Universidad Autónoma de Baja Californiafcm.ens.uabc.mx/~yschramm/Biología/Manual de Laboratorio de...

Manual de prácticas de Laboratorio de

BIOLOGÍA

Araujo Palomares, Cynthia Lizzeth Castellanos Martínez, Sheila De la Peña Nettel, Gabriela

Rico Mora, Roxana Schramm Urrutia, Yolanda

Silva Jiménez, Hortencia

Responsables de la elaboración del manual de BIOLOGÍA

Universidad Autónoma de Baja

California

Facultad de Ciencias Marinas

[Avalado, Validado] el [fecha] por Consejo Técnico

Directorio

Dr. Juan Manuel Ocegueda Hernández.

Rector UABC

Dra. Mónica Lacavex Berumen

Vicerrector, UABC Campus Ensenada

Dr. Juan Guillermo Vaca Rodríguez

Director FCM

Dr. Víctor Antonio Zavala Hamz

Subdirector, FCM

Universidad Autónoma de Baja

California

Facultad de Ciencias Marinas

ÍndiceÍndice ...................................................................................................................................................................................... iii

Introducción ............................................................................................................................................................................ 1

Encuadre del Sistema de Prácticas ......................................................................................................................................... 2

Introducción ........................................................................................................................................................................ 2

Competencias a las que contribuye .................................................................................................................................... 3

Niveles de Desempeño ........................................................................................................................................................ 3

Ubicación dentro del mapa curricular ................................................................................................................................ 4

Programa del Sistema de Prácticas ..................................................................................................................................... 5

Contenido de Prácticas de Laboratorio de BIOLOGÍA ........................................................................................................ 6

1. Introducción

1.1 Presentación, clarificación de valores .......................................................................................................................... 7

1.2 Práctica No. 1. Normas de seguridad en el laboratorio de Biología ........................................................................... ..9

1.3 Práctica No. 2. Elaboración de un reporte de laboratorio ........................................................................................ ..17

2. La célula como unidad básica de la vida ........................................................................................................................ 28

2.1 Práctica No. 3. Uso del microscopio estereoscópico .................................................................................................. 28

2.2 Práctica No. 4. Uso del microscopio compuesto ........................................................................................................ 34

2.3 Práctica No. 5. Tipos de células: Procariotas y eucariotas .......................................................................................... 40

3. Genética ......................................................................................................................................................................... 45

3.1 Práctica No. 6. Mitosis ................................................................................................................................................ 45

3.2 Práctica No. 7. Meiosis ................................................................................................................................................ 50

3.3 Práctica No. 8. Herencia .............................................................................................................................................. 54

4. Historia evolutiva de la diversidad biológica ................................................................................................................. 59

4.1 Práctica No. 9. Sistemática .......................................................................................................................................... 59

5. Ecología ......................................................................................................................................................................... 65

5.1 Práctica No. 10. Anatomía de un vertebrado ............................................................................................................. 65

5.2 Práctica No. 11. Anatomía de un invertebrado .......................................................................................................... 68

Anexo A ................................................................................................................................................................................. 71

Normas generales de seguridad e higiene ........................................................................................................................ 71

Medidas generales en caso de accidente ......................................................................................................................... 73

Plan general de emergencia .......................................................................................................................................... 73

Fuego en el laboratorio ................................................................................................................................................. 73

Fuego en el cuerpo ........................................................................................................................................................ 73

Quemaduras .................................................................................................................................................................. 74

Cortes ............................................................................................................................................................................ 74

Derrame de productos químicos sobre la piel .............................................................................................................. 74

Corrosiones en la piel por ácidos y álcalis ..................................................................................................................... 75

Corrosiones en los ojos ................................................................................................................................................. 75

Ingestión de productos químicos .................................................................................................................................. 75

Manual de Prácticas de Laboratorio de Biología Introducción Página 1

Facultad de Ciencias Marinas de la UABC

Introducción

Este manual está diseñado para estudiantes del área de ciencias naturales y exactas. Está destinado a servir de complemento a la materia de Biología del Tronco Común de la Facultad de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California, pero podrá, mediante adaptaciones y modificaciones leves, ser usado en cualquier carrera afín.

Manual de Prácticas de Laboratorio de Biología Encuadre del Sistema de Prácticas Página 2


Encuadre del Sistema de Prácticas

Introducción Las prácticas de laboratorio de Biología son parte de esta unidad de aprendizaje obligatoria que se imparte en el Tronco Común de la Facultad de Ciencias Marinas. Su propósito es que el alumno adquiera los conocimientos y habilidades básicas para la utilización del equipo y materiales dentro de un laboratorio de Biología.



Competencias a las que contribuye Conocer y saber aplicar la correcta utilización de equipo, materiales y herramientas para la observación, toma de datos y su interpretación, utilizando las habilidades del pensamiento lógico, con una actitud creativa, crítica y disciplinada.

Niveles de Desempeño

Las prácticas del laboratorio de Biología se ubican en el nivel de desempeño 2, ya que se realizan un conjunto significativo de actividades de trabajo, variadas y aplicadas en diversos contextos. Algunas actividades son complejas y no rutinarias. Presenta un bajo grado de responsabilidad y autonomía en las decisiones. A menudo requiere colaboración con otros y trabajo en equipo.



Ubicación dentro del mapa curricular



Programa del Sistema de Prácticas

Tema Práctica o prácticas programadas Ámbito de

desarrollo Duración*

1. Introducción

Presentación, clarificación de valores.

Laboratorio 2 Hrs. Semana 1

Práctica #1. Normas de seguridad en

el laboratorio de Biología. Laboratorio 2 Hrs. Semana 2

Práctica #2. Elaboración de un reporte de laboratorio.

Laboratorio 4 h Semana 3 y 4

2. La célula como unidad básica de la vida

Práctica # 3. Uso del Microscopio

Estereoscópico. Laboratorio 2 Hrs. Semana 5

Práctica # 4. Uso del Microscopio Compuesto.


Práctica # 5. Tipos de células: Procariotas y eucariotas.

Laboratorio 2Hrs. Semana 7

3. Genética

Práctica # 6. Mitosis. Laboratorio 2 Hrs. Semana 8

Práctica # 7. Meiosis. Laboratorio 2 Hrs. Semana 9

Práctica # 8. Herencia. Laboratorio 2 Hrs. Semana 10

4. Historia Evolutiva de la Diversidad Biológica

Práctica # 9. Sistemática Laboratorio

2 Hrs. Semana 11

5. Ecología

Práctica # 10. Anatomía de un

vertebrado. Laboratorio 2 Hrs. Semana 12

Práctica # 11. Anatomía de un invertebrado .


* Duración en horas para cada práctica, y semana del semestre en la que se realizará.

1. Introducción

Conocer tanto al instructor, así como el espacio físico en el que se desarrollarán

las sesiones, sus reglamentos de uso y comportamiento. Desarrollar un ejercicio

de clarificación de valores. Conocer cómo se hace un Reporte de Laboratorio,

compararlo con los artículos científicos y practicar la forma de citar en estilo

Harvard.

Manual de Prácticas de Laboratorio de Biología Página 7


1.1 Presentación, clarificación de valores.

1.1.1. Introducción Conocer tanto al instructor o instructora, así como a los integrantes de la sección de laboratorio correspondiente.

1.1.2. Objetivo Objetivo explícito: Decidir por consenso, en equipo de trabajo, una jerarquización acerca del comportamiento de los actores de la historia que se narrará. Objetivos implícitos:

Propiciar la integración grupal.

Detectar la ideología y los valores de los participantes.

Detectar la presencia de líderes.

1.1.2.2. Competencia de la Presentación e integración grupal.

Decidir por consenso, en equipo de trabajo, una jerarquización acerca del comportamiento de los actores de la historia que se narrará para propiciar la integración grupal y detectar la ideología y los valores de los participantes.

1.1.3. Material

Hoja con la historia de las Técnica de las islas de la guía de Habilidades

Básicas para la Docencia de Carlos Zarzar Charur, para que la lea el instructor ante el grupo.

Papel y lápiz.

1.1.4. Desarrollo

1. Se presentará el instructor o instructora del laboratorio.

2. Se establecerán las reglas de evaluación y la mecánica de trabajo.

3. Se darán a conocer las reglas de comportamiento y vestimenta dentro del

laboratorio.



4. A continuación el instructor o instructora aplicará la técnica de clarificación de valores denominada: Técnica de las Islas de la guía de Habilidades Básicas para la Docencia de Carlos Zarzar Charur.

5. Primero de manera individual y más tarde de manera grupal, jerarquización acerca del comportamiento de los actores de la historia que se narrará.

1.1.5. Método de Evaluación

Observación directa a través de listas de cotejo, durante el desarrollo de la práctica o en dinámicas grupales y simulaciones. Esta sesión no es sujeta a evaluación sólo es motivacional para fomentar la participación, tanto con el resto del grupo así como, con el instructor o instructora.

1.1.6. Bibliografía

Zarzar-Charur, C. 1993. “Habilidades Básicas para la Docencia”. Editorial Patria,

México, D.F. 150 pp.



1.2 Práctica No. 1. Normas de seguridad en el laboratorio de Biología.

1.2.1. Introducción

Durante esta sesión se pretende conocer el espacio físico en el que se desarrollarán las sesiones, los reglamentos de comportamiento y uso del laboratorio. Se darán a conocer los procedimientos específicos en caso de accidente, y en el manejo de residuos generados en el laboratorio de biología para su correcta disposición.

1.2.2. Competencias

1.2.2.1. Competencia de las Normas de seguridad del laboratorio de Biología. Conocer los procedimientos para el adecuado manejo y disposición de residuos generados durante las prácticas del laboratorio de biología, y en caso de un accidente para su posterior aplicación.

1.2.3. Material

1.2.3.1. Normas de seguridad del laboratorio de Biología Hojas de seguridad de materiales de laboratorio.

Bitácoras de uso de espacio físico.

Bitácoras de generación de residuos peligrosos.

Hojas de seguridad de sustancias químicas.

Señalización de peligrosidad de sustancias químicas y área de almacenamiento de residuos peligrosos en el laboratorio.

1.2.4. Desarrollo

El instructor o instructora de laboratorio explicará la información contenida en las hojas de seguridad, uso de bitácoras, señalización y áreas del laboratorio. Además se establecen las reglas de evaluación y la mecánica de trabajo.

1.2.4.1. Normas de seguridad en el laboratorio

El alumno conocerá la forma de etiquetado de sustancias químicas que se usan en un laboratorio a través de material en presentación digital e identificará en el laboratorio la señalización correspondiente. El alumno conocerá algunas de las sustancias que se emplearán en el laboratorio de biología y las Hojas de seguridad (MSDS por sus siglas en inglés “Material Safety Data Sheet”) correspondientes, en las cuales se basará para establecer la forma adecuada



de su manejo, disposición, uso de equipo de protección personal y en su caso medidas de primeros auxilios en caso de accidente o contingencia.



Se establecerá la diferencia entre los diferentes tipos de residuos que se generarán en el laboratorio de biología; se identificarán las corrientes residuales que correspondan, las áreas destinadas para la disposición de los residuos, la forma adecuada de disposición y las bitácoras de generación de residuos peligrosos. Para esclarecer lo anterior se definen los siguientes conceptos con base en el artículo 5o de la Ley General para la Prevención y Gestión Integral de los Residuos (LGPyGIR) (SEMARNAT, 2018). Residuo: Material o producto cuyo propietario o poseedor desecha y que se encuentra en estado sólido o semisólido, o es un líquido o gas contenido en recipientes o depósitos, y que puede ser susceptible de ser valorizado o requiere sujetarse a tratamiento o disposición final conforme a lo dispuesto en esta Ley y demás ordenamientos que de ella deriven. Residuos de Manejo Especial: Son aquellos generados en los procesos productivos, que no reúnen las características para ser considerados como peligrosos o como residuos sólidos urbanos, o que son producidos por grandes generadores de residuos sólidos urbanos. Residuos Incompatibles: Aquellos que al entrar en contacto o al ser mezclados con agua u otros materiales o residuos, reaccionan produciendo calor, presión, fuego, partículas, gases o vapores dañinos.



Residuos Peligrosos: Son aquellos que posean alguna de las características de corrosividad, reactividad, explosividad, toxicidad, inflamabilidad, o que contengan agentes infecciosos que les confieran peligrosidad, así como envases, recipientes, embalajes y suelos que hayan sido contaminados cuando se transfieran a otro sitio, de conformidad con lo que se establece en esta Ley. Residuos Sólidos Urbanos: Los generados en las casas habitación, que resultan de la eliminación de los materiales que utilizan en sus actividades domésticas, de los productos que consumen y de sus envases, embalajes o empaques; los residuos que provienen de cualquier otra actividad dentro de establecimientos o en la vía pública que genere residuos con características domiciliarias, y los resultantes de la limpieza de las vías y lugares públicos, siempre que no sean considerados por esta Ley como residuos de otra índole. Responsabilidad Compartida: Principio mediante el cual se reconoce que los residuos sólidos urbanos y de manejo especial son generados a partir de la realización de actividades que satisfacen necesidades de la sociedad, mediante cadenas de valor tipo producción, proceso, envasado, distribución, consumo de productos, y que, en consecuencia, su manejo integral es una corresponsabilidad social y requiere la participación conjunta, coordinada y diferenciada de productores, distribuidores, consumidores, usuarios de subproductos, y de los tres órdenes de gobierno según corresponda, bajo un esquema de factibilidad de mercado y eficiencia ambiental, tecnológica, económica y social. Con base en la Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002 se define como Agente biológico-infeccioso: Cualquier microorganismo capaz de producir enfermedades cuando está presente en concentraciones suficientes (inóculo), en un ambiente propicio (supervivencia), en un hospedero susceptible y en presencia de una vía de entrada. Conforme a la naturaleza y clasificación de los residuos que se generen durante las sesiones de laboratorio, el instructor indicará la forma adecuada de manejar y disponer cada uno de los residuos generados ya sea en el laboratorio o en el almacén de residuos peligrosos de la FCM conforme lo establece la normatividad ambiental y de salud vigente. De igual forma se llenará la bitácora de generación de residuos peligrosos conforme corresponda.

