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0 CONTROL DE CALIDAD EN SISTEMAS DE PRODUCCION DE PINUS RADIATA Proyecto realizado en el Marco del Convenio de Colaboración Departamento de Agricultura y Pesca del Gobierno Vasco y la UPV/EHU para la realización de acciones I+D+I en el sector agropesquero y alimentario Ejercicio 2005 eman ta zabal zazu UNIVERSIDAD DEL PAIS VASCO EUSKAL HERRIKO UNIBERTSITATEA Landareen Biologia eta Ekologia Saila Dpto. de Biología Vegetal y Ecología
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CONTROL DE CALIDAD
EN SISTEMAS DE PRODUCCION
DE PINUS RADIATA
Proyecto realizado en el Marco del Convenio de Colaboración Departamento de
Agricultura y Pesca del Gobierno Vasco y la UPV/EHU para la realización de
acciones I+D+I en el sector agropesquero y alimentario
Ejercicio 2005
eman ta zabal zazu
UNIVERSIDAD
DEL PAIS VASCO
EUSKAL HERRIKO
UNIBERTSITATEA Landareen Biologia eta Ekologia Saila
Dpto. de Biología Vegetal y Ecología
1
Equipo participante
Miren K. Duñabeitia Aurrekoetxea 1
Carmen Gonzalez Murua 1
Joseba Sanchez Zabala 1
Juan Majada Guijo2
Unai Ortega Lasuen 2
Kepa Txarterina Urkiri 3
1 Departamento de Biología Vegetal y Ecología. Facultad de Ciencia y
Tecnología. UPV/EHU. Apdo. 644, 48080- Bilbao
2 Sección Forestal, Grado, SERIDA, Estación Experimental. Apdo. 13,
33820-Asturias.
3 Basalan SA, Diputación Foral de Bizkaia. Avda. Madariaga 1-1ª Plta,
Dpto.9, 48014-Bilbao.
Fdo.: Miren K. Duñabeitia Aurrekoetxea
Investigador principal
2
INDICE
Introducción general.................................................................................. 3
Objetivos ............................................................................................. 8
Materiales y Métodos ................................................................................ 9
Resultados .......................................................................................... 18
Valoración de la capacidad de diferentes familias .....................................27
Valoración del efecto del contenedor ........................................................ 39
Valoración del efecto de la inoculación con hongos ectomicorrícicos ......45
Valoración de la utilización de la poda química....................................... 54
Instalación de los test clonales y de los nuevos setos madre .................... 67
Conclusiones ............................................................................................. 73
Bibliografía ................................................................................................ 76
3
INTRODUCCION
En las últimas décadas se han realizado considerables esfuerzos dirigidos a la
mejora de la productividad y de la forma de las especies arbóreas de interés forestal. El
objetivo específico de un programa de mejora genética es el de mejorar las principales
características cuantitativas y cualitativas a través de la selección progresiva de genes
deseables y su perpetuación mediante la utilización de semillas o de clones mejorados.
La combinación de la mejora genética selectiva y la multiplicación de clones mejorados
posibilita la obtención de ganancias significativas que pueden ser rapidamente
transferidas al bosque (Zobel and Jett, 1995). La ganancia genética que pueda ser
capturada dependerá de parámetros genéticos, la intensidad de la selección aplicada y la
variación clonal. Asimismo, otro importante componente a considerar para la captura de
la ganancia genética es la interacción genotipo x ambiente.
El efecto genotípico consta de componentes aditivos y no-aditivos. Los efectos no
aditivos son causados por una combinación específica de genes en un clon particular.
Dependiendo del clon, la contribución de los efectos no aditivos al efecto genotipo
puede ser tanto positiva como negativa. Cuando el clon es utilizado en propagación
sexual, tienen lugar recombinaciones y los efectos no aditivos pueden no ser
aprovechados. El potencial para utilizar los efectos no aditivos es una de las
características atractivas de la silvicultura clonal, ya que ofrece la posibilidad de
capturar ganancia genética adicional.
El papel que juega la propagación vegetativa en el campo de la selvicultura es
fundamental, ya que permite multiplicar individuos élite (genotipos superiores)
obtenidos en programas de mejora génetica o seleccionados a partir de poblaciones
naturales (Hartmann and Kester, 1983), asegura la conservación de germoplasma
valioso, aumenta la ganancia genética al utilizar los componentes genéticos aditivos y
no aditivos (Zobel y Talbert, 1988), y permite, además, ganar tiempo, ya que acorta los
ciclos de selección en los programas de mejora.
En definitiva, la propagación vegetativa de individuos genéticamente
seleccionados permite multiplicar exactamente todas las características de interés por las
que son seleccionados, y si las técnicas de propagación son las adecuadas para permitir
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la producción de plantas a escala comercial, se logran plantaciones genéticamente
superiores y con un grado de uniformidad que facilita y mejora todas las actividades de
manejo y explotación.
También hay que tener en cuenta las desventajas o riesgos que conlleva la
utilización de este tipo de propagación. El uso de clones supone la remoción de la
variación genética en variables cuantitativas y cualitativas que se traducen en
plantaciones más productivas y uniformes, lo que si bien puede resultar muy ventajoso,
supone una reducción de la base genética, incrementándose la sensibilidad de las
plantaciones a eventos tanto abióticos (heladas, sequías, exceso de lluvias, etc.) como
bióticos (plagas y enfermedades). Por ello, es fundamental desarrollar una estrategia de
silvicultura clonal adecuada. El uso de una estrategia policlonal atenúa los riesgos,
siendo indispensable contar con clones plásticos, aunque no sean los mas productivos en
cada sitio, y mantener un programa permanente de generación de nuevos clones para
aumentar la diversidad genética.
En el caso de las coníferas, la producción vegetativa puede realizarse tanto in
vivo, mediante estaquillado, como in vitro, mediante organogénesis o embriogénesis
somática. Sin embargo, como ocurre con la mayoria de las especies leñosas, estas
técnicas in vitro no están disponibles a escala comercial, por lo que actualmente es la
propagación por estacas el método de propagación considerado más eficiente en
términos de rapidez, manejo y costo (Hartmann y Kester, 1999). De todos modos,
cuando este tipo de propagación se utiliza en forma masiva es necesario poner un
mayor énfasis y cuidado en la selección de los individuos que se usarán como fuente del
material vegetal (Ruíz García et al., 2005).
La producción de material clonal de coníferas a gran escala está muy
condicionada por los problemas de enraizamiento que presenta. Existen genotipos que
presentan limitaciones genéticas para lograr el enraizamiento y por lo tanto no son aptas
para plantaciones clonales a escala comercial.
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Este metodo tiene otra importante limitación, que es que, en la práctica, solo
plantas jovenes pueden ser propagadas vegetativamente a tasas elevadas. A medida que
la planta madre envejece, su capacidad de enraizar desciende y las estaquillas puestas a
enraizar presentan crecimiento plagiotrópico y ramificación asimétrica (Kleinschmit et
al., 1973; Roulund 1975; Dietrichson & Kierulf, 1982).
Además, el enraizamiento de las estaquillas depende de otros factores muy
diversos, tanto fisiológicos como ambientales, entre los que cabe destacar: la
concentración endógena de fitohormonas, las reservas de carbohidratos y el grado de
lignificación del tallo (Lyon and Kimuin, 1997; Mateo et al., 2000), la posición de la
estaca en la planta madre (Ruiz et al., 2005), la epoca de recolección, el tamaño de la
estaquilla, la eliminación o no de las acículas, el estado sanitario y nutricional de la
planta donante, la aplicación de tratamientos que estimulen el enraizado, las
características del substrato utilizado, o el manejo cultural durante la fase de enraizado,
principalmente, el riego, la humedad y la temperatura (Silva, 1985).
Por otra parte, tras el transplante a campo, y en función de la capacidad para
arraigar y vegetar larga y satisfactoriamente, es cuando se demuestra la calidad de la
planta forestal, siendo este factor uno de los mayores condicionantes del éxito o fracaso
de una plantación.
Las raíces, entre otras funciones, destacan por ser las responsables del anclaje de
las plantas al medio externo y de la absorción de agua y nutrientes. Las características
morfológicas y fisiológicas del sistema radical condicionarán su capacidad de emitir
nuevas raíces y, en consecuencia, establecer un contacto rápido y sólido con el suelo.
Un mal arraigo producirá una respuesta deficiente en el crecimiento de la planta, lo que
comprometerá la estabilidad de la repoblación a lo largo del tiempo.
Las plantas, normalmente, desarrollan de manera natural un sistema radical con
una buena distribución lateral lo que permite a la planta tener una estabilidad mecánica
y un máximo crecimiento potencial. Sin embargo, la morfología natural de las raíces es
muy diferente de la que suelen presentar las plantas producidas en contenedor,
incrementándose aún más las diferencias cuando la planta procede de reproducción
vegetativa.
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Como hemos podido comprobar en ensayos llevados a cabo con anterioridad, en
el caso de las plantas producidas en contenedor a partir de semilla, los problemas de
estabilidad derivados de las deformaciones radicales pueden ser minimizados, bien
mediante la impregnación de las paredes interiores de los contenedores con sales de
cobre, o bien, mediante la utilización de contenedores que permitan el repicado aéreo
lateral de las raíces (Duñabeitia et al., 2004; Cabal et al., 2005). La aplicación de cobre
en los contenedores forestales utilizados ha mejorado tanto la distribución de las raíces
como la morfología radical de Pinus radiata debido a una modificación de la
arquitectura del sistema radical causada por la poda química (Figs 1 y 2).
Figura 1. Plantas de Pinus radiata D. Don de 120 días de edad producidas en contenedor, sin aplicación
de cobre. Los contenedores utilizados, de izquierda a derecha, fueron Cetap 54 Universal; Forest Pot 250
y Planfor.
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Figura 2. Efecto de la poda química sobre la morfología de la raíz en plantas de Pinus radiata D. Don
producidas en contenedor Forest Pot 250, a los 120 días de edad. Las cuatro figuras mostradas se
corresponden con los cuatros tratamientos aplicados, de izquierda a derecha: 0% Cu; 1,5% Cu; 3% Cu y
4,5% Cu.
En cuanto a la mejora de la calidad del sistema radical, otra de las herramientas
que pueden ser utilizadas con dicha finalidad es la inducción de la micorrización de las
plantas durante la fase de vivero. La micorrización controlada en vivero puede ser de
gran ayuda en el establecimiento de repoblaciones debido a la mejora morfológica y
fisiológica que puede generar en las plantas (Duñabeitia et al., 2004). La micorrización
permite superar las limitaciones del sitio de plantación (Ortega et al., 2004; Parladé et
al., 2004), gracias a los mecanismos de protección mediante los que hacer frente a
agentes patógenos (Olaizola-Suárez et al., 2005), o a la mejora de las propiedades
físico-químicas y biológicas de la rizosfera (Bogeat-Triboulot et al., 2004). Un
programa de inoculación controlada requiere de hongos micorrícicos que funcionen
correctamente en el ambiente de crecimiento de las plantas, tanto en el vivero como en
la plantación. Por ello, además de seleccionar los hongos por su aptitud para mejorar la
calidad de las plantas producidas, es preciso evaluar su capacidad para establecer la
relación simbiótica y comprobar si se manifiestan, o no, los beneficios de dicha relación
en el caso de la producción vegetativa de las plantas de pino.
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OBJETIVOS
En este estudio se ha evaluado la capacidad de enraizamiento de diferentes
familias de la especie Pinus radiata, especie leñosa con amplio potencial en
plantaciones comerciales de la C.A.P.V, con el propósito de desarrollar un sistema
operativo de propagación vegetativa para esta especie.
Se han planteado los siguientes objetivos:
I. Producir en contenedor planta clonal de pino insignis destinada a reforestación, que
sea lo más equilibrada posible, con un buen desarrollo tanto de la parte aérea como
de la radical y seleccionar las familias con mayor capacidad de enraizamiento y con
un desarrollo óptimo del sistema radical, con el fin de garantizar la viabilidad y la
estabilidad de las repoblaciones forestales.
