilococo saprofítico 1

Enterococo fecal 1 1 1

Lactobacilos 2 2 2

Escherichia coli 0 3 2

TOTAL 8 16 11

40

4.2. DISCUSIÓN.

La cavidad bucal es un medio lleno de varios tipos de microorganismos, de allí la

importancia de aplicar las respectivas normas de bioseguridad para eliminar la carga

bacteriana de todos los elementos que entran en contacto con boca mientras realizamos un

tratamiento dental.

Este estudio nos permitió conocer que existe una mayor presencia de microorganismos en

las turbinas que se utilizan en la clínica de octavo semestre (46,67%) mientras que en el

estudio realizado en las bandejas de los equipos odontológicos de la clínica y en las bandejas

porta instrumental de los estudiantes la mayoría de microorganismos encontrados fueron en

las clínicas de séptimo y noveno semestre, trabajo de investigación que lo realizo (Pumarica,

2014).

Se evidencia la presencia de tres tipos de estafilococos, aureus, epidermis y saprofítico que

fueron encontrados en mayor medida en la clínica de octavo, luego en la de noveno y por

último en la clínica de séptimo, microorganismos que también fueron hallados por Reyes et

al. 2012) un análisis microbiológico que se realizó en turbinas antes y después de la consulta

odontológica, así mismo se pudo evidenciar en el estudio realizado por (Xolo, Ortiz,

Alvarado, Guerrero, & Da Silveira, 2012) que consistía en buscar microorganismos aerobios

en las cajas de los materiales de los estudiantes de odontología campus Minatitlán donde se

encontró la presencia de estafilococos aureus en un 96% y estafilococos epidermidis en un

20%.

41

Se observó la presencia de un solo tipo de estreptococos el viridans, que fue encontrado en

las clínicas de los tres semestres, en menor proporción en la clínica de noveno semestre, estos

microorganismos no se evidenciaron en el estudio que presentó (Reyes et al.2012).

La presencia de enterococos es mínima pues se encontró en un sola muestra por cada nivel,

en el estudio de (Reyes et al. 2012) no se encontró este tipo de microorganismo.

Además de los microorganismos que buscaba este estudio pudimos encontrar otros como

por ejemplo la escherichia coli y lactobacilos que no se encontraron en el estudio de Reyes, et

al. 2012).

Según (Andrés T. et al. 1997) que realizó un estudio tomando las muestras de las turbinas

después de ser utilizadas en tratamientos cariológicos, endodónticos y periodontales en donde

encontró en mayor proporción de Streptococcos mutans y staphylococcos aureus seguidos de

los staphylococcos epidermidis y Streptococcos viridans en nuestro estudio existió más

presencia de Streptococcos viridans, en segundo lugar staphylococcos aureus y en menos

proporción staphylococcos epidermidis no pudimos encontrar ninguna muestra con

streptococos mutans.

42

CAPÍTULO V

5.1. CONCLUSIONES:

Se determinó la presencia de estafilococos, enterococos y estreptococos en las turbinas

que se utilizan en la Clínica Integral de la Facultad de Odontología de la Universidad

Central del Ecuador.

Se estableció que existe un porcentaje de estudiantes que no desinfectan ni esterilizan las

turbinas sobretodo en la clínica de octavo semestre.

Se definió la existencia de mayor número de microorganismos en los mangos de las

turbinas.

Se identificó la presencia de otros tipos de microorganismos como la escherichia coli y el

lactobacilos.

43

5.2. RECOMENDACIONES:

Se recomienda a los estudiantes utilizar los conocimientos en las normas de bioseguridad

para desinfección y esterilización de las turbinas que se utilizan en la atención de Clínica

Integral, para de esta manera brindar a los pacientes una atención segura y de calidad.

Seria de mucha utilidad un estudio a futuro sobre los métodos efectivos de desinfección y

esterilización de las turbinas, puesto que existen varios métodos y teorías, así como

algunas sustancia químicas que podrían ayudar en esta tarea.

Se sugiere realizar más a menudo charlas y conferencias sobre el tema de bioseguridad,

para refrescar conocimientos en los estudiante y concientizar sobre la importancia que

implica aplicar estos cuidados para bien del profesional, del paciente y del personal que

labora en la clínica.

44

CAPÍTULO VI

6.1. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS:

1. Achón, F., Cabral, L., & Walde, J. (17 de abril de 2012). Portación nasal de Staphylococcus

aureus en manipuladores de alimentos. Obtenido de Porta de revistas científicas:

http://bases.bireme.br/cgi-

bin/wxislind.exe/iah/online/?IsisScript=iah/iah.xis&src=google&base=LILACS&lang=p&nextAc

tion=lnk&exprSearch=640035&indexSearch=ID

2. Álvarez, I., & Ponce, J. (octubre de 2012). Staphylococcus aureus, Evolución de un viejo

patógeno. Obtenido de Revista Cubana de Pediatría:

http://scielo.sld.cu/scielo.php?pid=S0034-75312012000400007&script=sci_arttext

3. Andres T. (1997). Eficacia de la esterilización para la eiminación bacteriana en turbinas

dentales . Quintessence edición española, 10.