1.2.4.2. Reglas de comportamiento en el laboratorio

Todo usuario de un laboratorio deberá guardar el siguiente comportamiento con base en el artículo 19 del Manual de organización y procedimientos de la Facultad de Ciencias Marinas:

1. Guardar orden y disciplina en el laboratorio en todo momento.



2. Está prohibido hacer uso de aparatos electrónicos dentro del laboratorio (grabadores, celulares, juegos, etc.) durante las sesiones. Sólo se podrán usar aquellos cuando sean requeridos para el desarrollo del trabajo académico.

3. Uso obligatorio de la bata en todos los laboratorios. 4. Está prohibido fumar, comer, tomar todo tipo de bebidas y masticar goma dentro

del laboratorio. 5. No jugar con el material ni con los reactivos químicos. 6. Los libros y objetos personales que no se requieran en la práctica deberán ser

colocados en el casillero designado para tal fin. 7. Las mesas de trabajo no deberán usarse para sentarse. 8. Trabajar siempre bajo supervisión de un maestro o el responsable del laboratorio

asignado. 9. Utilizar lentes de seguridad cuando se trabaje con equipo o sustancias químicas

de alta reactividad. 10. Trabajar en la campana de extracción todas las sustancias que desprenden

vapores o emisiones. 11. Mantener el orden y limpieza de los laboratorios. 12. Respetar el reglamento interno de seguridad correspondiente. En el caso de este

laboratorio: a. Uso obligatorio de pantalones y zapato cerrado. b. Uso obligatorio de guantes de protección durante el manejo de sustancias

químicas, manejo de especimenes y disecciones, además del equipo de protección especial que requiera cada caso con base en la información de las hojas de seguridad o fichas técnicas.

c. Hacer buen uso de los reactivos y materiales de laboratorio. Con base en el artículo 34 de este manual; si un equipo o material de laboratorio se daña por descuido, negligencia o uso indebido, el importe de la reparación o sustitución del mismo deberá ser cubierto por el responsable directo o por toda la sesión del laboratorio, una vez establecida la responsabilidad de la falta.

d. Todo material, instrumento y equipo de laboratorio deberá quedar limpio y seco al finalizar cada sesión.

e. Llenar correctamente las bitácoras de uso de equipo y de generación de residuos peligrosos.

f. Disponer en el recipiente o contenedor adecuado cada tipo de residuo. 13. Asegurarse de que todo residuo orgánico (peces, vísceras, conchas, algas, etc.)

sea llevado al Almacén General para su correcta disposición. 14. Después de cada sesión verificar que el material, mesas de trabajo, gavetas,

equipo, instalaciones eléctricas y de agua del laboratorio queden limpios (particularmente las mesas de trabajo y tarjas), en su lugar y bien cerradas (particularmente las gavetas con equipo como microscopios).

15. Ordenar los bancos y dejar limpios los casilleros antes de abandonar el laboratorio.



En caso de accidente, se deberá informar inmediatamente al instructor, conservar la calma y describir en forma clara y precisa el nombre de la sustancia con la que se estaba trabajando, tipo de afectación y parte afectada de la víctima (p. e. cortada, quemadura, inhalación, contacto con ojos, etc.), si se presentó un derrame de una o más sustancias y la ubicación del derrame. Con base en dicha información, el instructor indicará si procede o no la evacuación del laboratorio, indicará a qué Brigada de atención a contingencias se deberá comunicar el accidente para recibir apoyo y se procederá a implementar el Protocolo de primeros auxilios si es el caso. El alumnado deberá leer y consultar el Anexo A de este Manual para seguir las instrucciones en caso de emergencias. La Facultad de Ciencias Marinas (FCM) cuenta con las siguientes brigadas: de Protección civil, de Prevención y combate de incendios, de Búsqueda y rescate, de Primeros Auxilios y la de Comunicaciones. Durante la sesión de laboratorio el alumno elaborará un croquis con la distribución de áreas del laboratorio de biología y señalará el espacio físico destinado para la disposición y almacenamiento temporal de los residuos no peligrosos de tipo urbano y residuos peligrosos y residuos peligrosos biológico-infecciosos, además describirá el tipo de recipiente utilizado para la disposición de residuos con base en la corriente residual que indique el etiquetado de cada recipiente. Deberá señalar la ubicación de la salida para evacuar el laboratorio.

1.2.5. Método de evaluación

Con base en la previa formación de equipos de trabajo, se entregará un reporte de la práctica con formato libre, ya sea escrito a mano, impreso o enviarlo de manera electrónica. Deberá incluir una portada con el nombre de los integrantes del equipo, título y número de la práctica, así como la fecha de entrega del reporte. Se evaluarán los resultados de las siguientes actividades. 1. En el croquis elaborado durante la sesión de laboratorio con la distribución de áreas del laboratorio de biología, el alumno señalará el espacio físico destinado para la disposición y almacenamiento temporal de los residuos no peligrosos y residuos peligrosos, además describirá el tipo de recipiente utilizado para la disposición de residuos con base en la corriente residual que indique el etiquetado de cada recipiente. 2. Como actividad extraclase, el alumno seleccionará una de las sustancias mencionadas por el instructor y mediante un pictograma describirá el sistema de identificación de dicha sustancia utilizando los colores y número de peligrosidad que corresponda a cada categoría. Describirá el significado de los colores, números, letras y símbolos para informar el riesgo en el lugar de trabajo y el tipo de equipo de protección personal que deberá usar durante el manejo de dicha sustancia.



3. El alumno investigará y consultará en internet la Hoja de Seguridad para el alcohol etílico, identificará y enlistará las secciones que conforman la estructura de dicha hoja de seguridad, señalando la fuente de referencia. 4. El alumno elaborará un glosario a fin de definir los siguientes conceptos: agente infeccioso, agente biológico-infeccioso, características que definen a un residuo como peligroso, contenedor, constituyente tóxico, corriente residual, CRETIB, CRIT, disposición final, envase, generador, gestión integral de residuos, inventario de residuos, manejo integral, plan de manejo de residuos, residuo orgánico, residuo inorgánico, residuos peligrosos biológico-infecciosos (RPBI), residuo de tipo urbano, residuo peligroso, toxicidad, toxicidad aguda, toxicidad ambiental y toxicidad crónica. El glosario deberá elaborarse con base en las siguientes referencias:

la Norma Oficial Mexicana NOM-052-SEMARNAT-2005, Que establece las características, el procedimiento de identificación, clasificación y los listados de los residuos peligrosos (SEMARNAT, 2006),

la Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002, Protección ambiental - Salud ambiental - Residuos peligrosos biológico-infecciosos - Clasificación y especificaciones de manejo (SEMARNAT, 2003),

la Ley General para la Prevención y Gestión Integral de los Residuos (LGPyGIR) (SEMARNAT, 2018), y

el Plan de Manejo para la Gestión Integral de Residuos Peligrosos, considerando su acopio, almacenamiento, transporte y envío a reciclaje, tratamiento o disposición final de la Facultad de Ciencias Marinas (FCM, 2010). 5. Con base en la Clasificación de los residuos peligrosos biológico-infecciosos de la Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002, el alumno enlistará y definirá los diferentes tipos de residuos peligrosos biológico-infecciosos y el manejo que establece esta norma por tipo de RPBI. 6. El alumno consultará la página web de la Facultad de Ciencias Marinas (FCM), en el menú principal seleccionará la ventana “Transparencia y otros”, en el rubro de Auditoría Ambiental se desplegará el apartado correspondiente a los responsables de brigada del edificio en el que se ubique el laboratorio de Biología en el que usted realizará sus prácticas. 7. El alumno presentará una relación con los nombres de los responsables de las brigadas que le corresponden al laboratorio de Biología; y en un croquis de la FCM el alumno señalará el cubículo u oficina en donde se localiza cada uno de los brigadistas. 8. Para concluir el reporte, el alumno deberá desarrollar un apartado de “referencias”, en donde indicará las fuentes consultadas para la realizar las actividades antes descritas, en orden alfabético con base en el nombre del autor o autores o de la página web; si consultó recursos electrónicos además del URL deberá incluir el nombre de la página.



1.2.6. Bibliografía

Facultad de Ciencias Marinas. Auditoría Ambiental: responsables de brigada, etiquetado de sustancias peligrosas, hojas de seguridad y procedimientos en caso de emergencia. Disponible en línea en: http://oceanologia.ens.uabc.mx/ http://oceanologia.ens.uabc.mx/auditoria/procedimientos/

Facultad de Ciencias Marinas. 2010. Plan de Manejo para la Gestión Integral de Residuos Peligrosos, considerando su acopio, almacenamiento, transporte y envío a reciclaje, tratamiento o disposición final de la Facultad de Ciencias Marinas. Disponible en línea en: http://oceanologia.ens.uabc.mx/auditoria/procedimientos/

Facultad de Ciencias Marinas. 2018. Manual de organización y procedimientos. Disponible en línea en: http://oceanologia.ens.uabc.mx/reglamentos/Manual_de_Org_y_Proced_FCM_15_03_2018.pdf

Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). 2003. Norma Oficial Mexicana NOM-087-ECOL-SSA1-2002, Protección ambiental - Salud ambiental - Residuos peligrosos biológico-infecciosos - Clasificación y especificaciones de manejo. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 17 de febrero de 2003. Disponible en línea en: http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=704675&fecha=17/02/2003

Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). 2006. la Norma Oficial Mexicana NOM-052-SEMARNAT-2005, Que establece las características, el procedimiento de identificación, clasificación y los listados de los residuos peligrosos. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 26 de junio de 2006. Disponible en línea en: http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=4912592&fecha=23/06/2006

Secretaría de Medio Ambiente y Recursos Naturales (SEMARNAT). 2018. Ley General para la Prevención y Gestión Integral de los Residuos (LGPyGIR). Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 8 de octubre de 2003. Última reforma publicada el 19 de enero de 2018. Disponible en línea en: http://www.diputados.gob.mx/LeyesBiblio/pdf/263_190118.pdf

http://oceanologia.ens.uabc.mx/

http://oceanologia.ens.uabc.mx/auditoria/procedimientos/

http://oceanologia.ens.uabc.mx/auditoria/procedimientos/

http://oceanologia.ens.uabc.mx/reglamentos/Manual_de_Org_y_Proced_FCM_15_03_2018.pdf

http://oceanologia.ens.uabc.mx/reglamentos/Manual_de_Org_y_Proced_FCM_15_03_2018.pdf

http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=704675&fecha=17/02/2003


http://www.diputados.gob.mx/LeyesBiblio/pdf/263_190118.pdf



1.3 Práctica No. 2. Elaboración de un Reporte de Laboratorio

1.3.1. Introducción Una de las formas de comunicación escrita más común en el área de las ciencias naturales son los reportes de laboratorio, estos nos permiten transmitir las experiencias y avances en el conocimiento de una manera clara y ordenada. El reporte de investigación constituye la evidencia de aprendizaje tanto de las prácticas de laboratorio como de los trabajos de campo a través de la comunicación efectiva de resultados y su respectivo análisis; éstos son un ejercicio práctico para desarrollar la habilidad de redactar futuros trabajos tanto de tesis como artículos científicos. La elaboración de reportes de laboratorio o de investigación, representan una competencia profesional y académica indispensable en la formación de los egresados en las carreras en ciencias. Las partes esenciales de un reporte de laboratorio son:

1. Portada 2. Introducción 3. Objetivo (s) 4. Materiales y Método 5. Resultados 6. Discusión 7. Referencias o bibliografía

Algunos formatos de reportes de laboratorio incluyen resumen y conclusiones. Sin embargo, al tratarse de reportes relativamente sencillos, estas dos secciones (resumen y conclusiones) resultarían repetitivas. Por lo tanto, para los reportes de laboratorio del curso de Biología, sólo se solicitarán los siete puntos antes mencionados.

1. Guía para la elaboración de la portada (ver ejemplo en la siguiente página) Priorizar por tamaños de letras los identificadores en orden jerárquico iniciando por la institución, no se deben emplear abreviaturas ni acrónimos. Se podrán utilizar escudos o logotipos como identificadores, siempre en orden jerárquico como se muestra en el ejemplo. En la parte central escribir el nombre o título de la práctica y su respectivo código numérico. En la parte inferior derecha se identifica a qué curso pertenece la práctica, el nombre completo de quién o quiénes elaboraron el reporte iniciando con los apellidos seguidos del nombre de pila. Siempre en orden alfabético. Se establece la fecha de entrega del documento.



UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE BAJA CALIFORNIA

FACULTAD DE CIENCIAS MARINAS

PRÁCTICA No. 1 BIOMETRÍA VEGETAL

Laboratorio de Biología Grupo 1, subgrupo 2 Torres Ávila, Antonio

8 de septiembre del 2018

2. Guía para la elaboración de la introducción y marco teórico Para la redacción y desarrollo de la introducción se deben incluir los elementos que se describen a continuación, pero no se separan ni se subtitulan, éstos deben ser redactados con ilación y congruencia, con una secuencia lógica de ideas. El marco teórico es el punto de referencia del trabajo e incluye antecedentes históricos y/o conocimientos fundamentales del tema hallados en la literatura, producto de la revisión bibliográfica. a. Planteamiento del problema o tema de investigación. Redacta de lo general a lo particular, verificando que el tema quede claro y tan preciso como lo requiere el experimento o investigación. Incluye las razones por las que el tema es importante, la forma en que se relacionan las variables, cuáles son las implicaciones teóricas del estudio, cómo puede aplicarse en la práctica profesional y cuál es la relevancia en la formación profesional de un estudiante de ciencias.



b. Desarrollo de los antecedentes: se presenta una recopilación de la literatura y el análisis de la misma de los trabajos y estudios que se han realizado, acorde a la perspectiva del tema de investigación o problema planteado; integrando la información para evidenciar una continuidad lógica entre los estudios previos y el actual. c. Se debe citar y referenciar la literatura pertinente; según sea el caso, se debe incluir en cada oración o párrafo la fuente a partir de la cual se tomó la información indicando entre paréntesis el autor y el año de publicación (p.e. Ruíz-Silva, 2004), y cuya cita completa será incluida en el apartado de “referencias o bibliografía” del reporte. 4. Guía para la elaboración del objetivo El objetivo puede estar explícitamente señalado, bajo el subtítulo “objetivo” o en algunos documentos (principalmente en artículos científicos) quedan incluidos en la introducción. En el caso de los reportes de laboratorio de Biología se deberá incluir explícitamente. Establezca claramente el objetivo de la práctica. Describa el fundamento del experimento o investigación, defina las variables y desarrolle los conceptos y definiciones que sustenten el experimento. Después de presentar los puntos anteriores cuenta con los argumentos para explicar cuál será su enfoque para la solución del problema o la importancia de abordar el tema de investigación, indicando los objetivos que persigue (objetivo general y particulares). 5. Guía para la elaboración de los materiales y método a. Se debe presentar un listado de los materiales que se utilizaron durante la sesión del laboratorio, desde muestras (organismos, preparaciones, etc.), reactivos (tinciones, solventes, etc.), material (cristalería, tijeras, pinzas, bisturí, etc.) y aparatos (microscopios, balanza, etc.). b. Para describir el método se detallará la forma en que se realizó la práctica, experimento o investigación. La claridad y precisión en el desarrollo de este apartado es fundamental para que se pueda comprender la validez y confiabilidad de la investigación, así como para que esta sea replicable por otros investigadores o estudiantes. Si el experimento consistió en varias etapas, puede dividirse y subtitular cada una siguiendo el orden cronológico con el que se desarrollaron. 6. Guía para la elaboración de resultados a. Este apartado dará inicio con la descripción de los resultados, se resumen los datos recolectados, con suficiente detalle como para justificar la discusión. Deberá redactar la descripción en párrafos con texto explicativo, seguido de tablas, figuras, imágenes, fórmulas, mapas, etc. como apoyo para la mejor comprensión de los resultados. b. Es importante que durante la redacción (texto) de los resultados se debe hacer referencia a las tablas, figuras, etc. Es decir, se debe mencionar entre paréntesis la tabla o figura antes de que aparezca en el cuerpo del documento. Por ejemplo: “Al utilizar el microscopio estereoscópico fue posible observar más detalles de la concha



de caracol que cuando se hace a simple vista (Figura 1.)…y más adelante se incluye la figura. c. Cuando se escribe “figura X” o “tabla X” se deben escribir con mayúscula, pues al numerarlas se consideran nombre propios. d. Las tablas deben incluir título, no así las figuras, sino pie de figura. A diferencia de las tablas, el número y descripción de la figura deberá colocarse inmediatamente después de la misma, es decir, los títulos de las figuras se colocan en la parte inferior de esta (pie de figura). e. Las tablas y figuras deben de contener toda la información necesaria para que el lector las entienda sin tener que leer la descripción del texto. Es decir, el título de la tabla debe de contener información para entenderla y lo mismo se aplica al pie de figura. Tablas. El formato de las tablas es libre, sólo deberá observarse que el tipo y tamaño de letra sea igual al utilizado en el texto del documento. En casos excepcionales, se podrá utilizar un tamaño de letra menor a la del texto del documento pero que no sea menor de 8. Las tablas serán numeradas en forma consecutiva comenzando con el número uno (se sugiere el uso de números romanos para las tablas). Ejemplo: Los datos de precipitación que se presentan se tomaron de la estación climatológica 3174-Guerrero Negro, en el municipio de Mulegé, Baja California Sur, que es la más cercana al área del proyecto. Con una localización geográfica de -114.017W, 27.967N y una altitud de diez metros. En la Tabla I se representan las temperaturas promedio, máximas y mínimas anuales para el periodo de 1996 al año 1998. Tabla I. Temperaturas anuales de la Estación Climatológica. 3174-Guerrero Negro, en el periodo 1996-1998. Fuente: Estación climatológica 3174 Guerrero Negro

Temperatura / año 1996 1997 1998

T oC máx. 22.6 26.7 24.3

T oC mín. 7.6 15.3 10.9

T oC promedio 15.1 21 17.6

T oC Temperatura expresada en grados Celsius

Siempre incluya el significado de la simbología y abreviaturas que emplee, así como la fuente si es el caso o bien especifique si es de su autoría. Es fundamental que se especifiquen las unidades en cada una de las columnas, en caso de utilizar símbolos para las unidades, deben cumplir con lo establecido en la Norma Oficial Mexicana NOM-008-SCFI-2002, que establece el Sistema General de Unidades de Medida en México, en concordancia con normas internacionales de metrología (Dirección General de Normas, 2002). En el cuerpo de la tabla (celdas) sólo



debe colocar los datos numéricos sin las unidades, a menos que éstas varíen en la columna. Cuando por la extensión de una tabla sea necesario cortarla para su edición en dos hojas, se deberá colocar de nueva cuenta el título, indicando que es continuación de la “Tabla X” y deben incluir los encabezados de cada columna. Figuras. Las figuras de calidad profesional son importantes, ya que atraen al lector, proporcionando una impresión visual rápida. Siempre tenga en mente que la escala y forma de las figuras puede tener una gran influencia sobre la interpretación final de los datos. Las figuras deben numerarse en forma consecutiva comenzando con 1 y de manera independiente de las tablas. Ejemplo: En colindancia con el cuerpo lagunar Guerrero, el ambiente terrestre se localiza en la Región Hidrológica número 2 Baja California Centro-Oeste del Vizcaíno (INEGI, 2010) (Figura 1 ó Fig. 1).

RH02

RH02Bb

Sitio del proyecto

Figura 1. Región Hidrológica número 2 Baja California Centro-Oeste del Vizcaíno.

Fuente: Elaboración propia, 2016.

Se recomienda evitar el uso de sombras y líneas punteadas. El texto en las figuras deberá tener al menos 2 mm de altura. Ecuaciones. Las ecuaciones o fórmulas estarán centradas y separadas del texto. La numeración será consecutiva comenzado con el 1. El número de la ecuación deberá encerrarse entre paréntesis y colocarse a la derecha de la ecuación lo más cercano posible al margen derecho. Por ejemplo:

x + y = z ……...................……. (1)



7. Guía para la elaboración de la discusión La discusión en un documento científico se refiere a la explicación de los resultados. Es decir, el autor debe referenciar (apoyar con otras fuentes) sus resultados para que el lector entienda por qué el resultado se considera “adecuado, promedio, bajo, alto, etc.”. La discusión se desarrollará en referencia a los objetivos del trabajo y a los antecedentes obtenidos de la revisión bibliográfica. Es decir, se contrastan los resultados obtenidos del experimento o de la investigación con aquellos resultados reportados por los autores referidos en los antecedentes de la introducción o marco teórico. Las semejanzas y diferencias entre sus resultados y los de otros autores deben aclarar y confirmar las conclusiones que obtenga y le dan validez a sus resultados. Finalice la discusión con un comentario sobre la importancia de sus hallazgos. La discusión puede incluir alguno o todos los puntos que se mencionan a continuación.

Discutir (explicar) el procedimiento y los resultados a la luz de lo esperado (teoría)

Discutir (explicar) las posibilidades de mejorar el método y proponer soluciones a las limitaciones de las técnicas o método empleados.

¿Se ajusta el procedimiento o los pasos del mismo a los objetivos? ¿Por qué?

¿Son los resultados los esperados? ¿Por qué?

¿Son similares o disímiles a los hallazgos de otros investigadores (antecedentes)?

Identificar las dificultades encontradas para la obtención de los resultados/datos.

Identificar las fuentes de error para cada resultado obtenido.

Discutir (explicar) las limitaciones, fuentes de error y cómo afectan al resultado obtenido.

¿Por qué son importantes los hallazgos?

¿De qué manera se pueden vincular los hallazgos con otros fenómenos?

¿Existen aplicaciones justificables con base en esta investigación? Esta sección es una de las partes más importantes del reporte, en donde el alumno o investigador desarrolla toda su capacidad de análisis y plasma cómo sus hallazgos contribuyen al conocimiento del tema abordado o a la solución del problema planteado. Especificaciones generales para la edición del reporte de laboratorio

Tamaño de la hoja y márgenes. Se deberá utilizar hoja tamaño carta. Todos los márgenes (superior, inferior, izquierdo y derecho) deberán ser de 2.5 cm.

Tipo y tamaño de letra. Se deberá usar el tipo de letra Arial. El tamaño de letra a usar en el texto es 11. Salvo el caso del contenido de tablas y figuras que requieran un menor tamaño de letra (el mínimo aceptable es 8).

Espacio interlineal. Se usará un espacio interlineal sencillo. No se usarán espacios antes ni después del renglón.



Alineación del texto. El texto del documento debe presentarse en alineado por ambos márgenes (justificado), sin sangrías.

Paginación. Se deberá paginar el reporte en el extremo inferior derecho de la hoja, con excepción de la portada. Se iniciará la paginación en la hoja del resumen. Todas las partes o secciones del reporte se escribirán en forma consecutiva, dejando un doble espacio entre cada parte. Se debe cuidar la edición para que las tablas y figuras siempre queden con el título o rótulo de las mismas en la misma página.

Extensión del documento. La extensión es libre. El requisito es que la estructura deberá contener todas las partes esenciales de un reporte de laboratorio descritas con anterioridad.

8. Guía para la elaboración de las Conclusiones A pesar de que en los reportes de Biología no se pide incluir conclusiones, a continuación se menciona información relevante sobre su elaboración. En esta sección se resaltan los resultados obtenidos y su consecuencia en el cumplimiento del objetivo. Una forma adecuada de presentar las conclusiones es por medio de párrafos u oraciones independientes separadas por alguna forma de viñeta. El orden de presentación de las conclusiones es primordial para entender el alcance y eficiencia del trabajo realizado.

a. Analizar las implicaciones de la investigación y si ésta respondió a las preguntas planteadas antes de la investigación o si se cumplió con los objetivos del trabajo.

b. Señalar objetivamente los errores observados y las limitantes de las técnicas y método empleado.

c. Proponer alternativas para optimizar el método en función de las limitaciones y errores observados y de la discusión.

d. Hacer recomendaciones para futuras investigaciones. 9. Guía para la elaboración del listado de Referencias / bibliografía Una referencia bibliográfica es un conjunto mínimo de datos que permite la identificación de una publicación o de una parte de la misma. Existen diferentes estilos de citar como convenciones en diferentes áreas del conocimiento o el comercio. Por ejemplo: Estilo ISO690 (se usa en documentos industriales o comerciales), APA (uso en ciencias sociales y del comportamiento), MLA (literatura, artes y humanidades), Turabian (periodismo, historia y humanidades), Vancouver (medicina, farmacología, enfermería, odontología, fisioterapia), etc. Sin embargo, para el reporte de laboratorio de Biología, se empleará el estilo Harvard, que es el que corresponde al de las ciencias naturales y exactas. Dicho estilo, también se le conoce como el estilo “autor-año” o “autor-fecha”, en referencia a la manera en que se menciona la cita en el texto, dentro del cuerpo del documento. Es decir, después de escribir una idea en el texto, se cita al autor o autores y el año, para identificarlo en la lista de literatura. Ejemplo: Las hembras



adultas de lobo marino de California presentan un color café más claro que los machos (King, 1983) o (King 1983), o King (1983) menciona que las hembras adultas... Mientras que en la referencia, al final del documento se debe incluir la cita: King, J.E. 1983. Seals of the world. 2a edición. Oxford University Press. Ithaca, Nueva

York, E.U.A. 239 pp. King, JE (1983) Seals of the world. 2a edición. Oxford University Press. Ithaca, Nueva

York, E.U.A. 239 pp. Como se observa en el ejemplo, puede cambiar el formato pero no el orden de los elementos [apellido, iniciales del nombre, año, título del libro, edición (sólo de la segunda en adelante se menciona), editorial, ciudad, estado, país (también se puede incluir sólo el país, o sólo estado y país), finalmente páginas totales]. En la lista de referencias, se presentan las citas en orden alfabético y se le da formato “francesa” para ubicar fácilmente el apellido del autor; como se presenta en el ejemplo anterior. Las diferentes revistas científicas pueden utilizar variantes al estilo Harvard, sin embargo el orden de los componentes no cambia y éste se presenta a continuación. Libros: Apellidos, A. y Apellidos, B. (Año). Título de la obra. Edición. Casa Editorial. Lugar de Edición (ciudad y país). Páginas. 1. Nombre del (los) autor/es, 2. Año de la publicación, 3. Título de la publicación y subtítulo, 4. Edición (sólo de la segunda edición en adelante), 5. Editorial (nombre de la compañía donde se imprime), 6. Lugar de la publicación, (ciudad y/o, estado y/o país), 7. Número (s) de página (s) totales. Ejemplo: Berkman, R. I. 1994. Find It fast: How to uncover expert information on any subject. 2th

edition. Harper Perennial, New York, USA. 65 pp. Publicaciones Periódicas (artículo científico): Apellidos, A. A., Apellidos, B. B. y Apellidos, C. C. (Fecha). Título del artículo. Título de la revista, volumen (número), pp. inicial-final. doi: xx.xxxxxxx. 1. Nombre del (los) autor/es, 2. Año de la publicación, 3. Título del artículo, 4. Título la revista periódica, 5. Volumen, 6. Número del volumen (no siempre existe), 7. Número de páginas (de tal-a tal). Ejemplo: Huffman LM (1996) Processing whey protein for use as a food ingredient. Food

Technology. 50(2): 49-50.



