La Artemia y Su Cultivo

UNIVERSIDAD NACIONAL DE PIURA FACULTAD DE CIENCIAS

DPTO. ACADEMICO DE CIENCIAS BIOLOGICAS

LLAA AARRTTEEMMIIAA YY SSUU CCUULLTTIIVVOO EENN EELL PPEERRUU

POR

ITALO SALGADO LEU

PIURA, FEBRERO 2001.

PRESENTACION

La Artemia y su cultivo en el Perú , representa un esfuerzo académico

que plasma la experiencia del autor en el estudio y aprovechamiento de

este recurso, cuya aplicación se extiende en los campos de la

acuariofilia, acuicultura, industria de la sal, docencia, farmacología,

toxicología, nutrición animal y humana, entre otros.

En el documento se contribuye al conocimiento del recurso, mediante

una revisión de la biología del organismo, basada en estudios liderados

por el Artemia Reference Center de la Universidad de Gante-Bélgica.

Sobre las características de los quistes, estas se han referido

esencialmente, a los colectados y estudiados de la zona de Virrilá y

alrededores del departamento de Piura-Perú, ofreciéndose análisis

biométricos y de eclosión tanto de quistes, como de nauplios.

Se ofrece información sobre las estrategias de producción y resultados

obtenidos de los trabajos realizados en Virrilá sobre esta materia, así

como la forma sobre cómo se puede materializar una actividad de este

tipo, en sus consideraciones desde la selección del lugar hasta el diseño

de las instalaciones.

El presente documento se hace llegar a las personas interesadas

(estudiantes, profesionales y empresarios), en un lenguaje sencillo, para

que sea aprovechado al máximo, tanto en el ámbito académico como

sectorial y empresarial, que motive tanto a la realización de estudios

prospectivos, como de actividades de producción.

CONTENIDO

PRESENTACIÓN

TABLA DE CONTENIDO

LISTA DE FIGURAS

LISTA DE TABLAS

LISTA DE CUADROS

1. INTRODUCCIÓN

2. BIOLOGÍA

2.1. CLASIFICACION SISTEMATICA

2.2. MORFOLOGÍA Y CICLO VITAL

2.3. ECOLOGÍA Y DISTRIBUCIÓN NATURAL

3. CARACTERÍSTICAS DE LOS QUISTES PERUANOS

(ESPECIAL REFERENCIA VIRRILA)

3.1. TAMAÑO DE QUISTES Y NAUPLIOS

3.2. TÉCNICAS DE ECLOSION / INCUBACIÓN

3.3. CALIDAD DE ECLOSION

3.4. DESACTIVACION DE LA DIAPAUSA

3.4.1. MECANISMOS DE DESACTIVACION

3.5. DECAPSULACION

3.5.1. METODOLOGIA

3.5.2. EFECTOS

3.6. COLECTA, PROCESAMIENTO Y CONSERVACIÓN DE

QUISTES

3.6.1. COLECTA

3.6.2. PROCESAMIENTO

3.6.3. SECADO

3.6.4. ALMACENAMIENTO

4. PRODUCCIÓN DE ARTEMIA

4.1. METODOS INTENSIVOS

4.2. METODOS EXTENSIVOS

4.2.1. LA EXPERIENCIA EN VIRRILA

4.2.2. ASOCIACIÓN DE LOS CULTIVOS DE ARTEMIA Y

LANGOSTINO

5. CRITERIOS PARA LA SELECCIÓN DE LUGARES Y DISEÑO

DE CONSTRUCCIÓN

5.1. FACTORES ECOLÓGICOS

5.1.1. SUMINISTRO DE AGUA

5.1.2. CLIMA

5.1.3. HIDROLOGIA

5.1.4. SUELOS

5.1.5. TERRENO

5.2. FACTORES BIOLÓGICOS Y OPERACIONALES

5.2.1. BIOLÓGICOS

5.2.2. OPERACIONALES

5.3. FACTORES ECONOMICOS

5.4. FACTORES LEGALES

5.5. DISEÑO Y CONSTRUCCIÓN

5.5.1. PLANO DE DISEÑO DE PLANTA

5.5.2. DISEÑO DE UNA INSTALACIÓN DE FLUJO

CONTINUO

6. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

LISTA DE FIGURAS

2.1. QUISTES DE ARTEMIA EN LA NATURALEZA

2.2. ESTADO DE ECLOSION Y NAUPLIO

2.3. NAUPLIO EN ESTADO II

2.4. METANAUPLIO

2.5. ESTADO X

2.6. TORACOPODOS

2.7. MACHO ADULTO

2.8. APARATO REPRODUCTOR FEMENINO

2.9. POSICIÓN DE PRE-COPULA

2.10. REPRODUCCIÓN OVOVIVIPARA

2.11. REPRODUCCIÓN OVÍPARA

2.12. DISTRIBUCIÓN MUNDIAL DE POBLACIONES

2.13. DISTRIBUCIÓN NATURAL DE ARTEMIA EN EL PERU

3.1. DIQUE PARA FACILITAR LA COLECTA DE QUISTES

3.2. ORILLA PROTEGIDA CON CAÑA DE BAMBU

3.3. DIAGRAMA DE FLUJO DEL PROCESAMIENTO DE

QUISTES

4.1. SISTEMA DE CULTIVO INTENSIVO

4.2. TANQUE DE CULTIVO

4.3. INFRAESTRUCTURA HIDRÁULICA EN VIRRILA

4.4. SALINIDADES DE ESTANQUES 1 AL 6

4.5.1. PARÁMETROS FISICO-QUIMICOS ESTANQUE 1






4.6.1. COMPORTAMIENTO POBLACIONAL ESTANQUE 1






4.7. FAENA DE ENCIERRO

4.8. RED CONICA DE MALLA CELOSIA EN PASES DE AGUA

4.9. VARIABILIDAD EN LA PRODUCCIÓN DE QUISTES

4.10. DIAGRAMA DE FLUJO DEL CULTIVO INTEGRADO

LANGOSTINO-ARTEMIA

4.11. DIAGRAMA DE ESTANQUE PARA ENGORDE MULTIFASE

UNIESPACIAL

4.12. SALINIDAD DE AGUAS DEL ESTUARIO Y ESTANQUE 1

4.13. COMPOSICIÓN DE COLAS EN LA COSECHA

5.1. CURVA GRANULOMETRICA

5.2. INTERRELACIONES ENTRE INFRAESTRUCTURA Y

MANEJO SEGÚN EL NIVEL DE CULTIVO

5.3. ORIENTACIÓN DE LOS ESTANQUES

5.4. SECCION TIPICA DE ESTANQUES PARA ARTEMIA

LISTA DE TABLAS

3.1. VALORES COMPARATIVOS DE VARIABLES

BIOMÉTRICAS Y DE ECLOSION

4.1. RELACION ENTRE ALTURA DE COLUMNA DE AGUA Y

DIÁMETRO DE ELEVADORES DE AGUA

4.2. INFRAESTRUCTURA DE ESTANQUES EN VIRRILA

5.1. RANGOS DE VALORES PARA LOS DISTINTOS VALORES

QUE INTEVIENEN EN LA SELECCIÓN DE FUENTES DE

AGUA PARA LA IMPLANTACIÓN DE UN PROYECTO DE

CULTIVO DE ARTEMIA.

5.2. PENDIENTES RECOMENDADAS PARA TALUDES DE

DIQUES

LISTA DE CUADROS

3.1. EJEMPLO PARA LA PREPARACIÓN DE SOLUCION

DECAPSULADORA

4.1. CALCULO PARA DETERMINAR LA CANTIDAD DE

QUISTES A ECLOSIONAR

4.2. ANÁLISIS NUTRICIONAL DE BIOMASA DE ARTEMIA

4.3. VARIACIÓN DE RANGOS DE PARÁMETROS FISICO-

QUIMICOS EN EL ENGORDE MULTIFASE UNIESPACIAL

4.4. RESULTADOS OBTENIDOS EN EL ENGORDE MULTIFASE

UNIESPACIAL

4.5. CRECIMIENTO DE LANGOSTINO EN ENGORDE

MULTIFASE UNIESPACIAL

1. INTRODUCCION

La Artemia es un organismo perteneciente al plancton de aguas hipersalinas y

que resulta de interés multisectorial, dependiendo de la aplicación que el

usuario le quiera dar. El tratado que se hace en el presente documento,

precisamente, se desenvuelve en una de sus aplicaciones, como es el campo

de la acuicultura, tanto en la forma cómo se produce (cultiva), como en la

forma cómo se le puede aprovechar.

A nivel mundial existen países que tienen un trabajo relativo bastante

avanzado con relación a otros. Es así, como se ha mencionado, Bélgica, a

través del Artemia Reference Center, ocupa un lugar destacado en este

escenario. España, a través del Instituto de la Sal en Castellón, también tiene

trabajos fecundos en este recurso. En Asia, China realiza su explotación en

salinas, en el nivel comercial. De igual manera, países del sudeste asiático,

como Filipinas, Tailandia, Indonesia y Vietnam. En algunas regiones de

India, Irak, Rusia están registradas con presencia de Artemia.

En América del Norte, se encuentra el mayor productor de quistes, U.S.A. con

el Gran Lago Salado de Utah; y luego la zona de la bahía de San Francisco.

En América del Sur, se tiene a Brasil, Venezuela, Colombia, Perú y Argentina.

Brasil, luego de introducir Artemia en grandes extensiones de salinas, llegó a

producir toneladas de quistes, producción que se redujo a niveles bastante

bajos.

En Perú, se han hecho esfuerzos para dirigir la producción de Artemia en su

producto biomasa y marginalmente quistes, sabiéndose que la biomasa cuenta

con un sector en el mercado que se va acrecentando. En este trabajo se

observa que la biomasa puede ser sostenida en el tiempo y con muy buenos

índices de rendimiento; sin embargo, en los quistes, se observa que su

producción presenta mucha variabilidad, lo que resulta en una necesidad de

continuar con estos estudios.

Las iniciativas privadas hechas en el Perú, demuestran la factibilidad de la

actividad, pero no-basada en forma exclusiva en la producción de quistes, sino

que también en la muy buena producción de biomasa, adicionándose la

integración con el cultivo de langostino.

En los actuales momentos, existen dos coyunturas que hacen viable la

propuesta de integración tratada en este texto: por un lado, el precio del quiste

se ha elevado considerablemente por la baja producción natural en el nivel

mundial, lo que hace más atractiva la operación con indicadores económicos

más sustentables; y por otro lado, el cultivo de langostino en zonas

contaminadas como Tumbes y Ecuador han decaído sus niveles de

producción. Este integrándolo con aguas mas salinas dentro del circuito de

Artemia, permite obtener beneficio adicionales compartidos.

En otras palabras, de esto se trata la propuesta desarrollada en la presente

publicación: El cultivo Integrado Langostino - Artemia en Piura, Perú.

2. BIOLOGÍA

2.1 Clasificación sistemática

• Phyllum Artrópoda

• Clase Crustacea

• Subclase Branquiopoda

• Orden Anostraca

• Familia Artemiidae

• Género Artemia, Leach 1819

De primera intención es válido precisar que el nombre específico

Artemia salina Linnaeus 1758 no es taxonómicamente válido en la

actualidad (Bowen y Sterling, 1978), dado que se encuentra extinguida.

Experiencias de cruzamiento entre diferentes poblaciones de Artemia

han demostrado el aislamiento reproductivo de algunos grupos de

poblaciones ( Barigozzi, 1974; Clark y Bowen, 1976 ) y esto ha llevado

al reconocimiento de especies hermanas ( “sibling”) a las que se les ha

dado nombres diferentes (Bowen et al., 1978).

Entre las cepas bisexuales o zigogenéticas de Artemia (poblaciones

compuestas por individuos machos y hembras) se han descrito hasta la

fecha 7 especies:

Artemia salina: Lymington, Inglaterra (extinguida)

Artemia tunisiana: Europa

Artemia franciscana: América (Norte, Centro y Sur)

Artemia persimilis : Argentina

Artemia urmiana: Irán

Artemia sinica: Asia central y Oriental

Artemia partenogenética: Europa y Asia

Algunas cepas partenogenéticas (poblaciones compuestas

exclusivamente por hembras; no siendo necesaria la fertilización de los

huevos para la reproducción) han sido encontradas en Europa y Asia.

Existen importantes diferencias genéticas (por ejemplo en el número de

cromosomas y en el tipo de isoenzimas que hacen muy confusa la

clasificación sistemática conjunta bajo el nombre de Artemia

partenogenética” (Abreu-Grobois y Beardmore, 1980). Por esta razón

fue sugerido en el primer Simposio Internacional sobre Artemia (Corpus

Christi, TX-USA, Agosto de 1979, ver nota editorial en Persoone et al.,

1980) que salvo que las especies “sibling” de cepas partenogenéticas

puedan ser identificadas (por medio de pruebas de entrecruzamiento con

hermanas conocidas), y hasta que la especiación de estos animales sea

comprendida de formas más clara, solamente se use la denominación

“Artemia”. Con el fin de permitir comparaciones futuras, se

suministrarán tantos detalles como sean posibles con respecto al origen

de la Artemia utilizada (Ej. Localización geográfica, condiciones del

estanque en el momento de la recogida, número comercial del lote de

quistes.)

2.2. Morfología y Ciclo vital

Los lagos salados y estanques de las salinas con poblaciones de Artemia

se encuentran distribuidas por todo el mundo. En ciertos momentos del

año, grandes cantidades de minúsculas partículas marrones (de 200 a

300 micras de diámetro) aparecen flotando en la superficie del lago

(Fig. 2.1) y son arrojadas sobre las orillas por la acción de las olas y el

viento. Este polvo aparentemente inerte está formado por quistes secos

inactivos en estado de criptobiosis (durmientes) manteniéndose así

tanto tiempo mientras permanezcan secos (ver sección 3) .

Fig. 2.1.- Quistes de Artemia (manchas marrones)en orillas de cuerpos de agua

Una vez puestos en agua de mar, los quistes bicóncavos se hidratan

tomando forma esférica y el embrión recobra su metabolismo reversible

interrumpido. Tras unas 24 horas, la membrana externa de los quistes se

rompe (breaking) y aparece el embrión rodeado de la membrana de

eclosión. (Fig. 2.2) Durante las horas siguientes, el embrión abandona

completamente la cáscara vacía a la cual permanece todavía unido.

