Manual Bacteriologia

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0 CONTENIDO Pág. SUBCOMPETENCIA 1 ................................................................................................................ 1 PRÁCTICA 1. COPROCULTIVO E INFECCIONES GASTROINTESTINALES ........................ 1 PRACTICA 2. UROCULTIVO E INFECCIONES DE LAS VÍAS URINARIAS ........................ 13 PRÁCTICA 3. EXUDADO FARÍNGEO Y NASOFARÍNGEO ................................................. 23 SUBCOMPETENCIA 2 ............................................................................................................. 29 PRÁCTICA 4. SENSIBILIDAD A LOS ANTIMICROBIANOS (ANTIBIOGRAMA) .............. 29 PRÁCTICA 5. INFECCIONES DE VÍAS RESPIRATORIAS BAJAS (CULTIVO DE ESPUTO) ................................................................................................................................................... 33 PRÁCTICA 6. BÚSQUEDA E IDENTIFICACIÓN DE Mycobacterium tuberculosis ................................................................................................................................................... 39 PRÁCTICA 7. DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES MENÍNGEAS (CULTIVO DE LCR).................................................................................................................. 46 PRÁCTICA 8. HEMOCULTIVO Y CULTIVO DE MÉDULA ÓSEA ........................................ 51 PRÁCTICA 9. INFECCIONES DEL APARATO GENITAL: EXUDADO CERVICO VAGINAL Y EXUDADO URETRAL .............................................................................................................. 57 PRÁCTICA 10. CULTIVO DE EXUDADO OCULAR, INFECCIONES OCULARES.............. 66 PRÁCTICA 11. EXUDADO ÓTICO (OÍDO MEDIO) INFECCIONES ÓTICAS .................... 71 PRÁCTICA 12. CULTIVO DE HERIDAS ................................................................................ 75 BIBLIOGRAFIA GENERAL.......................................................................................................80 ANEXOS ANEXO I. INSTRUMENTOS DE EVALUACIÓN ................................................................ 82 ANEXO II. LINEAMIENTOS GENERALES EN MATERIA DE SEGURIDAD E HIGIENE A SEGUIR EN LOS LABORATORIOS .................................................................................... 86

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Manual de practicas de Laboratorio para bacterilogia

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    CONTENIDO

    Pg. SUBCOMPETENCIA 1 ................................................................................................................ 1

    PRCTICA 1. COPROCULTIVO E INFECCIONES GASTROINTESTINALES ........................ 1

    PRACTICA 2. UROCULTIVO E INFECCIONES DE LAS VAS URINARIAS ........................ 13

    PRCTICA 3. EXUDADO FARNGEO Y NASOFARNGEO ................................................. 23

    SUBCOMPETENCIA 2 ............................................................................................................. 29

    PRCTICA 4. SENSIBILIDAD A LOS ANTIMICROBIANOS (ANTIBIOGRAMA) .............. 29

    PRCTICA 5. INFECCIONES DE VAS RESPIRATORIAS BAJAS (CULTIVO DE ESPUTO)

    ................................................................................................................................................... 33

    PRCTICA 6. BSQUEDA E IDENTIFICACIN DE Mycobacterium tuberculosis

    ................................................................................................................................................... 39

    PRCTICA 7. DIAGNSTICO DE ENFERMEDADES MENNGEAS

    (CULTIVO DE LCR) .................................................................................................................. 46

    PRCTICA 8. HEMOCULTIVO Y CULTIVO DE MDULA SEA ........................................ 51

    PRCTICA 9. INFECCIONES DEL APARATO GENITAL: EXUDADO CERVICO VAGINAL Y

    EXUDADO URETRAL .............................................................................................................. 57

    PRCTICA 10. CULTIVO DE EXUDADO OCULAR, INFECCIONES OCULARES.............. 66

    PRCTICA 11. EXUDADO TICO (ODO MEDIO) INFECCIONES TICAS .................... 71

    PRCTICA 12. CULTIVO DE HERIDAS ................................................................................ 75

    BIBLIOGRAFIA GENERAL.......................................................................................................80

    ANEXOS

    ANEXO I. INSTRUMENTOS DE EVALUACIN ................................................................ 82

    ANEXO II. LINEAMIENTOS GENERALES EN MATERIA DE SEGURIDAD E HIGIENE A

    SEGUIR EN LOS LABORATORIOS .................................................................................... 86

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    SUBCOMPETENCIA 1

    PRCTICA 1. COPROCULTIVO E INFECCIONES GASTROINTESTINALES

    1.1 GENERALIDADES

    El estudio de las bacterias responsables de cuadros clnicos gastrointestinales se

    realiza fundamentalmente mediante el cultivo de la materia fecal (coprocultivo).

    Las enfermedades diarreicas agudas representan una de las principales causa de

    defuncin en nuestro Pas. Las vas gastrointestinales son el hbitat natural de

    una extensa variedad de microorganismos, la mayora de las bacterias de la flora

    entrica residente corresponden a miembros de la familia Enterobacteriaceae,

    (Escherichia coli, Proteus etc.) aunque tambin son abundantes Enterococcus

    faecalis, diversas especies de Staphylococcus, Mvcobacterium y especies

    anaerobias. Siendo de mayor relevancia diagnstica las enterobacterias

    patgenas como: Shigella, Salmonella, Yersinia, Escherichia coli, esta ltima

    aunque se considera parte de la flora algunos serotipos denominados

    enteropatgenos son capaces de producir gastroenteritis, principalmente en

    lactantes en forma de brotes epidmicos. Adems de otros gneros de

    importancia mdica como Vibrio, Campylobacter y Helicobacter que pertenecen a

    otras familias.

    1.2 OBJETIVO

    Realizar el coprocultivo correctamente para que ste sirva como apoyo al

    diagnstico clnico en caso de gastroenteritis.

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    1.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Gradillas

    Bao mara

    Porta y cubre-objetos

    Marcador de vidrio

    Placas de Petri con Agar: Mac

    Conkey, S.S, XLD, Sulfito de

    Bismuto, Entrico de Hektoen,

    EMB, Campy-BAP, TCBS. Gelosa

    sangre de Carnero

    Caldo selenito o tetrationato

    en tubos de 13x100 con 2 mL.

    Tubos con: Caldo soya

    tripticasa, Agua Peptonada

    alcalina (APA) a pH 9.0

    Pruebas bioqumicas en tubos de

    13x100 con medio de: TSI LIA,

    MIO, urea de Christensen, Citrato

    de Simmons.

    Colorante de Azul de Metileno

    Antisueros para la Serotipificacin

    de Salmonella, E. coli y Shigella

    Solucin salina isotnica en tubos

    de 13x100 con 2mL

    Aceite de Inmersin.

    Frasco con Benzal

    Buffer de PBS

    Solucin de Iodo

    Juego de colorantes de Gram

    Taxos de Oxidasa

    1.4 PROCEDIMIENTO

    Toma y transporte de muestra para coprocultivo

    1. Obtener las muestras al inicio del cuadro clnico antes de iniciar el

    tratamiento antimicrobiano.

    2. Tomar la muestra de heces directamente en un frasco limpio de boca

    ancha y con tapa hermtica, de preferencia debe usarse estril y

    desechable.

    3. Cuando se trate de lactantes tomar la muestra directamente del recto

    usando sonda K31 conectada a una jeringa estril e introducindole

    solucin salina isotnica.

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    4. Sembrar de inmediato, si la muestra se toma en el mismo laboratorio

    donde se va a procesar el aislamiento, no es necesario usar medio de

    transporte.

    5. En estudios de campo o cuando el laboratorio no est cercano, tomar la

    muestra con un hisopo que debe quedar bien impregnado de materia

    fecal.

    6. Colocar el hisopo en un medio de transporte como el de Cary-Blair o el de

    Stuart-Amies.

    7. Refrigerar la muestra slo en ocasiones extremas.

    Manejo de las heces fecales

    1. La observacin directa de las heces es de suma importancia dado que se

    debe observar s presenta moco, sangre, y si son liquidas, pastosas, o

    diferente color.

    2. La observacin directa de la muestra con una gota de azul de metileno nos

    orienta para saber si existen leucocitos polimorfonucleares, si existen

    parsitos, eritrocitos y el tipo de flora la nica excepcin es el diagnstico

    presuntivo de Campylobacter el cual puede lograrse si la preparacin se

    observan dentro de las dos primeras horas de haber obtenido las

    muestras, como formas vibrinicas y helicoidales.

    3. La tincin de Gram en frotes de materia fecal es importante para

    corroborar la presencia de Campylobacter en sus formas vibrinicas y

    helicoidales, comprobar la presencia de clulas indicativas de inflamacin,

    eritrocitos etc.

    4. En el diagrama No 1 y 2 se muestran los pasos a seguir para el aislamiento

    de enterobacterias. (Con nfasis en Salmonella, Shigella, E. coli, Yersinia

    enterocolitica, adems de Vibrio y Campylobacter.)

    5. La materia fecal se siembra directamente con un asa y la cantidad de

    muestra depende el tipo de medio de cultivo usado. El mtodo usado es

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    por la tcnica de estra cruzada esterilizando el asa en cada seccin de la

    placa y separando la estra.

    6. Las placas se incuban a 37 C durante 18-24 Hrs.

    7. Al mismo tiempo que las placas sembrar el tubo de enriquecimiento con

    muestra fecal usando una cantidad pesada de inoculo, la proporcin ideal

    es de 10% peso/volumen, este puede ser caldo tetrationato o caldo

    telurito. S se sospecha de Vibrio sembrar la muestra en un tubo con agua

    peptonada alcalina (APA) Despus se incuba a 37C durante 12-18 hrs.

    8. A partir de la siembra directa de los medios diferenciales y selectivos

    seleccionar por lo menos dos o tres colonias no fermentadores de lactosa

    Lac (-) o productoras de H2S morfolgicamente acorde a las

    enteropatgenas

    9. A partir de una sola colonia aislada en los medios que se indicaron, se

    siembran los tubos de bioqumicas y se incuban de 18-24 h a 37 C.

    10. La interpretacin de estos resultados se hace de acuerdo al diagrama 2

    11. Realizar la prueba de Oxidasa de la colonia sospechosa, la cual se hace con

    el crecimiento del tubo de LIA.

    12. Del tubo de enriquecimiento despus de incubado se siembran las placas

    de los medios ya mencionado y se incuba de 18-24 h.

