Reporte Microbiologico de Agua

7/23/2019 Reporte Microbiologico de Agua

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M I C R O B I O L O G Í A A M B I E N T A L U T L Página 1/16

ÁREA DE SUSTENTABILIDAD PARA EL DESARROLLO

PROGRAMA ACADÉMICO DE QUÍMICA

ESPECIALIDAD TECNOLOGIA AMBIENTAL

GRUPO

QU-301

MATERIA

MICROBIOLOGIA AMBIENTAL

TITULO

AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE MICROORGANISMOS

DE LA MATRIZ AMBIENTAL: _____AGUA______

ASESORA

Dr. ROSA RICO MATA

DATOS DE IDENTIFICACIÓN DE LOS ANALISTAS

Fecha de inicio del análisis: Viernes 03-Julio-2015

Fecha de término: Viernes 10-Julio-2015Nombre Cargo

TSU Becerra Calvillo Rubén Isaías Responsable

TSU Martínez Sarabia Diana Aurora del Rocío Administrador

TSU González Díaz José Luis Laboratorista 1

TSU Becerra Calvillo Rubén Isaías Laboratorista 2

TSU Martínez Sarabia Diana Aurora del Rocío Laboratorista 3

GENERACIÓN: 2014-2016




DATOS DEL SITIO EN ESTUDIO

1.- Breve descripción del estatus ambiental del sitio de estudio:Planta de tratamiento de aguas residuales, que es perteneciente a la Universidad Tecnológica de León.

SITIO DEMUESTREO

Nombre Ubicación/coordenadas GPS

Imagen de mapa satelital

Planta de tratamiento deaguas residuales

perteneciente a laUniversidad Tecnológica

de León

101° 34' 56.81" W,21° 3' 46.76" N

2. Evidencia fotográfica del sitioFecha: 06-07-2015 Hora: 2:15 Fecha: 06-07-2015 Hora: 2:20

DATOS DE LAS MUESTRAS A ANALIZAR

1. Identificación

Matriz ambiental: Agua Hora de toma de muestra: 2:10 p.m. Hora de siembra: 2:15 p.m.

Punto de Muestreo (ubicación /coordenadas GPS):

101° 34' 56.81" W, 21° 3' 46.76" N

Tiempo de exposición (aplica solo para muestra de aire)

Nombre del/ los analistas que tomaron la muestra:TSU Martínez Sarabia Diana Aurora del Rocío

Nombre del/ los analistas que sembró la muestra:TSU Becerra Calvillo Rubén Isaías

2.Parámetros Fisicoquímicos

Color: Hay una mirada oscura al agua, además de un coloroscuro, distinto.

Temperatura (° C) ambiental: Indeterminado pH:Indeterminado

Olor: El agua presentaba un olor a agua residual muypenetrante.

Describir condiciones climatológicas: Se presentaba un díadespejado, soleado con condiciones para el muestreo

3. Evidencia fotográfica del sitio de toma de muestra

Punto

de

toma




AISLAMIENTO DE MICROORGANISMOS

1. Justificación del proceso para la identificación bacterianaUna de las tareas fundamentales del laboratorio de microbiología es la aplicación de una metodología que nos permita laidentificación de bacterias implicadas en procesos que están asociados a infecciones o de aquellos que tienen relación conel hombre, también en la rama ambiental la identificación de bacterias nos sirve para tratar un patógeno de animales yplantas. Recientemente este tipo de investigaciones se han incrementado en el área agrícola, incluyendo plaguicidas

microbianos y actividades de composteo. Asimismo, en zonas urbanas se ha registrado la introducción demicroorganismos a la atmósfera asociada a la turbulencia vehicular y a la gran densidad poblacional, lo que ha dado lugara un campo de estudio específico. La mayoría de las bacterias que entran a la atmósfera provienen de fuentes naturalescomo la vegetación, el suelo y los cuerpos de agua, y en menor proporción de las actividades antropogénicas; susupervivencia y distribución están moduladas por factores biológicos.