(estado de "sombrilla") Dentro de la membrana de eclosión se completa

el desarrollo del nauplio, sus apéndices comienzan a moverse y en un

breve periodo de tiempo la membrana de eclosión se rasga ("hatching")

emergiendo el nauplio que nada libremente.

Fig. 2.2.- Estado “sombrilla” en la eclosión del quiste; y Nauplio de Artemia en estado I. 1.- ojo naupliar, 2.- anténula, 3.- antena, 4.-

mandíbula

El primer estado larvario (Fig. 2.2) (también llamado estado I) mide

entre 400 y 500 micras de longitud, tiene un color pardo anaranjado (por

acumulación de reservas vitelinas) y posee tres pares de apéndices: el

primer par de antenas (también llamadas anténulas y que tienen una

función sensorial) el segundo par de antenas (con función locomotora

y filtradora) y las mandíbulas (con una función de captación de

alimento). Un único ocelo de color rojo también llamado ojo naupliar se

encuentra situado en la cabeza entre el primer par de antenas. La cara

ventral del animales se encuentra cubierta por un amplio labro que

interviene en la toma de alimento ( transfiriendo las partículas desde las

setas filtradoras hasta la boca). El estado larvario I no se alimenta ya

que su aparato digestivo no es todavía funcional (permaneciendo aún

cerrados la boca y el ano).

Fig.2.3.- Nauplio en estado II. Nótese abertura anal

Tras aproximadamente 24 horas, el animal muda al segundo estado

larvario (también llamado estado II) (Fig. 2.3). Pequeñas partículas

alimenticias (tales como células de microalgas, bacterias, detritus) con

un tamaño que varía entre 1 y 40 micras son filtradas por el segundo

par de antenas, siendo entonces ingeridas por un aparato digestivo ya

funcional.

La larva continua su crecimiento apareciendo diferenciaciones a lo largo

de las 15 mudas. Así van apareciendo unos apéndices lobulares pares

en la región torácica que se diferenciarán posteriormente en toracópodos

(Fig. 2.4), se desarrollan ojos complejos laterales a ambos lados del ojo

naupliar (Fig. 2.5). Desde el estado X en adelante, se producen

importantes cambios tanto morfológicos como funcionales, por

ejemplo: las antenas pierden su función locomotriz y se transforman en

elementos de diferenciación sexual. Los futuros machos desarrollan

unos apéndices curvados y prensiles mientras que las antenas de las

hembras degeneran en apéndices sensoriales, los toracópodos están ya

completamente formados y presentan 3 partes funcionales (Fig. 2.6): los

telopoditos y endopoditos con acciones locomotrices y filtradoras y los

exopoditos que actúan como branquias.

Los adultos de Artemia miden hasta 10 mm de longitud en las

poblaciones bisexuales y hasta 20 mm en las poblaciones

partenogenéticas. Los adultos se caracterizan por un cuerpo alargado

con dos ojos complejos pedunculados, un aparato digestivo lineal, unas

anténulas sensoriales y 11 pares de toracópodos funcionales.

Fig.2.4.- Metanauplio con apéndices lobulares en región torácica

Fig.2.5.- Estado X . Ojos

Fig. 2.6.- Toracópodos. 1.- Exopodito 2.- Telopodito 3.- Endopodito

El macho (Fig. 2.7) posee un par de piezas prensiles musculosas muy

características (segundo par de antenas) en la región cefálica mientras

que en la parte posterior del tórax se puede observar un par de penes.

La hembra de Artemia no tiene apéndices distintivos en la región

cefálica, pero puede ser fácilmente reconocida por el saco ovígero o

útero que esta situado inmediatamente detrás del undécimo par de

toracópodos .

Los huevos se desarrollan en dos ovarios tubulares situados en el

abdomen (Fig. 2.8). Una vez maduros, los oviductos son visibles

(también llamados sacos laterales).

Fig. 2.7.- Ejemplar macho adulto

La precópula de los adultos se inicia cuando el macho sujeta a la

hembra entre el útero y el último par de toracópodos, con sus antenas

modificadas, curvadas, llamadas “claspers” ( Fig. 2.9). Las parejas

pueden nadar de esta forma durante largo tiempo en lo que se conoce

como posición de monta ("paseo nupcial"), para lo cual mueven sus

toracópodos de forma sincrónica. La cópula es un rápido acto reflejo:

La parte ventral del macho se dobla hacia delante y uno de los penes es

introducido en la abertura del útero fertilizando los huevos. En el caso

de las hembras partenogenéticas la fertilización no tiene lugar y el

desarrollo embrionario comienza tan pronto como los huevos han

llegado al útero.

Fig. 2.8.- Aparato reproductor femenino. 1.- Ovarios tubulares desembocan en el útero o saco ovígero

Los huevos fecundados se desarrollan normalmente en nauplios

nadadores (reproducción ovovovípara) que son depositados por la

hembra (Fig. 2.10). En condiciones extremas ( salinidad elevada, desde

salinidades de 80 ppt en cultivo, bajos niveles de oxígeno) las glándulas

de la cáscara, ( órganos parecidos a uvas situados en el útero), entran en

actividad y acumulan un producto de secreción de color marrón

(hematina). Los embriones solo se desarrollan hasta el estado de

latencia o diapausa (parada reversible del metabolismo embrionario) y

siendo liberados por la hembra (reproducción ovípara) (Fig. 2.11).

Fig.2. 9.- Posición de paseo nupcial o pre-cópula. 1. hembra 2. macho

Fig. 2.10.- Saco ovígero o útero en hembra con reproducción ovovivípara, liberando nauplios

Fig. 2.11.- Saco ovígero o útero de hembra con reproducción ovípara. 1. embriones enquistados, 2. glándulas del corion

Los quistes generalmente flotan en las aguas hipersalinas y son llevados

hasta las orillas donde se acumulan y se secan. Como resultado de este

proceso de deshidratación el mecanismo de diapausa es desactivado

permitiendo a los quistes recuperar su posterior desarrollo embrionario,

una vez que son hidratados en condiciones óptimas de eclosión.

En condiciones adecuadas esta especie puede vivir varios meses,

creciendo de nauplio a adulto en solo 8 días y reproduciéndose a una

tasa de hasta 300 nauplios o quistes cada 4 días.

2.3. Ecología y distribución natural

Las poblaciones de Artemia se encuentran distribuidas en más de 300

lagos salinos naturales o salinas de construcción artificial a lo largo de

todo el mundo. Diferentes cepas geográficas se han adaptado a unas

condiciones que fluctúan dentro de un amplio margen de temperatura

(6-35º C) y composición iónica del biotopo (aguas ricas en cloruros,

sulfatos y carbonatos).

Esta especie se desarrolla perfectamente en agua de mar, sin embargo,

debido a que no posee mecanismos de defensa contra los predadores, se

convierte en una presa fácil de otras especies carnívoras (peces,

crustáceos o insectos). A pesar de ello y por medio de su adaptación

fisiológica a biotopos con una elevada salinidad, la Artemia ha

encontrado un eficaz mecanismo ecológico de defensa contra la

predación, así estos animales poseen el sistema osmorregulatorio más

eficiente conocido en todo el reino animal; además son capaces de

sintetizar eficazmente pigmentos respiratorios(hemoglobina) y poder

hacer frente a los bajos niveles de oxigeno disuelto que existen en los

ambientes hipersalinos; finalmente estos animales tienen la capacidad

de producir quistes en fase de latencia cuando las condiciones

ambientales ponen en peligro la supervivencia de la especie.

Como consecuencia de todo ello, la Artemia no aparece más que a

salinidades donde sus preparadores no pueden sobrevivir(por encima de

70 ppt). La Artemia muere a salinidades próximas a la saturación en

NaCl (por encima de 260 ppt), a causa del extremo stress fisiológico

que le causa la toxicidad del agua en esas condiciones(causada por los

drásticos cambios iónicos en su composición).

La Artemia es un filtrador no selectivo y se alimenta tanto de materia

orgánica particulada (Ej. Detritos biológicos procedentes de aguas de

manglares)como de organismos vivos de tamaño apropiado(microalgas

y bacterias). De hecho, y debido a la falta de predadores y competidores

por el alimento, la Artemia produce, a menudo, grandes monocultivos

cuya densidad está fundamentalmente regulada por la disponibilidad de

alimento. En el medio natural la reproducción ovovivípara (puesta de

nauplios) se da principalmente a bajas salinidades, mientras que los

quistes(reproducción ovípara) se producen a salinidades por encima de

150 ppt.

Los quistes son la causa de la distribución mundial de Artemia. Tanto el

viento como las aves acuáticas(especialmente los flamencos,

Loffler,1964) están considerados como agentes de dispersión; no

obstante, el hombre ha sido, en los últimos tiempos, el responsable de

algunos transplantes de Sudamérica, Australia y el sur este Asiático,

tanto para producir mejoras en la industria salinera como para su uso en

acuicultura. La presencia natural de Artemia está confinada a biotopos

donde las salinidades son suficientemente altas como para impedir la

presencia de predadores o en lugares donde las bajas temperaturas

invernales (cuando las salinidades disminuyen por efecto de las fuertes

lluvias) aseguran un estado no metabólico de los quistes hidratados (el

estado de diapausa del cual no ha sido eventualmente desactivado

todavía)

Los climas con un exceso de agua, ej. Aquellos con una marcada

distinción entre la estación seca y la estación húmeda, pueden

proporcionar condiciones adecuadas para la presencia de Artemia

durante la estación seca (como por ej. Es el caso de los miles de

hectáreas de salinas en el sudeste Asiático), aunque no puede perdurar a

causa de la predación en la época de lluvias (salinidades bajas y

temperaturas elevadas).

Existe información actualizada de los lugares con presencia natural de

poblaciones de Artemia. Esta se basa tanto en las propias observaciones,

como en comunicaciones personales y referencias bibliográficas del

Artemia Reference Center. (Fig. 2.12)

A través de la correspondencia se ha encontrado que ciertas poblaciones

que habían sido mencionadas en la literatura antigua sobre la

distribución de Artemia ya no existen en la actualidad (por ej.

Lymington, Inglaterra; Capodistria, Yugoslavia; etc.).

Esta información no recoge poblaciones estaciónales cuya mayoría ha

sido introducida por inoculaciones en las temporadas de producción

salinera (así por ej. Los casos de Panamá, Costa Rica, Burma,

Tailandia, Filipinas, Vietnam, Indonesia.) En vista de las favorables

condiciones climatológicas existentes en la zona de la Bahía de Rahn en

Vietnam(Vu Do Quynh, 1986) algunas de esas inoculaciones pueden sin

embargo, establecerse como cepas naturales y tendrán que ser añadidas

a la lista a su debido tiempo.

En lo referido a la distribución de Artemia en Perú (fig. 2.13), estas se

encuentran a lo largo de su franja litoral. Existe una reseña de su

existencia en Tumbes en zona de manglares en donde las aguas de altas

Fig. 2.12.- Distribución de poblaciones naturales de Artemia a escala mundial

mareas se salinizan, así como en brazos de mar, en donde el agua

ingresa en mareas extraordinarias (de sicigia) (Quebradas de Bocapán ,

Acapulco).

En el departamento de Piura, se ha observado en Punta Balcones-

Negritos, en lagunas formadas por infiltración de aguas y depósito de

aguas ingresadas desde el mar. En el mismo ecosistema, hacia el sur,

antes de llegar a la desembocadura del río Chira, en la zona de pozos

petroleros, existen charcos con agua de infiltración que poseen Artemia.

Hacia el frente de la desembocadura del río Chira, también existe

presencia de Artemia, en la franja costera que se extiende hasta el

balneario de Colán.

En la parte sur del departamento de Piura, se tiene en el litoral

comprendido entre el estuario de San Pedro y el estuario de Virrilá, así

como también, adentrándose hacia continente a la altura de Matacaballo

en el lugar denominado Hierba Blanca (antiguas salmueras de Minero

Perú). La mayor concentración se encuentra en el lado continental del

estuario de Virrilá, con una población permanente, en virtud de las

condiciones salinas de esta parte. Este estuario es un brazo de mar,

cuyas aguas ingresan periódicamente con la influencia de mareas altas

provenientes del mar de la bahía de Sechura. A lo largo de sus 13 Km.,

se produce una gradiente de salinidad en sus aguas, teniéndose la mayor

salinidad en el fondo de este cuerpo de agua, en donde la sal llega a

precipitar. Aproximadamente un tercio del estuario sirve como biotopo

para la Artemia.

En la parte sur del desierto de Sechura, límite entre los departamento de

Piura y Lambayeque, adyacente con el cerro Illescas, se formó una

inmensa laguna (La Niña.-300 km. de longitud aprox.) con las

precipitaciones del último fenómeno del Niño (1998). En esta, en la

medida que fue evaporándose, la Artemia se fue posesionando del

biotopo, generándose una interesante explotación comercial de quistes,

que existe hasta la actualidad.

Para el departamento de La Libertad, existen reportes para la zona de

Chicama. En Ancash, se tiene en Los Chimus. En Lima, las salinas de

Huacho, Ventanilla y Chilca. En Ica, en la zona de Caucato y salinas

de Otuma. En Arequipa, salinas de Quilca.

Conociéndose la fisiografía del litoral peruano, es indudable que existen

mas lugares con presencia de Artemia, los mismos que en la medida que

se vayan estudiando se irán incorporando a los registros.

Fig. 2.13.- Distribución natural de Artemia en el Perú

3. CARACTERISTICAS DE LOS QUISTES PERUANOS

(ESPECIAL REFERENCIA VIRRILÁ)

3.1. TAMAÑO DE QUISTES Y NAUPLIOS

En general, los quistes de Virrilá son reconocidos por ser pequeños en sus

dimensiones, lo que les favorece para ser utilizados con estadios larvales

mas tempranos. Como se podrá comprender los primeros estadios

larvales necesitan presas chicas que puedan ingresar a través de su

diminuta abertura bucal. Por esta razón, los quistes y nauplios de Virrilá

son apreciados. El diámetro del quiste de Virrilá está en un promedio de

210,5 micras ± 12,5, el mismo que produce un nauplio cuya longitud es

de 403 micras ± 2,03. En la tabla 1 se puede efectuar un análisis

comparativo en cuanto a estas dos variables, con aquellos provenientes de

otras localidades del Perú.