    13. Pasado este tiempo se escogen colonias sospechosas Lactosas (-) y se

    siembra el set de pruebas bioqumicas.

    14. Nuevamente la interpretacin de resultados se hace de acuerdo al

    diagrama.

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    Figura 1. Identificacin de bacterias patgenas gastrointestinales.

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    Figura 2. Identificacin de Salmonella, Shigella y E. coli.

    Serotipificacin de Salmonella

    1. Una vez que se ha determinado la presencia de Salmonella en la muestra

    clnica, se serotipifica primero los grupos somticos B, C1, C2 D O E. (que son

    los ms frecuentes en Mxico) Se utilizan los antisueros correspondientes.

    2. Si hay reaccin cruzada, la suspensin bacteriana se hierve por 10 min en

    bao mara, se centrifuga a 3,500 rpm por 10 min y se desecha el sobrante. El

    sedimento se resuspende en solucin salina y se repite el punto 1.

    3. Una vez determinado el grupo somtico se busca el grupo flagelar al que

    pertenece la cepa. A partir de la de una suspensin en solucin salina o del

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    tubo de TSI, se siembra un tubo con caldo Soya tripticasa se incuba 37 C del

    8-24 h.

    4. Se agrega un volumen igual de solucin salina formalizada al 0.6% y se deja

    reposar cuando menos 2 o 24 horas .Este es el antgeno formalinizado.

    5. En un tubo se colocan 0.1 mL de antisuero flagelar que corresponde al grupo

    somtico y se agrega 0.9 mi del antgeno formalinizado. Se agita

    vigorosamente, se incuba una hora a 50C en bao mara y con cuidado se

    sacan los tubos procurando no agitarlos y leer.

    POSITIVA = Aglutinacin con formacin de un inoculo que se deshace al

    agitar.

    NEGATIVA = Sin aglutinacin.

    6. La mayora de los cultivos de Salmonella presentan dos niveles y para

    identificar al serotipo que pertenecen es necesario identificar ambos.

    Serotipificacin de Shigella

    1.- El serotipo de las cepas de Shigella se determina utilizando los antisueros

    siguientes:

    Polivalente A 1-7: S. dysenteriae

    Polivalente B 1-5: S. flexneri

    Polivalente C 1-7: S. boydii

    Monovalente B-6: S. flexneri tipo 6

    Monovalente S. sonnei I-II

    Monovalente S. dysenteriae 8, 9 y 10

    2.- Se utiliza el mtodo descrito de aglutinacin bacteriana.

    Serotipificacin de cepas de Escherichia coli enteropatgena

    Con las cepas de Escherichia coli aisladas de nios con diarrea con moco y

    sangre, especialmente los menores de un ao, se hace una suspensin bacteriana

    en PBS a partir del tubo con TSI y se realiza una prueba de aglutinacin

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    bacteriana con un antisuero polivalente contra los tipos A, B o C de E. coli (cepas

    de E. coli enteropatgenas o EPEC).

    Identificacin de Campylobacter jejuni

    La identificacin de Campylobacter es posible realizarla presuntivamente de la

    materia fecal con observar al microscopio su morfologa, en el diagrama No 1 se

    puede observar.

    Identificacin de Vibrio cholerae

    Proceder como la siguiente figura:

    Figura 3. Aislamiento de Vibrio cholerae

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    Reporte del coprocultivo

    Realizar un informe del estudio para el mdico incluyendo los siguientes datos:

    1. Nombre completo del Paciente.

    2. Edad y sexo del mismo.

    3. Tipo de cultivo

    4. Si la muestra contena microorganismos de la flora normal, o las bacterias

    patgenas a nivel intestinal.

    5. Las caractersticas principales de la muestra

    6. Sus observaciones con las diferentes tinciones.

    7. Si existe algn comentario se le realiza al mdico con sus respectivas

    sugerencias.

    8. Firmar el resultado de responsable de los datos

    9. Se aisl Flora Intestinal Normal.

    Preparacin de un frotis y de un fresco fecal

    Tambin en un coprocultivo no se debe descartar la observacin de protozoos y

    otros microorganismos, realizando una preparacin en fresco de las heces

    fecales, como se muestra en el diagrama 4. Para la bsqueda de

    polimorfonucleares se realiza un frotis de moco fecal.

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    Figura 4. Procedimiento para Amiba en fresco y frotis de moco fecal.

    1.5 CUESTIONARIO

    1.- Cules son las caractersticas en la morfologa colonial de Salmonella y

    Shigella en los diferentes medios de cultivo que les diferencia de la mayora de

    las bacterias de la familia Enterobacteriaceae?

    2.- Qu cuidados debe tener un paciente a la hora de recolectar su muestra

    fecal para coprocultivo?

    3.- Qu es infeccin intestinal y cmo se puede diagnosticar?

    4.- Qu otras cepas de E. coli son consideradas patgenas?

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    1.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 5. Diagrama ecolgico: aislamiento e identificacin de bacterias.

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    1.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

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    1.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

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    SUBCOMPETENCIA 1

    PRCTICA 2. UROCULTIVO E INFECCIONES DE LAS VAS

    URINARIAS

    2.1 GENERALIDADES

    Las vas urinarias normalmente son estriles por encima del nivel de la uretra

    distal, se entiende la aparicin de bacterias definindose la infeccin de stas

    como la presencia de un gran nmero de bacterias en la orina. Las infecciones de

    las vas urinarias son muy frecuentes, y presentan una marcada resistencia al

    tratamiento y muchas de ellas con tendencia a recidivar especialmente en las

    personas del sexo femenino, considerndose riesgosas porque pueden

    evolucionar a enfermedades renales graves, como pielonefritis, presentndose

    en algunos casos de manera asintomtica, o como enfermedad aguda o crnica.

    Las infecciones agudas son causadas generalmente por un solo microorganismo,

    las infecciones crnicas por varios microorganismos.

    Las bacterias que con mayor frecuencia se aslan de la orina de pacientes son:

    E. coli, Staphylococcus, Proteus, Enterococcus faecalis, Salmonella, Pseudomonas,

    Mycobacterium, ocasionalmente Neisseria gonorrhoeae, Candida albicans.

    2.2 OBJETIVO

    Realizar correctamente un urocultivo para que ste sirva como apoyo al

    diagnstico clnico en caso de infecciones de vas urinarias.

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    2.3 MATERIALES, EQUIPOS, Y REACTIVO

    Placas de Petri con Agar:

    MacConkey, Sal y Manitol,

    Gelosa sangre de carnero,

    Thayer, Martn, Dnasa.

    Tubos de 13 x 100 con medio de

    Biggy, pruebas bioqumicas: TSI,

    LIA, MIO, Urea y C. Simmons.

    Cuenta colonias

    Asa calibrada. Juego de colorantes de Gram

    Taxos de catalasa, oxidasa,

    PN, ESD, Bacitracina 0.04 U

    Porta-objetos y cubreobjetos.

    Pipetas estriles

    . Matraz de Agar Nutritivo

    estril.

    Solucin Salina Isotnica.

    2.4 PROCEDIMIENTO

    Requisitos de la toma de muestra

    Para lograr que el cultivo de orina sea veraz es de suma importancia que las

    muestras sean obtenidas en forma correcta, as como en condiciones ptimas

    para un buen resultado confiable. Como se ver ms adelante.

    Tcnica del chorro medio

    Debido que la uretra est contaminada por bacterias, especialmente cerca del

    orificio externo, es importante hacer una desinfeccin local antes de tomar la

    muestra para eliminar todo tipo de contaminacin, este mtodo es importante en

    pacientes que tiene control de su vaciamiento vesical. En recin nacidos y

    ancianos est tcnica se dificulta por su edad.

    Indicar al paciente que se realice un aseo escrupuloso de genitales con agua y

    jabn o con cloruro de benzalconio diluido 1:1000.

    Se prefiere obtener la primera orina de la maana (la parte media de la miccin

    desechando el primer chorro as como la ltima parte de la miccin).

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    La muestra de orina se recoge en un frasco de boca ancha estril y desechable, en

    los bebes se usan bolsas recolectoras estriles.

    No deben pasar ms de dos horas, entre la toma de muestra y su proceso, ya que

    la orina es un excelente medio de cultivo.

    El paciente no debe estar ingiriendo medicamentos antimicrobianos.

    La muestra al llegar al laboratorio se debe identificar en forma correcta con los

    datos del paciente como nombre, edad, sexo.

    Es importante seguir los pasos de los esquemas ms adelante para la toma de

    muestra tanto para el sexo femenino como masculino.

    Aspiracin suprapbica

    Este tipo de procedimiento solo puede ser realizado por personal Mdico. Se usa

    para obtener el diagnstico exacto en los recin nacidos y en los nios pequeos,

    es una forma de demostrar el origen de la infeccin de la vejiga y la bacteriuria

    con microorganismos que se originan ms all de la vejiga, as como la bsqueda

    de bacterias anaerobias.

    Hacer una puncin directa en la vejiga a travs de la pared abdominal con aguja y

    jeringa.

    Este tipo de mtodos se considera muy agresivo.

    Cateterismo

    Es poco recomendable por el peligro de acarrear agentes infecciosos, por lo cual

    debe hacerse en forma muy cuidadosa.

    Utilizar un catter estril, que se introduce por el meato urinario, el cual debe ser

    desinfectado escrupulosamente.

    Aspirar la orina y se coloca en un frasco estril.

  • 16

    Transporte de la muestra

    Dado que la orina es un excelente medio de cultivo y las bacterias se multiplican

    rpidamente s la muestra se deja a temperatura ambiente durante un tiempo

    corto.

    En caso que el laboratorio no est cerca las muestras se deben transportar

    inmediatamente en menos de una hora o en su defecto en refrigerantes que

    obtengan una temperatura de 4C para que la cuenta bacteriana se mantenga con

    el nmero de bacterias en forma constante.

    Pueden utilizar sistemas de transporte de orina que hay en el mercado.

    Asilamiento e identificacin

    1,. Inocular la muestra en los medios de cultivo seleccionados

    2.- incubar a 37C durante 24 hrs

    3.- Tomar una colonia susceptible de ser la causante de infeccin y realizar una

    tincin de Gram.

    4.- Inocular la Pruebas bioqumicas con la o las colonias sospechosas.