II. Evaluar el efecto que tiene la aplicación de sales de cobre en las paredes internas de
los alveolos en los que se va a desarrollar la planta en el control en vivero de
malformaciones, crecimiento y desarrollo radical de las estaquillas.
III. Inducir la micorrización mediante el empleo de especies fúngicas seleccionadas por
haber proporcionado resultados óptimos en proyectos previos (Scleroderma y
Rhizopogon), con el fin de dotarlas de un estado fisiológico que les permita resistir
mejor las condiciones de estrés ambiental propias del ambiente en el que van a
desarrollarse tras el transplante.
IV. Instalación de test clonales, una vez que los genotipos selectos hayan logrado
multiplicarse vegetativamente en cantidades suficientes como para evaluarlos, con el
fin de obtener datos reales del comportamiento de cada clon en condiciones de
plantación en diferentes zonas.
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MATERIAL y METODOS
En este proyecto se ha utilizado como material base genotipos selecccionados,
producto de los ensayos de progénies o cruzamientos controlados realizados en el
programa de mejora genética del pino radiata que se inició hace más de 20 años en
Neiker, en colaboración con las Diputaciones de los tres territorios de la CAPV y
Oihanberri (Euskadi-Forestal 2005:45-47).
Las estacas necesarias para el ensayo se obtuvieron del jardín clonal establecido
por la empresa Oihanberri en Laukiz. El manejo del seto madre incluyó la aplicación de
podas, riegos y fertilización, así como el control de plagas, enfermedades y la
competencia con especies herbáceas, para favorecer la emisión de brotes que puedan ser
cosechados como estacas.
Las varetas se obtuvieron, en enero de 2005, de rebrotes con un diámetro basal
promedio de 4 mm y una longitud aproximada de 20 cm. Se seleccionaron
preferiblemente los brotes con yemas en dormancia, acículas largas y de color verde
oscuro.
Los brotes se cortaron a primera hora de la mañana, con tijeras de podar
desinfectadas con cloro (20%) y etanol (90%), y se colocaron en cajas de cartón
cerradas, llevándolas de inmediato al invernadero de destino para su preparación, con el
fin de evitar su deshidratación.
Una vez en el invernadero, cada vareta se cortó en tres trozos, realizando en la
parte basal un corte recto y horizontal al eje de la estaquilla. Se utilizaron la parte apical
y la intermedia, de 5 cm de longitud cada una, mientras que la parte basal de la vareta se
desechó. En las estacas apicales, denominadas “estaquilla de primer orden” se dejaron
las acículas intactas, mientras que en las intermedias, denominadas “estaquillas de
segundo orden” se eliminaron 1/3 de acículas debido al corte realizado para obtener la
estaquilla de primer orden.
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Una vez cortadas las estacas, se bañaron en fungicida, se sumergió la zona de
corte en una solución de auxinas (Exuberone) y, por último, se colocaron en un sustrato
compuesto por la mezcla turba rubia y turba negra (89:20 v/v) con perlita para aumentar
la aireación del sustrato. La colocación de la estaquilla se realizó de forma centrada en
el alveolo y tras agujerear el sustrato con un punzón para permitir que más de un tercio
de la longitud de la estaquilla quedara dentro del sustrato (aproximadamente de 2 a 2,5
cm de estaca a la vista).
El estaquillado se llevó a cabo en bandejas Arnabat de plástico flexible, de 35
alveolos, de paredes cerradas y forma de prisma, de 240 cm3 de capacidad cada uno.
Pero, además, se ha probado con otro modelo de bandeja, de mayor volumen y apertura
de la pared del alveolo; es la bandeja Plantek, elaborada en plástico rígido, de 35
alveolos con forma de prisma, pared abierta longitudinalmente y 270 cm3 de capacidad.
Figura 3. Tipos de contenedor utilizados para el estaquillado de Pinus radiata: la bandeja Arbanat, de
plástico flexible, con 35 alveolos de paredes cerradas y 240 cm3 de capacidad y la bandeja Plantek, de
plástico rígido, con 35 alveolos de paredes con aberturas longitudinales y 270 cm3.
Bandeja Arnabat
Bandeja Plantek
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La producción de planta se ha realizado en dos viveros: en Urnieta, en el vivero
de la Diputación Foral de Gipuzkoa, a cargo del viverista Andrés Ayerbe y en
Gordexola, en viveros Arbide, pertenecientes a la viverista Mª Carmen Arbide.
El manejo llevado a cabo en ambos viveros ha sido bastante similar, han crecido
sin calefacción y con frecuentes aplicaciones de riego por aspersión, para intentar
mantener una humedad relativa superior al 80%. La principal diferencia entre ambos se
refiere a las mesas de cultivo utilizadas. Así, mientras que en Urnieta las bandejas se
han mantenido sobre cama caliente, en Gordexola, donde no hay cama caliente, las
bandejas se han colocado en angarillas, lo que hace que el fondo de los alveolos haya
estado al aire durante todo el periodo de cultivo.
Para prevenir enfermedades fúngicas, una vez por semana se hicieron
aplicaciones de fungicidas, que contenian Benlate (2 g/L, ingrediente activo: Metil-
(buticarbamol) bencimidazol-2 ilicarbonato), Captán (2 mL/L, ingrediente activo: N-
triclorometil dicarboximida) y Previcur (1,5 mL/L, ingrediente activo: Propamocarbo
clorhidrato), de manera alternada. A los dos meses del inicio del ensayo se comenzaron
con aplicaciones semanales de fertilizante foliar.
Tratamiento con sulfato de cobre
En este estudio se ha aplicado una mezcla de cobre con pintura plástica diseñada
de forma que permita una fácil aplicación. Previamente al llenado de los contenedores
se aplicó una pintura ecológica incolora especialmente diseñada por IBERSA y el
SERIDA (Cabal et al., 2005), empleando para ello una pistola de Alta Presión Bajo
Volumen (HPLV) sobre las paredes interiores de los contenedores
Sulfato de cobre + pintura plástica
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Se han preparado cuatro tratamientos diferentes, correspondientes a diferentes
concentraciones de sulfato de cobre: 0, 3, 6 y 9 % Cu.
Inoculación con hongos ectomicorrícicos
Las estaquillas se han inoculado con esporas de las especies fúngicas
Scleroderma citrinum, Rhizopogon roseolus y Rhizopogon luteolus. Para ello, los
carpóforos de las especies utilizadas se recogieron en otoño, se secaron a una
temperatura inferior a 40ºC para mantener la viabilidad de las esporas, y se almacenaron
hasta su utilización. La preparación del inóculo fúngico consistió en la trituración del
carpóforo en agua desionizada estéril, filtración y dilución en agua de la suspensión así
obtenida. Mediante recuento al microscopio se calculó la concentración de esporas de
esta suspensión madre, que es diluida las veces necesarias para ajustarla a la
concentración de riego.
La inoculación de las plantas se llevó a cabo el 7 de Abril de 2005, tres meses
después del inicio del proceso de estaquillado. La inoculación consistió en la aplicación,
mediante riego de cada estaquilla, de 50 ml de una suspensión esporal con una
concentración de 108 esporas/ml.
Scleroderma
Rhizopogon
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Diseño experimental
El trabajo realizado consta de tres ensayos llevados a cabo de forma paralela, y
evaluados mediante un diseño experimental factorial de bloques completos dispuestos al
azar. Cada unidad experimental constaba de 35 estacas, realizándose cuatro
repeticiones, lo que supone un total de 140 estaquillas por tratamiento.
Por un lado se ha utilizado un diseño factorial completo de 6 x 4 factores: 6
familias y 4 concentraciones de cobre. En este diseño, las 6 familias evaluadas han sido
las número 7, 15, 18, 24, 26 y 73, y los 4 tratamientos de cobre: Control (0% Cobre),
Cu1 (3% cobre), Cu2 (6 % cobre) y Cu3 (9% cobre).
Figura 4. Disposición y estado de las estaquillas en los viveros de Gordexola y Urnieta, en Febrero de
2005, un mes después del inicio del ensayo.
Vivero Gordexola
Vivero Urnieta
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En el caso de la comparación entre diferentes diseños de contenedor, el diseño
consta de 2 x 2 factores: 2 familias (número 18 y número 26) y 2 contenedores (Arnabat
y Plantek).
Por último, para evaluar la capacidad infectiva de los hongos ectomicorrícicos se
planteó un diseño de 2 x 4 factores: 2 familias (número 73 y una mezcla de familias
resistentes a Diplodia L31, L32, L33 y L34, denominada L31/34) y 4 tratamientos
fúngicos: Control (sin inocular), R. luteolus (inoculada con esporas de Rhizopogon
luteolus), R. roseolus (inoculadas con esporas de Rhizopogon roseolus) y S. citrinum
(inoculadas con esporas de Scleroderma citrinum).
Variables evaluadas y análisis estadístico
A partir del mes de Marzo se realizó un control semanal del estado de las
estaquillas, para lo cual, además de anotar los cambios observados en la parte aérea de
la estaquilla (clorosis, pérdida de viabilidad, aparición de brote, etc), se extraía al azar
una estaca por unidad experimental con el fin de revisar los avances en la formación de
raíces.
Se consideró como estaca enraizada la que presentó al menos una raíz de 2 mm
de largo, y como estaca brotada la que presentó al menos 1 brote aéreo de 3 mm de
longitud.
La evaluación final se realizó en Octubre de 2005. Todos los parámetros
analizados fueron recogidos individualmente para cada planta y todas las plantas
seleccionadas para la realización de las diferentes medidas fueron escogidas de forma
aleatoria, evitando las plantas del borde de las mesas y cualquier otra que pudiera
mostar anomalías que no se correspondieran claramente con el efecto de los factores a
estudiar.
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En primer lugar, se midió la altura y el diámetro del cuello de raíz de 20 plantas
de cada tratamiento. Además, se cosecharon 10 plantas por tratamiento, que se lavaron
para dejar los cepellones limpios de sustrato. Las plantas se dividieron en dos, raíz y
parte aérea, y se mantuvieron en una estufa de ventilación forzada, a 70 ºC, hasta llegar
a peso constante. De este modo se determinó el peso seco de raíz y de parte aérea, a
partir de los cuales se calculó el peso seco total y la relación parte radical-parte aérea.
Asimismo, se cosecharon otras 10 plantas por tratamiento, cuyas raíces se
lavaron muy cuidadosamente para eliminar cualquier resto de sustrato adherido a ellas y
romper el menor número posible de raíces. A continuación, las raíces se digitalizaron
mediante un scanner Epson Expresión 1600 – XL extra-optimizado para el análisis de
raíces por Regent Instruments Inc. y dotado de un sistema de iluminación en una unidad
transparente. Aunque el programa permite trabajar con imágenes de 150, 300, 400 y 800
dpi (densidad de puntos por pulgada), se verificó previamente que trabajar con
resoluciones superiores a 300 o 400 dpi, no aportaban precisión a las medidas realizadas
sobre los sistemas radiculares. La elección de formatos con mayores densidades por
pulgada alarga el tiempo de escaneado y posterior esqueletización de la imagen binaria.
Después de ser escaneadas en escala 1:1, las imágenes se almacenan en formato
Tiff para su posterior procesado. El programa opera con imágenes de 256 niveles de
grises, las cuales son convertidas a formato binario antes de ser esqueletizadas. La
segmentación de las imágenes permiten extraer los pixels del objeto a analizar (las
raíces en este caso) de los pixels del fondo de la imagen (Bauhaus y Massier, 1999).
Una vez esqueletizadas las distintas imágenes escaneadas, se procesaron con el
programa WinRhizo (Vs PRO; ®Regent Instruments Inc.). Para cada planta se evaluaron
los siguientes parámetros: Longitud acumulada (cm), longitud por volumen (cm/m3),
área proyectada (cm 2), área superficial (cm
2), volumen de raíces (cm
3), diámetro (mm),
número de ápices, número de ramificaciones y número de cruzamientos.