TABLA 3.1.- CUADRO COMPARATIVO DE VARIABLES

BIOMÉTRICAS Y DE ECLOSIÓN ECLOSION

TASA (horas) CEPA DIÁMETRO

(micras)

LONGITUD

DE

NAUPLIO % EFICIENCIA

T0 T90 SINCRONIA

VIRRILA(natural) 1

VIRRILA(cultivo)1

BAYOVAR2

CHILCA3

210,5

±± 12,5

210,8

±± 12,5

215,3

±± 5,18

245,3

±± 11,8

403

±± 2,03

403

±± 1,85

405

±± 1,96

439

±± 1,8

75

±± 15

80

±± 12

73

±± 12

85

±± 5

295,000

±± 28,350

298,000

±± 35,640

281,920

±± 38,720

197,552

±± 18,500

22

24

19

15

38

40

36

20

16

16

17

5

1: año 1996 2: año 2000 3: año 1996

3.2. TECNICAS DE ECLOSION / INCUBACION

Existen técnicas estandarizadas funcionan en forma bastante simple

cuando se trata de pequeñas cantidades al nivel de laboratorio, en las

cuales se tienen en cuenta los factores abióticos que deben acompañar a

la eclosión; sin embargo, cuando se trata de niveles mayores que son

utilizados en instalaciones comerciales de larvicultura, se hace necesario

ajustar parámetros a fin de asegurar mayores eficiencias en la eclosión de

quistes.

Temperatura.- Se recomienda efectuar la eclosión entre 25 a 30

°C. Por debajo de 25 °C, la eclosión se hace lenta y por encima de

30 °C, el metabolismo interno se detiene irreversible. En lugares

con fluctuaciones térmicas diarias o estacionales será conveniente

tener mecanismos que aseguren una temperatura constante dentro

de los límites señalados.

Salinidad.- Generalmente se utiliza agua de mar (35 ppt), sin

embargo con algunas cepas se puede obtener aumentos en la tasa

de eclosión, a salinidades menores (hasta 5 ppt). Se puede trabajar

la eclosión de los quistes dentro de estos límites.

Oxígeno.- Para obtener una eclosión máxima, se debe tener la

capacidad de poder mantener un nivel mínimo de oxígeno disuelto

de 2 mg/l. Para este nivel, y una densidad de 5 gramos de quistes

por litro, se debe asegurar un caudal de aire de 1 litro/minuto por

cada 3 litro de capacidad del tanque de eclosión.

Densidad de quistes.- Como se ha indicado anteriormente 5

gramos por litro debe ser la densidad máximo de quistes para ser

eclosionados.

Iluminación.- Se estima que una buena iluminación para el logro

de una eclosión adecuada, se logra con una intensidad de 2 000 lux.

Esto se consigue colocando dos tubos fluorescentes de 40 watts, en

la superficie del tanque de eclosión.

pH.- Debe mantenerse entre 7 y 8. Para niveles comerciales de

densidades de 5 gramos de quistes por litro, será necesario de

agregar 2 gramos por litro de NaHCO3 (Bicarbonato de sodio),

especialmente cuando se trabaja en salinidades bajas.

El recipiente debe ser preferiblemente transparente y de fondo

cónico, colocándole el tubo de aeración desde el fondo del tanque,

de tal manera de asegurar un movimiento turbulento de todos los

quistes en la solución.

La cosecha se efectuará entre 24 y 48 horas dependiendo de las

características de la cepa. Para esto, se detiene la aeración,

esperando 5 minutos para que las cáscaras vacías se ubiquen en la

superficie del tanque. Para recoger los nauplios, se sugiere

oscurecer la parte superior del tanque con una tela o plástico negro,

dejando libre la mitad inferior de este. Así, los nauplios se dirigirán

hacia el fondo, de donde pueden ser extraídos mediante un sifón.

3.3. CALIDAD DE ECLOSION

La calidad de eclosión que tienen los quistes de Artemia, resulta ser de

importancia para el usuario,- es decir, el larvicultor o acuariófilo-, en

virtud de la gran variabilidad que presentan los quistes en el momento de

eclosionar (Lavens and Sorgeloos, 1987). En este sentido, los distintos

criterios utilizados para definir la calidad de eclosión de un quiste fue

desarrollándose de acuerdo a las necesidades de los distintos usuarios.

Así tenemos que en sus inicios, se tuvo únicamente el criterio de verificar

el PORCENTAJE DE ECLOSION, esto es, el número de nauplios que

se originan de un número conocido de quistes llenos.(multiplicado por

100).

De esta manera se lograba tener una idea de la calidad absoluta de los

quistes que contenían embriones (quistes llenos). No obstante esto, había

algunas consideraciones implícitas que no estaban incluidas en este

primer concepto, como que el producto venía con una serie de

acompañantes(arena, tierra, quistes vacíos, y otros restos). En resumen

no se tenía en cuenta el grado de pureza del producto que se utilizaba

(Sorgeloos et al. 1978). En consecuencia se desarrolló el concepto de

EFICIENCIA DE ECLOSION, definido como el número de nauplios

que nacen de un gramo de quistes comercializado; o también, la cantidad

de gramos del producto necesarios para producir un millón de nauplios.

Todo esto bajo condiciones estándares(48 horas de incubación; salinidad

de 35 ppt; Saturación de oxigeno; 25 °C; intensidad luminosa mínima

1000 lux; pH 8,0 – 8,5). Con esto se premiaba a los productos más

limpios.

Posteriormente, surgió un concepto de mayor avance, teniendo en cuenta

el tamaño del predador, BIOMASA DE NAUPLIOS PRODUCIDA

(Vanhaecke and Sorgeloos, 1983). Se define como la cantidad de

biomasa naupliar expresada en miligramos de peso seco que se produce

de un gramo de producto. Igualmente evaluado en condiciones

estándares. Aquí se considera que un predador va a consumir menos

energía en la ingestión de un menor número de presas grandes frente a un

mayor número de presas chicas para satisfacer sus necesidades calóricas.

Esto asumiendo que el tamaño de la presa puede ser ingerido por el

predador. En este sentido, se premiaba al producto que produce nauplios

más grandes. Sin embargo, este concepto tiene sus limitaciones cuando

se intenta suministrar alimento de este tipo a edades tempranas del

predador, cuando por cierto, el tamaño de la presa es limitante. En este

caso se prefiere productos que proporcionen nauplios más pequeños.

Otro concepto para medir la calidad de eclosión es el referido a la TASA

DE ECLOSION (Vanaecke and Sorgeloos, 1982). Esto consiste en

conocer el momento en que aparece el primer nauplio (T0) y el momento

que el 90 % de quistes ha eclosionado (T90). Entre los dos tiempos

determinados, se deberá encontrar el numero de horas de diferencia. Esto

es lo que se conoce con el nombre de SINCRONIA DE ECLOSION.

Aquellos productos que tengan menor número de horas tendrán una

mayor sincronía. Los quistes eclosionan en un menor número de horas,

en consecuencia, presentan un tamaño más homogéneo.

En la tabla 3.1 se presentan los valores referidos a algunas características

biométricas(tamaño de quiste y de nauplio: estadío I) y de calidad de

eclosión(excepto Biomasa de nauplios producida) para los quistes de

Artemia evaluados según su localidad de producción. En relación a las

características de eclosión, se puede decir que estos quistes se encuentran

en un nivel promedio muy aceptables, teniéndose rendimientos que

fluctúan desde 60% para cepas naturales de Virrilá, 61% para Bayovar, y

68% para Virrilá de cultivo, hasta 92% para cepas de Virrilá de cultivo,

90% para Virrilá natural y 85% para Bayovar. Estos valores máximos

alcanzados en algunos casos en forma propia espontánea y en otras

oportunidades con tratamientos de desactivación de la diapausa. (véase

3.4.)

Respecto a la Eficiencia de eclosión, se tiene que el promedio mas bajo

(281,920 nauplios por gramo de producto) para la cepa de Bayovar y la

máxima (298,000) para la cepa de Virrila de cultivo, no teniendo

diferencias mayores con Virrila natural. Estos valores, sin duda,

representan cifras muy interesantes para los usuarios.

En cuanto a la tasa de eclosión y su correspondiente sincronía, presentan

inicios tardíos de eclosión (después de las 19 horas: Bayovar y 24 horas:

en el caso de Virrila de cultivo) y consecuentemente hasta 36 y 40 horas:

para las mismas cepas. Esto da una sincronía de 16 y 17 horas.

Probablemente, estos quistes presentan menos sincronía respecto a otros,

para lo cual el usuario tendrá que plantear estrategias diferentes para su

utilización en larviculturas, como un mayor tiempo de eclosión, cosechas

parciales de nauplios para aprovechar una mayor homogeneidad de

estadios y su pequeñez de tamaño, que resulta ser una de las ventajas

comparativas importantes de estas cepas

3.4. DESACTIVACION DE LA DIAPAUSA

Con la finalidad de lograr el máximo entendimiento posible de este

fenómeno, así como uniformizar criterios respecto al tema, resulta

necesario introducir conceptos relacionados al mismo. En este sentido,

Lavens y Sorgeloos, 1987 y Drinkwater y Clegg, 1991, son los que han

tratado de describir con abundancia los términos y mecanismos de este

proceso. Así refieren a que el quiste es consecuencia del modo de

reproducción que adopta la Artemia en respuesta a condiciones

ambientales, definidas comúnmente como negativas para la permanencia

de la población en el medio en que se encuentra. Cada especie, incluso

cada cepa, responde de manera distinta a estas condiciones. Algunas

responden a variaciones de salinidad; otras a variaciones térmicas. De

cualquier forma, este tipo de condiciones influyen en el modo de

reproducción que conlleva la puesta de quistes. Estos quistes encapsulan

embriones que han detenido su desarrollo debido a mecanismos

endógenos ya que no lo reasumen aún cuando existan condiciones

externas favorables. Esta situación es la que se denomina DIAPAUSA.

Muchos organismos entran a este estado en previsión a condiciones

adversas en su ambiente para garantizar la existencia de la especie. El

estado de diapausa es superado mediante la ACTIVACION del quiste, es

decir se "rompe" el estado de diapausa, debido a determinados y

específicos estímulos ambientales para cada especie, cepa o incluso, lote

de quistes. Cuando el quiste se ha activado, entra a un estado de

REPOSO, que es un estado hipometabólico, en espera de tener las

condiciones adecuadas para eclosionar. En otras palabras el quiste tiene

desactivada su diapausa, esperando entrar en contacto con agua para

eclosionar. Esto se ha visto en virtud de que hay quistes que son viables,

tienen embrión, pero no eclosionan cuando se le coloca en condiciones

adecuadas de eclosión. Estos, tratados bajo ciertos mecanismos de

desactivación de la diapausa, eclosionan normalmente, o elevan sus

porcentajes de eclosión.

3.4.1. MECANISMOS DE DESACTIVACION DE LA

DIAPAUSA

Como se ha mencionado anteriormente, los métodos de activación

son específicos de especie, cepas o lotes; de tal manera que unos

pueden responder con determinada especie, cepa o lote, mientras

que no pueden tener ninguna o baja respuesta con otros quistes. A

continuación se dan las técnicas más usadas:

a) TRATAMIENTO CON AGUA OXIGENADA

(PEROXIDO DE HIDROGENO-H2O2)

§ Preparar una solución al 5% de H2O2 (Se adquiere en las

farmacias como agente desinfectante de heridas o para

teñidos de cabello)

§ En un recipiente cónico, colocar los quistes en la solución a

una densidad entre 10 a 20 gramos de quistes secos por

litro de la solución. Introducir al fondo del recipiente una

manguera de aeración para mantener los quistes en

suspensión.

§ Luego de 10 minutos, recoger los quistes sobre un tamiz,

lavarlos bien con agua dulce y llevarlos a incubar de forma

inmediata, bajo métodos estándares.

Esta técnica ha dado buenos resultados con quistes de Virrilá

y Bayovar (Salgado, 2000)

b) TRATAMIENTO TERMICO

§ Colocar los quistes en estufa, a temperaturas entre 40 y

50°C por espacio de una semana.

§ Retirarlos y llevarlos a incubar bajo métodos estándares.

Esta técnica ha dado buenos resultados con quistes Virrilá de

cultivo,(Salgado, 2000)

c) CICLOS DE HIDRATACION-DESHIDRATACION

§ Colocar quistes a incubar en agua, a temperatura de 25 °C y

una densidad de 50 gramos por litro, con aeración desde el

fondo del recipiente cónico.

§ Luego de 2 horas, recoger los quistes hidratados sobre un

tamiz, y llevarlos a salmuera saturada de NaCl (300 g/l).

Mantenerlos suspendidos con aeración desde el fondo por

24 horas.

§ Recoger los quistes en tamiz, lavarlos bien con agua dulce

y llevarlos nuevamente a agua dulce por 2 horas.

§ Repetir el ciclo por tres veces.

§ Finalmente, ponerlos a incubar bajo métodos estándares.

d) TECNICAS DE CONGELACION

§ Colocar los quistes en salmuera saturada de NaCl (300 g/l)

y con aeración desde el fondo del recipiente.

§ Llevar la salmuera con los quistes al congelador a -25°C,

durante 1 a 2 meses.

§ Sacar el recipiente con los quistes y dejarlo a temperatura

ambiente por una semana, antes de proceder a su secado o

incubación para la eclosión.

Estas dos últimas técnicas son las que mas bajo resultado dan

con los quistes de Virrilá. Las dos primeras experimentaron

mejoras considerables (hasta de 50%).

3.5. DECAPSULACION

La decapsulación es una práctica que se ha extendido en las

larviculturas de manera rápida, en virtud de la facilidad con la que

se realiza, y las ventajas implícitas que tiene consigo.

3.5.1. METODOLOGIA

a) HIDRATACION

La decapsulación debe hacerse con quistes completamente

hidratados, puesto que de esta manera, se garantiza la

esfericidad del quiste.

§ Colocar los quistes en un recipiente con agua dulce y

con aeración desde el fondo por tiempo máximo de 2

horas.

