MANEJO INTEGRADO DE PALGAS

EN EL CULTIVO DE LA MORA Rubus glaucus Benth

Bucaramanga, abril de 2018

Por: Jesus Zuleta Ospina I. A., M. Sc en Ciencias Agrarias. Línea en Protección de Cultivos

jzuletao@Gmail.com, tecnología@Scientia.com.co

celular 3127579297, 3174366082

MATERIAL DE SIEMBRA

CRITERIOS DE SELECCIÓN DE MATERIALES DE MORA MEDIANTE INVESTIGACIÓN PARTICIPATIVA

Criterio Categoría Razón

Producción Mayor de 25 toneladas Incidencia sobre los costos

unitarios

Grados Brix 7.5 – 8.0 Procesamiento agroindustrial

Perecibilidad Baja Vida util del producto

Tamaño del fruto Grande Requerimiento para mercado

fresco

Rendimiento de la pulpa Mayor del 60% Procesamiento agroindustrial

Emisión de ramas basales Alto Mantenimiento de la producción a

través del tiempo

Resistencia y/o tolerancia a

enfermedades (mildeos, moho

gris y antracnosis)

Buena Incide sobre los rendimientos y

costos de producción

Tipos de ramas Productivas Incide sobre los rendimientos y

costos de producción

MATERIAL DE SIEMBRA

QUÉ SE ENTIENDE POR MANEJO

INTEGRADO?

RESIST. VARIETAL

CONTROLQUÍMICO

CONTROL CULTURAL

CONTROL BIOLÓGICO

MIP

MANEJO INTEGRADO DE ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA

TRIANGULO DE LA ENFERMEDAD

Patógeno

Condiciones favorables Hospedero

Virulencia del patógeno

Los nutrientes de las

plantas y su relación con

enfermedades y/o

desordenes fisiológicos,

de tipo bióticas y abióticas

Mora (Rubus glaucus)

• Moho gris (Botrytis cinerea)

• Antracnosis ( Colletotrichum gloeosporioides)

• Mildeo polvoso (Oidium sp)

• Mildeo velloso (Peronospora spp.)

• Cercospora sp

• Verticillium sp y Fusarium sp

• Moho gris (Botrytis cinerea Pers. Ex. Fr.)

Telomorfo

Botryotinia fuckeliana

Kingdom:FungiPhylum:AscomycotaSubphylum:PezizomycotinaClass:LeotiomycetesOrder:HelotialesFamily:SclerotiniaceaeGenus:BotryotiniaSpecies:B. cinerea

Sintomas

En mora el hongo frecuentemente penetra por el cáliz floral y recubre la superficie con una especie defelpa de 1 mm – 2 mm de espesor, cuyos numerosos conidióforos arbóreos se ramifican formandonumerosas conidias de color gris a pardo grisáceas. Las frutas afectadas en estados jóvenes se colorean depardo, se momifican y necrosan, frutos en procesos de maduración presentan aspecto húmedo,posteriormente se cubre de esporas de color gris. El moho gris origina muchos daños, sobre todo entiempo húmedo. Con frecuencia se producen esclerocios irregulares, planos, duros y de color negro.

Epidemiología

Botrytis iverna en el suelo en forma de esclerocios o de micelio, el cual se desarrolla sobre restos deplantas en proceso de descomposición. Se propaga con semillas contaminadas mediante esclerocios.

MOHO GRIS Botrytis cinerea

Hacer cosecha oportuna y recoger frutos maduros y sobre maduros tanto de la planta como del suelo.

Aplicación de Trichoderma harzianum Referencia ATCC 52443 (Biofungo) en dosis de 1 g/l cada 15 días.

Aplicación de Sulfato de cobre penta hidratado en dosis de 1.5 cc/l, Captan (Coraza) en dosis de 2.5 cc/l.

Aplicación de Procloraz (Sportak, Mirage) en dosis de 0.7 cc/l, Fenhexamid (Cabo) en dosis de 1.5 cc/l, Iprodione + Pyrimethanil (Anker) en dosis de 1.5 cc/l, Pyrimethanil (Bucanero) 1 – 1.5 cc/l, Kresoxin melil (Efix 500 SC ) en dosis de 0.3 cc/l; Iprodione (Rovral) en dosis de 1 cc/l.