Versión electrónica: Autor, editorial o nombre de la página. (Año o fecha) Titulo. Recuperado de http://www.etc.etc/estaes/aquiesta. Ejemplo: ASTEC (1994). The Networked Nation, Disponible en: http://astec.gov.au/astec/net_nation/contents.html EDICIÓN FINAL. Lea su reporte, con calma y objetivamente.

i. ¿Contiene todas las partes esenciales de un reporte de laboratorio? ii. ¿Entiende lo que escribió? iii. ¿Es lo que quiere comunicar? iv. ¿Las ideas están expresadas en forma clara y concreta? v. ¿Usó oraciones completas bien estructuradas? vi. ¿Los párrafos están construidos con base en una idea principal, luego ideas

secundarias que describen, abundan, explican o se vinculan con la principal? vii. Revise la ortografía viii. ¿Cumple con lo anterior? Sí es así, el documento está listo para impresión y

entrega. Recuerde que la elaboración de un reporte de laboratorio es una competencia profesional que implica el desarrollo de la habilidad de redacción para la comunicación efectiva de resultados, esto se logra mediante la práctica constante, la autoevaluación y la retroalimentación. Por último, cabe mencionar que existen diversos tipos de reportes para la comunicación de resultados, a continuación se presenta la estructura generalizada de los más comunes utilizados en las ciencias.

Elemento Reporte de

investigación

Reporte de laboratorio

o de campo

Reporte Técnico

Reporte técnico sencillo

Portada

Resumen

Introducción / marco teórico

Método / esquema de trabajo Síntesis Esquemático

Área de estudio Opcional Opcional

Resultados (descripción y Análisis)

Discusión

Conclusiones

Referencias / bibliografía Opcional

Agradecimientos

Anexos / apéndices Opcional Opcional Opcional

Anexos. Los anexos deberán colocarse al final del documento después de las referencias. Se recomienda usar caracteres alfabéticos para distinguirlos, por ejemplo: Anexo A, Anexo B, etc. Se recomienda colocar en los anexos información que, aunque importante, no es indispensable para la comprensión de lo reportado. Por ejemplo:

http://www.etc.etc/estaes/aquiesta



demostraciones y desarrollos matemáticos, registros biométricos, etc. Los anexos o apéndices resultan útiles como material de apoyo, para describir en mayor detalle ciertos aspectos, sin distraer la lectura del texto principal.

1.3.2 Competencia

El alumno será competente para elaborar un Reporte de laboratorio, completo en forma y contenido.

1.3.3 Material

1.3.3.1. Material en el laboratorio Manual de prácticas de Laboratorio de Biología

Revista de Ciencias Marinas de la Universidad Autónoma de Baja California.

Libros

1.3.4 Desarrollo

Actividad 1 (entregar las siguientes actividades al final de la primera sesión):

1. Consulte la revista de Ciencias Marinas, seleccione un artículo e identifique los elementos constitutivos del mismo, contrástelos con la estructura de un reporte de laboratorio, elabore una lista con las diferencias identificadas.

2. En el mismo artículo identifique la forma en que se citan a los autores en el texto.

Brinde tres ejemplos, el primero en el que se cite a un autor, otro en donde se citen a dos autores y el tercero en donde se citen a más de dos autores.

3. A partir del mismo artículo científico, seleccione algún resultado (texto, tabla o

figura) y su parte correspondiente en la discusión. Transcríbalo al documento que entregará al final de la sesión.

Actividad 2 (entregar las siguientes actividades al final de la segunda sesión):

1. Escoja un artículo científico y redacte su cita bibliográfica. Cada estudiante pasará al pizarrón a transcribir la cita y el resto del grupo deberá revisarla.

2. Escoja algún libro y redacte su cita bibliográfica. Cada estudiante pasará al pizarrón a transcribir la cita y el resto del grupo deberá revisarla.

1.3.5 Método de evaluación

Entregar las cinco actividades realizadas durante las sesiones de manera individual, cada una de ellas tiene un valor de 5 puntos (total máximo 25 puntos).



1.3.6 Bibliografía Dirección General de Normas. 2002. Norma Oficial Mexicana NOM-008-SCFI-2002,

Sistema General de Unidades de Medida. Publicada en el Diario Oficial de la Federación el 27 de noviembre de 2002. Recuperado de http://dof.gob.mx/nota_detalle.php?codigo=718870&fecha=27/11/2002

Figueroa N (2010). Manual de estilo de publicaciones American Psychological

Association. pp. 63. Recuperado de https://drive.google.com/file/d/1DQXKiqs09je7vt8sUwTPRWpvIpRWNHfh/edit

Hernández-Sampieri, R, C Fernández-Collado y MP Baptista-Lucio (2016).

Metodología de la Investigación. 5a edición. Editorial Mc Graw Hill. Sojo-Monzón, VE (2003). Algunas pautas para presentar informes de investigación

indicadas por la American Psychological Association (APA). Universidad Central de Venezuela. Caracas. Recuperado de https://psicologiaexperimental.files.wordpress.com/2009/03/pautas-para-presentar-informes-por-la-apa.pdf


https://drive.google.com/file/d/1DQXKiqs09je7vt8sUwTPRWpvIpRWNHfh/edit

https://psicologiaexperimental.files.wordpress.com/2009/03/pautas-para-presentar-informes-por-la-apa.pdf

https://psicologiaexperimental.files.wordpress.com/2009/03/pautas-para-presentar-informes-por-la-apa.pdf



2. La Célula como Unidad Básica de la Vida

2.1 Práctica No. 3

Uso del Microscopio Estereoscópico (Lupa)

2.1.1. Introducción El microscopio estereoscópico o lupa, es ampliamente utilizado para la observación de especímenes cómo la macro fauna y mega fauna. Se le conoce como estereoscópico porque las lentes de los oculares se encuentran separadas con y con un ligero ángulo, lo cual permite que la imagen que llega a cada ojo sea ligeramente distinta, por lo que se obtiene una imagen tridimensional. Además de su uso en Biología, es una herramienta ampliamente utilizada en otras disciplinas como la geología para la observación de rocas, grava, diferentes sedimentos y minerales. En cualquier caso, es un equipo utilizado para amplificar y resolver detalles finos de objetos relativamente grandes. Está compuesto por tres sistemas: mecánico, óptico y de iluminación. Sistema mecánico Consta de las siguientes partes: 1. Base o pie: Sirve de soporte al microscopio y suele tener el peso suficiente para darle estabilidad al aparato. 2. Brazo: Continuación de la base o pie y permite movilizar al microscopio sosteniéndolo con las manos. 3. Platina: Sostiene las muestras directamente o recipientes que contengan las muestras. Esta estructura puede ser blanca, negra o translúcida para permitir el paso de luz proveniente de la base de la platina. 4. Pinzas: Sostienen al espécimen o al contenedor sobre la platina. No todos los modelos de microscopio estereoscópico tienen pinzas. 5. Cabezal: Es la base de los oculares y contiene los lentes de aumento y en su parte inferior puede sostener una fuente de luz incidente.



6. Anillo de enfoque o macrométrico: Mueve el cabezal hacia arriba o hacia abajo, acercando o alejando rápidamente el objetivo a la distancia focal correcta con respecto a la muestra. 7. Anillo de aumento: permite modificar la óptica para incrementar o disminuir el número de aumentos. Sistema óptico Consta de las siguientes partes: 1. Oculares: Están ubicados en la parte superior del cabezal sin ningún aumento en la mayoría de los modelos, por lo que el aumento dependerá exclusivamente del objetivo. 2. Objetivo: Compuesto por lentes de diferente aumento. Se encuentran ubicados en la parte inferior del cabezal, no son movibles ni intercambiables y su aumento depende de las características particulares del microscopio. El aumento de un microscopio estereoscópico o lupa va de 4X a 40 ó 60X. Sistema de iluminación Fuente de luz: puede utilizarse luz artificial de una lámpara externa (fibra óptica, luz incidente) o una que se inserta en la base o pie del microscopio, algunos microscopios poseen una fuente incidente en la base del cabezal o en el brazo. Poder de resolución El poder de resolución se define como la capacidad de un lente para presentar dos puntos cercanos como puntos diferentes y separados. Cuidados del microscopio estereoscópico

Lentes: es importante que las lentes y el espejo (si lo tiene) se mantengan limpios. Para limpiarlos se utilizan papeles y soluciones de limpieza especiales para evitar el daño de las lentes. Se prohíbe el uso de pañuelos, servilletas o cualquier otro tipo de material para limpiar las lentes aunque éstos estén limpios, ya que pueden rallar las lentes.

Objetivos: usualmente se ensucian con las muestras observadas. Para limpiarlos se utiliza el papel especial mencionado anteriormente y solventes orgánicos como el xilol. Es importante evitar exceso de solvente ya que puede dañar el pegamento que mantiene unida la lente a la base del objetivo.

Oculares: si al rotar (girar) los oculares mientras observamos hay una imagen que rota al mismo tiempo, significa que el ocular está sucio. Se debe limpiar con papel especial para lentes.

Almacenamiento: antes de guardarlo, asegurarse de remover las muestras de la platina; desconectar, tapar con la funda correspondiente, transportar el equipo al gabinete que corresponda tomándolo con la mano derecha del brazo y la mano izquierda en la base.

Cuando se utilice el equipo, evite usar maquillaje en los ojos, ya que se puede acumular en los oculares y dañar la lente.



Uso del microscopio en el laboratorio Para el buen uso del microscopio en el laboratorio de biología se deben tener en cuenta los siguientes aspectos:

1. Los microscopios están numerados y se guardan en gabinetes. 2. A cada estudiante del grupo se le asigna un microscopio por el cual será

responsable. Es obligatorio que llena la bitácora del microscopio asignado. 3. La mesa donde se colocará el microscopio para hacer la observación debe ser

estable para evitar vibraciones de la muestra durante el examen. 4. La posición del observador ante el microscopio debe ser cómoda y a una altura

correcta. 5. La mesa de trabajo debe estar limpia y libre de libros, cuadernos, bandejas y

reactivos. 6. Cuando se transfiera el microscopio del gabinete a la mesa de trabajo, se

sostiene fuertemente el brazo del microscopio con la mano derecha y se coloca la mano izquierda por debajo del instrumento. Si no se realiza de esta manera, las probabilidades de golpear contra el mesón o dejarlo caer se elevan. Nunca se debe tomar el microscopio con una sola mano y menos aún, dos microscopios (uno en cada mano).

7. Nunca se deben de enrollar los cables de la fuente luminosa alrededor del microscopio.

8. Una vez finalizada la observación, se limpian las lentes, la platina y se guarda siguiendo las mismas instrucciones dadas para el transporte.

2.1.2 Competencia

El alumno será capaz de reconocer las partes de un microscopio estereoscópico, la función que éstas desempeñan y utilizar correctamente el equipo.

2.1.3 Material y equipo

2.1.3.1. Material a solicitar en el almacén general Caja de Petri

Pinzas de disección

Aguja de disección

2.1.3.2. Material en el laboratorio Microscopio estereoscópico

Papel para limpiar lentes del microscopio

2.1.3.3. Además ¿Qué debe llevar al laboratorio? Muestras para observar en el microscopio estereoscópico tales como: arena, pequeños insectos, granos de polen, etc.



2.1.4 Desarrollo

1. Completar la información de la Tabla 1.

2. Colocar los nombres de las partes del microscopio estereoscópico en la Figura

1.

3. Observe y dibuje al menos dos objetos (rocas, arena, tierra, etc.) u organismos (plantas, animales, etc.), utilizando tres aumentos distintos (aumento más bajo, aumento intermedio, aumento más alto) para cada objeto observado. Para dibujar sus observaciones, puede utilizar los círculos que se proporcionan como ejemplo del campo visual (total 6 círculos) e incluya la información que se solicita. Para ello, puede seguir los siguientes pasos:

a. Colocar sobre la platina o sobre una caja de Petri la muestra a observar. b. Situar la parte que va a examinar en el centro de la platina. c. Ajustar la fuente de iluminación sobre la porción a observar de la muestra. d. Ajustar la fuente de iluminación sobre la porción a observar de la muestra. e. Si el tornillo de enfoque no da la nitidez requerida se tendrá que modificar

la distancia del cabezal a la muestra mediante el ajuste del cabezal en el brazo.

f. Cambiar de aumentos hasta obtener la visión requerida, si es necesario se deberán hacer más ajustes como en el punto e.

Tabla 1. Señale a qué sistema (óptico o mecánico) pertenece cada una de las partes que se mencionan en los renglones y su función.