    5.- Interpretar los resultados de la Pruebas bioqumicas.

    Mtodo del asa calibrada

    1. Inocular un volumen conocido de orina en la placa basndose en el uso del asa

    calibrada.

    2. Agitar la orina, y tomar una asada de orina con el asa calibrada procurando que

    solo entre la rueda y se descarga en lnea rectas en el centro de la placa y se

    estra.

    3. Incubar las placas a 37C por 24 hrs.

    4. Contar el nmero de colonias que se desarrollan en las placas y se calcula las

    unidades formadoras de colonias por mL. UFC/mL.

    5. Identificar el microorganismo segn sus caractersticas.

  • 17

    Mtodo de dilucin con pipeta

    1. Se coloca 0.1 mi de orina en 9.9 mL de solucin salina isotnica (dilucin 10)

    se homogeneiza el tubo perfectamente.

    2. Con una pipeta estril se toman 0.1 mL de esta dilucin y se transfiere a un

    segundo tubo conteniendo 9.9 mL de solucin salina isotnica (dilucin 10 a)

    3. Se toman 0.1 mL de cada uno de los tubos y se depositan en placas de medios

    de cultivo seleccionados.

    4. La suspensin bacteriana se extiende rotando las placas suavemente, se incuba

    a37C de 18-24hrs.

    5. Se cuenta el nmero de colonias de acuerdo al factor de dilucin

    correspondiente.

    Mtodo de vaciado en placa

    Se coloca 1 mL. de cada una de las diluciones arriba mencionadas dentro de cajas

    de Petri estriles.

    Se agrega el medio de cultivo fundido y enfriado a 45C se rota suavemente la

    placa para que se homogeneice perfectamente y se deja solidificar el medio.

    3. Se incuba las placas a 37C de 18-24 h.

    4. Se cuentan el nmero de colonias.

    5. De acuerdo al factor de dilucin se calcula las UFC/ ML

    En el siguiente esquema se muestra la forma correcta de recolectar las muestras

    de orinas para un urocultivo.

    Recoleccin de muestras de orina en Varones:

    1.- Realice un aseo del rea pbica con jabn y abundante agua. Cualquier

    residuo de jabn puede causar errores en el anlisis. Seque perfectamente el

    rea pbica.

    2.-En pacientes no circuncidados se retrae la piel que cubre la cabeza del glande

    con un movimiento hacia atrs para exponer el meato uretral (figura 6).

  • 18

    Figura 6. Exposicin del meato urinario en pacientes no circuncidados.

    3.- Debe realizar una limpieza con una gasa (de preferencia estril) empezando

    por la punta y recorriendo hacia la base. La limpieza se repite empleando una

    segunda gasa (figura 7).

    Figura 7. Limpieza del meato uretral.

    4.- Se inicia la miccin sin recolectar la primera fraccin, la cual se desecha en el

    excusado.

    5.-En el recipiente que se le proporciono en el laboratorio. Recolecte la fraccin

    del chorro medio.

    6.- Retire el vaso recolector del chorro y termine de orinar desechando la

    fraccin final en el excusado.

    Recoleccin de muestras de orina en mujeres

    1.- Realice un aseo del rea pbica con jabn y abundante agua. Cualquier

    residuo de jabn puede causar errores en el anlisis. Seque perfectamente el

    rea pbica.

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    2.- Debe sentarse en el excusado con las piernas separadas y con los dedos

    separar los labios mayores que cubren la vagina. Al separar los labios mayores

    con los dedos pulgar e ndice quedara al descubierto el orificio urinario (figura 8).

    Figura 8.Exposicion del meato urinario.

    3.- Con una gasa (de preferencia estril) se realiza una limpieza en la parte

    interna de los labios genitales (meato urinario) y el rea que lo rodea con un

    movimiento de adelante hacia atrs. Este procedimiento debe repetirse con una

    segunda gasa.(figura 9)

    Figura 9. Limpieza del meato urinario.

    4.-Manteniendo los labios del rea genital separados se debe iniciar la miccin.

    Se inicia la miccin sin recolectar la primera fraccin, la cual se desecha en el

    excusado.

    5- En el recipiente que se le proporciono en el laboratorio, recolecte la

    fraccin del chorro medio.

  • 20

    Figura 10. Recoleccin de la muestra.

    6- Retire el vaso recolector del chorro y termine de orinar desechando la fraccin

    final en el excusado.

    Reporte

    Una parte importante del urocultivo es la interpretacin de los resultados. El

    criterio de 100,000 o ms grmenes por mL de orina para el diagnstico de la

    bacteriuria significativa es primariamente de ndole operacional, cuando se

    emplea el mtodo del vaciado asptico para recoger las muestras. Actualmente

    se utiliza el criterio de Kass para detectar una bacteriuria verdadera.

    La bacteriuria verdadera se caracteriza usualmente por cuentas que exceden

    sobradamente el 1, 000,000 de colonias por mL; menos de 10,000 UFC/ mL se

    considera negativo. Sin embargo es muy importante el criterio del mdico de

    acuerdo al estado clnico de su paciente.

    La forma del reporte es de la siguiente forma:

    Nombre del Paciente, edad fecha

    Nombre del mdico

    Tipo de Estudio: Por ejemplo, se aisl E. coli 650, 000 UFC/mL. Negativo a las 48

    hrs. de incubacin.

    Firma del Responsable.

  • 21

    2.5 CUESTIONARIO

    1.- Explique la importancia clnica del aislamiento e identificacin de este grupo

    de bacilos Gram-negativos no fermentadores (Pseudonomas) en un laboratorio

    de bacteriologa clnica.

    2.- Por qu es comn encontrarla en un urocultivo Escherichia coli?

    3.- Qu microorganismos son los ms frecuentes de aislar en un urocultivo?

    4.- Qu es una bacteriuria y qu la causa?

    5.- Cmo se debe recolectar una muestra de orina en nios menores de 5 aos,

    para la realizacin de un urocultivo?

    2.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 11. Diagrama ecolgico: Aislamiento e identificacin de bacterias.

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D3. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

  • 22

    D4. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D5. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    2.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

    2.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Nom. 087. Norma oficial Mexicana para el manejo de RPBI.

    3.- Prescott LM, Harley JP, Klein DA (2004). Microbiologa. 5ta. Edicin. Ed. Mc

    Graw-Hill Interamericana. Madrid Espaa.

  • 23

    SUBCOMPETENCIA 1

    PRCTICA 3. EXUDADO FARNGEO Y NASOFARNGEO

    3.1 GENERALIDADES

    El estudio del exudado farngeo y nasofarngeo es importante para el diagnstico

    de ciertas infecciones consideradas dentro de las principales causas de

    morbilidad y mortalidad en todo el mundo. Dentro de las principales bacterias

    patgenas causantes de infeccin estn los estreptococos, adems de otras

    enfermedades no bacterianas como la difteria, la tosferina y la candidiasis. Es

    muy importante conocer la flora normal en las vas respiratorias altas y bajas para

    un buen reporte, ya que la orofaringe es un sitio expuesto y se debe distinguir a

    los patgenos de los comensales con ayuda del cultivo.

    El exudado farngeo y nasofarngeo son las muestras clnicas ms empleadas para

    el estudio bacteriolgico de una infeccin de vas respiratorias superiores y es

    requisito importante que sean tomadas en forma adecuada para garantizar

    resultados confiables y correctos.

    3.2 OBJETIVO

    Realizar los exudados farngeo y nasofarngeo correctamente para que ste sirva

    como apoyo al diagnstico clnico en caso de enfermedades de vas respiratorias.

    3.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Placas de Petri con Agar: Tubos de 13 x 100 con caldo Soya

  • 24

    Sangre de camero al 5%, Sal y

    Manitol, MacConkey, Thayer-

    Martin, Hemina bacitracina

    extracto de levadura(GHBL).

    medio de Biggy

    Tripticasa ,pruebas bioqumicas. TSI,

    LIA, MIO, CS y Urea

    Tubos de Caldo soya tripticasa con

    6.5 % NaCl

    Sensidiscos de Optoquina

    Matraz con 15 mi de agar de

    Soya tripticasa

    Hisopos estriles

    Sensidiscos de Novobiocina

    Abatelenguas estriles Colorantes de Gram.

    Frasco con cloro Sensidiscos de Bacitracina de 0.04 U

    3.4 PROCEDIMIENTO

    Toma y transporte de la muestra:

    Exudado farngeo:

    Es muy importante la toma de la muestra al inicio del cuadro clnico antes de

    empezar cualquier tratamiento.

    1. Indicar al paciente que debe venir al laboratorio sin aseo bucal.

    2. No haber ingerido ningn tipo de alimento.

    3. No haber ingerido ningn antimicrobiano.

    4.- Inclinar la cabeza del paciente hacia atrs y se revisa con una lmpara la zona

    afectada

    5. Empujar la lenguas hacia abajo con un abatelenguas estril que permita mejor

    visin.

    6. Introducir un hisopo hacia las amgdalas, sin tocar la lengua para nada; frotar

    suavemente la zona afectada.

    7. Evitar tocar la lengua, los dientes o la mucosa.

  • 25

    Exudado nasofarngeo:

    1. Utilizar un hisopo que sea de algodn tratado, de alginato de calcio o en su

    defecto de dacrn que su mango sea flexible que no lastime al paciente.

    2. Introducir el hisopo por una de las narinas aproximadamente 10 cm cuidando

    de tocar solo el extremo posterior del mango y evitar tocar solo los cornetes.

    3. Una vez tocado el fondo de la nasofaringe se frota suavemente y con

    movimiento rpido.

    Transporte de la muestra:

    1. En caso que la muestra no se vaya a procesar de inmediato se deber depositar

    en medio de transporte.

    2. El mdico debe indicar en base al cuadro clnico, el germen que sospecha, para

    aplicar los requerimientos de cada una de las bacterias en la siembra y

    procesamiento de las muestras inmediatamente.

    Seguir el diagrama de trabajo que se indica en esta prctica. Aunque el uso de

    gelosa sangre de camero es obligado para la bsqueda de Streptococcus beta

    hemoltico.

    1. Se toma la muestra como ya se indico anteriormente se siembra en los

    medios como son: Gelosa sangre de carnero, Thayer Martin, Sal y Manitol etc.

    2. Se incuban 24 h a 37C

    3. Hacer frotes y teir por tcnica de Gram., Ziehl Neelsen, Giemsa para

    investigar asociacin con fusoespirilar.

