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1 I.INTRODUCCIÓN La Estrongiloidiasis es una infección intestinal provocada por el nematodo del género Strongyloides y especie stercoralis. Este verme es un parásito de perros, gatos, primates que puede trasmitirse a los humanos de manera directa y accidental, al estar en contacto con heces infectadas (zoonosis). Este parásito es facultativo el cual puede tener un ciclo de vida libre o un ciclo de vida parasitaria; la parasitosis está presente en todo el mundo en especial en países tropicales y subtropicales. (Romero R.2007, Dillard K, 2007) El Strongyloides stercoralis cuando infecta a los caninos se lo llama Strongyloides canis y puede infectarse tanto a otros animales como a humanos; los animales puede producir síntomas como: Inflamación de la piel, erupción cutánea. (Dermatitis), tos, bronconeumonía, diarrea o estreñimiento, así como la presencia de sangre o mocos en las heces. Los caninos pueden infectarse con S. stercoralis, a través de la penetración de la piel, la ingestión de heces contaminadas y lactancia de una perra infectada. Existe una mayor prevalencia de Estrongiloidiasis en las perreras especialmente cuando hay malas condiciones sanitarias, altas temperaturas y humedad.(Venfido, 2011) Las infecciones por S. stercoralis en los animales son subestimadas ya que hay veces que tienden a la cronicidad y otras en que pueden convertirse en un serio problema de salud animal cuando hay presencia de hiperinfecciones y pueden conllevar a Problemas de Salud Pública por la zoonosis entre los animales y el humano. (Hernández F. 2000)

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I.INTRODUCCIÓN

La Estrongiloidiasis es una infección intestinal provocada por el

nematodo del género Strongyloides y especie stercoralis. Este

verme es un parásito de perros, gatos, primates que puede

trasmitirse a los humanos de manera directa y accidental, al estar en

contacto con heces infectadas (zoonosis).

Este parásito es facultativo el cual puede tener un ciclo de vida libre

o un ciclo de vida parasitaria; la parasitosis está presente en todo el

mundo en especial en países tropicales y subtropicales. (Romero

R.2007, Dillard K, 2007)

El Strongyloides stercoralis cuando infecta a los caninos se lo

llama Strongyloides canis y puede infectarse tanto a otros

animales como a humanos; los animales puede producir síntomas

como: Inflamación de la piel, erupción cutánea. (Dermatitis), tos,

bronconeumonía, diarrea o estreñimiento, así como la presencia de

sangre o mocos en las heces.

Los caninos pueden infectarse con S. stercoralis, a través de la

penetración de la piel, la ingestión de heces contaminadas y

lactancia de una perra infectada. Existe una mayor prevalencia de

Estrongiloidiasis en las perreras especialmente cuando hay malas

condiciones sanitarias, altas temperaturas y humedad.(Venfido, 2011)

Las infecciones por S. stercoralis en los animales son

subestimadas ya que hay veces que tienden a la cronicidad y otras

en que pueden convertirse en un serio problema de salud animal

cuando hay presencia de hiperinfecciones y pueden conllevar a

Problemas de Salud Pública por la zoonosis entre los animales y el

humano. (Hernández F. 2000)

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Durante el 2010 la Organización Panamericana de la Salud (OPS)

estimó que entre 30 a 100 millones de personas estarían infectadas

en todo el mundo y las infecciones generalmente se adquieren por

contacto directo con el suelo contaminado durante las actividades

agrícolas, domésticas y recreativas, aunque también se pueden

transmitir en el laboratorio. (WHO, 2011)

La Estrongiloidiasis en humanos está infradiagnosticada con

frecuencia, debido a que muchos de los casos son asintomáticos y

pueden persistir de por vida (cronicidad), en otros casos pueden

desencadenar el síndrome de la larva cutánea con características

peculiares. El riesgo de hiperinfección en individuos con

desequilibrio inmunológico puede conllevar a que se presenten

estados severos de infección, con mortalidades que alcanzan hasta

el 80%. (WHO, 2011; Subias G. 2005)

La enfermedad está catalogada por la Organización Mundial de la

Salud (OMS) como una de las parasitosis desatendidas muy

frecuentes en países en vías de desarrollo. El ciclo de transmisión

persiste por efecto de la contaminación ambiental, sobre todo por las

malas condiciones de vida y de higiene, así como también, a la

variabilidad genética del microorganismo y a la susceptibilidad de los

hospedadores. (WHO, 2014; Figuera L. 2002)

1.2. PROBLEMA:

Se estima que la prevalencia de la infección en los caninos y

humanos oscila entre 1 al 48%. (Grove D. 1994; Simpson W, et al,

2000)

En un estudio realizado en el 2005 en canes del departamento de

Quindio en la república Colombia se determinó la presencia de

Strongyloides stercoralis en un 4% de prevalencia. (Giraldo M.

2005)

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En Perú esta parasitosis es endémica y en la actualidad se registra

una prevalencia de S. canis en un 9,9%. (Solis P., 2014)

En Ecuador, en la actualidad, existe escasa información sobre la

prevalencia de esta parasitosis desatendidas; el Programa

multidisciplinario SENESCYT sobre parasitosis desatendidas en el

Ecuador (PROPAD) desde el 2013, está trabajando en un estudio

nacional sobre prevalencia de algunas parasitosis, en la que

involucra la Estrongiloidiasis tanto en caninos como humanos.

En la actualidad 800 millones de personas se encuentran infectadas

con este verme y se estima que afecta hasta el 10% de la población

en algunas regiones del mundo; el Ecuador es endémico a esta

parasitosis y es trascendental realizar este estudio por lo que no hay

una línea base de información sobre esta parasitosis, además, el

sitio a estudiar es una comuna en la que se puede presentar la

enfermedad. (Winn W, et al, 2008; Ruano A., 2014)

En la comuna “Limoncito” de la provincia del Guayas no se ha

realizado investigaciones como la mencionada parasitosis por lo que

es necesario investigar sobre la presencia de esta enfermedad en

caninos y su impacto que tiene esta zoonosis en los humanos.

(Comuna Limoncito., 2014)

1.3. JUSTIFICACIÓN

EL Strongyloides stercoralis epidemiológicamente está

relacionado con el medio ambiente, el hospedero y la variabilidad

genética del parásito. (WHO, 2011; Mirkin G., 2013).

La amplia incidencia de casos está relacionado con la transmisión

percutánea, en donde existe la penetración de larvas filariformes

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existentes en el suelo, las cuales ingresan a los hospedadores

finales a través de la piel, presentando altas tasas de prevalencia, en

ambientes agrícolas, entornos familiares y en lugares de

hacinamiento donde existe una rápida diseminación de verme.

Por lo descrito anteriormente fue de notable relevancia el estudio en

la comuna “Limoncito” en la parroquia Chongón de la provincia del

Guayas, ya que dicha zona presta todas las condiciones para que se

desarrolle el ciclo biológico del parásito; por tal motivo es importante

realizar la investigación porque podría convertirse en un grave

problema de Sanidad Animal y de Salud Pública.

1.4. OBJETIVOS:

1.4.1. OBJETIVO GENERAL:

Determinar la presencia de Strongyloides stercoralis en canes de

la comuna “Limoncito” de la parroquia Chongón-Guayas y el riesgo

que representa para la salud pública; entre los meses de agosto a

diciembre del 2014.

1.4.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS:

1. Identificar la presencia de Strongyloides stercoralis en

heces de perros domésticos mediante los métodos de

sedimentación y Baerman modificado.

2. Determinar la presencia de Strongyloides stercoralis según

la raza, sexo y edad de los caninos.

