Separación de células y fraccionamiento subcelular

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Separación de células y raccionamiento subcelul

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Separación de células y fraccionamiento subcelular. Métodos físicos de SEPARACION DE CELULAS * Necesarios para estudiar : - Tejidos con diferentes tipos celulares - Células con diferente funcionalidad/ actividad biológica - Subpoblaciones celulares con diferentes marcadores moleculares - PowerPoint PPT Presentation

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Separación de célulasy

fraccionamiento subcelular

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Métodos físicos de SEPARACION DE CELULAS

* Necesarios para estudiar: - Tejidos con diferentes tipos celulares- Células con diferente funcionalidad/ actividad biológica- Subpoblaciones celulares con diferentes marcadores moleculares- Alternativa a la clonación: + rápidos, + rendimiento, (- pureza)

* Los más empleados explotan diferencias en:

– Tamaño celular

– Densidad

– Carga/Química superficial

– Dispersión de la luz (light scatter)

– Emisión de Fluorescencia

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b

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Beckman J2-21M, centrífuga equipada con un rotor y sistema de elutriación

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Rotor de elutriación (Beckman)

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Cámara de separación del rotor de elutriación

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Apariencia de las células aisladas de una fraccion de elutriación de células sanguíneas de la médula ósea humana cultivadas durante 8 días (a, b). Las células predominantes son de tipo fibroblastoide con un núcleo central, citoplasma difuso y pseudopodos aderentes y células grandes, redondas con un estrecho citoplasma y un núcleo central redondo. (tinción con hematoxilina). (a) x200; (b) x400. (c) Apariencia de las células aisladas de la misma fracción de elutriación y cultivadas en DMEM+20% FCS suplementado con dexametasona, ácido ascorbico y -glicerofosfato durante 8 días. En esas condiciones, las celulas presentan una morfologia redondeada o cuboidal con un núcleo central, x200.

Separacion de células por elutriación

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Para ver esta película, debedisponer de QuickTime™ y de

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Separación de células sanguíneas con Ficoll-Hypaque

Centrifugación

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Separación inmunomagnética

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Selecciónpositiva

Selecciónnegativa

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Absorción de luz por un e- y la subsiguienteemisión de E como calor y fluorescencia

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Esquema de un Citómetro de Flujo (FACS)

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Funcionamiento de la boquilla vibradora de un citómetro de flujo

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Green fluorescence

Representación de los datos en citometría de flujo

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Esquema de un Citómetrode Flujo clasificador (“sorter”)

Puede seleccionar 1/1000células y clasificar miles/s

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Microdisección con láser

Sperm Tail Removal Biopsy at the Single Cell Level

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Fraccionamiento de componentes subcelulares

• Diseñados inicialmente para comprender el papel bioquímico de cada orgánulo en la célula

• La lisis (rotura) celular se suele realizar por: Potter, homogeneizador mecánico de tejidos, sonicación, cavitación, soluciones hipotónicas

• La separación de los componentes subcelulares se realiza generalmente por centrifugación

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Homogeneizaciónde la muestra

Centrífuga de alta velocidad

Potter

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1000 x g, 10 min

20.000 x g, 20 min

80.000 x g, 1 h (ultracentrífuga)

150.000 x g, 3 h

Fraccionamiento subcelular por centrifugación diferencial

citosol

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Comparación dela sedimentaciónpor velocidad (A)y por equilibriode sedimentación(isopícnica, B)

5-20%

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Purificación de orgánulos por centrifugación en gradiente de densidad

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Núcleos Microsomas (RER)

Peroxisomas

Control de calidad del fraccionamiento: TEM