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CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA - CONCYT-

SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA - SENACYT-

FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA - FONACYT-

UNIVERSIDAD DEL VALLE DE GUATEMALA - UVG

FACULTAD DE AGRONOMÍA, UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS - FAUSAC

INFORME FINAL

Diagnóstico de la situación fitosanitaria del crisantemo y otras

flores de corte y evaluación de planes emergentes de manejo

integrado del cultivo en los municipios de San Pedro y San Juan

Sacatepéquez, Guatemala

Proyecto FODECYT 076-2006

Margarita Palmieri

Investigador Principal

GUATEMALA AGOSTO DE 2012

iii

AGRADECIMIENTOS

La realización de este trabajo, ha sido posible gracias al apoyo financiero dentro del

Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología, -FONACYT-, otorgado por La Secretaría

Nacional de Ciencia y Tecnología -SENACYT- y al Consejo Nacional de Ciencia y

Tecnología –CONCYT.

iv

OTROS AGRADECIMIENTOS

Al trabajo técnico y profesional del Laboratorio de Protección Vegetal de la

Universidad del Valle de Guatemala y de la Facultad de Agronomía de la Universidad de

San Carlos de Guatemala. Asimismo, agradecemos la cooperación e interés de los

agricultores de ASOFLORSA, que fueron la motivación para que se realizara este estudio.

v

EQUIPO DE INVESTIGACIÓN

Lcda. Margarita Palmieri – Investigador principal – UVG

Lcda. Elena Dardón – Investigador Asociado – UVG

Mabel Taracena – Técnica de Laboratorio - UVG

Ing. Agr. Gustavo Álvarez- Investigador FAUSAC

Ing. Samuel Córdova – Investigador FAUSAC

Soren Ramírez – Técnico de Laboratorio – FAUSAC

vi

INDICE DE CONTENIDOS

Página

RESUMEN xiv

ABSTRACT xv

PARTE I 1

I.1 INTRODUCCIÓN 1

I.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 3

I.2.1 Antecedentes 3

I.2.2 Justificación 7

I.3 OBJETIVOS 8

I.3.1 Generales 8

I.3.2 Específicos 8

I.4 METODOLOGÍA 9

I.4.1 Estrategia Metodológica 9

I.4.1.1 Localización de la investigación 9

I.4.1.2 Población y muestra 9

I.4.2 El Método 10

I.4.2.1 Identificación y diagnóstico de plagas y enfermedades 10

I.4.2.1.1 Transporte y almacenamiento de muestras 10

I.4.2.1.2 Identificación de artrópodos (insectos, arácnidos y otros) 10

I.4.2.1.3 Identificación de hongos 10

I.4.2.1.4 Identificación de bacterias 11

I.4.2.1.5 Identificación de nemátodos 11

I.4.2.1.6 Análisis de virus 11

I.4.2.2 Diseño e implementación de planes de manejo de plagas 11

I.4.2.2.1 Diseño del plan de manejo 11

I.4.2.2.2 Implementación del plan de manejo 12

PARTE II 13

II.1 MARCO TEÓRICO 13

II.1.1 Flores de corte 13

I.1.1.1 Cultivo de flores de la familia Asteracea y sus variedades 13

I.1.1.2 Cultivo de gladiola 15

I.1.1.3 Cultivo de clavel 16

I.1.1.4 Cultivo de cartucho 17

II.1.2 Principales plagas y enfermedades de las flores de corte 18

I.1.2.1 Enfermedades del follaje 18

I.1.2.1.1 Mancha foliar 18

I.1.2.1.2 Oídio (mildew) 18

I.1.2.1.3 Botrytis o podredumbre gris 19

I.1.2.1.4 Roya 19

I.1.2.1.5 Mancha foliar bacteriana 20

I.1.2.1.6 Tizón bacteriano 21

I.1.2.1.7 Nemátodos foliares 22

I.1.2.1.8 Virus y otros agentes infecciosos 22

I.1.2.1.8.1 Tospovirus 23

I.1.2.1.8.2 Virus de la Aspermia del Tomate (TAV) 23

I.1.2.1.8.3 Virus del mosaico del crisantemo o virus B del

crisantemo (CVB)

24

I.1.2.2 Marchitez vascular 25

vii

I.1.2.2.1 Marchitez por Fusarium 25

I.1.2.2.2 Marchitez por Verticillium 26

I.1.2.3 Otras enfermedades 26

I.1.2.3.1 Pudrición de la raíz 26

I.1.2.3.2 Pudrición del tallo 27

I.1.2.3.3 Tumor o agalla de la corona 27

I.1.2.4 Principales plagas insectiles 28

I.1.2.4.1 Moscas minadoras del crisantemo 28

I.1.2.4.2 Trips 29

I.1.2.4.3 Áfido del crisantemo 30

I.1.2.4.4 Ácaros 30

PARTE III 31

III.1 RESULTADOS 31

III.1.1 Recolección de muestras 31

III.1.2 Identificación de artrópodos (insectos, arácnidos y otros) 32

III.1.2.1 Crisantemo 32

III.1.2.2 Rosa 35

III.1.2.3 Clavel 36

III.1.2.4 Gladiola 36

III.1.3 Identificación de hongos 37


III.1.3.2 Rosa 40

III.1.3.3 Clavel 42

III.1.3.4 Rosa 43

III.1.3.5 Estaticcia, azucena y espárrago ornamental 43

III.1.4 Identificación de bacterias 44

III.1.5 Identificación de nemátodos 45


III.1.5.2 Rosa 45

III.1.5.3 Clavel y Estaticcia 46

III.1.6 Análisis de virus 46


III.1.7 Diseño e implementación de planes de manejo de plagas 49

III.1.7.1 Análisis de suelo 49

III.1.7.2 Preparación de esquejes 49

III.1.7.3 Preparación de camas de enraizamiento y manejo durante

enraizamiento

49

III.1.7.4 Preparación del tablón y transplante a campo definitivo 50

III.1.7.5 Manejo en campo definitivo 50

III.1.8 Efectos de la implementación del plan de manejo de plagas propuesto 53

III.1.8.1 Efectos en la fertilización y aplicación de plaguicidas 53

III.1.8.2 Efectos en la fase de enraizamiento de esquejes 53

III.1.8.3 Efectos en la fase de crecimiento y desarrollo del cultivo bajo

invernadero

54

III.1.8.4 Efectos sobre las plagas bajo invernadero 57

III.1.8.4.1 Roya blanca 57

III.1.8.4.2 Trips 58

III.1.8.5 Efectos en la fase de crecimiento y desarrollo del cultivo a

campo abierto

59

III.1.8.6 Efectos sobre las plagas a campo abierto 60

III.1.8.6.1 Roya blanca 60

viii

III.1.8.6.2 Trips 61

III.2 DISCUSIÓN 62

PARTE IV 66

IV.1 CONCLUSIONES 66

IV.2 RECOMENDACIONES 68

IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 69

IV.4 ANEXOS 71

PARTE V 99

V.1 INFORME FINANCIERO 99

ix

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura Página

1 Superficie de fincas censales con cultivos permanentes o semipermanentes,

por departamento, en manzanas. 4

2 Número de fincas censales con viveros ornamentales por departamento para

el año agrícola 2002/2003. 4

3 Diagrama de flujo de los principales pasos de la estrategia metodológica del

estudio. 9

4 Puntos muestreados en San Juan Sacatepéquez con presencia de roya blanca. 37

x

ÍNDICE DE FOTOGRAFÍAS

Figura Página

1 Crisantemos de diversas variedades. 14

2 Diferentes flores del género Aster. 15

5 Gladiola. 15

4 Clavel. 16

5 Cartucho. 17

6 Mancha foliar causada por Septoria. 18

7 Sintomatología de oídio o “mildew” en follaje de crisantemo. 19

8 Daño causado por Botrytis en la flor. 19

9 Síntomas característicos de roya del crisantemo causada por P. chrysanthemi. 20

10 Síntomas característicos de roya blanca del crisantemo causada por P.

horiana. 20

11 Mancha foliar bacteriana causada por Pseudomonas chichorii. 21

12 Síntomas causados por Erwinia carotovora. 22

13 Síntomas causados por nemátodos foliares. 22

14 Sintomas causados en el tallo de una planta de crisantemo por TSWV. 23

15 Síntomas causados por TAV en crisantemo. 24

16 Síntomas causados por CVB en crisantemo. 25

17 Marchitez unilateral en crisantemo causada por Fusarium. 25

18 Sintomatología en el sistema vascular causada por Fusarium. 26

19 Marchitez causada por Verticillium en plantas de girasol. 26

20 Síntomatología causada por Pythium sp. 27

21 Pudrición del tallo causada por Rhizoctonia solani. 27

22 Agalla causada por Agrobacterium tumefaciens en crisantemo. 28

23 Mosca minadora del crisantemo. 29

24 Frankliniella occidentalis (izquierda) y Thrips tabaci (derecha). 29

25 Maneras preferidas para cultivar plantas ornamentales. 32

26 (A) Daño causado por trhips en crisantemo. (B) Espécimen identificado

como Frankliniella occidentalis. 33

27 (A) Daño causado por áfidos en crisantemo. (B), (C) y (D) Especímenes

identificados como Coloradoa rufomaculata. 34

28 (A) y (B) Hojas de crisantemo afectadas por galerías de minador. 34

29 (A) Daño causado por trhips en rosa. (B) Espécimen identificado como

Frankliniella occidentalis. 35

30 (A) y (B) Especímenes identificados como Macrosiphum pallidum. 35

31 (A) Daño causado por escama nevada en rosa. (B) Espécimen identificado

como Aulacaspis rosae 36

32 Daño causado por Tetranychus sp. en hojas de rosa 36

33 (A) Daño causado por trips en gladiola. (B) y (C) Especímenes

identificados como Thrips simplex. 36

34 (A) Planta adulta y (B) planta joven de crisantemo afectadas por roya blanca. 38

35 Observación al estereoscopio de un complejo de pústulas características de

roya blanca. 38

36 (A) Teliosporas bicelulares y (B) teliosporas hialinas de Puccinia horiana en

crisantemo. 38

xi

37 (A) Hoja de crisantemo con severidad menor al 21% y (B) con severidad

mayor al 41%. 39

38 Pústulas de roya blanca parasitadas por Cladosporium sp. 39

39 Plantas de crisantemo afectadas por Septoria chrysanthemella. 40

40 Fotografía 40: Septoria chrysanthemella vista al microscopio. 40

41 (A) y (B) Daño en hojas y flor causado por Podosphaera pannosa (cenicilla).

(C) Vista al microscopio de P. pannosa. 41

42 (A) y (B) Daño causado por Diplocarpon rosae (mancha negra) en hojas de

rosa. (C) y (D) Vista microscópica de D. rosae 41

43 (A) Daño causado por Dothiorella sp. en tallos de rosa. (B) Vista

microscópica de Dothiorella sp. 42

44 (A) Daño causado por Phragmidium sp. en hojas de rosa. (B) Vista

microscópica de Phragmidium sp. 42

45 (A) Daño causado por la roya del clavel. (B) y (C) Vista microscópica de

Uromyces dianthi. 42

46 (A) Daño causado por la roya de la gladiola. (B) y (C) Vista microscópica de

Uromyces transversalis. 43

47 Daño causado por Cercospora sp. en tallo de estaticcia. 43

48 Fotografía 48.. (A) y (B) Daño causado por Pythium ultimum en azucena.

(C) Vista microscópica de Pythium ultimum. 44

49 (A) y (B) Daño causado por Roselinia necatrix en azucena. (C) Vista

microscópica de Roselinia necatrix. 44

50 Daño causado por Agrobacterium tumefaciens en rosa. 45

51 Daño causado por nemátodos foliares en hojas de crisantemo. 45

52 (A) Raíces de rosa afectadas por Meloidogyne sp. (B) Vista microscópica de

Meloidogyne sp. 46

53 (A), (B) y (C) Síntomas en campo de plantas de crisantemo infectadas por

TSWV. (D) Necrosis en el tallo causada por TSWV. 47

54 Síntomas asociados a virosis presentados por plantas de crisantemo en

campo. 48

55 Proceso de enraizamiento de plántulas de crisantemo. 50

56 Dosificación, mezcla y aplicación de productos. 51

57 Diferencia entre esquejes tratados y no tratados 53

58 Comparación del desarrollo del cultivo con el plan de manejo propuesto

respecto al manejo tradicional del floricultor. 55

59 Severidad de roya blanca menor al 20% en hojas de crisantemo. 57

60 Comparación de la calidad de las flores: (A) Flor sin daño. (B) Flor dañada

por trips. 58

61 Daño foliar causado por (A) Septoria chrysanthemella, (B) Aphelencoides

sp. y (C) Liryomiza trifolii, en crisantemo cultivado a campo abierto. 59

62 Flores cosechadas a campo abierto. 59

63 Severidad de roya blanca mayor al 40% en hojas de crisantemo. 60

xii

ÍNDICE DE CUADROS

Cuadro Página

1 Aplicaciones efectuadas en campo definitivo bajo invernadero. A todas las

aplicaciones de agroquímicos se adicionaron adherente y corrector de pH

(pH Agro).

51

2 Aplicaciones efectuadas en campo definitivo sin invernadero. A todas las

aplicaciones de agroquímicos se adicionaron adherente y corrector de pH

(pH Agro).

52

xiii

ÍNDICE DE GRÁFICAS

Cuadro Página

1 Porcentajes de trips, áfidos y minador en las 56 muestras de crisantemo

analizadas. 33

2 Porcentajes de trips, áfidos, escama nevada y araña roja en las 23 muestras

de rosa analizadas. 35

3 Porcentajes de Podosphaera pannosa, Diplocarpon rosae, Dothiorella sp. y

Phragmidium sp. en las 23 muestras de rosa analizadas. 41

4 Porcentaje de plantas de crisantemo infectadas por virus, n=288. 47

5 Porcentaje de plantas de crisantemo infectadas por cada uno de los virus

analizados, n=288. 47

6 Comparación de la incidencia de roya blanca bajo invernadero utilizando el

plan de manejo propuesto respecto al manejo tradicional del floricultor. 57

7 Comparación en la incidencia de trips en crisantemo bajo invernadero,

utilizando el plan de manejo propuesto y el plan de manejo tradicional. 58

8 Comparación de la incidencia de roya blanca a campo abierto utilizando el

plan de manejo propuesto respecto al manejo tradicional del floricultor. 60

9 Comparación en la incidencia de trips en crisantemo a campo abierto,

utilizando el plan de manejo propuesto y el plan de manejo tradicional. 61

xiv

RESUMEN

En Guatemala, la industria de plantas ornamentales, que incluye flores y follajes, consta

de más de cien empresas productoras/exportadoras que producen alrededor de 200 especies

y 500 variedades, generando miles de fuentes estables de empleo. Esta industria presenta

un crecimiento sostenido y es favorecida por la variedad de climas y microclimas del país

que permite cultivar tanto especies nativas como introducidas. Entre las flores de corte de

mayor importancia económica se encuentran la rosa, crisantemo, clavel, áster, cartucho,

estaticcia y gladiola, entre otras. En San Juan Sacatepéquez y San Pedro Sacatepéquez la

principal actividad agrícola es la floricultura, principalmente el cultivo de crisantemo,

Chrysanthemum morifolium, que constituye el 50% de su producción. Durante los años

2005-2006, los floricultores de esta región vieron decaer su cultivo debido a problemas

fitosanitarios, a raíz de lo cual surgió la Asociación de Floricultores Sanjuaneros

(ASOFLORSA), cuyo interés en dilucidar las causas de sus principales problemas y cómo

enfrentarlos, dio origen a este estudio. De esta manera, el objetivo general fue determinar

el complejo de plagas que afectan al cultivo de crisantemo y otras flores de corte en estos

municipios y su grado de importancia según abundancia y severidad; con el fin de proponer

un plan de manejo que se adecuara a los problemas existentes. El estudio abarcó insectos,

nemátodos, hongos, bacterias y virus; haciendo uso de técnicas clásicas de cultivo e

identificación microscópica, así como también técnicas serológicas. Así se determinó que

las principales plagas que afectan al crisantemo en esta región, en orden descendente de

severidad y abundancia son el hongo Puccinia horiana causante de la roya blanca, los virus

que incluyen CVB (Chrysanthemum virus B) y TSWV (Tomato Spotted Wilt Virus)

causante del “tizón del crisantemo”, y el insecto trips de la especie Frankliniella

occidentalis. Basado en estos resultados se diseñó y ensayó un plan de manejo que, en

producción bajo invernadero, redujo el uso de fertilizantes en un 90% y mejoró el

rendimiento en 20% con calidad de flor igual o mejor que la obtenida tradicionalmente.

xv

ABSTRACT

In Guatemala, the ornamental plant industry, which includes flowers and foliage,

consists of more than a hundred production-export businesses that produce approximately

200 species and 500 varieties, generating thousands of stable sources of employment. This

industry presents sustained growth and is favored by the country´s variety of climates and

microclimates that permit cultivation of so many native and introduced species. Among cut

flowers of major economic importance are roses, chrysanthemums, carnations, asters, calla

lilies, estaticcia, gladiolus and others. In San Juan Sacatepéquez and San Pedro

Sacatepéquez, the principal agricultural activity is floriculture, principally the cultivation of

chrysanthemum, Chrysanthemum morifolium, which constitutes 50% of their production.

During 2005-2006, floriculturists of the region saw a decline of their crop due to

phytosanitary problems, thus giving rise to the Association of San Juan Floriculturists

(ASOFLORSA), whose interest in determining the causes of their principal problems and

how to face them, originated this study. Its principal objective was the determination of the

pest complex affecting chrysanthemum and other cut flower cultivation in these

municipalities and their degree of importance according to abundance and severity with the

result being a management proposal adequate to the existing problems. The study involved

insects, nematodes, fungi, bacteria and virus using classical techniques of cultivation and

microscopic identification, as well as serological techniques. Thus, the principal pests

affecting chrysanthemum in this region were determined, in descending order of severity

and abundance, are the fungus Puccinia horiana, causing white rust; the viruses including

CVB (Chrysanthemum virus B) and TSWV (Tomato Spotted Wilt Virus), causing

chrysanthemum blight, and the insect thrips (Frankliniella occidentalis). Based on these

results, we designed and experimented a management plan that, in greenhouse production,

reduced the use of fertilizers 90% and increased production 20% with flower quality equal

to, or better than, that obtained traditionally.

1

PARTE I

I.1 INTRODUCCIÓN

La industria de plantas ornamentales, que incluye flores y follajes, se ha visto

favorecida por la gran diversidad de climas y microclimas del país que permite cultivar

tanto especies nativas como introducidas, las cuales son exportadas en múltiples formas.

Entre las flores cultivadas de mayor importancia económica se encuentran en primer lugar

la rosa, seguida del crisantemo, clavel, áster, cartucho, estaticcia y gladiola, entre otras.

En San Juan Sacatepéquez y San Pedro Sacatepéquez la principal actividad agrícola es

el cultivo de flores de corte, de las cuales el crisantemo, Crhysantemum morifolium, es el

más representativo, ocupando más del 50% del volumen de producción global del área.

Según ASOFLORSA (Asociación de Floricultores Sanjuaneros), el 25% de la producción

es exportado a Honduras, el 20% a El Salvador y el 55% se vende en el mercado local;

alcanzando en la época de mayores ventas una producción 1.25 millones de paquetes (8-10

tallos por paquete). Sin embargo, el cultivo del crisantemo presenta varios retos, entre los

cuales el más determinante es superar las numerosas plagas que pueden afectarlo. Existe

una gran diversidad de insectos, nemátodos, hongos, bacterias y virus que pueden ser

patógenos para este cultivo y por tanto la identificación certera y el manejo y control de las

mismas es indispensable para una buena producción.

El cultivo de crisantemo es una importante actividad agrícola en varios lugares de

Guatemala debido a la alta demanda que tienen estas flores de corte, tanto en el mercado

local como regional. Un problema muy generalizado en las flores de corte es el complejo

de royas; principalmente la roya blanca, causada por el hongo Puccinia horiana,

introducido recientemente al área, cuya virulencia o tolerancia está relacionada

directamente a las variedades; desafortunadamente entre las más susceptibles se encuentran

las de mayor demanda en el mercado. Entre otras plagas de las que se tiene registro en el

área y de las cuales se tiene poco conocimiento están los hongos Septoria chrysantemii,

Fusarium sp., Verticillium sp. y Rhizoctonia solanii. Por otro lado, también se tiene

información de la presencia de nemátodos entre los que se pueden mencionar

Paratylenchus sp., Meloidogyne sp., Pratylenchus sp. y el complejo de criconemátidos,

entre otros. En lo que respecta a otros artrópodos se tiene registro de la presencia de

Tetranychus sp. y minadores de las hojas que también son responsables de pérdidas por

daño a la calidad.

En 2005 y 2006 los productores de crisantemo enfrentaron la presencia de varias plagas

que causaron serios daños al cultivo, una de las más predominantes fue la denominada

comúnmente como “Tizón del Crisantemo”, de la cual se desconocía su etiología,

especulándose como posibles agentes causales bacterias, fitoplasmas o el complejo de virus

TSWV/INSV (Tospoviridae), éste último está estrechamente relacionado con la presencia

de su vector trips (Thysanoptera).