3. Establecer una correlación de los casos positivos detectados

en los caninos con la información recopilada en la encuesta a

los residentes de la comuna.

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1.5. HIPÓTESIS

HI. Existe la presencia de Strongyloides stercoralis en la población

canina de la comuna “Limoncito” de la parroquia Chongón.

HO. No se encuentra la presencia de Strongyloides stercoralis.

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II. MARCO TEÓRICO

2.1 Descripción de Strongyloides stercoralis

Es un parásito nematodo facultativo, geohelminto, endémico en

regiones tropicales y subtropicales del mundo, siendo poco

prevalente en regiones templadas. (Uribarren T., 2014; Rev. Chil.

Infect., 2013)

Del género Strongyloides existen 52 especies, la mayoría no

patógenas para el hombre, que infectan mamíferos, aves, reptiles y

anfibios (Ruano A., 2008)

Morfológicamente se pueden distinguir: la forma parasitaria (hembra),

huevos, la larva rabditoide, la larva filariforme y las formas de vida

libre (hembra y macho). (Rev. Chil. Infect., 2013)

Las formas larvarias tienen un cuerpo filiforme, con un esófago recto

y extremo posterior aguzado. (Uribarren T., 2014)

La hembra parasitaria es partenogénetica, no necesita al macho

para producir huevos fértiles, son transparentes y miden 2 mm de

longitud, se sitúan en la submucosa duodenal y de la primera

porción del yeyuno, presenta un extremo anterior romo con una boca

que exhibe 3 labios; el esófago es filariforme y ocupa el primer tercio

de su cuerpo, la vulva en el segundo tercio, el útero se encuentra

repleto de huevos y la porción distal es roma; esta forma parasitaria

no se suelen encontrar en las heces. (Ruano, 2008)

Los huevos son ovalados, la pared fina y transparente, este mide

aproximadamente de 40 a 70 µm de longitud y son expulsados en la

materia fecal de individuos infectados, que al caer al suelo estos

eclosionan rápidamente, liberando larvas rabditiformes que son las

que se detectan en las heces. (Uribarren T., 2014; Ruano, 2008)

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La larva rabditiforme (L1) es móvil, mide 250 µm de largo por 35 µm

de ancho presenta un extremo anterior romo, la cavidad bucal es

más corta que la uncinaria y el esófago desemboca en el ano en el

extremo posterior; en la parte media se presenta a través de la piel o

mucosas.(Romero, 2007; Ruano, 2008)

La larva filariforme L3 es muy móvil mide 600 µm de longitud y son

las formas infectadas con gran capacidad de invasión a la piel, en el

extremo anterior dispone de una estructura en forma de estilete en la

que en su interior presenta un esófago largo que se prolonga hasta

la parte media de su cuerpo; su extremo posterior es agudo y

termina bifurcado, rasgo que la diferencia de las larvas de

Ancylostoma y Necator en los que termina en forma de gancho.

Estas larvas requieren de considerable humedad y crecen muy bien

donde el nivel freático es elevado. (Winn W, et al, 2008; Ruano A,

2008)

Los adultos de vida libre presentan un tamaño alrededor de 1mm de

longitud y se pueden identificar machos y hembras; las hembras

tienen un tamaño algo mayor que los machos, presentan hileras de

huevos dentro del útero, vulva en la mitad del cuerpo. En cuanto a

los machos tienen espículas y el extremo posterior es curvo. (Ruano

A., 2008)

2.2 Taxonomía

La clasificación taxonómica del Strongyloides stercoralis es la

siguiente:

PHYLUM: Nemata

CLASE: Plasmida

ORDEN: Rhabditata

FAMILIA: Strongyloididae

GÉNERO: Strongyloides. (Uribarren T, 2014)

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2.3. Estrongiloidiasis

El S. stercoralis es un parásito cosmopolita causante de la

Estrongiloidiasis en caninos y humanos, la misma que es endémica

en países tropicales y subtropicales, pero también se dan casos en

regiones templadas del mundo en donde preferentemente existen

habitantes con bajas condiciones socioeconómicas, en donde la

prevalencia de infección en personas es entre el 1 al 48%.

(WorldGastr. Organiz., 2014; CDC, 2014)

La transmisión principalmente se da a través de la piel, siendo muy

frecuente en ambientes agrícolas, entornos familiares y en lugares

de hacinamiento donde existe una rápida diseminación del verme.

También se dan casos de transmisión en el laboratorio al estar en

contacto el laboratorista con heces directamente.(WHO, 2011; CDC,

2014)

Según estudios investigativos las seroprevalencia contra

Strongyloides stercoralis es del 12,1% en pacientes psiquiátricos y

de 0,25% en donantes de sangre. (Uribarren T, 2014)

Esta parasitosis es muy prevalente en América latina, las Islas del

Caribe, el Sureste Asiático, África tropical, Europa Central, Oriental y

del Sureste. (Carrada T., 2008)

2.4. Patogenicidad y Virulencia

La patogenicidad y virulencia depende muchos de factores como: el

medio ambiente, el hospedero y la variabilidad genética del parásito.

(WHO, 2011; Mirkin G, 2013)

Respecto al medio ambiente es un factor muy importante ya que

huevos y fases larvarias necesitan de una adecuada temperatura y

humedad para poder sobrevivir. (Venfido, 2011)

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La respuesta inmune del hospedador es muy trascendental ya que

depende mucho de la respuesta del organismo para la eliminación

del verme.

El factor microbiano de la patogenicidad y virulencia está

determinado principalmente cuando el parásito evade al sistema

inmune para a continuación producir los signos y síntomas de

enfermedad. El Strongyloides stercoralis puede producir 3 tipos de

daños: Exfoliativo, Mecánico y Tóxico. (Gorrita R. 2009)

El daño Exfoliativo se da principalmente cuando el parásito toma los

nutrientes del hospedador.

El daño mecánico se da cuando el verme se mueve por los distintos

tejidos, este parásitoatraviesa la piel, se traslada por el tejido celular

subcutáneo, después pasa a los pulmones y llega a la submucosa

del tejido digestivo en donde se desarrolla a estado adulto y es

donde hace hábitat natural.

El daño tóxico se da cuando el parásito emite toxinas dentro del

hospedador y causa algún tipo de reacción. (WHO, 2011; Gorrida T,

2008)

Cuando las larvas filariformes de S. stercoralis (L3, infectantes)

penetran la piel intacta o mucosas, pueden dar lugar, en la mayoría

de los casos, inflamación de la piel y erupción cutánea (dermatitis);

el parásito cuando está el trayecto pulmonar puede causar tos y

bronconeumonía; y al nivel del intestino pueden producir diarrea o

estreñimiento, así como la presencia de sangre o moco en las heces.

(Dillard K et al, 2007; Venfido, 2011)

El S. stercoralis puede producir también atrofia de las

microvellosidades intestinales e hiperplasia de las criptas, con

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infiltración de células plasmáticas y eosinófilos. Las formas severas

llegan a expresarse en la forma de úlceras de hasta 0.5 cm con

infiltración larvaria en paredes intestinales y hasta en la luz de

capilares y linfáticos, que constituyen otra vía de diseminación a

otros tejidos. También existe un aumento en la expresión del

componente secretor (SC) y la expresión disminuida de Complejo

Mayor de Histocompatibilidad (CMH-DR) en células epiteliales; estos

cambios están correlacionados con el grado de severidad del cuadro

clínico.

Varias patologías son asociadas a la hiperinfección del parásito en

organismos inmunodeprimidos en donde ocasiona problemas muy

graves de enfermedad con porcentajes de mortalidad hasta el 80%.