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA

0% 10% 20% 50%

Escala de severidad de Moho gris en frutos

Escala de severidad de Moho gris en Botones florales

0% 10% 20% 50%

Periodos de lluvia.

Humedad relativa mayor del 85%

Temperaturas entre 10°C a 14°C

Alta densidad de arvenses.

Residuos de cosecha y de podas

Antracnosis

Colletotrichum acutatum Simmonds ex. Simmonds,

Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc. in Penz

Kingdom:FungiPhylum:AscomycotaClass:SordariomycetesSubclass:SordariomycetidaeOrder:Incertae sedisFamily:Genus:GlomerellaSpecies:G. cingulata

Glomerella cingulata (Stonem.) Spauld & Schrenk

ANTRACNOSIS (Colletotrichum gloeosporioides, C.

acutatum)

Selección de plantas madre vigorosas, aplicación de fosfitos

potásicos desde el almácigo, aplicación en drench de Myclobutanil

(Rally) en dosis de 0.2 g/l, a la planta madre, hacer buen balance

nutricional.

b. Distancia de siembras amplias, realizar podas de aclareo a 60 cm

de altura, realizar podas de selección de ramas, realizar podas

sanitarias, descomponer los residuos de podas al interior del cultivo

y transformar mediante la aplicación de Azospirillum brasilense,

Azotobacter Chroococcum, Lactobacillus acidophillus y

Saccharomyces serevisae (Bacthon) y Trichoderma sp y

Paecilomyces lilacinus (Safrsoil) en dosis de 1 g / l, desinfectar la

herramienta de planta a planta, cicatrizar los cortes de las podas y

hacer lechadas al cuello de la planta cada tres meses, esta última

con una mezcla de sulfato de Cu y sulfato de Ca o Antrasin.

c. Aplicación de Trichoderma sp mas Paecilomyces lilacinus y

organismos endófitos fertilizantes inorgánicos líquidos con

microorganismos eficientes (Oasis) cada 30 o 45 días, en dosis de

1g y 5cc/l utilizando coadyuvantes tipo aceite.

d. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos, Myclobulanit (Rally)

en dosis de 0.2 g/l Epoxicanazole + Pyraclortrobin (Opera) en dosis

de 0.5 cc/l, Azoxystrobin + Difenoconazole (Amistar Top),Kasuqamicina (Kasumin) 2 cc/l, Cobre penta hidratado (S - Kuper)

en dosis de 1.5 cc/L y Procloraz (Sportak) en dosis de 0.7 cc/l,

Difenoconazol (Score) en dosis de 0,6 cc’l.

CEPARIOCámara húmeda

Conservación Papel filtro Monospórico

ConidiasEsporulación

Figura 1. Síntomas y signos típicos de antracnosis en tallos de mora de Castilla. A: lesión oval típica color púrpura en tallo, B: acérvulos y masas de esporas color salmón sobre la espina, C: Acérvulos y masas de esporas color salmón en tallo.

La especie C. gloeosporioides, es un hongo de

distribución cosmopolita predominante en los

trópicos y subtrópicos (Sutton 1992), que muestra

el mayor grado de diversidad morfológica, biológica

y el más amplio rango de hospederos de todas las

especies de Colletotrichum (Gaztambide 2005),

afectando frutos como el de la manzana, aguacate,

higo, cítricos, ají, tomate, calabaza, tomate de

árbol, fresa (Johnston et al. 1997), mango, banano,

papaya, guayaba y uva (Dodd et al. 1992).

C. acutatum Simmonds (1965 ) puede

también causar una amplia gama de

enfermedades de antracnosis sobre

importantes cultivos económicos, como la

fresa, manzana, aguacate, arándano,

cítricos, uva, kiwi, papaya, melocotón,

pimienta, y tomate (Guerber et al. 2001).

Sintomatología de antracnosis en hoja de mora uva

Síntomas de antracnosis en mora de castilla

Figura 46. Características morfológicas de aislamientos de Colletotrichum spp. de mora. A:

colonias monoconidiales de C. gloeosporioides (parte superior) y C. acutatum (parte inferior); B:

peritecios inmersos en medio de cultivo, C y D: peritecios, ascas y ascosporas de Glomerella

cingulata.

