Desarrollo de anticuerpos policlonales IgY contra Vitelogenina...

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"Desarrollo de anticuerpos policlonales IgY contra Vitelogenina (Vtg), como biomarcador esteroidogénico en Oreochromis niloticusJairo Caza Barcia V Congreso Internacional de Acuicultura en Aguas Continentales Sangolquí del 17 al 19 de mayo del 2016

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"Desarrollo de anticuerpos policlonales IgY

contra Vitelogenina (Vtg), como

biomarcador esteroidogénico en

Oreochromis niloticus”

Jairo Caza Barcia

V Congreso Internacional de Acuicultura en Aguas Continentales

Sangolquí del 17 al 19 de mayo del 2016

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(Carrillo, 2009)

Control hormonal y vitelogénesis

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Biomarcadores

• Bioquímicos y moleculares

• Celulares

• Histológicos

• Individuales

• Poblacionales

• Comunidades

• Biomarcadores de exposición

• Biomarcadores de efecto

• Biomarcadores de

susceptibilidad

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Maduración asincrónica

Falta de estacionalidad en la

producción de ovocitos y afectación

de la esteroidógenesis

Evaluación de productos

esteroidógenico ofrecen

información sobre el proceso

reproductivo

Compuestos químicos pueden

actuar como disruptores

endócrinos en cuerpos de agua

Diclorodifenil-tricloroetano y

tamoxifeno, inductores e

inhibidores de la vitelogenesis

Vitelogenina (Vtg)

Biomarcador

esteroidogénico

Biomarcador

ambiental

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Ventajas del uso IgY

(Schade y col, 1991)

IgG IgY

Muestreo Invasivo No invasiva

Rendimiento 200 mg IgG por

sangramiento (40 ml)

50-100 mg IgY por

huevo

(5 a 6 por semana)

Rendimiento por mes 200 mg Aprox. 1600 mg

Rendimiento específico/proceso Aprox. 5% 2% a 10%

Interferencia con el factor

reumatoide

Si No

Activación de complemento Si No

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OBJETIVO GENERAL

Producir anticuerpos policlonales (IgY) de

gallinas contra la proteína precursora,

vitelogenina (Vtg), como posible biomarcador

esteroidogénico en hembras adultas de

Tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus)

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OBJETIVOS ESPECÍFICOS

Inducir la producción y purifica de Vtg con 17-ß

estradiol en machos adultos de tilapia (Oreochromis

niloticus)

Inmunizar gallinas Isa Brown, para inducir la

producción y purificación de inmunoglobulinas IgY

contra Vtg

Determinar la avidez y especificidad de

anticuerpos de IgY-anti Vtg de Tilapia, mediante

técnicas de inmuno detección

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Metodología

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Producción de IgY

(Born, 2015)

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Resultados

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Purificación de Vtg

Shi, y col. (2002) fueron capaces de separar

mediante cromatografía de intercambio aniónico

vitelogenina del pez dojo (Misgurnus

anguillicaudatus) y en el pez carpa (Cyprinus

carpio)

La elución en la que Vtg fue identificada y

validada en gradiente de 0,37 M

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Se empleó el método fluorométrico

Qubit® Protein Assay (Invitrogen,

USA), que arrojó un resultado de Vtg

total de 1,127 mg vtg/ml

Shi y col. (2002), aislaron 1,067 mg/ml

a través del mismo método.

Ortiz y col., (2016) recuperó Vtg a una

concentración de 1,8 ± 0,4 mg Vtg/ml

Concentración Cuantificación

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Identificación (SDS-PAGE)

Ortiz y col., (2016) en tilapia del

Nilo (Oreochromis niloticus) a una

altura de 210 KDa

Fukada y col., (2003) purificaron

Vtg de 150 KDa en carpa

(Cyprinus carpio)

Shimizu y col., (2002) halló Vtg en

medaka común (Oryzias latipes) a

220 KDa

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Alícuotas de 800 µl de anticuerpos a una

concentración de máxima de 5,2 mg/ml

Shimizu y col., (1988) aislaron

anticuerpos IgY a partir de cromatografía

de intercambio iónico en matrices de

DEAE celulosa

Hwee y col., (2012) utilizaron doble

precipitación con sulfato de amonio al 30

y 20 % con un rendimiento de IgY de 5

mg/ml.

Purificación de IgY

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•Nunes y col., (2014)

caracterizaron una cadena

pesada en los 68 KDa, y una

cadena liviana en los 27 Kda

•Oyarzún (2011) han reportado

utilizando SDS-PAGE al 12%

estructuras de IgY con cadena

pesada de 67 KDa y cadena

liviana de 25 KDa

Identificación de IgY por SDS-PAGE

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Deslow (1999) propuso

dosis de concentración de

100 µg/ml y 50 µg/ml como

dosis de refuerzo

Moreno (2010) propuso

dosis similares de

inmunización

Wen y col., (2012)

utilizaron dosis de

antígeno a 1 mg/ml

Curva de inmunización de gallinas

en función de IgY purificadas

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Sotiropoulou y col., (2012)

comprobaron la unión

antígeno-anticuerpo a una

concentración de 1 µg/ml

Tada y col., (2004)

utilizaron IgG anti

vitelogenina a una

concentración de 40 µg/mL

ELISA indirecto

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Muestras pre-purificadas de plasma de O. niloticus. 1: plasma inducido día 10.

2: plasma inducido día 15. 3: plasma inducido día 20. 4: plasma inducido día 25.

- : plasma macho normal.

Western Blot IgY contra Vtg

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Conclusiones

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Se inoculó 17-ß estradiol en individuos

machos de Oreochromis niloticus, lo cual

indujo la producción Vtg, obteniéndose 1,127

mg /ml

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Se obtuvieron inmunoglobulinas IgY

contra Vtg en huevos de gallinas Isa Brown,

inmunizadas a partir de 19 semanas de

nacidas. Los anticuerpos fueron purificados

mediante métodos bioquímicos.

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Se determinó la especificidad de

anticuerpos de IgY-anti Vtg de Tilapia,

mediante el uso de ensayos inmunométricos,

tales como ELISA y WB.

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Dr. Juan Ortiz Tirado, Director del Grupo de Investigaciones de Recursos

Bioacuáticos y Acuicultura de la ESPE (RAAE)

Dra. Marbel Torres del Laboratorio Inmunología-Virología-ESPE

Dr. Rodolfo Fernández-Gómez investigador-docente del Programa

Prometeo SENESCYT, de Biophysic Solurions, C.A., Caracas, Venezuela

Al personal científico-docente, técnico y administrativo de la Universidad

de las Fuerzas Armadas-ESPE, y en especial, del IASA I

Agradecimientos

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Anticuerpos IgY

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