§ Al cabo de este tiempo, recoger los quistes en un tamiz,

para llevarlo a la solución decapsuladora.

b) TRATAMIENTO CON LA SOLUCION

DECAPSULADORA

§ Para la preparación de la solución decapsuladora de

Hipoclorito de Sodio (NaOCl) (ver cuadro 3.1.)

§ Los quistes hidratados son transferidos a la solución

decapsuladora, la que se encuentra en un recipiente

cónico y con fuerte aeración desde el fondo, que permite

mantener a los quistes en suspensión.

§ Se produce una reacción exotérmica, formándose

espuma.

§ Conforme avanza el tiempo, se produce un cambio de

coloración de los quistes que van desde el marrón hasta

el naranja.

§ Se deberá controlar que la temperatura de la suspensión

no exceda los 40 °C, para lo cual se deberá tener listo

hielo para ir agregando al recipiente.

§ La decapsulación tomará entre 5 a 15 minutos.

§ Para un mejor seguimiento se puede observar los quistes

al estereoscopio, en donde se verificará, si el corión ha

sido removido. En la práctica, el color anaranjado nos

indica que la decapsulación ha terminado.

c) LAVADO

§ Luego de verificar que el corión fue removido, los

quistes deben ser colectados en tamiz y lavados con

abundante agua dulce, hasta desalojar el olor a cloro.

§ Los restos de hipoclorito que pudieran quedar deben ser

desactivados en una baño con una solución de ácido

clorhídrico (HCL)1 N, por tiempo de 1 minuto.

§ Lavar con abundante agua.

§ Proceder a incubar directamente los quistes

Después de aplicado el proceso de decapsulación, es

necesario mencionar que los quistes decapsulados pierden

flotabilidad por habérseles removido el corión, así como no

deben ser expuestos a radiación solar directa.

5.5.2. EFECTOS

§ Facilita la manipulación en la colecta de los nauplios, después

de la eclosión, en virtud que no hay que separar las cáscaras

vacías. Simplemente, los nauplios deben ser lavados y

ofrecidos al predador.

§ La carga microbiana disminuye al haber sido desinfectadas

con hipoclorito, resultando en beneficio para el predador

§ Los quistes decapsulados pueden ser ofrecidos al predador

directamente, ganando en contenido energético y en tamaño

reducido de presa ofrecida.

§ En la mayoría de cepas, aumenta el porcentaje de eclosión en

distintas magnitudes, lo que conllevaría a un ahorro de

producto.

Cuadro 3.1.EJEMPLO PARA LA PREPARACION DE SOLUCION DECAPSULADORA PARA 200 GRAMOS DE QUISTES

-Con refractómetro, determinar el índice de refracción de NaOCl. Es posible que se tenga que diluir el NaOCl para realizar la lectura en el refractómetro. 1 Parte de NaOCl / 1 parte de agua potable: ---------- 1,3576 -Concentración de producto activo en el NaOCl diluido. El índice de refracción se convierte en concentración, mediante la formula siguiente:

y= 3000 x - 4003 donde y : concentración de producto activo; x índice de refracción Entonces: y = 3000 (1,3576) - 4003 y = 70 x 2 (dilución) 140 g/l -Cantidad de producto activo para la decapsulación de 200 g 0,5 g prod. act. --------------- 1 g de quistes 100 g prod. act --------------- 200 g de quistes -Volumen necesario 140 g de prod. act ----------- 1000 ml de solución 100 g de prod. act ----------- 714 ml de solución -Cantidad de NaOH 40% necesario como buffer 0,33 ml NaOH 40% ---------- 1 g de quistes 66 ml NaOH 40% ------------ 200 g de quistes -Volumen total de la solución decapsuladora 14 ml de solución -------------1 g de quistes 2800 ml de solución ---------- 200 g de quistes -Volumen de agua de mar necesaria 2800 - (714 + 66) = 2020 ml -Composición de la solución decapsuladora: 2020 ml de agua de mar 714 ml de NaOCl 66 ml de NaOH 40%

3.6. COLECTA, PROCESAMIENTO Y CONSERVACION DE

QUISTES

3.6.1. COLECTA

a) EN MEDIO NATURAL

Los quistes son colectados de cuerpos de agua salinos,

principalmente de sus orillas como también de lugares en donde

existieron estas masas de agua que se formaron por lluvias o

algunas escorrentías y que al terminar el periodo de lluvias o

cortarse el suministro de agua, estas sufren un proceso lento de

evaporación, salinizandose y finalmente secarse. (véase 2.3.

Ecología). De cualquier manera, los quistes se acumulan en capas

que se van engrosando formándose láminas bastante duras y

ensalitradas ("costras"). Estos lugares en donde generalmente se

hace la recolección, se encuentran apartados de las facilidades de la

civilización, por lo que la tarea se hace más difícil. Estas capas se

extienden por kilómetros, dependiendo del tamaño del cuerpo de

agua. Se emplea abundante personal que va raspando la superficie,

levantando dichas láminas que contiene la masa de quistes. Estas

se acumulan por sectores a lo largo del espacio definido con

presencia de quistes, para luego ser puestas en sacos de

polipropileno. De esta manera, toda esta materia (quistes, arena,

plumas, conchuela, etc) es transportada hacia lugares en donde

exista mayor facilidades para su limpieza.

b) EN INSTALACIONES DE CULTIVO

Los quistes producidos en estanques de cultivo, deben ser

colectados de forma adecuada y conveniente, puesto que el diseño

y la construcción de dicha instalación deben contemplar facilidades

para esta tarea. Lo más conveniente es que los quistes llevados por

el aire hacia las orillas de los estanques, se mantengan en agua; es

decir no se debe permitir que sean transportados y dejados fuera

del agua. En estas circunstancias la colecta se hace en agua en

zonas de orillas. Para estos efectos, existen mecanismos o

estrategias que permiten acondicionar los estanques. Por ejemplo,

a los diques se les deja con pendiente cero y protegiéndolos de la

erosión con empalizadas, recubierta con plástico. (fig. 3.1).

Asimismo, se pueden colocar barreras rompeolas hechas con caña

de bambú (fig. 3.2), haciendo que el agua no golpee en las orillas.

3.6.2. PROCESAMIENTO (fig. 3.3)

Una vez colectados los quistes con la materia acompañante, se

debe someter a un proceso diferencial de flotación, de dos fases,

para separar los quistes:

a) Fase con agua salada:

§ Se coloca la masa colectada en salmuera saturada, en un

recipiente cónico y con fuerte aeración, puesta en la mitad del

contenido de agua.

§ El contenedor debe tener abertura en el fondo para que se pueda

desalojar la materia pesada que sedimenta (arena, conchuela, etc)

§ Esta operación debe mantenerse hasta que termine de sedimentar

toda la materia pesada.

Fig. 3.2.- Protección con caña de bambú, disminuyendo el efecto del oleaje, facilitando la acumulación de quistes en orillas.

b) Fase de agua dulce

§ Luego que se terminó de extraer materia pesada, se detiene la

aeración y se procede a trasladar el sobrenadante a un nuevo

recipiente cónico con agua dulce.

§ En este también se procede con aeración moderada, permitiendo

que los quistes llenos con embrión se hidraten y sedimenten. Este

proceso no debe exceder los 30 minutos.

§ Al cabo de este tiempo máximo, se debe extraer los quistes del

fondo, sifoneando con manguera, o si tuviera una abertura

inferior, mediante esta hacia una malla de 150 a 180 micras.

§ Los quistes vacíos y otra materia ligera será el sobrenadante para

desechar.

3.6.3. SECADO

§ Los quistes colectados en la malla serán centrifugados, para

desalojar el agua sobrante.

§ Enseguida, estos se colocarán en mesas con área suficiente para

su secado hasta que su contenido interno de agua sea inferior al

10%.

§ Alternativamente existen métodos mas sofisticados con corrientes

de aire calentado, cuyo costo es mayor al descrito.

3.6.4. ALMACENAMIENTO

§ Una vez terminado el secado, los quistes deben ser envasados en

recipientes que garanticen, baja humedad y contenido de oxigeno,

en espera de su comercialización.

Fig.3.3.- DIAGRAMA DE FLUJO DEL PROCESAMIENTO DE QUISTES

COLECTA DE QUISTES

TAMIZADO GRUESO

SEPARACION CON AGUA SALADA

SEPARACION CON AGUA DULCE (30')

SECADO

ALMACENAMIENTO

4. PRODUCCIÓN DE ARTEMIA

En los últimos 10 a 15 años, el uso de la Artemia se ha visto

incrementado enormemente en todas las fases de la acuicultura; en

consecuencia, la producción natural se ha visto superada por esta

demanda creciente. Esta demanda, no sólo se ha restringido a los

quistes, tradicionalmente utilizados, sino que se ha extendido al uso

de juveniles y adultos, conocidos como biomasa. En este contexto,

su producción se ha trabajado desde dos formas de manejo: métodos

intensivos y métodos extensivos. Los primeros de ellos, tienen

como base científica y tecnológica, fundamentalmente, los trabajos

en el Artemia Reference Center de la Universidad de Gante,

Bélgica; mientras que los segundos, se encuentran en diversos países

como Brasil, Perú, países del Sudeste Asiático, India, entre otros,

que tienen entre sus principales ventajas, el contar con climas

favorables para esta práctica, en parte o durante todo el año.

4.1. METODOS INTENSIVOS

Estos métodos, básicamente, deben estar dirigidos a lugares en donde el

clima no permite realizar el cultivo al aire libre.

Permite hacer la producción de manera controlada con altas densidades.

Es necesario que en el lugar se cuente con energía y alimento

especialmente preparado para este organismo.

Fig. 4.1.- Sistema de cultivo intensivo. 1.- Tanque de cultivo. 2.-Sedimentador de placas 3.- Filtro biológico: Biodisco 4.- Bomba.

1

2

3

4

w

Fig. 4.2.- Tanque de cultivo 1.- vista de planta 2.- vista frontal. Relación h/w < 1

1/3 w

h

w

1 2

Para este tipo de cultivo, se hace indispensable contar con equipos y

técnicas apropiadas. El tanque de cultivo debe ser equipado con

bombas de aire que al "inyectarlo" en el medio acuático, eleven y hagan

circular el agua (Bossyut y Sorgeloos, 1980).

El sistema de cultivo consiste de un tanque rectangular provisto de una

división central (fig.4.2) y los dispositivos de inyección de aire, que

provocan una circulación de agua consiguiéndose los siguientes efectos:

• Homogeneizar el medio de cultivo.

• Aire continuo para el medio.

• Las partículas de alimento y de desecho son mantenidas en

suspensión.

• El alimento suministrado se distribuye inmediatamente.

Para garantizar una buena circulación y oxigenación del medio, es

necesario tener una distancia entre dispositivos de 25 a 40 cm..

También debe guardarse una relación entre el diámetro del tubo del

elevador y la altura de la columna de agua (Sorgeloos et al., 1986) (ver

tabla 4.1)

El suministro de aire debe hacerse preferiblemente, mediante

sopladores axiales que proporcionan volúmenes mayores de aire de baja

presión, pero sobretodo libre de restos de aceites lubricantes. Se debe

tener presente una relación de 4 m3/hora/ m3 de agua, para producir 300

kg de Artemia por mes.

Tabla 4.1.- Relación entre la altura de la columna de agua y el diámetro

interior del tubo de los elevadores de agua

Columna de agua (mm) Diámetro interior del tubo (mm)

200

400

750

1000

25

40

50

60

La temperatura del medio de cultivo debe estar entre 25 a 30 °C. Si el

ambiente no permite trabajar en este rango térmico, será necesario

acondicionar el tanque para proporcionar artificialmente la temperatura

indicada.

Con relación a la alimentación, se debe pensar en un alimento

preparado, que reúna las siguientes características:

§ Tamaño de partícula menor a 50 micras (Dobbeleir et al., 1980)

§ Digestibilidad y valor nutritivo

§ Solubilidad mínima

Existen varios productos ensayados, como arroz, soya, maíz, leche

descremada, levaduras de cerveza, entre otros.

Con el alimento preparado se debe hacer una suspensión en agua de

mar, que para el caso de las dietas artificiales llega a una concentración

de 75 g/l. Este debe ser suministrado al medio manteniendo una

turbiedad entre 15 a 20 cm, medida a través de disco Secchi, para una

densidad inicial de 5,000 ind./l

El agua del medio de cultivo debe tener un tratamiento de depuración,

para lo cual se sugiere un tanque de sedimentación de partículas

(separador de placas) y una tratamiento biológico (biodisco) para

transformar amonio en nitratos.

La producción obtenida es de 5 a 7 Kg de biomasa húmeda/m3,

pudiendo incrementarse notablemente, con recambios continuos de agua

que alcanzan niveles de hasta el 100% mensual. En esta condición la

densidad inicial se podrá incrementar notablemente hasta 20 mil

individuos/l y sus producciones pueden llegar a los 20 Kg./m3.

4.2. METODOS EXTENSIVOS

Estos métodos se caracterizan por emplearse en lugares en donde las

condiciones climáticas lo permiten, es decir, temperaturas ambientales

en un rango entre 15 a 34 °C y con escasas precipitaciones en parte o

todo el año. Como se comprenderá, estas condiciones permiten efectuar

el cultivo de Artemia al aire libre en estanques de tierra.

Los criterios relacionados a la selección de sitios pueden verse en la

sección 5; por lo que en esta parte se abordará la forma cómo es que se

hace la crianza sobre la base de la experiencia obtenida en Virrilá.

4.2.1. LA EXPERIENCIA EN VIRRILA

a) Infraestructura de estanques

En la figura 4.3 se puede observar las instalaciones en las cuales se

desarrolló la experiencia de cultivo. Se contaba con 6 estanques de tierra

(tabla 4.2), cuyas dimensiones variaron entre 3,500 y 7,500 m2. El primero

de ellos, recibía el agua bombeada directamente del estuario de Virrilá, y

actuaba como estanque reservorio. En él se cultivo langostinos Penaeus

vannamei. (Vease sección 4.2.2)

Tabla 4.2.- INFRAESTRUCTURA DE ESTANQUES EN VIRRILA

ESTANQUE DIMENSIONES (m2)

E-1: RESERVORIO

E-2: EVAPORADOR

E-3: EVAPORADOR

E-4: EVAPORADOR

E-5: EVAPORADOR

E-6: EVAPORADOR

7,500

5,000

4,000

3,500

3,500

3,500

La unidad de bombeo consistía de un motor diesel de 33 HP y una bomba

de 12 " de diámetro, que daba un caudal de 160 l/s.