    4. S en las tinciones se sospecha de Corynebacterium diphteriae se debe seguir

    un diagrama de trabajo especfico para su identificacin as como el aviso

    inmediato a las autoridades de la S.S.A.

    5. Se debe leer todas las placas y se identifica a los microorganismos

    patgenos.

    6. Es importante en nios menores de cinco dos aos 1 investigacin de

    Haemophilus influenzae.

  • 26

    7. Es de gran trascendencia epidemiolgica determinar la presencia de

    portadores de Neisseria meningitidis.

    8. Otro problema importante son los casos de Bordetella pertussis es importante

    sembrar las muestras en medio de Bordet-Gengou y seguir un diagrama

    especfico para su identificacin as como el aviso de los casos a la S.S.A.

    Reporte:

    El reporte al mdico es de acuerdo a nuestros resultados, es importante tomar en

    cuenta la edad y sexo del paciente.

    1. Se aisl Flora Normal

    2. Se identific el siguiente microorganismo, se pone gnero y especie

    3. Es posible encontrar ms de un microorganismo patgeno en un cultivo

    4. De preferencia a estas muestras se les realiza antibiograma si tiene ms de una

    bacteria patgena a cada una se les realiza su antibiograma

    3.5 CUESTIONARIO

    1.- Explique la importancia clnica del aislamiento e identificacin de este grupo

    de microorganismos causantes de enfermedades de vas respiratorias, en un

    laboratorio de bacteriologa clnica.

    2.- Por qu es necesario realizar un antibiograma?

    3.- Qu microorganismos son los ms frecuentes de aislar en un exudado

    nasofarngeo?

    4.- Qu otras enfermedades son causadas por microorganismos en vas

    respiratorias, tanto altas como bajas?

  • 27

    3.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 12. Diagrama ecolgico: Aislamiento e identificacin de bacterias.

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    3.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

  • 28

    3.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

    3.- Nom. 087. Norma oficial Mexicana para el manejo de RPBI.

  • 29

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 4. SENSIBILIDAD A LOS ANTIMICROBIANOS (ANTIBIOGRAMA)

    4.1 GENERALIDADES

    Plantear la necesidad de saber cul es el antimicrobiano que se debe utilizar para

    eliminar el microorganismo que est provocando la infeccin, es de suma

    importancia en pacientes cuyas terapias antimicrobianas han tenido poco xito.

    Principalmente en pacientes hospitalizados. Para esto es necesario conocer:

    1. La susceptibilidad del microorganismo "in vitro"

    2. La relacin de susceptibilidad entre el microorganismo y las bacterias de la

    misma especie.

    3. Las propiedades farmacolgicas de los antimicrobianos, incluyendo su

    toxicidad, distribucin, absorcin y excrecin.

    4. Experiencia clnica en el tratamiento

    5. Historia natural del proceso patolgico.

    6. El estado inmune del husped

    Al determinar la susceptibilidad a los microorganismos "in vitro", el laboratorio

    dar una pauta a seguir sobre el tratamiento, sin dejar de considerar las

    diferencias en su actividad in vitro.

    Para este tipo de estudios existen varios mtodos como son:

    1. Dilucin seriada en tubo; 2. Dilucin seriada en placa; 3. Difusin en discos de

    papel filtro; 4. Sistemas automatizados.

    La seleccin del mtodo depender de:

    1. Nmero de pruebas que se procesen diariamente.

    2. Tipo de microorganismo que se trata, del sitio que se aisle, tipo de

    patogenicidad etc.

    3. Equipo automatizado que se cuente.

  • 30

    4.2 OBJETIVO

    Adquirir la destreza para la realizacin de antibiogramas, as como una buena

    lectura del antibiograma, para apoyar en el diagnstico clnico.

    4.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Placas con medio de Mueller-

    Hinton de 15 cm de dimetro

    Placas con medio de Mueller-Hinton

    con sangre de camero

    Tubos con 4 mL de caldo

    Mueller Hinton

    Hisopos estriles

    Solucin salina isotnica estril

    Pinzas

    Tubo del Nefelmetro de Mac

    Farland al 0.5%

    Sensidiscos para grampositivos y

    gramnegativos

    Regla transparente

    Cepas control

    4.4 PROCEDIMIENTO

    1. Tocar con un asa en punta 4 5 colonias morfolgicamente iguales e inocular

    en un tubo con caldo Mueller-Hinton

    2. Incubar a 35C que aparezca una leve turbidez (2 a 5 h)

    3. Ajustar la turbiedad tomando como referencia el tubo 0.5 del Nefelmetro.

    4. Introducir el hisopo en el caldo con la suspensin bacteriana, quitar el exceso

    de caldo en las paredes del tubo.

    5. Sembrar uniformemente el microorganismo en la placa de Mueller Hinton en

    tres direcciones y al final pasar el hisopo en el borde de la placa.

    6. Distribuidos los sensidiscos uniformemente o en su defecto usar un

    dispensador automtico.

    7. Incubar la placa de Petri en forma invertida durante 18 h a 35C.

  • 31

    8.- Medir los halos de inhibicin con la regla.

    9. Interpretar los dimetros de las zonas de inhibicin de las cepas con base a las

    tablas del fabricante.

    Reporte

    Informar la actividad de los antibiticos contra los microorganismos empleados

    Revisar los resultados de las cepas control.

    Probar el comportamiento hacia otros antibiticos si la cepa es de

    microorganismos resistentes a la penicilina

    Usar eritromicina y tetraciclinas como alternativa s el paciente es sensible a la

    penicilina.

    Reportar gnero y especie de la bacteria y los resultados del antibiograma.

    4.5 CUESTIONARIO

    1.- Explique la importancia clnica de realizar un antibiograma.

    2.- Qu es un antibitico?

    3.- Cules son los mtodos de cuantificacin de microorganismos de acuerdo a

    la sensibilidad o resistencia los antimicrobianos?

    4.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICIN DE RESIDUOS

    Figura 13. Diagrama ecolgico : Aislamiento e identificacin de bacterias

  • 32

    D1. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico el

    medio de cultivo. Lavar y secar los tubos para su reuso.

    D3. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    4.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

    4.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Holt, J., Krieg. N. et al.(1994). Manual Determinativo de bacteriologa de

    Bergey. 10 Edicin. Editorial Lippincott Williams an Wilkins. Philadelphia USA.

    3.- Mandigan MT, Martinko JM, Parker J (1999).Brock. Biologa de los

    Microorganismos. Ed. Prentice Hall. 8va Edicin. Madrid.

  • 33

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 5. INFECCIONES DE VAS RESPIRATORIAS BAJAS (CULTIVO DE ESPUTO)

    5.1 GENERALIDADES

    Las infecciones de las vas respiratorias inferiores son causa importante de

    enfermedad y muerte a nivel nacional. Siendo la tuberculosis en sus diferentes

    cuadros agudos, una de las ms frecuentes.

    De los principales agentes bacterianos asociados a neumonas sobre salen en

    primer trmino Streptococcus pneumoniae. Klebsiella pneumoniae,

    Haemophilus influenzae: bacterias del tipo anaerobio tienen un papel

    importante en algunas muestras, por lo que se recomienda la bsqueda de

    Chlamvdia pneumoniae Mvcoplasma pneumoniae que se asocia con neumonas

    atpicas, Francisella tularensis, Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa,

    levaduras del tipo de Candida albicans.

    En este tipo de estudios el reporte preliminar de las tinciones para el inicio del

    manejo antimicrobiano es de suma importancia.

    El esputo puede no ser el espcimen de eleccin para determinar el agente

    etiolgico en una neumona, sangre, lavado o aspirado transtraqueal pueden ser

    ms adecuados. Secreciones del tracto respiratorio bajo de pacientes con datos

    de infeccin, deben presentar alta cantidad de leucocitos y ausencia de clulas

    epiteliales. La presencia de estas indica contaminacin de secrecin de

    orofaringe.

  • 34

    5.2 OBJETIVO

    Realizar de manera correcta un esputo, estudio que sirva para cultivar e

    identificar las bacterias que se encuentran en las vas bajas respiratorias,

    para contribuir al diagnstico clnico.

    5.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Placas de Agar Sangre de

    camero, Mac Conkey, agar

    cetrimida, agar de Sal y Manitol,

    agar Thayer Martn, agar

    Levinthal, medio de Lowensten

    Jensen.

    Placas de gelosa sangre en base

    Columbia con cido nalidxico y

    colisima.

    Porta y cubre-objetos

    Pipetas Pasteur estriles

    Centrifuga

    Tubos con medio de Biggy y

    tubos de 13 x 100 mm con

    pruebas bioqumicas: TSI, UREA,

    CS, LIA yMIO

    Tubos estriles de plstico

    desechable

    Juego de colorantes de.Gram, ZiehI-

    Neelsen.

    . Aceite de inmersin

    Taxos de optoquina y bacitracina de

    0.04 U y 10 U

    Microscopio

    5.4 PROCEDIMIENTO

    Toma de muestra y transporte

    Esputo.- Tomar las muestras al inicio del cuadro clnico sin que se haya

    administrado algn antimicrobiano.

    1. La muestra debe ser la primera de la maana (al despertase el paciente en

    caso que el paciente no espectore se le puede ayudar con nebulizaciones).

    2. La muestra se recoge en un frasco estril de boca ancha biodegradable con

    capacidad de 30-50 ml. de material transparente y de tapa de rosca.

  • 35

    3. La muestra no debe contener saliva, seleccionar aquel producto que

    microscpicamente en el examen en fresco resulte representativa por su

    elevado nmero de leucocitos y bajo nmero de clulas epiteliales.

    4. Procesarse lo antes posible la muestra al llegar al laboratorio.

    Lavado o cepillado bronquial

    Este tipo de muestras solo son tomadas por un mdico en condiciones aspticas,

    evitando la contaminacin con la flora de la cavidad oral.

    Se recomienda solo en pacientes hospitalizados con SIDA, Cncer o enfermedad

    obstructiva crnica (EPOC).

    La muestra se debe procesar de inmediato una vez llegada al laboratorio con las

    medidas de seguridad pertinentes: Uso de campana de seguridad, guantes

    desechables, cubrebocas y lentes protectores, o en su defecto mascarillas.