Además, los siguientes parámetros se calcularon para 10 intervalos de clase,
construidos en función del diámetro de las raíces analizadas cada 0,5 mm: Longitud
acumulada, área proyectada, área superficial, volumen de raíces y número de ápices.
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Todos los datos obtenidos fueron analizados con el paquete estadístico ©SPSS
Inc. (vs. 10.0.6). Las variables cuantitativas evaluadas en los diseños factoriales
estudiados, después de verificar la normalidad y homogeneidad de las varianzas, fueron
analizadas con el procedimiento ANOVA. Para la comparación de los niveles de los
efectos principales se ha utilizado el test a posteriori LSD (Mínimas diferencias
significativas) con un nivel de significación de α = 0,05.
Evaluación mediante test clonal
Una vez que los genotipos selectos se lograron multiplicar vegetativamente en
cantidades suficientes como para evaluarlos, se ha procedido a la instalación de un test
clonal, con la finalidad de poder obtener datos reales del comportamiento de cada clon
en condiciones de plantación en diferentes zonas.
El 15 de Marzo de 2006, 7 de las 8 familias ensayadas se transplantaron en una
parcela localizada en “La Garbea”, cerca de La Herbosa (Zalla, Bizkaia), mediante un
diseño factorial de bloques al azar, cada bloque esta formado por 25 plantas (5 x 5) con
3 repeticiones por bloque (Fig. 3 y 4). La familia 24 fue la única que no pudo ser
llevada a campo por no disponer de material suficiente para la instalación de un número
mínimo de repeticiones.
Figura 5. Parcela experimental instalada con las familias 7, 15, 18, 26, 34, 73 y L31/34, el 15 de Marzo
de 2006 en La Garbea, mediante un diseño factorial aleatorizado de bloques al azar, con 25 plantas por
bloque (5x5) y 3 repeticiones por familia.
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Tras la plantación, las plantas sobrantes se utilizaron para la instalación de un
seto madre en el vivero del El Garmo (BASALAN, Diputación Foral de Bizkaia), con el
fin de evaluar la viabilidad de estaquillar a partir de planta procedente de estaquilla.
Para ello, 18 plantas de cada familia ensayada se transplantaron a una parcela de
terreno, formando filas independientes por familia. Y con el fin de evaluar la diferencia
entre mantener los pies madres en macetas o instalados en el campo con las ventajas y
desventajas que cada manejo representa, otras 10 plantas de cada familia se
transplantaron a macetas en sustrato turba rubia-negra (80:20), dejándolas seguir su
desarrollo en invernadero abierto.
Figura 6. Instalación del seto madre al finalizar la fase de producción de las estaquillas en el vivero El
Garmo (Basalan, Diputación Foral de Bizkaia), para lo cual se procedio al transplate de las plantas a
campo y a maceta, manteniendo estas últimas bajo cubierta, en invernadero semiabierto.
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RESULTADOS
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Finalizada la fase de estaquillado, y una vez dispuestos todos los tratamientos en
las mesas del vivero siguiendo un diseño factorial de bloques al azar, las bandejas no se
volvieron a tocar hasta el final de la fase de crecimiento en vivero, momento en el que
se procedió a la evaluación final de las estaquillas. Durante todo el perído de producción
de las estaquillas en vivero se llevó a cabo un seguimiento periódico, tanto de la
pérdida de viabilidad de las estaquillas, como de su desarrollo. En la Figura 7 se han
representado las principales actividades y observaciones realizadas durante los meses de
enero a octubre de 2005, periodo que corresponde al crecimiento de las plantas en el
vivero.
Figura 7. Cronograma resumen de las actividades y observaciones realizadas durante los 6 primeros
meses de realización del proyecto.
El seguimiento semanal de las estaquillas no mostró indicios de cambios de
actividad en los tres primeros meses, aunque si se observó una pérdida gradual de
viabilidad, siendo mayor o menor dependiendo de la familia. En el mes de Mayo se
produjo un brote generalizado de las estaquillas, y aunque sí se observó la presencia de
callo en la mayoría de las estaquillas levantadas, no se detectó la aparición de raíces
hasta el mes de Junio. A finales de Junio, las raíces encontradas presentaban, en
general, un desarrollo radical muy escaso y mostraban claras diferencias dependiendo
de la familia.
Preparación Preparación Preparación Preparación bandejasbandejasbandejasbandejas
RaícesRaícesRaícesRaíces
BroteBroteBroteBrote
CalloCalloCalloCallo
InoculaciónInoculaciónInoculaciónInoculación
Febrero Marzo Abril Enero Mayo Junio
Evaluación
final
Octubre
20
Hay que destacar que la mortalidad en el caso de las estaquillas de segundo
orden ha sido muy elevada, lo que ha motivado la imposibilidad de tratar
estadísticamente los resultados por no disponer de un mínimo de muestras
estadísticamente significativo.
Figura 7. Pérdida de viabilidad de las estaquillas en función de la posición en el brote: apical (primer
orden) o intermedia (segundo orden) mostrada en el mes de Abril de 2005, tres meses después del inicio
del estaquillado, por las Familias 24, 73 y la mezcla L31 a L34.
Ademas de la significativamente superior tasa de mortalidad, presentaron un
desarrollo de calidad muy inferior a la presentada por las estaquillas de primer orden.
Por todo ello, salvo en los gráficos en los que aparecen claramente diferenciados los
resultados obtenidos en las estaquillas en función del orden, para el análisis de los
resultados, se han tenido únicamente en cuenta las estaquillas de primer orden.
0
20
40
60
80
100
F24 F73 FL31/34 F24 F73 FL31/34
Pérdida viabilidad (%)
1er orden 2º orden
21
Figura 8. Pérdida de viabilidad de las estaquillas en los meses previos a la aparición de raíces mostrada
por cada una de las 7 familias estaquilladas : 7, 15, 18, 24, 26, 73 y la mezcla de familas L31 a L34.
Como se puede observar en la Figura 8, la pérdida de viabilidad fue
significativamente superior en las Familias 24 y 73, con un 40% de mortandad, frente a
un porcentaje inferior al 10 % encontrado en el resto de las familias estaquilladas.
Asimismo, cabe destacar que casi desde el inicio del estaquillado se produjeron
pérdidas, desde el primer mes en el caso de la Familia 24 y a partir del segundo en la
Familia 73. La mezcla de Familias L31a L34 y la Familia 7 son los que presentaron la
menor pérdida de viabilidad, y, a pesar de haber transcurrido 4 meses desde que se
cortaron del seto madre y de no haber desarrollado aún raíces, presentaron una tasa de
supervivencia superior al 95 %.
En el mes de Mayo, como ya se ha comentado anteriormente, se produjo de
forma generalizada, la aparición de brotes aéreos en las estaquillas. Sin embargo, las
estacas que se levantaron para comprobar el estado de la parte radical demostraron que
la aparición de brote no podía ser empleada como indicativo de enraizamiento de la
estaquilla, ya que el desarrollo de brote aéreo no era coicidente con el desarrollo de
raíces. En todas las estaquillas levantadas se pudo comprobar la existencia de callo (Fig.
9), pero la aparición de raíces no era generalizada y no parecía seguir un patrón ni tener
relación con el estado de la parte aérea de la planta.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
Enero Marzo Abril Mayo
Pérdida viabilidad (%)
F7 F15 F18 F24 F26 F73 F L31/34
22
Figura 9. Ejemplo del estado de las estaquillas en el mes de Mayo, transcurridos 4 meses desde el inicio
del estaquillado, en el que se puede observar la aparición de brote en la parte aérea y la formación de callo
en la parte basal de la estaquilla.
En cuanto a la aparición de brote y de raíces, cabe destacar que se observan
diferencias entre familias a nivel del porcentaje de estaquillas que han desarrollado
brote, así como las que presentan un claro desarrollo de raíces (Fig. 10).
Asi, en el caso de las Familias 15, 18 y 26 se observa un porcentaje similar de
estaquillas con brote y de aparición de raíces. En el caso de la Familia 7, aunque solo un
20 % de las estaquillas presentaban brote, mas de un 40 % habían desarrollado largas
raíces, que asomaban por el fondo del alveolo.
Por el contrario, en el caso de la Familia 73, aunque casi un 40 % de las
estaquillas habían desarrollado un vigoroso brote, todavía, no más de un 20% presentan
un evidente desarrollo radical.
23
Figura 10. Porcentaje de plantas con brote aéreo y porcentaje de estacas enraizadas presentados por las
diferentes familias en el mes de Junio, transcurridos 5 meses desde el inicio del estaquillado.
A la vista de los resultados, la presencia de brote parece ser un buen indicador de
la viabilidad de la estaquilla, aunque su aparición no signifique que se haya producido
enraizamiento.
Asimismo, y a pesar de que en el mes de Junio aún era pronto para poder
plantear la existencia de buenos resultados a nivel de arquitectura radical, si que hay que
destacar que se encontraron claras diferencias en la forma de enraizar, dependiendo de
la familia estaquillada (Fig. 11).
La Familia 7 y la Familia 18 presentaban un sistema radical muy similar al
desarrollado por una planta a partir de semilla.
Sin embargo, las raíces que hasta el momento se habían desarrollado en el caso
de las Familias 15, 26 y 73 eran bastante diferentes, destacando el mayor grosor de las
raíces emitidas y la ausencia de raíces laterales.
0
10
20
30
40
50
60
Fam. 7 Fam. 15 Fam. 18 Fam. 26 Fam. 73
Porcentaje
Brote
Raíces
24
Figura 11. Diferencias encontradas en la estructura radical de las diferentes familias transcurridos 6
meses desde el inicio del estaquillado. Asimismo, se puede observar la presencia de brote aéreo, excepto
en la estaquilla correspondiente a la Familia 15.
Con respecto al aspecto de las raíces y del sistema radical desarrollado hasta el
momento, hay que mencionar también la aparición de crecimientos anómalos de algunas
raíces, con gravitropismo negativo, o acodamientos y cambios bruscos de dirección
(Fig. 12).
25
Figura 12. Ejemplo de los tipos de raíces con crecimiento anómalo encontradas en las estaquillas a los 6
meses del inicio del estaquillado.
26
Figura 13. Aspecto general de las estaquillas los primeros 6 meses de crecimiento en el vivero, en el que
se observa la pérdida de viabilidad progresiva a lo largo del tiempo, la aparición de brote aéreo a partir
del cuarto mes y el enraizamiento a partir del 5 mes desde el inicio del estaquillado.
Febrero
Abril
Mayo
Junio
Julio
27
Valoración de la capacidad de diferentes familias para ser propagadas
vegetativamente mediante estaquillado
Transcurridos 7 meses de crecimiento en vivero, se llevó a cabo la evaluación
final de la capacidad de enraizamiento y crecimiento de las estaquillas de las diferentes
familias.
En cuanto a la capacidad de enraizar los resultados obtenidos indican que las 7
familias ensayadas son aptas para ser propagadas vegetativamente mediante
estaquillado, si bien se ha encontrado que dicha capacidad presenta diferencias
significativas dependiendo de la familia (Fig. 14).
Figura 14. Porcentajes de enraizamiento obtenidos para cada una de las familias
estaquilladas, transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado.
De entre todas las familias, cabe destacar a la mezcla de Familias L31 a L34, por
ser la que ha presentado la capacidad de enraizar mas alta, con una tasa del 90%.
También hay que destacar a la Familia 24, aunque en este caso por lo negativo del
resultado, ya que, en las condiciones en las que se ha llevado a cabo el proceso de
producción vegetativa, solo un 30 % de las estaquillas han sido capaces de enraziar, un
porcentaje significativamente inferior al del resto de las familias.