2

Para poder afrontar éste y otros problemas fitosanitarios, es necesario en primer lugar,

poder determinar cuáles son los agentes causales de los daños y enfermedades observadas.

Así, una vez identificados es posible diseñar y establecer una estrategia de manejo y

prevención para futuros ciclos de cultivo. La importancia de identificar los agentes

causales radica en que muchas veces una misma plaga puede afectar a un amplio rango de

hospederos y por tanto, aún si se rota el cultivo, también puede afectarlo. Adicionalmente

al conocer los agentes causales se pueden investigar sus formas de transmisión, incluyendo

vectores, con lo cual se puede diseñar un mejor método de control y manejo.

Por otro lado, el uso descontrolado de plaguicidas (antibióticos, nematicidas,

insecticidas, fungicidas, etc.) que se aplican sin un criterio técnico también ocasiona

pérdidas económicas, daño a la salud de los agricultores y el consecuente daño al medio

ambiente. Partiendo de lo anterior, fue necesario desarrollar un programa de investigación

cuya finalidad sea la recomendación de planes de manejo previamente evaluados en base a

un diagnóstico que proporcione la mayor información posible sobre cada uno de los agentes

causales, (correcta identificación, descripción de los síntomas que provocan, mecanismos

de dispersión, ciclo de vida, severidad e incidencia en el área).

Este estudio tuvo como objetivo general determinar el complejo de plagas que afectan

al cultivo de crisantemo y otras flores de corte en los municipios de San Pedro y San Juan

Sacatepéquez y su grado de importancia, según incidencia y severidad. El estudio abarcó

insectos, nemátodos, hongos, bacterias y virus; haciendo uso de técnicas clásicas de cultivo

e identificación microscópica, así como también técnicas serológicas. Adicionalmente se

formuló y ensayó un plan de manejo integrado del cultivo, basado principalmente en el

monitoreo de plagas, con el fin de reducir costos y mejorar la eficacia de las aplicaciones.

3

I.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

I.2.1 Antecedentes

Guatemala es un país cuya economía depende considerablemente de la producción

agrícola (véase Figura 1). Según Melgar (2003), de acuerdo a las estadísticas del Banco de

Guatemala del año 2001, ingresaron US$2,121,905,800 por concepto de exportaciones, el

37,1% correspondiente a café, azúcar, banano y cardamomo; 14,8% a artículos de

vestuarios, 3,9% por productos químicos, 3,6% por frutas y sus preparados, 2,4% por

exportación de flores, plantas y similares (Melgar, 2003).

En general, la industria de plantas ornamentales, que incluye flores y follajes, tiene una

trayectoria en el país de aproximadamente 30 años. Actualmente consta de 125 empresas

productoras/exportadoras que producen alrededor de 200 especies y 500 variedades,

generando 60,000 fuentes estables de trabajo, 15,000 empleos permanentes, de los cuales

80% son mujeres. A lo largo del tiempo esta industria ha constituido una actividad

exportadora con una tasa de crecimiento sostenido del 10%, contribuyendo al ingreso de

divisas al país con alrededor de 100 millones de dólares (Comisión de Plantas

Ornamentales y Follaje-AGEXPORT, 1996-2012).

La industria de plantas ornamentales se ha visto favorecida por la gran diversidad de

climas y microclimas del país que permite cultivar tanto especies nativas como

introducidas, las cuales son exportadas en múltiples formas, incluyendo plantas en medio

de cultivo, enraizadas y brotadas, bulbos, tips, rizomas, acodos o puntas, así como flores

cortadas, presentadas en "consumer bunches" o bouquets (Comisión de Plantas

Ornamentales y Follaje-AGEXPORT, 1996-2012). Entre las flores cultivadas de mayor

importancia económica se encuentran en primer lugar la rosa, seguida del crisantemo,

clavel, áster, cartucho, estaticcia y gladiola, entre otras. Para algunos municipios como San

Juan y San Pedro Sacatepéquez, en el departamento de Guatemala, la siembra de

crisantemos y otras flores de corte representa una actividad económica importante (véase

Figura 2). En dichos municipios la principal actividad agrícola es el cultivo de flores de

corte, de las cuales el crisantemo, Crhysantemum morifolium, es el más representativo,

ocupando más del 50% del volumen de producción global de dicha área, siguiéndole en

importancia el clavel Dianthus cariophyllus, y la gladiola Gladiolus sp.

4

Figura 1. Superficie de fincas censales con cultivos permanentes o semipermanentes, por

departamento, en manzanas.

(Fuente: IV Censo Nacional Agropecuario efectuado por el Instituto Nacional de

Estadística INE, 2003)

Figura 2. Número de fincas censales con viveros ornamentales por departamento para el

año agrícola 2002/2003.

(Fuente: IV Censo Nacional Agropecuario realizado por el Instituto Nacional de Estadística

INE, 2003)

5

Aunque no existen registros oficiales sobre la producción, áreas utilizadas y la

productividad de flores de corte en estos municipios, la floricultura es la principal fuente de

trabajo y generación de ingresos para sus habitantes. Es de tal importancia este cultivo que

en el año 2005 los floricultores de la región, formaron una asociación llamada

ASOFLORSA (Asociación de Floricultores Sanjuaneros). Estuvo constituida inicialmente

por 50 floricultores y actualmente cuenta con 74. Esta asociación surgió debido a que los

floricultores se encontraban agobiados por problemas fitosanitarios y entraron en crisis

financiera (Prensa Libre, 2010).

El estar asociados les ha permitido incrementar su producción y mejorar la calidad de su

producto. En la actualidad forman parte del Programa de Encadenamientos Empresariales

de AGEXPORT y reciben apoyo de la Cooperación Danesa DANIDA y FONAGRO.

Mediante estas colaboraciones, ASOFLORSA ha estado trabajando en el fortalecimiento de

la capacidad empresarial, asistencia técnica en producción de flores de corte para

exportación, capacitación en buenas prácticas de producción y manufactura, incluyendo la

compra de material vegetativo para el mejoramiento genético de nuevas variedades de

rosas. Además, se les hizo un estudio de impacto ambiental para la producción bajo

invernadero y han participado en ferias internacionales en donde presentaron su marca

“Tikoj”, para representar sus productos (AGEXPORT, 2009).

Sólo los floricultores asociados a ASOFLORSA poseen un área de suelo cultivable de

aproximadamente 6 hectáreas, 4,000 metros cuadrados de producción bajo invernaderos

tipo ecuatoriano, 30,000 metros cuadrados de producción bajo invernadero tipo artesanal,

cuarto frío de 16 metros cuadrados con capacidad de 2,000 bunches de rosas y crisantemos

(1,000 bunches de 24 tallos de rosas y 1,000 bunches de 10 tallos de crisantemos). Los

principales cultivos son rosas y crisantemos, de los cuales se cultivan más de 20 variedades

con calidad de exportación (ASOFLORSA, desconocido).

Según ASOFLORSA, de la producción, el 25% es exportado a Honduras, el 20% a El

Salvador y el 55% restante al mercado local; donde la época de mayores ventas son la

última semana de octubre y la primera de noviembre, cuando venden aproximadamente el

30% de la producción anual. Es entonces cuando se realiza la cosecha más importante de

crisantemos que permite producir alrededor de 1.25 millones de paquetes (8-10 tallos por

paquete) (Prensa Libre, 2010).

En 2005 y 2006, los productores de crisantemo enfrentaron la presencia de varias plagas

que causaron serios daños al cultivo. Una de las más predominantes fue la denominada

comúnmente como “Tizón del Crisantemo”, de la cual se desconocía su etiología,

especulándose como posibles agentes causales bacterias, fitoplasmas o el complejo de virus

TSWV/INSV (Tospoviridae), éste último está estrechamente relacionado con la presencia

de su vector trips (Thysanoptera). Hasta entonces, según resultados obtenidos en el

laboratorio de Protección Vegetal de la UVG, a partir de muestras provenientes de

diferentes partes de Guatemala, se había podido observar un aumento en el porcentaje de

infección por TSWV entre los años 2003 a 2006. Asimismo, en otros cultivos como tomate

y chile, la incidencia de este virus ha aumentado casi un 25 a 30% a partir del 2004

(Palmieri comunicación personal). Además del daño directo que causa este virus sobre el

6

cultivo, también constituye una plaga cuarentenada en varios países, afectando la

exportación del producto producido.

Otro problema muy generalizado en las flores de corte es el complejo de royas;

principalmente la roya blanca, causada por el hongo Puccinia horiana, la cual fue

introducida recientemente al área, cuya virulencia o tolerancia está relacionada

directamente a las variedades. Desafortunadamente, entre las variedades más susceptibles

se encuentran las de mayor demanda en el mercado.

Entre otras plagas de las que se tiene registro en el área y de las cuales se tiene poco

conocimiento están los hongos Septoria chrysantemii, Fusarium sp., Verticillium sp.,

Rhizoctonia solanii. Por otro lado, también se tiene información de la presencia de

nemátodos entre los que se pueden mencionar Paratylenchus sp., Meloidogyne sp.,

Pratylenchus sp. y el complejo de criconemátidos, entre otros. En lo que respecta a otros

artrópodos se tiene registro de la presencia de Tetranychus spp. y minadores de las hojas

que también son responsables de pérdidas por daño a la calidad.

Aunque se conocía la sintomatología y los efectos que causan las plagas en el cultivo,

hasta entonces, no se había realizado nunca un análisis de laboratorio para identificar a los

diferentes agentes patógenos, constituyendo el presente estudio el primer monitoreo de

plagas en crisantemo y otras flores de corte. Esperamos que los resultados encontrados en

el mismo, sean de utilidad a los agricultores de estas comunidades.

7

I.2.2 Justificación

La mejor forma de justificar este estudio es considerar que surgió como consecuencia

de la necesidad y preocupación de los floricultores de ASOFLORSA por dilucidar las

causas de los problemas fitosanitarios que estaban enfrentando en 2005 y 2006. Siendo la

floricultura, principalmente el cultivo de crisantemo, la actividad económica de mayor

importancia en los municipios de San Juan y San Pedro Sacatepéquez, el presente estudio

pretendió generar información respecto a plagas y enfermedades que afectan a dichas áreas.

De esta manera se apoya a ASOFLORSA y al Ministerio de Agricultura Ganadería y

Alimentación (MAGA), mediante la obtención de información actualizada sobre el estado

fitosanitario de los cultivos, y así, no sólo se podrán actualizar los listados de plagas de

importancia, sino también se pueden buscar las mejores alternativas para solucionar y

prevenir estos problemas.

Basándose en la información generada sobre las plagas presentes en el cultivo se pudo

proponer un plan de manejo más apropiado para la situación del cultivo, el cual beneficia a

los floricultores mediante la reducción de gastos en fertilizantes y además favorece al

medio ambiente con la menor aplicación de plaguicidas. Como resultado, más de un

centenar de pequeños y grandes floricultores de estos municipios que comparten

información por medio de asociaciones, principalmente ASOFLORSA que colaboró

activamente con este estudio, estarán aplicando este nuevo plan de manejo poniéndonos al

tanto de sus necesidades y permitiéndonos acceder a sus plantaciones para tomar muestras,

realizar los ensayos y evaluar los planes de manejo.

8

I.3 OBJETIVOS

I.3.1. Generales

1. Determinar el complejo de plagas que afectan al cultivo de crisantemo en los

municipios de San Pedro y San Juan Sacatepéquez, Guatemala.

2. Determinar el grado de importancia de cada una de las plagas en base a los

parámetros de incidencia, severidad en el área.

3. Generar planes de manejo integrado del cultivo para el complejo de plagas que

se determine.

4. Generar un manual técnico para el manejo integrado de las plagas del

crisantemo bajo las condiciones del área bajo estudio.

I.3.2. Específicos

1. Determinar el complejo de agentes bacterianos que afectan al cultivo del

crisantemo en el área bajo estudio

2. Determinar el complejo de agentes fungosos que afectan al cultivo del

crisantemo en el área bajo estudio.

3. Determinar el complejo de virus y fitoplasmas asociados al cultivo del


4. Determinar el complejo de nemátodos asociados al cultivo en el área bajo

estudio.

5. Determinar el complejo de insectos asociados al cultivo del crisantemo en el

área bajo estudio.

6. Determinar el complejo de ácaros asociados al cultivo de crisantemo en el área

bajo estudio.

7. Determinar el complejo de moluscos asociados al cultivo de crisantemo en el

área bajo estudio.

8. Determinar la presencia de otros grupos de artrópodos que afecten al cultivo en

el área bajo estudio.

9. Establecer parámetros de manejo o erradicación de cada uno de las plagas en

base a evaluaciones in situ bajo diferentes condiciones de producción.

10. Formular manuales técnicos y guías prácticas para el manejo de las plagas del


9

I.4 METODOLOGIA

I.4.1 Estrategia metodológica

En general, el estudio constó de dos fases: (1) Muestreos, identificación de plagas y

diagnóstico de enfermedades, y (2) implementación de programas de manejo del cultivo.

En la Figura 3 se presentan los pasos principales de la estrategia metodológica.

Figura 3. Diagrama de flujo de los principales pasos de la estrategia metodológica del estudio.

(Fuente: FODECYT 076-2006)

I.4.1.1 Localización de la investigación

La recolección de muestras en campo se llevó a cabo en plantaciones de cultivos

ornamentales ubicadas en San Juan Sacatepéquez y San Pedro Sacatepéquez, durante el año

2007. Las coordenadas de cada muestra colectada se presentan en la sección IV.4.1. Anexo

1.

La identificación de hongos, bacterias, nemátodos e insectos se realizó en la Facultad de

Agronomía de la Universidad de San Carlos de Guatemala. El diagnóstico de virus se

realizó en el Laboratorio de Protección Vegetal de la Universidad del Valle de Guatemala.

I.4.1.2 Población y muestra

Cada uno de los números del IV.4.1 Anexo 1, corresponde a una muestra de hoja y tallo

o bien de la planta completa. El muestreo fue dirigido a plantas que presentaran alguna

anomalía como necrosis, clorosis, enanismo, manchas, entre otros. Las muestras fueron

colectadas en bolsas plásticas con cierre y rotuladas indicando su procedencia y especie.

10

Los detalles sobre las muestras recolectadas se presentan en dicho cuadro. Adicionalmente

de cada lugar visitado se llenó una ficha informativa que incluye datos como extensión

cultivada, especies de flores cultivadas y plaguicidas aplicados. En el IV.4.2 Anexo 2 se

adjuntan algunas de las fichas informativas a manera de ejemplo.

Para análisis de virus, se realizaron dos tipos de muestreo, uno dirigido a plantas con

sintomatología general de virosis (enanismo, clorosis, mosaico, deformación en hojas) y

otro muestreo pequeño dirigido a plantas que presentaban la siguiente sintomatología: tallo

café y hojas quemadas o bronceadas. Esto último se debió a que éste era uno de los

problemas que más preocupaba a los floricultores. Para ambos casos, las muestras

analizadas fueron todas de crisantemo. El listado de muestras se adjunta en la sección

IV.4.1.3 Anexo 3.

I.4.2 El Método

I.4.2.1 Identificación y diagnóstico de plagas y enfermedades

I.4.2.1.1 Transporte y almacenamiento de muestras

Las muestras fueron transportadas del campo al laboratorio aproximadamente a 4º C, en

una hielera. En el Laboratorio Vegetal de la UVG se tomó una submuestra de tejido foliar

y tallo para análisis de virus. Dicha submuestra se almacenó en duplicado, una de las

réplicas se almacenó a 4ºC con sílica gel como desecante y se procesó inmediatamente y la

otra réplica se liofilizó y se almacenó de la misma forma por un tiempo prolongado. El

resto de la muestra se transportó a la Facultad de Agronomía de la USAC para realizar los

análisis restantes.

I.4.2.1.2 Identificación de artrópodos (insectos, arácnidos y otros)

La determinación de los especímenes de artrópodos encontrados fue en base a sus

características anatómicas y morfológicas. La determinación de las familias, géneros y

especies se realizó con claves taxonómicas (Mound & Marullo, 1996; Spencer &

Stegmaier, 1973; Blackman & Esatop, 2000; Williams & Watson, 1988).

I.4.2.1.3 Identificación de hongos

Se procedió a la identificación de hongos según la metodología de rutina del laboratorio

de fitopatología de la FAUSAC y del Laboratorio de Protección Vegetal de la UVG.

Brevemente: Se seleccionó una porción de la muestra que presentaba síntomas y se

desinfectó con cloro al 10% y etanol al 70%. Una porción de la muestra se colocó en

medio PDA y se incubó a 30º C o a temperatura ambiente por aproximadamente una

semana. Simultáneamente se colocó una muestra desinfectada en cámara húmeda por

aproximadamente 3-7 días. Para su observación al microscopio, se realizó un montaje del

11

micelio o estructura fúngica y se tiñó con azul de lactofenol. La identificación se hizo en

base a características anatómicas y morfológicas y cuando fue necesario por aislamiento.

La determinación de los géneros se realizó en base a claves especializadas (Ainsworth,

1995; Cummins & Hiratsuka, 2003; Ellis, 1976).

I.4.2.1.4 Identificación de bacterias

Se procedió al aislamiento de bacterias según la metodología de rutina del laboratorio

de fitopatología de la FAUSAC y del Laboratorio de Protección Vegetal de la UVG.

Brevemente: Se seleccionó una porción de la muestra que presentaba síntomas y se

desinfectó con cloro al 10% y etanol al 70%. Una vez desinfectada, se cortó con un bisturí

para obtener el extracto, el cual se sembró en agar nutritivo y se incubó a 30º C durante 24-

72 horas. Si se observó crecimiento, se tomó una muestra de las bacterias predominantes y

se repitió el proceso de siembra en agar nutritivo. Una vez aislada la bacteria de interés, se

identificó según la morfología de las colonias y la tinción Gram. La identificación final se

hizo en base a pruebas bioquímicas.

I.4.2.1.5 Identificación de nemátodos

Para este análisis se tomaron muestras tanto foliares como de raíces y suelo. Para la

extracción de nemátodos de tejido foliar y de raíz se utilizó el método de nebulización y

para la extracción de nemátodos de suelo se utilizó el método de doble flotación en azúcar

para filiformes (Agrios, 2004). Los especímenes obtenidos se identificaron en base a

características morfológicas (Mai & Lyon, 1975).

I.4.2.1.6 Análisis de virus

La determinación de virus se realizó mediante la técnica de ensayo de inmunoadsorción

ligado a enzima (ELISA), utilizando los kits correspondientes de la casa comercial Agdia,

según las indicaciones sugeridas por el fabricante. En el caso del muestreo dirigido a

síntomas generales de virosis, los virus analizados fueron TSWV (Tomato spotted wilt

virus), INSV (Impatiens necrotic spot virus), TAV (Tomato aspermy virus), CVB

(Chrysanthemum virus B) y CMV (Cucumber mosaic virus). En el caso del muestreo

dirigido a plantas con tallo café y hojas bronceadas o quemadas únicamente se buscó la

presencia de TSWV e INSV.

I.4.2.2 Diseño e implementación de planes de manejo de plagas

I.4.2.2.1 Diseño del plan de manejo

En base a los resultados del monitoreo de plagas y enfermedades, se determinaron las

tres plagas más importantes y se trabajó sobre éstas. De cada una de estas plagas se realizó

12

una revisión bibliográfica para conocer más a fondo su comportamiento y así poder definir

las estrategias más adecuadas. A partir de esta información se diseñó un plan de manejo

para el cultivo en campo y otro bajo invernadero.

I.4.2.2.2 Implementación del plan de manejo

Inicialmente se realizaron análisis de suelos para determinar cuál sería el mejor plan de

fertilización. Luego se procedió a preparar los esquejes y las camas de enraizamiento.

Durante el enraizamiento se aplicó insecticida y a los 15 días, las plántulas fueron

trasladadas al campo o al invernadero en donde previamente se había tratado el tablón.

Durante el desarrollo del cultivo, ya fuera en campo o invernadero se realizaron

aplicaciones de insecticidas, fungicidas, bio-estimulantes así como también aplicación de

fertilizantes, eliminación de malezas, entre otras. En la onceava semana de desarrollo de

las plantas, se realizó un análisis foliar para determinar la situación de macro y

microelementos.

13

PARTE II

II.1. MARCO TEÓRICO

II. 1.1 Flores de corte

II.1.1.1 Cultivo de flores de la familia Asteracea y sus variedades

El crisantemo (género Chrysanthemum) es una flor de origen asiático, plenamente

extendida por todo el mundo, es una flor hermosa y agradecida, cargada de simbolismo.

Los crisantemos ofrecen numerosas variedades aptas para todos los gustos. Sus

inflorescencias son tan diversas que nos permiten elegir entre un gran surtido de colores y

formas (véase Fotografía 1), así como plantear innumerables diseños para los arriates o

bonitos ramos de flor (AGEXPORT, 2011).