(Subias G, et al, 2005; Uribarren T, 2014)

2.5. Transmisión

La infección se adquiere cuando las larvas filariformes, presentes en

la tierra u otro material con heces humanas, penetran la piel y

migran vía hematógena hacia el pulmón, invadiendo los alvéolos, en

donde mudan a larvas L4; desde ahí, ascienden por el árbol traqueo

bronquial donde llega a la tráquea laringe y faringe, en este último la

fase larvaria son deglutidas, alcanzando finalmente el intestino

delgado, donde se transforma en su forma parásita adulta (hembra)

en donde pueden vivir hasta cinco años, fundamentalmente en el

duodeno y/o yeyuno, donde producen huevos, los cuales eclosionan

y dan origen a la larvas filariformes de libre vida. Generalmente la

aparición de las larvas en las heces ocurre aproximadamente a la

tercera o cuarta semana, desde el inicio de la infección.

En ocasiones estas larvas pueden madurar dentro del tracto

gastrointestinal, transformándose en larvas filariformes, las cuales

penetran la piel perianal a la mucosa colónica, llegando a la

circulación e iniciando un ciclo de autoinfección, el que aumenta

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substancialmente la carga intestinal de larvas. (Rev. Chil. Infect.,

2013)

Estos nematodos cuando caen al suelo se alimentan de materia

orgánica. (Simpson W. et al, 2000)

2.6. Epidemiologia:

Strongyloides stercoralis es un parásito cuya prevalencia de

infección mundial oscila entre 1% y hasta 48% en las diferentes

regiones como: en Estados Unidos, entre el 0.6% al 3%; en Japón,

del 1% al 10%; en Somalia, el 2.9%; en Costa Rica, del 1.1% a

16.5%; Brasil, 15% a 82%; en el Congo, 26%; en el Zaire, 26% y

Republica Africana Central, 48%. (Grove D, 1994; Simpson W. et al,

2000)

En un estudio realizado en el 2005 en 324 canes del departamento

de Quindio en Colombia se determinó una prevalencia de helmintos

intestinales del 22% respecto a la presencia de S. stercoralis

encontrada fue del 4%. (Solís P, 2014)

En Ecuador, en la actualidad, existe escasa información sobre la

prevalencia de esta parasitosis en animales por lo que es importante

realizar investigaciones en el país para saber la prevalencia general

de la Estrongiloidiasis.

2.7. Inmunidad

Una vez que el S. stercoralis atraviesa las barreras biológicas

como son la piel y mucosa; este parasito penetra a nivel sanguíneo,

dirigiéndose a los pulmones y luego al duodeno y yeyuno en donde

se transforma en estado adulto. Cuando este microorganismo

ingresa el hospedero responde primeramente con la respuesta

inmune innata o no adaptiva, que coopera con el control de la

infección en la etapa temprana de la infección.

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Cuando el microorganismo penetra en la célula presentadora de

antígeno (macrófagos, linfocito B, neutrófilos), este lo reconoce a

través de receptores tipo Tolllike (TLR) que reconocen moléculas

antigénicas; al ser sensibilizados dichas células estos secretan IL4,

IL5 y otras citosinas que van a tratar de inhibir la multiplicación del

microorganismo, disminuyendo la infección.(Regueiro R, 2006)

En el interior de la célula presentadora de antígeno, el verme sigue

la vía exógena en el citosolde la célula, ya en el interior del

citoplasma es captado por el fagosoma y luego por el lisosoma

(fagolisosoma) en donde el parásito es hidrolizado en péptidos de 5

a 15 aminoácidos. Estos péptidos liberados en el citosol, son

conducidos hacia el Retículo Endoplásmico (RE) e introducidos en

sus cisternas por proteínas transportadoras del tipo ABC llamadas

TAP1 y TAP2. Inmediatamente después de la entrada del parásito en

el núcleo se expresa o se forma la proteína Complejo Mayor de

Histocompatibilidad(CMH) clase II,la misma que luego ingresa en el

RE; A continuación dentro de las cisternas del RE los péptidos

antigénicos se asocian con moléculas CMH II y forman CMH 2- Ag

este proceso es asistido por Chaperonas celulares y este pasa

después del RE al sistema de Golgi. (Uribarren T, 2014; Regueiro R,

2006)

Posteriormente se desprende en vesículas que son transferidas a la

membrana plasmática de la célula presentadora, en el cual queda

expuesta y puede interaccionar con el receptor de la célula

linfocitaria Helper (TH 2) para activar a su vez a linfocito B

plasmático el mismo que produce anticuerpos específico para

Strongyloides stercoralis. (Regueiro R, 2006; Abbas A., 2012)

2.8 Clínica:

Generalmente el animal infectado no presenta síntomas clínicos ya

que el parásito puede persistir en el canino e inducir cronicidad, pero

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algunos casos graves se puede presentar síntomas como:

inflamación de la piel, erupción cutánea (dermatitis), tos,

bronconeumonía, diarrea o estreñimiento, así como la presencia de

sangre o moco en las heces. (Dillard K, et al. 2007; Dwinght D., 2011)

En las infecciones masivas los pulmones de los cachorros jóvenes

pueden estar salpicados con petequias y hemorragias como

consecuencia de la migración de las larvas que rompen los capilares

alveolares.

Existen casos en que las larvas filariformes infectadas se desarrollan

dentro del tracto digestivo del animal, por lo que estas larvas pueden

reinvadir al hospedero atravesando la pared intestinal (autoinfección

interna) o la piel perianal (autoinfección externa).(Dwinght D., 2011).

También se pueden presentar desde eosinofilia asintomática o

diarrea moderada en hospederos inmunocompetentes, hasta el

síndrome de hiperinfección con shock séptico, en caninos con

inmunosupresión celular, lo que conlleva a una alta mortalidad de

hasta el 80%. (Uribarren, 2014)

2.9. Diagnósticos:

Existen diversos métodos para el diagnóstico de la enfermedad

como son:

Examen directo en fresco: Consiste en colocarla en porta objeto

una pequeña cantidad de solución salina o agua destilada, para

luego tomar una pequeña muestra de heces y mezclar, después se

coloca un cubre objeto, para a continuación observar al microscopio.

(Escalante J., 2000)

PCR: Es un método que permite la detección del ácido nucleico del

parásito (ADN) y consiste primeramente en la extracción del ácido

nucleico del verme, para a continuación preparar el master mix de

reacción; luego se hace la mezcla del master mix con el ácido

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nucleicos; subsiguientemente se procede ampliar los segmentos

genéticos en un termociclador a diferentes temperaturas, para

posteriormente hacerlo migrar en un gel de agarosa o policrilamina y

después teñirlo con Bromuro de Etidio o cyber Green para

finalmente visualizarlo en un transiluminador o en un aparato de foto

documentación. (Madigan M., 2005)

ELISA: La técnica ELISA (EnzymelLinkedInmunobsorventAssay) se

basa en la detención de anticuerpos (IgM o IgG) a partir de un

antígeno inmovilizado sobre una fase sólida, si el anticuerpo se

presenta en el suero sanguíneo es específico, este forma un

inmunocomplejo con el antígeno; a continuación se coloca un

conjugado (anticuerpo monoclonal + enzima) que se une al

inmunocomplejo. Después se dispensa un sustrato cromógeno que

se une a la enzima específica y genera un color. Cuando se produce

estas reacciones se las puede medir por espectrofotometría en un

microlector de ELISA, el cual le da un valor a la reacción. (Uribarren

T, 2014; Cooper M, 2000)

Inmunofuorescencia Indirecta: Consiste en detectar

inmunoglobulinas en suero canino, por intermedio de dos reacciones:

con el parásito y con la globulina anticanina teñida con fluoresceína.