2. Dos medios de siembra (Nombre y Composición)

Mac Conkey Agar

RECETAPeptona 17.0

Pluripeptona 3.0Lactosa 10.0Mezcla de sales biliares 1.5Cloruro de Sodio 5.0Agar 13.5Rojo Neutro 0.03Cristal Violeta 0.001

Levine EMB Agar

RECETAPeptona 10.0

Lactosa 10.0Fosfato dipotásico 2.0Agar 15.0Eosina 0.4Azul de metileno 0.065

Morfología Colonial (Medio 1) Morfología Colonial (Medio 2)

Descripción

Escherichia coli . Colonias de color de rosa a rojo (puedenestar rodeadas de una zona con precipitación de bilis).Enterobacter, Klebsiella. Colonias mucoides de color rosa.Proteus. Colonias incoloras, inhibición de agrupamientodinámico alrededor de colonias aisladas.Salmonella, Shigella Colonias incoloras. Color del medio:Anaranjado a ámbar.Pseudomonas. Colonias irregulares, de incoloras a color rosa.

Descripción

Escherichia coli. Negro azuladas con brillo metálico.Klebsiella pneumoniae. Mucosas confluentes, con centrooscuro.Proteus mirabilis. Incoloras.Shigella flexneri. Incoloras.Enterococcus Faecalis. Incoloras puntiformes.

Imagen Imagen




3. Dos Medios selectivos de resiembra (Nombre y Composición)Agar desoxicolatocitrato (ADC)

Infusión de carne de porcino 330,0 gProteosa peptona 10,0 gLactosa 10,0 gCitrato de sodio 20,0 g

Citrato amónico férrico 2,0 gDesoxicolato de sodio 5,0 gAgar 13,5 gRojo neutro 20,0 mg

Agar entérico Hektoen (HE)Proteosa peptona 12.0Extracto de levadura 3.0Sales biliares 9.0Lactosa 12.0Sacarosa 12.0

Salicina 2.0Cloruro de sodio 5.0Tiosulfato de sodio5.0Citrato de hierro y amonio1.5Agar 14.0Azul de bromotimol0.065Fucsina acida 0.1

Morfología Colonial (Medio 1) Morfología Colonial (Medio 2)

DescripciónColonias de Salmonella y Shigella: se ven

transparentes (no fermentan la lactosa).Coliformes: (E. coli, Klebsiella, Enterobacter ) pequeñas,muy inhibidas, pero rosa/rojo, por la fermentación dela lactosa.

DescripciónColonias de Salmonella: incoloras o verdes, del color del

medio, no fermentan la lactosa y con punto central negro(producen sulfuro).

Colonias de Shigella: incoloras o verdes, del color delmedio, sin punto central negro.

Coliformes: (E. coli, Klebsiella, Enterobacter ) pequeñas,muy inhibidas, y amarillas, (fermentación de la lactosa).Gran positivos no crecen.

Imagen Imagen




4. Procedimiento de Aislamiento(describir detalladamente la cantidad de materiales y los pasos a seguir)

Materiales/Reactivos/Medios de cultivo/ Equipo a utilizar

1 Charola de pesado Agar Mac Conkey Autoclave1 Espátula Incubadora1 Matraz Erlenmeyer de 250ml.1 Probeta de 50ml.Agua destilada4 Cajas Petri1 Mechero Bunsen1 Aza de platinoTapón Algodón-gasa

Preparación de medios de cultivo:

Pesar 1g. de agar Mac Conkey en polvo y disolver con 20 ml. de agua destilada.

En un Matraz Erlenmeyer de 250ml. Dejar reposar por 5min. Mezclar perfectamente

Calentar y hervir durante 1 o 2 minutos hasta disolver completamente.

Levar a la autoclave y esterilizar por 15 minutos a 121°C.

Dejar enfriar a 45°C.

Levar a la campana de flujo laminar

Con la debida precaución vaciar el agar a la caja Petri

Dejar solidificar el medio

Pasos para el aislamiento del microorganismos (siembra, selección de la colonia y resiembra):

Para la siembra se tomó muestra de la planta de tratamiento de la Universidad Tecnológica de León. Con un asa de platino estéril, tomar un poco de muestra y realizar un estriado en la caja Petri con agar

Mac Conkey.

Incubar a 35°C por 24 horas.

Transcurridas las 24 horas, observar el crecimiento colonial, seleccionar una colonia aislada pararesembrarla en otra caja Petri con agar Mac Conkey.

La resiembra se realiza tomando con un asa de platino estéril, una de las colonias aisladas.

Posterior mente hacer un estriado por desgaste en la otra caja Petri con agar Mac Conkey.

El estriado por desgaste consiste en dividir la caja Petri en cuatro cuadrantes.

Con un asa de platino estéril se toma una colonia aislada y se realizar el estriado normal en el primercuadrante.