El género Chrysanthemum contiene unas 35 especies de plantas procedentes la mayoría

de Asia, aunque unas pocas son europeas. China es el lugar del mundo donde más especies

y variedades se cultivan. Son plantas que necesitan una exposición soleada y cualquier tipo

de terrenos bien drenados aunque prefieren los de composición algo ácida. Como flores de

corte se utilizan principalmente para adornar los cementerios. El crisantemo es una de las

especies ornamentales más cultivadas de todo el mundo. La producción es importante en

varios países europeos, así como en Colombia, Estados Unidos y Canadá donde desde hace

mucho tiempo es un cultivo industrializado y en Japón la flor del crisantemo alcanza un

valor simbólico (Vidalie, 2001)

Después de la rosa, el crisantemo sigue siendo la flor cortada, más vendida; el blanco es

el color más demandado (40%), seguido en importancia los amarillos (31%) y los violetas

(11%). El crisantemo que actualmente cultivan los floricultores, es un híbrido complejo y

la mayoría de las especies, donde se han generado los cultivares actuales, son originarias de

China: Chrysanthemum indicum, Chrysanthemum morifolium y Chrysanthemum x

hortorum. El crisantemo puede ser comercializado casi todo el año como flor cortada y

como planta ornamental en maceta. El sistema de producción programada a lo largo del

año con cultivares multiflora ha sufrido un gran incremento en los últimos años. Para

planta ornamental en maceta hay un gran aumento en la producción. El número de colores

y formas de flor del crisantemo de maceta, sigue aumentando. Es por ello, que existen

nuevas variedades en el mercado, que se conservan mejor (Vidalie, 2001).

La propagación del crisantemo se realiza por medio de esquejes, que se obtienen de

plantas madre seleccionadas por su apariencia, capacidad de cosecha y vigor; mantenidas

bajo condiciones de día largo, para inhibir la formación de botones finales. Los esquejes

terminales de 8-10 cm. de longitud, pueden colocarse directamente en el medio para

enraizamiento, que puede ser el ácido naftalen-acético o bien colocarse dentro de cajas con

alguna película plástica impermeable para evitar el desecamiento, es aconsejable que se

almacenen en refrigeración a temperaturas entre 0 y 3º C, por una lapso de seis semanas.

14

La base de los esquejes y estaquillas se sumergen en ácido indol-butírico (IBA) para

intensificar el desarrollo de raíces (Vidalie, 2001).

Fotografía 1. Crisantemos de diversas variedades.

Fuente: (http://www.flowers-cs.com/chrysanthemum.html)

El enraizamiento, se lleva a cabo en invernadero, en bandejas de propagación; aunque

muchos cultivadores utilizan bancos; estos deben ser desinfectados con vapor, formol, xilol

o fenol, al término de la temporada. El sustrato debe ser poroso, pudiendo emplear perlita,

vermiculita, arena o mezclas de turba y arena en relación 1:2 y turba, aserrín y arena a

partes iguales. Se pretende que las plantas crezcan con raíces cortas pero gruesas y que

posean cepellón para el momento del trasplante. Para lograr un buen enraizamiento, se

puede aplicar algún enraizador o algún fertilizante nitrogenado. La temperatura del

invernadero deberá controlarse entre 15 y 18º C y la del medio de enraizamiento entre 18 y

21º C. La nebulización es necesaria, cuando el nivel de luz y la temperatura del aire, son

elevados e incluso se puede recurrir al sombreado. El trasplante puede llevarse a cabo entre

los 10 y 20 días, dependiendo de la variedad y de la temporada (Vidalie, 2001).

Otras flores a las que coloquialmente también se les llaman crisantemos, es el género

Aster. Este género comprende unas 250 especies procedentes de zonas templadas del

hemisferio norte, con flores semejantes a las margaritas que nacen a finales de verano o

durante el otoño. Destacan sus grandes flores de variados colores con el disco central

amarillo o púrpura. Para su crecimiento necesitan humedad, no soportan el viento y

prefieren los suelos ricos en humus (Vidalie, 2001). En la fotografía 2, se muestran

fotografías de las especies más representativas del género.

http://www.flowers-cs.com/chrysanthemum.html

15

Fotografía 2. (a) Aster alpinus, (b) Aster cordifolius, (c) Aster divaricatus.

Fuente: (http://luirig.altervista.org/flora/aster.htm)

II.1.1.2 Cultivo de gladiola

La gladiola pertenece a la familia Iridaceae y comparte ciertas características con flores

relacionadas como el iris, la orquídea y el narciso, principalmente que son largas y de

colores brillantes. Muchas de estas flores son de larga duración y son de las flores de corte

más importantes en el mundo. Están adaptadas a la polinización por varios animales e

insectos, incluyendo colibríes, escarabajos, mariposas, polillas, avispas y abejas, entre otros

(Manning & Goldblatt, 2008).

El género se encuentra distribuido en Europa mediterránea, Asia, África tropical y

África del sur. Contiene alrededor de 260 especies, de las cuales 250 son nativas de África

subsahaariana. Las flores de las especies silvestres pueden ser desde muy pequeñas hasta

de 40 mm y sus inflorescencias pueden tener desde una hasta varias flores. Las flores

largas y gigantes comerciales, son producto de hibridización, selección y posiblemente

manipulación. Las hay de diferentes y variados colores, desde rosado hasta rojizo o vino,

morado con blanco, con marcas contrastantes (véase Fotografía 3) (Manning & Goldblatt,

2008).

Fotografía 3. Gladiola.

(Fuente: http://www.types-of-flowers.org/autumn-flowers.html)

a b c

http://luirig.altervista.org/flora/aster.htm

http://www.types-of-flowers.org/autumn-flowers.html

16

II.1.1.3 Cultivo de clavel

El clavel (Dianthus caryophyllus L.) pertenece a la familia Cariophyllaceae y es

originario de la cuenca del Mediterráneo. Los primeros claveles adaptados a la producción

fueron seleccionados en Lyon alrededor del año 1845. A partir de 1942, William Sim,

obtuvo mediante hibridaciones y selecciones una serie de claveles que llevan su nombre

"Clavel Sim o Clavel Americano", que han dado origen al desarrollo de la producción en

invernadero y bajo túneles (Infoagro Systems, S.L., sin fecha; Vidalie, 2001).

Los claveles estándar y miniatura, son una de las más importantes flores de corte en el

comercio mundial. Además, debido a su fácil y rápida multiplicación, el clavel es objeto de

un importante comercio internacional de esquejes. Estados Unidos es el mayor mercado de

clavel del mundo y en la actualidad Colombia, es el principal proveedor y el principal

productor mundial de clavel estándar. Después de Colombia, Ecuador y Guatemala son los

principales proveedores del mercado norteamericano (Infoagro Systems, S.L., sin fecha;

Vidalie, 2001).

Puede verse afectado por varias plagas dentro de las que se incluyen ácaros:

(Tetranychus urticae), tortrix europeo (Cacoecimorpha pronubana) y tortrix surafricana

(Epichoristodes acerbella), trips (Frankliniella occidentalis), pulgones (Myzus persicae),

minadores (Psedonapomyza dianthicola) y nemátodos (Meloidogyne spp.). Algunas de las

enfermedades más comunes de este cultivo son: roya (Uromyces caryophillinus), fusariosis

(Fusarium oxysporum), mancha foliar (Pseudomonas andropogonis), otros hongos como

Rhizoctonia solani, Alternaria dianthi, Alternaria dianthicola, Botrytis cinerea pueden

afectarlo; también se ha reportado el virus del mosaico de las nerviaciones del clavel o

Carnation Vein Mottle Potyvirus (CVMV) (Infoagro Systems, S.L., sin fecha; Vidalie,

2001) (ver fotografía 4).

Fotografía 4. Clavel.

(Fuente: http://whotalking.com/flickr/Tarde+Amarilla)

17

II.1.1.4 Cultivo de cartucho

Las calas, alcatraces o cartuchos (Zantedeschia sp.) son un género de 28 especies de

plantas herbáceas perteneciente a la familia Araceae, nativas de sur de África desde

Sudáfrica al norte de Malawi. Es un rizoma herbáceo que alcanza de 1 a 2,5 metros de

altura con hojas de 15-45 cm de longitud. La inflorescencia es blanca, amarilla o rosada.

Prefieren el clima templado o frío y requieren de un riego abundante a moderado. Su

propagación puede darse por semilla, hijos o rizomas. Posee un tallo carnoso subterráneo

que rebrota cada año. Se cultiva principalmente por sus espatas, que son órganos

decorativos semejantes a pétalos, que rodean el espádice, es decir, el órgano floral erecto,

de color amarillo. Estas espatas aparecen en primavera hasta otoño. Las hojas son

lustrosas, de bordes ondulados, aguzadas hacia la punta y con la nervadura central bien

pronunciada. Aunque no siempre fructifica, la planta produce unas bayas, contenidas en el

cáliz, de color amarillo pálido. Los productores las cultivan en grandes cantidades porque

se utilizan principalmente para la decoración (ver fotografía 5). Esta planta no tolera el

exceso de sol, por lo que su exposición debe ser de sombra o semisombra. Requiere de

abundante riego durante la floración, con una disminución paulatina hacia el otoño

(Vidalie, 2001).

No es afectada por muchas plagas, pero en ocasiones los pulgones pueden ser un

problema. La humedad que requiere el cultivo atrae moluscos, por lo que cuando aparecen

éstos se recomienda aplicar molusquicida o capturarlos manualmente. Entre las

enfermedades se pueden encontrar varias especies de hongos que pueden producir en las

hojas manchas de diferente aspecto y tamaño. Es frecuente el ataque de Phyllosticta y

Colletotrichum. Las hojas más afectadas se deben cortar y quemar, siendo raro tener que

recurrir a fungicidas. La podredumbre de la raíz se manifiesta por el amarillamiento y la

marchitez de las hojas inferiores, que son las más viejas. Si la planta llega a florecer, las

flores suelen quedar deformes y finalmente muere la planta. El hongo causante es

Phytophthora richardiae u otros hongos del suelo como Rhizoctonia y Sclerotinia

sclerotium, entre otros (Vidalie, 2001).

Fotografía 5. Cartucho.

(Fuente: http://www.photomazza.com/?Zantedeschia-aethiopica&lang=es)

18

II. 1.2 Principales plagas y enfermedades de las flores de corte

II.1.2.1 Enfermedades del follaje

II.1.2.1.1 Mancha foliar

El crisantemo es susceptible a varios hongos que causan manchas en las hojas,

incluyendo Septoria chrysanthemi, S. chrysanthemella, Alternaria spp., y Cercospora

chrysanthemi (ver fotografía 6). Los síntomas inician como manchas amarillas que se

oscurecen, tornándose cafés o negras. Generalmente estas manchas aparecen de primero en

las hojas bajas, donde se vuelven más grandes hasta causar la muerte de la hoja (Center for

Agriculture, 2012; Kluepfel & Scott, 2006).

Como medida de control, debe recogerse y destruirse los restos de plantas infectadas y

remover las hojas que parezcan sintomáticas. En casos severos deben aplicarse fungicidas

que contengan alguno de los siguientes principios activos: clorotalonil, mancozeb,

miclobuanil, propiconazol o metil tiofanato; según las instrucciones del fabricante (The

Regents of the University of California, 2009; Moorman, 2012).

Fotografía 6. Mancha foliar causada por Septoria.

(Fuente: http://ohioline.osu.edu/b614/f97-100.html)

II.1.2.1.2 Oídio, (mildew)

Llamada mildew polvoriento u oídio (ver fotografía 7), usualmente es causado por

Erysiphe cichoracearum en crisantemo. Como su nombre lo indica, se caracteriza por un

crecimiento polvoriento de color blanco a cenizo sobre las hojas y ocasionalmente en los

tallos. El follaje parece distorsionado y las hojas se decoloran, encogen y mueren. La

enfermedad es más seria en clima cálido y húmedo. Puede evitarse mediante el

espaciamiento de las plantas y mantener una buena circulación de aire, humedad relativa

baja y niveles de luz adecuados. Es necesario aplicar fungicidas preventivos que contengan

alguno de los siguientes principios activos: cobre, azoxistrobina, piraclostrobina,

triflumizol, miclobutanil, triadimefon, propiconazol, azufre, bicarbonato de potasio o metil

tiofanato según las instrucciones del fabricante (Center for Agriculture, 2012; Salmerón,

1989), al aparecer los primeros signos de la enfermedad.

19

Fotografía 7. Sintomatología de oídio o “mildew” en follaje de crisantemo.

(Fuente: http://greenthumbzone.com/make-gardening-easy-%E2%80%93-7-simple-ways-of-

improving-your-plot-today/pests/diseases/)

II.1.2.1.3 Botrytis o podredumbre gris

Esta enfermedad es causada por Botrytis cinera (ver fotografía 8), puede afectar pétalos,

hojas o tallos. Las partes afectadas se recubren por masas de esporas polvorientas de color

gris a café. Los tejidos más viejos son los más susceptibles. La enfermedad es favorecida

por períodos extendidos de clima húmedo, nublado y lluvia. Para evitarla es importante

remover las hojas y flores senescentes; evitar mojar las flores cuando se riegan las plantas y

no sobrepoblar. Es importante mantener una buena circulación de aire entre las plantas y

mantener baja la humedad. Se debe aplicar fungicidas como medida preventiva en cuanto

se observen los primeros síntomas de la enfermedad. Estos fungicidas deben contener

alguno de los siguientes ingredientes activos: clorotalonil, dicloran, fludioxonil,

trifloxistrobina, iprodiona, mancozeb, sulfato de cobre pentahidratado, fenhexamida,

azoxistrobina y metil tiofanato. Es necesario rotar las aplicaciones ya que se ha reportado

la existencia de cepas resistentes (Moorman, 2012; Center for Agriculture, 2012; Salmerón,

1989).

Fotografía 8. Daño causado por Botrytis en la flor.

(Fuente: Tomado de Moorman, 2012)

II.1.2.1.4 Roya

Esta enfermedad es causada por dos especies del hongo Puccinia, P. chrysanthemi y P.

horiana. P. chrysanthemi (ver fotografía 9), es más frecuente a finales del verano y se

20

caracteriza por pústulas cafés sucias y manchas amarillo-verdosas en la superficie de las

hojas. Sólo causa daños menores en el campo y casi no se observa en invernadero; sin

embargo, una infestación severa puede dañar áreas grandes de las hojas y llevar a la

defoliación y producción disminuida de flores. Existen algunas variedades resistentes a

roya como lo son: Achievement, Copper Bowl, Escapade, Helen Castle, Mandalay,

Matador, Miss Atlanta, Orange Bowl y Powder Puff (Center for Agriculture, 2012;

Moorman, 2012).

Fotografía 9. Síntomas característicos de roya del crisantemo causada por P. chrysanthemi.

(Fuente: http://www.chrysanthemums.info/ailments/dis-brown-rust.htm)

P. horiana es el hongo causante de la roya blanca del crisantemo (ver fotografía 10) y

está sujeto a cuarentena en varios países. Los síntomas característicos incluyen pústulas

blancas, rosadas o cafés en el envés de las hojas, con lesiones blancas, amarillas o verde

claro en la superficie de la hoja. Esta enfermedad lleva a distorsión en las hojas,

decoloración, defoliación y muerte de la planta. Se considera que principalmente afecta a

cultivos bajo invernadero, ya que a campo abierto la luz directa del sol y la baja humedad

matan las esporas (Center for Agriculture, 2012; Kluepfel & Scott, 2006).

Fotografía 10. Síntomas característicos de roya blanca del crisantemo causada por P. horiana.

(Fuente: http://www.weedimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=5430720)

II.1.2.1.5 Mancha foliar bacteriana

Es causada por Pseudomonas cichorii. Los síntomas de la mancha foliar bacteriana son

manchas cafés usualmente rodeadas por tejido amarillento; también se observa

decoloración a lo largo de las venas y posteriormente las hojas se marchitan y la planta

termina muriendo (ver fotografía 11). Las bacterias pueden persistir en o sobre plantas

21

infectadas, restos de plantas, semillas infectadas, suelo, macetas o herramientas

contaminadas (Center for Agriculture, 2012; Kluepfel & Scott, 2006).

Las medidas más importantes para el manejo de la enfermedad incluyen el uso de

plántulas y semillas certificadas libres del patógeno, variedades resistentes, medidas

sanitarias apropiadas y evitar regar las plantas por la parte superior o manipularlas cuando

están húmedas. Una vez que se detecta una planta afectada, es necesario removerla y

también retirar las que están adyacentes a ella antes de que la enfermedad se disemine. Los

bactericidas como el cobre y antibióticos tienen efectividad limitada y no pueden curarse

(Kluepfel & Scott, 2006; Moorman, 2012).

Fotografía 11. Mancha foliar bacteriana causada por Pseudomonas chichorii.

(Fuente: http://www.forestryimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=1525124)

II.1.2.1.6 Tizón bacteriano

Es causado por la bacteria Erwinia carotovora, los síntomas se extienden a las hojas,

tallos y yemas. En los tallos se observan lesiones húmedas y oscurecimiento y en la parte

superior de la planta se observa marchitez y colapso (ver fotografía 12). La bacteria puede

sobrevivir en restos orgánicos y es favorecida por la humedad y temperaturas altas; y se

disemina fácilmente por herramientas, manos y plantas contaminadas (Center for

Agriculture, 2012; Salmerón, 1989).

Algunas medidas de control incluyen usar esquejes libres de patógenos, reducir la

humedad y aumentar la circulación de aire, evitar mojar el follaje al regar, implementar

medidas sanitarias adecuadas, inspeccionar regularmente las plantas y descartar las plantas

afectadas al detectarlas (Moorman, 2012; Kluepfel & Scott, 2006).

22

Fotografía 12. Síntomas causados por Erwinia carotovora.


II.1.2.1.7 Nemátodos foliares

Los nemátodos son gusanos redondos microscópicos que viven en el suelo y en materia

orgánica infestada; tienen la capacidad de nadar en pequeñas capas de agua sobre las

plantas, dispersándose de esta manera. El más importante es Aphelenchoides ritzema-bosi,

los síntomas son manchas angulares amarillo a café en las hojas bajeras que se propagan

hacia arriba en la planta (ver figura 13). Las lesiones en las hojas van creciendo hasta

abarcarla completamente y hacer que caiga. Para su control es importante inspeccionar

bien las plantas que ingresan a la plantación, remover plantas infestadas y restos orgánicos

y evitar mojar el follaje y la irrigación superior (Center for Agriculture, 2012; Kluepfel &

Scott, 2006).

Fotografía 13. Síntomas causados por nemátodos foliares.


II.1.2.1.8 Virus y otros agentes infecciosos

Los crisantemos son susceptibles a una gran cantidad de enfermedades de origen viral

entre los que se pueden mencionar el virus B del crisantemo, virus de la mancha necrótica

de Impatiens (INSV), virus de la aspermia del tomate (TAV) y virus del bronceado del

tomate (TSWV). Entre las enfermedades de origen viroidal se pueden mencionar el viroide

del moteado clorótico del crisantemo y el viroide del enanismo del crisantemo. También

existen fitoplasmas que causan una enfermedad de amarillamiento severo (Center for

Agriculture, 2012; The Regents of the University of California, 2009).

23

En general, los síntomas de virus y viroides incluyen enanismo y epinastía. Las flores

son pequeñas y distorsionadas y pueden tener rayado de colores. Los síntomas foliares son

diversos, pueden ser amarillamiento, manchas anulares, rayado, moteado, mosaico,

aclaramiento de venas, distorsión, arrugamiento, necrosis y defoliación. El amarillamiento

causado por fitoplasma (“aster yellows”) resulta en follaje clorótico, enanismo por

entrenudos cortos, brotes erectos amarillentos, pocas o ninguna flor, distorsión de las flores

y decoloración de las mismas. Muchas de estas enfermedades se diseminan mediante

insectos chupadores como áfidos y saltamontes. Cabe resaltar que no hay cura para los

virus, viroides ni fitoplasmas; por lo que el control de las enfermedades se basa en el

control de la diseminación removiendo y destruyendo plantas infectadas, manteniendo un

estricto control de malezas hospederas, controlando los vectores, desinfectando las

herramientas y el equipo adecuadamente (Center for Agriculture, 2012; Kluepfel & Scott,

2006).

II.1.2.1.8.1 Tospovirus

Tospovirus, es un género que involucra a varios virus y de varias cepas. Tienen un

amplio rango de hospederos y generalmente se encuentran en regiones templadas y

subtropicales a través del mundo. Se han encontrado por lo menos 166 especies hospederas

de 34 familias, incluyendo siete familias de monocotiledóneas (The Regents of the

University of California, 2009; Center for Agriculture, 2012).