Esta prueba permite la visualización de reacciones antígeno-

anticuerpo (Ag-Ac) por medio del marcaje de una inmunoglobulina

con flourocromos. Este último son sustancias con capacidad de

absorción de energía luminosa, tornándose excitadas por un breve

periodo de tiempo (10 a 30 segundos) ante un haz de luz y

enseguida emitiendo en forma de fluorescencia al retornar es su

estado normal. (Cooper M, 2000)

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2.10. Tratamiento

El tratamiento efectivo depende en gran medida del diagnóstico

correcto.

La ivermectina es el fármaco de elección en caninos y humanos,

aunque puede emplearse el abendazol y el tiabendazol son eficaces

contra los parásitos causantes de la enfermedad. También se puede

utilizar como tratamiento el pamoato de Oxantel y el pirantel en

casos que se amerite. La frecuencia de recaídas requiere del

seguimiento clínico de los pacientes, así como el monitoreo

cuidadoso del canino inmunodeprimido. (Uribarren T, 2014)

2.11. Prevención y Control

En humanos la infección se previene evitando el contacto directo de

la piel con la tierra que contiene larvas infectantes. Los individuos en

riesgo, especialmente niños, deberían utilizar calzado cuando

caminan por áreas en las que el suelo está infectado. Es importante

Identificar a los pacientes en riesgo y realizar pruebas diagnósticas

apropiadas para saber si hay presencia de la parasitosis y luego

establecer un tratamiento. Hay que destacar que la adecuada

eliminación de las excretas humanas reduce sustancialmente la

prevalencia de Estrongiloidiasis.

En países en vía de desarrollo es fundamental mejorar las

infraestructuras de alcantarillado para eliminar adecuadamente las

aguas residuales. También es importante mencionar que no existe

ningún régimen profiláctico aceptado ni hay ninguna vacuna

disponible.

La detección precoz y tratamiento oportuno en los caninos

infectados es una medida de prevención muy eficaz, sobre todo en

ambientes cerrados sirviendo mucho de esta manera como indicador

de posibles problemas de salud animal y salud pública. (WorldGastro.

Organiz., 2014; Cuadro J., 2014).

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III. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1 UBICACIÓN DE LA INVESTIGACIÓN Y CARACTERÍSTICAS

3.1.1 Localización

El presente estudio se realizó en la comuna “Limoncito” de la

parroquia Chongón, de la provincia del Guayas.

3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo

Limoncito es una comuna situada en la parte oeste de la Provincia

del Guayas; la mencionada es una zona eminentemente agrícola,

donde se cultivan una innumerable variedad de cultivos como: arroz,

maíz, café, sandia, etc., hay que destacar que sus habitantes se

dedican a actividades agropecuarias. Dicha comuna se encuentra

ubicada en una latitud de -2.23333 y una longitud: -80.0667.

(Comuna Limoncito, 2014; Direct. Cart. del Ec, 2014) (Anexo 1)

CARACTERÍSTICAS FÍSICAS:

Geología: La topografía del suelo es irregular. Los suelos

generalmente son profundos a moderadamente profundos,

derivados de proyecciones volcánicas o arcillosas; el tipo de suelo

predominante es el arcilloso, el cual es adecuado para las

actividades agropecuarias.

Clima: Su clima es tropical y fresco, con marcada diferencia entre el

invierno y verano, con temperaturas que fluctúan entre los 22 y 36°C.

En verano la temperatura mínima varía entre el 22°C al 26°C. La

humedad relativa va del 72 al 80%. . (Comuna Limoncito, 2014)

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3.2. Tipo de Investigación

Descriptivo, Transversal

3.3. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN

Muestreo total

3.4. UNIVERSO

Total de la población canina de la comuna “Limoncito” de la

parroquia Chongón es de 130 animales, según el censo realizado

por la autora, de ellos solo en 120 canes se realizó el estudio.

(Anexo 2)

3.5. TAMAÑO DE LA MUESTRA

La cantidad fue total, previo al consentimiento de los propietarios

que accedieron a que se realice el estudio a los animales. (Anexo 3)

3.6. METODOLOGÍA

Para este estudio se realizó una charla y encuesta a los moradores

de la comuna con el fin de concientizar sobre la importancia de la

investigación. (Anexo 3, 4)

Durante la charla a los habitantes del mencionado sector se les

entrego un frasco estéril y se les explicó de como recoger la muestra

en sus mascotas, debidamente identificadas.

En los casos que el dueño del animal no pudo recolectar la muestra,

el equipo técnico, procedió a tomar la muestra de heces de los

caninos, tomando todas las medidas de bioseguridad recomendadas

para este tipo de estudio. (Anexo 5)

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A continuación las muestras de heces fueron debidamente

transportadas al laboratorio de la Facultad de Medicina Veterinaria y

Zootécnia en donde se las analizaron por los métodos de

sedimentación con frotis directo y Baermann modificado.

Respecto al método de sedimentación se procedió a la muestra a

colocarle 3 veces la cantidad de suero fisiológico, a continuación se

dejó entre 1 a 3 días sedimentar la muestra (se analizó

sobrenadante y sedimento), luego se observó directamente al

microscopio con los objetivos de 10 y 40 X.

En lo concerniente al método de Baermann modificado, sirvió para

confirmar la fase parasitaria del helminto, la misma, que consistió en:

1. Temperar el agua a 39ºC en baño a maría.

2. Colocar una porción de muestra en una gasa.

3. Sujetar la muestra con una liga a una copa plástica.

4. Colocar a baño de maría la muestra por 45 minutos.

5. Centrifugar el contenido que se obtuvo del baño de maría.

6. Con una pipeta pasteur recoger el sedimento y observarlo en

el microscopio, con los objetivos de 10 y 40 X.

3.7 MATERIALES DE INVESTIGACIÓN:

Los materiales que utilizaron fueron los siguientes:

3.7.1 DE CAMPO

Frascos estériles

Mascarilla

Marcador

Guantes

Cajas térmicas

Bandejas

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Tableros con los registros

Bozal

Mochila.

Botas de Goma

3.7.2 DE LABORATORIO

Para Microscopia Óptica:

Microscopio

Frasco estériles

Baja lengua

Lamina porta objeto

Lamina cubre objeto

3.7.3 Para el método de Baerman modificado:

Guantes

Vaso cónico

Baño maría (39°C)

Gasa

Tijera

Gotero

Microscopio óptico

Lamina porta objeto

Lamina cubre objeto

3.7.4 PERSONAL

Investigador.

Tutor.

Asistente de Campo.

20

3.8 ANALISIS ESTADÍSTICO:

Con los datos obtenidos se realizó un análisis descriptivo de tipo

transversal que se presenta en forma de tablas estadísticas, gráficos,

barras y mapa de la zona de estudio.

3.9. DATOS EVALUADOS

Las variables que se analizaron en el estudio fueron:

Edad del canino.

Sexo del Canino

Raza del Canino

Zona de incidencia de Estrongiloidiasis

Presencia/Ausencia del Verme

Presencia/Ausencia de Síntomas (Encuesta)

Mortalidad encontrada

21

IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

El censo realizado en la comuna “Limoncito” fue entre el 1 de Agosto

al 21 de Agosto del 2014, el mismo registró130 animales. El sitio

estudiado contó con 83 casas censadas, de los cuales 74

permitieron la toma de muestras de sus canes. (Anexo 2, 3)

4.1. Determinar la incidencia de Strongyloides stercoralis en caninos

de la comuna “Limoncito” de la parroquia Chongón-Guayas y su

impacto en salud pública; en los meses de agosto a diciembre del

2014.