El agua ingresaba directamente al reservorio y de ella se interconectaba al

estanque 2 y de este al 3 y así sucesivamente. Independientemente, se

contaba con un canal lateral y auxiliar que llevaba agua directamente a

cada uno de los estanques. En resumen, el sistema trabajaba como un flujo

continuo de estanque a estanque, así también, como formas

individualizadas. Esto permitió trabajar cambios de salinidades en cada

estanque.

Los estanques estaban orientados con su mayor eje en dirección SO-NE,

alineados con la dirección del viento predominante en la zona.

La profundidad de los estanques, permitió trabajar columnas de agua

mínimas de 0,80 m.

b) Acondicionamiento de estanques

Los estanques no necesitan ser acondicionados con cal en virtud de tenerse

suelos salinos, con restos de conchuelas (CaCO3) y trabajarse con agua de

mar. De esta forma este paso quedó obviado.

Se procedió a bombear agua al sistema hasta una altura de 0,25 m,

procediéndose a fertilizar con fertilizante orgánico (guano de isla) a razón

de 1,000 kg/ha. Al cabo de 5 días, se procedió a elevar la columna de agua

hasta 0,80 m, momento en el cuál se agregó la misma dosis de fertilizante

orgánico. La productividad del sistema se evaluó por medio de la

transparencia del agua medida con disco Secchi. En los estanques 1, 2 y 3

fue posible mantener

E - 1 E - 2 E - 3 E - 4

E - 5

E - 6

ESTUARIO DE VIRRILA

Fig. 4.3 Infraestructura hidráulica de Virrilá

transparencias hasta 0,40 m, sin embargo en los estanques 4, 5 y 6, no se

llegó a tener transparencias menores a este valor.

c) Inoculación o Siembra

Una vez acondicionado el sistema, se procedió a eclosionar quistes de

Artemia (véase sección 3.2) de la zona de Virrilá a razón de 100 gramos

por estanque, lo que dio una densidad de siembra entre 3,8 a 8,28 nauplios

por litro, según el estanque. (ver cuadro 4.1)

Cuadro 4.1.- CALCULO PARA DETERMINAR LA CANTIDAD DE QUISTES A

ECLOSIONAR

Los quistes se eclosionaron en Piura, y se transportaron a Virrilá (una hora

de viaje), en bolsas plásticas insufladas con oxigeno, y colocadas en cajas

de tecnopor. La siembra en los estanques se realizó al atardecer. Antes de

liberar los nauplios al estanque, se colocaron las bolsas sin abrir en el agua

de los estanques para permitir equilibrar la temperatura de ambos. Al cabo

de una hora, se procedió a hacer la siembra propiamente dicha.

- Volumen de agua del estanque (en litros): Area del estanque (m2) x altura de columna de agua (m) x 1000 l - Número de nauplios requeridos en la siembra: Volumen de agua del estanque (l) x 5 nauplios/l - Cantidad de quistes necesarios para eclosionar: Número de nauplios requeridos en la siembra / Eficiencia de eclosión

d) Manejo de estanque

d.1.- Manejo del agua.

El agua fue bombeada en horas de alta marea al estanque

reservorio por periodos entre 3 y 6 horas por marea. En

este estanque, el agua era regulada en su pase hacia el

estanque 2 en virtud del manejo de la salinidad del

segundo. Las salinidades de trabajo para cada estanque se

pueden observar en la figura 4.4.

En ella se puede apreciar que mayoritariamente, esta se va

incrementando de estanque en estanque debido al principio

de flujo interconectado, de tasa de retención y la

evaporación en la zona (principios considerados para el

diseño de la instalación, ver sección 5.5.2). En esta

consideración, se observan las salinidades que se han

trabajado en cada estanque: desde 50 a 70 ppt (E-1), 70 - 90

ppt (E-2), 80 - 100 ppt (E-3), 80 - 120 ppt (E-4) y 100 - 140

ppt (E-5 y E-6). También se debe resaltar que hay

momentos en que se realizan variaciones que escapan a este

patrón, en virtud del manejo que se hacía de esta variable,

pero de todas formas en líneas generales, existe una

secuencia en el comportamiento de este parámetro. No se

debe olvidar el rango obligado que debió mantenerse en el

E-1, debido al cultivo de langostino (vease sección 4.2.2.)

Complementariamente, se tomaron mediciones diarias en

cada estanque de las siguientes variables: temperaturas del

aire y agua, pH, transparencia y oxígeno disuelto. (fig.

4.5.1 al 4.5.6)

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.4.-SALINIDADES DE ESTANQUES 1 AL 6

0

2040

60

80100

120

140

160

180

TIEMPO

SA

LIN

IDA

D (

pp

t)

Estanque 1 Estanque 2 Estanque 3

Estanque 4 Estanque 5 Estanque 6

Al respecto, la temperatura presenta variaciones diarias

entre 3 hasta 7 °C, siendo la mayor variación en el periodo

invernal. La temperatura del agua mas baja registrada fue

de 15 °C, mientras que la máxima fue de 32 °C.

El pH se mantuvo por encima de 7, moviéndose su

promedio entre 8 y 9.

El oxígeno disuelto siguió el comportamiento usual, es

decir ascendia en el día y bajaba en la noche; siendo su

valor mas bajo registrado de 0,8 mg/l.

d.2.- Manejo de la fertilización

La fertilización en la operación del estanque fue acentuada

como principio en los tres primeros estanques, en virtud de

que la salinidad elevada en los estanques 5 y 6 eran una

limitante de la productividad. Por tal motivo se concentró

prioritariamente en los primeros mencionados. En el

primero, básicamente, por la presencia de langostino. Se

trabajó con dosis de 1,500 a 2,000 kg/ha/mes, repartida en

dosis interdiarias, evaluando sus respuestas por medio de

transparencias de agua con disco Secchi. En determinados

momentos muy específicos, fue necesario complementar

con urea a razón de 500 kg/ha/mes. De esta manera se

obtuvo respuestas interesantes para mantener el sistema en

niveles de producción comercial.

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.5.1.-PARAMETROS FISICO- QUIMICOS (ESTANQUE 1)

SETIEMBRE 95 - AGOSTO 96

0102030405060708090

100

15/0

9/95

25/0

9/95

03/1

0/95

11/1

0/95

19/1

0/95

27/1

0/95

04/1

1/95

12/1

1/95

20/1

1/95

28/1

1/95

07/1

2/95

15/1

2/95

23/1

2/95

31/1

2/95

08/0

1/96

16/0

1/96

24/0

1/96

feb-

96

09/0

2/96

17/0

2/96

25/0

2/96

04/0

3/96

12/0

3/96

20/0

3/96

28/0

3/96

05/0

4/96

13/0

4/96

21/0

4/96

29/0

4/96

07/0

5/96

15/0

5/96

23/0

5/96

01/0

6/96

10/0

6/96

18/0

6/96

26/0

6/96

04/0

7/96

12/0

7/96

20/0

7/96

28/0

7/96

06/0

8/96

14/0

8/96

22/0

8/96

TIEMPO

T° aire T° agua Salinidad pH

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig.- 4.5.2.- PARAMETROS FISICO-QUIMICOS (ESTANQUE 2)

SETIEMBRE 95 -AGOSTO 96

0

20

40

60

80

100

120

140

15/0

9/95

29/0

9/95

13/1

0/95

27/1

0/95

10/1

1/95

24/1

1/95

08/1

2/95

22/1

2/95

05/0

1/96

19/0

1/96

02/0

2/96

16/0

2/96

01/0

3/96

15/0

3/96

29/0

3/96

12/0

4/96

26/0

4/96

10/0

5/96

24/0

5/96

07/0

6/96

21/0

6/96

05/0

7/96

19/0

7/96

02/0

8/96

16/0

8/96

30/0

8/96

TIEMPO


CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.5.3.- PARAMETROS FISICO-QUIMICOS (ESTANQUE 3)


0

20

40

60

80

100

120

140

160

15/0

9/95

29/0

9/95

13/1

0/95

27/1

0/95

10/1

1/95

24/1

1/95

08/1

2/95

22/1

2/95

05/0

1/96

19/0

1/96

02/0

2/96

16/0

2/96

01/0

3/96

15/0

3/96

29/0

3/96

12/0

4/96

26/0

4/96

10/0

5/96

24/0

5/96

07/0

6/96

21/0

6/96

05/0

7/96

19/0

7/96

02/0

8/96

16/0

8/96

30/0

8/96

TIEMPO




0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

15/0

9/95

29/0

9/95

13/1

0/95

27/1

0/95

10/1

1/95

24/1

1/95

08/1

2/95

22/1

2/95

05/0

1/96

19/0

1/96

02/0

2/96

16/0

2/96

01/0

3/96

15/0

3/96

29/0

3/96

12/0

4/96

26/0

4/96

10/0

5/96

24/0

5/96

07/0

6/96

21/0

6/96

05/0

7/96

19/0

7/96

02/0

8/96

16/0

8/96

30/0

8/96

TIEMPO




0

20

40

60

80

100

120

140

160

15/0

9/95

29/0

9/95

13/1

0/95

27/1

0/95

10/1

1/95

24/1

1/95

08/1

2/95

22/1

2/95

05/0

1/96

19/0

1/96

02/0

2/96

16/0

2/96

01/0

3/96

15/0

3/96

29/0

3/96

12/0

4/96

26/0

4/96

10/0

5/96

24/0

5/96

07/0

6/96

21/0

6/96

05/0

7/96

19/0

7/96

02/0

8/96

16/0

8/96

30/0

8/96

TIEMPO


d.3.- Manejo de la población

La población fue evaluada cada 10 días, mediante toma de

muestras, efectuada mediante transectos estandarizados en

los estanques. La técnica consistió en hacer tres recorridos

paralelos en el estanque con una red de malla celosía,

fijada en un marco metálico de 0,3 x 0,3 m de lados. Esta

se mantuvo a 0,1 m del fondo en su recorrido. Los

organismos capturados fueron pesados, tomándose una

submuestra para determinar la composición poblacional,

proporción de sexos, estados reproductivos y biomasa

instantánea. (fig. 4.6.1 a 4.6.6).

La población fue manejada teniendo en consideración el

comportamiento sexual de esta en cada estanque. Así

tenemos que la proporción sexual se inclina hacia las

hembras en los tres primeros estanques (E-1: 75%; E-2:

52,5%; E-3: 60%), con salinidades hasta 100 ppt. En el

estanque 4 se establece una igualdad en la proporción. En

los estanques 5 y 6, se establece mayor proporción hacia

los machos (89 y 95 %, respectivamente), con salinidades

entre 100 y 140 predominantemente. Indudablemente, que

existen momentos en todos los estanques, en que la

población se equilibra en sexos, y es en donde,

lógicamente, se logra una mayor generación reproductiva,

sea esta de larvas y/o de nauplios. (ver figuras 4.6.1 a

4.6.6).

Dentro de las formas reproductivas de la población hembra

es indudable que la reproducción ovovivípara predomina en

todo el periodo del cultivo, es decir producción de

nauplios, lo que aseguró la producción de biomasa; esto en

todos los estanques, con excepción del E-1, en el cual se

produjo una mayor cantidad de quistes en razón de la

predominancia de la reproducción ovípara, que se tuvo en

el corto periodo de operación con Artemia (Setiembre 95 -

Enero 96), a pesar de su baja salinidad (60 - 70 ppt).

La presencia de hembras vacías guardan una relación de

consecuencia con el desove de las hembras con larvas y

con quistes. Su número aumenta, después de la puesta.

La biomasa se mantiene gracias a la reproducción

ovovivípara, observándose desfase entre picos de ambos en

alrededor de 25 días.

d.4.- Cosecha de biomasa

Existe una variada gama de formas de cosechar la biomasa.

En el presente se experimentaron varias de estas. En

términos cronológicos, se empezó con redes chinchorro (de

cerco) confeccionadas con malla celosía para retener a la

Artemia. Se hacían varias calas en el estanque.(fig. 4.7)

En cada una de estas, se arrinconaba a la Artemia para

finalmente recogerla con un calcal (especie de cono

pequeño).