La sintomatología que producen es bastante característica aunque puede confundirse

con infecciones causadas por hongos y a veces bacterias (ver figura 14). Producen clorosis,

necrosis y enanismo así como enaciones en muchas partes de la planta. Ocurre

marchitamiento de las hojas y aparecen bandas cafés en los tallos. En las hojas, las

manchas son anulares así como en el fruto. Este síntoma es característico de este tipo de

virus. En crisantemo específicamente, se puede encontrar una gran variación en la

respuesta a la infección por estos virus según la variedad del y según la atracción hacia el

trips. La variedad Polaris por ejemplo es muy suceptible al virus. Le causa manchas

necróticas en el tallo de color café oscuro y el marchitamiento y quemaduras de la hoja son

típicas de la infección por TSWV en crisantemos (Zittler et al., 1989). La transmisión

puede llevarse a cabo mecánicamente pero principalmente se transmite por trips. Se han

reportado casos de transmisión por semilla pero sólo se ha encontrado el virus en la testa.

La transmisión por trips es a través del adulto pero la adquisición de virus es únicamente en

la etapa larval. El virus se transmite de manera persistente, es decir, puede ser transmitido

durante toda la vida del insecto, en este caso, se replica en su interior pero no se transmite a

la descendencia (Zitter et al., 1989). Este virus es uno de los más inestables, no puede

permanecer fuera de la planta por períodos largos. Esto hace que la forma de recolectar y

almacenar la muestra previo al análisis sea de suma importancia, de lo contrario, se corre el

riesgo de no poder identificarlo. Tiene un punto de inactivación a los 40 y 46 grados

centígrados, su longevidad a temperatura ambiente (25 grados centígrados) es de 2 a 5

horas. Su infectividad baja grandemente al acercarse el pH a 5 (Center for Agriculture,

2012; Kluepfel & Scott, 2006).

24

Fotografía 14. Síntomas causados en el tallo y en las hojas de una planta de crisantemo por TSWV.

(Fuente: http://www.forestryimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=5260055 y

http://vegetablemdonline.ppath.cornell.edu/factsheets/Virus_SpottedWilt.htm)

II.1.2.1.8.2. Virus de la Aspermia del Tomate (TAV)

Este virus se caracteriza por causar deformación de la inflorescencia, reduce el tamaño

y cambia el color de las flores. Dichos síntomas florales no siempre se manifiestan el

primer año. En la mayor parte de las variedades del crisantemo, no se aprecian síntomas en

las hojas; pero siempre aparece un jaspeado, acompañado de una reducción del crecimiento

y, más raramente, de un enanismo (ver fotografía 15). El virus de la aspermia, es

transmitido por pulgones, herramientas y manos contaminadas. Como medidas de control

hay que cuidar la sanidad del material vegetal (cultivo de ápices meristemáticos in vitro),

eliminar las plantas enfermas y controlar los pulgones. El TAV puede eliminarse por

termoterapia con tratamientos de aire caliente a 37º C (Salmerón, 1989; The Regents of the

University of California, 2009).

Fotografía 15. Síntomas causados por TAV en crisantemo.

(Fuente: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304423808002756)

II.1.2.1.8.3. Virus del mosaico del crisantemo o virus B del crisantemo (CVB).

Este virus también es diseminado por pulgones, por lo que deben controlarse las

poblaciones de estos insectos, además de emplear plantas libres de virus. Los síntomas son

excesivamente variables según cultivares, estado vegetativo de las plantas y condiciones de

cultivo. En general, suelen ser más acentuados en los esquejes y las plantas jóvenes (ver

http://www.forestryimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=5260055

http://vegetablemdonline.ppath.cornell.edu/factsheets/Virus_SpottedWilt.htm

25

fotografía 16). En algunas variedades se ha observado la caída anormal de hojas y una

reducción del crecimiento (Kluepfel & Scott, 2006; Moorman, 2012).

Una alternativa para eliminar el CVB es la termoterapia de plántulas, mediante la cual

con tratamientos de aire caliente a 37ºC se desnaturaliza el virus y crece tejido sano a partir

de los meristemos (The Regents of the University of California, 2009; Moorman, 2012).

Fotografía 16. Síntomas causados por CVB en crisantemo.

(Fuente:

http://www.plantwise.org/?dsid=12592&loadmodule=plantwisedatasheet&page=4270&site=234)

II.1.2.2 Marchitez vascular

Los crisantemos son susceptibles a dos enfermedades de marchitez vascular causadas

por Fusarium oxysporum f.sp. chrysanthemi y Verticillium dahliae; ambos patógenos

persisten en el suelo por varios años (Center for Agriculture, 2012).

II.1.2.2.1. Marchitez por Fusarium oxysporum f.sp. chrysanthemi

Los primeros signos de la enfermedad son amarillamiento del follaje, enanismo y

marchitez, usualmente sólo de un lado de la planta. Las plantas parecen estresadas por

agua y el follaje puede marchitarse y morir (ver fotografía 17). Los tallos presentan

decoloración y el sistema vascular se torna rojizo-café (ver fotografía 18). Se dispersa por

suelo contaminado y brotes infectados y se ve favorecido por temperaturas cálidas,

humedad relativa alta, exceso de agua y drenaje pobre. Para su control es importante

asegurarse que los brotes y esquejes estén libres de patógenos, al fertilizar ajustar el pH a

6.5-7 y usar nitrato-nitrógeno. Evitar usar cultivos susceptibles como Bravo, Cirbronze,

Illini Trophy, Orange Bowl, Royal Trophy y Yellow Delaware (Center for Agriculture,

2012; Salmerón, 1989).

26

Fotografía 17. Marchitez unilateral en crisantemo causada por Fusarium.

(Fuente: http://plantpathology.uark.edu/3312.htm)

Fotografía 18. Sintomatología en el sistema vascular causada por Fusarium.

(Fuente: http://www.insectimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=1525154)

II.1.2.2.2 Marchitez por Verticillium dahliae

Los síntomas aparecen después de la floración, las plantas vigorosas son asintomáticas.

El follaje se torna amarillento y marchito y algunas veces sólo en el margen de las hojas y

sólo de un lado de la planta. Las hojas empiezan a morir desde la base de la planta hacia

arriba pero permanecen adheridas; en los tallos aparece un rayado oscuro en el sistema

vascular (ver fotografía 19). La enfermedad se ve favorecida por el clima cálido. La

mayoría de variedades son resistentes por lo que es importante evitar usar variedades

susceptibles como Bright Golden Ann, Echo, Glowing Mandalay, Mountain Peak, Paragon,

Pert, Puritan y Wedgewood (Center for Agriculture, 2012; Salmerón, 1989).

Fotografía 19. Marchitez causada por Verticillium en plantas de girasol.

(Fuente: http://greenindustry.uwex.edu/problemdetails.cfm?problemid=1429)

http://plantpathology.uark.edu/3312.htm

http://www.insectimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=1525154

27

II.1.2.3. Otras enfermedades

II.1.2.3.1 Pudrición de la raíz

La pudrición de la raíz o pudrición basal del tallo es ocasionada por Pythium spp. en

condiciones de excesiva humedad en el suelo (ver fotografía 20). La diseminación de las

esporas se produce a través del suelo o de agua contaminada. El sistema radicular se

debilita, de forma que las plantas infectadas se atrofian. Aparecen lesiones de color marrón

oscuro a negro cerca del suelo, que pueden causar aberturas en la corteza. Como medida de

control debe tratarse el suelo antes de plantar, por ejemplo con etazol. Una vez que

aparezca la enfermedad deben tratarse suelo y planta con los primeros síntomas, aplicando

por ejemplo diazoben (The Regents of the University of California, 2009; Salmerón, 1989).

Fotografía 20. Síntomatología causada por Pythium sp.


II.1.2.3.2 Pudrición del tallo

La pudrición del tallo es causada por Rhizoctonia solani, organismo procedente del

suelo, se desarrolla en condiciones de alta humedad y temperatura (ver fotografía 21). Las

plantas se marchitan en las horas de máxima temperatura y mínima humedad relativa, el

crecimiento es restringido y los tallos se pudren en la superficie del suelo. Los síntomas

foliares comienzan generalmente en las hojas inferiores y avanzan hacia arriba. Como

medidas de control debe tratarse el suelo con PCNB antes de plantar y pulverizar la base de

los esquejes con benomilo o clortalonil después de plantar (The Regents of the University

of California, 2009; Moorman, 2012).

Fotografía 21. Pudrición del tallo causada por Rhizoctonia solani.

(Fuente: http://www.forestryimages.org/browse/detail.cfm?imgnum=5258030)

28

II.1.2.3.3 Tumor o agalla de la corona

Se le llama así al daño causado por Agrobacterium tumefaciens que penetra desde el

suelo por las raíces o a través de tumores en condiciones húmedas. Da lugar a la aparición

de agallas en el tallo, inmediatamente por debajo de la superficie del suelo y

ocasionalmente en las hojas y los tallos (ver fotografía 22). Como medida de control deben

retirarse las plantas infectadas cuando aparezcan los tumores y desinfectar los suelos con

fumigante o con calor; además es conveniente desinfectar las herramientas utilizadas en la

propagación (Kluepfel & Scott, 2006; Moorman, 2012).

Fotografía 22. Agalla causada por Agrobacterium tumefaciens en crisantemo.

(Fuente: http://www.science.oregonstate.edu/bpp/Plant_Clinic/agrobacterium/chrysanthemum.htm)

II.1.2.4. Principales plagas insectiles

. II.1.2.4.1 Moscas minadoras del crisantemo

Son las larvas de dos especies de moscas las que pueden causar grandes daños a los

cultivos de crisantemos: Minador Europeo de las hojas (Phytomyza syngenesiae) y Minador

Americano de las hojas (Liriomyza trifolii). La mosca Minadora Europea se desarrolla en

más de 10 especies silvestres y cultivadas de plantas, entre las que se encuentra la cineraria,

además del crisantemo. Los adultos de este insecto, cuyo tamaño no sobrepasa los tres

milímetros, viven solamente unas dos o tres semanas. La hembra pone alrededor de un

centenar de huevos en el parénquima del envés de la hoja; cuatro o cinco días más tarde los

huevos eclosionan y las larvas que de ellos nacen inician la excavación de galerías, que se

manifiestan sobre el haz como una línea blancuzca, con reflejos plateados, de forma

irregular y serpenteante (ver fotografía 23). Según el número de galerías se comprueba una

disminución en la floración o bien anomalías en la misma lo que hace que las flores se

queden pequeñas o se desarrollen mal. Las larvas se transforman en ninfas dentro de la

misma galería, y la pupa puede verse en la cara inferior de la hoja en el extremo de la

galería (Salmerón, 1989; Kluepfel & Scott, 2006).

Para su control deben realizarse aplicaciones de metomilo y pirimicarb, bifentrin,

diazinon, entre otros. Entre otras medidas que pueden adoptarse para el control de este

insecto se pueden mencionar: enterrar profundamente las pupas a unos 18-25 centímetros,

29

con el fin de impedir el nacimiento de nuevos adultos. Se deben destruir rápidamente, por

medio del fuego, los restos de cosecha, ventilar bien los invernaderos, almacenar las nuevas

plantas durante una o dos semanas a 0o C vigilando el posible daño, antes de plantarlas. Se

recomienda desinfestar bien el suelo o el compost antes de su utilización y efectuar una

rotación con plantas que sean poco propicias al ataque de los minadores (Kluepfel & Scott,

2006; Salmerón, 1989).

Fotografía 23. (a) Daño causado por la mosca minadora del crisantemo, (b) Mosca minadora del

crisantemo Liriomyza trifolii.

(Fuente: http://www.eppo.int/QUARANTINE/insects/Liriomyza_trifolii/LIRITR_images.htm)

II.1.2.4.2 Trips

Los trips son insectos diminutos que pertenecen al orden Thysanoptera, familia

Thripidae. Existen más de 500 especies, pero sólo nueve son vectores de virus. Los trips

pueden causar daños directos e indirectos a las plantas. Los daños directos se producen por

larvas y adultos que raspan y succionan el contenido celular de los tejidos. Los daños

producidos por alimentación se reconocen como lesiones superficiales de color blanquecino

en la epidermis de hojas y flores, en forma de una placa plateada, que más tarde se

necrosan, pudiendo afectar a todas las hojas y provocar la muerte de la planta. La saliva

fitotóxica segregada en la alimentación da lugar a deformaciones en los meristemos, que al

desarrollarse la hoja en la epidermis aparecen manchas cloróticas arrugándose. Las yemas

florales infestadas severamente pueden quedarse cerradas o dar lugar a flores deformadas,

lo que disminuye su valor comercial considerablemente. También destaca la formación de

agallas, punteaduras o abultamientos, en los lugares en que se depositaron los huevos

(Kluepfel & Scott, 2006; The Regents of the University of California, 2009).

Los daños indirectos son los producidos por la transmisión de virosis ya que inyecta

saliva y succiona los contenidos celulares. Este insecto transmite principalmente el Virus

del Bronceado del Tomate (TSWV, del inglés Tomato Spotted Wilt Virus), que puede ser

transmitido por las especies Thrips tabaci, T. setosus, Frankliniella occidentalis, F. fusca,

F. intonsa, F. schultzei, F. bispinosa, F. cephalica, F. gemina, T. palmi y ScirtoThrips

(Riley, 2011; Kluepfel & Scott, 2006) (ver fotografía 24). T. palmi lo hace de una forma

poco eficiente y Scirtothrips dorsalis se comprobó por Lal Meena (2005) que era vector de

Tospovirus, sólo que sus estudios de transmisión fueron con el Groundnut Bud Necrosis

Virus (GBNV) (Lal Meena, Ramasubramanian, & Mohankumar, 2005). Sin embargo,

Zitter et al. (1989) lo reportan como vector de TSWV y también González (2011), reporta

http://www.eppo.int/QUARANTINE/insects/Liriomyza_trifolii/LIRITR_images.htm

30

a Scirtothrips dorsalis como vector de TSWV pero, establece que no está comprobado

experimentalmente todavía (Zitter & Daughtrey, 1989; González, 2011).

Fotografía 24. Frankliniella occidentalis (izquierda) y Thrips tabacci (derecha).

(Fuente: Laboratorio de Protección Vegetal 2008)

II.1.2.4.3 Áfido del crisantemo

Pertenece al orden Hemíptera, familia Aphidae; Macrosiphoniella sanborni y otras

especies de áfidos son pestes del crisantemo. Son insectos cafés a negros que se alimentan

mediante la succión de savia. Prefieren alimentarse de tejido nuevo, el envés de la hoja, la

flor y los botones. Al alimentarse, distorsionan el crecimiento de la planta, causan

enanismo y algunas veces la muerte de la planta (Kluepfel & Scott, 2006; The Regents of

the University of California, 2009).

Los áfidos causan dos tipos de daño a las plantas. Los daños directos se deben a la

alimentación sobre el floema de la planta, las ninfas y los adultos extraen nutrientes de la

planta y alteran el balance de las hormonas del crecimiento, esto origina un debilitamiento

de la planta. Los daños indirectos se dan como consecuencia de la alimentación, existe una

reducción de la fotosíntesis debido a que la savia es pobre en proteínas y rica en azúcares.

Los áfidos deben tomar gran cantidad de savia para conseguir suficientes proteínas. Los

pulgones excretan el exceso de azúcar como melaza y se deposita en el haz o envés de las

hojas, este exceso de melaza favorece el desarrollo del hongo conocido como fumagina,

que recubre la hoja y da lugar a una reducción de la actividad fotosintética de la planta y un

descenso de la producción. También pueden transmitir a la vez sustancias tóxicas y ser

vectores de virus fitopatógenos ya que son el grupo de insectos más eficaz en cuanto a la

transmisión de virosis. Esto normalmente es realizado por las formas aladas (Kluepfel &

Scott, 2006; The Regents of the University of California, 2009).

II.1.2.4.4 Ácaros

Los ácaros de la especie Tetranychus urticae y otras especies, son pestes del

crisantemo. Taxonómicamente no son insectos, sino que se relacionan más cercanamente

con las arañas. Constituyen un problema durante períodos más cálidos y secos. Son

31

extremadamente pequeños y prácticamente son invisibles a simple vista. Poseen un estilete

con el cual perforan el tejido vegetal y succionan la savia (Kluepfel & Scott, 2006).

Con una mínima infestación de estos ácaros pueden observarse pequeñas manchas

amarillas polvorientas, con una infección severa, las hojas se distorsionan y los brotes se

decoloran. Adicionalmente pueden fabricar una especie de red en los botones y entre los

tallos y el envés de las hojas (Kluepfel & Scott, 2006; Moorman, 2012).

Para controlarlo es importante destruir las plantas infestadas. Los ácaros pueden

removerse asperjando agua o agua jabonosa a las plantas o bien puede asperjarse algún

insecticida, por ejemplo Ortho Systemic Insect Killer que contiene acefato y óxido de

fenbutina. Regularmente se requieren dos aplicaciones con intervalos de 5-7 días (Kluepfel

& Scott, 2006; The Regents of the University of California, 2009).

32

PARTE III

III.1 RESULTADOS

III.1.1 Recolección de muestras

Para la identificación de artrópodos, hongos, bacterias y nemátodos, se analizaron un

total de 93 muestras, de las cuales 56 eran crisantemos, 23 rosas, 5 claveles, 5 gladiolas, 2

straticcia, 1 azucena y 1 espárrago ornamental. En el caso de virus se analizaron un total de

288 muestras, todas de crisantemo. En la Fotografía 25 se muestran algunos de los lugares

de colecta de los diferentes cultivos. Los resultados detallados de todos los análisis, por

tipo de flor de corte, se presentan en los Cuadros 3 a 5, sección IV.4.3. Anexo 3.

33

Fotografía 25. (A) Cultivo de crisantemo bajo invernadero. (B) Cultivo de rosa bajo invernadero.

(C) Cultivo de clavel. (D) Cultivo de gladiola. (E) Cultivo de estaticcia. (F) Cultivo de azucena.

(G) Cultivo de espárrago ornamental.


A B

G

F

E

D C

34

III..1.2 Identificación de artrópodos (insectos, arácnidos y otros)

III.1.2.1 Crisantemo

Se analizaron un total de 56 muestras de crisantemo, encontrándose la presencia de

trips, áfidos y minador. Se encontró trips de la especie Frankliniella occidentalis en 46

muestras, áfidos de la especie Coloradoa rufomaculata en 8 muestras y minador (Liriomyza

trifolii) en 5 muestras (véase Gráfica 1).

Gráfica 1. Porcentajes de trips, áfidos y minador en las 56 muestras de crisantemo analizadas.


En las fotografías 26, 27 y 28 se presentan tipos de daño causado por cada una de las

plagas y de los especímenes identificados.

Fotografía 26. (A) Daño causado por trips en crisantemo. (B) Especimen identificado como

Frankliniella occidentalis.


82.1

14.3

8.9

0.0 20.0 40.0 60.0 80.0 100.0

Trips (Frankliniela occidentalis)

Áfidos (Coloradoa rufomaculata)

Minador (Liriomyza trifolii)

A B

35

Fotografía 27. (A) Daño causado por áfidos en crisantemo. (B), (C) y (D) Especímenes

identificados como Coloradoa rufomaculata.


Fotografía 28. (A) y (B) Hojas de crisantemo afectadas por galerías de minador. (C) Pupa de

mosca minadora (Liriomyza trifolii) en hoja de crisantemo. (D) y (E) Especímenes identificados

como Liriomyza trifolii.


C D

A B

C D

A B

E

36

III.1.2.2 Rosa

Se analizaron un total de 23 muestras de rosa, encontrándose la presencia de trips,

áfidos, escama nevada y araña roja. Se encontró trips de la especie Frankliniella

occidentalis en 8 muestras, áfidos de la especie Macrosiphum pallidum en 2 muestras,

escama nevada (Aulacaspis rosae) en 1 muestra y araña roja (Tetranychus sp.) en 4

muestras (véase Gráfica 2).

Gráfica 2. Porcentajes de trips, áfidos, escama nevada y araña roja en las 23 muestras de rosa

analizadas.


En las fotografías 29, 30, 31 y 32 se presentan fotografías del daño causado por cada

una de las plagas y de algunos de los especímenes identificados.

Fotografía 29. (A) Daño causado por trips en rosa. (B) Espécimen identificado como

Frankliniella occidentalis.


Fotografía 30. (A) y (B) Especímenes identificados como Macrosiphum pallidum.


A B

34.8

8.7

4.3

17.4

0.0 20.0 40.0 60.0 80.0 100.0

Trips (Frankliniella occidentalis)

Áfidos (Macrosiphum pallidum)

Escama nevada (Aulacaspis rosae)

Araña roja (Tetranychus sp.)

A B

37

Fotografía 31. (A) Daño causado por escama nevada en rosa. (B) Espécimen identificado como

Aulacaspis rosae


Fotografía 32. Daño causado por Tetranychus sp. a hojas de rosa


III.1.2.3 Clavel

Se analizaron un total de 5 muestras de clavel, encontrándose la presencia de trips de la

especie Frankliniella occidentalis en 3 de ellas.

III.1.2.4 Gladiola

Se analizaron un total de 5 muestras de gladiola, encontrándose la presencia de trips, de

la especie Thrips simplex en todas ellas. En la Fotografía 33 se presenta el daño causado

por esta plaga y algunos de los especímenes identificados.