De las 120 muestras analizadas, 10 resultaron positivas (8,33%)

para Strongyloides stercoralis por la técnica de Sedimentación y

Baermann modificado, lo que permitió determinar la incidencia en los

caninos estudiados en la comuna “Limoncito” con un resultado del

8,33%. (Anexo 6)

En esta investigación las muestras positivas fueron determinadas a

través de la técnica de sedimentación y por el método de Baermann

modificado, el cual identificó formas parasitarias de Strongyloides

stercoralis en caninos de la zona estudiada. Esta última causa la

enfermedad denominada Estrongiloidiasis que es de gran impacto

en Salud Animal y Salud Pública.

Tabla No. 1. Número y porcentajes de muestras positivas

LIMONCITO POSITIVAS %

120 muestras 10 muestras 8,33

22

Gráfico No. 1. Porcentaje de muestras positivas y negativas.

4.2 Identificar la presencia de Strongyloides stercoralis en heces de

perros domésticos mediante los métodos de sedimentación y

Baerman modificado.

La incidencia resultante (8,33 %) de Strongyloides stercoralis es

evidente que existe la presencia de este parásito en esta zona del

País; pero este estudio fue de gran aporte para evidenciar un brote

con casos sintomáticos de este helminto en caninos; también es

importante destacar que este sitio cuenta con todas las condiciones

para que se desarrolle el ciclo biológico de alguna Helmintiasis.

Incidencia=No.de casos nuevos en un período de tiempo dado

Población a riesgo durante el mismo período de tiempox 100%

𝐈𝐧𝐜𝐢𝐝𝐞𝐧𝐜𝐢𝐚 =10 casos

120 muestrasx 100%

𝐈𝐧𝐜𝐢𝐝𝐞𝐧𝐜𝐢𝐚 = 10 x 100%

Incidencia = 8,33%.

8,33%

91,67%

0,00%

10,00%

20,00%

30,00%

40,00%

50,00%

60,00%

70,00%

80,00%

90,00%

100,00%

Positivas Negativas

23

4.3 Determinar la presencia de Strongyloides stercoralis según la

raza, sexo y edad de los caninos.

Con respecto a los caninos estudiados presentaron edades

comprendidas desde los 3 meses a 10 años, con sexo machos (60%)

y hembras (40%), todos con raza mestiza; todos estos caninos

presentaron propietarios, los cuales fueron debidamente

muestreadas sus mascotas.

Tabla No. 2. Frecuencia y Porcentaje de razas estudiadas en la

comuna “Limoncito”.

RAZAS FRECUENCIA PORCENTAJE %

Mestizo 120 100

Otras 0 0

TOTAL 120 100

24

Gráfico 2. Porcentaje de razas estudiadas

Tabla. No. 3. Frecuencia y porcentaje de edades estudiadas en el

sitio de estudio.

EDADES FRECUENCIA %

3 meses a 1 año 20 16,66

1 a 3 años 45 37.5

3 a 5 años 10 8.33

5 a 7 años 23 19.16

7 a 9 años 8 6.68

9 en adelante 14 11.67

TOTAL 120 100%

0%

20%

40%

60%

80%

100%

Mestizo Otros

100%

25

Gráfico No. 3. Porcentaje de edades estudiadas.

Entre 3 meses a 1 año hay un 17%, entre 1 a 3 años hay un 38%,

entre 3 a 5 años hay un 8%, entre 5 a 7 años hay un 19%, entre 7 a

9 años hay un 7% y de 10 años en adelante hay un 12%.

Tabla No. 4. Frecuencia y Porcentaje de sexo estudiados en la

comuna “Limoncito”.

SEXO TOTAL

ANIMALES

PORCENTAJE %

Machos 72 60

Hembras 48 40

TOTAL 120 100

17%

38%

8%

19%

7%

12%

EDADES

3 MESES A 1 AÑO 1 A 3 AÑOS 3 A 5 AÑOS

5 A 7 AÑOS 7 A 9 AÑOS 9 EN ADELANTE

26

Gráfico No. 4. Porcentaje de sexo estudiado.

Es importante destacar que en esta investigación realizada en toda

la comuna de “Limoncito” se presentó un brote en la parte central de

ella, además, de los 10 los caninos del sitio de estudiado, 5

presentaron síntomas como: tos, estreñimiento, diarrea acuosa y con

presencia de sangre o mocos; y de los cinco sintomáticos 1 murió.

(Anexo 7)

4.4 Establecer una correlación de los casos positivos detectados en

los caninos con la información recopilada en la encuesta a los

residentes de la comuna.

La mayor parte de los habitantes del sector respondieron la siguiente

información:

1. ¿Cuántas personas viven en su casa?:

Aproximadamente entre 5 a 6 personas vivían en cada una de los

hogares estudiados.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

Machos Hembra

60%

40%

27

2. ¿Usted se lava las manos antes de comer?:

El 70% de las personas se lavan las manos antes de comer, el 30%

restante manifestaron que a veces que por faenas agropecuarias

comen sin lavarse las manos en el sitio de trabajo.

3. ¿Usted consume alimentos del suelo?:

El 8% de las personas manifestaron que suelen consumir alimentos

del suelo.

4. ¿Sus alimentos son bien preparados y cocidos?:

Todos los habitantes de la zona estudiada manifestaron que

preparan bien sus alimentos, pero que por motivos de tiempo a

veces sus comidas no son debidamente conservadas y bien

cocinadas.

5. ¿Usted está acostumbrado a andar descalzo?:

En este estudio el 70% de los habitantes revelaron que acostumbran

a andar descalzos.

6. ¿Usted a veces realiza sus necesidades al aire libre

(defecación)?:

El 20% de las personas estudiadas manifestaron que a veces por

motivos de la distancia entre su trabajo y sus casas, estos realizan

sus necesidades biológicas en el campo.

28

7. ¿Usted realiza actividades agropecuarias?:

El 100% de los habitantes de la zona viven directa e indirectamente

de las labores agropecuarias en la zona estudiada y en zonas

aledañas. Además poseen nivel económico bajo y trabajan en

diferentes labores agropecuarias a medio tiempo.

8. ¿Sufre de alguna enfermedad o depresión inmunológica

como Diabetes, cáncer, baja de defensas u Otros?:

El 22% de las personas encuestadas declararon tener alguna

enfermedad inmunológica como diabetes, depresión, entre otras.

9. Área de localización de su vivienda

El 100% de los habitantes dijeron tener sus casas en el sector rural.

10. ¿Qué nivel de educación presenta?:

En el presente estudio los habitantes manifestaron los siguientes

porcentajes:

El 70% de los habitantes revelaron tener la primaria completa, un 15%

declararon no tener escolaridad y un 5% manifestaron que tenían

educación secundaria

11. Condiciones de la vivienda:

Las condiciones de las casas estudiadas fueron:

Cemento: 10%

Madera: 30%

Caña: 20%

29

Mixta: 40%

Además los habitantes de la zona cocinan sus alimentos con:

Gas: 60%

Leña: 40%

12. Uso de Pozo séptico:

El sitio estudiado no presentaba agua potable y los desperdicios

biológicos eran descartados al pozo séptico.

13. ¿Qué disponibilidad de agua de consumo posee?:

El agua que consume todos los habitantes proviene de pozo

profundo.

14. ¿Cuantos canes presenta?:

Las viviendas estudiadas presentaron entre 1 a 2 canes.

15. ¿Usted visita al veterinario? (cuantas veces al año):

Ninguno de los habitantes de la zona visita al veterinario.