Figura 47. Características morfológicas de esporas de

Colletotrichum spp. de mora de Castilla (100X). cepa

C005: elíptica- fusiforme, cepa Q003 (1): oblonga –

elíptica y cepa H030: elíptica.

C. acutatum se caracteriza por presentar conidias

rectas, fusiformes y con extremos agudos (8.0-16.5 x

2.5-4.0μm). Los apresorios formados por esta

especie son oscuros, clavados, ovalados, obovados

o irregulares, con márgenes enteras o

estrechamente lobuladas (8.5-10 x 4.5-6μm) (Bailey

& Jeger 1992, Arx 1970).

Por su parte, C. boninense se caracteriza por

presentar apresorios oscuros, con bordes irregulares

(6.0-17.0 x 4.0-15.0 μm). Las conidias se forman en

masas naranjas, son rectas, cilíndricas y obtusas en

los extremos (13-15.5 x 5-6μm) (Moriwaki et al.

2003).

De acuerdo con lo reportado en la literatura acerca

de la forma de las conidias de las especies de

Colletotrichum, el 69.58% de los aislamientos

evaluados presentó conidias características de C.

gloeosporioides y/o C. boninense. Las cepas

restantes presentaron conidias con uno o los dos

ápices agudos, lo cual es considerado como un

carácter importante en la descripción morfológica de

C. acutatum.

Evaluación de patogenicidad

El área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) mostró

diferencias significativas entre localidades (Tabla 13). Se identificaron dos

grupos de patogenicidad: uno conformado por los aislamientos

provenientes de Caldas y Risaralda (25%) y un segundo conformado por

los aislamientos de Antioquia, Cundinamarca, Huila, Quindío, Santander

y Valle del Cauca (75%) (Figura 48).

Agrupamiento de aislamientos de Colletotrichum spp. de mora de Castilla

inoculados en tallos de mora con base en ANOVA y Duncan 5%.

1=área bajo la curva de progreso de la enfermedad (%/días); 2=

Agrupamiento de localidades según patogenicidad de los aislamientos de

acuerdo a su origen.

Los aislamientos provenientes de cultivos de

Caldas y Risaralda fueron los más

patogénicos, mientras que aquellos de

Antioquia, Cundinamarca, Huila, Quindío,

Santander y Valle del Cauca presentan

niveles de patogenicidad intermedia, baja o

muy baja.

C. gloeosporioides tiende a tener una tasa de

crecimiento mayor y una patogenicidad de

alta a intermedia, mientras que los

pertenecientes a la especie C. acutatum, en

general presentan una tasa menor de

crecimiento y niveles bajos de patogenicidad

en tallo. La especie C. acutatum es un

patógeno altamente especializado en el

tejido que ataca en cada hospedero, y se la

encuentra asociada especialmente con

síntomas en flores y frutos.

Conclusiones

Las poblaciones colombianas de Colletotrichum spp. agente causante de la antracnosis en mora de Castilla, están

conformadas en su mayoría por las especies C. gloeosporioides y C.acutatum y en un grado no significativo por la

especie C. boninense.

Los aislamientos provenientes de zonas productoras de mora en Caldas y Risaralda presentan mayor

patogenicidad.

Se identificó una mayor diversidad genética para la especie C. acutatum y moderada a baja para C.

gloeosporioides.

Se identificó dentro del germoplasma colombiano de Rubus spp. cinco genotipos resistentes a la antracnosis y 53

susceptibles a aislamientos representativos de C. gloesporioides, la especie más importante causante de esta

enfermedad en Colombia.

Recomendación

Evaluar germoplasma de Rubus spp. perteneciente a especies diferentes a R. glaucus, en particular especies

silvestres, las cuales pueden representar una fuente importante de genes de resistencia a la antracnosis y otras

enfermedades de este cultivo en Colombia.

ESCALA DE SEVERIDAD PARA ANTRACNOSIS PROPUESTA

POR Afanador, 2011

Grado 1: Desarrollo de callo en el sitio de la inoculación (0%).

Grado 2: Desarrollo de lesión necrótica alrededor del sitio de la

inoculación (3%).

Grado 3: Lesión necrótica más marchitamiento (15%).