Fotografía 33.. (A) Daño causado por trhips en gladiola. (B) y (C) Especímenes identificados

como Thrips simplex.


A B C

A B

A B

38

III.1.3 Identificación de hongos


Se analizaron un total de 56 muestras de crisantemo, encontrándose la presencia de roya

blanca (Puccinia horiana) y Septoria chrysanthemella. Se encontró que 55 de las 56

muestras (98.2%) estaban infectadas con roya blanca y que en todos los puntos muestreados

se encontraba la presencia de este patógeno (véase Figura 4). En la Fotografía 34 se

muestran fotografías de plantas afectadas por roya blanca.

Figura 4. Puntos muestreados en San Juan Sacatepéquez con presencia de roya blanca.


39

Fotografía 34.. (A) Planta adulta y (B) planta joven de crisantemo afectadas por roya blanca.


Las pústulas foliares se observaron al estereoscopio (véase Fotografía 35) y se

realizaron cortes y raspados que fueron teñidos para identificar al patógeno, en los cuales se

observaron teliosporas bicelulares y hialinas (véase Fotografía 36).

Fotografía 35. Observación al estereoscopio de un complejo de pústulas características de roya

blanca.


Fotografía 36. (A) Teliosporas bicelulares y (B) teliosporas hialinas de Puccinia horiana en

crisantemo.


A B

A B

40

Se observó que la severidad con que el patógeno afectaba a las plantas variaba. Para

estimar el grado de severidad de la enfermedad se utilizó la escala diagramática que se

adjunta en la sección IV.4.4 Anexo 4. Dicha escala se basa en la cantidad de pústulas

presentes en las hojas (véase Fotografía 37). Cuando el porcentaje de severidad fue

superior al 41%, se observó necrosis de las flores y daño en los tallos y hojas y conforme

avanzaba la enfermedad se observó marchitez y defoliación completa de la planta.

Adicionalmente, en hojas severamente infectadas con la enfermedad, se observó la

presencia de otro hongo parasitando las pústulas, éste se identificó como Cladosporium sp.

(véase Fotografía 38).

Fotografía 37. (A) Hoja de crisantemo con severidad menor al 21% y (B) con severidad mayor al

41%.


Fotografía 38. Pústulas de roya blanca parasitadas por Cladosporium sp.


El otro hongo que se encontró en las muestras de crisantemo analizadas fue Septoria

chrysanthemella, sin embargo éste solo se encontró en dos de las 56 muestras. En la

Fotografía 39 se muestran plantas afectadas por este hongo y en la Fotografía 40 se muestra

una vista de S. chrysanthemella al microscopio.

B A

41

Fotografía 39. Plantas de crisantemo afectadas por Septoria chrysanthemella.


Fotografía 40: Septoria chrysanthemella vista al microscopio.


III.1.3.2 Rosa

Se analizaron un total de 23 muestras de rosa, encontrándose la presencia de

Podosphaera pannosa, Diplocarpon rosae, Dothiorella sp. y Phragmidium sp. Se encontró

Podosphaera pannosa, conocido como cenicilla, en 17 muestras; Diplocarpon rosae,

conocido como mancha negra, en 15 muestras; Dothiorella sp. en 15 muestras y

Phragmidium sp., conocido como roya de la rosa, en 3 muestras (véase Gráfica 3).

42

Gráfica 3. Porcentajes de Podosphaera pannosa, Diplocarpon rosae, Dothiorella sp. y

Phragmidium sp. en las 23 muestras de rosa analizadas.


Las fotografías 41, 42, 43 y 44 muestran el daño causado por cada una de las plagas

y a algunos de los especímenes identificados.

Fotografía 41. (A) y (B) Daño en hojas y flor causado por Podosphaera pannosa (cenicilla). (C)

Vista al microscopio de P. pannosa.


A B C

73.9

65.2

65.2

13.0

0.0 20.0 40.0 60.0 80.0 100.0

Cenicilla (Podosphaera pannosa)

Mancha negra (Diplocarpon rosae)

Dothiorella sp.

Roya (Phragmidium sp.)

43

Fotografía 42. (A) y (B) Daño causado por Diplocarpon rosae (mancha negra) en hojas de rosa.

(C) y (D) Vista microscópica de D. rosae


Fotografía 43. (A) Daño causado por Dothiorella sp. en tallos de rosa. (B) Vista microscópica de

Dothiorella sp.


Fotografía 44.. (A) Daño causado por Phragmidium sp. en hojas de rosa. (B) Vista microscópica

de Phragmidium sp.


A B C D

A

B

A B

44

III.1.3.3 Clavel

Se analizaron un total de 5 muestras de clavel, encontrándose la presencia de roya en

todas ellas. El agente causal fue identificado como Uromyces dianthi. En la Fotografía 45

se muestra el daño causado por este patógeno y una vista microscópica del mismo.

Fotografía 45. (A) Daño causado por la roya del clavel. (B) y (C) Vista microscópica de Uromyces

dianthi.


III.1.3.3 Gladiola

Se analizaron un total de 5 muestras de gladiola, encontrándose la presencia de roya en

todas ellas. El agente causal fue identificado como Uromyces transversalis. En la

Fotografía 46 se muestra el daño causado por este patógeno y una vista microscópica del

mismo.

Fotografía 46. (A) Daño causado por la roya de la gladiola. (B) y (C) Vista microscópica de

Uromyces transversalis.


A C B

A C B

45

III.1.3.4 Estaticcia, azucena y espárrago ornamental

Se analizaron dos muestras de estaticcia, encontrándose la presencia de Cercospora sp.

en ambas; en la Fotografía 47 se muestra el daño causado por este patógeno. En el caso de

azucena y espárrago ornamental, se analizó una muestra de cada uno, encontrándose la

presencia de Pythium ultimum y Roselinia necatrix, respectivamente. En las Fotografías 48

y 49 se muestra el daño causado por estos patógenos y una vista microscópica de los

mismos.

Fotografía 47. Daño causado por Cercospora sp. en tallo de estaticcia.


Fotografía 48.. (A) y (B) Daño causado por Pythium ultimum en azucena. (C) Vista microscópica

de Pythium ultimum.


A C B

46

Fotografía 49 (A) y (B) Daño causado por Roselinia necatrix en azucena. (C) Vista microscópica

de Roselinia necatrix.


III.1.4 Identificación de bacterias

No se encontró la presencia de bacterias patógenas en crisantemo, clavel, gladiola,

estaticcia, azucena y espárrago ornamental. En el caso de rosa, de las 23 muestras

analizadas, en una de ellas se encontró la presencia de Agrobacterium tumefaciens. En la

Fotografía 50 se muestra el daño causado por este patógeno.

Fotografía 50. Daño causado por Agrobacterium tumefaciens en rosa.


III.1.5 Identificación de nemátodos


En las muestras de crisantemo analizadas se encontraron los siguientes géneros de

nemátodos: Aphelencoides, Pratylenchus, Helicotylenchus, Meloidogyne y Hoplolaimus.

En la Fotografía 51 se muestra el daño causado por estos patógenos. Los resultados

detallados se presentan en la sección IV.4.3 Anexo 3.

A

C

B

47

Fotografía 51. Daño causado por nemátodos foliares en hojas de crisantemo.


III.1.5.2 Rosa

Se realizaron extracciones de nemátodos de las raíces y del suelo, encontrándose los

siguientes géneros: Pratylenchus, Helicotylenchus y Meloidogyne. En la Fotografía 52 se

muestra el daño causado por estos patógenos. Los resultados detallados se presentan en la

sección IV.4.3 Anexo 3.

Fotografía 52. (A) Raíces de rosa afectadas por Meloidogyne sp. (B) Vista microscópica de

Meloidogyne sp.


III.1.5.3 Clavel y Estaticcia

Se realizaron extracciones de nemátodos tanto de la raíz como del suelo, encontrándose

los siguientes géneros: Pratylenchus y Meloidogyne en clavel; y solamente Meloidogyne en

estaticcia. Los resultados detallados se presentan en la sección IV.4.3 Anexo 3.

A B

48

III.1.6 Análisis de virus


Inicialmente se realizó un muestreo dirigido a plantas de crisantemo que presentaban

tallo necrótico y hojas bronceadas o quemadas, así como una necrosis generalizada, ya que

era uno de los problemas que más urgía a los floricultores dilucidar (véase Fotografía 53).

Para este pequeño muestreo, de las 54 muestras analizadas, 40 (74%) resultaron positivas

para TSWV y ninguna para INSV.

Seguidamente se realizó un muestreo dirigido a sintomatología general de virosis (véase

Fotografía 54), en el cual se analizaron un total de 288 muestras, todas de crisantemo de

diferentes variedades. A todas las muestras se les corrieron pruebas para cinco virus

diferentes, encontrándose que 268 de ellas estaban infectadas por al menos un virus (véase

Gráfica 4). No obstante, de los cinco virus analizados, sólo se encontraron tres de ellos.

Los virus encontrados fueron TSWV en 8 muestras, TAV en 61 muestras y CVB en 90

muestras. No se encontró ninguna planta positiva para INSV ni CMV. En la Gráfica 5 se

presentan los porcentajes de muestras infectadas con los virus analizados.

Fotografía 53. (A), (B) y (C) Síntomas en campo de plantas de crisantemo infectadas por TSWV.

(D) Necrosis en el tallo causada por TSWV.


A B C D

49

Gráfica 4. Porcentaje de plantas de crisantemo infectadas por virus, n=288.


Gráfica 5. Porcentaje de plantas de crisantemo infectadas por cada uno de los virus analizados,

n=288.


Infectadas 93%

No Infectadas 7%

Muestras de crisantemo infectadas con virus

0

90

0

61

8

0 20 40 60 80 100

CMV

CVB

INSV

TAV

TSWV

Porcentaje de muestras infectadas con cada virus

50

Fotografía 54. Síntomas asociados a virosis presentados por plantas de crisantemo en campo.

(Fuente: Fotografías por S. Barrios 2007, FODECYT 088-2006)

a

.

Enaciones y deformación foliar

d

.

Moteado

e

.

Necrosis en flores

g

.

Clorosis y deformación foliar h

. Deformación foliar y clareado de venas

i Tallo necrótico

Mosaico c

.

Manchas necróticas en flores f

.

Flores pequeñas y deformes j

b

.

Mosaico

51

III.1.7 Diseño e implementación de planes de manejo de plagas

En base a los resultados del monitoreo de plagas y enfermedades, se determinó que las

tres plagas más importantes, según incidencia y severidad fueron roya blanca del

crisantemo (Puccinia horiana), trips (Frankliniella occidentalis) y TSWV. En base a esto

se realizaron dos planes de manejo integrado, uno bajo invernadero y otro sin él, que se

detallan a continuación.

III.1.7.1 Análisis de suelo

Se realizó un análisis de suelo (véase sección IV.4.5 Anexo 5) para determinar el plan

de fertilización. Este análisis reveló que el suelo necesitaba aportes de materia orgánica,

que se suplementó con gallinaza a razón de 2qq por tablón.

En cuanto al nitrógeno se aplicó el 100% de la dosificación de 100 kg/Ha debido a su

volatilidad. Los análisis revelaron que el fósforo y el potasio estaban en niveles por encima

de los rangos ideales, esto sugirió que se tenía que hacer una aplicación mínima de éstos

elementos y por lo tanto se aplicó el 25% de la dosis de 100 kg/Ha. Los elementos menores

se reportaron dentro de los rangos normales a excepción del cobre, el cual fue

suplementado por las aplicaciones de fungicidas a base de este elemento.

III.1.7.2 Preparación de esquejes

Los esquejes sanos se obtuvieron de las puntas de plantas madre que no tuvieran

problemas de enfermedades fúngicas o insectos. Adicionalmente, se les aplicó fungicida

(Clorotalonil®), insecticida (Endosulfan®) y bioestimulantes (Radifarm®).

III.1.7.3 Preparación de camas de enraizamiento y manejo durante enraizamiento

Las camas de enraizamiento consistieron en cajones que tenían como sustrato arena

blanca, ya que ésta retiene la humedad. Dichas camas fueron desinfectadas con regaderas y

productos como Captan® y Carbendazim® para controlar hongos del suelo (como

Rhizoctonia y Phythium), responsables del gran porcentaje de muerte de plántulas. A los

siete días de enraizados los esquejes, se realizó una aplicación de insecticida

(Azadiractina®). A los 15 días los esquejes enraizados fueron tratados nuevamente con

insecticida (Endosulfan®), fungicida (Clorotalonil®) y bioestimulantes (Radifarm®), para

aumentar la vigorosidad y la prevención de plagas en el proceso del trasplante a campo

definitivo. Véase Fotografía 55.

52

Fotografía 55. Proceso de enraizamiento de plántulas de crisantemo.


III.1.7.4 Preparación del tablón y transplante a campo definitivo

Antes del transplante, se preparó el tablón de la siguiente manera: Se picó la tierra

aflojándola para que las raíces recién formadas de la planta pudieran desarrollarse

fácilmente, se hizo la desinfección del tablón con la utilización de una bomba de mochila

debidamente calibrada, se aplicó Captan® y Carbendazim®, para controlar los hongos del

suelo. Las plántulas se sembraron en los tablones desinfectados a una distancia de 15 x 15

cm. Aunque este distanciamiento redujo la cantidad de plántulas sembradas por m2, se

mejoró la circulación de aire entre las plantas, para evitar que se favoreciera la proliferación

de hongos, así como para facilitar la llegada de los productos químicos al interior del

cultivo.

III.1.7.5 Manejo en campo definitivo

En los Cuadros 1 y 2 se detallan las aplicaciones semanales realizadas tanto bajo

invernadero como en campo abierto. Adicionalmente en la Fotografía 56 se ilustra el

proceso de preparación de los diferentes productos aplicados.

53

Fotografía 56. Dosificación, mezcla y aplicación de productos.


Cuadro 1. Aplicaciones efectuadas en campo definitivo bajo invernadero. A todas las aplicaciones

de agroquímicos se adicionaron adherente y corrector de pH (pH Agro). Semana Insecticida Fungicida Bioestimulantes Otras actividades

1 Spinosad (Spintor) Iminoctadine-tris

(Bellkute)

Aplicación de 15-15-15 y

trampas amarillas

2 Acefato (Orthene) Cymoxanil-Mancozeb

(Curathane)

Glutation-Oligosacarinas

(Kendal)

Aplicación de gallinaza y

Tutoreado

3 Endosulfan

(Thiodagro)

Clorotalonil (Duro) Limpieza de malezas

4 Dimetoato

(Promofektion)

Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)


(Kendal)

5 Spinosad (Spintor) Tebuconazole (Silvacur)

6 Fipronil (Regent) Iminoctadine-tris

(Bellkute)


(Kendal)

Aplicación de UREA

46-0-0 y

trampas amarillas


(Curathane)


(Kendal)

8 Imidacloprid-

Cyflutrin (Muralla)

Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)


(Kendal)

Limpieza de malezas

9 Azadiractina (Aza-

Direct)

Cymoxanil-Mancozeb

(Curathane)


(Kendal)

10 Spinosad (Spintor) Bitertanol (Baycor) Glutation-Oligosacarinas

(Kendal)

Aplicación de nitrato de

potasio

11 Acefato (Orthene) Tebuconazole (Silvacur) Glutation-Oligosacarinas

(Kendal)

12 Imidacloprid-

Cyflutrin (Muralla)

Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)


(Kendal)


54

Cuadro 2. Aplicaciones efectuadas en campo definitivo sin invernadero. A todas las aplicaciones

de agroquímicos se adicionaron adherente y corrector de pH (pH Agro). Semana Insecticida Fungicida Bioestimulantes Otras actividades

1 Spinosad (Spintor) Iminoctadine-tris

(Bellkute)

Aplicación de 15-15-15


(Curathane)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

Aplicación de gallinaza

y tutoreado

3 Endosulfan

(Thiodagro)

Clorotalonil (Duro) Limpieza de malezas

4 Tiociclam

H-oxalato

(Evisect)

Iminoctadine-tris

(Bellkute)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

5 Spinosad (Spintor) Tebuconazole

(Silvacur)

5 (2da

aplicación)

Clorotalonil (Duro)

6 Fipronil (Regent) Iminoctadine-tris

(Bellkute)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

Aplicación de UREA

46-0-0

6 (2da

aplicación)

Imidacloprid-Cyflutrin

(Muralla)

Bitertanol

(Baycor)

Limpieza de malezas

7 Acefato (Orthene) Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

7 (2da

aplicación)

Azadiractina (Aza-

Direct)

Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)

8 Imidacloprid-Cyflutrin

(Muralla)

Triadimenol

(Caporal)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

9 Endosulfan

(Thiodagro)

Propineb

(Antracol)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

9 (2da

aplicación)

Triloxystrobin

(Flynt)

10 Imidacloprid-Cyflutrin

(Muralla)

Cymoxanil-Mancozeb

(Curathane)

Glutation-

Oligosacarinas

(Kendal)

Aplicación de nitrato

de potasio

11 Spinosad (Spintor) Cymoxanil-Mancozeb

(Curathane)

12 Acefato (Orthene) Mancozeb-Cobre

(Cobrethane)


En la onceava semana se hizo el análisis foliar antes de la floración (véase sección

IV.4.6 Anexo 6) y se determinó que las plantas no estaban deficientes en macroelementos

y microelementos. La cosecha de las flores se hizo manualmente, detallando el

rendimiento de los tratamientos en manojos por tablón.

55

III.1.8 Efectos de la implementación del plan de manejo de plagas propuesto

III.1.8.1 Efectos en la fertilización y aplicación de plaguicidas

La aplicación de fertilizantes se redujo en un 90% debido a que se realizó en base al

análisis de suelos realizado previo a la siembra. Dicho análisis sólo reflejó la necesidad de

nitrógeno, el cual se aplicó 3 veces en diferentes presentaciones (Triple 15, Urea y nitrato

de potasio) a razón de 1lb/tablón, supliendo también las necesidades de fósforo y potasio

que eran mínimas (25% de la dosis de 100 kg/Ha) para todo el ciclo de cultivo.

En el caso de los plaguicidas, las aplicaciones se ordenaron de acuerdo a las

necesidades y plagas del cultivo, haciéndose conciencia de la importancia de la mezcla de

los mismos y su correcta dosificación, rotación y utilización.

III.1.8.2 Efectos en la fase de enraizamiento de esquejes

Bajo este plan de manejo se disminuyó el tiempo de enraizamiento de 20 a 15 días,

observándose mayor vigorosidad tanto foliar como radicular (véase Fotografía 57).

Además, se redujo considerablemente la muerte por hongos del suelo como Rhizoctonia y

Phythium en un 25%. Las plantas tratadas demostraron mejor adaptación al traslado a

campo definitivo en un 30%.

Fotografía 57. Diferencia entre esquejes tratados y no tratados


Tratado

No Tratado

56

III.1.8.3 Efectos en la fase de crecimiento y desarrollo del cultivo bajo invernadero.

En la secuencia de imágenes presentadas en la Fotografía 58 puede observarse que el

desarrollo del cultivo utilizando el plan de manejo propuesto es equivalente al desarrollo

obtenido con las prácticas tradicionales del floricultor; sin embargo, el plan propuesto se

basó en el análisis de suelos para la aplicación de fertilizantes, utilizándose una menor

cantidad de éstos.

La calidad de la flor está directamente relacionada con el manejo durante las fases de

desarrollo y crecimiento, en el caso del plan propuesto se obtuvo una calidad de flor igual o

superior a la del plan tradicional (véase Fotografía 58); se lograron tallos con un promedio

de 1.60 cm de largo y diámetros de flor con un promedio de 9 cm, que están dentro de los

rangos exigidos para exportación. El rendimiento obtenido con el plan propuesto fue 146

manojos/tablón y con el manejo tradicional del floricultor fue118 manojos/tablón, esto es

un incremento del 20% en la producción de flores.

57

Fotografía 58. Comparación del desarrollo del cultivo con el plan de manejo propuesto respecto al

manejo tradicional del floricultor.

Plan de manejo propuesto Manejo tradicional del floricultor

Semana 1

Semana 5

Semana 11

58

Semana 12

Semana 13


59

III.1.8.4 Efectos sobre las plagas bajo invernadero

III.1.8.4.1 Roya blanca

En la Gráfica 6 puede observarse que la enfermedad tardó más en establecerse en el

cultivo, ya que apareció a las nueve semanas, a diferencia de las siete semanas que tardó

con el manejo tradicional del floricultor. Lo anterior permitió que las plantas alcanzaran un

estado fisiológico avanzado y por tanto no afectó el rendimiento significativamente.

Además, a pesar de que el 100% de las plantas fueron afectadas, la severidad se mantuvo en

el nivel I (véase Figura 59).

Gráfica 6. Comparación de la incidencia de roya blanca bajo invernadero utilizando el plan de

manejo propuesto respecto al manejo tradicional del floricultor.


Figura 59. Severidad de roya blanca menor al 20% en hojas de crisantemo.