16. ¿Usted ha vacunado a sus animales?:

Ningún habitante vacuna a sus animales.

30

17. ¿Usted ha desparasitado a sus animales?:

En este estudio los habitantes de la zona revelaron que no desparasitan a sus canes.

Análisis:

La Estrongiloidiasis es endémica en todos los países tropicales y

subtropicales de Latinoamérica, por lo que es ampliamente

extendida sobre todo en aquellos subdesarrollados, también es

catalogado por la OMS como una enfermedad desatendida. (Ruano,

2014)

Diversas publicaciones en los últimos años han reportado evidencia

serológica y antigénica de infección de este parasito en personas y

caninos en diversos países del continente.

La prevalencia de infección mundial de Strongyloides stercoralis

oscila desde el 1% y hasta el 48% en diversas regiones como:

Estados Unidos, entre el 0.6% al 3%; en Japón, del 1% al 10%; en

Somalia, el 2.9%; en Costa Rica, del 1.1% a 16.5%; Brasil, 15% a

82%; en el Congo, 26%; en el Zaire, 26% y Republica Africana

Central, 48%. (Grove D, 1994; Simson W. et al, 2000)

Países cercanos como Colombia se registra una prevalencia de

Strongyloides stercoralis del 4%; (Solis P, 2014) en Perú la tasa

de prevalencia global entre 1981 al 2010 es del 6,3 %. (Giraldo M.

2010) En este trabajo se obtuvo el 8, 33% que está entre los

parámetros de prevalencia de este helminto en Latinoamérica.

(Grove D, 1994; Simson W. et al, 2000)

En una investigación realizada durante el 2012 en caninos de la

ciudad de Cuenca, cuyo objetivo fue determinar la prevalencia de

Helmintos Gastrointestinales (Céstodos y Nemátodos); mediante las

técnicas de sedimentación espontánea en tubo y flotación de Parodi

31

Alcaraz. Se examinaron 382 muestras fecales, las cuales fueron

recolectadas de 15 parroquias urbanas de la ciudad; durante esta

investigación se determinó una prevalencia de nematodos del 4.19%,

en este estudio no se determinó S. estercoralis pero se detectó

Ancylostoma caninum, en un 3.66%. (Ramón G, 2012)

En el 2013 en un estudio realizado por Llaguno y colaboradores, en

el recinto “Buijo Histórico”, ubicado en el cantón Samborondón, se

determinó la presencia de S. stercoralis en 6 caninos de un total de

130 (0,46%) (LLaguno G, et al, 2013).

En el presente trabajo se obtuvo la evidencia antigénica y de

infección del S. stercoralis en la población canina de la comuna

“Limoncito” del cantón Chongón, en la provincia del Guayas, además

esta investigación fue transcendental para determinar un evento de

salud (brote) de importancia en salud animal y salud pública,

ocasionada por este verme.

La zona estudiada posee todas las condiciones para que se dé el

ciclo biológico de transmisión de la enfermedad, así mismo, presenta

factores de riesgo asociados con la transmisión de Estrongiloidiasis

y otras parasitosis como la Ancilostomiasis (Uncinaria) tanto en

animales como humanos.

Los resultados de este trabajo constituyen un buen paso, en los que

nos permitió conocer mejor la actividad de este geohelmintos de

importancia zoonótica y su interacción con nuestro ecosistema y

población, permitiendo a las autoridades de salud, fortalecer los

sistemas de vigilancia epidemiológica para beneficio del país.

32

V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

CONCLUSIONES

1. Se determinó la incidencia de Strongyloides stercoralis en

caninos de la comuna “Limoncito” de la parroquia Chongón-

Guayas en un 8,33%, por lo que se pudo determinar el

impacto en salud animal y el riesgo en salud pública; entre los

meses de agosto a diciembre del 2014.

2. Se Identificó la presencia de Strongyloides stercoralis en

heces de perros domésticos mediante los métodos de

sedimentación y Baerman modificado.

3. Se pudo relacionar entre la presencia de Strongyloides

stercoralis y las variables: raza, sexo y edad de los caninos.

4. También se pudo establecer una correlación de los casos

positivos detectados en los caninos con la información

recopilada en la encuesta a los residentes de la comuna, por

lo que se evidenció el alto riesgo que tienen los habitantes de

la zona de infectarse con S. stercoralis.

5. Los resultados obtenidos en este estudio sirvieron de valiosa

información para el sistema de vigilancia epidemiológica del

Ministerio de Salud Pública del Ecuador (MSP), Agrocalidad,

PROPAD y otras instituciones.

33

RECOMENDACIONES

1. Realizar estudios más amplios en otras zonas del país.

2. Efectuar una investigación más profunda acerca de la

enfermedad de Ancylostomiasis, de sus complicaciones y de

su tratamiento oportuno en nuestra población.

3. Comunicar a las autoridades de salud de los hallazgos de

este trabajo.

4. Difundir los resultados obtenidos a la comunidad médica,

científica y la sociedad en general.

5. Fomentar las campañas de educación, prevención, y control

de la enfermedad ocasionada por geohelmintos.

34

VI. RESUMEN/SUMMARY

La Estrongiloidiasis constituye un serio problema de salud animal y

de salud pública y está catalogada por la OMS como una de las

enfermedades desatendidas circulantes en Latinoamérica, es

producida por el verme denominado Strongyloides

stercoralis; son los reservorios de la enfermedad los gatos, caninos

y primates; y los hospederos finales son el canino y el humano, en

los que ocasiona en ellos signos y síntomas como: inflamación de la

piel, erupción cutánea (dermatitis), tos, bronconeumonía, diarrea o

estreñimiento, así como la presencia de sangre o mocos en las

heces. En el Ecuador esta enfermedad es infradiagnosticada; el

objetivo de esta investigación fue determinar la presencia de

Strongyloides stercoralis en caninos de la comuna “Limoncito” de

la parroquia Chongón – Guayas y el riesgo en salud pública; entre

los meses de agosto a diciembre del 2014, mediante un estudio

observacional, descriptivo y transversal. Las muestras fueron

analizadas mediante la técnica de sedimentación y fue confirmada

por el método de Baermann modificado, la misma que fue realizada

en el laboratorio de Microbiología de la Facultad de Medicina

Veterinaria y Zootecnia de la Universidad de Guayaquil. Los

resultados fueron: 130 animales censados, de los cuales 120 fueron

muestreados, pero 10 de los últimos presentó forma parasitaria

semejante al parásito, 5 de ellos presentaron síntomas de la

enfermedad, de los cuales 1 murió; registrándose una incidencia de

Estrongiloidiasis canina del 8,33%, por lo que este estudio sirvió de

gran aporte para determinar un evento de salud animal con alto

riesgo a que se dé casos de la enfermedad en humanos, siendo

necesario realizar estudios más amplios en sus alrededores y otras

zonas del país con el fin de disminuir la prevalencia de helmintiasis

en el Ecuador.