Sistema óptico

Sistema mecánico

Función

Platina

Pie

Oculares

Anillo de enfoque

Anillo de aumento



Figura 1. Microscopio estereocópico marca Zeiss, model Steami DV4, en donde se deben señalar: 1) Base, 2) Platina, 3) Brazo o soporte, 4) Anillo de enfoque o macrométrico, 5) Botón de encendido, 6) Botón de control de luz, 7) Fuente de luz (ambas), 8) Objetivo, 9) Anillo de aumento, 10) Cabezal, 11) Oculares.

2.1.5 Método de Evaluación

1. Entregar un reporte de laboratorio de manera individual (a mano, impreso con

computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (15 puntos de la Tabla 1, +11 de la Figura 1, +2x6 de los dibujos), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 58 puntos. El autor o autora debe de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

2. En los resultados se debe incluir la Tabla 1, Figura 1 y las observaciones al

microscopio (6 círculos).



Observación 1 Observación 2

Tipo de muestra ___________________ Tipo de muestra ___________________

________________________________ ________________________________

Aumento utilizado_________________ Aumento utilizado_________________

2.1.6 Bibliografía

Benson, Harold., 1979. Microbiological Applications. A laboratory manual in general

microbiology. 3era ed. Wm. C. Brown Company Publishers. Dubuque, Iowa. Campbell, N.A., Reece, J.B., Taylor, M.R., Simon, E.J., 2006. Biology. Concepts and

connections. 5th ed. Pearson/ Benjamin Cummings. San Francisco. 783pp. Tortora G.J., Funke, B.R., Case, C.L., 2001. Microbiology. An Introduction. 7th ed. The

Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc.



2.2 Práctica No. 4

Uso del Microscopio Compuesto

2.2.1 Introducción Una de las herramientas básicas de un laboratorio de Biología es un microscopio de luz, óptico o compuesto. Este tipo de microscopio recibe este nombre ya que permite el paso de luz no alterada a través de un sistema de lentes de manera que produce un campo brillante en el que se pueden observar objetos y/o organismos microscópicos como bacterias, hongos, algas, parásitos, etc. El microscopio óptico compuesto está constituido por un sistema mecánico, óptico y de iluminación: Sistema mecánico 1. Base o pie: Brinda soporte al microscopio. Tiene el peso suficiente para darle estabilidad al aparato. 2. Brazo o estativo: Continuación de la base o pie que permite movilizar al microscopio con la mano. 3. Platina: Pieza que sostiene las preparaciones con la muestra a observar. Cuenta con pinzas para mantenerla firme sobre la platina. La preparación se mantiene sobre una perforación central que deja pasar la luz que viene del condensador o del espejo. 4. Pinzas: Sostienen al espécimen o al contenedor sobre la platina. 5. Columna: Une la platina a la base y sostiene al condensador y al diafragma. Sostienen al espécimen o al contenedor sobre la platina.



6. Tubo o cabezal: Sostiene al ocular y al objetivo, y los mantiene separados por la distancia de trabajo correcta. Sistema óptico 1. Oculares: compuestos por lentes que multiplican el aumento del objetivo. Están ubicados en la parte superior del tubo o cabezal. El aumento que presentan varía en función del modelo. Sin embargo, un buen ocular tiene un aumento de 10X, que se multiplica por el aumento del objetivo en uso. Ejemplo: 10 x 100 = 1000X. 2. Objetivos: Pieza compuesta por una lente de aumento específico cuyo propósito es magnificar el objeto para producir una imagen real que se proyecta hasta el plano focal del ocular. Cada microscopio cuenta con varios objetivos de distinto aumento (4X ó 5X, 10X, 20X, 40X, 100X) que se insertan en una pieza denominada revólver, misma que se ubica en la parte inferior del tubo o cabezal. Para calcular el aumento total de observación proporcionado por el microscopio, basta multiplicar el aumento del ocular por el aumento del objetivo. Por ejemplo, si estamos utilizando un ocular de 10X y un objetivo de 40X, el aumento total de la observación será: 10X × 40X = 400X. Esto significa que la imagen de la muestra observada ha sido ampliada 400 veces. Sistema de iluminación 1. Fuente de luz: Es la lámpara (externa o incorporada al estativo) que proporciona la iluminación para observar la muestra. Algunos microscopios emplean también lámparas de fluorescencia para aplicaciones específicas en patología, biología celular, entre otras. 2. Espejo: Lo requieren aquellos microscopios que trabajan con lámparas externas y permite reflejar hacia arriba la luz que debe atravesar el diafragma, la platina, la preparación y el sistema óptico. El espejo plano se utiliza cuando hay bastante luz y el cóncavo cuando hay poca luz. 3. Condensador: Concentra el haz luminoso en la preparación. 4. Diafragma: Regula la cantidad de luz que pasará a través de la preparación.

2.2.2 Competencia El alumno aprende cómo está conformado el microscopio óptico compuesto, aplicaciones y el uso del mismo, empleando diversas muestras.


2.2.3.1 Material a solicitar en el almacén general

Portaobjetos

Cubreobjetos




2.2.3.2 Material en el laboratorio Preparaciones permanentes y semipermanentes

2.2.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio? Muestra del material que le solicite el instructor

2.2.4 Desarrollo

1. Colocar los nombres de las partes del microscopio compuesto en la Figura 1.

2. Antes de comenzar la observación de las preparaciones, realice el ajuste de iluminación Köeller (ver procedimiento en Anexo 1). El objetivo de ello es asegurarse que la luz está centrada para así, garantizar una observación correcta. Una vez hecho el ajuste de iluminación Köeller, no debe moverlo nuevamente. NOTA: Se recomiendo realizar este ajuste, sólo en caso de que la no sea nítida.

3. Observe y dibuje al menos dos preparaciones, utilizando dos aumentos distintos (aumento más bajo y aumento máximo posible) para cada preparación. Para dibujar sus observaciones, puede utilizar los círculos que se proporcionan como ejemplo del campo visual (total 4 círculos) e incluya la información que se solicita. Para observar las preparaciones permanentes y semipermanentes realice los siguientes pasos:

a. Colocar la preparación sobre la platina. La porción a observar debe

quedar sobre el hueco que hay en la parte central de la platina, ya que es por donde pasará la luz para iluminar la muestra. La muestra debe quedar sujetada con las pinzas para que funcionen los tornillo x/y.

b. Ajustar la fuente de iluminación hasta que pase la mayor cantidad de luz a través de la muestra. El diafragma y el condensador, se deben ajustar hasta que la luz cubra todo el campo visual.

c. Inicie la observación con el objetivo de menor aumento (4X ó 5X, 10X) según el equipo que esté utilizando.

d. En todo momento, observe por los oculares con ambos ojos abiertos. Utilice el tornillo macrométrico para aproximar lentamente el objetivo a la preparación con cuidado de no quebrarla ni rallar la lente.



e. Para enfocar totalmente la muestra, utilice el tornillo micrométrico. Ajuste la luz con el diafragma y el condensador hasta lograr una buena iluminación. No demasiado brillante ni demasiado oscuro.

4. Una vez realizadas las observaciones:

a. Anotar y esquematizar lo observado

b. Cuando haya terminado, guarde el microscopio

c. No olvide llenar la bitácora del microscopio

d. Reportar con el instructor cualquier anomalía con el equipo.

Figura 1. Microscopio compuesto marca Zeiss, model Axiostar, en donde se deben señalar: 1) Base, 2) Foco, 3) Anillo regulador de la luz, 3) Brazo o soporte, 4) Botón de encendido, 5) Botón de control de luz, 6) Anillo macrométrico, 7) Anillo micrométrico, 8) Condensador, 9) Diafragma, 10) Platina, 11) Pinzas, 12) Anillos de ajuste de platina (movimiento x-y), 13) Objetivos, 14) Revolver, 15) Cabezal o tubo, 16) Oculares.





________________________________ ________________________________

Aumento del ocular_________________ Aumento del ocular________________

Aumento del objetivo______________ Aumento del objetivo______________

Aumento total_________________ Aumento total___________________

2.2.5 Método de Evaluación

1. Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (16 puntos de la Figura 1, +2x4 de los dibujos), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 44 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

2. En los resultados se debe incluir la Figura 1 y las observaciones al microscopio

(4 círculos).

2.2.6 Bibliografía Benson, H. 1979. Microbiological Applications. A Laboratory Manual in General

Microbiology. Third edition. Wm. C. Brown Company Publishers. Dubuque, lowa Brock Th.; Brock K. 1973. Basic Microbiology with Applications. Prentice-Hall, Inc. New Jersey.



Clavell, L., Pedrique de Aulacio, M. 1992. Microbiología. Manual de Métodos Generales (segunda edición). Facultad de Farmacia. Universidad Central de Venezuela.

Seely. H., Van Demark, P. 1962. Microbios en acción. Manual de Laboratorio para

Microbiología. Editorial Blume. Madrid-España. ANEXO 1 Ajuste de iluminación Köhler

1. Colocar una preparación en la platina en el objetivo de menor aumento (4x o

10x) de que disponga en su microscopio y enfocar.

2. Cerrar el diafragma de campo. Este es el diafragma ubicado en la base del microscopio, sobre la fuente de iluminación.

3. Con mucho cuidado y lentamente, subir y bajar el condensador usando la perilla del mismo hasta que observe un hexágono con un halo entre rojo y azul.

4. Observe la ubicación del hexágono; éste debe estar en el centro. Si el hexágono no está centrado, significa que la luz tampoco lo estará. Por lo tanto, utilice los tornillos insertados en el condensador para centrar la luz (el hexágono).

5. Cuando observe el hexágono en el centro, abra el diafragma de campo. Si la luz ha sido centrada correctamente, debe observar que todos los lados del hexágono desaparecen al mismo tiempo. De lo contrario, debe repetir el paso 4 hasta centrar la luz.

6. Ajustar la cantidad de luz que llega a la muestra con el diafragma del condensador.



2.3 Práctica No. 5

Tipos de células: Procariotas y eucariotas

2.3.1 Introducción Todos los seres vivos pueden clasificarse en dos categorías en función de su estructura celular: 1) procariotas y 2) eucariotas. Las células procariotas tienen una estructura relativamente sencilla y carecen de un núcleo envuelto en una membrana. Desde el punto de vista evolutivo, las células procariotas son representadas por dos grupos: bacterias y arqueas. En ambos casos, son microorganismos relativamente pequeños. Las arqueas, son bacterias que habitan ambientes extremos tales como las ventilas hidrotermales. Por su parte, las bacterias se pueden encontrar en el suelo, el agua, inclusive en el tracto digestivo humano. Aunque muchas especies son inocuas, algunas bacterias pueden causar enfermedades. La estructura general de una célula bacteriana se comprende de una membrana plasmática, que representa una barrera entre el ambiente celular interno y externo. En el citoplasma celular se encuentra el nucleoide, región de la célula donde se encuentra su material genético (ADN); y los ribosomas. Por otra parte, en el grupo de las células eucariotas (con núcleo verdadero) se incluye a protistas, hongos, plantas y animales. En todas las células eucariotas, el ADN se encuentra en el núcleo celular. Una característica de las células eucariotas es la presencia de distintos organelos que separan a la célula en diferentes regiones, cada una con funciones específicas (Brooker et al., 2008).



2.3.2 Competencia El alumno comprende la diferencia entre tipos celulares mediante observación directa de las mismas y aprende cuáles de ellas conforman a los distintos seres vivos.



Portaobjetos

Cubreobjetos

Bisturí


Cajas Petri

Lugol

H2O destilada

2.3.3.2 Material en el laboratorio

Microscopio compuesto

Preparaciones semipermanentes de células procariotas

Preparaciones permanentes de células eucariotas (animal y vegetal)

2.3.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio?

Cebolla (preferentemente morada)

Tomate

Sábila (cualquier agave o suculenta)

2.3.4 Desarrollo

1. La observación de células procariotas se realizará en preparaciones semipermanentes proporcionadas por el instructor. Como representante de células eucariotas de origen animal, se observarán preparaciones permanentes de hemocitos de la almeja generosa, Panopea globosa, previamente teñida con el colorante Giemsa el cual, tiñe los núcleos celulares de azul intenso mientras que el citoplasma permanece incoloro o bien, algunas veces se observa de color azul tenue. La observación de las células se realizará, al menos, con los objetivos 10x y 40x. Consulte con el instructor la posibilidad de observar las muestras con el objetivo 100x (no olvide utilizar el aceite de inmersión). También se pueden utilizar laminillas comerciales.



2. Para observar las células eucariotas vegetales siga los pasos que se mencionan a continuación (en el orden establecido).

CÉLULAS VEGETALES Cebolla (Fig. 1A)

i. Extraiga una capa fina de entre las capas gruesas de una cebolla y colóquela en un portaobjetos

ii. Agregue lugol iii. Coloque un cubreobjetos iv. Obsérvela al microscopio

Tomate (Fig. 1B)

i. Corte una capa fina de la cáscara de un jitomate ii. Colóquela en un portaobjetos y si es necesario (ya que el tomate de manera

natural contiene mucha agua) añada una gota de H2O destilada iii. Coloque un cubreobjetos iv. Obsérvela al microscopio

Figura 1. Células vegetales: A, célula de cebolla. B, célula de tomate.

3. Observe y dibuje al menos dos muestras de procariotas, dos de eucariota vegetal y dos de eucariota animal. Para dibujar sus observaciones, puede utilizar los círculos que se proporcionan como ejemplo del campo visual (total 6 círculos) e incluya la información que se solicita.

