UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

LARINGOTRAQUEITIS INFECCIOSA AVIAR

• Iván González

• AMBATO – ECUADOR

DEFINICIÓN

La laringotraqueitis infecciosa

aviar (VLTI) es una enfermedad

respiratoria aguda, altamente

contagiosa que afecta a pollos de

todas las edades; puede resultar

en pérdidas graves en la

productividad debida a la

mortalidad y menor producción

de huevos en gallinas.

SINÓNIMOS, HISTORIA

SINÓNIMOS

Descrita como:

a) Laringotraqueítis

b) Laringotraqueítis infecciosa

c) Difteria aviar (error)

d) Bronquitis infecciosa (error)

HISTORIA

Esta enfermedad fue descrita por vez primera en 1925, existen reportes de que pudo haber existido antes de este año.

En 1930 se utilizó el término laringotraqueitis y en 1931 se adoptó la denominación de laringotraqueitis infecciosa por el Comité Especial de Enfermedades de Aves de la Asociación Médico Veterinaria Norte Americana.

HISTORIA

1934, Brandly y Bushnell idearon

un método para la inmunización

de pollos basada en la aplicación

de virus virulento a la cloaca;

siendo laringotraqueitis la

primera enfermedad viral de

importancia para la que se

desarrollo una vacuna efectiva.

Está considerada dentro de las Enfermedades de

Declaración Obligatoria por la Organización

Mundial de Sanidad Animal (OIE, 2005).

Situación de la enfermedad:

HISTORIA EN ECUADOR

La investigación realizada por la Universidad San Francisco de Quito - USFQ, como proyecto de postgrado. (marzo 2011 - marzo 2012).

Las muestras fueron recolectadas de granjas ubicadas en 7 provincias del país, resultando aves positivas en granjas ubicadas en las provincias de: Cotopaxi, Tungurahua y La Concordia. 3 focos positivos VLTI, bajo PCR (reacción en cadena de la polimerasa).

HISTORIA EN PERÚ

El problema fue reportado inicialmente en

granjas de Chincha en Perú, principalmente en

postura comercial con mortalidades que llegaron

hasta un 20- 23%, luego en Lima en aves de pelea

y crianzas de pollos de carne. (CEVA, 2009).

Situación de la enfermedad:

Presente en Uruguay

desde 1956.

Diagnosticada en Brasil

recién en 2.002

OCURRENCIA Y RELEVANCIA ECONÓMICA

LT con resultados: crecimiento conversión alimenticia bajo el rango con elevada mortalidad en Broiler.

Laringotraqueitis se distribuye en todo el mundo, pero es con frecuencia regional en prevalencia o incidencia estacional.

Disminución de la producción de huevos se produce tras la exposición de los lotes maduros susceptibles.

OCURRENCIA Y RELEVANCIA ECONÓMICA

Las cepas LT son de moderadas a fuertes con resultados con mayor morbilidad y la mortalidad en gallinas y pollos con una pérdidas de hasta 50%, la misma que es concurrente con el estrés ambiental y otras infecciones.

Disminución de la producción de huevos se produce tras la exposición de los lotes maduros susceptibles.

ETIOLOGÍA

AGENTE ETIOLÓGICO

El agente causal de la laringotraqueítis es un virus

ADN con envoltura.

Familia: Herpesviridae

Subfamilia: Alphaherpesvirindae

Género: Varicellovirus

Especie:Gallid herpesvirus 1

Sólo hay un tipo antigénico y éste

afecta únicamente al aparato

respiratorio de las aves con

virulencia variable entre cepas.

-Los herpesvirus son frágiles a las condiciones medio ambientales.

-El virus se inactiva por el calor cuando está expuesto a 55º C por 15 min. o 38º C por 72 horas.

CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO

CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO

-El VLT se inactiva en menos de 1 min. con soluciones de cresol al 3% o por acción de una solución de soda cáustica (NaOH) al 1%.

El precalentamiento de los galpones por 3

días a 37,8º C, disminuye la carga viral o la

inactivación del virus.

Las superficies pueden ser fácilmente

descontaminadas con los desinfectantes iodóforos o

las mezclas de halógenos y detergentes.

La inactivación completa

de la contagiosidad del

VLT fue obtenida con

peróxido de hidrógeno al

5%.

CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE ETIOLÓGICO

ESPECIES SUSCEPTIBLES

Los pollos son los huéspedes naturales primarios afectados. Aunque la enfermedad afecta todas las edades, los signos más característicos se observan en aves adultas. Puede afectar a los faisanes, las perdices y los pavos.