0
20
40
60
80
100
F7 F15 F18 F24 F26 F73 FL31/34
Enraizamiento (%)
28
Las 5 familias restantes, aunque sí muestran diferencias entre ellas, éstas no
llegan a ser significativas. Así, la tasa de enraizamiento de las Familias 15 y 26, con
porcentajes cercanos al 60%, es claramente superior a la presentada por las Familias 7,
18 y 73, con valores muy próximos al 40%.
Con respecto al crecimiento de las plantas, también se han encontrado
diferencias significativas entre familias, tanto a nivel de altura, como de biomasa, así
como importantes diferencias dependiendo del tipo de estaquilla utilizada, es decir,
dependiendo de la localización de la estaquilla en el brote (Fig.15 A).
Figura 15 A. Transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado, valores de altura (cm), diámetro
(mm) y biomasa (g) presentados por las diferentes familias en función del tipo de estaquilla utilizada:
apical (primer orden) e intermedia (segundo orden).
Las estaquillas de primer orden, es decir, las procedentes de la parte apical del
brote utilizado para obtenerlas presentan, en todos los casos, un crecimiento muy
superior, tanto en altura como en biomasa, al que presentan las procedentes de la parte
intermedia del brote (segundo orden).
Parte aérea Raíz Altura Diámetro
0
1
2
3
4
5
6
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Peso seco (g)
1er orden
0
1
2
3
4
5
6
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Peso seco (g)
2º orden
0
5
10
15
20
25
30
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro (mm)
1er orden
0
5
10
15
20
25
30
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro (mm)
2º orden
29
El diámetro, aunque no presenta diferencias tan marcadas, si que es algo mayor
en las estaquillas de segundo orden, lo cual es lógico, ya que éstas diferencias en el
diámetro, se manifiestan desde el inicio del estaquillado al estar relacionadas con la
posición en el brote.
De todas las familias ensayadas, es la Familia 15 la que presenta mayor
crecimiento, tanto en altura como en biomasa, significativamente superior al de las
demás familias. En sentido negativo, es nuevamente la familia 24 la que destaca, con
una altura y un peso seco, tanto de raíz como de parte aérea, significativamente menor
que la del resto de las familias. Las cuatro restantes, Familias 7, 18, 26 y 73 presentan
un crecimiento bastante similar, sin diferencias significativas, si bien es algo mayor el
de las familias 26 y 73.
A primera vista, parece no existir correlación alguna entre las familias con la
tasa de enraizamiento mas alta y las que han presentado mayor crecimiento. Sin
embargo, si prescindimos de la mezcla de Familias L31/L34, se puede comprobar que sí
parece existir una correlación positiva (Fig. 15 B). Además, la correlación encontrada es
mayor para la altura y el diámetro que para la biomasa.
La mezcla de familias L31 a L34, a pesar de la elevada tasa de enraizamiento,
presenta un crecimiento relativamente bajo, si lo comparamos con el resto de las
familias estaquilladas. Es probable que estos resultados estén condicionados por los
factores ambientales que tuvieron las plantas durante su crecimiento en vivero. En el
momento del estaquillado, no se pudo obtener la misma cantidad de material que el
conseguido para las otras familias, por lo que no se pudo disponer de una repetición en
cada vivero y estas familias solo se estaquillaron en el vivero de Urnieta. Todas las
demás familias crecieron tanto en el vivero de Urnieta como en el de Gordexola. Al
final de la fase de crecimiento en vivero, se pudo comprobar que el crecimiento de las
familias en el vivero de Urnieta era mucho menos homogéneo que el obtenido en el
vivero de Gordexola. Asimismo, algunas familias presentaban un crecimiento muy
pequeño, con claros indicios de haber sufrido estrés, principalmente causado por bajas
temperaturas.
30
Figura 15 B. Correlación entre el porcentaje de enraizamiento y el crecimiento en altura (cm), diámetro
(mm) y biomasa (g) de raíz y de parte aérea de las estaquillas de primer orden de las familias 7, 15, 18,
24, 26 y 73, transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado.
Por ello, para la realización de las gráficas y los análisis estadísticos se ha
prescindido de los bloques que pudieran estar afectados por factores ajenos a la
capacidad potencial de las plantas para enraizar y para desarrollar biomasa. A excepción
de la mezcla de familias L31/L34, que se ha mantenido a pesar de tratarse de una
mezcla de familias, por lo que presenta una mayor variabilidad genética, y de la que no
se dispone de repetición en mas de un vivero. Se trata de un tratamiento que esta
condicionado por factores tanto genéticos como climáticos diferentes a los que han
afectado al resto de las familias representadas en los gráficos, pero que se ha decidido
mantener por considerar que tienen gran interés para el sector forestal, ya que en su
momento esas familias se seleccionaron por ser resistentes a Spharopsis sapinea.
y = 0,4419x - 5,3806
R2 = 0,8406
0
5
10
15
20
25
30
0 10 20 30 40 50 60 70
Altura (cm)
y = 0,0678x - 0,0445
R2 = 0,8409
0
1
2
3
4
5
6
0 10 20 30 40 50 60 70
Enraizamiento (%)
Diámetro (mm)
y = 0,0293x - 0,3582
R2 = 0,6523
0
0,4
0,8
1,2
1,6
2
0 10 20 30 40 50 60 70
Peso seco raíz (g)
y = 0,0672x - 0,8772
R2 = 0,5643
0
1
2
3
4
5
6
0 10 20 30 40 50 60 70
Enraizamiento (%)
Peso seco parte aerea (g)
31
Por otra parte, además del crecimiento de las plantas, se ha analizado la
estructura del sistema radical, en función de diferentes variables consideradas de interés
a la hora de caracterizar la funcionalidad de un sistema radical.
Estudiando el aspecto general del sistema radical se han diferenciado tres tipos
de raíces (Fig. 16), en función de la ramificación del sistema radical y de la presencia o
no de deformaciones evidentes en su estructura:
o El Tipo 1 corresponde a los sistemas radicales que no presentan deformaciones
evidentes y que estan bien desarrollados, con buena ramificación y abundancia
de raíces de diferentes órdenes.
o El Tipo 2 corresponde a los sistemas radicales que no presentan deformaciones
evidentes, pero que no han desarrollado una ramificación abundante. Sí que
presentan raíces laterales de primer orden, pero los demás órdenes no estan bien
representados, siendo muy escaso el número de raíces cortas de crecimiento
limitado.
o El Tipo 3 es el que corresponde a los sistemas radicales que presentan
deformaciones evidentes en su estructura, lo que puede afectar negativamente a
la estabilidad futura de la planta.
Teniendo en cuenta este criterio diferenciador, se ha encontrado que, aunque
existen diferencias dependiendo de la familia de la que se trate, en todas las familias,
las raices de Tipo 1, que son las que consideramos mas adecuadas, son las mas
abundantes (Fig. 17). Los valores obtenidos para estas raíces sin deformaciones y con
un abundante sistema radical oscilan entre los mas bajos, de aproximadamente un 40 %
de plantas, presentados por las Familias 18 y 73, y un 60 % para la que presenta el valor
más alto, que es el caso de la Familia 26.
32
Figura 16. Tipos de sistema radical que se han establecido para la caracterización general de las raíces
desarrolladas por las diferentes familias: Tipo 1, correspondiente a un sistema radical sin deformaciones y
con ramificación abundante, Tipo 2, correspondiente a un sistema radical sin deformaciónes pero con una
ramificación pobre, y el Tipo 3, que corresponde a un sistema radical con deformaciones.
Tipo 1
Tipo 2
Tipo 3
33
En el caso de las raíces de Tipo 3, que son las que consideramos que hay que
desechar por los problemas que puede causar en el desarrollo futuro de la planta,
encontramos que es la Familia 7 la que ha presentado un valor más alto de sistemas
radicales con deformaciones (40%). Por el contrario, en el caso de la Familia 26
ninguna de las raíces estudiadas ha presentado deformaciones. Entre ambos casos
extremos se encuentran el resto de las familias, con porcentajes de raíces defectuosas
que rondan el 20 %.
Figura 17. Porcentaje de estaquillas, para cada familia, que han presentado cada uno de los
tipos de raíz seleccionados para evaluar la calidad del sistema radical, representados en color
azul oscuro el Tipo 1 (sin deformaciones y ramificación abundante), en color azul claro el Tipo
2, (sin deformaciones y ramificación pobre), y en color blanco el Tipo 3 (con deformaciones).
A nivel de estructura radical, entre los numerosos parámetros estudiados se
encuentran los representados en la Figura 18, que son la longitud acumulada y el
diámetro medio de las raíces, así como la superficie y el volumen total ocupado por el
sistema radical.
0
20
40
60
80
100
F7 F15 F18 F24 F26 F73
Porcentaje
T1 T2 T3
34
Figura 18. Longitud total y diámetro medio de las raíces, superficie y volumen del sistema radical
desarrollado por las estaquillas de las diferentes familias, transcurridos 7 meses desde el inicio del
estaquillado.
Analizando los 4 parámetros en conjunto se observa que la familia que mas
destaca varía dependiendo del parámetro biométrico estudiado. Así, mientras que la
mezcla de familias L31 a L34 presenta la mayor longitud acumulada de raíces, es la
Familia 15 la que presenta mayor superficie y volumen radical. Las Familias 24 y 7 son
las que presentan, en general, los valores mas bajos. Cabe destacar también que la
longitud acumulada de raíces es un parámetro muy homogéneo, que, exceptuando a la
mezcla de familias L31/L34, muestra un valor medio de unos 500 cm, sin diferencias
entre familias. Por el contrario, la superficie del sistema radical es el parámetro que más
diferencias presenta entre las familias.
Otros dos parámetros relacionados con la estructura son el número de puntas de
raíz y el número de bifurcaciones que aparecen, de media, en el sistema radical de cada
una de las familias (Fig. 19). Son parámetros de gran importancia puesto que nos dan
idea de la capacidad de absorción de agua y nutrientes que puede tener la planta.
Ambos parámetros muestran nuevamente la existencia de diferencias
significativas entre familias, mayores aún que las encontradas en los parámetros
0
150
300
450
600
750
900
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Longitud de raíz (cm)
0
0,4
0,8
1,2
1,6
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Diámetro medio (mm)
0
50
100
150
200
250
300
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Superficie de raíz (cm2)
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Volumen de raíz (cm3)
35
relacionados con el sistema radical que se han comentado anteriormente. En el caso del
número de puntas de raíz, las familias se pueden dividir en dos grupos, por un lado las
Familias 7, 15, y 18, con un número de puntas cercano a 800, y, por otro lado, las
Familias 24, 26, 73 y la mezcla de familias L31/L34, que, con un valor de unas 1200,
significativamente superior, lo que indica que su sistema radical esta mucho mas
desarrollado y ramificado.
Figura 19. Número de puntas de raíz y número de bifurcaciones encontradas en los
sistemas radicales de las diferentes familias estaquilladas, transcurridos 7 meses desde el
inicio del estaquillado.
El número de bifurcaciones muestra unos resultados similares, separando también
las familias en grupos, aunque esta separación es algo diferente de la mencionada
anteriormente. Al igual que lo ocurrido con el número de puntas de raíz, las Familias 7,
15 y 18 presentan el número de bifurcaciones mas bajo, con un valor cercano a las
2.200, y las Familias 26 y L31/L34 presentan un número significativamente mayor,
cercano a las 4.500. Sin embargo, en este caso, las Familias 26 y 73 presentan valores
0
400
800
1200
1600
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Número puntas de raíz
0
1500
3000
4500
6000
F7 F15 F18 F24 F26 F73 L3134
Número bifurcaciones
36
significativamente mas bajos que las dos anteriores, con un número cercano a las 3.000,
quedando en una situación intermedia.
Para intentar afinar mas en el estudio de la estructura de las raíces, se consideró el
diámetro medio de las raíces como criterio para separar el sistema radical en clases
diferentes.