A B





________________________________ ________________________________

Aumento del ocular_________________ Aumento del ocular________________

Aumento del objetivo______________ Aumento del objetivo______________

Aumento total_________________ Aumento total___________________

2.3.5 Método de Evaluación 1. Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (4 puntos x 6 dibujos), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 44 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias. 2. Las observaciones al microscopio (dibujos de los 6 círculos). Es importante que en los esquemas señale las estructuras celulares que pudo observar: núcleo, membrana celular, pared celular, citoplasma, etc. 3. Las preguntas que se mencionan a continuación, se pueden utilizar de guía para redactar la discusión: ¿Cuáles son las estructuras que pudo observar en las células?, ¿En qué tipo de células?, ¿Por qué cree que pudo ver sólo éstas estructuras?, ¿Pudo observar estructuras diferentes en células procariotas y eucariotas?, ¿Observó diferencias entre las células eucariotas de origen animal y vegetal?



2.3.6 Bibliografía Brooker, R.J., Widmaier, E.P., Graham, L.E., Stiling, P.D., 2008. Biology. McGraw-Hill.

Nueva York.1300pp. Campbell, N.A., Reece, J.B., Taylor, M.R., Simon, E.J., 2006. Biology. Concepts and

connections. 5th ed. Pearson/ Benjamin Cummings. San Francisco. 783pp.


45

3. Genética

3.1 Práctica No. 6. Mitosis

3.1.1 Introducción

En la sesión se busca llevar a cabo el reconocimiento de los distintos estadios de la mitosis: Profase (en la imagen corresponde a la Prometafase temprana), Prometafase (en la imagen corresponde a la Prometafase tardía), Metafase, Anafase y Telofase.

3.1.2 Competencia

Demostrar que la mitosis está presente en los tejidos que están en crecimiento mediante la utilización de preparaciones microscópicas de células de plantas para que identifique las distintas fases de la mitosis con actitud analítica y responsable.



1 vaso de precipitado de 100 ml

1 estuche de disección

5 portaobjetos

5 cubreobjetos

Papel secante

Piceta con agua destilada

Aceite de inmersión

Colorante acetocarmin u orceína acética


Microscopio compuesto

3.1.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio?


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Cebollas con raíces frescas (poner sus cebollas a enraizar por lo menos 10 días antes de la sesión), para ello debe colocar sus cebollas en agua como se muestra en la Figura 1. Figura 1. Forma en que se debe de colocar una cebolla en agua para permitir el crecimiento de raíces.

3.1.4 Desarrollo

1. Inducir el desarrollo de raíces en cebollas por lo menos dos semanas antes de la sesión, escoja una cebolla fresca de 5 a 7 cm de diámetro. Retire de sus cebollas las raíces y fibras secas de la base de su bulbo, para obtener tejidos apicales sanos. Inserte 3 palillos de forma que la cebolla se pueda suspender en un vaso o recipiente con agua, de tal manera que las raíces toquen continuamente el agua (Figura 1).

2. Procedimiento para la tinción:

a. Elija de la cebolla una o varias raíces completas. La región de mayor interés es la punta o zona apical (zona de crecimiento).

b. Con el bisturí o con la hoja de afeitar de un solo filo, corte la mitad inferior de la punta de una raíz. Póngala en un vaso pequeño y cúbrala con colorante orceina acética, durante 3 a 5 minutos.

c. Corte la parte más intensamente teñida de la punta de la raíz (aproximadamente 2 mm) y colóquela en un portaobjetos. Cubra la muestra con un cubreobjetos y realice presión de manera homogénea, para convertir el material en una capa delgada (técnica del “squash”). Limpie el exceso de colorante con papel.

3. Observar en el microscopio compuesto para localizar en la preparación a

las células que presentan estructuras teñidas más intensamente. Para las observaciones utilice el objetivo de 40X.


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4. Localice y registre (fotografía del campo visual para después señalar) una célula que se encuentre en: a) interfase; b) profase; c) metafase; d) anafase y e) telofase. Preste especial atención en la forma y disposición de los cromosomas. Considerando que la mayoría de las células que se observen estarán en interfase, se recomienda ser persistente en la búsqueda de los diferentes estadios de la mitosis (Figura 2).

Figura 2. Preparación de células apicales de raíz de cebolla donde se señalan diferentes fases de la mitosis. Cada fase se puede identificar por la ubicación de los cromosomas o nivel de enrollamiento del ADN.

5. Una vez identificadas las distintas fases de la mitosis, puede llevar a cabo la estimación del índice mitótico y el índice de fase. Para ello, deberá realizar un conteo de aproximadamente 100 a 200 células meristemáticas, para obtener los índices:

Índice mitótico = No. de células en mitosis

Total de células meristemáticas

Índice de fase = No. de células de una fase mitótica concreta

Total de células en mitosis


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6. Si existen dificultades para observar distintas fases, se puede emplear una preparación comercial, haciendo los siguientes ajustes:

Índice mitótico = No. de células en mitosis

Total de células en el campo visual

Índice de fase = No. de células de una fase mitótica concreta

Total de células en mitosis

3.1.5 Método de evaluación

1. Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (fotografía del campo visual donde se señale cada una de las fases, 10 puntos, +5 puntos del índice mitótico, +5 puntos del índice de alguna fase, +2 puntos x 5 preguntas), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 50 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

2. Conteste el cuestionario como parte de los resultados.

3.1.6 Cuestionario

1. ¿Por qué en la interfase no se pueden observar los cromosomas? 2. ¿Por qué se utilizaron las células de la punta de las raíces de la cebolla

para realizar esta práctica? 3. ¿Que sucede durante la citocinesis? 4. ¿Qué diferencias existe entre la mitosis de una célula animal y en una

célula vegetal? 5. ¿Qué indica el índice mitótico? y ¿Por qué es importante calcular el

índice mitótico?

3.1.7 Bibliografía Audesirk T., G. Audesirk y E.B. Byers. 2008. Biología: La vida en la Tierra. 8a

edición. Ed. Prentice Hall. México. 1024 pp.


49

Camarena-Rosales F. y C. Ochoa-Morales. 2017. Biología. Manual de prácticas 2017-2. Universidad Autónoma de Baja California. 76 pp.

Lodish H., A. Berk, P. Matsudaira, C.A. Kaiser, M. Krieger, M.P. Scott. S.L.

Zipursky y J. Darnell. 2005. Biología Celular y Molecular. 5ta edición. Ed. Panamericana. Buenos Aires, Argentina. 973 pp.


50

3.2 Práctica No. 7. Meiosis

3.2.1 Introducción La meiosis consiste en dos divisiones nucleares conocidas como meiosis I y meiosis II. Cada una de las divisiones meióticas se dividen en profase, metafase, anafase y telofase. Así que en esta sesión se busca promover el desarrollo de habilidades para el estudio de la meiosis.

El proceso de la meiosis es relativamente fácil observar durante la maduración del polen en plantas con flores. En las flores, el esporofito corresponde a la parte masculina y está formado por los estambres (microsporófilos), que llevan los sacos polínicos (esporangios). En su interior están los microsporocitos o células madres del polen que por meiosis forman cada una de las microsporas o granos de polen. El proceso de formación y maduración de las esporas, se lleva a cabo mediante el proceso de meiosis, en donde a partir de células que típicamente son diploides (2n), se reduce el número de cromosomas a la mitad, quedando la carga haploide (n). El proceso de formación y maduración de las esporas, se lleva a cabo mediante el proceso de meiosis, en donde a partir de células que típicamente son diploides (2n), se reduce el número de cromosomas a la mitad, quedando la carga haploide (n).


51

3.2.2 Competencia Demostrar que la meiosis es un proceso que reduce el número de cromosomas y que se localiza en las estructuras sexuales por medio de la utilización de preparaciones microscópicas de células de anteras de Hibiscus y Allium, para que identifique las fases de la meiosis con actitud analítica.



1 Caja Petri de vidrio

1 Estuche de disección

Portaobjetos y 5 cubreobjetos

Piceta con agua destilada

Papel secante

Aceite de inmersión

Acetocarmin o acetorceína (orceína acética)

3.2.3.2 Material en el laboratorio Microscopio compuesto

3.2.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio? Inflorescencias de obelisco o cebolla que deberán ser aportadas por el alumno.

3.2.4 Desarrollo

1. Para obtener el esporofito se recomienda seleccionar flores inmaduras (en capullo), siguiendo los siguientes pasos:

a. Una vez que identifica las anteras, se cortan con cuidado con una navaja de un solo filo y se depositan los cortes en una caja Petri.

b. Posteriormente, los cortes se cubren con colorante orceina acética, durante 3 a 5 minutos.

c. Con unas pinzas se pasan los granos de polen a un portaobjetos limpio (puede resultar varias muestras) y realice con cuidado la técnica del “squash”, para distribuir uniformemente la muestra, retirando el exceso de colorante con papel.

2. Observe al microscopio compuesto, enfocando a 5X ó 10X y

posteriormente a 40X, revise su muestra y esquematice sus resultados.


52

3. Localice y esquematice una célula que se encuentre en cualquiera de los estadios de la meiosis. Preste especial atención en la forma y disposición de los cromosomas. Considerando que la mayoría de las células que observen estarán en interfase. Se recomienda ser persistentes en la búsqueda de los diferentes estadios de la meiosis. En la Figura 1 encontrará una referencia de cada una de las fases de la meiosis que le permitirán identificarlas en la muestra.

4. Esquematice y coloree lo observado.


3.2.5 Cuestionario

1. ¿Cuál es la importancia de la meiosis I?

2. ¿Cuál es la importancia de la meiosis II?

3. ¿Por qué se dice que la profase I es la más compleja? (descríbalo)

4. ¿Con qué otro nombre se le conoce a la meiosis I?

5. ¿Con qué otro nombre se le conoce a la meiosis II?

Figura 1. Fotografías de las diferentes fases de la meiosis que se pueden usar como referencia para localizarlas en su muestra de trabajo.

Telofase I

4 gametos

Interfase Profase I Interfase Interfase

Prometafase I Metafase I Anafase I

1era división

Profase II Metafase II Anafase II Telofase II


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3.2.5 Método de evaluación Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (dibujo de las diferentes fases de la meiosis que pudo observar en la muestra, 10 puntos, +2 puntos x 5 preguntas), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 40 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

3.2.6 Bibliografía Bedregal-Flores S.K. 2010. Estandarización del método Trad-MCN en

Tradescantia cerinthoides y prueba con biomonitoreo activo en la ciudad de la Paz. Tesis de Licenciatura. Universidad Mayor de San Andrés. 102 pp.

Camarena-Rosales F. y C. Ochoa-Morales. 2017. Biología. Manual de prácticas

2017-2. Universidad Autónoma de Baja California. 76 pp. Kou Y, Y. Chang, X. Li, J. Xiao y S. Wang. 2012. Te rice RAD51C gene is

required for the meiosis of both female and male gametocytes and the DNA repair of somatic cells. J. Experimetal Botany. 63:5323-5335.


54

3.3 Práctica No. 8. Herencia

3.3.1 Introducción En esta sesión se busca mostrar estrategias para la identificación de características o rasgos mendelianos y su aplicación en el estudio de genealogías. Los rasgos mendelianos son aquellos que presentan sólo dos alelos, donde uno es completamente dominante y el otro completamente recesivo. Estos rasgos son fácilmente usados en el estudio de las genealogías porque si está presente en el fenotipo se registra como dominante y si no lo está, como recesivo. Los rasgos puramente mendelianos son una minoría entre todos los rasgos, ya que la mayor parte de los caracteres fenotípicos exhiben dominancia incompleta, codominacia y/o herencia poligénica. Existen diversas estrategias para el estudio de la herencia siguiendo los postulados mendelianos. 1) Una vez identificados los fenotipos, se realizan cruzas controladas por varias generaciones y se cuantifican las proporciones de los fenotipos en la descendencia. 2) Otra estrategia es el estudio de caracteres a lo largo de la historia genealógica de un organismo, lo cual se puede realizar reconstruyendo las proporciones de los fenotipos por generación, con base en los datos disponibles. Por ejemplo, con los fenotipos de los familiares cercanos en una determinada generación, la de los padres y los abuelos. En ambos casos (proporción de fenotipos y genealogías), se aprovechan aquellas características heredables, determinadas por un solo gen con dos alelos, y uno siempre es dominante sobre el otro (herencia mendeliana).

3.3.2 Competencia Comparar la transmisión de las características mendelianas dominantes y recesivas mediante la esquematización de patrones de herencia en árboles genealógicos para probar que existen diferencias específicas entre los patrones de la herencia autosómica dominante y recesiva, con actitud crítica.



Listado de características o rasgos mendelianos en humanos (Tabla 1)

Tablas o cuadro que ilustre los símbolos formales empleados en la construcción de árboles genealógicos (Anexo de la práctica).

3.3.4 Desarrollo

1. Durante la sesión de laboratorio se debe realizar el ejercicio 1 y en casa el 2.


55

2. Se deben escoger 4 caracteres de la Tabla 1, mencionar cuál es el dominante y obtener la proporción del grupo (cada compañera o compañero del laboratorio), mencionar si hay mayor presencia del carácter dominante que del recesivo.

3. Elaborar dos árboles genealógicos (por integrante del equipo) utilizando la nomenclatura que se encuentra en el Anexo de esta práctica. Incluya información de 3 generaciones (usted, hermanos, padres, tíos, abuelos), en donde se contrasten los patrones de herencia de dos rasgos: uno autosómico dominante y el otro autosómico recesivo.


5. Las preguntas que se mencionan a continuación, se pueden utilizar de guía para redactar la discusión: ¿Por qué la mayoría de los rasgos mendelianos revisados entre las compañeras y compañeros del laboratorio, presentan una mayor frecuencia de alelos dominantes?, ¿Cómo se determina la dominancia de un rasgo mendeliano?, ¿Por qué puede estar presente un alelo recesivo en mayor frecuencia dentro de los árboles genealógicos reportados?