El virus de LTV, no

causa infección en

humanos.

PATOGENIA

PATOGENIA

Se debe tener en cuenta que la excreción viral ocurre

uno a dos días antes de la aparición de los signos

clínicos.

El período de

incubación de la VLTI

es generalmente de

6 a 12 días.

PATOGENIA

TRANSMISIÓN

El virus ingresa al organismo a través de la vía respiratoria ó a través de la conjuntiva y se encuentra principalmente en la tráquea y exudados de las vías aéreas superiores.

La infección se transmite por contacto directo con

exudados respiratorios expectorados o aerosoles.

TRANSMISIÓN

Las aves también pueden infectarse a través del personal, los visitantes y los equipos contaminados; los perros, las ratas y los pájaros también pueden actuar como vectores mecánicos.

REPLICACIÓN Y LATENCIA

La replicación activa del VLT ocurre en la tráquea durante la primera semana posterior a la infección.

La eliminación viral es máxima

durante los 7 a 10 días

posteriores a la aparición de

los primeros signos clínicos.

REPLICACIÓN Y LATENCIA

A partir del fin de la excreción viral activa, se establece una fase de infección latente en el tejido nervioso, particularmente por invasión del virus al ganglio trigémino, y la tráquea.

Nervio trigemino

Replicación Viral

1. Fijación a receptores de la célula

2. Fusión de envoltura con membrana del huésped

3. Nucleocápside pasa al citoplasma de allí

transportada a membrana nuclear

4. DNA liberado rige la actividad del núcleo

5. Transcripción y replicación

REPLICACIÓN Y LATENCIA

°°Demostrado por re-aislamiento del virus a partir de la séptima semana después de la infección mediante hisopados traqueales repetidos, y a dos meses después de la infección a partir de cultivos de tráquea.

La infección latente es el mecanismo de subsistencia donde el virus evade la respuesta inmune del huésped y persiste en las parvadas o lotes.

REACTIVACIÓN DE INFECCIONES LATENTES

El estado de latencia del virus es por lo tanto de gran importancia epidemiológica.

Aunque las aves que sobreviven a la enfermedad son inmunes, desafortunadamente son portadoras sanas y pueden permanecer infectivas hasta por dos años y continuar excretando el virus en forma intermitente.

RESPUESTA INMUNE

La respuesta por anticuerpos neutralizantes del virus se detecta en suero dentro de los 5 a 7 días posteriores a la infección. Esta respuesta inmune se mantiene en bajos niveles por un año o más

Los anticuerpos maternales para la LTI no protegen a la descendencia contra la infección ni interfieren con la vacunación

SÍNTOMAS Y LESIONES

CUADRO CLÍNICO

• Cuadro agudo, con elevada morbilidad (90%) y letalidad del 10-20-70% (muy variable).

• Disnea, jadeos y tos (expectoración de sangre).

• Secreción nasal, conjuntivitis, cianosis de la cabeza.

• Muerte a los pocos días por asfixia o recuperación en 2-3 semanas.

• Caída de la puesta transitoria, recuperación a valores normales sin pérdida de calidad..

• Virulencia alta

CUADRO CLÍNICO • Virulencia alta

CUADRO CLÍNICO

• Cuadro leve, con baja morbilidad y letalidad (2-5%).

• Complicaciones bacterianas

Signos respiratorios de menor intensidad: conjuntivitis

exudado nasal

edema de párpados

ruidos respiratorios y sacudidas de cabeza

Disminución de la producción de huevos sin pérdida de la calidad.

• Virulencia media o baja

LESIONES

• Edema sinusal.

• Inflamación mucopurulenta de laringe y tráquea con hemorragias, necrosis y formación de membranas difteroides.

• Coágulos sanguíneos en tráquea en fases terminales (hallazgo significativo).

• No suelen estar afectados pulmones ni sacos aéreos.

LESIONES Microscópicamente:

cuerpos de inclusión IN en

células epiteliales en los

primeros días y descamación

posterior del epitelio

necrótico.

•Regeneración total del epitelio hacia los 10-12 días de la infección.

