A C FE N TI PR

H

B

ASIGNATU

ÓDIGO:

ECHA DE

IVEL EN E

IPO DE AS

ROFESOR1 BENJ2 FÉLIX3 DANI4 MARÍ5 THOM

ORAS PR

BENEMÉRF

LICENC

Á

MANU

RA DE:

ELABORA

EL MAPA

SIGNATUR

ES QUE PAJAMIN SANX LUNA MOEL LIMÓN ÍA ISABEL MAS SCIOR

RÁCTICA. 2

RITA UNIVFACULTADCIATURA:

ÁREA ESP

UAL DE PR

ACIÓN:

CURRICU

RA:

ARTCIPARONDOVAL GUORALES PÉREZ DEMARTÍNEZR

2

ERSIDAD D DE CIEN: QUÍMICO

PECÍFICA

RÁCTICAS

ULAR:

ON EN SU UZMAN

E LEÓN Z GARCÍA

AUTÓNONCIAS QUÍO FARMAC

DE: FARM

S DE LAB

ELABORA

OMA DE PUÍMICAS COBIÓLO

MACIA

BORATOR

FARMAC

FAR-529

NOVIEM

FORMAT

DEL PER

ACIÓN:

UEBLA

GO

IO

COLOGÍA I

L

BRE, 2003

TIVO

RFIL

II

3

PRÁCTICA 1

ANTAGONISMO FARMACOLOGICO EN TEJIDO AISLADO I. INTRODUCCION

Una de las características importantes de la prescripción médica es la administración de fármacos en forma conjunta. Sin embargo la interacción de esos fármacos pudiese ser benéfica o en el último de los casos inocua. El estudio de esas interacciones se puede realizar a diferentes niveles como es el caso en animal integro, en una preparación aislada o en su defecto en tejido o en cultivo de células. El estudio de la interacción pudiese ser con la finalidad de bloquear un efecto endogéno exagerado, por una determinada patología o en su defecto aumentar la capacidad fisiológica de un tejido. Las interacciones son de tipo sinérgico o antagónico. En el primer caso se trata de que dos o más fármacos produzcan un efecto mayor que cuando se administran por sí solas. En el caso del antagonismo se trata del bloqueo del efecto, desde un punto de vista fisiológico, farmacológico o químico. El bloqueo fisiológico es contrarrestar el efecto de un estado fisiológico mediante la administración de fármacos que ejercen acciones diferentes. En el caso de la interacción química es por medio de la interacción de fármacos pero solo desde el punto de vista químico. Por último en el bloqueo farmacológico se trata de administrar un fármaco que se una al sitio de acción de la sustancia endógena y con ello disminuir el efecto agonista. II. OBJETIVOS.

1. Analizar las características del uso de las preparaciones en tejido aislado para el análisis del antagonismo farmacológico.

2.- Realizar la curva dosis respuesta de un agonista con el antagonista y encontrar el efecto máximo, en ambas curvas. III. DESARROLLO DE LA PRACTICA Material Quimógrafo Rata para toda la sección Estuche de Disección 6 vasos de precipitado de 1000 ml 6 vasos de precipitado de 100 ml 6 pipetas de 1 ml Cajas petri (tapa o base ) Bomba de aire termómetro Soluciones

Acetil colina 2.58 mg/ml y diluir 1:2 hasta obtener una concentración de 1.0 µg/ml. 1.5 lt de Solución Hartman por equipo Procedimiento 1.- Prepare y monte el ileon de rata como se describe en la figura.