Aunque las posibles categorias son muchas, para evitar un número excesivo de
datos, se ha decidido considerar únicamente tres clases de raíz:
o la Clase I, para aquellas raíces más pequeñas, con un diámetro inferior a 0,5 mm.
o la Clase II, para las raíces con un diámetro entre 0,5 y 1,5 mm.
o la Clase III para las raíces más grandes, aquellas que tienen un diámetro mayor
de 1,5 mm.
Los resultados obtenidos muestran que existe una gran variabilidad en el caso de
la longitud acumulada y la superficie radical, mientras que el número de puntas de raíz
parece ser un parámetro menos variable (Fig. 20).
La longitud acumulada total, sin tener en cuenta las clases de edad (Fig. 18), no
mostraba la existencia de diferencias entre las familias. Sin embargo, sí que se
encuentran diferencias entre familias cuando se tienen en cuenta las clases en función
del diámetro (Fig. 20). Las Familias 7, 15 y 18 presentan una longitud acumulada de
raíces de Clase II mayor que la de la Clase I, y una longitud superior a los 50 cm para
las raíces de Clase III. Sin embargo, las Familias 24, 26 y L31/L34 tienen una longitud
acumulada de raíces de Clase I superior a las acumulada por las raíces de Clase II, y la
longitud para la Clase III es inferior a 50 cm.
La supeficie radical muestra un patrón más homogéneo. En este caso, excepto en
la Familia 15, en todas las familias las raíces de Clase I son las que menor superficie
presentan, y las de Clase II las que mayor superficie ocupan, seguidas de cerca por las
de Clase III, con valores algo inferiores.
37
Figura 20. Longitud acumulada de raíces, superficie radical y número de puntas de raíz encontradas en
los sistemas radicales de las diferentes familias estaquilladas, separadas en función de la Clase
considerada: Clase I (raíces con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con un diámetro entre 0,5
y 1,5 mm) y Clase III (raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
El número de puntas de raíz muestra una situación muy similar a la encontrada si
no se tienen en cuenta el diámetro medio de las raíces. En todas las familias, el número
de puntas es muy superior en las raíces de menor diámetro (Clase I), con diferencias
significativas entre el grupo formado por las familias 7, 15 y 18 y el grupo de las
familias 24, 26, 73 y L31/34, siendo el número significativamente superior en este
segundo grupo.
En el caso de las raíces de Clase II, aunque las diferencias son mucho menores, el
número encontrado es mayor en las Familias 7, 15 y 18, que además son las que
presentan la cantidad más baja en Clase I. Las raíces de Clase III, en todos los casos,
prácticamente no presentan puntas de raíz.
Clase I Clase II Clase III
0
75
150
225
300
375
450
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Longitud raíz (cm)
0
20
40
60
80
100
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Superficie raíz (cm2)
0
300
600
900
1200
1500
F7
F15
F18
F24
F26
F73
L3134
Número puntas raíz
38
Si nos fijamos en el volumen radical, como es lógico, son las raíces de mayor
diámetro (Clase III) las que mayor volumen presentan, con valores muy superiores a las
de Clase II, siendo el volumen ocupado por las raíces de Clase I cercano a cero.
El volumen de raíz en función de la Clase también muestra mas diferencias entre
familias que la presentada por el volumen, sin diferenciar el tamaño de las raíces.
39
Valoración del efecto del contenedor en la propagación vegetativa
mediante estaquillado
El estaquillado de dos de las familias se ha llevado a cabo en dos tipos de
contenedor, uno de ellos, el modelo Arnabat, es un diseño tradicional, con alveolos de
paredes cerradas. El otro, el modelo Plantek, es un diseño moderno, que intenta
solucionar los problemas de deformaciones radicales mediante la abertura de las paredes
del contenedor para favorecer el repicado aéreo de todo el sistema radical.
El enraizamiento no presenta diferencias significativas entre contenedores,
aunque si parece ser algo mayor la tasa obtenida en el contenedor Arnabat (Fig. 21).
Figura 21. Porcentaje de enraizamiento obtenido con las Familias 18 y 26 en dos tipos de
contenedor: Arnabat, de plástico flexible y alveolos de paredes cerradas y Plantek, de plástico
rígido y alveolos de paredes abiertas.
Los parámetros biométricos muestran una respuesta muy similar para la altura y
la biomasa radical, sin ningun efecto condicionado por el tipo de contenedor utilizado
(Fig. 22). Sin embargo, sí que se ha encontrado una mayor biomasa en el caso de la
Familia 26 crecida en el contenedor Plantek, incremento que se ha producido tanto a
nivel de biomasa aérea como radical y que puede estar relacionado con el mayor
volumen del alveolo en este tipo de bandeja.
0
20
40
60
80
100
F18 F26 F18 F26
Enraizamiento (%) Arnabat Plantek
40
Figura 22. Altura, diámetro y biomasa de las estaquillas de las Familias 18 y 26, transcurridos 7 meses
desde el inicio del estaquillado, y producidas en dos tipos de contenedor: Arnabat, con alveolos de
paredes cerradas y Plantek, con alveolos de paredes abiertas.
Se observan también diferencias a nivel del tipo de estaquilla que confirman lo
observado anteriormente en el estudio de las diferentes familias: la estaquilla de
segundo orden presenta un crecimiento significativamente inferior al de la estaquilla de
primer orden, diferencias que aparecen tanto en la altura como en la biomasa.
En cuanto a la ramificación y a la existencia de deformaciones en los sistemas
radicales de las estaquillas (Fig. 23), parece existir una mejor respuesta en el contenedor
Arnabat, con un porcentaje del 80% de las plantas para la Familia 18 y 70 % para la
Familia 26, de sistemas radicales sin deformaciones y con ramificación abundante,
frente a un 50 % y 70 % para las Familias 18 y 26 producidas en contenedor Plantek.
0
5
10
15
20
25
30
F18 F26 F18 F26
Altura
(cm
)
0
1
2
3
4
5
6
Diám
etro (m
m)1er orden
0
1
2
3
4
5
6
F18 F26 F18 F26
Peso seco (g)
1er orden
0
5
10
15
20
25
30
F18 F26 F18 F26
Altura (cm)
0
1
2
3
4
5
6
Diámetro (mm)
2º orden
0
1
2
3
4
5
6
F18 F26 F18 F26
Peso seco (g)
2º orden
Raíz Parte aérea Altura Diámetro
Arnabat Plantek Arnabat Plantek
41
Asimismo, en el caso del contenedor Arnabat, solo la Familia 26 ha presentado
estaquillas con deformaciones evidentes, si bien el porcentaje de plantas con sistemas
radicales defectuosos ha sido inferior al 10 %. Con el contenedor Plantek, ambas
familias han presentado estaquillas con deformaciones y, en ambos casos, el porcentaje
de plantas en el que han aparecido dichas deformaciones ha sido del 20 %.
Figura 23. Porcentaje de estaquillas, de las Familias 18 y 26, producidas en dos tipos de
contenedor: Arnabat, con alveolos de paredes cerradas y Plantek, con alveolos de paredes
abiertas. Cada uno de los tipos de raíz seleccionados para evaluar la calidad del sistema
radical estan representados en color azul oscuro el Tipo 1 (sin deformaciones y
ramificación abundante), en color azul claro el Tipo 2, (sin deformaciones y ramificación
pobre), y en color blanco el Tipo 3 (con deformaciones).
El análisis detallado de la arquitectura radical nos muestra la existencia de
diferencias dependiendo del contenedor en el que han crecido (Fig. 24), aunque, en la
mayoría de los casos, dichas diferencias no llegan a ser significativas. Tanto la longitud
acumulada, como la superficie radical, como el número de puntas de raíz y el de
bifurcaciones, es mayor en las estaquillas producidas en el contenedor Arnabat que en
las que se han desarrollado en el contenedor Plantek. Asimismo, también se observa que
las diferencias entre contenedores son mayores en el caso de la Familia 18.
0
20
40
60
80
100
F18 F26 F18 F26
Porcentaje
T1 T2 T3
Arnabat Plantek
42
Si se representan los parámetros biométricos radicales en función del diámetro
de las raíces, podemos observar que las diferencias en los valores obtenidos se
mantienen, sin embargo, la distribución por clases y las proporciones son muy parecidas
(Fig. 25). Las raíces de Clase I (menores de 0,5 mm) son las que mayor longitud
acumulada de raíces suman, y las que mayor número de puntas de raíz desarrollan, y,
por el contrario, son las que representan menor superficie de raíz. En el caso de la
superficie radical son las raíces de Clase II las que más contribuyen a la superficie total
del sistema radical, seguidas de cerca por las de Clase III. Las raíces de Clase II también
contribuyen, en gran medida, a la longitud total desarrollada por las raíces.
Los resultados parecen indicar que, a diferencia de lo que ocurre en las plantas
producidas a partir de semilla, en las que el contenedor Plantek, al disponer de mayor
volumen de sustrato incrementa el crecimiento de la planta y disminuye la aparición de
deformaciones en el sistema radical (Ortega et al., 2005), el tipo de desarrollo de las
raíces de pino en la producción vegetativa no parece verse beneficiado por mayor
volumen del sustrato.
43
Figura 24. Longitud acumulada, diámetro medio de las raíces, superficie y volumen del sistema radical,
número de puntas de raíz y número de bifurcaciones que presentan las estaquillas de las Familias 18 y 26,
transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado, y producidas en dos tipos de contenedor: Arnabat,
con alveolos de paredes cerradas y Plantek, con alveolos de paredes abiertas.
0
100
200
300
400
500
600
700
F18 F26 F18 F26
Longitud de raíz (cm)
0
40
80
120
160
200
F18 F26 F18 F26
Superficie de raíz (cm2)
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
F18 F26 F18 F26
Volumen raiz (cm3)
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
F18 F26 F18 F26
Diametro medio (mm)
0
200
400
600
800
1000
1200
1400
F18 F26 F18 F26
Nº puntas de raiz
0
700
1400
2100
2800
3500
4200
F18 F26 F18 F26
Nº Bifurcaciones
Arnabat Plantek Arnabat Plantek
44
Figura 25. Longitud acumulada, superficie y volumen del sistema radical, y número de puntas de raíz que
presentan las estaquillas de las Familias 18 y 26, transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado, y
producidas en dos tipos de contenedor: Arnabat, con alveolos de paredes cerradas y Plantek, con alveolos
de paredes abiertas. Clase I (raíces con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con un diámetro
entre 0,5 y 1,5 mm) y Clase III (raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
0
50
100
150
200
250
300
350
400
F18 F26 F18 F26
Longitu
d raíz (cm)
0
20
40
60
80
100
F18 F26 F18 F26
Superficie raíz (cm2)
0
200
400
600
800
1000
1200
1400
F18 F26 F18 F26
Número
puntas raíz
0
2
4
6
8
10
F18 F26 F18 F26
Volumen raíz (cm3)
Clase I Clase II Clase III
45
Valoración del efecto de la inoculación con hongos ectomicorrícicos en
la propagación vegetativa mediante estaquillado
Transcurridos 6 meses desde la inoculación de las estaquillas con diferentes
especies fúngicas, el estudio de los sistemas radicales nos muestra que el
establecimiento de las micorrizas en el sistema radical de las estaquillas es posible, si
bien hay que considerar que el nivel de infección conseguido es bajo (Fig. 26).
De las tres especies fúngicas utilizadas, Rhizopogon luteolus ha sido la que ha
establecido un grado de infección mas alto, con un 50% de las raíces micorrizadas. Las
otras dos especies, Rhizopogon roseolus y Scleroderma citrinum, han presentado una
capacidad micorrícica muy similar, estableciéndose en aproximadamente un 30 % de las
raíces cortas.
Los porcentajes de infección mencionados son mucho mas bajos que los que se
han conseguido en otros trabajos realizados con planta de pino insignis producida en
contenedor a partir de semilla (Duñabeitia et al., 2004). Asimismo, hay que mencionar
que se han encontrado micorrizas formadas por especies fúngicas nativas del vivero. Es
por ello que, aunque no han sido inoculadas, en las plantas control también se han
formado micorrizas, por lo que no se puede hablar de plantas micorrizadas y no
micorrizadas, sino de inoculadas y no inoculadas para diferenciar a aquellas que estan
micorrizadas con especies fúngicas seleccionadas.