    Seleccin de la muestra

    1. Examinar la muestra microscpicamente para identificar la presencia de sangre

    y material purulento as como el color de la misma.

    2. Tomar de la porcin ms purulenta o con restos de sangre y a partir de esta

    porcin hacer una tincin de ZiehI-Neelsen, tincin de Gram y el examen en

    fresco el cual una vez puesto el cubre-objetos se presiona de tal forma que la

    muestra se distribuya.

    3. Observar todo el porta-objetos para determinar la distribucin de las clulas

    tipo.

    4. Examinar por la ptica de Normarsky. Hay que seleccionar 10 campos

    representativos y en ellos se cuentan el nmero y proporcin de leucocitos, de

    clulas epiteliales de descamacin. Segn los resultados se clasifican de

    acuerdo a Welch y Kelly.

    5. Cultivar las muestras que sean de clase III. Rechazar las muestras que sean de

    clase I y II, no se deben cultivar.

  • 36

    Nota. Indicar el motivo del rechazo de la muestra al mdico y solicitar una nueva

    muestra; anexarla leyenda: "La muestra no fue aceptada para el cultivo debido a

    la presencia de ms de 25 clulas epiteliales por campo microscpico (lOOx).

    6. Inocular la porcin sobrante del material purulento en los medios de cultivo

    adecuados por estra cruzada, no olvidar hacer picadura en las placas de gelosa

    sangre de camero para certificar la hemolisis.

    7. Incubar las placas con sangre a 35-37 C en atmsfera parcial de C02 .

    8. Se identifican las bacterias de acuerdo a su gnero y especie.

    9. Inocular con pipeta estril el medio de Lowenstein-Jensen

    Reporte

    1. Proporcionar un informe preliminar despus de la observacin de los cultivos.

    2. La flora normal presente en el cultivo no debe ser identificada ni reportada.

    3. Si no se observan microorganismos al trmino de la incubacin y la

    identificacin de los microorganismos patgenos que ya se realiz .se debe

    enviar el informe final con fecha y firma del responsable. Se debe informar el

    cultivo p/e Negativo a bsqueda de S. pvogenes.

    4. Si no hay crecimiento despus de dos das el informe final es el siguiente: No

    hubo crecimiento bacteriano a las 48 hrs. de incubacin.

    5.5 CUESTIONARIO

    1.- Por qu es importante realizar un esputo?

    2.- Qu otras muestras pueden servir para el diagnstico de alguna enfermedad

    de vas respiratorias bajas?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar el reporte?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con esputos?

  • 37

    5.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 14.Diagrama ecolgico: Aislamiento e identificacin de bacterias

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    5.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

  • 38

    5.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Mac Faddin JF, (2003). Pruebas Bioqumicas para la Identificacin de bacterias

    de importancia clnica. 3 Edicin. ED. Mdica Panamericana.

    3.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

    4.- Nom. 087. Norma oficial Mexicana para el manejo de RPBI.

  • 39

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 6. BSQUEDA E IDENTIFICACIN DE Mycobacterium tuberculosis

    6.1 GENERALIDADES

    La tuberculosis en nuestro pas, es actualmente uno de los problemas ms

    importantes de salud en los ltimos 5 aos y su resurgimiento se da a partir

    de la epidemia de VIH que ataca a todo el mundo.

    El diagnstico de las micobacterias se puede realizar en diferentes productos

    biolgicos como son: esputo, orina, lavado gstrico, raspado larngeo, lavado

    o cepillado bronquial, materia fecal, sangre menstrual, heridas.

    6.2 OBJETIVO

    Realizar correctamente la bsqueda e identificacin de Mycobacterium

    tuberculosis en diferentes productos biolgicos para un acertado diagnstico

    clnico.

    6.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Tubos estriles de tapn de

    rosca de plstico

    biodegradable de 40 mL

    Cubrebocas o en su defecto mascarilla

    Tubos con medio de Lowestein-

    Jensen

    Frascos estriles Agitador vortex

    Equipo de ZiehI-Neelsen Equipo de Auramina Rodamina

    NaOH al 4% Pipetas Pasteur estriles

  • 40

    Frasco con fenol al 10% Pinzas

    Guantes desechables Microscopio

    Aceite de inmersin Porta-objetos.

    6.4 PROCEDIMIENTO

    Requisitos indispensables a cubrir en la toma de muestra.-: 1. Calidad de la

    muestra; 2. Cantidad; 3. Envase estril y desechable.

    Esputo.- Usar frasco estril biodegradable de boca ancha.

    Usar de preferencia la primera de la maana; enviarlas al laboratorio; agregar

    carbonato de sodio con la finalidad de disminuir el crecimiento de la flora

    asociada, y disminuir el mal olor.

    Usar hisopo larngeo o nasofarngeo en caso de nios.

    Orina.- Usar frasco estril de boca ancha y lavado estricto de genitales.

    Usar orina de 24hrs o la primera de la maana.

    Lavado gstrico.- El muestreo solo lo efecta el mdico utilizando una sonda

    gstrica estril y desechable.

    Poner el contenido del lavado gstrico en un frasco estril

    Procesar las muestras el mismo da que se toman; se trabaja el sedimento.

    Lavado cepillado bronquial y pleural.- El mdico deber realizar el muestreo en

    frasco estril en sala de operaciones bajo condiciones de asepsia.

    Procesar el mismo da que se reciben; trabajar con el sedimento de la misma.

    Heces fecales.- La muestra se colecta en frasco estril desechable.

    Preparar una suspensin gruesa de materia fecal y solucin salina.

  • 41

    Agregar un volumen igual de ter.

    Agitar y centrifugar a 3000 rpm durante 5 min. y eliminar el sobrenadante.

    Utilizar la capa gelatinosa.

    Realizar la tincin de BAAR.

    Aadir al resto de las heces NaOH al 4% y seguir los pasos igual que el esputo.

    Lquido cefalorraqudeo.- La muestra es obtenida por el mdico en forma

    asptica en tubos estriles.

    Centrifugar la muestra

    Realizar las tinciones y siembra del sedimento se

    Teir y sembrar las muestra el mismo da que se recibe.

    Tejidos.- Colectar en frasco estril de boca ancha.

    Tomar fragmentos de tejidos y triturar en un mortero estril.

    Hacer frotis delgados.

    Sembrar la muestra en forma directa.

    Baciloscopa directa del esputo

    1. Hacer un frotis de la porcin purulenta, usando un aplicador de madera.

    2. Extender en forma uniforme.

    3. Desechar el aplicador dentro del frasco de la muestra.

    4. Dejar secar el frote al aire.

    5. Fijar al calor.

    6. Teir por la tcnica que se tenga para la bsqueda de BAAR.

    Esquema de lectura dl portaobjetos teido:

    Informe de la baciloscopia en la bsqueda de BAAR para diagnstico de

    tuberculosis:

    Ausencia de BAAR: NSEABAAR (No se observaron BAAR en todo el frote)

  • 42

    BAAR -. Se anota la cifra exacta en 100 campos de inmersin

    BAAR+ en 100 campos de inmersin

    Tomado de Intemational and Unin Againts Tuberculosis 1977

    Concentracin y cultivo del esputo

    Dado las caractersticas de las muestras es importante las indicaciones para

    prepararlas y poder sembrar en el medio selectivo.

    Mtodo de Petroff modificado.

    1. Transferir 2 mL del esputo a un tubo de tapn de rosca de plstico desechable

    y mezclar con un volumen igual de NaOH al 4% o con rojo de fenol.

    2. Agitar el tubo en vortex durante 20 seg. .Incubar a 37 C por 15 min.

    3. Centrifugar a 3,000 r.p.m. durante 15 min. (Por ningn motivo se debe abrir la

    centrifuga si no se ha detenido completamente).

    4. Decantar cuidadosamente el sobrenadante.

    5. Neutralizar cuidadosamente el sedimento con HCl 1N o con H2S04 al 8%.

    Hasta que el pH final no sea inferior a 6.5, ni superior a 7.2.

    6. Sembrar de 7 a 8 gotas del sedimento con pipeta Pasteur estril en dos tubos

    con medio de Lowenstein-Jensen .

    7. Hacer dos frotis con el sedimento y teir con Ziehl-Neelsen para la bsqueda

    de BAAR (puede ser tambin con auramina rodamina).

    8. Incubar los tubos a 37C en posicin horizontal con la tapa floja durante 24 a

    48 hasta que se evapore el inculo. Posteriormente apretar la tapa para evitar

    que la muestra se evapore, incubar durante 60 das.

    9. Revisar cada semana hasta la semana ocho, s no hay desarrollo informar como

    presuntiva negativa. Reportar como negativo despus de 60 das de

    incubacin.

    10. Si hay crecimiento, identificar a M. tuberculosis; las caractersticas del

    crecimiento son masas pequeas, de superficie mate y consistencia crea.

    11. Informar gnero y especie del m.o wncontrado.

  • 43

    Tratamiento de la orina

    1. Recibir la muestra de preferencia la primera orina de la maana en un frasco

    estril de boca ancha.

    2. Centrifugar a 3000 r.p.m. por 30 min.

    3. Decantar el sobrenadante y depositarlo en el frasco original, cuidar de limpiar

    la boca del tubo con fenol al 10%. Hacer el frotis con el sedimento.

    4. Tratar el resto del sedimento con NaOH al 4%, Agregando un volumen 1 a 1 al

    volumen del sedimento.

    5. Dejar reposar 15min a 37C

    6. Seguir los mismos pasos que para la tcnica del esputo para sembrar el

    sedimento con pipeta Pasteur estril.

    7. Realizar la baciloscopia del sedimento.

    Reporte

    En caso de tener BAAR positivo reportar previa correlacionarlo con el cultivo.

    6.5 CUESTIONARIO

    1.- A qu se debe que la tuberculosis sea considerada actualmente como una

    enfermedad emergente?

    2.- Qu otras muestras pueden servir para el diagnstico?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar el reporte?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al manejar pacientes tuberculosos?

  • 44

    6.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICIN DE RESIDUOS

    Figura 15. Diagrama ecolgico. Aislamiento e identificacin de bacterias

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D3. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso..

    D4. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    6.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

    6.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Mac Faddin JF, (2003). Pruebas Bioqumicas para la Identificacin de bacterias

    de importancia clnica. 3 Edicin. ED. Mdica Panamericana.