Grado 4: Lesión necrótica más amarillamiento y muerte de hojas

comprometidas con la zona de inoculación o por encima de ésta

(25%).

Grado 5: Muerte de hojas comprometidas con la zona de

inoculación o por encima de ésta. Muerte del ápice de la planta

(45%).

Grado 6: Muerte completa de la planta o rama (75%).

MORFOLOGÍA

Collectotríchum spp presenta acérvulos en forma de disco o almohadilla, cerosos,subepidermales, típicamente color salmón, setas en el borde del acérvulo y entre losconidióforos conidias hialinas, unicelulares, ovoides u oblongas. C. gloeosporioides, secaracteriza por presentar conidias hialinas (7-20 x 2.5-5 µm), ubicadas en una estructurareproductiva llamada acérvulo (500 um de diámetro). Colletotrichum también puedepresentar microesclerocios y tanto estos como la forma de los apresorios ayuda a laidentificación. Las conidias pueden ser cilíndricas o elípticas, estas conidias presentan unavacuola cerca del centro

Hospederos primarios:

Acacia sp, Allium spp , Anacardium occidentale, Annona muricata, Annona squamosa ,Anthurium andreanum , Camellia sinensis , Capsicum annuum , Carica papaya, Citrusaurantifolia, Citrus grandis, Citrus limon, Citrus reticulata, Solanum quitoense, Citrus sinensis,Coffea arabiga, Dioscorea sp, Gossypium sp, Hevea brasiliensis, Solanum lycopersici, Malusdomestica, Mangifera indica, Manihot esculenta, Morus alba,Rubus glaucus, Perseaamericana, Piper nigrum, Psidium guajava, Pyrus sp, Solanum melongena, Spondias purpurea,Theobroma cacao, Solanum betacea.

Hospederos secundarios:

Arachis hypogaea, Artocarpus altilis, Averrhoa carambola, Cajanus cajan, Ceiba pentandra,Centrosema sp, Cicer arietinum, Citrullus sp, Cocos nucifera, Colocasia esculenta, Cucumismelo, Cucurbita pepo, Chrysanthemum sp, Daucus carota, Elaeis guineensis, Elettariacardamomum, Eucalyptus sp, Ficus carica, Garcinia mangostana, Glycine max, Lens culinaris,Leucaena leucocephala, Lupinus arboreus, Malva sp, Momordica charantia, Musa sp, Myristicafragrans, Olea europaea, Passiflora edulis, Phaseolus vulgaris, Pisum sativum, Prunus avium,Ricinus communis, Rosa sp, Vicia faba, Vigna unguiculata, Xanthosoma sp.

Biología y ecología: (Continuaciaón).

Factores que favorecen el patógeno

Alta humedad relativa (> 82%) (> 95%)

T°C entre 18 y27°C (< 15°C)

Senescencianatural

Nutricióninadecuada

Estrésambiental

CICLO DE VIDA

Forma un estromamicelial, debajode la cutícula de laplanta

Rompimiento de lacutícula debido a lamasa deconidióforos que seencuentran en elacérvulo.

Acérvulohúmedo

dis

emin

ació

n

lluvia Viento Insectos

apresorio

Co

nid

ios

germ

inan

en

pre

sen

cia

de

agu

a

Clavija de penetración

Crecimiento hifas rápido

Herramientas

Inicialmente no hay síntomas

18 horas

5 dias

4 días

5 días

Colletotrichum sp.

1%

50%25%

10%5%

0 1 10 25 505

Fuente: Botero, 2007

<1% 10% 20% 50%

Correlación entre los promedios de rendimiento e índice de severidad de antracnosis en los genotipos susceptibles (UTP-4 y UTP-2)López, et al., 2013

Simbiosis con otros microorganismos:

Bacterias procedentes del filoplano como las cepas 14 y UV3 de

Pseudomonas spp., estimulan la formación de apresorios de Colletotríchum

acutatum aislado de fresas en Australia, dicho estímulo se relaciona con un

estrés por nutrientes (Blakeman, 1977).

Mc Cracken y Swinburne (1999), encontraron que Bacillus sp. aislado de

hojas de cítricos promueve la formación de apresorios en C.. goeosporíoides.