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.6.1.- COMPORTAMIENTO POBLACIONAL SEGUN SEXOS, ESTADOS

REPRODUCTIVOS Y BIOMASA (ESTANQUE 1) OCTUBRE 95 - ENERO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

02/1

0/95

09/1

0/95

16/1

0/95

23/1

0/95

30/1

0/95

06/1

1/95

13/1

1/95

20/1

1/95

27/1

1/95

04/1

2/95

11/1

2/95

18/1

2/95

25/1

2/95

01/0

1/96

08/0

1/96

15/0

1/96

22/0

1/96

29/0

1/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TA

JE

0

100

200

300

400

500

600

BIO

MA

SA

(g)

Machos Hembras Hembras con quistesHembras con larvas Hembras vacias Biomasa


REPRODUCTIVOS Y BIOMASA (ESTANQUE 2) OCTUBRE 95 - AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

02/1

0/95

16/1

0/95

30/1

0/95

13/1

1/95

27/1

1/95

11/1

2/95

25/1

2/95

08/0

1/96

22/0

1/96

05/0

2/96

19/0

2/96

04/0

3/96

18/0

3/96

01/0

4/96

15/0

4/96

29/0

4/96

13/0

5/96

27/0

5/96

10/0

6/96

24/0

6/96

08/0

7/96

22/0

7/96

05/0

8/96

19/0

8/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TA

JES

0

100

200

300

400

500

600

700

BIO

MA

SA

(g

)

Machos Hembras Hembras con huevos Hembras con larvas Hembras vacias Biomasa


REPRODUCTIVOS Y BIOMASA (ESTANQUE 3)OCTUBRE 95 - AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

02/1

0/95

16/1

0/95

30/1

0/95

13/1

1/95

27/1

1/95

11/1

2/95

25/1

2/95

08/0

1/96

22/0

1/96

05/0

2/96

19/0

2/96

04/0

3/96

18/0

3/96

01/0

4/96

15/0

4/96

29/0

4/96

13/0

5/96

27/0

5/96

10/0

6/96

24/0

6/96

08/0

7/96

22/0

7/96

05/0

8/96

19/0

8/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TA

JE

0

100

200

300

400

500

600

700

800

BIO

MA

SA

(g

)

Machos Hembras Hembras con huevos

Hembras con larvas Hembras vacias Biomasa

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.6.4.- COMPORTAMIENTO POBLACIONAL SEGUN SEXOS, ESTADOS REPRODUCTIVOS Y BIOMASA

(ESTANQUE 4) OCTUBRE 95 - AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

TIEMPO

PO

RC

EN

TAJE

0

100

200

300

400

500

600

700

800

900

1000

BIO

MA

SA

(g

)


CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.6..5.- COMPORTAMIENTO POBLACIONAL SEGUN SEXOS, ESTADOS REPRODUCTIVOS Y

BIOMASA (ESTANQUE 5)OCTUBRE 95 - AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

31/1

0/95

07/1

1/95

14/1

1/95

21/1

1/95

28/1

1/95

05/1

2/95

12/1

2/95

19/1

2/95

26/1

2/95

02/0

1/96

09/0

1/96

16/0

1/96

23/0

1/96

30/0

1/96

06/0

2/96

13/0

2/96

20/0

2/96

27/0

2/96

05/0

3/96

12/0

3/96

19/0

3/96

26/0

3/96

02/0

4/96

09/0

4/96

16/0

4/96

23/0

4/96

30/0

4/96

07/0

5/96

14/0

5/96

21/0

5/96

28/0

5/96

04/0

6/96

11/0

6/96

18/0

6/96

25/0

6/96

02/0

7/96

09/0

7/96

16/0

7/96

23/0

7/96

30/0

7/96

06/0

8/96

13/0

8/96

20/0

8/96

27/0

8/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TA

JE

0

100

200

300

400

500

600

700

800

BIO

MA

SA

(g

)


CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.6.6.- COMPORTAMIENTO POBLACIONAL SEGUN SEXOS, ESTADOS REPRODUCTIVOS Y BIOMASA (ESTANQUE 6)

OCTUBRE 95- AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

10/1

1/95

17/1

1/95

24/1

1/95

01/1

2/95

08/1

2/95

15/1

2/95

22/1

2/95

29/1

2/95

05/0

1/96

12/0

1/96

19/0

1/96

26/0

1/96

02/0

2/96

09/0

2/96

16/0

2/96

23/0

2/96

01/0

3/96

08/0

3/96

15/0

3/96

22/0

3/96

29/0

3/96

05/0

4/96

12/0

4/96

19/0

4/96

26/0

4/96

03/0

5/96

10/0

5/96

17/0

5/96

24/0

5/96

31/0

5/96

07/0

6/96

14/0

6/96

21/0

6/96

28/0

6/96

05/0

7/96

12/0

7/96

19/0

7/96

26/0

7/96

02/0

8/96

09/0

8/96

16/0

8/96

23/0

8/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TAJE

0

100

200

300

400

500

600

700

800

BIO

MA

SA

(g

)

Machos Hembras con huevos Hembras con larvas Hembras vacias Hembras Biomasa por muestra

Luego, se colocaron embudos de malla celosía en los pases

de agua. Estos operaban sólo cuando se hacía pasar agua

de un estanque a otro.(fig. 4.8).

Finalmente, se optó por hacer la cosecha nocturna

colocando fuentes de luz (foco a batería o mechero a

kerosene) en el borde del estanque. Al cabo de una hora, la

Artemia estaba concentrada cerca a la fuente luminosa,

Fig. 4.7.- Faena de encierro con red de cerco de malla celosía

Fig. 4.8.- Red cónica de malla celosía en pase de agua de un estanque a otro, para atrapar biomasa de Artemia

obedeciendo a su fototactismo positivo. De esta manera el

personal extraía la biomasa con calcales. Esta resultó ser

la manera más eficiente de realizar la cosecha de biomasa,

pues, se extrae de manera limpia, que sólo necesita

enjuagar con agua potable y esta lista para ser empacada,

congelada o puesta a secar.

d.5.- Producción de biomasa.

La producción de biomasa esta sustentada en la

reproducción ovovivípara, la misma que prevaleció en

todos los estanques con excepción del E-1. Se observa

claramente que el reclutamiento generado por este tipo de

reproducción genera los mayores niveles de población que

permiten una extracción sostenida. Para esto, dos factores

son considerados fundamentales en su manejo: por un lado

la fertilización y por otro, la tasa de bombeo, favorecida

por su integración de esta actividad con el engorde de

langostino efectuado en el estanque reservorio.

Los niveles promedios de producción de biomasa permiten

índices de 3,000 kg / ha / año para el sistema trabajado, con

contenidos buenos de ácidos grasos (20:5 n-3) del orden de

10,20% para la biomasa fresca congelada y 7,99% para

biomasa seca (deshidratada al sol). Igualmente el

contenido proteico resulta interesante: 52,28 para la

biomasa seca. El resultado de los análisis se presenta en el

cuadro 4.2.

CUADRO 4.2.-ANALISIS NUTRICIONAL DE BIOMASA DE ARTEMIA

BIOMASA (%) VARIABLE

CONGELADA SECA

PROTEINA

GRASA

ACIDOS GRASOS

LAURICO (12:0)

MIRISTICO (14:0)

PALMITICO (16:0)

PALMITOLEICO (16:1)

HIDNOCARPICO (16:2)

MARGARICO (17:0)

HIRAGONICO (16:3)

ESTEARICO (18:0)

OLEICO (18:1)

LINOLEICO (18:2)

LINOLENICO (18:3)

ARAQUIDICO (20:0)

EICOSATRIENOICO (20:3)

ARAQUIDONICO (20:4)

EICOSAPENTANOICO (20:5)

DOCOSAHEXANOICO (22:6)

NO IDENTIFICADOS

6,04

8,06

2,84

1,35

16,84

11,49

-----

1,41

2,37

5,78

26,99

4,32

1,34

4,75

4,35

2,22

10,20

0,77

2,98

52,28

7,44

3,34

1,85

16,89

12,10

1,26

0,64

1,23

4,84

24,08

4,70

0,83

8,57

3,66

1,37

7,99

0,90

5,75

d.6- Producción de quistes

La producción de quistes se mantuvo entre el 20 a 30 % de

la población hembra reproductiva. (fig.4.9) Sin embargo

existieron alzas de producciones esporádicas que llegaron

hasta el 50 % de la población. Haciendo análisis de

correlación, existiría alguna influencia de las variaciones de

salinidad (bajadas y subidas) del orden de 8 a 30 ppt que

tendría que ser corroborado con más trabajo exclusivo

sobre esto. No obstante debe remarcarse que esto sucede

en el marco siempre de ser minoritario respecto al mayor

porcentaje de hembras con larvas, aún dentro de estas

variaciones de salinidad que afectan a todas las hembras.

Los niveles promedios de producción de quistes secos están

en el orden de 30 Kg / ha / año para el sistema y para el

periodo comprendido entre Setiembre y Agosto.

d.7.- Manejo de predadores y competidores

Entre los predadores mas importantes que se pueden

mencionar en el trabajo realizado, figuran el insecto

acuático Corixa y una ave migratoria de pequeño tamaño.

Respecto al Corixa, se evidencia drásticamente a bajas

salinidades (70 a 90 ppt); se reduce elevando la salinidad.

Sobre el ave, esta se posa sobre el agua nadando en

círculos. De esta manera, crea un remolino que atrae a las

Artemias cerca de su cuerpo y picotea sincrónicamente.

Como se menciona, esta es migratoria y su incidencia no

gravitó sobre la población de los estanques.

Respecto a competidores, estos no se evidenciaron en el

sistema.

CULTIVO DE ARTEMIA EN VIRRILA, PERUFig. 4.9.- VARIABILIDAD EN LA PRODUCCION DE QUISTES SEGUN

ESTANQUES SETIEMBRE 95 - AGOSTO 96

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

02/10

/95

16/10

/95

30/10

/95

13/11

/95

27/11

/95

11/12

/95

25/12

/95

08/01

/96

22/01

/96

05/02

/96

19/02

/96

04/03

/96

18/03

/96

01/04

/96

15/04

/96

29/04

/96

13/05

/96

27/05

/96

10/06

/96

24/06

/96

08/07

/96

22/07

/96

05/08

/96

19/08

/96

TIEMPO

PO

RC

EN

TA

JE

Est-1 Est-2 Est-3 Est-4 Est-5 Est-6

4.2.2. ASOCIACION DE LOS CULTIVOS DE ARTEMIA Y

LANGOSTINO.

a) EL ENGORDE MULTIFASE UNIESPACIAL DE LANGOSTINO, Penaeus vannamei BOONE EN ALTAS SALINIDADES EN EL DEPARTAMENTO DE PIURA, PERU. El cultivo de langostino en nuestro país esta circunscrito a la

especie Penaeus vannamei, la misma que se ha ido extendiendo

no sólo en lugares de su presencia sino también a lugares extraños

a su distribución natural.

Asimismo se debe expresar que siempre se pensó que la única

area posible para el cultivo de P. vannamei era la zona de

influencia de los manglares de Tumbes; sin embargo la primera

experiencia que demostró lo contrario fue en 1989, en la zona de

Colán, Piura, consiguiéndose 400 kg. de langostinos en 5,500 m2

(Salgado, 1989). Posteriormente se continuó tratando de

demostrar esta factibilidad, entonces en 1991 se ejecutó en Virrilá

una segunda experiencia, consiguiéndose 800 kg. en 7,500 m2

(Salgado, 1991). A pesar de esto, el sector empresarial no se

animó a salir de Tumbes hasta 1995, cuando se establecen unas

pocas empresas en la zona sur de Tumbes (Acapulco y Bocapán).

Las experiencias ejecutadas en Piura, se plantean bajo la

integración con el cultivo de Artemia (microcrustáceo usado

como alimento) (Fig. 4.10). En esta figura se puede apreciar la

forma como se integran y aprovechan ambas actividades,

engranándose una con otra. Es en este contexto que el presente

trabajo planteó sus objetivos, centrándose en una parte de esta

integración, como es el engorde de langostino; proponiendo la

estrategia de cultivo denominado ENGORDE MULTIFASE

UNIESPACIAL, realizándose en el estanque reservorio del

sistema de producción de Artemia. En el cultivo de Artemia, este

primer nivel de estanques permanece sólo, cumpliendo la función

de almacenamiento en donde se debe generar nutrientes y elevar

la salinidad del agua para ser trasladada a otros estanque

subsiguientes. En esta situación es que se aprovechó este espacio

generando un producto de mercado competitivo, no afectándose

la otra actividad, sino por el contrario lográndose beneficios

adicionales, al entregarse aguas más ricas en nutrientes.

a.1 Estrategia de cultivo

La experiencia se ejecutó en las instalaciones (Fig. 4.3) del Fondo

Nacional de Desarrollo Pesquero (FONDEPES), ubicadas a

orillas del estuario de Virrilá, en la provincia de Sechura,

departamento de Piura. Estas instalaciones se han acondicionado

para la producción integrada de langostino-Artemia. El engorde

del langostino de la especie Penaeus vannamei se desarrolló en

el estanque reservorio del sistema, en un área de 7,500 m2.

Se efectuaron dos siembras en el mismo estanque (E-1). En la

primera (23 Noviembre 1995), se estabularon 50 mil post-larvas,

trasladadas del medio natural, de la zona del estero El Bendito,

Tumbes; y en la segunda (17 Febrero 1996) se estabularon 80 mil

post-larvas procedentes de la producción del laboratorio

BIOLTECSA-Los Organos, Piura. La longitud promedio fue de

9 mm. y el peso promedio 0,0017 g.

La estrategia de manejo de esta fase de engorde se planteó bajo el

principio de aprovechamiento máximo de espacio, agua y

alimento, y con la denominación de ENGORDE MULTIFASE

UNIESPACIAL (Fig. 4.11). Esto es, hacer el engorde en varias

fases espacio-temporales, conforme los animales vayan

creciendo. En este sentido, las post-larvas fueron recibidas en un

área reducida dentro del estanque, para lo cual se acondicionó un

corral de malla de 10 m2 de superficie, en donde permanecieron

por 10 días. Después se trasladaron a otro corral de 100 m2, en

donde estuvieron 20 días. Al cabo de esto, se liberaron a una área

de 1,500 m2 y quedaron por 30 días. Luego se duplicó el área a

3,000 m2 por 30 días más, y finalmente se amplió a todo el

estanque -7,500 m2 por 60 días. El tiempo total del engorde debió

ser de 150 días; sin embargo por razones de orden administrativo-

burocráticas, se extendió el periodo hasta 220 días.

El agua fue tomada directamente del estuario de Virrilá con una

salinidad variada (desde 38 hasta 55 ppt, cuando se incrementó

arriba de este valor no se bombeó), y elevada hacia el estanque

1,500 m2

3,000 m2

7,500 m2

reservorio mediante una estación de bombeo conformada por un

motor petrolero marca Peters de 33 HP que accionó una bomba

de 12" de diámetro de succión que suministró un caudal entre 160

a 200 litros/segundo, con una diferencia de altura de 3 metros. El

estanque fue llenado con una columna de agua entre 1,30 a 1,50

m. Se fertilizó con guano de la isla a razón de 1,500 a 2,000

kg/ha/mes, como parte del mantenimiento del sistema Artemia.

Se suministró biomasa fresca de Artemia durante Febrero (223

kg.), Marzo (317 kg.) y Abril (301 kg.). Se preparó alimento

artificial elaborado con Harina de pota (subproductos) 40% +

polvillo de arroz 52% + Artemia biomasa 8%. Este alimento se

preparó haciéndose el mezclado en los momentos previos a su

suministro. La aplicación fue ad-libtum a partir del mes de Marzo

(288 kg.), Abril (365 kg.) y Mayo (710 kg.), dividido en dos

Fig. 4.11.- Diagrama de estanque para engorde multifase uniespacial. Los langostinos se siembran en el espacio más reducido y luego van ampliándose hasta alcanzar el estanque completo.

dosis diarias ( a las 10 horas y a las 18 horas), aplicándose por

todo el estanque. Para apreciar su consumo se colocaron

dispositivos muestreadores (aros de fierro de 0,5 m. de diámetro,

con malla sobre su superficie) colocados sobre el fondo del

estanque en puntos diversos separados homogéneamente en

número de diez. Antes de cada suministro se evaluó visualmente

la presencia de alimento sobre los muestreadores.