  • 45

    3.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

    4.- Holt, J., Krieg. N. et al.(1994). Manual Determinativo de bacteriologa de

    Bergey. 10a. Edicin. Editorial Lippincott Williams an Wilkins. Philadelphia USA.

  • 46

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 7. DIAGNSTICO DE ENFERMEDADES MENNGEAS (CULTIVO DE LCR)

    7.1 GENERALIDADES

    En la historia se daba por hecho que la funcin primordial del LCR era la de

    proteccin del SNC y la regulacin de su volumen, en 1926 Cushing propuso la

    idea de que el LCR representaba la "Tercera Circulacin".

    Recientemente se sabe que el LCR contribuye en el transporte de molculas

    como hormonas y aminas de accin neutral activas a travs del encfalo.

    La meningitis es la patologa que ms comnmente se presenta a este nivel,

    debido a que los microorganismos responsables de esta forma clnica pueden

    alcanzar el SNC a travs de la va hematgena (bacteriemia o septicemia) o

    invadir directamente el cerebro (otitis, fracturas de crneo etc.)

    El diagnstico de las enfermedades del SNC se apoya en el examen integral del

    LCR en esta tarea, tanto el mdico como el qumico son responsables de la

    utilidad del examen. El mdico desde la toma de la muestra, la medicin de la

    presin intracerebral etc. y el qumico como realizador directo de los anlisis

    citoqumicos y microbiolgicos del LCR.

    7.2 OBJETIVO

    Realizar en forma correcta el cultivo de lquido cefalorraqudeo para el

    diagnstico de enfermedades menngeas.

  • 47

    7.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Placas con agar sangre de

    carnero, Mac Conkey, Sal y

    Manitol, Medio de Thayer-

    Martin (sin inhibidor), gelosa

    de Levinthal.

    Porta y cubre-objetos

    Equipo de Coaglutinacin

    Centrfuga.

    Tubos con medio de Lowensten-

    Jensen, con caldo tioglicolato, con

    Pruebas bioqumicas: TSI, LIA. MIO

    CS. Urea

    Tubos de 13x 100 mm con base CTA

    conteniendo: glucosa, sacarosa,

    maltosa, fructuosa al 1%.

    Reactivo de Kovacs

    . Pipetas Pasteur estril Aceite de Inmersin.

    Tinta china (Marca Pelikan) Equipo de tincin de Gram

    Equipo de tincin Auramina

    rodamina.

    Taxos de bacitracina y optoquina.

    7.4 PROCEDIMIENTO

    Toma y transporte de la muestra

    1. El LCR es obtenido por un Mdico a travs de puncin lumbar, buscando un

    volumen aproximado de 5 a 10 mL de LCR.

    2. Distribuir la muestra de LCR en 3 tubos estriles, uno de los cuales ser usado

    para el estudio citoqumico mientras que el otro se utilizar para el estudio

    microbiolgico y el tercero para el diagnstico rpido.

    3. Es muy importante que las muestras sean acompaadas de un resumen clnico

    que incluye antecedentes de importancia epidemiolgica.

    4. El examen citoqumico y bacteriolgico del LCR es el requisito indispensable

    para identificar al microorganismos causal de las meningitis de cualquier

    etiologa en particular de las bacterianas.

    Tcnica:

    1. Manejar el LCR en condiciones de esterilidad,

  • 48

    2. Reportar en forma inmediata el resultado de las tinciones y la prueba de

    coaglutinacin para el inmediato manejo del paciente.

    3. Reportar las caractersticas principales del LCR como son: color aspecto,

    presencia de sangre, de cogulos o pelculas.

    4. Si a primera vista la muestra es purulenta puede examinarse

    inmediatamente en forma directa, de lo contrario es de suma importancia

    centrifugar el LCR a 3000 r.p.m. por 5 a 10 min.

    5. Separar el sobrenadante y usar el sedimento para el cultivo y las

    diferentes tinciones.

    6. Observar las tinciones primeramente con el objetivo de 40x y

    posteriormente con el objetivo 100x. Reportar en forma inmediata.

    7. Incubar las placas de gelosa sangre Levinthal y Thayer-Martn a 37C en

    atmsfera parcial de C02 por tres das con una revisin diaria.

    8. En caso de sospechar de meningitis por Micobacterias, se siembra el

    sedimento en el medio de Lowenstein-Jensen con pipeta Pasteur esta se debe

    incubar por 6 semanas con revisin diaria del mismo.

    9. Realizar con el sobrenadante la prueba de coaglutinacin.

    10. Reportar el resultado de esta prueba junto con las tinciones.

    Reporte:

    1. Reportar cualquier presencia de microorganismo se el LCR.

    2. Reportar resultados de cada tincin y el estudio de coaglutinacin.

    3. Reportar los resultados del estudio citoqumico junto con el bacteriolgico.

    4. Reportar la bacteria encontrado as como su antibiograma.

    5. Reportar cultivos sin crecimiento como Negativos a los tres das de incubacin.

    Resultados ideales e interpretacin:

    Consultar en internet los resultados normales y compararlos con la

    interpretacin de cada prueba.

  • 49

    7.5 CUESTIONARIO

    1.- Por qu es importante realizar el estudio de LCR?

    2.- Qu enfermedades menngeas existen, solo los nombres?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar el reporte?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con LCR?

    7.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 16. Diagrama ecolgico.Aislamiento e identificacin de bacterias

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

  • 50

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    D7. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    D8. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    7.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

    7.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Mac Faddin JF, (2003). Pruebas Bioqumicas para la Identificacin de bacterias

    de importancia clnica. 3 Edicin. ED. Mdica Panamericana.

    3.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

    4.- Holt, J., Krieg. N. et al.(1994). Manual Determinativo de bacteriologa de

    Bergey. 10a. Edicin. Editorial Lippincott Williams an Wilkins. Philadelphia USA.

    .

  • 51

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 8. HEMOCULTIVO Y CULTIVO DE MDULA SEA

    8.1 GENERALIDADES

    El cultivo de sangre apoya el diagnstico de las infecciones sistmicas que

    presentan en su evolucin una etapa de bacteriemia septicemia.

    La presencia de microorganismos en la sangre refleja una infeccin activa y

    diseminada en los tejidos; esta situacin puede originarse por:

    BACTERIEMIA: Puede ser transitorio como resultado de un fenmeno comn

    como el cepillarse los dientes.

    La bacteriemia persistente o recurrente implica la evolucin de algunas

    enfermedades como infeccin de vas urinarias, en infeccin de heridas.

    SEPTICEMIA: Presencia de bacterias en sangre y tejidos, acompaado por ataque

    al estado general, las bacterias se multiplican en forma activa liberando toxinas,

    originando manifestaciones clnicas de magnitud diversa (local y sistmica).

    PIEMIA: Formacin de diversos abscesos de tipo purulento de origen bacteriano

    en pacientes comprometidos como son recin nacidos, personas de la tercera

    edad, as como inmunosuprimidos se pueden presentar focos spticos, y poner

    en peligro su vida.

    8.2 OBJETIVO

    Realizar correctamente un hemocultivo y cultivo de mdula sea, a travs de las

    tcnicas especializadas, para la contribucin de un diagnstico adecuado.

  • 52

    8.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Placas de Agar sangre de

    camero, Mac Conkey, Sal y

    Manitol, Levnthal, Thayer-

    Martn y Placas de agar Brucella

    Frasco con tintura de Iodo

    Pruebas bioqumicas: TSI, MIO, LIA,

    CS y Urea

    Microscopio

    Torniquete y torundas con alcohol

    Agujas estriles calibre 21

    Medio difsico de Ruiz

    Castaeda.

    Sensidiscos de Bacitracina y

    Optoquina.Taxos de oxidasa

    Jeringas estriles y desechables de

    5 o 10 MI

    Equipo de tincin de Gram

    8.4 PROCEDIMIENTO

    Toma de muestra y transporte:

    Este tipo de muestra est indicado en casos de fiebre, hipotermia, sensacin de

    enfriamiento, calosfros, postracin, hipotensin, fiebre prolongada e

    intermitente con soplo cardiaco perceptible.

    1. Tomar la muestra cuando el paciente se encuentra al inicio del periodo

    febril, antes de llegar al pico.

    2. El nmero e intervalos de los cultivos depende del cuadro clnico del

    paciente as como de su gravedad.

    3. Es importante saber el tipo de botella de Hemocultivo que se puede

    actualmente usar ya que muchas de ellas contienen sustancia que anulan la

    accin de los antimicrobianos as como el complemento y la fagocitosis.

    4. Puede usarse mdula sea lo que aumentara las posibilidades de obtener

    un buen diagnstico.

  • 53

    5. Seleccionar el sitio de toma de muestra, evitar tomar muestras de catter

    intraarteriales o intravenosos permanentes a menos que la sangre no pueda

    obtenerse por venopuntura.

    6. Limpiar el sitio de venopuntura vigorosamente con torundas impregnadas

    de etanol al 70% o con tintura de yodo en alcohol.

    7. Esperar que seque sin soplar.

    8. Por ningn motivo se debe tocar el sitio despus de que me desinfectado.

    9. Limpiar el tapn de las botellas o tubos de cultivo con alcohol-Iodo.

    10. Extraer la sangre, en volumen acorde a la edad del paciente y marca de la

    botella usada. El volumen recomendado es: niosos de 1 a 3 mL, adultos de 5 mL

    en adelante.

    11. Una vez tomada la sangre se inyecta a la botella con una aguja nueva.

    Mezclar bien en forma homognea para evitar que se coagule.

    12. Mantener la botella inoculada horizontalmente con la parte slida hacia

    abajo durante 20 minutos.

    13. Incubar la botella a 37C durante 6 semanas en forma vertical,

    Hemocultvo Lquido

    1. Tomar la muestra cmo se indic anteriormente.

    2. Incubar a 37C en aerobiosis; inspeccionar las botellas al menos una vez al da

    durante 3 das y luego 2 a 3 veces por semana hasta completar 21 das.

    Botella de Cultivo Bifsico

    1. Emplear botellas de Ruz Castaeda modificada o medios bifsicos

    comerciales.

    2. Tomar la muestra de sangre como se ndic anteriormente.

    3. Inocular la sangre en la botella e incubar a 37C durante 7 das o dejar hasta 45

    das en caso que se sospeche de Brucella.