Posteriormente se flamea el asa y sin tomar más muestra se realiza el estriado en el segundocuadrante.

Y después en el tercer cuadrante como se muestra en la siguiente figura.




5. Esquema del Perfil bioquímico (metabólico )para la identificación del microorganismo seleccionado

Identificación: Morfología colonial

Prueba de Indol

positivo Negativo

Prueba de fermentación de azucares

Positivo para sacarosa, glucosa y lactosa Negativo

Citrato de Simmons

Positivo Negativo

Motilidad

Negativo positivo

Tinción Gram

Negativa Positiva




ESULTADOS DEL AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN

1. EVIDENCIA FOTOGRAFICA DEL CULTIVO DE LA MUESTRA (SIEMBRA)

2. MORFOLOGÍA COLONIAL OBSERVADATipo de colonia 1: Descripción

Colonias grandes planoconvexas, mucoides, brillantes,forma irregular, de color rosado violeta.

FOTO 1

Tipo de colonia 1: Descripción

Colonia redondeada con bordes redondos de colorrosado claro, mucoide y con un halo color violeta.

FOTO 2




3. EVIDENCIA FOTOGRAFICA DEL CULTIVO PURO ( RESIEMBRA)FOTO 1

Agar MacConkeyFOTO 2

4. MORFOLOGIA COLONIAL OBSERVADA

Descripción

Colonias medianas, circulares, convexas, decoloración violeta o rosa fucsia con los bordesredondeados y un cambio de color en el medio,alrededor de las colonias.

FOTO 1

FOTO 2

FOTO 3




5. EVIDENCIA FOTOGRÁFICA DEL RESULTADO DEL PERFIL BIOQUÍMICONombre de la

pruebaMedio de cultivo

utilizadoResultado obtenido(positivo/negativo) Evidencia fotográfica

1.-Prueba deTinción Gram

N/A Bacilos Gram

negativosNegativos(-)

Fundamento de la prueba

La pared celular de las bacterias Gram positivas posee una gruesa capa de peptidoglucano, además de dosclases de ácidos teicoicos: Anclado en la cara interna de la pared celular y unido a la membrana plasmática, seencuentra el ácido lipoteicoico, y más en la superficie, el ácido teicoico que está anclado solamente enel peptidoglucano por el contrario, la capa de peptidoglucano de las Gram negativas es delgada, y se encuentraunida a una segunda membrana plasmática exterior (de composición distinta a la interna) por medio delipoproteínas. Tiene una capa delgada de peptidoglicano unida a una membrana exterior por lipoproteínas. Lamembrana exterior está hecha de proteína, fosfolípido y lipopolisacárido. Por lo tanto, ambos tipos de bacteriasse tiñen diferencialmente debido a estas diferencias constitutivas de su pared. La clave es el peptidoglicano, yaque es el material que confiere su rigidez a la pared celular bacteriana, y las Gram positivas lo poseen en muchamayor proporción que las Gram negativas.

2.- Prueba deIndol

Medio SIM Positivo (+)


La prueba de indol es un ensayo cualitativo utilizado para diferenciar microorganismos en base a la capacidadpara separar indol a partir de L-triptofano. Es necesario el crecimiento previo del microorganismo en estudio enmedios de cultivo con alto contenido de L-triptofano, como ser los medios semisólidos SIM Medio. Al agregar elreactivo de Ehrlich al medio de cultivo, el indol generado se combina con el grupo aldehído del p-dimetilamino

benzaldehido del reactivo incorporado y se forma un complejo de color rojo.Las enzimas triptofanasas oxidan el triptófano para formar tres metabolitos: indol, metil indol y ácidoindolacético. Los reactivos de Erhlich o Kovacs contienen DMABA que reacciona con el indol producido formadoun compuesto quinónico color violeta, que se observa por la aparición de un anillo en la superficie del medio.

L-triptófano triptofanasa H2O Desaminación indol + acido pirúvico + Amoniaco




3.- Prueba deCitrato de Simmons

Medio Citrato deSimmons

Negativo (-)


Generalmente los microorganismos que emplean el citrato como única fuente de carbono, utilizan sales deamonio como única fuente de nitrógeno. Esta prueba nos permite diferenciar un grupo de bacterias que son

capaces de crecer con citrato como única fuente de carbono y sales amónicas inorgánicas como única fuentede nitrógeno, provocando la alcalinización del medio. El medio a utilizar es agar Citrato de Simmons, quecontiene citrato de sodio, fosfato de amonio y azul de bromo timol como indicador de pH.