Así mismo Pseudomonas spp. aislada de hojas de remolacha muestra

también este efecto sobre C.. dematium y C. acutatum: debido a la

competencia por nutrientes de bacterias procedentes del filoplano.

Brown y Swinburne (1981), determinaron que agentes quelatores como los

sideróforos bacteriales, procedentes de la cepa de Pseudomonas UV3,

presentan alta afinidad por el hierro contenido en la matriz conidial y siendo

un factor importante en la estimulación de la germinación de Colletotríchum

musae aislado de bananos.

Antagonismo:

Bacillus sp., tiene un efecto antagónico frente a C. gloeosporioides,

produciendo lisis celular y reducción en el porcentaje de germinación de

conidias de Colletotríchum (Lenné y Parbery, 1976).

En Colombia, Bravo (2003) ha realizado pruebas de antagonismo

bacterial in Vitro, con el fin de evaluar el comportamiento de B. subtilis

frente a varios hongos fitopatógenos, incluyendo a C. gloeosporioides

aislado de cítricos, encontrándose disminución en la germinación de

conidias, e inhibición en el crecimiento micelial de Colletotrichum.

En Brasil se han realizado pruebas de antagonismo contra C.

gloeosporioides. con diferentes cepas de hongos como Cladosporium

sp., Fusarium sp. y Trichoderma sp.; según el antibiograma se encontró

inhibición en el crecimiento micelial de Colletotrichum con algunas cepas

de Trichoderma y Fusarium sp (Silvana, 1994).

Antagonismo: (Continuación).

Así mismo, Leben (1965) afirma que Pseudomonas cepacia produce in. vitro butanol

soluble que es un compuesto antifungal, el cual reduce el desarrollo de la Antracnosis

causada por Collectotríchum lagenarium en pepino.

Bacillus subtilis aislado de la superficie de la leguminosa forrajera Stylosanthes

guianensis en la región de Pucallpo (Perú), exhibió una actividad antifúngica contra

Collectotríchum gloeosporioides reduciendo significativamente el crecimiento micelial,

la germinación y la producción de conidias (Badel, 1994).

Douville y Boland (1992), mostraron que el filtrado libre de células del aislamiento de

Bacillus subtilis. redujo significativamente la incidencia de la Antracnosis causada por

Collectotríchum trífolii en plántulas de alfalfa de 56% a 16% y la severidad de 2 a 12.

B. Subtilis o el producto antifúngico puede ser útil en el tratamiento de semillas o en el

control directo de la enfermedad de la planta.

Dennis (2001) reporta que existen cepas de Tríchoderma lignorum de crecimiento

rápido que inhiben el desarrollo de C glooeosporíoides aislado de maracuyá causando

tisis celular de la hifa, reduciendo el desarrollo de la enfermedad.

Manejo fitoquímico:

Bernal, 2008 concluye que el extracto de canela posee una acción fungicida para el

desarrollo del hongo Colletotrichum gloeosporioides causante de la antracnosis en mora

evaluada in Vitro.

Las concentraciones mas eficientes de extracto de canela Cinnamomum zeylanicum

Nees al 95 % de pureza son 5 ppm y 30 ppm. Otro extracto que se referencia en la

literatura es manzanilla (Matricaria chamomilla L.)

Mildeo polvoso

(Oidium sp.)

Kingdom:Fungi

Division:Ascomycota

Class:Ascomycetes

Order:Erysiphales

Genus:Oidium

Mildeo polvoso

(Oidium sp.)

Se considera la segunda enfermedad mas importancia de este cultivo, después de antracnosis y moho gris,

se caracteriza por la presencia de un polvillo de color blanco grisáceo a gris ceniza, que afecta

especialmente el envés de las hojas acompañado de lesiones necróticas pequeñas, de forma irregular y de

color casi negro. Esta enfermedad causa retraso en el desarrollo de la planta y las ramas afectadas toman

apariencia de látigo.

Temperaturas superiores a 15º suficientes para el desarrollo de las conidias Déficit de agua Deficiencia de Azufre

0 10

20 50

Escala de severidad deMildeo polvoso en hojas

Mildeo polvoso (Oidium sp.)

•Fertilización balanceada en S y Cu

•Nutrición vegetal adecuada en K, Ca, Mg y P.

