Fusão de protoplastos em fungos

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UERGS – Bento Gonçalves Genética de microorganismos Prof. Dra. Adriana Dantas

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UERGS – Bento GonçalvesGenética de microorganismosProf. Dra. Adriana Dantas

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Dificuldade de cruzamentos intergenéricos ou interespecificos

Incompatibilidade que ocorre entre duas linhagens por impedimento de anastomose das hifas

Possibilidade de produzir células sem parede celular (protoplasto) e a fusão destas celulas antes incompativeis

Cruzamentos entre especies ou generos distintos de fungos

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ProtoplastosProtoplastos

•células células livres de parede celularlivres de parede celular

A ausência da parede: A ausência da parede: sistema útilsistema útil

•extração de organelas celularesextração de organelas celulares

•transferência gênica através da técnica de transferência gênica através da técnica de transformação genética – eletroporaçãotransformação genética – eletroporação

•produção de novos genótiposprodução de novos genótipos por por hibridação hibridação somáticasomática

Protoplastos:Protoplastos:

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Em 1957 isolado de leveduras Células esféricas em ambientes osmóticos Totalmente desprovidas de parede celular Enzimas de isolamento: driselase,

helicase, zimolase e Novozyn 234 Constituídos por celulases e quitinases

Utiliza-se micélio de fungos filamentosos, células de leveduras, conídios germinando ou conídios intactos

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Não deve causar rompimento do protoplasto

Estabilizadores osmóticos em meio liquido

Sal (KCl, NaCl, MgSO4) Açucar – sacarose Valores de 0,5M a 1M

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Dois processos Substância fusogênicia polietilenoglicol

(PEG) Induz formação de agregados de células e

formação de pontes citoplasmática entre elas Eletrofusão

Células expostas a uma fonte de corrente alternada e ficam em linha como um colar de pérolas, em seguida um pulso de corrente continua é dado e há uma quebra reversível da membrana, permitindo a fusão.

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Desenvolvimento de produtos de fusão em meio contendo Aneurina (esquerda) ou inositol (direita), utilizando as técnicas de seleção. Protoplastos fundidos foram semeadas em discos de celofane contendo os suplementos apropriados e incubados a 25°C por 4 dias.

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Duas formas: Duas linhagens auxotróficas distintas

Em média 105 celulas parentais Produtos da fusão recuperados em MM

Seleção de produtos de fusão com mutantes a agentes inibidores Cloranfenicol e eritromicina

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Linhagem AAuxotrofica a-b-

Linhagem BAuxotrofica c-d-

Fusão (PEG ou eletrofusão)

Obtenção do protoplasto

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Recuperação em MM

heterocário

diploide

Seleção para obter diploides (MM)

Anaçlise genetica igual ao ciclo parassexual

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Quebras das barreiras de incompatibilidade

Interespecíficas: Aspergillus nidulans x Aspergillus rugulosus Obtenção de segregantes com cromossomos

dos dois fungos Intergenéricas:

Aspergillus x Penicillum; Candida tropicalis x Saccharomyces fibugera; S. cerevisiae x Schizossacharomyces pombe; S lipolytica x Pichia guillemondii

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Hibridação somáticaHibridação somáticaHíbridos Híbridos nuclearesnucleares ou ou citoplasmáticoscitoplasmáticos (cíbridos) (cíbridos)

•fusões fusões interespecíficasinterespecíficas, ,

•intergenéricas intergenéricas entre entre parentais parentais sexualmente sexualmente compatíveiscompatíveis;;

•intergenéricos entre intergenéricos entre parentais parentais sexualmente sexualmente incompatíveis.incompatíveis.