Tabla 1. Características fenotípicas mendelianas.

Característica fenotípica Descripción

Cruce de manos

Cruce sus manos y observe ¿cuál brazo está delante, el izquierdo o el derecho? La característica de colocar su brazo izquierdo en la parte superior está controlada por un gen dominante. Si usted coloca el brazo derecho al frente entonces es homocigota recesiva ara ese carácter.

Pico de viuda

El pico distintivo en el centro de la frente está causado por un gen dominante. Mientras una línea de cabellos continúo está controlado por un gen recesivo. Evalúe donde empieza a crecer el cabello.

Enrollamiento de lengua

Trate de doblar los lados de su lengua de manera que casi se toquen. La habilidad para hacer esto está controlada por un gen dominante.


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Continuación Tabla 1. Características fenotípicas mendelianas.


Lóbulo de la oreja

Los lóbulos de la oreja pueden estar separados o fusionados del borde de la mandíbula. Así que lóbulo separado es un carácter dominante, o sí presenta un lóbulo pegado, corresponde a un carácter recesivo.

Hoyuelos en las mejillas

Los hoyuelos que aparecen en las mejillas cuando usted sonríe, están controlados por un gen dominante.

Grosor de labios

Los labios gruesos son dominantes sobre los labios delgados.

Pecas

La presencia de pecas está controlada por un gen dominante.

Uso de las manos

La mayor habilidad en la mano derecha domina sobre la mayor habilidad en la mano izquierda (“zurdo”).

Presencia o ausencia de hoyuelos en el mentón

Este es un rasgo hereditario en los seres humanos, donde el gen dominante es la barbilla partida, mientras que el genotipo recesivo se presenta sin una hendidura en la barbilla.


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Continuación Tabla 1. Características fenotípicas mendelianas.


Sentido de enrollamiento del pelo en la coronilla

El sentido de giro del pelo a nivel de la coronilla está determinado genéticamente. Así, el enrollamiento en el sentido de las agujas del reloj es dominante con respecto al sentido contrario a las agujas del reloj.

Longitud relativa del dedo índice

Se trata de un carácter influido por el sexo, ya que el dedo índice más corto que el anular es dominante en los hombres y recesivo en las mujeres.

Presencia de pelo en las 2das falanges de los dedos

Hay personas que poseen pelos en la articulación media de los dedos (2das falanges) y otras que no lo poseen. La regulación génica del carácter es la siguiente: Presencia de pelo es dominante con respecto a la ausencia de pelo.

3.3.5 Cuestionario

1. ¿Defina gen, fenotipo, genotipo?

2. ¿Qué es un alelo, alelo dominante y alelo recesivo?

3. ¿Defina homocigoto, heterocigoto?

4. ¿Qué es un locus?

5. ¿Describa que es un cromosoma homólogo?

6. ¿A qué se refiere el término genes codominantes?

3.3.6 Método de evaluación Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (Frecuencia alélica de los miembros de laboratorio, de 5 características mendelianas y mencionar si fue mayor el dominante o no, 10 puntos, +3 puntos x 6 preguntas), discusión (4


58

puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 42 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

3.3.7 Bibliografía

Camarena-Rosales F. y C. Ochoa-Morales. 2017. Biología. Manual de prácticas

2017-2. Universidad Autónoma de Baja California. México. 76 pp. Griffiths A.J.F., W.M. Gelbart, J.H. Miller y R.C. Lewontin. 2000. Genética

Moderna. Ed. McGraw-Hill. Madrid, España. 676 pp.

3.3.8 Anexo

Símbolos utilizados para la construcción de un árbol genealógico


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4. Historia Evolutiva de la Diversidad Biológica

4.1 Práctica No. 9. Sistemática

4.1.1 Introducción En la actualidad se conocen más de un millón y medio de especies distintas que incluye todo tipo de organismos como bacterias, hongos, algas, plantas, y animales, entre otros. Sólo entre el grupo de los animales podemos encontrar una gran diversidad, ya sean pequeños y sencillos hasta grandes y complejos. Por la gran diversidad de organismos vivos y extintos, ha sido necesario desarrollar algún sistema de clasificación para facilitar su estudio. Para ello se han establecido criterios que definen de qué manera se deben agrupar a los organismos; es decir, qué similitudes tienen más relevancia al momento de considerar el parentesco o cercanía entre organismos. Así, a lo largo de la historia se ha priorizado la apariencia (formas, tamaños, colores) o similitudes en el desarrollo embrionario o similitudes en su historia evolutiva. La Sistemática es una rama de la Biología encargada de clasificar a los organismos a partir de su historia evolutiva (filogenia). La unidad básica susceptible de ser clasificada es la especie. Para la designación de los nombres de cada especie se utiliza la nomenclatura binomial de Linneo, que es lo que se conoce comúnmente como nombre científico. Es importante no confundir la Sistemática con la Taxonomía, aunque están muy relacionadas. Taxonomía significa literalmente "ordenamiento de los nombres", se encarga de proponer, regular y vigilar cuestiones de nomenclatura. Es decir, propone normas y reglas para nombrar cada especie y su rango taxonómico. La Sistemática surgió por el conocimiento que generó la Teoría Evolutiva, pues emplea los nombres que origina la Taxonomía y los coloca en un sistema de clasificación evolutivo. Por ello, algunos autores consideran que la Taxonomía ha pasado a ser una subdisciplina de la Sistemática. El nombrar y clasificar especies tiene repercusiones directas sobre su conocimiento y en consecuencia en su manejo y conservación. Parte importantemente relacionada con la Taxonomía y Sistemática es la generación de claves dicotómicas o guías de identificación que permitan reconocer adecuadamente una especie.

4.1.2 Competencia Comprender la utilidad de la Sistemática de los organismos para su estudio por medio del manejo de claves de identificación y la clasificación de organismos con actitud creativa y analítica.


60



especímenes para identificar (se sugiere algún bivalvo y un tiburón)

Guías o claves de identificación (se sugiere la guía FAO)

4.1.4 Desarrollo

1. Exposición por parte de la profesora o profesor sobre el uso de claves de identificación.

2. Identificar a nivel de especie un bivalvo utilizando la guía FAO. 3. Identificar a nivel de especie un tiburón utilizando la guía FAO. 4. Con base en los dibujos de los organismos proporcionados en el Anexo,

agrúpalos bajo 3 criterios diferentes: a. Hacer un listado de nombres en dos columnas, en una colocar a

los vertebrados y en otra a los invertebrados. b. Hacer un listado de nombres para agrupar a los organismos que

pertenezcan al Subphylum Vertebrata, en donde cada columna contenga una clase diferente (peces / anfibios / reptiles / aves / mamíferos).

c. Hacer un listado de nombres para agrupar o subdividir a los peces en dos columnas, una para peces con esqueleto óseo (Clase Osteichthyes) y otra para peces con esqueleto de cartílago (Clase Chondrichthyes) (peces cartilaginosos).

5. Contestar el cuestionario como parte de los resultados.

4.1.5 Cuestionario

1. ¿Qué se conoce como clasificación Fenética?

2. ¿Qué se conoce como clasificación Cladística?

3. ¿Por qué es importante considerar la filogenia de los organismos en su clasificación?

4. ¿Cuáles son las características diagnósticas (comunes a todo el grupo de organismo dado o lo que los caracteriza) de los vertebrados, invertebrados y peces?

4.1.6 Método de Evaluación Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (nombre científico y


61

común del bivalvo y el tiburón identificados, 8 puntos, +10 puntos x listado de clasificación a., +5 puntos de listado de clasificación b., +5 puntos de listado de clasificación c., +3 puntos por 4 prenguntas), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 60 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

4.1.7 Bibliografía

Fischer, W., F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter y V.H. Niem (eds.). 1995. Guía FAO para la identificación de especies para los fines de la pesca. Pacífico Centro Oriental. Volumen I, II y III. Departamento de Pesca de la FAO y el Instituto de Investigación Senckenberg. Organización de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentación. Roma, Italia. 1813 pp.

Karp, Gerald. 2005, Biología: conceptos y experimentos. McGraw-Hill

Interamericana, México. 746 p. Reece, J.B., Urry, L.A., Cain, M.L., Wasserman S.A., Minorsky, P.V. y Jackson,

R.B. 2013 Campbell Biology. 10a. edición. Benjamin Cummings, Menlo Park.

Reece, J.B., Taylor, M.R., Simon, E.J. y Dickey, J.L. 2011 Campbell Biology:

Concepts and Connections. 7a. Edición, Menlo Park.


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4.1.8 Anexo


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65

5. Ecología

5.1 Práctica No. 10. Anatomía de un Vertebrado

5.1.1 Introducción Esta es la primera de dos disecciones que se realizarán en este laboratorio. Se iniciará con un representante del Subphylum Vertebrata (Phylum Chordata, Reino Animal, y Dominio Eucaria). Esta categoría taxonómica (Subphylum Vertebrata) se refiere a que entre sus características se incluye la presencia de vértebras. En este caso utilizaremos alguna especie de pez óseo, es decir, su cuerpo tiene un esqueleto formado por fosfato y carbonato de calcio

(Ca₃(PO₄)₂, CaCO₃); contrario al esqueleto de cartílago de los tiburones, mantas, rayas y quimeras. Los peces como todos los organismos presentan formas y estructuras que les permiten desarrollarse con éxito en un ambiente en particular. Por ello, se identificarán estructuras de su anatomía externa relacionadas con su capacidad de desplazamiento, protección y sentidos. Además, se identificarán estructuras de su anatomía interna u órganos que forman parte de diferentes aparatos o sistemas, como el digestivo, respiratorio, circulatorio, excretor y reproductivo. Esta primera disección permitirá entender la organización general de la anatomía de un vertebrado; es decir, se podrán reconocer las similitudes con otros vertebrados como los mamíferos.

5.1.2 Competencia Conocer e identificar estructuras de la anatomía interna y externa de un pez óseo utilizando las habilidades del pensamiento lógico para entender sus adaptaciones, con una actitud creativa, analítica y disciplinada.



1 estuche de disección (bisturí con navaja nueva, tijeras, pinzas, aguja) por equipo

1 par guantes de nitrilo o látex por persona

Papel secante


1 charola por equipo

Limpiador líquido y jabón


66

5.1.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio? 1 pescado mediano o grande sin limpiar (con vísceras y escamas)

5.1.4 Desarrollo

1. Exposición por parte de la profesora o profesor sobre la anatomía de los peces.

2. Identificar las partes de un pescado (morfología externa); dibújalo y señala: Ojo, boca, orificio nasal, opérculo, línea lateral, escama, aleta dorsal, aleta caudal, aleta anal, aletas pectorales, aletas pélvicas, pedúnculo caudal, ano, extremo anterior, extremo posterior, parte dorsal, parte ventral.

3. Realizar una disección (ver explicación en el punto 5.) e identifica la morfología interna; dibújalo y señala: Branquias, lengua, faringe, esófago, estómago, intestino, ano, vejiga natatoria, corazón, hígado, riñón, gónada.

4. Describir la función (tarea) de cada estructura u órgano subrayado en los incisos anteriores.

Aunque los humanos (mamíferos) y los peces no somos similares en apariencia, compartimos órganos y estructuras similares pues pertenecemos al mismo subphylum (Vertebrata). Completa el siguiente cuadro colocando el nombre de la estructura correspondiente con base en su función.

Humano Pez Humano Pez

Pulmones Ojos

Intestino Párpados

Estómago Nariz (olfato)

Hígado Vejiga natatoria

Ovario/Testículo Línea lateral

Riñones Brazos

Corazón (2 cámaras)

Piernas

5. Procedimiento para la disección: El corte con el bisturí debe hacerse de

manera firme y superficial, trazando el corte sin serruchar o perforar profundamente. Para facilitar el procedimiento se puede estirar el tejido hacia los lados, perpendicularmente al paso del bisturí.

6. Se recomienda hacer un corte continuo desde la base de la boca hasta antes del ano y continuar hacia el dorso del organismo hasta por encima de la línea lateral (Figura 1). Lo anterior, con el propósito de exponer un costado completo del organismo, intentando no mover de su lugar los órganos antes de identificarlos. Es importante seguir un orden, por ejemplo desde la boca hasta el ano, para facilitar la identificación, ya que


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si no se conoce la apariencia de alguna estructura u órgano, su posición ayuda a deducir su identificación. Por ejemplo: lengua, faringe, esófago, estómago, intestino, etc.

Figura 1. Ejemplo de incisiones recomendadas para exponer los órganos del organismo.

7. Una vez que se identifique cada órgano u estructura, se recomienda extraerlo y colocarlo a un lado para facilitar la visualización del resto de la anatomía.

5.1.5. Método de Evaluación Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (18 puntos por el dibujo o fotografía del pescado señalando las estructuras externas que se mencionan en el desarrollo de la práctica, +12 puntos por el dibujo o fotografía de la anotomía interna del pescado señalando las estructuras que se mencionan en el desarrollo de la práctica, +16 puntos de la descripción de las funciones, +14 puntos del cuadro), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 80 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

5.1.6. Bibliografía Karp, Gerald. 2005, Biología: conceptos y experimentos. McGraw-Hill

Interamericana, México. 746 p. Reece, J.B., Urry, L.A., Cain, M.L., Wasserman S.A., Minorsky, P.V. y Jackson,

R.B. 2013 Campbell Biology. 10a. edición. Benjamin Cummings, Menlo Park.