•Aplicación de Miclobutanil (Rally) en rotación con Procloraz (Sportak,

Mirage), Azufre (Top Sul, Elosal, zuAco), Flusilazol (Punch), Polisulfuro

de calcio (Polycal), Sulfato de cobre pentahidratado (S-Kuper) en dosis

de 0.2 g, 0.7 cc, 4 cc, 0.4 cc, 2.5 cc y 1.5 cc/l respectivamente

•Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos (Nutri Phite, Cera Quin,

Agrifos, Acua Phite en dosis de 2 cc/l, cada 20 días a partir del día 10.

•Aplicación de Fosetil Aluminio (Elicit, Aleato, Aliette, Fosetal) en dosis de

2.5 g/l alternado con las aplicaciones de fertilizantes a base de fosfitos

•Aplicación de Trichoderma sp (Tricho D, Safersoil) en dosis de 1 g/l

dirigida al plato.

•Aplicación de fertilizante inorgánico líquido con microorganismos

eficientes (Oasis) en dosis de 5 cc/l.

•Aplicación de EcoSwing en dosis de 1 cc/l.

Mildeo velloso

(Peronospora spp.)

Kingdom:ChromalveolataPhylum:HeterokontophytaClass:OomycetesOrder:PeronosporalesFamily:PeronosporaceaeGenus:Peronospora

Temperatura 17º –22ºC (ciclo de germinación -3 días)Humedad relativa superior a 80%

<1% 5%

10% 50%

MILDEO VELLOSO (Peronospora sp.)

a. Mejorar la aireación del cultivo mediante distancias de

siembra amplias, manejo oportuno de arvenses y realización de

podas de realce y de formación periódicamente.

b. Aplicación de Trichoderma sp en dosis de 1 g/l o 300 g/ha,

cada 30 días.

c. Aplicación de fertilizante inorgánico líquido con

microorganismos eficientes (Oasis) en dosis de 5 cc/l.

d. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos potásicos

(CeraQuin, Agrifos, Nutri Phite, Acua Phite, y Kasugamicina en

dosis de 2 cc/l de cada uno de los productos.

e. Aplicación de productos a base de Cobre penta hidratado (S-

Kuper) en dosis de 1.5 cc/l, Mandipropamid (Revus) en dosis de

1.0 cc/l, Folpet + Cymoxanil (Pronto) en dosis de 2g/l, Bacillus

subtilis raza QTS 713 (Rhapsody), 2.5 a 5.0 cc/l, Fosetil

Aluminio (Elicit, Fosetal, Alliete, Aleato) 2 a 4 g/l, Metalaxyl

(Altair) 2.5 g/l, Metiram + Ametoctradine (Orvego) 1.5 g/l,

Fenamidone + Fosetil Aluminio (Mildex) 0.8 a 1.0 g/, Quattro

Gold (Azoxystrobin); Quattro Gold

(Azosxystrobin+Tebuconazole).

Formas de penetración e invasión

Penetración directa

Penetración a través de heridas naturales o artificiales

Cercospora

clasificación cientifica

Reino: hongos

Filo: Ascomycota

Clase: Dothideomycetes

Orden: Capnodiales

Familia: Mycosphaerellaceae

Género: Cercospora

Productos para Cercopsora

Quattro, Helmstar ( Azoxystrobin)Timorex (Melaleuca alternifolia)Sportak (Plochloraz)Metropol ( Azoxystrobin + Flutriafol)Quattro Gold, Xstrata Gold (Azoxystrobin+Tebuconazole)Xstrata ( Azoxystrobin)Sportak, Octave (Procloraz)Rovral (Iprodione)Comodin, Folicur (Tebuconazole)Score (Difenoconazole)Silvacur Combi (Tebuconazole+Triadimenol)Punch (Flusilazol)Nativo (Tebuconazole+Trifloxystrobin)Mertec (Tiabendazol)Microthiol (Azufre)Impact (Flutriafol)Cuprofix (Caldo bordeles)Comet (Pyraclostrobin)Helmforce Xtra (Azoxystrobin+Cyproconazole)Magnate Sulfato (Imazalil)

Planta hospederaOrganismo plaga

Nombre vulgar Nombre científicoBesitos Impathiens balsamina Nematodos Meloidogyne spp