    4. Incubar en atmsfera de C02 al 5-10%.

  • 54

    5. Inspeccionar los frascos a diario buscando colonias en la superficie del medio

    como seal de un cultivo positivo.

    6. Realizar tincin de Gram en cultivos positivos.

    7. Realizar resiembras en los medios indicados.

    En ausencia de crecimiento visible se efectan resiembras a las 48 h, y luego

    cada semana hasta completar los 21 das, aunque puede continuar por 45 das, y

    solo despus de este tiempo se puede descartar y considerar negativo.

    Mtodo de Lisis

    1. Tomar los tubos que contienen sustancias hemolizantes.

    2. Concentrar los m.o. por centrifugacin a 3000 rpm durante 30 min.

    3. Inocular el sedimento en las diferentes placas de cultivo.

    Mtodo de Fluorescencia

    1. Inocular la muestra en las botellas de acuerdo al tipo de paciente, este tipo de

    botellas tiene medios de cultivo para bacterias aerobias, anaerobias y hongos.

    2. Incuban en un aparato especial (Bactec 9050) que se mantiene a 37C y

    rotando suavemente.

    3. En cuanto se presenta desarrollo bacteriano el equipo cuenta con un sensor de

    fluorescencia la que se va aumentando por el incremento de C02 implcito por el

    propio metabolismo bacteriano esto lo realiza cada 10 min. La alarma avisa al

    qumico la posicin de la botella con crecimiento.

    4. Realizar las resiembras en los medios ya descritos.

    Reporte:

    Es poco frecuente encontrarse dos o ms especies bacterianas diferentes en un

    cultivo de sangre, en la mayora de los casos se trata de alguna contaminacin y

    esto sucede principalmente por una mala toma de muestra.

    S no hay crecimiento a los 45 das hay que dar como negativo el cultivo y se

    desecha la botella.

  • 55

    En el caso de haber crecimiento se identifica a el agente etiolgico con las

    pruebas requeridas por el mismo.

    Es importante mantener informado al mdico como va el hemocultvo de sus

    pacientes principalmente si se encuentran en salas de terapia intensiva.

    Resultados ideales e interpretacin:

    Consultar en internet los resultados normales y compararlos con la

    interpretacin de cada prueba.

    8.5 CUESTIONARIO

    1.- Qu es un hemocultivo?

    2.- Qu microorganismos pueden aislarse de un hemocultivo?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar los anlisis?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con sangre?

    8.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 17. Diagrama ecolgico.Aislamiento e identificacin de bacterias

  • 56

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    8.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

    8.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Mandigan MT, Martinko JM, Parker J (1999).Brock. Biologa de los

    Microorganismos. Ed. Prentice Hall. 8va Edicin. Madrid.

    3.- Nom. 087. Norma oficial Mexicana para el manejo de RPBI.

    4.- Prescott LM, Harley JP, Klein DA (2004). Microbiologa. 5ta. Edicin. Ed. Mc

    Graw-Hill Interamericana. Madrid Espaa.

  • 57

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 9. INFECCIONES DEL APARATO GENITAL: EXUDADO CERVICO VAGINAL Y EXUDADO URETRAL

    9.1 GENERALIDADES

    Los principales agentes asociados a las enfermedades de transmisin sexual ETS

    incluyen virus, bacterias, hongos, protozoarios y ectoparsitos los cuales estn

    involucrados en varios sndromes, por lo que la participacin del laboratorio en el

    diagnstico es relevante.

    En general la identificacin de las bacterias productoras de ETS no siempre es a

    travs de cultivos, en algunos casos se requiere de tcnicas inmunolgicas.

    Como el caso de Treponema pallidum ya que no existe ningn medio sinttico

    para su aislamiento Chlamvdia trachomatis que por ser una bacteria intracelular

    obligada requiere de clulas vivas para su multiplicacin, de tinciones especiales

    o bien de tcnicas de hibridacin para su identificacin. Las infecciones agudas

    pueden extenderse por continuidad en el aparato genital y originar secuelas

    graves en tanto que la infeccin puede tener caractersticas metastsicas y

    transmitirse por va sangunea a otros rganos y tejidos.

    9.2 OBJETIVO

    Realizar en forma correcta exudados cervico vaginal y uretral para el diagnstico

    de infecciones del aparato genital.

  • 58

    9.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Espejos vaginales estriles y

    desechables.

    Hisopos especiales de alginato

    de calcio o de dacron.

    Tubos con solucin salina estril Porta y cubre objetos nuevos

    Placas de gelosa sangre de camero

    Equipo para detectar Clamidia

    (Mtodo de Elisa)

    Papel pH

    Placas de agar sangre humano en

    base agar Columbia, Thayer-

    Martin, Sal y Manitol, Mac

    Conkey, Dnasa con indicador

    Tubos de Biggy, Tubos en base de

    CTA conteniendo: GIucosa,

    Maltosa Fructuosa, Sacarosa y

    Raffinosa.

    Tubos de 13 x 100 mm de

    bioqumicas con: TSI, LIA, MIO, CS

    y Urea

    Cubrebocas

    Guantes desechables estril Lentes protectores

    Sabanas desechables Taxos de oxidasa y de optoquina

    Tubos con caldo soya triplicas con

    NaCl al 6%

    Frasco con solucin de KOH al

    10%.

    Tubos con 0.5 mL de solucin

    acuosa al 1% de hipurato de

    sodio.

    Juegos de colorantes de Gram

    Solucin de ninhidrina al 3.5%

    en acetona butanol 1:1 v/v

    Tincin de Giemsa y Tincin de

    Papanicolau.

    9.4 PROCEDIMIENTO

    Toma y transporte de la muestra:

    1. Tomar la muestra cuando la sintomatologa existe y obligatoriamente en los

    contactos de la pareja sexual.

    2. El paciente no debe estar en tratamiento antimicrobiano.

    3. Es importante que se cuente con el material adecuado como son hisopos de

    algnato de calcio, de dacrn o tratados con solucione Buffer.

  • 59

    4. Este tipo de muestras se deben sembrar en los medios de cultivo adecuados y

    en forma inmediata.

    Muestras de canal anal

    1. Colocar al paciente en posicin boca abajo

    2. Insertar un hisopo aproximadamente 3 cm dentro del canal anal.

    3. Rotar con cuidado el hisopo sobre las criptas del anillo anal y se espera unos

    30 segundos para que se absorba la muestra.

    Muestras de faringe

    1. Tomar con un hisopo de algodn de la parte posterior de la faringe.

    Muestras de lesiones

    1. Obtener las muestras directamente de las lesiones (chancro).

    2. Limpiar la superficie de la lesin suavemente con gasa humedecida en

    solucin salina estril.

    3. Presionar el chancro con el pulgar y el ndice para producir la salida del

    lquido.

    4. Tocar suavemente el lquido de la lesin con un cubreobjetos limpio.

    5. Colocar sobre una gota de solucin salina previamente colocada sobre un

    portaobjeto.

    6. Observar en el microscopio de campo obscuro.

    7. Sembrar la muestra tomada directamente de la lesin si es necesario.

    Tcnica:

    Medicin del pH:

    Es importante la medicin del pH vaginal directamente de endocervix al igual

    que el de uretra.

  • 60

    Prueba de KOH

    1. Realizar esta prueba con la secrecin que queda en el espejo, agregar unas

    gotas de KOH al 10%, reportar positivas si desprende un olor caracterstico a

    "pescado" el cual se debe a aminas voltiles.

    Observacin en fresco

    Son de gran utilidad sobre todo en mujeres en las cuales existe secrecin vaginal

    y en el caso de tricomoniasis, vaginosis bacteriana y candidiasis, as como en la

    trichomomasis en pacientes masculinos.

    1. Colocar las muestras recolectadas en un tubo con solucin salina isotnica.

    2. Tomar una gota de esta muestra y se coloca en un portaobjetos y se cubrir.

    3. Observar al microscopio en objetivo de 40 x y con poca iluminacin.

    4. Reportar si se observan Trichomonas vaginalis, levaduras, clulas clave,

    leucocitos, bacilos de Dderlein

    Observacin de tinciones

    1. Realizar un extendido de la muestra tomada directamente a lo largo del

    portaobjetos de tal manera que si hay leucocitos y clulas e extiendan

    adecuadamente y conserven as su integridad.

    2. Realizar la tincin de Gram y reportar la flora bacteriana existente, si hay

    levaduras, si hay clulas clave, la cantidad de bacilos de Dderlein, si hay

    leucocitos y eritrocitos.

    3. Reportar los diplococos Gram negativos intracelulares presuntivos de N.

    gonorrhoeae en el caso de muestras obtenidas de uretra.

    4. Fijar y proceder de acuerdo a la tcnica los frotis que a usarse para pruebas de

    inmunofluorescencia directa o indirecta.

    5. Observar en campo obscuro.

  • 61

    Aislamiento

    1. Sembrar las muestras directamente en el medio de cultivo en forma adecuada.

    En el caso de Thayer-Martn se debe sembrar en forma de Z con el hisopo y

    posteriormente estrar con el asa.

    2. Incubar en atmsfera parcial de C02 a 37 C las placas de Gelosa sangre, de

    Thayer Martn, de gelosa chocolate y del medio de Casman.

    3. Revisar las placas despus de la incubacin y realizar la tincin de Gram.

    Exudado uretral

    1. Es un examen de laboratorio que se lleva a cabo en los hombres adultos y

    jvenes para identificar organismos en la uretra y en el aparato genital que

    causan infeccin.

    2. Este examen se realiza cuando se presenta uretritis la cual es una infeccin

    caracterizado por la aparicin de exudado uretral.

    3. Las uretritis pueden no ser infecciosas, sin embargo la mayora estn

    producidas por infecciones de transmisin sexual.

    4. Toma de muestra:

    5. Se recomienda al paciente no orinar por lo menos una hora antes de tomar la

    muestra.

    6. En casos de gonorrea, cuando se produce un exudado abundante, presionar

    ligeramente la uretra con el fin de expulsarlo, recoger con un hisopo de

    alginato estril y depositar en el medio de transporte de Stuart.

    7. Al sospechar de infeccin por clamidia, emplear hisopo de alginato de calcio

    adecuado para toma de muestras en varones, introducir de 2 a 4 cm en la

    uretra y frotar las paredes haciendo girar el hisopo durante 5 a 10 segundos;

    con esta muestra se deben hacer de inmediato frotes en portaobjetos limpios

    que se fijan con acetona.