Ojos almendrados o

achinados

Edema facial:

Secreción ocular:

Congestión en tráquea:

Disnea con extensión del cuello

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

Traqueítis hemorrágica, taponamientos caseosos

DIAGNÓSTICO

TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO

a) Aislamiento del virus

b) Microscopía electrónica

c) Immunofluorescencia

d) Inmunodifusión en gel de agar

e) Enzimoinmunoensayo

f) Histopatología

g) Métodos moleculares a) Protocolo de la PCR

b) PCR en tiempo real

c) Polimorfismo de longitud de los fragmentos de restricción (RFLP)

Identificación del agente

TÉCNICAS DE DIAGNÓSTICO

a) Neutralización vírica

b) Inmunodifusión en gel de agar

c) Prueba de inmunofluorescencia indirecta

d) Enzymoinmunoensayo

Pruebas serológicas

DIAGNÓSTICO

En epizootias de la forma aguda o típica:

observa la alta letalidad, los síntomas

respiratorios (disnea inspiratoria y

traqueítis hemorrágica).

El diagnóstico presuntivo de

campo es correcto con un %

elevado de los casos.

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL

Además su característica principal

es la descamación de células

traqueales que producen zonas

hemorrágicas.

Es un herpes virus se caracterizan por su alta

sensibilidad a los desinfectantes, pueden establecer

infecciones latentes porque periódicamente el virus

puede reactivarse y ser diseminado.

DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL

• Coriza Infecciosa: Presencia de moco en fosas nasales, laringe y parte superior de tráquea (moco sanguinolento ausente).

• Influencia Aviar/ Bronquitis infecciosa /New Castle: Presencia de tráqueas congestionadas sin formación de pseudomembranas.

• Viruela Aviar: Presencia de pústulas en cavidad oral y esófago. Presencia de corpúsculos de inclusión intracitoplasmáticos

CLASIFICACIÓN DE

VACUNAS

VACUNAS : VIVAS ATENUADAS

• Seguras

• Eficaces

• Aplicación por vía ocular

• No son efectivas en agua o spray

• Se pueden usar en broiler ( laboriosas), reproductoras y

ponedoras

• Mínima tasa o ausencia tasa de transmisión

ORIGINADAS EN TEJIDO (TCO):

VACUNAS : VIVAS ATENUADAS

• Efectivas para controlar brotes

• Revierten a la virulencia

• Producen infecciones latentes

• Altamente transmisibles

• Usadas en broiler ( 12-14 días)

• Se pueden usar vía agua de bebida

EMBRION DE POLLO (CEO)

VACUNA VECTORIZADA

• No revierte a virulenta

• Inocua

• Evita la diseminación y

latencia en el ave del virus

de campo y vacunal

• Adecuada duración de

inmunidad

VACUNAS POR VECTORES

Puntos a favor

Inocuidad.

No hay reversión a la virulencia.

No hay diseminación del virus.

No hay reacción vacunal.

Se replican en el huésped (bajas dosis)

Proteínas son procesadas en el huésped, por lo tanto las proteínas están en la forma correcta para ser protectoras.

Eficacia y protección contra los agentes en la vacuna.

Adecuada duración de la inmunidad.

Puntos en contra

•Anticuerpos maternos a

los genes insertados o a

los vectores pueden

inhibir el crecimiento del

vector. •Pruebas de inocuidad toman

mas tiempo (USDA)

•Pruebas disponibles actualmente para evaluar la respuesta inmune pueden no detectar anticuerpos a la vacuna.

APLICACIÓN DE VACUNAS

TIPOS DE VACUNACIÓN

Según el tipo de producción:

Ponedoras: de origen de embrión de

pollo (CEO),

Pollos: de origen de cultivo de tejido

(TCO),

SPF: libres de agentes patogénicos específicos.

COFAL: células de cultivo primario de fibroblasto de

embriones.

Según el lugar de aplicación:

Vacuna recombinante en la

incubadora,

Vacuna viva atenuada en el

campo.

Según el numero de ave:

Vacunación masiva (agua, aerosol, en huevo),

Vacunas individuales (gotas en los ojos, gotas nasales, cepillado de la cloaca, subcutánea, intramuscular).

TIPOS DE VACUNACIÓN

Vacunación en huevo:

Se utiliza 500 ml de diluyente/10.000 dosis de vacuna

para administrar una dosis de| 0,05 ml por huevo.

PUNCIÓN ALAR:

Insertar el aplicador

en el pliegue del ala

evitando las plumas,

músculo, hueso y

vasos sanguíneos (0.01

mL dosis/ave).