Sólo las bacterias capaces de metabolizar el citrato podrán multiplicarse en este medio y liberarán ionesamonio lo que, junto con el metabolismo del citrato, generará una fuerte gasificación del medio que seráaparente por un cambio de color del mismo de verde a azul.

CITRATO OXALACETATO + ACETATO

OXALACETATO PIRUVATO + CO

2 PIRUVATO ACETATO + LACTATO + CO

Los ácidos orgánicos son posteriormente utilizados dando como producto final carbonatos y bicarbonatosalcalinos. El pH alcalino así logrado hace que el indicador de pH en el medio, el azul de bromotimol vire de sucolor verde original a un azul intenso.




4.- Prueba desulfuro

Medio SIM NEGATIVO (-)


El triptófano es un aminoácido constituyente de muchas peptonas, y particularmente de la tripteína, quepuede ser oxidado por algunas bacterias para formar indol. En el proceso interviene un conjunto de enzimasllamadas triptofanasa. El indol producido se combina con el aldehido del reactivo de Kovac´s o de Erlich, paraoriginar un compuesto de color rojo. Las cepas móviles pueden apreciarse en este medio, por la turbidez queproducen alrededor de la punción de siembra, mientras que aquellas cepas productoras de sulfhídrico sedistinguen por la formación de un precipitado negro de sulfuro de hierro a partir del tiosulfato siempre que elmedio se mantenga a un pH mayor a 7.2.

Bacteria (medio ácido) + tiosulfato de sodio gas SH2

H2S+ iones férricos sulfuro ferroso (pp. negro)

5.- Prueba demotilidad

Medio SIM Positivo (+)


Este medio como su nombre lo indica sirve para observar la movilidad, la producción de indol ydescarboxilación de la ornitina. La movilidad se detectará por la presencia de turbidez alrededor del punto deinoculación. El indol se formará si la bacteria tiene la capacidad de producir la enzima triptofanasa quedesdoblará el aminoácido triptófano en indol, ácido pirúvico y amonio. El indol es incoloro pero al reaccionarcon el reactivo de Kovacs (p-dimetil-aminobenzaldehido) que se adiciona después de que creció la bacteria,dará un color rojo violeta.




6.- Prueba defermentación delactosa

Agar TSI Negativos (-)


Los microorganismos que la fermentan rápidamente poseen 2 enzimas: b-galactósido permeasa, la cual estálocalizada en membrana celular y está involucrada en el transporte de la lactosa, y la b-D-galactosidasa, que esintracelular y está involucrada en la hidrólisis dela lactosa agalactosa y glucosa.Los microorganismos fermentadores lentos de lactosa, son deficientes en b-galactósido permeasa pero no enb-D-galactosidasa, y los microorganismos no fermentadores no poseen ninguna de las 2 enzimas. El cual tienela característica entrar rápidamente al interior de la célula bacteriana, sin la necesidad de utilizar la b-

galactósido permeasa, y allí es metabolizado por la b-D-galactosidasa, liberándose o-nitro-fenol, compuestode color amarillo.

Lactosa glucosa + galactosa

7.-Prueba defermentación de

glucosa

Agar TSI Negativa (-)


La glucosa oxidasa (GOD) cataliza la oxidación de glucosa a ácido glucónico. El peróxido de hidrógeno (H2O2),producido se detecta mediante un aceptor cromogénico de oxígeno, fenol-ampirona en presencia deperoxidasa (POD):D-Glucosa + O2 + H2O ⎯⎯⎯⎯→ Ácido glucónico + H2O2 H2O2 + Fenol + Ampirona ⎯⎯⎯⎯→ Quinona + H2OLa intensidad del color formado es proporcional a la concentración de glucosa presente en la muestra.