Perda de um núcleo

Fusão nuclear

Cíbridos(Híbridos

citoplasmáticos)

Synkarions

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Organelas celulares são transferidas para estudos de herança citoplasmatica

Obtenção de protoplastos anucleados e sua fusão com células nucleadas

Restauração da capacidade respiratória por ação de mitocôndrias

Biossíntese de produtos do metabolismo secundário

Obtenção de cariótipos moleculares Transformação genética Utilizados na separação e análise de cromossomos

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1973 – Neurospora crassa – DNA isolado de linhagens selvagens transferidos para linhagensm deficiente para inositol

1978 – S. cerevisae, protoplastos de mutantes deficientes para leucina (leu-) receberam DNA de celulas de leu+

1979 – Plasmidio de E. coli carregando genes de levedura

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Células providas de espessa parede celular Fungos filamentosos – micélio – nitrogênio liquido Utiliza-se vetores com plasmidios bacterianos que

carregam genes de fungos Para tanto, o DNA é tratado com enzimas de

restrição que quebram em pontos específicos e colocam o plasmidio da bacteria E. coli

São selecionados e multiplicados na E. coli Plasmidio E.coli com fragmento contendo gene ga-2

de N. crassa; sintese de triptofano (trpC); arginina (argB); piridoxina (pyr-4); uracila (ura-5) de N.crassa, A. nidulans

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Em estado de competência Conídios intactos ou germinados são tratado com acetato

de íitio (0,1M) Excelente estado de competência:

protoplastos na presença de PEG e CaCl2, ou por eletroporação, são altamente receptivos ao DNA exógeno

Absorção do DNA Colocação do DNA junto com os protoplastos é feita com

PEG e CaCl2. PEG causa fusão celular com auxilio do CaCl2.

DNA total – ação das nucleases é intensa e parte é degradada; proteção usando lipossomos

Inibiçãod as nucleases: espermidina, heparina

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Realizar tanto a mutagênese insercional aleatória, como também a mutagênese dirigida.

Mutagênese dirigida permite a realização da superexpressão de um ou mais genes, ou também o silenciamento gênico, seja ele parcial ou completo.

Técnicas utilizando protoplastos, Agrobacterium tumefaciens e biobalística permitem a superexpressão de um gene tanto por integração heteróloga ou por recombinação homóloga.

Técnicas baseadas no RNA são capazes de realizar o silenciamento gênico por meio de regulação pós-transcricional do mRNA.

Silenciamento gênico parcial pode ser conseguido com a utilização do RNA antisense e RNA de interferência; já o silenciamento completo é possível utilizando a interrupção do gene em vetores que permitam a recombinação homóloga, via ribozimas e transposons.

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Usado plasmidios de E. coli que contem um ou mais genes empregados no processo de transformação

Três destinos: Uma permuta entre o plasmidio carregando o gene, e o gene no

cromossomo do fungo provoca a integração no sitio homologo, ficando então o cromossomo do fungo com o gene mutante e o plasmidio carregando o gene selvagem

O plasmidio é incorporado em um outro local não homologo do cromossomo. O fungo fica com dois genes, um original mutante e outro selvagem

Por uma permuta dupla ou mesmo conversão gênica, o gene do fungo no plasmidio bacteriano substitui o gene mutante no cromossomo do hospedeiro

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Tipo padrão é o pan7-1 Se duplicam independentemente dos

cromossomos São instáveis, podendo dar

pseudotransformação ou transformação abortiva

Seleção é feita na regeneração dos protoplastos que receberam o DNA exógeno

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(A) Atividades biológicas do GFP-tagged variantes de proteína NUDE. Uma cepa (SF2-9) e thenudF7 ts mutante foram transformadas com genes indicados no vetor.

Transformantes foram cultivadas por 3 d em meio completo (YAG) sem ou com 0,6 M KCl a 43 ° C, que é uma temperatura restritiva para o mutante nudF7.

A cor de conídios na cepa ΔnudE é semelhante ao de cor acastanhada do micélio. A cor de conídios na cepa nudF7 é amarelo. (B) GFP:: NUDE variantes são expressos em níveis semelhantes. Extratos de proteína total foram feitas a

partir de uma cepa ΔnudE transformado com genes indicados no vetor . Dois transformantes diferentes foram usados para cada GFP:: variante NUDE. Proteínas (12 mg / pista) foram

separados em 10% SDS-PAGE e immunoblotted com um anticorpo anti-GFP.