4. Gálvez , A., de Montenegro, R., Urriola, E., de Quezada, G., Roquebert, D., & Montero, R.

(enero de 2006). BIOSEGURIDAD EN LA PRÁCTICA BUCODENTAL. Obtenido de Ministerio de

Salud de Panamá:

http://www.minsa.gob.pa/sites/default/files/publicaciones/bioseguridad_bucodental.pdf

5. Brooks, G., Carroll, K., Butel, J., & Morse, S. (2008). Microbiología médica de Jawetz, Melnick

y Adelberg. México: Manual Moderno.

6. Murray, P., Kobayashi, G., Pfaller, M., & Rosenthal, K. (1997). Microbiología Médica.

Barcelona: Harcourt Brace.

7. Murray, P., Rosenthal, K., & Pfaller, M. (2014). Microbiología Médica. Barcelona, España:

Elsevier.

8. Negroni, M. (2004). Microbiología Estomatológica. Buenos aires: Editorial Médica

Panamericana.

9. Otero, J. (2002). Manual de Bioseguridad en Odontología. Obtenido de Odontomarketing:

http://w.w.w.odontomarketing.com/BIOSEGURIDAD.pdf

10. Pardi, G., Guilarte, C., Cardozo, E., & Briceño, E. (06 de 12 de 2008). DETECCIÓN DE

Enterococcus faecalis EN DIENTES CON FRACASO EN EL TRATAMIENTO ENDODÓNTICO.

Obtenido de Acta Odontológica Venezolana:

http://www.actaodontologica.com/ediciones/2009/1/pdf/enterococcus_faecalis_dientes_fr

acaso_tratamiento_endodontico.pdf

11. Pumarica, A. (2014). FACTORES DE RIESGO CONTAMINANTES EN BANDEJAS PORTA

INSTRUMENTAL DEL EQUIPO ODONTOLÓGICO EN INSTALACIONES DE LA CLÍNICA INTEGRAL

45

DE ADULTOS DE LA FACUTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL

ECUADOR. Quito, Pichincha, Ecuador.

12. Reyes, J., Rodriguez, L., Fernández, M., Iparaquirre, J., Montalvo, W., Bravo, K., . . . Fiorella, P.

(16 de marzo de 2012). Kiru_v.9_Art3v ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO ANTES Y DESPUÉS DE LA

UTILIZACIÓN DE LA. Obtenido de Universidad San Martin de Porres:

http://www.usmp.edu.pe/odonto/servicio/2012/Kiruv.9/Kiru_v.9_Art3.pdf

13. Ryan, K., & Ray, G. (2010). Sherris Microbiología Médica. México: McGrawHill.

14. Xolo, R., Ortiz, F., Alvarado, M., Guerrero, J., & Da Silveira, C. (Noviembre de 2012).

Microorgansmos aerobios presentes en el interior de las cajas de materiales de los

estudiantes de odontología. Obtenido de Odontología Actual:

http://www.uv.mx/coatza/odontologia/files/2014/08/Mo-aerobios-presentes-en-el-interior-

de-las-cajas-odontologicas.pdf

15. Zenteno, P. (2011). Bioseguridad en Odontología. Obtenido de Revistas Bolivianas:

http://www.revistasbolivianas.org.bo/pdf/raci/v15/v15_a02.pdf

46

ANEXO 1.

Toma de muestras cabeza de las turbinas.

47

ANEXO 2.

Toma de muestras del mango de la turbina.

48

ANEXO 3

Identificación de las muestras.

ANEXO 4

Transporte de muestras.

49

ANEXO 5

Tabla de resultados séptimo semestre (cabeza de turbina).

50

ANEXO 6

Tabla de resultados séptimo semestre (mango de turbina).

51

ANEXO 7

Tabla de resultados octavo semestre (cabeza de turbina).

52

ANEXO 8

Tabla de resultados octavo semestre (mango de turbina).

53

ANEXO 9

Tabla de resultados noveno semestre (cabeza de turbina).

54

ANEXO 10

Tabla de resultados noveno semestre (mango de turbina).

55

ANEXO 11

Factura de las pruebas realizadas en el laboratorio de la Universidad Central.

56

ANEXO 12

Solicitud de permiso para la toma de muestras en la Clínica Integral de Adultos.

57

ANEXO 13

Certificado de la realización del estudio con las normas de calidad y esterilidad en el

Laboratorio de Análisis Clínico y Bacteriológico de la Facultad de Ciencias Químicas de la

Universidad Central de Ecuador.

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