8.-Prueba defermentación desacarosa

Agar TSI Negativos(-)


La lactosa, sacarosa y glucosa son los hidratos de carbono fermentables. El tiosulfato de sodio es el sustratonecesario para la producción de ácido sulfhídrico, el sulfato de hierro y amonio, es la fuente de iones Fe3+ ,los cuales se combinan con el ácido sulfhídrico y producen sulfuro de hierro, de color negro. El rojo de fenol esel indicador de pH, y el cloruro de sodio mantiene el balance osmótico.La sacarosa es un disacárido que no posee carbonos anoméricos libres por lo que carece de poder reductor y

la reacción con el licor de Fehling es negativa. Sin embargo, en presencia de HCl y en caliente, la sacarosa sehidroliza, es decir, incorpora una molécula de agua y se descompone en los monosacáridos que la forman,glucosa y fructosa, que sí son reductores. La prueba de que se ha verificado la hidrólisis se realiza con el licorde Fehling y, si el resultado es positivo, aparecerá un precipitado rojo. Si el resultado es negativo, la hidrólisisno se ha realizado correctamente y si en el resultado final aparece una coloración verde en el tubo de ensayose debe a una hidrólisis parcial de la sacarosa.Por fermentación de azúcares, se producen ácidos, que se detectan por medio del indicador rojo de fenol, elcual vira al color amarillo en medio ácido. El tiosulfato de sodio se reduce a sulfuro de hidrógeno el quereacciona luego con una sal de hierro proporcionando el típico sulfuro de hierro de color negro.

9.- Prueba deVoges Proskauer

Medio: MR-VP Negativo (-)


Algunos microorganismos producen acetoína o acetil metil carbinol por descarboxilación de dos moléculas deácido pirúvico (producto final de la glucólisis). La acetoína es un producto intermedio de la fermentaciónbutilén-glicólica, que conduce a la formación de 2, 3 butanodiol. Tanto la acetoína como el 2,3 butanodiol son

productos neutros de la fermentación de la glucosa que llevan el pH del medio a un valor aproximado de 6 omás, y un aumento en la producción de dióxido de carbono, respecto a la prueba Rojo de Metilo. La acetoínaen un medio fuertemente alcalino (NaOH o KOH) y en presencia de Oxígeno se oxida a diacetilo. El diacetiloreacciona con compuestos que contengan núcleos de guanidina, como la arginina, presente en el medio, y daun compuesto color rojo-rosado-violáceo. Se agrega α-naftol para aumentar la sensibilidad. Esta pruebacaracteriza a ciertas especies de las Enterobacteriaceae, e indicará que la glucosa es fermentada por la víabutanodiólica.




10.- Prueba de

Rojo de metiloMedio: MR-VP Positivo (+)

Fundamento de la pruebaPermite determinar la formación de ácidos orgánicos que se producen durante la fermentación de uncarbohidrato. El microorganismo en estudio se cultiva en un caldo de cultivo con algún carbohidratofermentable, el más común es la glucosa aunque se pueden utilizar otros carbohidratos como lactosa,sacarosa, manitol, etc, adicionado con el rojo de metilo como indicador de pH. Una reacción positiva, es decir,el viraje del medio a un color rojo, indica que el microorganismo realiza la fermentación de la glucosa por lavía ácido-mixta y el pH del medio se torna hasta 4.2 por la gran cantidad de ácidos orgánico producidos. Unaprueba negativa no cambia el color del medio (color amarillo).




IDENTIFICACIÓN DEL MICROORGANISMO AMBIENTAL

EN LA MATRIZ DE ESTUDIO: _____________Agua_______________

1.- Nombre científico del o los microorganismo identificado de acuerdo a los resultadosdel perfil bioquímico planteado ( género y especie)

Nombres científicos: Escherichia coli

De acuerdo a los resultados obtenidos en las pruebas bioquímicas realizadas a una muestra de agua residual seobtuvo un perfil bioquímico diferente del que se esperaba identificar, la bacteria a la que pertenece este perfilobtenido es a la Escherichia coli.

2. Taxonomía del o los microorganismo identificados

Escher ichia col i

Dominio: Bacteria Filo: Proteobacteria

Clase: Gammaproteobacteria Orden: Enterobacteriales

Familia: Enterobacteriaceae Género: Escherichia Especie: E. coli

3. Ccaracterísticas generales

Escherichia coli

Las bacterias del género Escherichia coli son Gram-negativas, tienen forma de barra y pertenecen a la familiaEnterobacteria. Esta bacteria es un habitante común de los intestinos de todos los animales, incluyendo el delos humanos. Escherichia coli es quizás el organismo procarionte más estudiado por el ser humano, se trata deuna bacteria unicelular que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguasnegras. Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Ademásproduce vitaminas B y K. Los serotipos se asocian con virulencia. Una tipificación incluye la determinación de

los antígenos somáticos (O), capsulares (K), flagelares (H) y de fimbria (F). Es un bacilo que reaccionanegativamente a la tinción de Gram (Gram negativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelosperítrico (que rodean su cuerpo), no forma esporas.