Al final de la fase de crecimiento en vivero, prácticamente todas las plantas se
encuentran micorrizadas, aunque el porcentaje de infección producido por la flora
fúngica nativa del vivero es inferior al 15 %. Las plantas inoculadas con Rhizopogon y
Scleroderma presentaban también micorrizas formadas por la flora fúngica natural, pero
los porcentajes eran muy bajos por lo que no se han representado en las gráficas.
46
Figura 26. Porcentaje de raíces micorrizadas encontrado en los sistemas radicales de estaquillas
no inoculadas (Control) e inoculadas con diferentes especies fúngicas: Rhizopogon roseolus,
Scleroderma citrinum y Rhizopogon luteolus.
A la vista de los resultados obtenidos, no es posible demostrar claramente que la
inoculación con hongos ectomicorrícicos sea capaz de favorecer el proceso de
enraizamiento de las estaquillas (Fig. 27), pero sí que se ha encontrado que la tasa de
enraizamiento en las plantas inoculadas con Rhizopogon roseolus y Scleroderma
citrinum es superior a la de las plantas no inoculadas. Por el contrario, el porcentaje de
enraizamiento obtenido en las plantas inoculadas con Rhizopogon luteolus no muestra
ninguna diferencia con el obtenido por las plantas no inoculadas.
Figura 27. Porcentaje de enraizamiento de las estaquillas no inoculadas (control) e inoculadas con las
especies ectomicorrícicas Rhizopogon roseolus, Scleroderma citrinum y Rhizopogon luteolus.
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Raíces micorrizadas (%)
0
20
40
60
80
100
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Enraizamiento (%)
47
Para realizar el estudio de la valoración del efecto de los hongos
ectomicorrícicos en las estaquillas se ha utilizado la mezcla de Familias L31/L34, que,
como se ha comentado anteriormente es la que ha presentado una tasa de enraizamiento
muy superior a la de las demás familias. Es probable que, de haber inoculado alguna de
las otras Familias con menor facilidad para enraizar, el beneficio aportado por los
hongos ectomicorrícios se hubiera podido ver de forma más clara.
Como se ha mencionado anteriormente, en comparación con los muy positivos
resultados obtenidos con anterioridad en programas de inoculación llevados a cabo en
viveros de producción de planta en contenedor, los porcentajes de micorrización
obtenidos en las estaquillas han sido bastante bajos. Sin embargo, han sido suficientes
para conseguir un mayor crecimiento de las plantas (Fig. 28).
En el caso del diámetro, se puede considerar que no hay diferencias entre
tratamientos, sin embargo, tanto en altura como en biomasa, aparecen diferencias
significativas. Los tres tratamientos de inoculación han favorecido el crecimiento de las
plantas, dando lugar a una mayor altura y a una mayor producción de biomasa.
Las plantas micorrizadas con R. luteolus, son las que mayores diferencias
presentan con respecto a las plantas no inoculadas. Parece existir cierta relación entre el
grado de micorrización y el estímulo producido en el crecimiento, ya que esta especie
fúngica es la que ha presentado la mayor capacidad colonizadora de las raíces del pino
y, las plantas micorrizadas con esta especie son las que han conseguido mayor altura,
mayor producción de acículas y mayor desarrollo radical.
S. citrinum y R. roseolus, también favorecen el crecimiento en altura, y, lo que
es mas importante, el incremento en biomasa, tanto de raíz como de parte aérea. Es de
destacar, por su interés aplicado, el mayor desarrollo radical presentado por las plantas
inoculadas.
48
Figura 28. Altura, diámetro y biomasa, de raíz y parte aérea, de las estaquillas no inoculadas
(Control) e inoculadas con Rhizopogon roseolus, Scleroderma citrinum y Rhziopogon luteolus,
transcurridos 6 meses desde la inoculación de las plantas
En cuanto a las características presentadas por las raíces de las estaquillas, los
resultados concuerdan, en general, con los comentados a nivel de la biomasa
desarrollada por las plantas. La micorrización con las especies inoculadas produce un
mayor desarrollo del sistema radical con respecto al de las plantas no inoculadas, para
todos los parámetros determinados (Fig. 29).
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Altura (cm)
0
1
2
3
4
5
6
7
8
Diámetro (mm)
Altura
Diámetro
0
1
2
3
4
5
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Peso seco (g)
Parte aérea
Raíz
49
Figura 29. Longitud acumulada y diámetro medio de la raíz, Superficie y volumen radical, Número de
puntas de raíz, bifurcaciones y entrecruzamientos de las estaquillas no inoculadas (Control) e inoculadas
con Rhizopogon roseolus, Scleroderma citrinum y Rhzizopogon luteolus.
0
200
400
600
800
1000
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Longitud de raíz (cm)
0
0,5
1
1,5
2
Diámetro de raíz (mm)
Longitud
Diámetro
0
50
100
150
200
250
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Superficie de raíz (cm2)
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
Volumen de raíz (cm3)
Superficie
Volumen
0
1000
2000
3000
4000
5000
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Número
Puntas Bifurcaciones Entrecruzamientos
50
La micorrización con las especies fúngicas seleccionadas para este trabajo ha
producido un mayor crecimiento de la raíz de la planta, que queda reflejado en una
mayor longitud acumulada, una mayor superficie y mayor volumen radical con respecto
a las plantas no inoculadas. El diámetro medio también es algo mayor en el caso de las
plantas micorrizadas con S. citrinum y R. luteolus.
También resulta muy interesante el grado de ramificación y de producción de
raíces cortas, que son las especializadas en la absorción de agua y nutrientes. Aunque no
se observan diferencias a nivel de entrecruzamientos, tanto el número de puntas de raíz
como las bifurcaciones se ven incrementadas cuando la planta esta micorrizada con las
especies seleccionadas, destacando, especialmente, la micorrización con R. roseolus,
por ser la que presenta las mayores diferencias con respecto al control.
La consideración de los parámetros radicales en función del diametro medio de
las raíces confirma la mejora que la inoculación ha supuesto para el desarrollo del
sistema radical de las estaquillas (Fig. 30).
En las plantas inoculadas, tanto la Clase I como la Clase II presentan una mayor
longitud acumulada de raíz, aunque las diferencias entre las micorrizadas con R.
luteolus y las Control es bastante menor que en los otros dos tratamientos. Es también
mayor la superficie y el volumen de las raíces micorrizadas con Rhizopogon o
Scleroderma, destacando mas significativamente las diferencias en el caso de las raíces
de Clase III.
El número de puntas de raíz también es mayor en las micorrizadas con
Rhizopogon y Scleroderma, aunque en este caso, las mayores diferencias se observan en
las raíces de Clase I.
Considerando todos los parámetros en su conjunto, es la especie Rhizopogon
roseolus la que proporciona un mayor desarrollo y ramificación de la raíz, lo cual
favorecerá el contenido en nutrientes de la planta.
51
Figura 30. Longitud acumulada de raíz, Superficie y Volumen radical y Número de puntas de raíz que
presentan las estaquillas no inoculadas (Control) e inoculadas con Rhizopogon roseolus, Scleroderma
citrinum y Rhzizopogon luteolus. Clase I (raíces con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con
un diámetro entre 0,5 y 1,5 mm) y Clase III (raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
Tanto en el caso de Rhizopogon roseolus, como en el de Scleroderma citrinum,
hay que destacar que, a pesar de que el grado de micorrización es inferior al conseguido
por Rhizopogon luteolus, el efecto beneficioso de la micorrización con estas especies en
la planta de pino es incluso mayor que el proporcionado por R. luteolus, lo que sugiere
que, de conseguir un nivel de infección más elevado, los beneficios para la estaquilla
serían muy importantes.
Los resultados obtenidos nos hace pensar que el establecimiento de la simbiosis
micorrícica con las especies fúngicas seleccionadas mejora el estado fisiológico de las
plantas al final de la fase de crecimiento en vivero, lo que tendrá consecuencias
positivas en la respuesta de la planta tras el transplante a campo.
Clase
Clase
Clase
0
50
100
150
200
250
300
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Superficie de raíz (cm2)
0
100
200
300
400
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Longitud de raíz (cm)
0
2
4
6
8
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Volumen de raíz (cm3)
0
400
800
1200
1600
Control R. roseolus S. citrinum R. luteolus
Número puntas raíz
52
Figura 31. A la izquierda de la imagen se observa el sistema radical de una estaquilla micorrizado
por la especie Rhizopogon roseolus, que forma abundantes estructuras dicotómicas simples o
coraloides. A la derecha aparecen, con mas detalle, un ejemplo típico de micorriza dicotómica
(parte superior) y de los gruesos rizomorfos (parte inferior) desarrollados por esta especie fúngica.
53
Figura 32. Ejemplo de la raíz, libre de sustrato, micorrizada por la especie fúngica Rhizopogon
roseolus. Las flechas señalan algunas de estructuras dicotómicas o coraloides formadas por las
micorrizas, en las que se aprecia el manto de hifas, de color blanquecino que rodea a la raíz.
54
Valoración del efecto de la utilización de la poda química en la
propagación vegetativa mediante estaquillado
En planta producida en contenedor, a partir de semilla, hemos encontrado que, al
finalizar la fase de vivero, la arquitectura radical es muy diferente, dependiendo de la
presencia o no de cobre en la pared del alveolo, incrementándose el efecto positivo a
medida que aumenta la concentración de cobre aplicada (Cabal et al., 2005). Con
concentraciones de cobre al 6% se han obtenido arquitecturas de aspecto similar a una
raspa de pescado, estructura que se considera la mas adecuada para evitar futuras
deformaciones del sistema radical en el desarrollo de la planta en campo, que puedan
perjudicar la estabilidad del árbol.
La utilización de esta técnica en la producción de pino insignis mediante
estaquillado ha producido resultados muy variables, no habiendose encontrado
resultados tan claros como los obtenidos en la mejora del sistema radical de planta
producida en contenedor a partir de semilla.
La presencia de una capa de cobre que cubre los alveolos de una bandeja da
lugar a la inhibición de la división celular en el ápice de la raíz, por lo que, al contactar
las raíces con esa barrera química, cesan en su crecimiento y se suberizan, generándose
nuevas raíces laterales que sucesivamente se van repicando al alcanzar la pared del
contenedor, formando un sistema radical mas fibroso y ramificado que se distribuye por
todo el contenedor.
El compuesto químico utilizado para el repicado debe inhibir el crecimiento
radical de ápices a nivel de pared y permanecer en la zona de aplicación durante el
crecimiento de la planta en el envase, pero no debe intervenir en el crecimiento o tener
efectos tóxicos sobre la planta. En este sentido, no hemos encontrado indicios que
indiquen que la aplicación de cobre haya resultado ser tóxica para la planta.
55
Lo que si se ha encontrado ha sido que, en general, la respuesta al tratamiento
con cobre ha sido efectiva en el caso de algunas familias, mientras que ha sido
indiferente para otras.
En cuanto a la tasa de enraizamiento de las diferentes familias, representada en
la Figura 33, se observa que existen diferencias tanto entre familias, como entre
tratamientos de cobre dentro de una misma familia.
Figura 33. Tasa de enraizamiento de las estaquillas de las diferentes familias, transcurridos 7 meses
desde el inicio del estaquillado, que han crecido en contenedores Arnabat, con alveolos de paredes
cerradas a los que se ha aplicado diferentes concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9%
(C3).
