Cultivo de Protoplastos

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Dpto. Biología Vegetal FACULTAD DE AGRONOMÍA Micropropagación y proyectos de producción Protoplastos: Cultivo y aplicaciones

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guía de aplicación en biotecnología vegetal

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Micropropagación y proyectos de producción

Protoplastos:

Cultivo y aplicaciones

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Micropropagación y proyectos de producción

Protoplasto :

Célula vegetal desprovista de pared celular, por proceso mecánico o enzimático.

Membrana plasmática completamente expuesta.

Estado transitorio, permite manipulación de esas células.

Mantiene potencialidades de células vegetales completas.

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Micropropagación y proyectos de producción

1892 Primer aislamiento de protoplastos vivos de

cebolla por métodos mecánicos.

1919 Primer aislamiento enzimático, células de

levadura.

1960 Aislamiento de protoplastos de plantas superiores

con degradantes de pared celular.

1971 Regeneración de plantas a partir de protoplastos

de Nicotiana tabacum.

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Micropropagación y proyectos de producción

Aplicaciones

�Producción de híbridos por fusión de protoplastos.

�Manipulaciones genéticas.

�Estudio de procesos fisiológicos y bioquímicos.

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Micropropagación y proyectos de producción

Metodología

1. Aislamiento y factores que lo afectan

2. Purificación

3. Determinación de viabilidad

4. Cultivo

5. Regeneración

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Micropropagación y proyectos de producción

1) Factores que afectan la producción y viabilidad de los protoplastos

�Fuente de material

�Tratamientos pre-enzimáticos

�Tratamientos enzimáticos

�Osmolaridad

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Micropropagación y proyectos de producción

2) Purificación

3) Viabilidad

Toma de oxígeno

Actividad fotosintética

Tinciones

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Micropropagación y proyectos de producción

4) Cultivo

Medio de cultivo: MS, B5 (líquido o sólido)

Osmolaridad

Densidad de plaqueo

Condiciones de almacenamiento

Material vegetal

5) Regeneración

Organogénesis/Embriogénesis somática

Eficiencia generalmente baja

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Micropropagación y proyectos de producción

Protoplastosaislados de hipocótilo de arroz.

Regeneración de plantas de arroz por cultivo de protoplastos.

Primer división de un protoplasto, a los 4 días de cultivo.

Grupos de protoplastoscreciendo en agarosa.

Bloques de agarosa flotando sobre medio de cultivo.

Plántula derivada de protoplasto, en tubo de ensayo.

Debergh et al.

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Micropropagación y proyectos de producción

Hibridación somática

Aislamiento de protoplastos

Fusión de protoplastos (fases)

Selección células híbridas

Cultivo de células híbridas

Regeneración de plantas

Caracterización de las planas híbridas

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Hibridación somática

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Micropropagación y proyectos de producción

Mecanismo de fusión

Tres fases: Aglutinación

Fusión de membranas

Redondeamiento de protoplastos fusionados

Tratamienos: PEG

alto pH

Ca+2

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Micropropagación y proyectos de producción

PROTOPLASTO A PROTOPLASTO B

AGREGACIÓN

FUSIÓN

DIVISIÓN CELULAR

CÉLULAS HÍBRIDAS

HIBRIDACIÓN SOMÁTICA

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Hibridación somática en Dianthus.

D. chinensis D. barbatus

Masahiro, 2004.

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Micropropagación y proyectos de producción

Hibridación somática en Dianthus.

Masahiro, 2004.

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Micropropagación y proyectos de producción

Hibridación somática entre D.chinensis y D. caryophyllus.

Masahiro, 2004.

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Micropropagación y proyectos de producción

Problemas de la hibridación somática

�La regeneración de plantas a partir de protoplastos es difícil, y a partir de productos de fusión aún más.

�Ploidía de los híbridos es impredecible.

�Dificultades para recobrar la ploidía normal.

�Híbridos con frecuencia presentan problemas de esterilidad.

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Logros de la hibridación somática

�Transferencia de esterilidad masculina de coliflor (Brassica oleracea) a rábano (B. rapa) y a colza (B. napus). Earle y Dicson, 1994).

�Transferencia de resistencia a atrazina en Brassicas(Christey et al. 1991).

�Transferencia de esterilidad masculina en Nicotiana(Zelcer et al. 1978).

�Diversos híbridos somáticos en especies ornamentales y flores de corte.

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FIG. 2. Soybean protoplast cultures. A, Freshly isolated protoplasts; B, first cell divisions in protoplast culture 4 d after isolation; C, microcalliformation in 10 d old culture; D, microcalli in 15 d old culture; E, 25 d old culture; and F, 1 month old culture.

Lin et al, 1987