Coquito, cortadera Cyperus spNematodos Meloidogyne sppPalomillas de la raíz

Browalia Browalia americanaNematodos Meloidogyne sppMoko Ralstonia solanacearum

Emilia, lechuguilla Emilia sonchifoliaPalomillas de la raízMoko Ralstonia solanacearum

Lengua de vaca Rumex sppPerla de tierraCercospora spPalomillas de la raíz

Llantén Plantago major Perla de tierra

Venadillo Conyza canadiensesPalomillas de la raízMosca blanca

Yerba mora Solanum nigrumÁfidosMoko Ralstonia solanacearum

Papunga, cadillo Bidens pilosaTripsÁfidos

Guasca Galinsoga parviflora TripsAcedera Oxalis corniculata Roya en cebollaCampesina Lantana cámara Mosca blanca

Cerraja Sonchus oleraceusÁfidosTripsPerla de tierra

Sangre de toro Euphorbia heterophylla MildeosActinodaphne lancifolia Mosca del ovario Bruggmanniella

actinodaphnesCiannamomumjaponicum Bruggmanniella cinnamomi

La roya (Spirechina loeseneriana o Gerwasia lagerheim), marchitez y pudrición de raíz (Verticillium spp., Fusarium spp., Rosellinia spp.) (Franco et al. 2000).

Productos para el manejo de Roya: Propiconazol (Tilt, Propizole, Held); Epoxiconazole (EpoK, Rubric);Azoxystrobin+Cyproconazol (Helmforce); Szoxystrobin+Flutriafol (Metropol, Authority); Pyraclostrobin (Comet);Triadimenol (Bayfidan); Metconazole (Caramba); Difenoconazole+Propiconazole (Ciclope); Penconazol (Topas);Tebuconazole+Triadimenol (Silvacur); Flusilazol (Punch); Cyproconazole (Alto 100);Epoxiconazole+Pyraclostrobin (Opera); Oxicloruro de cobre (Oxicob); Tebuconazole+Trifloxystrobin (Nativo);Hexaconazol (Mildium); Hidróxido cúprico (Kocide); Captan (Maestro); Flutriafol (Impact).

Época de ataque (DDS): 20

Época de manejo (DDS): - 5

Prácticas de manejo.

a. Aplicación de Trichoderma sp (Tricho D, Safersoil) en dosis de 1 g/l, dirigida al sitio de siembra.

a. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos potásicos (Cera Quin, Agrifos, Nutri Phite, Acua Phite, y Kasugamicina en dosis de 2 cc/l de

cada uno de los productos.

a. e. Aplicación de productos a base de Sulfato de Cobre Pentahidratado (Skuper) en dosis de 1.5 cc/l, Mandipropamid (Revus) en dosis de

1.0 cc/l, Folpet + Cymoxanil (Pronto) en dosis de 2 g/l, Bacillus subtilis raza QTS 713 (Rhapsody), 2.5 a 5.0 cc/l, Fosetil Aluminio (Elicit,

Fosetal, Aliette, Aleato) 2 a 4 g/l, Metalaxyl (Altair, Maxin)) 2.5 g/l, Metiram + Ametoctradine (Orvego) 1.5 g/l, Fenamidone + Fosetil

Aluminio (Mildex) 0.8 a 1.0 g/l, Tiabendazol ( Mertec), Azoxystrobin (Amistar), Dazomet (Basamid), Magnate Sulfato (Imazalil),

a. Aplicación de Kasugamicina (Kasumin) + Procloraz (Sportak, Mirage) en dosis de 0.7 cc/l, dirigida al cuello de la planta.

a. Aplicación de fertilizantes inorgánicos líquidos con microorganismos eficientes (Oasis) dirigido a la cama de siembra en dosis de 5 cc/l.

a. Aplicación de fertilizantes a base de Fosfitos (Cera Quin, Fito Cup, Nutri Phite, Agrifos, Acua Phite).

Descripción de la enfermedad: se caracteriza por presentar marchitamiento de la planta, de manera progresiva hasta causar la muerte, en el

sistema radicular se observa necrosamiento total y descortezamiento de la misma, además de pudrición húmeda.

Marchitez y pudrición radicular Verticillium sp, Fusarium sp, Phytophthora s

MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA

LA RESPONSABILIDAD ES DE TODOS