0
20
40
60
80
100
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Porc
enta
je d
e e
nra
izam
iento
Fam 7 Fam 15 Fam 18
0
20
40
60
80
100
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Porc
enta
je d
e e
nra
izam
iento
Fam 24 Fam 26 Fam 73
56
En primer lugar, si no tenemos en cuenta los tratamientos con cobre, cabe
destacar que si comparamos las tasas de enraizamiento obtenidas en el diseño en el que
únicamente se comparaban las diferentes familias con las obtenidas en este diseño
experimental, se puede observar que se han producido algunas diferencias en los
valores. Se puede decir que, en general, se ha obtenido una tasa de enraizamiento
mayor en este segundo caso. Unicamente la Familia 24 presenta en ambos casos una
tasa de aproximadamente un 20% de enraizamiento. La Familia 18 es la única en la que
ha bajado el porcentaje de enraizamiento (de un 50 a un 30%). El resto de Familias
presenta un incremento que varía entre el obtenido para las Familias 15 y 26, que suben
de un 55 a un 65 %, y el obtenido para las Familias 7 y 73, que es el que mas ha
aumentado, pasando de un 42 % a un 64 % aproximadamente.
De la mezcla de familias L31/L34 no se dispone de datos debido a que la falta de
material de partida impidió incluir esta familia en el ensayo diseñado para evaluar el
efecto del repicado químico de las raíces.
Considerando los tratamientos de cobre, vemos que las respuestas son muy
diferentes, lo que impide obtener un patrón de respuesta ante el posible efecto de la
poda química.
En el caso de las Familias 7 y 73, la tasa de enraizamiento desciende con
respecto al Control (sin cobre), incrementándose el porcentaje a medida que aumenta la
cantidad de cobre aplicada, igualándose con la tasa control en el tratamiento con un 9%
de cobre (C3). En las Familias 15, 24 y 26, también desciende el porcentaje con
respecto al control, y se igualan las tasas con dicho control en alguno de los
tratamientos, pero, a diferencia de las dos familias anteriores, no se observa ninguna
relación con la concentración de cobre aplicada.
La Familia 18, se destaca de todas las demás por ser la única en la que los
tratamientos con cobre presentan una tasa de enraizamiento significativamente mayor
que la obtenida con el tratamiento control.
La altura y el diámetro si presenta diferencias entre tratamientos en algunos
casos, pero dichas diferencias no llegan, en general, a ser significativas (Fig. 34).
57
Al analizar todos los resultados en conjunto, parece que las diferencias
encontradas en el crecimiento no estan relacionadas con el tratamiento de cobre
aplicado, y si que lo estan con la variabilidad que presenta el crecimiento de las
plantas producidas de forma vegetativa.
Figura 34. Altura y diámetro de las estaquillas de primer y segundo orden, de las diferentes familias,
transcurridos 7 meses desde el inicio del estaquillado, que han crecido en contenedores Arnabat, con
alveolos de paredes cerradas a los que se ha aplicado diferentes concentraciones de cobre: 0% (C0), 3%
(C1), 6% (C2) y 9% (C3).
Altura Diametro
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro
(mm)
Familia 7
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro
(mm)
Familia 15
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro
(mm)
Familia 18
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Diámetro
(mm)
Familia 26
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
2
4
6
8
10
Diámetro
(mm)
Familia 24
0
5
10
15
20
25
30
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Altura (cm)
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Diámetro
(mm)
Familia 73
1er orden 1er orden 2º orden 2º orden
58
La heterogeneidad es aún mayor en el caso de las estaquillas de segundo orden.
Los resultados muestran, nuevamente, que el crecimiento de la estaquilla procedente de
la parte apical de la vareta cortada del seto madre crece mas y mejor que la obtenida a
partir de segmentos inferiores. Además, el crecimiento es mucho mas errático, la forma
de la parte aérea es muy irregular y, frecuentemente, carece de dominancia apical, lo
que hace que el error estándar de las medias sea muy alto. Todo ello, dificulta en gran
medida la obtención de resultados concluyentes.
Si consideramos únicamente las estaquillas de primer orden, observamos que en
las Familias 7, 24 y 73 el tratamiento con cobre no produce cambios en el crecimiento
en altura. En el caso de la Familia 15, aunque el tratamiento con un 6% de cobre
produce plantas de menor altura, la ausencia de diferencias en el resto de tratamientos y
el elevado valor del error de todas las medias nos hace considerar que tampoco en esta
familia se ve afectado el crecimiento por la aplicación de cobre. En las Familias 18 y 26,
si parece observarse un descenso en la altura de las estaquillas en función del
tratamiento de cobre aplicado, aunque el error en todos los casos, también es muy
elevado, a mayor cantidad de cobre en las paredes, menor altura.
Si nos fijamos en la producción de biomasa, los resultados confirman lo
observado en el caso de la altura, salvo contadas excepciones, la aplicación de cobre no
afecta el peso seco conseguido por las plantas, no encontrándose diferencias ni en raíz,
ni en parte aérea (Fig. 35).
Las estaquillas de segundo orden presentan un desarrollo radical muy similar;
por el contrario, la parte aérea tiene un desarrollo muy variable, que en ningun caso
parece verse afectado por el cobre aplicado.
La estaquillas de primer orden, con una producción de acículas
significativamente mayor que la desarrollada por las estaquillas de segundo orden,
confirman que, salvo para la Familia 18, ninguna de las concentraciones de cobre
aplicadas ha afectado el crecimiento de las plantas. En esta Familia 18, las
concentracions de 6 y 9% de cobre sí que presentan un descenso significativo del peso
seco de la planta, evidente tanto a nivel de raíz como de parte aérea.
59
Figura 35. Biomasa, expresada en peso seco, de la raíz y de la parte aérea de las estaquillas, de primer y
segundo orden, de las diferentes familias, a los 7 meses desde el inicio del estaquillado, que han crecido
en contenedores Arnabat, con alveolos de paredes cerradas a los que se ha aplicado diferentes
concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9% (C3).
Parte aérea Raíz
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Familia 7
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Familia 15
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Familia 18
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Famila 24
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Familia 26
0
1
2
3
4
5
6
7
C0 C1 C2 C3 C0 C1 C2 C3
Peso seco (g)
Familia 73
1er orden 1
er orden 2º orden 2º orden
60
El hecho de que no se hayan encontrado diferencias a nivel de peso seco de raíz
sugiere que la poda química no ha tenido el efecto deseado, aunque es muy probable
que esto se deba a que el tiempo transcurrido no ha producido un desarrollo radical
suficiente como para que el contacto entre el sistema radical y las paredes del
contenedor haya sido significativo. Es probable que sea necesario que transcurra mas
tiempo para que la raíz ocupe el taco por completo, y, de este modo, sí puedan
observarse los beneficios del repicado químico.
El sistema radical de las estaquillas de primer orden se ha dividido en tres clases,
diferenciadas en función del diámetro medio de las raíces. Los resultados así obtenidos
parecen evidenciar la existencia de algunas diferencias a nivel de arquitectura radical.
Sin embargo, no son suficientes para considerar que la utilización de cobre para
favorecer el repicado de las raíces haya sido realmente efectiva.
La longitud acumulada de raíz muestra la existencia de diferencias en relación
con la concentración de cobre aplicada en tres de las seis Familias estudiadas (Fig. 36).
En las Familias 18 y 26 se observa un progresivo descenso de la longitud de raíces a
medida que aumenta la cantidad de cobre aplicada. En la Familia 24, también se observa
un descenso significativo de la longitud, aunque solo se produce con la concentración
mas alta de cobre. Por el contrario, en las Familias 7 y 15 no se han encontrado
diferencias significativas con respecto a la no aplicación de cobre. El caso de la Familia
73 resulta llamativo ya que si parece observarse cierto efecto, pero es el contrario del
comentado anteriormente, la longitud acumulada es mayor en los tratamientos en los
que se ha aplicado un 6 y un 9% de cobre.
Por otra parte, se observan dos grupos diferenciados. En el caso de las Familias
7, 15 y 18, la mayor longitud la acumulan las raíces de Clase II, con diferencias
significativas respecto a la acumulada por las raíces de Clase I. Por el contrario, en el
caso de las Familias 24, 26 y 73, son las raíces de Clase I las que acumulan la mayor
longitud, claramente superior a la presentada por las raíces de Clase II.
De entre todas las familias, destaca claramente la Familia 73, ya que la longitud
acumulada total se debe principalmente a la proporcionada por las raíces de menor
diámetro (Clase I).
61
Figura 36. Longitud acumulada de raíces de las estaquillas de diferentes familias, que han crecido en
contenedores Arnabat, con alveolos de paredes cerradas a los que se ha aplicado diferentes
concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9% (C3). Clases consideradas: Clase I (raíces
con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con un diámetro entre 0,5 y 1,5 mm) y Clase III
(raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
La superficie ocupada por el sistema radical mantiene las diferencias
comentadas anteriormente, en cuanto al posible efecto de la aplicación de cobre (Fig.
37). No se observa efecto en el caso de las Familias 7 y 15, se observa un descenso
gradual de la superficie radical a medida que aumenta la dosis de cobre aplicada en las
Familias 18, 26 y 24, y, en el caso de la Familia 73 los tratamientos con un 6 y un 9%
de cobre reflejan un mayor desarrollo en superficie.
Clase I Clase II Clase III
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Longitu
d raíz (cm) Familia 18
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Longitu
d raíz (cm) Familia 7
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Longitu
d raíz (cm) Familia 26
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 15
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 24
0
75
150
225
300
375
450
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 73
62
Figura 37. Superficie desarrollada por las raíces de las estaquillas de diferentes familias, que han crecido
en contenedores Arnabat, con alveolos de paredes cerradas a los que se ha aplicado diferentes
concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9% (C3). Clases consideradas: Clase I (raíces
con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con un diámetro entre 0,5 y 1,5 mm) y Clase III
(raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
En este caso, son las raíces de Clase II las que, en todas las familias,
proporcionan la mayor superficie, seguidas, muy de cerca, por las raíces de Clase III.
Las raíces de Clase I se mantienen en un valor muy próximo a 25 cm2, para todas las
familias y para todos los tratamientos.
Clase I Clase II Clase III
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Superficie raíz (cm2) Familia 7
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Superficie raíz (cm2)
Familia 18
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Superficie raíz (cm2) Familia 26
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 15
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 24
0
25
50
75
100
125
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 73
63
Si en el caso de la longitud acumulada es la Familia 73 la que destaca, en
superficie presenta una distribución similar a la de las demás familias, y es la Familia 15
la que se diferencia claramente del resto. En esta familia son las raíces de Clase II las
que proporcionan la mayor parte de la superficie, las de Clase I, se mantienen en los
valores bajos que aparecen en todas las familias, y las raíces de Clase III son las que
marcan la principal diferencia, ya que proporcionan una superficie muy pequeña,
inferior a los 5 cm2 en los cuatro tratamientos.
Otro de los parámetros más interesantes desde el punto de vista de la
funcionalidad de la raíz es el número de puntas que se pueden diferenciar en el sistema
radical de la estaquilla (Fig. 38). En este caso, las Familias 7 y 15 no presentan
diferencias entre tratamientos. En las Familias 24 y 26, el aumento de la dosis de cobre
aplicada refleja una disminución en el número de puntas de raíz. Por el contrario, en el
caso de la Familia 73, son los tratamientos con las dosis mas altas los que presentan un
número de puntas significativamente superior. La Familia 18 se destaca de todas las
demás por presentar un descenso en el número de raíces al aplicar cobre, excepto
cuando la concentración es la mas alta, ya que este tratamiento incrementa
significativamente el número de puntas.
Por último, en la Figura 39, se han representado los porcentajes de cada uno de
los tres tipos de raíz que se han considerado para caracterizar la calidad del sistema
radical, en función del grado de ramificación y de la aparición o no de deformaciones.
Al igual que en todos los parámetros comentados anteriormente, se observa una
gran variabilidad, con resultados muy diferentes para cada familia.