Incidencia de Roya Blanca en Loma Alta

0

20

40

60

80

100

120

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13

Semanas

% d

e p

lan

tas

co

n p

res

en

cia

de

Ro

ya

Bla

nc

a

Tratamiento

Testigo

60

III.1.8.4.2 Trips

En la Gráfica 7 puede observarse que la población de trips con el plan propuesto se

mantuvo igual o menor que con el manejo tradicional a lo largo del desarrollo del cultivo;

sin embargo, al final del ciclo pudo observarse que con el plan tradicional la población se

incrementó rápidamente ya que los floricultores dejan de aplicar plaguicidas en la semana

de corte. Esto último incide en la calidad de las flores ya que los trips adultos se alimentan

de ellas, afectando su apariencia (véase Fotografía 60). Adicionalmente, al disminuir la

población de trips en etapas tempranas del cultivo, se disminuye a su vez la incidencia del

virus TSWV, permitiendo un mejor crecimiento y desarrollo de las plantas.

Gráfica 7. Comparación en la incidencia de trips en crisantemo bajo invernadero, utilizando el plan

de manejo propuesto y el plan de manejo tradicional.


Fotografía 60. Comparación de la calidad de las flores: (A) Flor sin daño. (B) Flor dañada por

trips.


Monitoreo de Thrips en Loma Alta

0

1

2

3

4

5

6

7

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13

Semanas

No

. p

rom

ed

io d

e in

div

idu

os

co

nta

do

s e

n 1

5 p

lan

tas

mu

es

tre

ad

as

Tratamiento

Testigo

A B

61

III.1.8.5 Efectos en la fase de crecimiento y desarrollo del cultivo a campo abierto

En condiciones de campo abierto, el control de plagas y enfermedades se hizo muy

difícil, pues fue inevitable la llegada de esporas e insectos. Además de los tres problemas

más importantes (roya blanca, trips y TSWV), se observaron otros problemas como

Septoria, Aphelencoides y minador (véase Figura 61). Todos estos factores contribuyeron a

que desde etapas tempranas del cultivo, las plantas tuvieran un desarrollo pobre.

Adicionalmente, la lluvia lavó los productos aplicados, haciendo necesarias el doble de

aplicaciones.

Fotografía 61. Daño foliar causado por (A) Septoria chrysanthemella, (B) Aphelencoides sp. y (C)

Liryomiza trifolii, en crisantemo cultivado a campo abierto.


En el caso de las flores, no se obtuvo el efecto esperado, ya que éstas no entraron en el

rango de aceptación para venta; el desarrollo fue escaso con un diámetro promedio de 5 cm.

Además, los pétalos fueron dañados por trips y por las gotas de lluvia y los tallos fueron

delgados y quebradizos (véase Fotografía 62). No obstante, se lograron cosechar alrededor

de 25 manojos/tablón para venta a un precio menor, lo que repercute económicamente ya

que se gastó más de lo que se pudo recuperar.

Fotografía 62. Flores cosechadas a campo abierto.


A B C

62

III.1.8.6 Efectos sobre las plagas a campo abierto

III.1.8.6.1 Roya blanca

En la Gráfica 8 puede observarse que la enfermedad empezó a establecerse desde la

tercera semana y alcanzó un 100% de las plantas en la séptima semana. La infección

temprana afectó severamente el crecimiento y desarrollo de las plantas y además permitió

que la severidad de la enfermedad se estimara en nivel III (véase Fotografía 63). Además

se observaron tallos de poca longitud y baja calidad de la flor, en los que también se

observó la presencia de roya blanca.

Gráfica 8. Comparación de la incidencia de roya blanca a campo abierto utilizando el plan de

manejo propuesto (tratamiento), respecto al manejo tradicional del floricultor (testigo).


Figura 63. Severidad de roya blanca mayor al 40% en hojas de crisantemo.


Incidencia de Roya Blanca en Cruz Blanca

0

20

40

60

80

100

120

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13

Semanas

% d

e p

lan

tas

in

fec

tad

as

co

n R

oy

a

Bla

nc

a

Tratamiento

Testigo

63

III.1.8.4.2 Trips

En la Gráfica 9 puede observarse que la población de trips con el plan propuesto se

mantuvo igual o menor que con el manejo tradicional a lo largo del desarrollo del cultivo;

detectándose la presencia de ninfas y adultos desde la primera semana. Esto último

permitió que las plantas fueran afectadas por TSWV desde etapas tempranas afectando

negativamente su crecimiento y desarrollo.

Gráfica 9. Comparación en la incidencia de trips en crisantemo a campo abierto, utilizando el plan

de manejo propuesto (tratamiento) y el plan de manejo tradicional (testigo).


Monitoreo de Thrips en Cruz Blanca

0

2

4

6

8

10

12

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13

Semanas

No

. p

rom

ed

io d

e in

div

idu

os

co

nta

do

s e

n 1

5 p

lan

tas

mu

es

tre

ad

as

Tratamiento

Testigo

64

III.2 DISCUSIÓN DE RESULTADOS

Como objetivo general del proyecto se buscaba determinar el complejo de plagas que

afectan al crisantemo y otras flores de corte y su importancia en los municipios de San

Pedro y San Juan Sacatepéquez; con el fin de poder proponer un plan de manejo adecuado

para el control de las plagas encontradas. Para ello, inicialmente se analizaron plagas

insectiles, hongos, bacterias y virus; y de esta manera poder determinar cuáles eran las

plagas que causaban mayor problema a los floricultores.

De esta forma se identificaron las plagas predominantes en crisantemo. La más

abundante y evidente fue roya blanca Puccinia horiana, presente en 98% de las muestras

analizadas. La siguiente en importancia fue trips de la especie Frankliniella occidentalis,

que estuvo presente en el 82% de las muestras analizadas. Las otras plagas de importancia

fueron los virus TSWV que se encontró en el muestreo preliminar con un 74% de

incidencia, y TAV y CVB, presentes en un 61% y 90% de las muestras analizadas en el

muestreo general.

En el caso de la roya blanca, se observó que la cercanía entre las plantas y la falta de

circulación de aire favorecía su diseminación ya que se creaba un microclima de humedad

que estimulaba su proliferación, de tal manera que infestaba a prácticamente todas las

plantas.

La abundancia de trips en las plantaciones de crisantemo además de causar daños

directamente al tejido foliar y a las flores, está directamente relacionada con la presencia

del virus TSWV que fue uno de los virus que se encontró en mayor cantidad. Esta alta

incidencia de TSWV es debida a que dicho virus se transmite de manera persistente por

trips, lo cual indica que aunque haya poblaciones pequeñas del insecto, una vez éste

adquiere el virus durante el estadío larvario, mantiene la capacidad de transmitirlo durante

toda su vida (20-30 días). Por tanto, al proponer un plan de manejo, debía enfocarse en el

control del vector para evitar la transmisión del virus.

Como en el caso anterior, la alta incidencia de los virus CVB y TAV (90% y 61%),

puede atribuírsele a la presencia del áfido vector que lo transmite de forma no persistente.

Esto quiere decir, que la dispersión de los virus es altamente eficiente aún si la población de

insectos es baja ya que no se requiere de un corto período de adquisición para que el insecto

empiece a transmitirlo y mantenga su infectividad por 45-60 minutos después de haberse

alimentado de una fuente de inóculo. El áfido adquiere inmediatamente el virus y lo

transmite de igual manera, y esto puede repetirse varias veces a lo largo de su vida;

dispersando de esta forma el virus si no se controla la población de áfidos. Según el

proyecto FODECYT 088-2006, en más del 90% de los casos, CVB y TAV se encuentran

en infecciones mixtas, por lo que es probable que el mismo áfido los transmita juntos o bien

que cuando se utilizan esquejes la infección mixta se manifieste, o al transmitir

mecánicamente la infección por ambos virus continúe. Es interesante destacar que a pesar

de que se encontró una incidencia muy alta de este virus, los floricultores no lo habían

identificado previamente como un problema. Esto pudo deberse a que la sintomatología

causada por este virus, en la mayoría de casos, es muy leve y algunas veces no presenta

65

síntomas, sin embargo, sí disminuye la calidad de las flores. Otro aspecto importante a

mencionar, es que este virus puede transmitirse mecánicamente, esto es, si el agricultor

corta la flor de una planta infectada por este virus, no se desinfecta, y corta otra flor de otra

planta, él está sirviendo de vector para infectar a la otra planta. Por eso, la incidencia de

este virus puede llegar a ser del 100% en muchos casos, sin que los agricultores se den

cuenta.

Para el diseño del plan de manejo se le dio mayor importancia al virus TSWV, respecto

a los otros virus, debido a que la presencia de trips que es su vector fue de 82%, mientras

que la de los áfidos, que son vectores de los otros virus fue del 14.3%. Se consideró que

era primordial mantener controladas las poblaciones de trips ya que éstos son capaces de

transmitir el virus de manera persistente, por lo que aún con una fuente de inóculo reducida,

ellos pueden adquirir el virus y transmitirlo durante toda su vida, a diferencia de los áfidos

que lo transmiten de manera no persistente y mueren rápidamente después de la infección.

Además, las plantas infectadas con CVB y TAV no presentan síntomas evidentes por lo que

es posible que hayan estado infectadas desde un inicio e incluso los esquejes pudieron

haber estado contaminados al establecer la plantación. Adicionalmente, estos virus se

transmiten mecánicamente por lo que con las buenas prácticas aplicadas durante el plan de

manejo, la transmisión de estos virus se pudo controlar.

En las otras flores de corte (rosa, clavel, gladiola, estaticcia y espárrago ornamental)

también se encontraron poblaciones abundantes de trips, convirtiendo a este insecto en una

de las plagas más importantes de estos cultivos. No se encontró la presencia de bacterias

patógenas, excepto en una muestra de rosa en la que se identificó Agrobacterium

tumefaciens; por lo que puede concluirse que las bacterias no constituyen un problema de

importancia para este cultivo.

En el caso de rosa, los hongos fueron los patógenos más abundantes, ya que se

encontraron presentes en más de la mitad de las muestras analizadas. El más abundante fue

Podosphaera pannosa (cenicilla) presente en un 74% de las muestras, seguido de

Diplocarpon rosae (mancha negra) y Dothiorella sp. ambos presentes en 65% de las

muestras.

En clavel, el patógeno más abundante fue Uromyces dianthi causante de la roya del

clavel, el cual se encontró en todas las muestras analizadas. Caso similar fue el de la

gladiola, en donde el patógeno más abundante fue Uromyces transversalis causante de la

roya de la gladiola, que también se encontró en todas las muestras analizadas.

Se encontró la presencia de nemátodos en todas las flores de corte, los géneros

identificados fueron Aphelencoides, Pratylenchus, Helicotylenchus, Meloidogyne y

Hoplolaimus. En general el daño derivado de los nemátodos es que las lesiones creadas por

éstos permiten el ingreso de otros patógenos a través de la raíz. El género Meloidogyne es

de mucha importancia debido a los nódulos que forma, atrofiando las raíces y

obstaculizando la absorción de nutrientes y agua. El género Aphelencoides afecta el tejido

foliar y se propaga fácilmente por salpicaduras en el riego o por la lluvia.

66

Según los resultados descritos anteriormente respecto al monitoreo de plagas y

enfermedades, se determinó que las tres plagas más importantes, según incidencia y

severidad fueron roya blanca del crisantemo (Puccinia horiana), trips (Frankliniella

occidentalis) y TSWV. En base a esto se realizaron dos planes de manejo integrado, uno

bajo invernadero y otro sin él.

Para que el plan de manejo de plagas y fertilización fuera eficiente, previamente se

realizó un análisis de suelos, según el cual se diseñó un plan de fertilización que permitió

optimizar la dosificación de nutrientes. De esta manera se redujo el uso de fertilizantes en

un 90%, evitando gastos innecesarios, ya que algunos minerales ya se encontraban

presentes en el suelo sin necesidad de haber sido suplementados. Además, como materia

orgánica se utilizó gallinaza que además de aportar nutrientes sirvió como herbicida natural

por su acidez.

En la etapa de enraizamiento, tanto en las camas como en el tablón, se obtuvo un mayor

porcentaje de pegue con la implementación de bio-estimulantes que favorecen la formación

de raíces y follaje rápidamente. Se implementó además, un sistema de desinfección de

amplio espectro en las camas de enraizamiento y tablones, lo cual evitó el desarrollo

temprano de enfermedades.

En resumen, realizando una correcta dosificación, rotación y utilización de plaguicidas

y fertilizantes, se disminuyó el tiempo de enraizamiento y se observó mayor vigorosidad,

así como también disminuyó la presencia de hongos en el suelo. En cuanto a la calidad de

la flor, se observó que fue igual o superior a la obtenida bajo el manejo tradicional del

floricultor, y el rendimiento fue 20% mayor.

La presencia del invernadero actuó como una barrera contra esporas e insectos

provenientes de plantaciones aledañas. Evitó además, que con la lluvia se incrementara la

humedad que favorece el crecimiento de hongos y bacterias.

En cuanto a las plagas, en el caso de la roya blanca, a pesar de que ésta terminó

afectando al 100% de las plantas, la enfermedad se estableció en una etapa más tardía del

desarrollo, permitiendo un mejor rendimiento. Adicionalmente, la severidad se mantuvo en

un nivel I, a diferencia del nivel III observado con el manejo tradicional.

Respecto a los niveles de trips, en promedio, éstos fueron menores o iguales a los

observados con el manejo tradicional; sin embargo, la distribución de insectos a lo largo del

desarrollo del cultivo fue distinta. Con el plan propuesto, en etapas iniciales del cultivo la

población fue menor. Esto a su vez disminuyó la incidencia del virus TSWV permitiendo

un mejor crecimiento y desarrollo de las plantas. También en la fase de corte, se mantuvo

la población constante a diferencia del manejo tradicional en el que el floricultor deja de

realizar aplicaciones, permitiendo el incremento de la población de insectos. Esto hace que

la calidad de las flores disminuya porque los adultos se alimentan de ellas perjudicando su

apariencia.

Por el contrario, en condiciones de campo abierto el control de plagas y enfermedades

se hizo muy difícil, pues fue inevitable la llegada de esporas e insectos. Además de los tres

67

problemas más importantes (roya blanca, trips y TSWV), se observaron otros problemas

como Septoria, Aphelencoides y minador. La presencia de estas plagas contribuyó a que

las plantas se desarrollaran pobremente desde el incio. Adicionalmente, la lluvia lavó los

productos aplicados, haciendo necesario realizar el doble de aplicaciones. En cuanto al

producto final, es decir, la apariencia de las flores, se observó que éstas no tenían tamaño

aceptable para su venta, además, se veían dañadas por trips y por las gotas de lluvia. Esto

repercutió en su valor comercial ya que se vendieron por un menor precio y no se recuperó

lo que se invirtió durante el desarrollo del cultivo, especialmente porque se tuvo que

invertir el doble de aplicaciones químicas.

En cuanto a las plagas observadas en campo abierto, específicamente en el caso de la

roya blanca, ésta se estableció a un nivel de severidad III desde una etapa temprana del

desarrollo de las plantas, afectando dramáticamente la calidad de la flor y la longitud de los

tallos.

Respecto a los niveles de trips, en promedio, éstos fueron menores o iguales a los

observados con el manejo tradicional. Sin embargo, pudieron detectarse ninfas y adultos

desde la primera semana, lo cual repercutió en la presencia del virus TSWV. La presencia

del vector permitió que las plantas fueran afectadas por éste desde etapas tempranas,

afectando negativamente su crecimiento y desarrollo.

Como se describió anteriormente, únicamente el plan de manejo propuesto para el

cultivo bajo invernadero fue efectivo. El plan de manejo aplicado al cultivo en campo

abierto no obtuvo resultados distintos a lo obtenido con el manejo tradicional del

floricultor. Con esto puede concluirse que si los floricultores desean obtener flores de

calidad consistente, deben proteger su cultivo mediante la implementación de un

invernadero. Sin embargo, la presencia del invernadero por sí sola no es suficiente para

evitar el ingreso de plagas, es necesario seguir un plan de manejo específico. Este plan de

manejo debe estar dirigido a las plagas que se sabe que están circulando en el área, para

evitar inversiones en plaguicidas innecesarios. Además es importante realizar un estudio de

suelos para poder suplementar adecuadamente los nutrientes y minerales, evitando así

sobredosificación o deficiencias.

68

PARTE IV.

IV.1 CONCLUSIONES

IV.1.1 Se determinó que los agentes bacterianos no constituyeron un problema para el

cultivo de crisantemo y otras flores de corte ya que de todas las muestras

analizadas sólo se encontró una muestra de rosa afectada por la bacteria

Agrobacterium tumefaciens.

IV.1.2 Se determinó que el agente fúngico predominante en crisantemo fue Puccinia

horiana causante de la roya blanca, presente en 98.2% de las muestras

analizadas; adicionalmente se encontró Septoria chrysanthemella en 3.6% de

las muestras y Cladosporium parasitando algunas pústulas de roya blanca.

IV.1.3 Se determinó que el complejo de agentes fúngicos predominantes en el cultivo

de rosa está constituido por Podosphaera pannosa (cenicilla) presente en un

74% de las muestras, Diplocarpon rosae (mancha negra) y Dothiorella sp.,

ambos presentes en 65% de las muestras (véase Gráfica 3).

IV.1.4 Se determinó que los agentes fúngicos presentes en los cultivos de clavel y

gladiola fueron Uromyces dianthi y Uromyces transversalis, respectivamente,

presentes en la totalidad de las muestras analizadas.

IV.1.5 Se determinó que, en general, el complejo de virus que afectan el cultivo de

crisantemo está constituido por CVB presente en 90% de las muestras

analizadas, TAV en 61% y TSWV en 8% (véase Gráfica 5).

IV.1.6 En cuanto a virosis, en un muestreo dirigido específicamente a un problema

solicitado por los floricultores (tallo necrótico y hojas bronceadas o

quemadas), se encontró un 74% de plantas de crisantemo infectadas con el

virus TSWV.

IV.1.7 Se determinó que el complejo de nemátodos presente en el cultivo de

crisantemo está constituido por los géneros Aphelencoides, Pratylenchus,

Helicotylenchus, Meloidogyne y Hoplolaimus; en clavel se encontraron los

géneros Pratylenchus y Meloidogyne y solamente Meloidogyne en estaticcia.

IV.1.8 Se determinó que los ácaros identificados en el cultivo de crisantemo

pertenecían al género Tetranychus presentes en 17.2% de las muestras

analizadas.

IV.1.9 No se encontraron moluscos asociados al cultivo de crisantemo en el área bajo

estudio.

69

IV.1.10 Se determinó que el grupo de artrópodos que afectan al cultivo de crisantemo

está constituido por thrips de la especie Frankliniella williamsi presente en

34.8% de las muestras analizadas, áfidos de la especie Macrosiphum pallidum

en 8.7% y escama nevada (Aulacaspis rosae) en 4.3%.

IV.1.11 Se determinó que los insectos que afectaban clavel y gladiola eran thrips de las

especies Frankliniella williamsi y Thrips simplex, respectivamente.

IV.1.12 Se establecieron dos planes de de acuerdo a los resultados del monitoreo de

plagas y enfermedades, según se contara o no con invernadero (véanse

Cuadros 1 y 2), obteniéndose en ambos casos un mejor rendimiento que con el

manejo tradicional del floricultor.

IV.1.13 Se realizó un análisis de suelo previo el establecimiento del cultivo el cual

reveló que la mayoría de nutrientes ya estaban presentes, reduciendo el uso de

fertilizantes en un 90%.

IV.1.14 La implementación de un sistema de desinfección de amplio espectro en las

camas de enraizamiento y tablones evitó el desarrollo temprano de

enfermedades.

IV.1.15 La aplicación de bioestimulantes durante la etapa de enraizamiento acortó el

tiempo de producción de raíces y se aumentó la proporción de plantas que

produjeron raíces.

IV.1.16 Siguiendo el plan de manejo diseñado, se retardó la infección por roya blanca a

una etapa más tardía del desarrollo permitiendo un mejor rendimiento, además

el nivel de severidad de la enfermedad fue menor.

IV.1.17 Siguiendo el plan de manejo diseñado, se disminuyó la población de thrips en

etapas iniciales del cultivo, reduciendo a su vez la incidencia de TSWV,

permitiendo un mejor crecimiento y desarrollo de las plantas.

IV.1.18 Como resultado del cultivo manejado según el plan diseñado, se obtuvo una

calidad de flor igual o superior a la obtenida con el manejo tradicional del

floricultor, pero con un rendimiento 20% superior.

IV.1.19 Al comparar los ensayos a campo abierto y bajo invernadero, pudo

determinarse que el invernadero funcionó como una barrera para esporas e

insectos así como también evitó que la lluvia lavara las aplicaciones,

reduciendo la inversión económica en agroquímicos.

IV.1.20 Se determinó que el plan de manejo propuesto para el cultivo de crisantemo

fue efectivo siempre que se contara con un invernadero, por el contrario, a

campo abierto, el rendimiento fue similar al obtenido con las prácticas

tradicionales del floricultor.

70

IV.2 RECOMENDACIONES

V.1.1 Se recomienda realizar el monitoreo de agentes bacterianos en diferentes épocas

del año para poder determinar si las condiciones climáticas contribuyen a la

aparición o desaparición de posibles bacterias patógenas en el cultivo de

crisantemo y otras flores de corte.