Se efectuaron toma de datos físico-químicos: temperatura del aire

y del agua, salinidad, pH y oxígeno disuelto, tres veces al día, en

las horas 06, 12 y 18.

La población de langostinos se evaluó mediante muestras

quincenales para obtener información sobre el desenvolvimiento

de sus longitudes y pesos individuales. Luego de las mediciones,

los ejemplares fueron devueltos al estanque.

a.2. RESULTADOS Y DISCUSION

El engorde de langostino Penaeus vannamei se realizó bajo las

siguientes condiciones físico-químicas (cuadro 4.3): temperatura

del agua (fig. 4.5.1) varió desde 18,0°C (mes de Junio, fase final

del engorde) hasta 32,0°C (mes de Marzo, fase intermedia del

engorde). La salinidad (Fig. 4.12) tuvo variaciones marcadas en

la fuente de agua (estuario de Virrilá) entre 38 hasta 93 ppt., que

sin duda se reflejó en el manejo de la salinidad del agua del

estanque de cultivo: de 49 a 60 ppt.; convirtiéndose en un

parámetro condicionante del cultivo de langostino en la zona. El

trabajar en estos rangos de salinidad resulta extraordinario por

encima de lo reportado como adecuado para P. vannamei

(Clifford, 1994). En esta figura, se puede observar la curva de las

salinidades en el estuario y en el estanque, sus diferencias y los

días de suministro de agua mediante bombeo, los periodos

críticos sin suministro y el límite máximo de salinidad del agua

del cultivo (60 ppt). El pH varió en el estuario entre 7,91 hasta

8,91, mientras que en el estanque se tuvo esta variación en

valores más altos: 8,52 a 9,77. El oxígeno disuelto tuvo

variaciones importantes entre 1,9 mg/l en las primeras horas del

día -06 horas- hasta 12,5 mg/l en los datos tomados alrededor de

las 18 horas del día. Este hecho evidencia básicamente la

influencia de la fotosíntesis y respiración fitoplanctónica del

estanque. A este respecto existe en la zona un factor que

influenciaría en este parámetro, como es el fuerte viento que

ocurre a partir de las 14 horas para adelante. Sin duda que

ayudaría a mantener el oxígeno disuelto en niveles favorables

para el langostino. Lo que resulta difícil es discriminar la

influencia por separado de cada uno de estos factores.

Respecto a los parámetros descritos, se pueden comparar con los

más variados resultados en esta especie. Así tenemos con

relación a la temperatura del agua, las mas bajas se informan en

México, 19 °C (Aragón-Noriega and Calderón-Aguilera, 1997),

como también la más alta 34,1 °C (Martinez-Córdova et al.,

1995). Con respecto a la salinidad, la especie tiene una gran

tolerancia que va desde 10 ppt (Aragón-Noriega and Calderón-

Aguilera, 1997) hasta 57,1 ppt en Virrilá, Perú (Salgado, 1991).

El oxígeno disuelto se encuentra igualmente en 1,9 mg/l, uno de

los pocos reportes al igual que el presente trabajo y el máximo de

12,5 mg/l obtenido en Colán, Perú (Salgado, 1989).

En el cuadro 4.4 se puede observar la producción obtenida, que

alcanzó 842,5 kg. de peso entero (1.123 kg/Ha.). La

sobrevivencia fue de 36,32% correspondiendo una densidad final

de 6,3 individuos por metro cuadrado. Producto de las dos

siembras diferenciadas se obtuvieron dos pesos promedios: 25,97

y 15,14 gramos respectivamente. Estos resultados pueden ser

comparados en primera instancia con la producción alcanzada en

Colán, Perú: 742 kg (Salgado, 1989), Virrilá, Perú: 1.067 kg

(Salgado, 1991), pesos de langostino entero/hectarea, en

condiciones muy similares, resultando el presente algo superior a

lo efectuado en Colán, pero menor que Virrilá-1991, en razón de

un mayor periodo de crianza (5 meses frente a 7 meses). Para

otras condiciones - es decir, salinidades menores, se tienen

rendimientos entre 700 y 1.200 kg/Ha/año-Brasil (Moniz, 1993);

4,500 kg/Ha/año-Venezuela, con mayor nivel de intensificación

dentro del semi-intensivo (Clifford, 1997); de 1.300 a 2.200

kg/Ha/año-Ecuador (Cámara de Productores de Camarón, 1989).

CUADRO 4.3.- VARIACION DE RANGOS DE LOS PARAMETROS FISICO-QUIMICOS EN EL ENGORDE MULTIFASE UNIESPACIAL A ALTA SALINIDAD DE Penaeus vannamei EN VIRRILA, PIURA. DICIEMBRE 95 - JUNIO 96

TEMPERATURA

SALINIDAD

pH

OXIGENO DISUELTO

AIRE

AGUA

ESTUARIO

ESTANQUE

ESTUARIO

ESTANQUE

ESTANQUE

MESES

MIN

MAX

MIN

MAX

MIN

MAX

MIN

MAX

MIN

MAX

MIN

MAX

MIN

MAX DIC.95 ENE.96 FEB. MARZO ABRIL MAYO JUNIO

17,0

20,0

21,0

21,0

18,5

17,0

16,4

29,0

30,5

33,0

33,0

30,0

30,0

24,5

21,0

22,0

23,8

23,5

20,5

19,3

18,0

26,5

29,0

29,5

32,0

28,0

24,0

23,0

38

40

38

40

40

38

38

73

72

86

92

93

93

82

53

51

49

49

50

50

51

56

60

57

55

58

60

59

7,91

8,10

8,11

8,07

8,19

7,98

8,39

8,30

8,47

8,50

8,80

8,67

8,80

8,91

9,15

8,83

8,41

8,73

8,57

8,60

8,52

9,77

9,40

8,92

9,68

8,99

0,10

9,16

2,0

2,2

1,9

2,4

4,1

3,6

8,6

10,2

12,5

9,2

7,0

10,5

CULTIVO INTEGRADO LANGOSTINO - ARTEMIA Fig. 4.12.- SALINIDAD DE LAS AGUAS EN ESTUARIO Y ESTANQUE 1

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

01/1

1/95

15/1

1/95

29/1

1/95

13/1

2/95

27/1

2/95

10/0

1/96

24/0

1/96

07/0

2/96

21/0

2/96

06/0

3/96

20/0

3/96

03/0

4/96

17/0

4/96

01/0

5/96

15/0

5/96

29/0

5/96

12/0

6/96

26/0

6/96

10/0

7/96

24/0

7/96

TIEMPO (dias)

SA

LIN

IDA

D (p

pt)

Salinidad estuario Salinidad Estanque 1

CUADRO 4.4.- RESULTADOS OBTENIDOS EN EL ENGORDE MULTIFASE UNIESPACIAL A

ALTA SALINIDAD DE Penaeus vannamei EN VIRRILA, PERU DICIEMBRE 95 - JUNIO 96

PARAMETRO

1ra. SIEMBRA

2da. SIEMBRA

PROMEDIO

-TIEMPO DE CULTIVO (DIAS) -SUPERVIVENCIA (%) -DENSIDAD FINAL (IND/M2) -PESO TOTAL DE COSECHA (Kg) -PRODUCCION PESO EN COLA (Kg) -PESO PROMEDIO FINAL (Kg) -LONGITUD PROMEDIO FINAL (Kg) -PRODUCCION PESO TOTAL/HA (Kg) -PRODUCCION PESO COLA/HA (Kg) -CONVERSION ALIMENTICIA

224 34,64 2,3 440,5 293,67 25,97 143,8 587 391

140 38,01 4 401 267,33 15,14 114,7 536 358

224 36,32 6,3 842,5 561 20.55 129,25 1.123 749 1,7 : 1

Estos niveles se logran con mayor disponibilidad de agua, que

permita un mayor intercambio, así como una reducción del peso

de cosecha: 15 gramos (Letellier, 1993), que para nuestro caso

esta alrededor de los 120 días (cuadro 4.5), con posibilidades de

tener mayor sobrevivencia puesto que esto va en razón inversa al

tiempo de cultivo. Con esta estrategia, se lograría más rotaciones

del cultivo y mayor productividad por año.

Con relación a la sobrevivencia, en el nivel semi-intensivo se

señala alrededor de 36% para todo el proceso de crianza, desde

post-larva hasta el tamaño comercial (Lee and Wickins, 1996),

nivel alcanzado en las condiciones del presente trabajo. En

Venezuela, Colombia y México, la sobreviencia varía entre 30 y

50% (Clifford, 1997), (Martinez, 1987) y (Aragón-Noriega,

1997), respectivamente.

La conversión alimenticia fue de 1,7 a 1, respecto al alimento

artificial ofrecido.(cuadro 4.4)

En cuanto a la composición de la cosecha, la cola de los

ejemplares, que es uno de los principales productos de mercado,

estuvieron entre 21-25 y 26-30 para la primera siembra y entre

46-50 y 51-55 para la segunda siembra. (Fig. 4.13)

a.3. CONCLUSIONES

§ Se confirma el engorde de langostino Penaeus vannamei

efectuado en condiciones extremas de cultivo en el

departamento de Piura.

§ Esta actividad es factible en altas salinidades hasta 55 ppt. con

producciones mínimas de 1.100 kg/Ha/campaña de 5 meses

desde post-larva hasta peso comercial de 15 gramos.

§ Se plantea una estrategia de engorde en fases, en donde se va

proporcionando mayores espacios a los animales estabulados,

de acuerdo a su ritmo de crecimiento.

§ Es factible ejecutar esta actividad entre los meses de Octubre y

Junio con rangos límites de temperaturas mínimas hasta de

18°C.

§ Es posible su realización en asociación con el cultivo de

Artemia.

0

5

10

15

20

25

30

PO

RC

EN

TA

JE

16 - 20 21 - 25 26 - 30 31 - 35 36 - 40 41 - 45 46 - 50 51 - 55 56 - 60 61 - 65 66 - 70

CODIGOS

CULTIVO INTEGRADO LANGOSTINO - ARTEMIA. VIRRILA,

PERU

Fig. 4.13.-COMPOSICION DE COLAS EN LA COSECHA

CUADRO 4.5.-CRECIMIENTO DE LANGOSTINO EN ENGORDE MULTIFASE UNIESPACIAL EN ALTAS SALINIDADES

FECHA

23-11-95

19-01-96

02-02

17-02

08-03

03-04

20-04

06-05

21-05

01-06

TIEMPO

DE CRIANZA

(dias)

SIEMBRA

56

70

85

105

131

148

164

179

190

AREA

m2

1500

3000

7500

LONGITUD

(mm)

36,0

53,6

78,1

106,3

121,7

137,0

143,1

143,2

149,0

ÙÙ L

17,6

24,5

28,2

15,4

15,3

6,2

PESO

(g)

4,11

10,51

16,05

20,43

21,62

24,02

25,45

ÙÙ P

4,11

6,4

5,54

4,38

3,59

TIEMPO

DE CRIANZA

(dias)

SIEMBRA 26-02

22

47

64

80

95

106

AREA

m2

10

100

1500

7500

LONGITUD

(mm)

9

27,4

49,7

65,6

87,9

115,7

117,0

ÙÙ L

18,4

22,3

15,9

22,3

27,8

1,3

PESO

(g)

0,0017 0,016 0,20

1,22

5,13

10,50

12,48

13,29

� P

0,014 0,18

1,02

3,918

5,37

1,98

0,81

5. CRITERIOS PARA LA SELECCIÓN DE LUGARES Y DISEÑO DE

CONSTRUCCIÓN

Para una adecuada selección de sitio que asegure una inversión y operación

eficientes, se hace necesario efectuar un análisis de los distintos factores que

influyen en estas acciones futuras. De esta forma, se visualizan factores de

distinta naturaleza, algunos específicos y otros más generales, que se pueden

agrupar en los siguientes ordenes:

• Ecológicos

• Biológicos y Operacionales

• Económicos

• Sociales

• Legales

5.1. Ecológicas

5.1.1. Suministro de agua.-Debe garantizarse el abastecimiento

de agua en cantidad y calidad desde una fuente segura. Los

análisis de la fuente deben ser rigurosos. Estas fuentes pueden ser

directamente el mar (playas, bahías, ensenadas), brazos de mar

que penetran en continente (estuarios); salinas con suministro de

agua por acuíferos, y eventualmente pozos con salmueras.

Deberá tomarse muestras de agua de todos los posibles sitios pre-

seleccionados y someterlas a análisis físicos, químicos y

biológicos.

a) Físicos

a.1. Temperatura.- Se debe contemplar aguas con amplios

rangos térmicos. Existe presencia de Artemia desde

temperaturas próximas a la congelación: 6° hasta 35 °C. Se

recomiendan aguas con temperaturas entre 15 y 35 °C. Se

optimiza entre 18 y 28°C.

a.2. Color.- Las aguas pueden variar de color, desde las

transparentes (agua de mar) hasta las verdes o pardas ( de

estuarios).

a.3. Turbiedad.- Pueden ser igualmente transparentes hasta

aquellas en que la turbiedad es alta por razones de

productividad, no debido a partículas inorgánicas. Se debe

preferir aguas turbias productivas.

b) Químicos

b.1. pH.- Las aguas deben estar en un rango entre 6,5 y 9. En

general, si se trabaja con agua de mar estas tienen una gran

capacidad amortiguadora situándose ente 7,5 y 8,5. Deben

descartarse aguas con valores ácidos.

b.2. Oxígeno disuelto.- Este parámetro puede tener valores

bajos, en virtud de la poca exigencia del animal, resistente a

bajos contenidos de oxígeno disuelto en el agua. Para efectos

de selección de sitio, se permite un límite inferior de 3 mg/l.

b.3. Salinidad.- El contenido de sales en las aguas de los

posibles lugares a seleccionar puede variar, dependiendo de la

naturaleza del agua. Se recomienda no tener fuentes de agua

con salinidades menores a 20 ppt. Si fuera así, las áreas de

evaporación en la instalación, va a tener que ser mayor. Esto

va en razón inversa. Contrariamente, se recomienda no ubicar

lugares cuyo suministro de agua no tenga salinidades mayores

de 100 ppt..

b.4. Sustancias tóxicas.- Será necesario tener la posibilidad

para determinar la presencia de ciertas sustancias tóxicas, tales

como pesticidas y metales pesados. Los valores permisibles

se proporcionan en la tabla 5.1.