2.- Agregue 0. 1 ml de la solución que corresponde por cada 10 ml de volumen del baño. 3. - Obtenga una curva dosis respuesta para la acetilcolina. La concentración inicial es de 1.0 µg/ml hasta 64 µg/ml. Recuerda que primero hay que registrar la lectura basal para cada concentración (5 segundos). Posteriormente se agrega la concentración de acetilcolina, esto inmediatamente después del registro basal y esperar hasta que se obtenga la respuesta máxima o bien no más de 45 segundos. 4. - Se detiene el quimógrafo y se retira la pajilla, se drena la cámara con nueva solución a 370C y se lava el intestino dos veces, dejando entre cada lavado 1 minuto. 5. - Se deja correr el registro basal por 5 segundos y se agrega la siguiente concentración de acetilcolina. Se repiten estos mismos pasos hasta que se complete las concentraciones descritas. 6.- Se repiten los pasos 3, 4, y 5 pero en presencia de 1 µg/µl de atropina. Es decir que se agrega este nuevo fármaco, y se espera 1 minuto para que se agregue la concentración de acetilcolina, después se sigue los pasos normales. Al terminar el registro se lava dos veces con solución Hartaman a 370C. 7.- La respuesta máxima de la acetilcolina, se debe de alcanzar aun en presencia de la atropina. 8.- Tabula tus registros en la tabla No. 1 y en la tabla No. 2 los registros de todo el grupo. 9.- Realiza el mismo experimento pero ahora en presencia de una fármaco desconocido B

Resultados a.- Tabula tus resultados en la tabla No. 1 b.- En la tabla No. 2 tabula los registros de todo el grupo c.- Construye en un solo gráfico la relación concentración-promedio de respuesta para la acetilcolina. d.- Construye un segundo gráfico pero tabulando el logaritmo de la concentración y él % de la respuesta.

TABLA No. 1

Fármaco Concentración (µg/µl)

Log Conc.

Respuesta (mm) Respuesta (mm)

Acetilcolina Acetilcolina + Atropina Acetilcolina + Fármaco B

TABLA No. 2

RESULTADOS POR GRUPO

Fármaco Conc. (µg/µl)

Log Conc.

Promedio de la Respuesta (%)

Promedio de la Respuesta (%)

Acetilcolina Acetilcolina + Atropina Acetilcolina + fármaco B

Discusión En relación a la revisión bibliográfica del tema y de los resultados

obtenidos discuta lo resultados obtenidos. Analice cada uno de los elementos de la curva dosis respuesta, del fármaco agonista y del antagonismo. Analice además la importancia de este tipo de experimentos farmacológicos, en la búsqueda de nuevos fármacos.

PRÁCTICA 2

NEUROTRANSMISIÓN

INTRODUCCIÓN En el estudio de la biología celular neuronal hemos visto que las neuronas

utilizan dos tipos de canales para la comunicación intracelular: los canales de reposo que producen el potencial de reposo y los canales activados por voltaje que producen el potencial de acción. Ahora abordamos la transmisión sináptica, el proceso de comunicación entre las células, donde estudiaremos los dos tipos de canales adicionales: los canales en la unión intima y los activados por ligandos. Durante el desarrollo individual, las neuronas establecen conexiones sinápticas muy especificas con otras neuronas. La percepción, la emoción y el aprendizaje se basan en la especificidad de las conexiones sinápticas que se realizan entre las neuronas durante su desarrollo. Una neurona realiza un promedio de 1.000 conexiones sinápticas y recibe muchas más. Por lo tanto, el encéfalo humano, que contiene alrededor de 1011 neuronas, establece 1014 conexiones. Afortunadamente, mediante el examen detallado de unas cuantas sinapsis, podemos alcanzar una comprensión global de toda la transmisión sináptica general. La sinapsis es el lugar de interacción entre dos células, está constituida por tres elementos: la terminal presináptica, la terminal postsináptica y una zona de aposición (hendidura sináptica). En virtud de sus zonas de aposición, las sinapsis se clasifican en dos grupos principales: eléctrica y química. En la sinapsis eléctrica la hendidura sináptica es pequeña, y la corriente generada por el potencial de acción en la neurona presináptica pasa directamente hacia la célula postsináptica gracias a los canales de unión especializados, denominados canales de la unión intima. En la sinapsis química la hendidura sináptica es mayor y no existe éste tipo de canales. Un cambio en el potencial de membrana en la célula presináptica conduce a la liberación de un transmisor químico desde la terminal presináptica. El transmisor químico difunde a través de la hendidura sináptica uniéndose a las moléculas receptor, situadas en la membrana celular postsináptica, abriendo los canales iónicos a través de los cuales para corriente. El receptor del transmisor puede clasificarse en dos grupos fundamentales, en virtud de cómo controle el receptor de un canal iónico de la célula posináptica. Uno de los tipos de Receptores forma una estructura común con un canal iónico que controla directamente. El segundo tipo, actúa directamente en el canal por medio del segundo mensajero y otras reacciones moleculares internas en la célula postsináptica. A su vez, a cada uno de estos grupos pertenecen múltiples tipos de receptores, debido a las diferentes combinaciones de las moléculas isomórficas. Ambos grupos de receptores pueden producir excitación e inhibición. El sentido de la acción sináptica dependerá de la interacción receptor-transmisor. No de las propiedades del transmisor, pues el mismo transmisor puede producir efectos diferentes dependiendo del subtipo receptorial con el que interactué. Como en el caso del glutamato, que es el transmisor químico encefálico excitador por excelencia, que produce diferentes acciones según el tipo de receptor glutametérgico al que se una. No obstante, a pesar de la pequeña cantidad de transmisores que hay, son capaces de producir una gran variedad de acciones sinápticas.