PUNCIÓN ALAR

Con doble aplicador:

-Pegar 2 lancetas

-Aumentar la cantidad de diluyente: 1000 dosis=10ml de diluyente, doble lanceta incrementar el diluyente en un 50% = 15ml para 1000 dosis de vacuna

PUNCIÓN ALAR

PUNCIÓN ALAR

Perdido o no vacunado= sin nódulo

% evaluación de 90% = aceptable, % evaluación de 95%= deseable

0= sin nódulo detectable

1= nódulo muy pequeño (< 2mm)

2= nódulo pequeño (2 – 5mm)

3= nódulo normal ( 5 – 10mm)

4= nódulo grande (> 10mm)

EVALUACION DE NODULOS Y AREA

DE INFLAMACION:

PUNCIÓN ALAR

EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:

3 días

post -infección

EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:

4 días

post -infección

EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:

5 días

post -infección

EVALUACION DE NODULOS Y AREA DE INFLAMACION:

6 días

post -infección

-Inmunidad es

demostrada por mas de

37 semanas post-

vacunación

-Protección por mas de

60 semanas

VACUNAS VECTORIZADAS

ECUADOR:

INNOVAX ILT

Vacuna recombinante:

(vector) de Marek (EM) y

la laringotraqueitis infecciosa

(LTI).

Es una vacuna recombinante (vector) innovadora con virus del herpes del pavo (HVT) insertado con dos genes protectores de glucoproteína del virus de la LTI.

+ Gentamicina

INNOVAX ILT

Vacunación:

En embriones de pollo sanos de 18 días de incubación por vía en huevo,

Vacunación de pollos sanos de un día de edad por vía subcutánea

+ Gentamicina

VECTORMUNE FP-LT

El virus de la viruela aviar ha sido genéticamente modificado para expresar antígenos protectivos clave del virus de la Laringotraqueítis aviar (LT)

Vacuna recombinante:

(vector) viruela aviar y

la laringotraqueitis infecciosa

(LTI).

VECTORMUNE FP-LT

-LT (DONANTE): virus que dona un gen el cual produce un antígeno protector

-FP(VECTOR): virus atenuado el cual contiene una región no esencial de ADN, en el cual puede hacerse la inserción de genes.

VECTORMUNE FP-LT

Vacunación:

Aplicación mediante punción en

el ala de pollos sanos,

susceptibles, de ocho semanas de

edad o mayores, pero al menos 4

semanas antes de que las aves

entren a postura -

VECTORVAC FP-LT

Vacuna viva, recombinante:

Viruela aviar y

Laringotraqueítis aviar

Contiene virus de Viruela Aviar

vectorizada con gen glicoproteína B

del virus de Laringotraqueítis

Infecciosa.

VECTORVAC FP-LT

Vacunación:

Inyección intradérmica, en el pliegue

alar con doble aguja acanalada,

vacunación de aves sanas

TERAPIA COADYUVANTE

Paracetamol: 100gr x cada kilo de peso en

agua de bebida, Antiinflamatorio y analgésico.

Yodo en el agua de bebida 0.5ml por litro ayuda

en los procesos de cicatrización.

Bromexina 0.5 ml a 1.0 ml por litro de agua de bebida, expectorante.

ANTIBIÓTICOTERAPIA

Enrofloxacinas cada 12 horas durante 10 días

a una dosis de 50 ml cada 100 litros de agua.

Cloranfenicol: 20 mg / Kg por 3 á 5 días

En infección

bacteriana

secundaria

PROFILAXIS

Peróxido de hidrogeno

En aspersiones en pisos y

paredes desinfectante. Mantener una adecuada cuarentena y control de personal y eliminación de vectores, animales muertos y residuos de productos.

BIBLIOGRAFÍA

http://manualdeavicultura.blogspot.com/2009/08/diagnostico-de-la-laringotraqueitis.html

http://www.veterinaria.org/revistas/vetenfinf/nfondevila/ltiecuador2012.htm

http://www.senasa.gov.ar/Archivos/File/File2821-laringotraqueitis-infecciosa.pdf

http://www.elsitioavicola.com/articles/1925/el-control-de-laringotraqueitis#sthash.bsqfpdEI.dpuf

http://issuu.com/hitsoft/docs/pdf

http://web.oie.int/esp/normes/mmanual/pdf_es_2008/2.03.03.%20Laringotraque%C3%ADtis%20infecciosa%20aviar.pdf

http://www.amevea.org/index.php?option=com_content&view=article&id=177:actualidades-en-el-control-de-la-laringotraqueitis-infecciosa-aviar&catid=33&Itemid=412