5.1.2. Clima.-Respecto a este parámetro ecológico es necesario

contar con la mayor información relacionada a:

• Temperaturas ambientales mínimas, máximas y

medias (recomendable:12 a 35 °C)

• Precipitación mínimas, máximas, media (cuánto

menos mejor)

• Evaporación mínimas, máximas, media

• Horas de sol

• Velocidad y dirección del viento.

Con relación a los tipos de clima que existen en la costa peruana,

todos son compatibles con el establecimiento de proyectos para la

producción de Artemia.

Tabla 5.1.- RANGOS DE VALORES PARA LOS DISTINTOS

PARÁMETROS QUE INTERVIENEN EN LA SELECCIÓN DE FUENTES

DE AGUA PARA LA IMPLANTACIÓN DE UN PROYECTO DE

CULTIVO DE ARTEMIA.

PARÁMETRO VALOR

-Temperatura

-Color

-Turbiedad

-pH

-Oxígeno disuelto

-Salinidad

Pesticidas: (microgramo/l)

-Aldrin/Dieldrin

-Clordano

-DDT

-Endrin

-Heptacloro

-Toxafeno

Metales pesados: (microgramo/l)

-Cadmio

-Cromo

-Plomo

-Mercurio

15 –28 °C

transparente a verde /pardo

sin límite debido a materia orgánica

6,5 – 9

>3 mg/l

25 – 100 ppt

0,003

0,01

0,001

0,004

0,001

0,005

10

100

100

0,1

5.1.3. Hidrología.- Se hace necesario contar con información de

avenidas de cursos de agua en el área de influencia del sitio por

seleccionar, Igualmente, información sobre áreas inundadas en

esos periodos y cotas máximas alcanzadas por las aguas. Esta

información es sumamente importante, sobretodo en aquellas

zonas en donde se presentan periodos lluviosos abundantes y

esporádicos, en razón que los lugares sometidos a evaluación se

presentan secos en la mayor parte del tiempo (años inclusive) y

en determinado momento se ven inundados, lo que haría peligrar

las instalaciones.

5.1.4. Suelos.- Investigar las condiciones del suelo y subsuelo

para la futura construcción y operación de las instalaciones de

cultivo.

Las técnicas de análisis varían desde la simple inspección visual

hasta exploraciones detalladas del subsuelo y pruebas de

laboratorio. En todo caso la inspección visual es una observación

preliminar basada en la experiencia del observador.

Los detalles se logran haciendo un hoyo de 0,8 x 0,8 x 1,5 a 2 m

de profundidad. Si después de los 0,6 a 1 m se observa una capa

de suelo impermeable, será suficiente la excavación.

Dependiendo del terreno y su forma se podrá hacer un hoyo por

hectárea, para áreas planas o pendientes muy suaves. Si se trata

de terrenos con fuertes pendientes se deberá aumentar el número

de hoyos por hectárea.

Del hoyo se pueden obtener muestras disturbadas (mezcladas o

revueltas) o no disturbadas.

Se recomiendan suelos arcillo-arenosos. Suelos con capas

orgánicas mayores de 0,60 m de espesor, no se recomiendan.

La granulometría del suelo tiene suma importancia para efectos

constructivos. El fondo de los estanques debe tener una curva

granulométrica ubicada a la izquierda de la curva A (fig.5.1). El

coeficiente de permeabilidad de este suelo debe ser menor a 5 x

10-6 m/seg.

Para el caso de los diques, la curva granulométrica debe situarse

entre la curva A y B. El coeficiente de permeabilidad debe estar

entre 5 x 10-6 y 1 x 10-4 m/seg.

Para hacer la medida del coeficiente de permeabilidad deberá

hacerse la prueba de infiltración en terreno (en el hoyo) o en

laboratorio (en probeta).

5.1.5. Terreno.- Primero, debe tenerse la confirmación que el

terreno esta disponible.

Se recomienda una pendiente del terreno no mayor de 2%.

Terrenos no aptos para la agricultura y eriazos son fáciles de

adquirir.

El nivel de elevación del terreno y niveles de inundación son

importantes tomarlos en consideración para la construcción de

estanques.

El área no debe presentar depresiones susceptibles de

inundaciones, y si los tiene debe tener posibilidad de ser

drenadas.

El nivel máximo de inundaciones no debe exceder al nivel de la

corona de los diques propuestos. Para esto, la observación de

marcas en puentes, terrenos, así como preguntas a lugareños,

resultan ser importantes.

5.2. Biológicos y Operacionales

5.2.1. Biológicos a) Selección de especie y razas.- Dentro del género Artemia

existe una gran diversidad de especies (véase 2.1) y dentro de

estas, existen razas que están diseminadas en todo el mundo.

Para los efectos del cultivo, resulta necesario, primero, dar una

mirada sobre las poblaciones naturales contiguas o próximas al

área seleccionada para desarrollar el proyecto; de esta manera se

estaría asegurando en gran medida el éxito del mismo al trabajar

con especies adaptadas a la zona por naturaleza. No es

recomendable trabajar con especies introducidas puesto que van a

estar en desventajas adaptativas frente a las autóctonas. Existen

trabajos publicados sobre el desplazamiento que sufren las

especies introducidas frente a las autóctonas. (Narciso, 1989).

En este sentido se debe tomar las previsiones para contar con el

recurso disponible para efectuar la siembra, luego de un análisis

detallado sobre ventajas y desventajas de especie y raza

seleccionada.

b) Tipo de Proyecto.- En conjunto con otros parámetros, se

deberá evaluar la magnitud del proyecto, de cuyo resultado se

definirá la escala a trabajarse (pequeña: < de 5 ha; mediana: de 6

a 20 ha; e industrial: > de 30 ha).

c) Sistema de cultivo.- Esta referido al nivel de manejo que se

propone efectuar. Existen tres niveles claros de manejo:

Extensivo, semi-intensivo e intensivo; cada uno de ellos con

características marcadas en cuanto a infraestructura, y manejo,

que se relacionan en forma inversa entre ambas según el tipo de

manejo. Es decir, a mayor infraestructura, menor intervención en

el manejo y viceversa. (Ver Fig. 5.2)

INFRAESTRUCTURA

MANEJO

Figura. 5.2.- Interrelaciones entre infraestructura y manejo, según el nivel de cultivo

5.2.2. Métodos operacionales.

a) Tipos

a.1. Estático.- Este método indica que el agua que se coloca

en los estanques permanece en él, reponiéndose para mantener

un cierto nivel. En consecuencia el gasto de agua se

EXTENSIVO SEMI-INTENSIVO INTENSIVO

minimiza. Debe esperarse que se alcance la salinidad

apropiada para la Artemia.

a.2. Flujo de agua continuo.- En este método, los estanques

tienen que estar interconectados, permitiendo que el agua

circule, en forma permanente o en determinadas horas del día.

En el sistema, los primeros estanques que reciben el agua,

tendrán salinidades bajas, mientras que los estanques

posteriores, tendrán salinidades altas. En este sistema es muy

recomendable la integración del cultivo de Artemia con

langostinos Penaeus. (véase 4.2.2).

b) Niveles de producción..- Será necesario tener definido con

anterioridad, cuánto es lo que se piensa producir. Deberá hacerse

un ejercicio que relacione este parámetro con las capacidades del

mercado y técnico-económicas.

c) Tamaño estimada del área.- Igualmente, se deberá definir el

tamaño y forma de estanques e instalaciones complementarias.

(véase tipo de manejo)

5.3. Factores económicos

En primer lugar es necesario tener conocimiento del plan de desarrollo

del área o áreas seleccionadas. En él se podrá apreciar las proyecciones

que tiene la zona en el corto, mediano y largo plazo.

Deberá averiguarse la propiedad, disponibilidad y el valor del terreno.

Generalmente, estas tierras son de propiedad de comunidades o del

estado y están a disponibilidad del futuro inversor, cumpliendo con los

trámites y/o pagos establecidos para estos casos.

Se debe tener conocimiento sobre las regulaciones, restricciones y

derechos que existen sobre el terreno, de tal manera de evitar un

sinnúmero de problemas relacionados.

Conocer la disponibilidad de equipamiento, mantenimiento y repuestos

para la operación del proyecto; de materiales de construcción; de

fertilizantes orgánicos e inorgánicos.

Es necesario saber donde se ubican los mercados para la producción y

determinar su demanda.

El aspecto de costos y formas de financiamiento, resulta importante.

Con que infraestructura de frío se cuenta y dónde.

Qué disponibilidad de profesionales, técnicos y mano de obra se tiene.

Estos tienen la experiencia apropiada o deben ser adiestrados.

Con qué apoyo razonable se deberá prever para el personal permanente.

5.4. Factores legales

Hay que tener un cabal conocimiento de los requerimientos legales en el

ámbito general y sectorial, tanto en el nivel local y nacional.

Se debe familiarizar bien con estos requisitos antes de iniciar el

proyecto.

Conocer los permisos especiales específicos requeridos sobre

determinadas cosas.

Para operar en zonas costeras se requieren permisos especiales.

5.5. Diseño y construcción

Para los efectos de hacer el diseño de todas las instalaciones (acuícola y

complementarias) en el área seleccionada, es necesario contar

previamente con su levantamiento topográfico, el mismo que será

plasmado en un plano a una escala que puede variar entre 1:500 hasta

1:3000, dependiendo del tamaño de dicha área escogida y que permita

observar de manera cómoda los detalles que se van inscribir en él. Este

plano topográfico, deberá solicitarse con curvas de nivel de 0,25 de

separación altitudinal. Esto permitirá afinar los cálculos de movimiento

de tierra.

Es sobre este plano topográfico que se van a detallar todas las

propuestas de la infraestructura general.

5.5.1. Plano de diseño de planta:

Este plano deberá contener, básicamente, la posición de la unidad

de bombeo, posición del canal de abastecimiento y de drenaje,

con su respectiva indicación de la dirección del flujo de agua,

tamaño y disposición de los estanques y todo el conjunto de

edificaciones: laboratorios, almacenes, oficinas, viviendas, entre

otros.

Fig. 5.3.- Orientación de los estanques, teniendo en consideración la dirección del viento predominante

3,0 m 1,5 m 3,0 m

0,7 - 1,2 m 1 1 2

Fig. 5.4.- Sección típica de estanques para Artemia. 1. Dique perimetral 2. Dique central

Para el trabajo mismo, se ofrecen algunos criterios:

-Orientar el eje diagonal mayor de los estanques en forma

paralela a la dirección del viento predominante.(fig. 5.3)

-Los estanques deben ser diseñados para contener una columna de

agua entre 0,7 y 1,2 m.. Los estanques iniciales del sistema

(reservorio) deben tener mayor columna de agua que los

posteriores.

-Los diques perimetrales (fig. 5.4) deberán tener una altura

máxima de 0,5 m. por encima de la superficie de agua contenida;

una amplitud de corona entre 3 y 4,5 m (si es que va a servir

como camino carrozable), y mayor, aún, si va a conducir un

canal.

-La pendiente de los taludes de diques estará en función del tipo

de suelo utilizado para su construcción. (ver tabla 5.2)

Tabla 5.2.-Pendientes recomendadas para los taludes de diques

Tipo de suelo Pendiente

Arena suelta

Areno-arcilloso

Arcillo-arenoso

Arcilla

4 : 1

3 : 1

2,5 : 1

1 : 1

-Los diques centrales pueden tener menos espesor (ancho). Se

recomienda como mínimo una corona no menor de 1,5 m.

-Para los efectos constructivos, la acumulación de tierra en la

formación de un dique por relleno, esta se deberá ir colocando por

capas de 0,30 m e inmediatamente compactar; de esta manera se

consigue una buena consolidación del dique al final de su

construcción.

-Los estanques tienen estructuras de ingreso y de salida de agua.

Estas deben estar previstas para dejar pasar el caudal máximo

calculado para la operación (llenado, vaciado, e intercambio).

Para el caso del sistema de flujo continuo estas estructuras deben

tener ubicación intercaladas (fig. 4.3).

-Deben estar provistas de mallas y mecanismos de regulación del

pase de agua.

5.5.2. Diseño de una instalación de flujo continuo.

Para el diseño de una instalación de flujo continuo para la

producción de Artemia (integrada con langostino Penaeus, véase

4.2.2), se recomienda desarrollar la infraestructura de estanques

en forma modular, de tal manera que se logre independencia entre

módulos. Por ejemplo , si se tiene un área de terreno de 100

hectáreas, se puede diseñar 5 módulos de 20 ha o 10 módulos de

10 ha. Cada uno de los módulos estará conformado de estanques

evaporadores de los cuales el primero de ellos podría

denominarse como reservorio.

Para los efectos de dimensionar las instalaciones, se aplican

modelos en los cuales se consideran tasas de bombeo, tiempos de

retención, y superficies de estanques con sus respectivas

salinidades. (Sorgeloos et al., 1986).

Se inicia calculando el caudal (Pi) que debe ser bombeado al

estanque reservorio, mediante la siguiente formula:

i

i

iii

SS

AEP

11 −−

+=

donde:

Pi : caudal a ser bombeado (litros/día)

Ei: tasa de evaporación de la zona(litros / m2 / día)

Ai: Area del estanque reservorio (m2)

Si: Salinidad en el reservorio (ppt)

Si-1: Salinidad de la fuente de agua (ppt)

El área Ai y la salinidad Si son definidos arbitrariamente; El área

Ai va desde un 40 a 60 % del área total del módulo, dependiendo

del número de estanques que viene posteriormente.

Luego viene la determinación del área del siguiente estanque

(Ai+1), la misma que esta dado por:

1

11

1

)1.(

+

++

+

−=

i

i

ii

i ESS

PA

donde:

Pi+1 : Caudal que va a fluir al segundo estanque

Ei+1 : Tasa de evaporación del segundo estanque

Para el cálculo de Pi+1, se hace mediante la siguiente fórmula:

).(1 iiii AEPP −=+

De esta manera podemos seguir calculando áreas y caudales para

los siguientes estanques y luego plasmarlas en el correspondiente

plano de planta.

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