Reece, J.B., Taylor, M.R., Simon, E.J. y Dickey, J.L. 2011 Campbell Biology: Concepts and Connections. 7a. Edición, Menlo Park.

Manual de Prácticas de Laboratorio de Biología Anexos Página 68


5.2 Práctica No. 11. Anatomía de un Invertebrado

5.2.1 Introducción Esta es la segunda y última disección que se realizará en este laboratorio. Se utilizará un representante del Reino Animal, que al contrario del Subphylum Vertebrata, no presenta vértebras; organismos que comúnmente conocemos como “invertebrados”. Sin embargo, el grupo de los invertebrados es tan diverso que se clasifican en diferentes Phyla (plural de Phylum). Para esta práctica emplearemos un representante del Phylum Mollusca, que significa cuerpo blando y al presentar una cubierta protectora formada por dos conchas o valvas, se les conoce como moluscos bivalvos (Clase Bivalvia). Por lo tanto, el término invertebrado no representa una categoría taxonómica pero resulta útil para marcar una primera gran división del Reino Animal. Los moluscos bivalvos, como representantes de los invertebrados presentan características menos similares a los mamíferos, que entre los peces y los mamíferos. Sin embargo, se pueden reconocer órganos funcionalmente similares entre un pez y un bivalvo a pesar de la menor complejidad de un invertebrado, con respecto a un vertebrado. 5.2.2 Competencia Conocer e identificar estructuras de la anatomía interna y externa de un bivalvo utilizando las habilidades del pensamiento lógico para entender sus adaptaciones, con una actitud creativa, analítica y disciplinada.



1 estuche de disección (bisturí con navaja nueva, tijeras, pinzas, aguja) por equipo

1 par guantes de nitrilo o látex por persona

Papel secante


1 charola por equipo

Limpiador líquido y jabón



5.2.3.3 Además ¿Qué debe llevar al laboratorio? 1 almeja mediana o grande, viva (almeja pismo: Tivela stultorum, almeja chocolate: Megapitaria aurantiaca, pata de mula: Anadara grandis, etc.).

5.2.4 Desarrollo

1. Exposición por parte de la profesora o profesor sobre la anatomía de un bivalvo.

2. Identificar las partes de una almeja (morfología externa); dibújala y señala: Umbo, ligamento, valva derecha, valva izquierda, borde dorsal, borde ventral, borde anterior, borde posterior.

3. Realizar una disección (ver explicación en el punto 5.) e identifica la morfología interna; dibuja y señala: Músculo aductor anterior y posterior, pie, manto, líneal paleal, placa dentaria o charnela, dientes, sifón inhalante, sifón exhalante, branquias, corazón, estómago, intestino, gónada, boca, ano.

4. Describir la función (tarea) de cada estructura u órgano subrayado en los incisos anteriores.

5. Procedimiento para la disección: Para exponer el interior de la almeja es necesario cortar los músculos aductores, por lo que se recomienda manipular con cuidado la almeja para que no cierre con fuerza las valvas. Cuando la valvas están ligeramente abiertas, se debe introducir un cuchillo de cocina (si se usa el bisturí en este paso, se puede romper la hoja), desde la parte media de la almeja y hacia el ligamento; tanto en la parte anterior como posterior de la almeja (Figura 1). Una vez cortados los músculos, se pueden separar las valvas e identificar la anatomía interna. Se recomienda identificar primero los dos sifones que se encuentran en el borde posterior, para ubicar el resto de las estructuras.

Figura 1. Almeja pismo abierta donde se puede observar la posición de los músculos aductores (tejido ovalado de color rojo).



5.2.5 Cuestionario

1. Menciona 10 phyla de invertebrados marinos.

2. ¿Cuál es la diferencia entre un molusco (Phylum Mollusca) de la Clase Bivalvia y un molusco de la Clase Gastropoda?

3. ¿Cuál es la diferencia entre el corazón de un pez y de una almeja?

4. ¿Cuál es la diferencia entre las branquias de pez y las de una almeja?

5.2.6 Método de Evaluación Entregar un reporte de laboratorio en equipo (a mano, impreso con computadora o enviarlo electrónico al correo del profesor o profesora). Debe incluir todas las secciones: Portada (2 puntos), introducción (4 puntos), objetivo (2 puntos), materiales y método (4 puntos), resultados (8 puntos por el dibujo o fotografía del bivalvo señalando las estructuras externas que se mencionan en el desarrollo de la práctica, +16 puntos por el dibujo o fotografía de la anotomía interna del bivalvo señalando las estructuras que se mencionan en el desarrollo de la práctica, +10 puntos de la descripción de las funciones, + 5 puntos x 4 preguntas del cuestionario), discusión (4 puntos) y literatura citada o referencias (4 puntos, incluye citas en el texto y forma de citar) = 74 puntos. Los o las autoras deben de definir qué información es relevante mencionar en la introducción y definir el objetivo. Las actividades se deben incluir como resultados y discutir acerca de ellos. Recuerde que la información de la introducción y la discusión deben contener citas y sus correspondientes referencias.

5.2.7 Bibliografía Karp, Gerald. 2005, Biología: conceptos y experimentos. McGraw-Hill Interamericana,

México. 746 p. Reece, J.B., Urry, L.A., Cain, M.L., Wasserman S.A., Minorsky, P.V. y Jackson, R.B.

2013 Campbell Biology. 10a. edición. Benjamin Cummings, Menlo Park. Reece, J.B., Taylor, M.R., Simon, E.J. y Dickey, J.L. 2011 Campbell Biology: Concepts

and Connections. 7a. Edición, Menlo Park.



Anexo A Normas Generales de Seguridad e Higiene

1. El uso de bata es obligatorio.

2. Antes de empezar el trabajo en el laboratorio tienes que familiarizarte con los

elementos de seguridad disponibles.

3. Es necesario localizar las salidas principales y de emergencia por si se diese el caso de una evacuación por fuego o por cualquier otro incidente, así como conocer la localización exacta de extintores, duchas de seguridad y duchas de ojos.

4. Es obligatorio usar gafas de seguridad siempre que se esté en el laboratorio.

5. No usar lentes de contacto en el laboratorio, ya que en caso de accidente las salpicaduras de productos químicos o sus vapores pueden pasar detrás de las lentes y provocar lesiones en los ojos antes de poder retirar las lentes. En estos casos es recomendable el uso de gafas graduadas o de gafas de seguridad cerradas.

6. Si un producto químico te salpica los ojos, utiliza inmediatamente una ducha de ojos y lava completamente el ojo afectado durante 15 minutos sin interrupción. Actúa siempre con urgencia, en menos de 10 segundos. No dirijas una corriente de alta presión de agua de un grifo directamente al ojo porque podrías lesionarlo. Informa al encargado del laboratorio de lo que ha sucedido y si es necesario pide asistencia médica.

7. El uso de bata (preferentemente de algodón) es obligatorio, ya que por mucho cuidado que se tenga al trabajar, las salpicaduras de productos químicos son inevitables.

8. Así mismo se recomienda llevar zapatos cerrados y no sandalias.

9. No comer ni beber en el laboratorio, ya que hay la posibilidad de que los alimentos o bebidas se hayan contaminado con productos químicos.

10. Los recipientes del laboratorio nunca deben utilizarse para el consumo y conservación de alimentos y bebidas; tampoco las neveras u otras instalaciones destinadas al empleo en los laboratorios.

11. Lavarse siempre las manos después de hacer cualquier Análisis y antes de salir del laboratorio.

12. Procure quitarse la bata hasta que salga del laboratorio.



13. Está prohibido fumar en el laboratorio por razones higiénicas y de seguridad.

14. No inhales, pruebes o huelas productos químicos si no estás debidamente informado.

15. Cerrar herméticamente los frascos de productos químicos después de utilizarlos.

16. Para pipetear los líquidos utilice siempre una bombilla pipeteadora, no absorber directamente con la boca.

17. Cuando caliente tubos de ensaye hágalo siempre en la parte superior del líquido y con agitación suave, nunca por el fondo del tubo, y debe estar inclinado y no apuntar hacia ninguna persona.

18. No deben transportarse innecesariamente los reactivos de un sitio para otro del laboratorio. Sí tuviese que hacerlo, tenga cuidado con las botellas, las cuales deben ser siempre transportadas cogiéndolas por el fondo, nunca por la boca de la botella.

19. El área de trabajo tiene que mantenerse siempre limpia y ordenada, sin libros, abrigos, bolsas, productos químicos vertidos.

20. La conducta en el laboratorio debe ser seria, sin bromas, sin correr, jugar, empujar, gritar, etc.

21. No se puede hacer ningún experimento no autorizado.

22. No utilices nunca un equipo o aparato sin conocer perfectamente su funcionamiento.

23. No utilices material de cristal en mal estado ya que aumenta el riesgo de accidentes.

24. El material y los aparatos utilizados tienen que dejarse siempre limpios y en perfecto estado de uso.

25. Todos los productos químicos tienen que ser manejados con mucho cuidado de acuerdo con las Hojas de Seguridad de cada una de las sustancias.

26. No inhales los vapores de productos químicos y trabaja siempre en vitrinas extractoras, especialmente cuando manipules productos tóxicos, irritantes, corrosivos o lacrimógenos.



Medidas Generales en Caso de Accidente

Plan general de emergencia 1. Dar la alarma.

2. Ponerse a salvo.

3. Ayudar a las personas.

4. Luchar contra el fuego.

5. Avisar al responsable del departamento.

6. Evacuación del edificio en caso necesario.

7. Avisar a ambulancias, bomberos.

Fuego en el laboratorio

1. Evacuar el laboratorio, por pequeño que sea el fuego, por la salida principal o por la salida de emergencia, sí la principal está bloqueada.

2. Avisar a todos los compañeros de trabajo sin que se extienda el pánico y conservando siempre la calma.

3. Sí el fuego es pequeño y localizado, apagarlo utilizando un extintor adecuado, arena cubriendo el fuego con un recipiente de tamaño adecuado que lo ahogue.

4. Retirar los productos químicos inflamables que estén cerca del fuego. No utilices nunca agua para extinguir un fuego provocado por la inflamación de un disolvente.

5. Para fuegos grandes aislar el fuego, utilizar los extintores adecuados, sí el fuego no se puede controlar rápidamente accionar la alarma de fuego, avisar al servicio de extinción de incendios y evacuar el edificio.

Fuego en el cuerpo

1. Si se te incendia la ropa, pide inmediatamente ayuda.

2. Estírate en el suelo y rueda sobre ti mismo para apagar las llamas.

3. No corras ni intentes llegar a la ducha de seguridad si no es que está muy cerca de ti.



4. Es tu responsabilidad ayudar a alguien que se está quemando, cúbrele con una manta antifuego, condúcele hasta la ducha de seguridad, si está cerca, hazle rodar por el suelo, no utilices nunca un extintor sobre una persona.

5. Una vez apagado el fuego, mantén a la persona tendida, procurando que no coja frío y proporciónale asistencia médica.

Quemaduras

1. Las pequeñas quemaduras producidas por material caliente, baños, placas, etc., se tratarán lavando la zona afectada con agua fría durante 10-15 minutos.

2. Las quemaduras más graves requieren atención médica inmediata.

3. No utilices cremas y pomadas grasas en las quemaduras graves.

Cortes

1. Los cortes producidos por la rotura de material de cristal son un riesgo común en el laboratorio.

2. Las cortadas se tienen que lavar bien, con abundante agua corriente, durante 10 minutos como mínimo.

3. Si la cortada es pequeña y deja de sangrar en poco tiempo, lávala con agua y jabón y tápala con una venda.

4. Si la cortada es grande y no deja de sangrar, requiere de asistencia médica inmediata.

Derrame de productos químicos sobre la piel

1. Los productos químicos que se hayan vertido sobre la piel han de ser lavados inmediatamente con agua corriente abundantemente, como mínimo durante 15 minutos.

2. Las duchas de seguridad instaladas en los laboratorios serán utilizadas en aquellos casos en que la zona afectada del cuerpo sea grande y no sea suficiente el lavado en una pila.

3. Es necesario sacar toda la ropa contaminada de la persona afectada lo antes posible mientras esté bajo la ducha.

4. Recuerda que la rapidez en el lavado es muy importante para reducir la gravedad y la extensión de la herida.



5. Proporcionar asistencia médica a la persona afectada.

Corrosiones en la piel por ácidos y álcalis

1. Cuando ocurre una corrosión por ácidos, corta lo más rápidamente posible la ropa, lave con agua abundantemente la zona afectada, neutralice la acidez con bicarbonato de sodio durante 15-20 minutos, sacar el exceso de pasta formada, seca y cubra la parte afectada con linimento óleo-calcáreo o parecido.

2. Cuando se produce una corrosión por álcalis, lave la zona afectada abundantemente con agua corriente y aclárala con una disolución de ácido acético al 1%, seca y cubre la zona afectada con una pomada de ácido tánico.

Corrosiones en los ojos

1. En este caso el tiempo es esencial (menos de 10 segundos), cuanto antes se lave el ojo, menos grave será el daño producido.

2. Lava los dos ojos con agua corriente abundantemente durante 15 minutos como mínimo en una ducha de ojos, y, si no hay, con un frasco de lavar los ojos.

3. Es necesario mantener los ojos abiertos con la ayuda de los dedos para facilitar el lavado debajo de los párpados.

4. Es necesario recibir asistencia médica, por pequeña que parezca la lesión.

Ingestión de productos químicos

1. Antes de cualquier actuación pide asistencia médica.

2. Si el paciente está inconsciente, ponerlo en posición lateral de seguridad, con la cabeza de lado, y estirarle la lengua hacia fuera.

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