    8. Enviar el tubo y las preparaciones lo antes posible de modo que no lleguen al

    laboratorio despus de 24 horas.

  • 62

    Reporte para el exudado vaginal

    En este tipo de reporte es importante informarle a l mdico lo siguiente:

    1. Edad del paciente.

    2. Sexo del mismo.

    3. Tipo de muestra.

    4. Ao en el que se realiz

    5. Que se observo en la toma de muestra p/e Como se encuentra el

    endocervix. Si hay lceras, cantidad de flujo, olor, etc.

    6. pH Vaginal

    7. Tincin de Gram directa.

    8. Examen en fresco

    9. Resultado del cultivo

    10. Antibiograma

    11 .Bsqueda de Chiamydia trachomatis.

    12. Bsqueda de Treponema pallidum.

    13. Firma del responsable

    Reporte para el exudado uretral

    La presencia de ms de 4 PMN/c y diplococcos Gram negativos intracelulares,

    indicara uretritis por Neisseria gonorrhoeae.

    Si alguna de las tcnicas especiales es positiva se informar: para Chlamydia

    trachomatis (ELISA positiva, PCR positiva).

    Con estos informes se valorar clnicamente al paciente.

    Resultados ideales e interpretacin:

    Consultar en internet los resultados normales y compararlos con la

    interpretacin de cada prueba.

  • 63

    Figura 18.Diagrama de flujo del exudado uretral

    9.5 CUESTIONARIO

    1.- Qu importancia tiene el Haemophilus ducreyi (bacilo de Ducrey) en un

    exudado vaginal o uretral?

    2.- Cules pueden ser infecciones causadas por Clamydia trachomatis?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar los anlisis?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con exudados?

  • 64

    9.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 19. Diagrama ecolgico: del aislamiento e identificacin de bacterias

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    9.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

  • 65

    9.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

    3.- Nom. 087. Norma oficial Mexicana para el manejo de RPBI.

    4.- Prescott LM, Harley JP, Klein DA (2004). Microbiologa. 5ta. Edicin. Ed. Mc

    Graw-Hill Interamericana. Madrid Espaa.

  • 66

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 10. CULTIVO DE EXUDADO OCULAR, INFECCIONES OCULARES

    10.1 GENERALIDADES

    Las infecciones oculares se manifiestan comnmente por el constante lagrimeo.

    Los microorganismos aislados con mayor frecuencia dependen de la edad del

    paciente y su localidad.

    Considerndose dentro de los pacientes de mayor riesgo a los recin nacidos por

    las posibles secuelas irreversibles que pueden originarse en ellos

    Una de las principales molestias que presentan los pacientes sobre problemas

    oculares es la conjuntivitis, muy extendida entre la poblacin de ambos sexos y

    de todas las edades.

    Cualquier infeccin en la conjuntiva del recin nacido se denomina oftalma del

    recin nacido. Los ojos del beb se contaminan, por lo general, con el agente

    infeccioso durante el paso a travs del conducto del parto

    Las causas de oftalma del recin nacido son: Neisseria gonorrhoeae, Bacterias

    oportunistas como estafilococos, Streptococcus pneumoniae, estreptococo A y B

    y algunos gramnegativos como Pseudomonas aeruginosa, Neisseria meningitidis.,

    Chlamydia trachomatis y Herpesvirus humano tipo 2 (herpes genital).

    10.2 OBJETIVO

    Realizar correctamente el exudado ocular para contribuir a un diagnstico clnico

    acertado de infecciones oculares.

  • 67

    10.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Hisopos estriles de alginato de

    calcio o de dacrn.

    Guantes estriles y desechables

    Taxos de optoquina y bacitracna

    Placas de Gelosa sangre de

    camero.

    Tubos de 13 x 100 con medio

    Bggy, bioqumicas : TSI,LIA, MIO,

    CS y Urea

    Placas de Agar; Sal y manitol, Mac

    Conkey, Thayer Martn, Levinthal,

    Dnasa

    Equipo para bsqueda de

    Chlamydia

    Reactivo de oxidasa.

    10.4 PROCEDIMIENTO

    Toma de muestra:

    1. Indicar al paciente que se debe abstener de aplicar soluciones antispticas o

    en su defecto antimicrobiano. En ambos ojos.

    2. No debe ir con pintura.

    3. No llevar puestos lentes de contactos si usa.

    4. Realizar con un hisopo delgado de algnato de calcio o de dacrn la toma de

    muestra.

    5. Tomar en la porcin anterior del saco conjuntival inferior y superior de ambos

    ojos.

    6. Realizar un ligero raspado.

    7. Identificar el ojo de donde procede la muestra; rotular como ojo derecho o

    izquierdo.

    En caso de que el paciente tenga lesiones ulcerosas en cornea solo deber

    tomarlas un mdico Oftalmlogo.

  • 68

    Tcnica:

    1. La muestra se toma del sito de dao y se siembra en los medios de cultivo

    indicados.

    2. Es importante incubar las placas en las condiciones que requieran.

    3. Cualquier crecimiento se le debe efectuar la tincin de Gram.

    4. Se identifica el crecimiento segn el diagrama.

    5. Para bsqueda de Chlamydia se realiza por medio de tinciones o en su defecto

    por mtodos de inmunofluorescencia.

    Reporte:

    Debido al tipo de muestra es importante reportar cualquier bacteria identificada

    para su tratamiento inmediato.

    Reportar el resultado teniendo cuidado de indicar de que ojo procede la

    identificacin.

    Reportar el antibiograma en este tipo de muestra.

    10.5 CUESTIONARIO

    1.- Qu es la Blefaritis ulcerosa o estafiloccica?

    2.- Dependiendo del tipo de glndulas afectadas hay dos tipos de orzuelo,

    cules son?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar los anlisis?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con exudados?

  • 69

    10.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE RESIDUOS

    Figura 20. Diagrama ecolgico: del aislamiento e identificacin de bacterias

    D1. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min y desechar en

    el retrete.

    D2. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico.

    D3. Inactivar con Hipoclorito de sodio al 5% durante 10-15 min. Lavar y secar

    para su reuso.

    D4. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y desechar como residuo orgnico.

    D5. Colectar los residuos en recipientes, etiquetar y confinar en almacen

    temporal hasta su desecho final como RP.

    D6. Esterilizar en autoclave 121C, 15 min y deschar como residuo orgnico,

    lavar y secar los tubos para su reuso.

    10.7 EVALUACIN

    Ver Anexo I: Instrumentos de evaluacin.

  • 70

    10.8 BIBLIOGRAFA

    1.- Koneman EW, Allen SD, Jamda WM, Scneckenherger PC, Win W.

    (1999).Diagnstico Microbiolgico. Texto y Atlas color. 5 Edicin. Ed. Mdica

    Panamericana, SA de CV. Buenos Aires Argentina.

    2.- Mac Faddin JF, (2003). Pruebas Bioqumicas para la Identificacin de bacterias

    de importancia clnica. 3 Edicin. ED. Mdica Panamericana.

    3.- Molina J. Manjarrez M. Tay J. (2010) Microbiologa, Bacteriologa y Virologa.

    Mndez editores. Mxico DF.

  • 71

    SUBCOMPETENCIA 2

    PRCTICA 11. EXUDADO TICO (ODO MEDIO) INFECCIONES TICAS

    11.1 GENERALIDADES

    Dentro de las infecciones que pueden generar complicaciones ms frecuentes

    estn la de los odos ya sean por su forma crnica o aguda. El cuadro inicial puede

    asociarse a infecciones respiratorias mal cuidadas, en nios por la introduccin

    de objetos extraos p/e botones, frijoles etc.

    Las infecciones de odo son frecuentemente asociados a S. pneumoniae, H.

    influenzae y Branhamella catharralis, con menos frecuencia Staphylococcus

    aureus, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae.

    11.2 OBJETIVO

    Realizar correctamente el exudado tico (odo medio) para contribuir a un

    diagnstico clnico acertado de infecciones ticas.

    11.3 MATERIALES, EQUIPOS Y REACTIVOS

    Guantes estriles desechables.

    Reactivo para catalasa

    Hisopos delgados de alginato de

    calcio o de dacron.

    Gasas estriles.

    Colorantes de Gram

    Tubos

    Placas de agar: Sangre de camero.,

    Sal y Manitol, Mac Conjkey,

    Levinthal, Dnasa

    Tubos de 13 x 100 con medio Taxos de optoquina

  • 72

    Biggy pruebas bioqumicas:

    TSI, LIA, MIO CS y Urea.

    Reactivo para oxidasa

    Tubos con 0/F con glucosa al 1%

    Taxos con bacitracina.

    11.4 PROCEDIMIENTO

    Toma de muestra:

    1. Indicar al paciente que se abstenga de aplicarse gotas de antimicrobianos.

    2. Introducir el hisopo teniendo cuidado de no lastimar, indicando el paciente

    hasta donde soporta el hisopo.

    3. Diferenciar los tubos del odo derecho e izquierdo.

    4. Limpiar el odo con solucin de cloruro de benzalconio 1:1000 para eliminar la

    flora contaminante en las infecciones crnicas.

    Cuando se trata de perforaciones del tmpano la muestra debe ser tomada por el

    otorrinolaringlogo

    Tcnica:

    Sembrar la en forma inmediata despus de la toma de muestra en los medios de

    cultivos indicados.

    Efectuar tincin de Gram a Cualquier crecimiento y realizar la identificacin.

    Reporte:

    En el reporte al mdico se debe indicar:

    1. El resultado por separado de cada odo

    2. Como se encontraba este cuando se le tomo la muestra.

    3. Si se encontr algn objeto extrao.

    4. Es importante realizarle el antibiograma en caso de que el cultivo se encuentre

    positivo.

  • 73

    5. S no se asla ningn microorganismo se reporta como negativo a las 72 horas

    de incubacin.

    Resultados ideales e interpretacin:

    Consultar en internet los resultados normales y compararlos con la

    interpretacin de cada prueba.

    11.5 CUESTIONARIO

    1.- Qu es la mastoiditis?

    2.- Qu es la otitis media aguda?

    3.- Qu errores se pueden cometer a la hora de realizar los anlisis?

    4.- Por qu se debe tener cuidado al trabajar con exudados?

    11.6 TRATAMIENTO Y DISPOSICION DE