Como consecuencia de la complejidad estructural y de la arquitectura molecular

de las sinapsis químicas, pueden existir gran variedad de enfermedades debidas a la alteración de éste tipo de sinapsis. OBJETIVO Conocer los fenómenos eléctricos y químicos que favorecen o bloquean la neurotranmisión.

PROCEDIMIENTO Empleando el programa interactivo NEURON, explora:

1. La participación de los canales iónicos en la generación del potencial de acción 2. El mecanismo de los canales iónicos sensibles a ligando 3. El mecanismo de los canales iónicos sensibles a voltaje 4. El origen del potencial de membrana en reposo 5. El potencial de acción postsináptico inhibitorio 6. El potencial de acción postsináptico excitatorio 7. El mecanismo de libración del neurotransmisor 8. El mecanismo de segundos mensajeros 9. El mecanismo de recaptación de neurotransmisor 10. El mecanismo del transporte axonal

CUESTIONARIO Contesta brevemente, pero con precisión, los puntos anteriores.

Práctica No. 3

Analgesia

INTRODUCCIÓN Un analgésico es una sustancia que a través de su acción sobre el Sistema

Nervioso Central (SNC) o bien en la periferia, sirve para reducir o abolir el dolor sin producir inconsciencia. Los fármacos analgésicos empleados en la clínica se dividen en dos grupos: los analgésicos opioides y los analgésicos no opioides. Analgésicos opioides Son un amplio grupo de sustancias tanto de origen natural como sintético que incluye agonistas semejantes a la morfina y sus antagonistas que pueden bloquear estos efectos. Además de incluir a los opioides de origen endógeno. La morfina es el analgésico por excelencia y el mejor representante de este grupo, se obtiene del opio, el cual además de la morfina contiene otros alcaloides con propiedades analgésicas y estimulantes del SNC. Los analgésicos no opioides Los analgésicos tipo aspirina o también llamados antiinflamatorios no esteroidales (AINEs) están entre los más empleados en el mundo. En la práctica clínica se utilizan para aliviar el dolor de leve a moderado. Su mecanismo de acción es a través de la inhibición de la ciclooxigenasa 1 (COX-1; constitutiva) y ciclooxigenasa 2 (COX-2; inducida en el sitio de la inflamación), y con ello la reducción de la síntesis de prostaglandinas y tromboxanos. En este grupo se incluyen a la aspirina, el ibuprofeno, el naproxeno, el ketoprofeno, la indometacina, el piroxicam y el ketorolac, entre otros.

Objetivo Producir un cuadro analgésico con el opioide sintético fentanil empleando el modelo experimental de “tail-flick”.

DESARROLLO DE LA PRACTICA 1. Habituar a la rata. La habituación consiste en introducir a cada roedor en un contenedor durante 30 minutos por tres días y a la hora que se realizará el experimento. Durante los 30 minutos el animal deberá mantener la cola en posición perpendicular con respecto a la mesa donde se encuentre el contenedor. 2. El día del experimento, pesar a la rata. 3. Mantenerla en el contenedor de roedores 10 min. antes de hacer las lecturas básales. 4. Llenar con agua un vaso de precipitado de 400 ml, calentar a una temperatura de 58 ºC (estrictamente).