IV.1.2 Tomando en cuenta que la roya blanca es la enfermedad de origen fúngico más

frecuente en el crisantemo y otras flores de corte, se recomienda profundizar en

la caracterización de esta plaga.

IV.1.3 Se recomienda monitorear constantemente las virosis en crisantemo para poder

establecer la incidencia de los diferentes virus en cada época del año y

correlacionarlos con la presencia de los vectores y de esta manera establecer

medidas de control dirigidas a éstos, según su abundancia en cada estación

climática.

IV.1.4 Se recomienda monitorear virosis en las plántulas previo a ser trasladadas al

campo o al invernadero para detectar las plántulas enfermas y evitar su traslado,

de esta manera se reducen las fuentes de inóculo disponibles a los vectores.

IV.1.5 Se recomienda continuar con el monitoreo de nemátodos ya que muchas veces

esta es una plaga que se deja de lado y que puede ser fatal para el cultivo si no

se establecen métodos de control.

IV.1.5 Se recomienda continuar con el monitoreo de ácaros e insectos ya que no solo

causan daño mecánico a las plantas sino también constituyen vectores de

enfermedades de diversos orígenes, incluyendo bacterias y virus; es importante

conocer su identidad y abundancia en una plantación para establecer mejores

medidas de control.

IV.1.5 En cuanto al plan de manejo se recomienda el uso de invernadero ya que

funciona como una barrera para esporas e insectos así como también evita que la

lluvia lave las aplicaciones, reduciendo la inversión económica en

agroquímicos.

IV.1.5 Se recomienda realizar un análisis de suelo previo al establecimiento de una

plantación ya que los resultados permiten determinar qué nutrientes están

deficientes y cuáles están en exceso, sugiriendo cuál es el mejor tratamiento

para preparar el suelo o bien para una mejor dosificación de fertilizantes.

71

IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

AGEXPORT. (junio de 2009). Encadenamientos Empresariales. Recuperado el 03 de

febrero de 2012, de www.encadenamientosempresariales.com

AGEXPORT. (2011). AGEXPORT. Recuperado el 02 de agosto de 2012, de

http://portal.export.com.gt/portal/clientes/fichas_tecnicas/Crisantemos%20frescos.p

df

Agrios, G. (2004). Fitopatología. México: Editorial Limusa.

Ainsworth, G. (1995). Dictionary of the Fungi. Reino Unido: CAB International.

ASOFLORSA. (desconocido). Tikoj - Flores de San Juan. Recuperado el 20 de julio de

2012, de www.tikoj.com

Blackman, R., & Esatop, V. (2000). Aphids on the world's crops (2a. edición ed.).

Londres: The Natural History Museum.

Barrios, S. (2008) Detección de virus comunes en crisantemo utilizando pruebas elisa en

San Juan y San Pedro Sacatepéquez. Fodecyt 88-2006

Center for Agriculture. (noviembre de 2012). Agriculture and Landscape Program -

Greenhouse crops and floriculture program. Recuperado el 03 de febrero de 2012,

de http://extension.umass.edu/floriculture/fact-sheets/diseases-chrysanthemum-

chrysanthemum

Comisión de Plantas Ornamentales y Follaje-AGEXPORT. (1996-2012). Plantas

Ornamentales, Flores y Follajes. Recuperado el 01 de agosto de 2012, de

http://guatemalanplants.com/main.asp?clc=270

Cummins, G., & Hiratsuka, Y. (2003). Illustrated Genera of Rust Fungi. Estados Unidos:

American Phytopathological Society.

Ellis, M. (1976). More Dematiaceous Hyphomycetes. Reino Unido: CAB International.

González, A. (16 de septiembre de 2011). Atlas de especies invasoras de Puerto Rico.

Recuperado el 10 de agosto de 2012, de

http://atlas.eea.uprm.edu/content/tr%C3%ADpido-del-aj%C3%AD

Infoagro Systems, S.L. (sin fecha). InfoAgro. Recuperado el 25 de julio de 2012, de

http://www.infoagro.com/flores/flores/clavel.htm

Kluepfel, M., & Scott, J. (diciembre de 2006). Clemson Cooperative Extension.

Recuperado el 03 de febrero de 2012, de Home and Garden Information Center:

http://www.clemson.edu/extension/hgic

72

Lal Meena, R., Ramasubramanian, T. V., & Mohankumar, S. (2005). Molecular

Characterization of Tospovirus Transmitting Thrips Populations from India.

American Journal of Biochemistry and Biotechnology, 167-172.

Mai, W., & Lyon, H. (1975). Pictorial Key to Genera of Plant Parasitic Nematodes.

Estados Unidos: Cornell University.

Manning, J., & Goldblatt, P. (2008). The Iris Family: Natural History and Classification.

Portland, Oregon: Timber Press.

Melgar, W. (septiembre de 2003). Depósito de documentos de la FAO. Recuperado el 01

de agosto de 2012, de http://www.fao.org/docrep/007/j0605s/j0605s00.htm

Moorman, G. (2012). Penn State College of Agricultural Science. Recuperado el 3 de

febrero de 2012, de http://extension.psu.edu/plant-disease-factsheets/all-fact-

sheets/chrysanthemum-diseases

Mound, L., & Marullo, R. (1996). The Thrips of Central and South America: an

introduction (Insecta: Thysanoptera). Reino Unido: Associated Publishers.

Prensa Libre. (28 de octubre de 2010). Prensa Libre.com. Recuperado el 03 de febrero de

2012, de http://www.prensalibre.com/economia/listos-cubrir-

demanda_0_361763829.html?print=1

Riley, D. (2011). Thrips Vectors of Tospoviruses. Journal of Integrated Pest Management,

1-10.

Salmerón, J. (1989). Plagas y enfermedades de los crisantemos. Madrid: Ministerio de

Agricultura, Pesca y Alimentación.

Spencer, K., & Stegmaier, C. (1973). Agromycidae of Florida. Estados Unidos: Florida

Department of Agriculture.

The Regents of the University of California. (marzo de 2009). UC IPM Online.

Recuperado el 03 de febrero de 2012, de

http://ucipm.ucdavis.edu/PMG/r280110811.html

Vidalie, H. (2001). Producción de flores y plantas ornamentales (3a. edición ed.).

Barcelona: Grupo Mundi-Prensa.

Williams, D., & Watson, G. (1988). The scale insects of the tropical south pacific region,

part I. The armoured scales (Diaspididae). Reino Unido: CAB International

Institute of Entomology.

Zitter, T., & Daughtrey, M. (octubre de 1989). Vegetable MD Online. Recuperado el 10 de

agosto de 2012, de

http://vegetablemdonline.ppath.cornell.edu/factsheets/Virus_SpottedWilt.htm

73

IV.4 ANEXOS

74

IV.4.1 Anexo 1. Coordenadas geográficas de los puntos de muestreo en San Juan

Sacatepéquez y San Pedro Sacatepéquez.

Coordenadas

No. Localidad 15 P UTM Altura msnm Tipo de Cultivo

1 Comunidad de Zet 756017 1631683 1482 polar

2 Comunidad de Zet 754989 1630169 1673 polar, centro verde

3 Comunidad de Zet 755012 1630309 1678 pinocho

4 Comunidad de Zet 755402 1630378 1654 azucena

5 Comunidad de Zet 754718 1629712 1789 shasta

6 Comunidad de Zet 754736 1629367 1792 shasta

7 Sajcavilla 754245 1626384 1979 shasta, pinocho


9 Sajcavilla 754313 1626425 1964 shasta




13 Sajcavilla 755229 1626430 2005 shasta, centro verde

14 Sajcavilla 755168 1626472 2009 clavel pache "chaparro"


16 Sajcavilla 754233 1626261 2007 amarillo pache

17 Sajcavilla ND ND ND polar, stander, shasta, crisantemo amarillo

18 Camino de San Pedro 753759 1626206 2022 shasta

19 Camino de San Pedro 754056 1625824 2040 shasta, centro verde


21 Camino de San Pedro 753932 1626366 1971 shasta, polar

22 Camino de San Pedro 754092 1626656 1950 shasta, centro verde

23 Camino de San Pedro 753798 1625843 2034 shasta, centro verde, mechudo

24 Chitol, Camino de San Pedro 754580 1626956 1862 shasta, estándar

25 Chitol, Camino de San Pedro 754625 1626998 1867 shasta, centro verde, chomin

26 Chitol, Camino de San Pedro 754783 1626949 1890 shasta

27 Chitol, Camino de San Pedro 754851 1626909 1903 shasta, polar morado


29 Chitol, Camino de San Pedro ND ND ND shasta, pinocho, chomin

30 Chitol, Camino de San Pedro 754634 1627127 1870 shasta, centro verde


32 Loma Alta 752600 1627784 1890 rosa variedad Leonida

33 Loma Alta 306203 1783812 1887 centro verde, cotoncito

34 Loma Alta 752745 1627753 1886 clavel

35 Loma Alta 752429 1627851 1898 shasta, centro verde

36 Loma Alta 752618 1626798 1926 baby

37 Loma Alta 752059 1627359 1959 rosa variedad Samanta

38 Loma Alta 751869 1627085 1973 shasta, centro verde, chomin, vickay

39 Loma Alta 751122 1627136 1954 shasta

40 El Rosario, Loma Alta 752563 1626857 1906 staticcia

75

41 Los Guamuches 750025 1627525 1821 cartucho

42 Los Guamuches 750030 1627563 1793 baby

43 Los Guamuches 750184 1627557 1816 rosa

44 Los Guamuches ND ND ND crisantemo polar

45 El pilar 2 747554 1627982 1917 clavel

46 El pilar 2 747382 1627511 1901 los guamuches

47 Camino los Guamuches, Loma Alta gladiola

48 Santa Fe Ocaña 748460 1629192 1843 rosa y gladiola

49 Santa Fe Ocaña 749029 1628882 1825 shasta

50 Santa Fe Ocaña 748895 1628890 1846 rosa


52 Sajcavilla 754386 1626524 1888 rosa

53 Sajcavilla 754451 1626331 1899 rosa


55 Pacajay 752057 1628648 1702 shasta

56 El Pilar 1 747113 1628791 1867 shasta

57 El Pilar 1 747110 1628816 1872 crisantemo

58 El Pilar 2 747826 1628299 1838 gladiola

59 El Pilar 2 747908 1628645 1830 clavel y rosa

60 Chitol, Camino de San Pedro 754584 1626968 1789 rosa

61 Chitol, Camino de San Pedro 754562 1627158 1821 rosa

62 La Joya, Cruz Blanca 751763 1629455 1709 rosa, crisantemo shasta y estándar

63 La Joya, Cruz Blanca 751241 1628655 1801 shasta

64 La Joya, Cruz Blanca 751066 1628850 1795 rosa, crisantemo

65 Cruz Verde 754867 1628371 1817 rosa

66 Los Pajoques 748309 1627126 1921 rosa

67 Los Pajoques 748367 1627093 1919 rosa, leather leaf, espárrago ornamental

68 Los Pajoques 748423 1627117 1932 rosa

69 Los Pajoques ND ND ND gladiola

70 Los Pajoques ND ND ND crisantemo

71 Los Pajoques ND ND ND estaticcia

72 Los Pajoques 748423 1627117 1932 clavel

73 Los Pajoques 748595 1627285 1931 gladiola

74 Camino de San Pedro 754229 1625621 1940 clavelina

75 Camino de San Pedro 754002 1625839 1974 rosa



78 Loma Alta ND ND ND polar


80 Sajcavilla 755730 1627582 1867 gladiola, clavel, crisantemo

81 Sajcavilla 755451 1627358 1891 crisantemo

82 Sajcavilla 755116 1626808 1911 clavelina

83 Santa Fe Ocaña 749435 1628179 1797 crisantemo

84 Santa Fe Ocaña 749332 1627947 1842 clavelina



87 Pacajay 752036 1628657 1735 crisantemo



76

90 Cruz Blanca 753246 1630064 1753 crisantemo

91 Joya del Izote, Loma Alta ND ND ND rosa, crisantemo

92 Joya del Izote, Loma Alta ND ND ND crisantemo

IV.4.2 Anexo 2. Fichas informativas de algunas de las plantaciones visitadas.

Tarjeta informativa para finca

Nombre del Propietario: Adrian Camey

Lugar: Comunidad de Zet, Lote 315

Variedad de crisantemo: Polar

Área de cultivo: 6 tablones

Fecha de recolecta: 13-02-07 Hora de muestreo: 9:38 am

Datos de aplicaciones de plaguicidas: Flynt, amistar, mesurol, clorotalonil, lannate, serenade, thiodan,

tamaron,

Período de mayor productividad: dia de los santos

Épocas en que se tiene más daño y de que tipo: todo el año

Otras observaciones: roya, sugieren problema de nemátodos

1


Nombre del Propietario: Fulgencio Pirir

Lugar: Comunidad de Zet

Variedad de crisantemo: Polar, Centro verde

Área de cultivo: 0.5 cuerdas


Datos de aplicaciones de plaguicidas: bravo, captan, milor, benomil

Período de mayor productividad: día de los santos

Épocas en que se tiene más daño y de que tipo: todo el año

Otras observaciones: marchitez, roya, pudrición del tallo, las flores se decoloran por plaguicidas (manchas)

2


Nombre del Propietario: Alberto


Variedad de crisantemo: Pinocho

Área de cultivo: 2 cuerdas


Datos de aplicaciones de plaguicidas:

Período de mayor productividad:

Épocas en que se tiene más daño y de que tipo:

Otras observaciones: variedad pinocho es más resistente a la roya y posiblemente a otras enfermedades.

3

77

Anexo 6. Productos y dosis que se utilizaron en el plan de manejo


Nombre del Propietario: Efraín Pirir

Lugar: Sector 5, Comunidad de Zet

Cultivo: Azucena

Área de cultivo: 3 cuerdas

Fecha de recolecta: 13-02-07 Hora de muestreo: 1:15 pm

Datos de aplicaciones de plaguicidas: Agrofos, Furadán, Bitaback, Amistar, Captan, Bordocop



Otras observaciones: se observó una marchitez ascendente, algunos bulbos sembrados nunca germinaron

4


Nombre del Propietario: Polinesio Cinei


Variedad de crisantemo: Shasta

Área de cultivo: 4 cuerdas de 20*20 var


Datos de aplicaciones de plaguicidas: Agrofos, Flynt



Otras observaciones: roya y pudrición del interior del tallo

6


Nombre del Propietario: Lugar: Sector 1, Comunidad de Zet


Área de cultivo: 36 *30 var


Datos de aplicaciones de plaguicidas: Ebisec, Thiodan, Tamaron



Otras observaciones: muerte del tallo, se forma un hueco adentro del mismo

5

78


Nombre del Propietario: Juan de la Cruz Pérez Suruy

Lugar: Sector 5, Villa las Flores, Sajcavilla


Área de cultivo: 1Cuerda de 10*10 var





Otras observaciones: pudrición del tallo, muerte de las plantas, torcimiento de las plantas

9


Nombre del Propietario: Sector 5, Villa las Flores, Sajcavilla

Lugar: Bartola Pérez Suruy

Variedad de crisantemo: Polar, Shasta

Área de cultivo: 1 cuerda de 20*20 var


Datos de aplicaciones de plaguicidas: Mirage, Amistar, Lanate, Tamarón



Otras observaciones: amarillamiento en las hojas, pudrición del tallo

8


Nombre del Propietario: Mario Pérez

Lugar: Villa las Flores, Sajcavilla

Variedad de crisantemo: Shasta, Pinocho


Fecha de recolecta: 15-02-07 Hora de muestreo:

Datos de aplicaciones de plaguicidas: Amistar, Silvacur, Flynt, Evisec, Diazinon, Timet, Mocap


Épocas en que se tiene más daño y de que tipo: todo el año con problemas de roya y cancer

Otras observaciones:

7

79


Nombre del Propietario: Elias Yoc Bor



Área de cultivo: 2 cuerdas de 15 v ar


Datos de aplicaciones de plaguicidas: Tamaron, Bayfolan, Silvacur, Mancoseb



Otras observaciones:

12


Nombre del Propietario: Fabian Boror

Lugar: Sector 5 Villa las Flores, Sajcavilla




Datos de aplicaciones de plaguicidas: Amistar, Thiodan



Otras observaciones: Cancer y roya

11


Nombre del Propietario: Lorenzo Flores Suruy





Datos de aplicaciones de plaguicidas: Amistar, Escori, Thiodan, Lanate



Otras observaciones: Pudrición del tallo y la raíz, mucha roya

10

80


Nombre del Propietario: Fernando Boror Cotzojay


Cultivo: Clavel pache “chaparro”

Área de cultivo: 1 cuerda de 10 var



Período de mayor productividad: en mayo para el día de la madre


Otras observaciones: Se seca en la parte de abajo, presencia de araña roja en epoca de calor, hongo en las

hojas

14


Nombre del Propietario: Mauricio Tepec








Otras observaciones: roya y cancer

15


Nombre del Propietario: Dimas Boror Pirir


Variedad de crisantemo: Shasta, Centro verde

Área de cultivo: 1 cuerda de 15 *15 var

Fecha de recolecta: 15-02-07 Hora de muestreo:

Datos de aplicaciones de plaguicidas: Amistar, Timet, Cauter, Tamaron, Lanate



Otras observaciones: Cancer y Trips

13

81


Nombre del Propietario: Florencio Suruy Chajon


Variedad de crisantemo: Polar, Stander, Shasta, Crisantemo amarillo



Datos de aplicaciones de plaguicidas: Thiodan, tamaron, azufre, amistar


Épocas en que se tiene más daño y de que tipo: Otras observaciones: En este lugar casi no se percibio problema de ningun tipo, la plantación estaba bastante

pareja

17


Nombre del Propietario: Miguel angel Yoc

Lugar: Camino de San Pedro


Área de cultivo: 4 cuerdas de 20*20 vrs


Datos de aplicaciones de plaguicidas: Malatión, amistar, Flynt



Otras observaciones: presencia de roya

18


Nombre del Propietario: Gregorio y Sebastián Boror Sequim


Variedad de crisantemo: Amarillo Pache






Otras observaciones: amarillamiento en las hojas del crisantemo, flores quebradizas

16

82


Nombre del Propietario: Jose Luis Curup




Fecha de recolecta: 20/02/07 Hora de muestreo: 12:05 pm

Datos de aplicaciones de plaguicidas: amistar, flynt, bravo, ditane, alto 100, tamaron, lanate, thiodan



Otras observaciones: existencia de mucha roya

20


Nombre del Propietario: Alfonso Pirir


Variedad de crisantemo: Polar, Shasta



Datos de aplicaciones de plaguicidas: tamaron, amistar, flynt, bravo, furadan, evisec, coside, malatión,

antracol, clorotalonil



Otras observaciones: Las plantas presentan el síntoma de cancer además de mucha roya

21


Nombre del Propietario: Marcelino Pirir



Área de cultivo: 6 tablones

Fecha de recolecta: 20/02/07 Hora de muestreo: 11:25 am

Datos de aplicaciones de plaguicidas: zipper, amistar, flan, tamarón, thiodan, timet



Otras observaciones: entre los principales problemas por plagas tienen trips, araña roja y minador

19

83


Nombre del Propietario: Pablo y Lázaro Pirir


Variedad de crisantemo: Shasta, Centro verde, Mechudo

Área de cultivo:


Datos de aplicaciones de plaguicidas: amistar, vertimec, cupremicin



Otras observaciones: la roya es el mayor problema seguido de el cancer

23


Nombre del Propietario: Francisco Jocop

Lugar: Sector 1, Chitol, Camino de San Pedro

Variedad de crisantemo: Shasta, Standar

Área de cultivo: 2 cuerdas 32*32 vrs


Datos de aplicaciones de plaguicidas: amistar, azufre, tamaron, mesurol



Otras observaciones: Mucha roya, pocas plantas con síntoma de virus

24


Nombre del Propietario: Laureano Raxon Rac


Variedad de crisantemo: Centro verde, Shasta

Área de cultivo: ½ manzana


Datos de aplicaciones de plaguicidas: captan, antracol, mancoseb, carbendazin

Período de mayor productividad: 10 de mayo, semana santa


Otras observaciones: roya

22

84


Nombre del Propietario: Abraham Boror

Lugar: Chitol, Camino de San Pedro


Área de cultivo: 1 cuerda de 30*30 vrs


Datos de aplicaciones de plaguicidas: flynt, alto 100, captan



Otras observaciones: existencia de mucha roya

26


Nombre del Propietario: Antonio Bor Pirir


Variedad de crisantemo: Shasta, Polar morado



Datos de aplicaciones de plaguicidas: tamaron



Otras observaciones: roya es el principal problema

27


Nombre del Propietario: Paulo Jocop


Variedad de crisantemo: Shasta, Chomin, Centro verde



Datos de aplicaciones de plaguicidas: Flynt, bravo, alto 100, tamarón, lanate, captan



Otras observaciones: La roya es el principal problema, poca presencia de sintomatología de virus

25

85


Nombre del Propietario: Roberto Bor


Variedad de crisantemo: Shasta, Chomin, Pinocho

Área de cultivo: 1.5 cuerdas de 20*20 vrs


Datos de aplicaciones de plaguicidas: mancoseb, ditane, bravo, clorotalonil, tamaron, thiodan



Otras observaciones: Sintomatología de cancer y roya

29


Nombre del Propietario: Andres Parir Chajon





Datos de aplicaciones de plaguicidas: tamaron, antracol, diazinon



Otras observaciones: plantas con sintomatología de cancer es el mayor problema, poca roya

30


Nombre del Propietario: Abraham Boror



Área de cultivo: 1 cuerda 30*30 vrs


Datos de aplicaciones de plaguicidas: flynt, bravo



Otras observaciones: principal problema es la roya

28

86


Nombre del Propietario: Juan Albert Pirir

Lugar: Loma Alta

Variedad de crisantemo: Centro verde, Cotoncito

Área de cultivo: 50*55 mt





Otras observaciones: Existe mucha presencia de roya, utilizan trampas amarillas para trips y mosca blanca

33


Nombre del Propietario: Jorge Enrique Pirir

Lugar: Loma Alta

Cultivo: Rosa variedad Leonida



Datos de aplicaciones de plaguicidas: tamaron, folidol

Período de mayor productividad: tiempo frío


Otras observaciones: tienen mucha presencia de trips y araña roja, así como también de mildiew

32


Nombre del Propietario: José Elias Pirir



Área de cultivo: 70 mt2


Datos de aplicaciones de plaguicidas: positron, ridomil, manzate, store, tamaron, thiodan



Otras observaciones: presencia de mucha roya

31

87


Nombre del Propietario: Sergio Sholish

Lugar: Loma Alta

Cultivo: Clavel






Otras observaciones: La planta presenta una muerte ascendente desde la base del tallo, se observan manchas

negras en las hojas, solo en la parte baja mas no en la parte alta en donde esta la flor

34


Nombre del Propietario: Eleuterio Vásquez

Lugar: Loma Alta

Cultivo: Rosa variedad Samanta



Datos de aplicaciones de plaguicidas: mocap, furadan, meltatox, ariete, anaconda, lannate, thiodan



Otras observaciones: Las plantas tienen mucha presencia de mildiew en las hojas, ademas de un

amarillamiento anormal en las ramas, muerte de las plantas por que estas se secan

37


Nombre del Propietario: Genaro Subiuj

Lugar: Aldea el Rosario, Loma Alta

Cultivo: Staticcia

Área de cultivo: ½ cuerda 20*20 vrs

Fecha de recolecta: 13/03/07 Hora de muestreo: 10:00am

Datos de aplicaciones de plaguicidas: Timet

Período de mayor productividad: Semana Santa


Otras observaciones: Planta marchita, pudricion del tallo, parece cancer, hojas bajeras y mas viejas con

síntomas de hongos, muerte descendente, empieza según lo visto casi de la flor y se va secando hacia abajo

40

88

IV.4.3. Anexo 3. Información sobre las muestras utilizadas para el análisis de virus.