4. Ciclo(s) biogeoquímicos en el(los) que intervienen

Ciclo del NitrógenoSin autor.recuperado el 16/08/2015.acceso y disponibilidad en:http://datateca.unad.edu.co/contenidos/358010/exe/leccin_27reduccin_del_nitrato_y_proceso_de_desnitrificacin.html

5. La función que juegan en la transformación de la materia orgánica a través

de los ciclos biogeoquímicosEl nitrato (NO3-) y el amoniaco (NH3) son fuentes de nitrógeno inorgánico que pueden usarse como aceptoresde electrones en la cadena respiratoria anaerobia. Uno de los más comunes y estudiados es el NO3-, el cualpuede ser reducido con la participación de enzimas (nitrato reductasa, nitrito reductasa, óxido nítricoreductasa, y óxido nitroso reductasa) todas ellas presentes en la membrana celular, las dos primeras seencuentran inmersas en la membrana mientras que las restantes sólo en la superficie. Ellas sólo se activan enausencia de oxígeno y cuando el nitrato está presente antes de expresarse completamente las enzimas.Cuando el aceptor de electrones nitrato es reducido a productos gaseosos que pasan a las atmósfera se leconoce como desnitrificación.




NO3- → NO2- → NO → N2O → N2

En bacterias como Escherichia coli el nitrato sólo se reduce a nitrito mientras que el las bacterias Paracoccus

denitrificans y Pseudomonas stutzeri es reducido hasta nitrógeno molecular además durante el transporte deelectrones en la cadena respiratoria anaerobia se genera un fuerza motriz protónica que produce ATP

6. Conclusión parcial sobre las interacciones bacterianas en la matriz estudiada y la importancia de lamicrobiología en el área ambiental

Es evidente que la microbiología abarca un campo muy amplio, cubriendo en particular la microbiologíaambiental en muchos aspectos en la calidad de vida actual. El estudio de los microorganismos en la ingenieríaambiental tiene gran importancia debido a que, son una de las principales fuentes de contaminación en lasdiferentes matrices pudiendo algunos de ellos ser patógenos para el humano y otros organismos.Algunos microorganismos que han sido estudiados durante mucho tiempo pueden ayudar a resolver problemascomo en algún tipo de biorremediación.

El empleo de ciertas pruebas bioquímicas permite identificar con un alto grado de precisión la mayoría de lasbacterias clínicamente significativas. Si la identificación no pudiera hacerse usando este, puede utilizarse unabatería e identificas sea características de tamaño, forma, consistencia, y a veces por su color. El tamaño de las

colonias bacterianas es generalmente uniforme entre una misma especie.

Se identificó que una de las pruebas de la marcha bioquímica puede llegar a cambiar completamente el perfilde la bacteria esperada, o buscada y por esta razón es de suma importancia llevar a cabo cada prueba lo mejory más profesionalmente posible, ya que si esto no se realiza con los cuidados adecuados, el resultado obtenidoal finalizar la marcha bioquímica será erróneo.

Parte de la formación del alumno en el área de química tecnología ambiental es la materia de microbiologíaambiental, ya que esta materia puede tener como base procesos fundamentales en el ámbito profesional deestúdiate como el conocer los procesos fundamentales por los cuales se lleva acabo ciertas característicastanto de suelo como agua.

Lo que implica en el aspecto ambiental, es que te das cuenta de la importancia que tienen los microorganismosen el medio ambiente y el trabajo que hacen para degradar la materia y sintetizarla para hacerla fuente deenergía.

También implica la salud física de las persona es uno de los factores más importantes que se deben de cuidaren el área de microbiología ya que puede llegar a contraer alguna infección, enfermedad o daño, tanto para elpropio analista como para los que se encuentran cerca. Es por esto que todos los materiales y que semanipulen dentro del laboratorio deben ser esterilizados o desinfectados al finalizar las actividades yespecialmente si estuvieron en contacto con las muestras, cajas o medios inoculados.

Se puede concluir que la implementación de las pruebas de una marcha bioquímica es muy importante ya que

estas te indican con seguridad que bacteria o microorganismo, estos manejando, siempre y cuando apliques laspruebas necesarias y suficientes para dicha identificación.

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