Teniendo en cuenta que el tipo T1 (sin deformaciones y con ramificación
abundante) es el considerado de mayor calidad, y el tipo 3 el peor (raíces con
deformaciones), de entre todas las familias destaca, en negativo, la Familia 7. En esta
familia se han encontrado los porcentajes de plantas con deformaciones radicales más
altos, superiores al 30%, valor que casi iguala al porcentaje de plantas con un sistema
radical bien ramificado y sin deformaciones (inferior al 50%). En esta Familia 7, así
como en la Familias 26, la aplicación de cobre no ha producido ninguna reducción en la
aparición de deformaciones en las nuevas raíces.
64
Figura 38. Número de puntas de raíz que aparecen en las estaquillas de las diferentes familias, crecidas
en contenedores Arnabat, con alveolos de paredes cerradas a los que se ha aplicado diferentes
concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9% (C3). Clases consideradas: Clase I (raíces
con un diámetro inferior a 0,5 mm), Clase II (raíces con un diámetro entre 0,5 y 1,5 mm) y Clase III
(raíces con un diámetro mayor de 1,5 mm).
Clase I Clase II Clase III
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Número puntas raíz Familia 7
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Número puntas raíz
Familia 18
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Número puntas raíz
Familia 26
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 15
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 24
0
300
600
900
1200
1500
Cu 0 Cu 1 Cu2 Cu 3
Familia 73
65
En la Familia 24, aunque aparecen plantas con deformaciones incluso con el
tratamiento con la concentración mas alta de cobre, si que parece observarse un
aumento en el porcentaje de estaquillas con un buen grado de ramificación del sistema
radical. Algo similar ocurre con la Familia 18, en la que sí que disminuye el porcentaje
de raíces con deformaciones, aunque en este caso el grado de ramificación del sistema
radical no es tan bueno como en la Familia 24.
En el caso de las Familias 15 y 73 se observa una respuesta positiva, y muy
similar, al tratamiento con cobre. La aplicación de la dosis mas baja de cobre ya
produce un claro descenso en el porcentaje de plantas con deformaciones en las raíces,
siendo, a este nivel, la Familia 15 la que presenta los mejores sistemas radicales. Los
tratamientos con las aplicaciones de cobre mas altas, un 6% y un 9% de cobre, son los
que muestran la ausencia de estaquillas con deformaciones en las raíces. Además,
presentan un grado de ramificación de las raíces muy bueno, ya que las raíces de tipo 1
las presentan cerca de un 80 % de las plantas en el caso de la Familia 15, y en la Familia
73 el 100% de las estaquillas han desarrollado este sistema radical considerado como el
de mayor calidad.
66
Figura 39. Porcentaje de estaquillas, para cada familia a la que se ha aplicado diferentes
concentraciones de cobre: 0% (C0), 3% (C1), 6% (C2) y 9% (C3), que han presentado cada uno
de los tipos de raíz seleccionados para evaluar la calidad del sistema radical, representados en
color azul oscuro el Tipo 1 (sin deformaciones y ramificación abundante), en color azul claro
el Tipo 2, (sin deformaciones y ramificación pobre), y en color blanco el Tipo 3 (con
deformaciones).
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Portcentaje
Familia 7
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Porcentaje
Familia 18
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Porcentaje
Familia 26
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Familia 15
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Familia 24
0
20
40
60
80
100
Cu 0 Cu 1 Cu 2 Cu3
Familia 73
T1 T2 T3
67
Instalación de los test clonales y de los nuevos setos madre
Una vez finalizada la fase de caracterización de la planta (Fig. 40) se llevó a
cabo, en cada uno de los viveros, una revisión de todos los tratamientos con el fin de
eliminar las estaquillas defectuosas, así como las que presentaban síntomas evidentes de
deficiencia nutricional o de enfermedad, dejando unicamente aquellas estaquillas cuya
calidad se consideró aceptable.
Figura 40. Vista general de la estaquillas enraizadas, al finalizar la fase de caracterización. En la parte
superior aparecen las estaquillas obtenidas en el vivero de Urnieta, y, en la parte inferior, las estaquillas
obtenidas en el vivero de Gordexola.
68
Estas estaquillas se reagruparon y se transladaron al vivero El Garmo (Basalan,
Diputación Foral de Bizkaia), donde se mantuvieron hasta el momento de su transplante
a campo (Fig 41).
Figura 41. Vista general de las estaquillas en el momento de salir del vivero para su transplante a campo.
69
El número de plantas obtenidas permitió realizar un diseño de bloques al azar, en
el que cada bloque esta formado por 25 plantas y consta de varias repeticiones, excepto
en el caso de la Familia 24. El bajo número de plantas de calidad de esta familia
disponibles al final del ensayo impedía la realización de repeticiones en la parcela
experimental, por lo que se decidió utilizar las plantas existentes de esta familia para la
instalación de pies madre.
El transplante se llevo a cabo el 15 de Marzo de 2006, en una parcela situada en
La Garbea, cerca de La Herbosa (Zalla, Bizkaia). Las situación de los diferentes
tratamientos en la parcela aparece representada en la Figura 42.
El seguimiento del crecimiento de las plantas en campo permitirá conocer el
desarrollo de las diferentes familias así como su respuesta ante las variables condiciones
medioambientales que sufre una planta en condiciones naturales.
Por otra parte, nos planteamos establecer nuevos setos madre con el fin de
estudiar su viabilidad como fuente de nuevas estaquillas y poder compararlos con los
setos establecidos a partir de planta de las mismas familias, pero procedente de semilla
de los huertos semillero.
18 plantas de cada una de las familias caracterizadas en este trabajo se han
transplantado a una parcela de terreno (Fig. 43), de forma que cada una de las líneas de
plantación corresponde a una de las familias, realizándose la asignación de líneas al
azar. De izquierda a derecha, y de abajo hacia arriba, las líneas de plantación
corresponden a las Familias: mezcla L31/L34, 34, 15, 18, 73, 7, 26 y 24.
Con los pies madres instalados en campo se tiene una producción de estacas muy
estacional y, en caso de pérdida, los pies madres son difíciles de sustituir por otros. Por
ello, también se han instalado pies madre en macetas, con la intención de poder
mantener, en caso necesario, una producción de brotes más estables en el tiempo y una
fácil sustitución en caso de pérdidas.
70
Figura 42. Esquema de la distribución de los bloques experimentales de la plantación realizada en la
parcela de La Garbea el 15 de Marzo de 2006.
71
Figura 43. En la parte superior, vista general de los setos madre de las 8 familias (7, 15, 18, 24, 26, 34,
73 y la mezcla L31/L34) instalados en Marzo de 2006. En la parte inferior, aspecto ofrecido por las
estaquillas una vez transplantadas a campo.
72
Para la instalación de pies madre en macetas se han utilizado 10 plantas de cada
familia. El sustrato base es una mezcla de turba rubia-turba negra en proporción 80:20
(v/v) y como soporte se han seleccionado macetas de dos volúmenes diferentes, de
modo que, para cada familia, se han transplantado 5 estaquillas a macetas de 2 Litros y
otras 5, a macetas de 20 Litros (Fig. 44). Una vez transplantadas, las estaquillas siguen
su crecimiento en el vivero, bajo cubierta, pero en un invernadero de paredes abiertas,
por lo que están sometidas a las variaciones de la temperatura ambiental que se
produzcan a lo largo del año.
Figura 44. Aspecto general de las estaquillas una vez transplantadas a macetas de 2 Litros y de 20 Litros.
Como puede verse en las imágenes, las variaciones encontradas en el crecimiento y el porte de las
diferentes familias queda patente en el aspecto de la estaquilla una vez instalada en la maceta.
Familia 15
Familia 24
Familia 26
73
CONCLUSIONES
A la vista de los resultados, consideramos que es factible llevar a cabo con éxito
un programa masivo de propagación clonal de Pinus radiata con estacas de las Familias
7, 15, 18, 24, 26, 34 y la mezcla de Familias L31-L34, ya que todas ellas son capaces
de desarrollar raíces adventicias cuando son propagadas de forma vegetativa.
En todas las familias estudiadas, la capacidad de enraizado de las estacas
disminuye drásticamente en dirección basípeta del rebrote. Las estacas apicales
presentan mayor capacidad de enraizado con un mayor número y tamaño de las raíces y
brotes que las estacas basales. Esto indica que las estacas apicales tuvieron mayor
velocidad de enraizado, característica importante en un programa operativo de
propagación vegetativa, porque reduce los tiempos de producción del material clonal en
el vivero.
De entre todas las familias estudiadas, cabe destacar a la mezcla de Familias
L31/L34 porque, a pesar de que su crecimiento en parte aérea es algo inferior a la media
de todas las familias, presenta una capacidad de enraizamiento muy elevada (superior al
80%), así como características positivamente destacables a nivel de arquitectura radical.
Las Familias 15 y 26 también se destacan positivamente de las demás por
presentar un porcentaje de enraizamiento superior al 60 %, un buen crecimiento tanto en
altura como en biomasa y un sistema radical con buenas características, superiores a la
media.
La inoculación con cepas fúngicas seleccionadas pone de manifiesto que es
posible producir estaquillas micorrizadas con los hongos Rhizopogon roseolus,
Rhizopogon luteolus y Scleroderma citrinum, si bien consideramos que es necesario
ajustar mejor el momento de la inoculación, con el fin de conseguir un nivel de
micorrización más elevado.
74
La micorrización no afecta al nivel de enraizamiento conseguido, debido
probablemente a que la familia utilizada para este estudio (mezcla L31/L34), presenta
una muy elevada capacidad de enraizamiento lo que impide poner de manifiesto la
ventaja de la micorrización, que siempre es mas efectiva y evidente cuanto mas
desfavorables son las condiciones de partida.
Lo que sí que se observa es un claro efecto positivo de la micorrización en el
crecimiento de las estaquillas, que son mas altas y de mayor porte que las que no han
sido inoculadas, así como en el desarrollo radical, que presenta una mayor longitud y
superficie, y un número mas elevado de raíces cortas. Estos parámetros evidencian una
mejora en la absorción de agua y nutrientes por parte de estas raíces, lo que tendrá
implicaciones muy positivas en el futuro desarrollo de la planta en condiciones de
campo.
La utilización de la poda química en la producción vegetativa de Pinus radiata
no presenta beneficios tan evidentes como los obtenidos en la producción de esta
especie arbórea a partir de semilla. La aplicación de cobre a las paredes de los alveolos
no ha resultado tóxico para las estaquillas, no habiéndose encontrado ningún efecto a
nivel fisiológico que evidencie la existencia de estrés por cobre.
La respuesta al tratamiento con cobre ha sido efectiva en el caso de algunas
familias, mientras que ha sido indiferente para otras. No parece tener efecto para la
Familia 7 ni para la Familia 15. Sin embargo, sí que lo tiene en las demás Familias,
aunque las respuestas encontradas son diferentes dependiendo de la Familia. En las
Familias 18, 26 y 24, se observa un descenso gradual de la superficie y del número de
puntas de raíz a medida que aumenta la concentración de cobre. Por el contrario, en la
Familia 73, la aplicación de cobre incrementa el desarrollo radical, con un mayor
número de puntas y una mayor superficie.
75
Probablemente, la ausencia de efectos mayores o mas evidentes de los esperados
a nivel de arquitectura radical se deba a que, en el momento de la caracterización de las
plantas el desarrollo radical no era lo suficientemente elevado como para que las raíces
ocuparan todo el espacio disponible en el alveolo. Es probable que la valoración del
efecto de la poda química hubiera proporcionado resultados más clarificadores de
harberse realizado unos meses más tarde.
De todos modos, a pesar de la juventud de los sistemas radicales, la aplicación
de cobre a las paredes de los alveolos ha conducido a la desaparición de sistemas
radicales con deformaciones en las Familias 15, 18 y 73, lo cual es un resultado muy
importante, ya que tiene implicaciones muy positivas para el desarrollo de la estaquilla
en relación con los problemas de estabilidad que afectan a las plantaciones de Pinus
radiata durante los primeros años de desarrollo en campo.
76
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