5. En un sólo movimiento introducir la mayor parte de la cola de la rata en el

vaso, instantáneamente con un cronometro tomar el tiempo que tarda la rata en sacudir la cola o realizar movimientos corporales. Dejar pasar dos minutos y repetir el mismo proceso hasta tener 5 lecturas basales. Obtener el promedio de las lecturas y anotar los datos en la tabla No. 1. 6.- Administrar por vía intraperitoneal el fentanil en una dosis de 70µg/kg de peso. La concentración del fentanil es de 0.05 mg/ml. 7.- Esperar 6 minutos de latencia y realizar 5 mediciones con espacios de 2 minutos entre cada una. Obtener el valor promedio y anotar los datos en la tabla No. 1. 8.- Administrar el antagonista naloxona en una dosis de 25 UI esperar 5 minutos de latencia y hacer 5 mediciones.

TABLA No. 1

Lecturas Basal (tiempo en seg)

Fentanil (tiempo en seg)

Naloxona (tiempo en seg)

1

2

3

4

5

Promedio

CUESTIONARIO 1.- Describe el mecanismo de acción propuesto para los analgésicos opioides. 2.- Describe el tipo de antagonismo producido por la naloxona. 3.- Describe otros modelos experimentales para medir analgesia. 4.- ¿Qué son los opioides endógenos? 5.- Indica los usos clínicos de los opioides 6.- ¿Qué es el dolor? 7.- Describe el sistema de transmisión de los mensajes nociceptivos. 8.- Menciona tres diferencias entre los analgésicos opioides y no opioides. 9.- ¿Qué es la analgesia? 10.- Investiga 5 nombres de analgésicos opioides y 5 de analgésicos no opioides.

PRÁCTICA 4

EFECTO DEL ACIDO ACETILSALICILICO EN EL TIEMPO DE SANGRADO

I. OBJETIVO Determinar el efecto del ácido acetilsalicílico en el tiempo de sangrado.

II. INTRODUCCION Cuando se produce la apertura de un vaso sanguíneo la sangre se derrama, pero por lo general dicha hemorragia cesa espontáneamente mediante un mecanismo fisiológico denominado hemostasia, que es la detención espontánea de la hemorragia de vasos sanguíneos dañados. En esta intervienen tres procesos la contracción de los vasos, la adherencia y agregación plaquetaria y la coagulación sanguínea. Un método de estudio para evaluar la fase vascular y plaquetaria de la hemostasia es el tiempo de sangría. Se determina midiendo el tiempo que transcurre desde el momento en que se hace una punción (dedo u oreja) hasta que la sangre deja de brotar de la herida. Se consideran normales los comprendidos entre 1 y 3 minutos. El ácido acetilsalicílico inhibe la liberación de ADP de las plaquetas y la agregación plaquetaria por acetilación de las enzimas plaquetarias que sintetizan los precursores de las prostaglandinas y del tromboxano A2 (sustancia que estimula más la agregación).

CONOCIMIENTOS PREVIOS Mecanismos de coagulación de la sangre. Acciones cardiovasculares de los salicilatos. Método de Duke.

III. DESARROLLO DE LA PRACTICA Material

Cronómetro Una lanceta estéril y deshechable Papel filtro Torundas de algodón impregnadas de alcohol Tabletas de ácido acetilsalicílico de 500mg

1. Determinar en 5 voluntarios sanos la duración de tiempo de sangrado (valores

controles). Los voluntarios sanos no deben ingerir alimentos cuando menos cinco horas antes de la administración del ácido acetilsalicílico.

2. Administrar a cada uno de los voluntarios dos tabletas de AAS (1g). 3. Transcurrida 4 horas, determinar nuevamente en los cinco voluntarios la duración

del tiempo de sangrado. 4. Anotar los resultados en tabla No. 1 5. Graficar sus resultados del promedio del tiempo de sangrado de sus valores

controles y los valores problema en forma de barra.