35

SUMMARY

The strongyloidiasis a serious problem of animal health and public

health and is listed by the WHO as a circulating neglected diseases

in Latin America, is produced by the worm called Strongyloides

stercoralis; are there servoirs of the disease cats, dogs and primates;

and end hosts are canine and human, which brings them signs and

symptoms such as skin inflammation, rash (dermatitis), cough,

bronchial neumonia, diarrhea or constipation, and the presence of

blood or mucus in feces. In Ecuador this disease is under diagnosed;

The objective of this research was to determine the presence of

Strongyloides stercoralis in canine commune "Limoncito" of the

parish Chongón - Guayas and public health risk; between the months

of August to December 2014, anobservational, descriptive, cross-

sectional study, conducted in the district of "Limoncito";

Sampleswereanalyzedbydirectcoproparasitariasedimentationtechniq

ue and was confirmed by the modified Baermann method, the same

as was done in the laboratory of Microbiology, Faculty of Veterinary

Medicine and Animal Science, University of Guayaquil. The results

were: 130 animals counted, of which 120 were sampled, but 10 of

the last presented parasitically like the parasite, 5 of them showed

symptoms of the disease, of which 1 died; recorded an incidence of

canine strongyloidiasis of 8.33%, so this study served as a great

contribution to determine an animal heal the vent at high risk to

disease cases is given in humans, requiring larger studies in their

and other areas around the country in order to reduce the prevalence

of helminths in Ecuador.

36

VII. BIBLIOGRAFÍA

1. Romero Cabello R. Microbiología y Parasitología. (2007). 3ra.

Ed. México D.F: Panamericana, 1575-1582

2. Dillard K. Saari S. Anttila M. (2007) Strongyloidesstercolaris

infection in a finnish Kennel. Acta VetScand, 49 (1). doi:

2225404. Recuperado de: htpp://www.ncbi.nlm.nih.gov/.

3. Venfido. (2011). Estrongiloidasis en Perros. México.

Recuperado de: www.venfido.com.mx/

4. Hernández F. (2000). Hiperinfecciones por

Strongyloidesstercoralis, tratamiento con corticosteroides y su

efecto sobre ecdisis del parasito. Rev. Costarric.

Cienc. Med, 21 (1). Recuperado de:

htpp://www.scielo.sa.cr/scielo.php?

5. World Health Organization. (2011). Strongyloidiasis.

Recuperado de: www.who.int/neglected/diseases/

6. Subias G., et al. (2005). Hiperinfección por

Strongyloidesstercoralis en un paciente con síndrome de

inmunodeficiencia adquirida. An. Med. Interna (Madrid); 22 (3),

doi: 10.4321.

7. World Health Organization (WHO). (2014). Neglected Tropical

Diseases: Frequently asked questions. Recuperado de:

www.who.int/topics/tropical_diseases/ga/faq/es

8. Figuera L., Ramirez E., Merchan E. (2002).

Strongyloidesstercolaris: Prevalence and diagnosis evaluation

using four coproparasitologic methods. Revista Soc. Ven

Microbiologìa 22 (2). Recuperado de:

http://www.scielo.org.ve/scielo.php?pid=S1315

37

9. Grove D. (1994). Strongyloides: a Conun-drum for

gastroienterogists. Gut, 35(1), 437-440.

10. Simpson W. et al. (2000). Strongyloidesstercolaris infection.

South MedJournal, 87(1), 821-825.

11. Giraldo M., Garcia N., Castaño J. (2005). Prevalencia de

helmintos intestinales en caninos del departamento de

Quindio. Colombia. Rev. Biomedica, 25 (3). Recuperado de:

Http://www.scielo.org.com/scielo.php?pid=S0120-

12. Solis P. (2014). Prevalencia y factores asociados a la

zoonosis parasitaria entre el personal y canes en la división

de Policia Canina- PNP.

13. Winn W. Allen S. et al. (2008). Koneman. Diagnostico

microbiológico. Estrongiloidiosis y Strongiloydesstercolaris-

6ta ed. Madrid: panamericana, 1227

14. Ruano A. (2014). Programa Nacional para el manejo

multidiciplinario de las parasitosis desatendidas en el Ecuador

(PROPAD). INSPI. Recuperado de:

http://www.Inspi.gob.ec/index.php/

15. Dirigencia Barrial de la Comuna “Limoncito”. (2014).

Información general de la comuna “Limoncito”.

16. Mirkin G. (2013). Introduccion a la ParasitologiaMedica.

Depart. De Microb, Parasit e Inmun. Med. Fac. de Medicina

de la Univ. De Buenos Aires. Recuperado de:

http:/www.fmed.uba.ar/depto/microbiología/teóricas/10.pdF

17. Uribarren T. Estrongiloidiasis. (2014). Departamento de

Microbiología y Parasitología de la UNAM. Recuperado de:

www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia.

38

18. Revista Chilena de infectología. (2013).

Strongyloidesstercoralis. Rev. chil. Infect, 30 (5). Recuperado

de: http:www.scielo.cl/scielo.php.

19. Ruano A. (2008). Óxido nítrico como modulador de la

strongiloidosis: Tesis Doctoral de la Universidad de

Salamanca, España.

20. World Gastroenterology Organization Practice Guidelines

(WGO).(2014). Manejo de Estrongyloidiasis. Recuperado de:

http://www.worldgastroenterology.org/assets/downloads/es/pdf

/guidelines/manejo_de_la_estrongiloidiasis.pdf

21. Center for Disease Control and Prevention (CDC). (2014)

Strongyloidiasis. Tomado el 10 de Agosto del 2014.

Recuperado de: http//www.cdc.gov/dpdx/strongyloidiasis.

22. Carrada T. (2008). Strongyloidesstercoralis.Ciclo vital, cuadros

clínicos, epidemiologia, patología y terapéutica. Rev. Mex.

Patol. Clin, 55 (2), 88-110.

23. Gorrita R. (2009). Manifestaciones clínicas y tratamiento del

parasitismo intestinal. Rev de Ciencias Médicas de la Habana.

15 (1). Tomado el 11 de Agosto del 2014. Recuperado de:

http://www.cpicmha.sld.cu/hab/vol15_1_09hab19109.html

24. Regueiro R, Larrea C. (2006) Inmunología básica y patología

del sistema inmune; segunda Edición. Editorial Médica

PANAMERICANA. Madrid-España, 198.

25. Abbas A. et al. (2012). Inmunología celular y molecular. 7

maed: ELSEVIER. EEUU.

26. Dwight D. Bowman. (2011). Georgis’ Parasitology fppr

Veterinarians. 9na. Ed: ELSEVIER, 193

39

27. Escalante J. Gabastou J., (2000) Atlas de coprocultivo.

Manuel de procedimiento e ilustraciones. publicaciones.

PROCED.

28. Madigan M., Martinko J., Brock. (2005). Biología de los

Microorganismos. 10 ed. PersonPractice Hall.

29. Cooper M. (2000). La Célula. Recopilación, mantenimiento y

reorganización del ADN genómico 2da edición editorial

MARBAN. Madrid – España: Cap. 5, 211.

30. Cuadro J. (2014). Estrongyloidiasis. Recuperado de:

http://www.vacunasyviajes.es/vacunasyviajes/Estrongiloidiasis

_Atlas.html.

31. Directorio cartográfico del Ecuador. (2014). Mapa de Chongón,

Guayaquil, Guayaquil. 2014. Recuperado de:

http://mapasamerica.dices.net/ecuador/mapa.php?nombre=C

hongon&id=4856.

32. Marcos L. et al. (2010). Distribution of prevalence of

Strongyloidesstercoralis in Peru (1981-2010): an exploratory

study. Rev. Per. Parasit. 18 (2).

33. Giraldo M. (2010). Prevalencia de helmintos intestinales en

caninos del departamento de Quindío. Rev. Inst. Nac. de Sal.

Co, 25 (3).

34. Ramón G (2012). Prevalencia de Helmintos Gastrointestinales

(Céstodos y Nemátodos) en caninos de la Ciudad de Cuenca.

Univ. De Cuenca.

35. Llaguno G. et al. (2013). Strongyloidesstercoralis en la

población del recinto Buijo Histórico. Samborondón durante el

periodo Septiembre-Octubre del 2 013.