Cuadro 3. Resultados de los análisis de virus en muestras de crisantemo para el muestreo dirigido a

síntomas de “tizón del crisantemo”.


Muestra TSWV INSV

1 Negativo Negativo

2 Positivo Negativo

3 Negativo Negativo

4 Negativo Negativo

7 Positivo Negativo

8 Positivo Negativo

9 Positivo Negativo

10 Positivo Negativo







25 Negativo Negativo












A Negativo Negativo

B Positivo Negativo

C Negativo Negativo

D Negativo Negativo

E Positivo Negativo

F Positivo Negativo

G Positivo Negativo

H Positivo Negativo

I Positivo Negativo

J Positivo Negativo

K Positivo Negativo

L Positivo Negativo

M Positivo Negativo

N Positivo Negativo

O Positivo Negativo

P Negativo Negativo

Q Positivo Negativo

R Positivo Negativo

S Positivo Negativo

T Positivo Negativo

U Positivo Negativo

V Positivo Negativo

W Positivo Negativo

X Positivo Negativo

Y Negativo Negativo




89

Cuadro 4. Resultados de los análisis de virus en muestras de crisantemo para el muestreo general

de virosis.


X Y msnm C M V C V B IN SV TA V TSW V

1 -90.700767 14.71435 1955 0 1 0 1 0

2 -90.677917 14.70945 1858 0 1 0 1 0

3 -90.677917 14.70945 1789 0 1 0 1 0

4 -90.677983 14.71015 1868 0 1 0 1 0

6 -90.700783 14.714117 1960 0 1 0 1 0

7 -90.677917 14.70945 1790 0 1 0 1 0

8 -90.700783 14.714133 1494 0 0 0 0 0

9 -90.677983 14.71015 1862 0 1 0 1 1

10 -90.676283 14.710117 1868 0 1 0 1 1

11 -90.691133 14.709483 1876 0 1 0 1 0

12 -90.676417 14.710183 1869 0 1 0 1 0

13 -90.67655 14.710217 1869 0 1 0 1 0

14 -90.6373 14.705383 1776 0 0 0 1 0

15 -90.6373 14.705383 1776 0 0 0 1 0

16 -90.6373 14.705383 1776 0 1 0 1 0

17 -90.6373 14.705383 1776 0 1 0 1 0

18 -90.6373 14.705383 1776 0 0 0 1 0

19 -90.64065 14.705383 1759 0 0 0 1 0

20 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 1 0

21 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 1 0

22 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 0 0

23 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 1 0

24 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 1 0

25 -90.64065 14.705383 1759 0 0 0 1 0

26 -90.6493 14.710833 1802 0 1 0 1 1

27 -90.6493 14.710833 1802 0 1 0 1 0

28 -90.6493 14.710833 1802 0 1 0 1 0

29 -90.6493 14.710833 1802 0 1 0 1 1

30 -90.6493 14.710833 1802 0 0 0 1 0

31 -90.6493 14.710833 1802 0 1 0 1 0

32 -90.64917 14.694333 2037 0 1 0 1 0

33 -90.64917 14.694333 2037 0 1 0 1 0

34 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 0 0

35 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 1 0

36 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 1 0

37 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 1 0

38 -90.662867 14.72755 1706 0 0 0 1 0

39 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 0 0

40 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 0 0

41 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 0 0

42 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 1 1

43 -90.6647 14.720567 1795 0 1 0 0 0

44 -90.6647 14.720567 1795 0 1 0 0 0

45 -90.6647 14.720567 1795 0 1 0 0 0

46 -90.6647 14.720567 1795 0 1 0 1 0

47 -90.6647 14.720567 1795 0 1 0 1 0

48 -90.6647 14.721283 1803 0 1 0 0 0

49 -90.6647 14.721283 1803 0 1 0 0 0

50 -90.6647 14.721283 1803 0 1 0 0 0

51 -90.662867 14.72755 1706 0 1 0 0 0

52 -90.6373 14.705383 1776 0 1 0 0 0

53 -90.64065 14.705383 1759 0 1 0 0 0

54 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

55 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

56 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

57 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

58 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

59 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

60 -90.639367 14.690117 1945 0 1 0 1 0

61 -90.639383 14.68975 1945 0 1 0 1 0

62 -90.639383 14.68975 1945 0 1 0 1 0

63 -90.639383 14.68975 1945 0 1 0 1 0

64 -90.639383 14.68975 1945 0 1 0 1 0

65 -90.639383 14.68975 1945 0 1 0 1 0

66 -90.640633 14.689417 2049 0 1 0 1 1

67 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

68 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

69 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

70 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

71 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

72 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

73 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

74 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

75 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

76 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

77 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

78 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 1

79 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

80 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

81 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

82 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

83 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

84 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

85 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

90

Continúa Cuadro 4



86 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 R 0

87 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 1 0

88 -90.639233 14.69035 2041 0 1 0 0 0

89 -90.631383 14.72795 1770 0 0 0 0 0

90 -90.631383 14.72795 1770 0 0 0 0 0

91 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

92 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

93 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

94 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

95 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

96 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 0 0

97 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 0 0

98 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 0 0

99 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

100 -90.6401 14.711867 1697 0 1 0 1 0

101 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

102 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 0 1

103 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

104 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 0 0

105 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

106 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

107 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

108 -90.633617 14.727633 1781 0 0 0 0 0

109 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 0 0

110 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

111 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 1

112 -90.633617 14.727633 1781 0 0 0 1 0

113 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 0 0

114 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 1

115 -90.633617 14.727633 1781 0 1 0 1 0

116 -90.6337 14.727733 1773 0 1 0 0 0

117 -90.6337 14.727733 1773 0 1 0 0 0

118 -90.6337 14.727733 1773 0 1 0 0 0

119 -90.6337 14.727733 1773 0 1 0 0 0

120 -90.63365 14.727733 1783 0 0 0 0 0

121 -90.63365 14.727733 1783 0 1 0 0 0

122 -90.63365 14.727733 1783 0 0 0 0 0

123 -90.63365 14.727733 1783 0 0 0 0 0

124 -90.63365 14.727733 1783 0 0 0 0 0

125 -90.63365 14.727733 1783 0 0 0 0 0

127 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

128 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

129 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

130 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

131 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 1 0

132 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

133 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

134 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

135 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

136 -90.65535 14.710583 1886 0 0 0 0 0

137 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

138 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

139 NST NST NST 0 0 0 0 0

140 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

141 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

142 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

143 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 1 0

144 -90.65535 14.710583 1886 0 0 0 0 0

145 -90.65535 14.710583 1886 0 0 0 0 0

146 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

147 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 1

148 -90.65535 14.710583 1886 0 1 0 0 0

149 -90.65545 14.712667 1895 0 1 0 0 0

150 -90.65545 14.712667 1895 0 1 0 0 1

151 -90.65545 14.712667 1895 0 1 0 1 1

152 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 0 0

153 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 0 0

154 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

155 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

156 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

157 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

158 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

159 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

160 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

161 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

162 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 0 0

163 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

164 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

165 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

166 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

167 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 1

168 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

169 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

170 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 0 0

91

Continúa Cuadro 4



171 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 0 0

172 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

173 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

174 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 1 0

175 -90.644733 14.677467 2113 0 1 0 0 0

176 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 1

177 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

178 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 0 0

179 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

180 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 1

181 -90.6474 14.673983 2183 0 1 0 1 0

182 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

183 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

184 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

185 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 0 1

186 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 1

187 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 1 0

188 -90.6474 14.673983 2185 0 1 0 0 0

189 -90.645533 14.680083 2080 0 1 0 1 0

190 -90.645533 14.680083 2080 0 1 0 0 0

191 -90.645533 14.680083 2080 0 0 0 0 0

192 -90.645533 14.680083 2080 0 1 0 0 0

193 -90.645533 14.680083 2080 0 1 0 0 0

194 -90.645533 14.680083 2080 0 0 0 1 0

195 -90.645533 14.680083 2080 0 1 0 1 0

196 -90.6576 14.673267 2115 0 0 0 1 0

197 -90.6576 14.673267 2115 0 1 0 0 0

198 -90.6576 14.673267 2115 0 1 0 0 0

199 -90.6576 14.673267 2115 0 1 0 0 0

200 -90.657967 14.6815 2147 0 1 0 1 0

201 -90.657967 14.6815 2147 0 0 0 0 0

202 -90.657967 14.6815 2147 0 1 0 0 0

203 -90.657967 14.6815 2147 0 0 0 0 0

204 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 1 0

205 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 1 0

206 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 0 0

207 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 1 0

208 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 0 0

209 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 0 0

210 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 0 0

211 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 1 0

212 -90.658017 14.681483 2189 0 1 0 0 0

213 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

214 -90.65995 14.677983 2053 0 0 0 0 0

215 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

216 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

217 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

218 -90.65995 14.677983 2053 0 0 0 0 0

219 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

220 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

221 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

222 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

223 -90.65995 14.677983 2053 0 0 0 0 0

224 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

225 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

226 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

227 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

228 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 0 0

229 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 0 0

230 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

231 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 0 0

232 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 0 0

233 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

234 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

235 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

236 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

237 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 0 0

238 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 0 0

239 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

240 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

241 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 0 0

242 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

243 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

244 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

245 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

246 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

247 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 0 0

248 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 0 0

249 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

250 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

251 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

252 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

253 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

254 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

255 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 1

92

Continúa Cuadro 4


Cuadro 5. Resultados del análisis de nemátodos, expresados como número de nemátodos contados

por 300cc de suelo.



256 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

257 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 0 1

258 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 0 0

259 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 0 0

260 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

261 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

262 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

263 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

264 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

265 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

266 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 0 0

267 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

268 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

269 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

270 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

271 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

272 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 0 0

273 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

274 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

275 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

276 -90.65995 14.677983 2053 0 1 0 1 0

277 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

278 -90.6612 14.68875 2167 0 1 0 1 0

279 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 1

280 -90.661267 14.688817 2166 0 1 0 1 0

281 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

282 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

283 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

284 -90.67675 14.687433 2188 0 1 0 1 0

285 -90.669933 14.707433 1902 0 1 0 1 0

286 -90.669933 14.707433 1902 0 1 0 1 0

287 -90.672933 14.708167 1911 0 1 0 1 0

288 -90.672933 14.708167 1911 0 1 0 1 0

289 -90.672933 14.708167 1911 0 1 0 1 1

290 -90.672933 14.708167 1911 0 1 0 1 0

No. muestra Criconemoides Meloidogyne Helicotylencus Hoplolaimus Pratylenchus

25 0 210 0 0 110

26 30 10 50 0 70

27 0 10 0 0

28 20 380 0 330

29

30 0 0 0 0 0

32 0 20 0 0 0

33 220 60 0 0 60

34 20 10 0 0 30

35 20 40 10 0 110

36 20 0 0 0 100

37 0 0 0 0 40

38 110 0 60 0 38

39 60 350 160 0 490

40 0 10 0 0 0

52 110 10 0 100 0

53 250 0 0 20 0

54 310 0 0 30 0

55 40 10 0 90 20

57 0 80 10 30 0

60 0 0 30 343 0

61 0 0 10 70 0

79 30 20 0 30 0

80 0 0 0 0 0

81 450 0 0 0 0

82 20 0 120 70 0

83 0 740 0 0 0

84 0 40 20 30 0

85 0 60 10 30 0

86

87 10 30 0 60 10

88a(planta normal) 0 10 0 40 0

88b(planta anormal) 150 0 10 60 0

89 0 0 0 60 0

90 50 0 0 200 0

93

IV.4.4 Anexo 4. Escala diagramática para determinar severidad de royas en

crisantemo.

Fuente: L. Mejía

NIVEL I de 0 a 20 %

NIVEL II de 21 a 40 %

NIVEL III Mayor del 41%

94

IV.4.5 Anexo 5.

Análisis de suelo previo al establecimiento del plan de manejo en Loma Alta.

95

Análisis de suelo previo al establecimiento del plan de manejo en Cruz Blanca

96

IV.4.6 Anexo 6. Análisis foliar de plantas antes de la floración, M-1 Loma Alta, M-2

Cruz Blanca

Figura 84: Análisis foliar de plantas antes de la floración

97

IV.4.7 Anexo 7. Productos y dosis utilizadas en los planes de manejo.

Nombre

Comercial

Ingrediente

Activo

Dosificación

Min-Max

Nombre

Comercial

Ingrediente

Activo

Dosificación

Min-Max

Fungicidas Fungicidas

Captagro Captan 4cb/16lt Previcur Propamocarb 1cb/16lt

Procarzin Carbendazim 1cb/16lt Derosal Carbendazim 1cb/16lt

Bellkute Iminoctadine

tris

1cc/1lt Silvacur Tebuconazol+

Triadimenol

½ - 1 cb/16lt

Cobrethane Mancozeb 2cb/16lt Baycor Bitertanol 1cb/16lt

Curathane Mancozeb+

Cymoxanil

4cb/16lt Cupravit Hidróxido de

Cobre

4cb/16lt

Duro Clorotalonil 2cb/16lt

Insecticidas Insecticidas

Actara Tiametoxan 1sobre/16lt Regent Fipronil ¾ - 1 ½

cb/16lt

Spintor Spinosad 1cc/1lt Spinoace Spinosad ¾ - 1 ½

cb/16lt

Orthene Acefato 2cb/16lt Muralla Imidacloprid+

Cyflutrin

1 – 1 ½

cb/16lt

Trylogi Azaridactina Mesurol Methiocarb 3/4 – 1 ½

cb/16lt

Evisect Tiociclam H-

oxalato

1sobre/16lt Oberon Spiromesifen ½-16lt

Vertimec Abamectina Monarca Thiacloprid 25cc/16Lt

Thiodagro Endosulfan

Promofection Dimetoato 10cc/1lt

Otros Otros

pH Agro Corrector de

pH y

adherente

10cc/16lt Aspirina Acido acetil

salicilico

6

pastillas/16lt

Kendal Bioestimulante 3cc/lt

Radifarm Enraizador 2.5cc/1lt

15-15-15 1.5lb/tablón 15-15-15 1.5lb/tablón

46-0-0 1.5lb/tablón 46-0-0 1.5lb/tablón

98

Nitrato de

potasio

1.5lb/tablón Nitrato de

potasio

1.5lb/tablón

Gallinaza 2qq/tablón Gallinaza 2qq/tablón

Aza-Direct Azadiractina 80cc/16lt

Utilización de trampas amarillas de 50x50cm/2 por tablón, con aceite quemado o pegamento

*cb = copa bayer = 25cc

99

PARTE V

V.1 INFORME FINANCIERO

AD-R-0013

Nombre del Proyecto:

Numero del Proyecto: 76-2006

Investigador Principal: Licda. Margarita Palmiera

Monto Autorizado: Q337,794.05

Fecha de Inicio y Finalización: 01/01/2007 al 31/12/2008 24 meses

Menos (-) Mas (+)

1 SERVICIOS NO PERSONALES

181

Estudios, investigaciones y proyectos de

factiblidad 148,200.00Q 140,200.00Q 8,000.00Q

122 Impresión, encuadernación y reproducción 1,000.00Q 1,000.00Q

131 Viáticos en el exterior 10,080.00Q 10,080.00Q -Q

133 Viáticos en el interior 3,220.00Q 14,210.00Q 10,990.00Q -Q

189 Otros estudios y/o servicios 600.00Q 300.00Q 300.00Q

2 MATERIALES Y SUMINISTROS

241 Papel de escritorio 2,000.00Q 1,600.00Q 400.00Q

243 Productos de papel o cartón 3,000.00Q 1,500.00Q 1,235.00Q 265.00Q

261 Elementos y compuestos químicos 10,000.00Q 300.00Q 49,472.00Q 59,166.09Q 5.91Q

262 Combustibles y lubricantes 2,100.00Q 865.00Q 1,235.00Q -Q

264 Insecticidas, fumigantes y similares 1,500.00Q 32.00Q 1,468.00Q -Q

266 Productos medicinales y farmaceúticos 5,000.00Q 2,331.98Q 20,000.00Q 9,189.85Q 13,478.17Q

267 Tintes, pinturas y colorantes 1,000.00Q 1,000.00Q

268 Productos plásticos, nylon, vinil y pvc 10,000.00Q 5,323.60Q 1,144.29Q 3,532.11Q

269 Otros productos químicos y conexos 66,500.00Q 66,500.00Q 95.00Q 95.00Q -Q

272 Productos de vidrio 15,000.00Q 1,265.00Q 16,184.21Q 80.79Q

291 Útiles de oficina 205.50Q 600.00Q 330.10Q 475.40Q

295

Útiles menores, médico-quirúrgicos y de

laboratorio 2,000.00Q 6,960.58Q 8,960.58Q -Q

299 Otros materiales y suministros 5,000.00Q 3,571.00Q 1,429.00Q

3

PROPIEDAD, PLANTA, EQUIPO E

INTANGIBLES

323 Equipo médico-sanitario y de laboratorio 26,500.00Q 15,199.00Q 11,301.00Q -Q

329 Otras maquinarias y equipos 15,320.00Q 15,120.00Q 200.00Q

GASTOS DE ADMÓN. (10%) 30,708.55Q 30,708.55Q -Q

337,794.05Q 110,522.58Q 110,522.58Q 307,627.67Q 30,166.38Q

MONTO AUTORIZADO 337,794.05Q DISPONIBILIDAD 30,166.38Q

(-) EJECUTADO 307,627.67Q

SUBTOTAL 30,166.38Q

(-) CAJA CHICA

TOTAL POR EJECUTAR 30,166.38Q

Ejecutado Pendiente de

Ejecutar

ONCEAVA CONVOCATORIA

LINEA FODECYT

Diagnóstico de la situación fitosanitaria del crisantemo y otras flores de corte y evaluación de

planes emergentes de manejo integrado del cultivo en los municipios de San Pedro y San Juan

Sacatepéquez, Guatemala.

PRÓRROGA AL 31/03/2009

Grupo Renglon Nombre del Gasto Asignacion

Presupuestaria

TRANSFERENCIA En Ejecuciòn

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