40

VIII. ANEXOS

ANEXO 1. CROQUIS DE LA COMUNA “LIMONCITO” DE

LA PARROQUIA CHONGÓN DE LA PROVINCIA DEL

GUAYAS

41

ANEXO 2. FORMULARIO PARA CENSO DE CANINOS DEL

SECTOR LIMONCITO

STRONGYLOIDES stercoralis EN CANINOS DE LA

COMUNA “LIMONCITO” DE LA PARROQUIA CHONGÓN-

GUAYAS; 2014

Antecedentes del canino

Área:

No……………………………………Formulario:…………………

Dirección:……………………………………………………………

Representante:…………………………………Código:…………

Sexo:……………………...………Edad:…………………………

Raza:…………………………………………………………………

Enfermedad:………………………………………………………...

Presencia de síntomas:……………………………………………

Tipo de Alimentación:………………………………………………

De donde proviene el suministro de agua del animal:…………

……………………………… Responsable

Fecha:……………………….......

42

ANEXO3. FORMATO DE CONSENTIMIENTO y

AUTORIZACIÓN PARA LA TOMA DE MUESTRA

STRONGYLOIDES stercoralis EN CANINOS DE LA

COMUNA “LIMONCITO” DE LA PARROQUIA CHONGÓN-

GUAYAS; 2014

Área: Número:…………………. Yo:……………………………………………………………….hab

itante de la comuna “Limoncito” propietario del animal

correspondiente a la siguiente ficha:

Nombre:………………………..

Edad:…………………………...

Sexo:………………………….....Color:…………………….

Especie:…………………………Raza………………………

Doy consentimiento, a la toma de muestra de heces a mi

mascota para el estudio antes mencionado.

…………………………………..

Propietario

Fecha:…………………………………………………… Lugar:…………………………………………………….

43

ANEXO 4. ENCUESTA A LOS MORADORES DEL SECTOR

LIMONCITO.

STRONGYLOIDES stercoralis EN CANINOS DE LA

COMUNA “LIMONCITO” DE LA PARROQUIA CHONGÓN-

GUAYAS; 2014

Dueño o representante del animal:

18. Edad de la persona:

19. Sexo:

20. Raza:

21. Cuantas personas viven en su casa:

22. Usted se lava las manos antes de comer:

23. Usted consume alimentos del suelo:

24. Sus alimentos son bien preparados y cocidos:

25. Usted está acostumbrado a andar descalzo:

26. Usted a veces realiza sus necesidades al aire libre

(defecación):

27. Usted realiza actividades agrícolas:

44

28. Sufre de alguna enfermedad o depresión inmunológica

como Diabetes, cáncer, baja de defensas u Otros:

29. Área de localización de su vivienda

Urbana:

Rural:

30. Qué nivel de educación presenta:

Primaria:

Primaria incompleta:

Secundaria:

Secundaria incompleta:

Superior:

Superior incompleta:

Sin escolaridad:

31. Condiciones de la vivienda:

Cemento:

Madera:

Caña:

Mixta:

Otros:

Los habitantes de la zona cocinan sus alimentos con:

Gas:

Leña:

32. Cuenta con:

Alcantarillado:

Pozo séptico:

Otros:

45

33. Qué disponibilidad de agua de consumo posee:

Agua potable:SI NO Hervida SI NO

Pozo:

Otros:

34. El jefe de casa que tipo de trabajo posee:

Trabaja en el sector público:

Trabaja en el sector privado:

Realiza actividades comerciales:

Realiza actividades independientes:

Cual/Cuales:

35. Presenta:

Trabajo a tiempo completo:

Trabajo a medio tiempo:

No presenta trabajo:

Otros:

36. Nivel socio económico:

Alto:

Medio:

Bajo:

37. Cuantos canes presenta:

38. Usted visita al veterinario (cuantas veces al año):

39. Usted ha vacunado a sus animales:

40. Usted ha desparasitado a sus animales:

41. Sus animales han presentado síntomas de enfermedad

(cuales):

46

ANEXO 5. PROCEDIMIENTO PARA OBTENCIÓN DE LA TOMA

DE MUESTRA Y ANALISIS EN EL LABORATORIO DE LAS

HECES EN CANINOS A ESTUDIAR

Durante el trabajo de campo para la obtención de la muestra en

casos de que el dueño del animal no pudo recoger la muestra, se

realizó los siguientes pasos:

1. Solicitamos el permiso al dueño del animal.

2. Sensibilizamos al animal, para luego colocarle el bozal.

3. Relajamos el esfínter anal y poco a poco introducimos el dedo

meñique para obtener la muestra.

4. Abrimos el frasco estéril y depositamos la muestra.

5. Cerramos el frasco y lo rotulamos.

6. Colocamos el frasco rotulado en la caja térmica.

Una vez tomada las muestras de heces (dadas directamente por el

dueño del animal o tomamos por el investigador, fueron

transportadas al laboratorio para su análisis por el método de

sedimentación con la prueba de Paratest y el método de Baerman

modificado. Las muestras con presencia de formas parasitarias de S.

stercoralis serán fotografiadas con una cámara digital.

47

ANEXO 6. FORMA PARASITARIA ENCONTRADA DURANTE EL

ESTUDIO.

48

ANEXO 7. SITIO DE IMPACTO EPIDEMIOLÓGICO.

49

ANEXO 8. FOTOS TOMADAS DURANTE EL ESTUDIO DE

INCIDENCIA DE Strongyloides stercoralis EN CANINOS

DE LA COMUNA “LIMONCITO” DE LA PARROQUIA

CHONGÓN-GUAYAS Y SU IMPACTO EN SALUD PÚBLICA.

“Entrevistando al Presidente de la comuna”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

“Socializando con la Comunidad el Limoncito”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

50

“Tomando la muestra de heces a las mascotas”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

“Recogiendo las muestras de heces para llevarlas al

laboratorio de la Universidad”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

51

“Revisando las muestras tomadas en la Comuna

Limoncito (Laboratorio de la Universidad)”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

“Revisando las muestras en el Microscopio”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

52

“Colocando las muestras en baño María”

Estrella-Crespo, M. 2014 Trabajo De Titulación

53

IX. GLOSARIO:

Anticuerpo: Glicoproteína altamente especifica producidas

por el organismo en respuesta a una sustancia extraña, como

una bacteria o virus, y con capacidad de unirse a esa

sustancia

Antígeno: Sustancia capas de desencadenas la formación de

anticuerpos.

Aguzado: Referente o que termina en algo agudo o punzante

Cosmopolita: Presente o que es común en todos los países.

Complejo mayor de Histocompatibilidad (MHC): Conjunto

de genes que codifican las moléculas de unión.

Censo: Enumeración de una población entera, habitualmente

incluye el registro de datos tales como la edad, el sexo, grupo

étnico entre otros.

ELISA: (Enzyme-linkedInmunoSorbentAssay, ensayo por

inmunoabsorción ligado a enzimas). Es un método por el cual

se precisa la cuantificación de producto mediantes

anticuerpos.

Facultativos: Aquel parasito que tiene un ciclo de vida libre o

parasitario.

Hospedero: Organismo sobre o en el cual un microorganismo

vive, crece y se multiplica.

54

Parásito: Microorganismo eucariota que vive a expensas de

un determinado organismo causándole algún tipo de daño.

Partenogenética: Parásito cuya reproducción es basado en

el desarrollo de células sexuales femeninas no fecundadas.

Strongyloides stercoralis: Helminto – parasito causante de

diarreas en animales y humanos.

Estrongiloidiasis: Enfermedad causada por el

microorganismo Strongyloides stercoralis.