TABLA No. 1

Tiempo de sangrado

Voluntario Valores basales (seg) Tiempo después de la administración de AAS

1 2 3 4 5

Promedio

CUESTIONARIO 1. ¿Cuáles son las utilidades del AAS además de analgésico? 2. ¿Cual es el mecanismo de acción del AAS como analgésico, antipirético y anti-inflamatorio? 3.-¿Cómo afecta el AAS a nivel cardiovascular? 4. ¿Cuáles son los efectos tóxicos del AAS? 5. Investigar modelos experimentales para valorar a) Analgesia b) Antipiresis 6. De sus datos obtenidos. ¿Cuál es el efecto que observa sobre el tiempo de sangría y explique a que se debe? 7.- Como actúa el AAS sobre la coagulación (esquema).

PRACTICA 5

ANTICONVULSIVANTES

I. OBJETIVOS 1.-Evaluar la combinación de drogas antiepilépticas administradas en el hipocampo de rata sobre crisis convulsivas de tipo generalizadas inducidas por pentilentetrazol. 2.-Demostrar el efecto anticonvulsivo del Diazepam en un modelo biológico. 3.-Conocer las características de las crisis convulsivas II. INTRODUCCION La epilepsia es una enfermedad que afecta entre 0.5 -1 % de la población en general. Su manifestación más importante es la presencia de crisis, muchas veces convulsivas. Las convulsiones epilépticas suelen producir alteración transitoria del conocimiento, dejan al individuo en riesgo de lesión corporal y a veces obstaculizan las actividades de estudio y trabajo de éste.

El término convulsión se refiere a un trastorno transitorio de la conducta, causado por la activación desordenada, sincrónica y rítmica de poblaciones enteras de neuronas cerebrales. Si bien se sabe, no se cuenta con una profilaxis eficaz, ni con métodos de curación, pero si se cuenta con una serie de fármacos disponibles que inhiben las convulsiones, entre los cuales encontramos a los barbitúricos anticonvulsivos, hidantoínas, desoxibarbitúricos, iminoestilbenos, succinimidas, benzodiacepinas, etc. Como la epilepsia es una enfermedad frecuente y que tiene alteraciones secundarias en algunos individuos, no es extraño que la investigación sea intensa en esta rama de la Farmacología y se busquen nuevos fármacos con propiedades anticonvulsivas.

CONOCIMIENTOS PREVIOS. Conocimiento del manejo y cuidado de los animales de laboratorio Conocimiento de la administración en el hipocampo y en el peritoneo. Conocimiento de los anticonvulsivos.

Material. Ratas 4 jeringas de 1ml Balanza para roedores Soluciones.

Pentilentetrazol 100mg/5ml Diazepam 10mg/2ml Solución fisiológica

DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA

ADMINISTRACION DE ANTIEPILEPTICOS

Sujetos de experimentación

Cirugía estereotáxica

Administración sistémicadel Convulsionante

Evaluación Conductual

Reportar y Graficar

Evaluación del implante

Grupo problemaadministración

anticonvulsivantes

Grupo control SSI

PROCEDIMIENTO 1.- Se emplearán ratas adultas de la cepa Wistar de peso 200-250 gr, provenientes del bioterio Claude bernad de esta Universidad. ADMINISTRACION LOCAL 2.- A un grupo de ratas se les realizará la cirugía estereotaxica, después de la cirugía los animales serán colocados individualmente en cajas esperando un lapso de 5 días para su recuperación, las cuales se dividiran en dos grupos: A Al primer grupo (control) se le administrará intrahipocampalmente 1 µl SSI y después de 3 minutos se administrará por vía intraperitoneal el convulsionante (Pentilentetrazol) a una dosis de 37 mg/kg. B Al segundo grupo (problema) se le administrará en el hipocampo el anticonvulsivante (diacepam 1µl) a una concentración de 1µg/µl esperando 3 minutos para administrar el convulsionante (pentilentetrazol) intraperitonealmente a una dosis de 37 mg/kg. ADMINISTRACION SISTEMICA 3.- A) Por otra parte a otro grupo de ratas (control) se le administrará SSI por vía intraperitoneal a razón de 0.1ml/10 g. de peso se esperarán 3 minutos y se le administrará el convulsionante (pentilentetrazol) intraperitonealmente a una dosis de 37 mg/kg. B) Finalmente a otro grupo experimental se le administrará el anticonvulsivante Diacepam a una dosis de 1mg/Kg y a una concentración de 10 mg/2 ml por vía intraperitoneal. 4.- Evaluar los siguientes parámetros durante un tiempo de 15 minutos:

A) Número de sacudidas (NS) o convulsiones mioclónicas. Estas sacudidas son únicas, breves y que van de leves a violentas de una parte o de todo el cuerpo sin pérdida de la conciencia.

B) Número de convulsiones tónico-clónicas (NCTC). Contracciones musculares tónicas generalizadas con flexión de las extremidades superiores y extensión forzada de las extremidades inferiores, seguidas por contracciones rítmicas de los miembros. Usualmente duran varios minutos y hay pérdida de la conciencia.

C) Duración de cada convulsión tónico-clónica (DCTC). D) Tiempo de latencia a la primera sacudida mioclónica (TL1SM). E) Tiempo de latencia a la primera convulsión tónico-clónica (TL1CTC).

5.- Llenar las tablas No.1 y No. 2 6.- Graficar los resultados en forma de barras parámetros contra fármaco

TABLA No.1

ADMINISTRACION LOCAL

RATAS NS NCTC DCTC TL1SM TL1CTC

TABLA No.2

ADMINISTRACION SISTEMICA

RATAS NS NCTC DCTC TL1SM TL1CTC

CUESTIONARIO

1.¿ Cuáles son los métodos de estudio de las drogas anticonvulsivantes?

2. ¿Cuales son los mecanismos de acción de las drogas anticonvulsivas?

3.¿Cuál es la clasificación de las convulsiones epilépticas y las características que

estas presentan?

4. ¿Cuál es el mecanismo de desarrollo de las convulsiones?

5. ¿Cuáles son los efectos indeseables de los anticonvulsivos?

6. ¿Cuales son los requisitos de una droga antiepiléptica ideal?

PRACTICA 6

EVALUACIÓN DE ANSIOLÍTICOS EN DOS MODELOS EXPERIMENTALES

OBJETIVO Mostrar el efecto ansiolítico del diacepam en el modelo de Vogel. Mostrar el efecto ansiolítico del diacepam en el modelo del laberinto elevado en cruz

INTRODUCCION En el hombre los desordenes mentales están asociados con el estrés, la ansiedad y la depresión. En un estado de ansiedad ocurren diversos cambios fisiológicos, como es el caso, de sudación, taquicardia, temor, ira, tristeza, alegría, trastornos psico-motores y trastornos de pánico, agorafobia y otros tipos de fobias. Actualmente es necesario que se administre una serie de fármacos para contrarrestar la ansiedad. Se sabe que al año se produce 8000 toneladas de benzodiacepinas. Además la administración de algunas Benzodiacepinas o nuevos ansiolíticos en algún núcleo del SNC nos daría información sobre la participación de diferentes núcleos en el estado de ansiedad.

DESARROLLO DE LA PRACTICA Material 2 jeringas de 1ml Una balanza para roedores Fármaco: Diacepam (VALIUM 10 mg/2ml) Soluciones: Solución Salina Isotónica NaCl al 0.9 %

Caja de Vogel Este modelo esta constituido por una caja de acrílico de 33 cm de largo, 25 cm de ancho y 25 cm de altura además de que cuenta con un cubo posterior de 8 cm de ancho por 11 cm de altura con un soporte de 8cm de largo formando un ángulo de 60º . En la parte superior del cubo se encuentra un bebedero que esta conectado a un electrodo de referencia (corriente). Otro electrodo se conecta a una rejilla que esta localizada en la parte inferior de la caja. Cuando el roedor sorbe agua cada 20 veces recibe un choque eléctrico de 0.7 mA/1seg que es regulado mediante un generador que a su vez se encuentra conectado a un contador de pulsos, eventos y a una medidor de voltaje (0.5, 0. 6, 0.7, 0.8, 0.9, 1.0gmA)

DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA ADMINISTRACIÓN

SISTÉMICA DE ANSIOLITICOS

PROCEDIMIENTO Se emplearán ratas macho de la cepa Wistar, de peso 200- 250 gramos, provenientes del MODELO DE VOGEL Bioterio Claude Bernard de esta Universidad. Antes de la prueba de situación de conflicto (Modelo Vogel), los animales se privarán de agua por 48 horas, además de mantenerse en un ciclo luz-oscuridad de 12/12. Al grupo control se le administrará solución salina isotónica a razón de 0.1ml /10gr de peso por vía subcutánea. Al grupo experimental se le administrará Diacepam a una dosis de 0.8mg/Kg por vía subcutánea y a una concentración de 10 mg/2 ml.

SUJETOS DE EXPERIMENTACION

CONTROL EXPERIMENTAL

SUPRESION DE AGUA X 48 HRS

ADMINISTRACION DE DIACEPAM

EVALUACION DE PARAMETROS

RESULTADOS

B) Se administrrá 1 µl en el hipocampo SSI, grupo control y 1 µl de diacepam

(1µg/µl), grupo problema y se efectuará la prueba de Vogel 3 minutos después de la administración. 3.- Evaluar los siguientes parámetros durante 20 minutos: A) Tiempo de Latencia al primer sorbo en segundos (TL1S)

B) Número de pulsos (NP) C) Número de eventos (NE)

4.- Recopilar los datos por sección y llenar la tabla No.1 5.- Graficar los parámetros contra fármaco en forma de barras.

TABLA No. 1

RATA TL1S (seg)

NP NE

Laberinto elevado en cruz

El proceso de ansiedad se realizará en un laberinto “T“ el cual esta compuesto de 4 brazos con una longitud de 50 cm. cada uno: 2 brazos cerrados, con paredes de 15 cm., y 2 brazos abiertos. El centro del laberinto mide 10 cm. de largo por 10 cm. de ancho y la base del laberinto se encuentra a un metro del nivel del piso. (figuras 1 y 2)

FIGURA No. 1

FIGURA No. 2

DIAGRAMA DE TRABAJO PARA LA ADMINISTRACIÓN

SISTÉMICA DE ANSIOLITICOS (LABERINTO T)

1.- La adaptación al laberinto se realizará un día antes de comenzar los ensayos. El objetivo será familiarizar al roedor con el laberinto elevado en “cruz“. El procedimiento será el siguiente: a) Se colocará al roedor en el centro del laberinto cubriéndolo con un contenedor. b) Al retirar el contenedor la rata quedará liberada para llevar a cabo la actividad exploratoria en el laberinto durante un tiempo de 10 minutos, este procedimiento se repetirá para cada roedor. 2.- A) Al grupo control se le administrará solución salina y al grupo problema el ansiolítico a evaluar, ambos por vía subcutánea y se esperará 3 minutos antes de efectuar el ensayo.

SUJETOS DE EXPERIMENTACION

CONTROL PROBLEMA

ADAPTACION AL LABERINTO

ADMINISTRACION DE ANSIOLITICOS

EVALUACION DE PARAMETROS

RESULTADOS

B) Por otra parte a otro grupo µg/µl) ambos en el hipocampo y después de 3

minutos de la aplicación experimental se le administrará 1 µl de SSI al grupo control y 1 µl de diacepam (1se tomarán los siguientes parámetros experimentales para cada rata durante 15min.

3.-Tiempo de latencia al brazo abierto= TLBA Tiempo de latencia al brazo cerrado =TLBC Tiempo de persistencia en el brazo abierto =TPBA Tiempo de persistencia en el brazo cerrado =TPBC Número de veces al brazo abierto = # VBA Número de veces al brazo cerrado =# VBC

4.- Llenar la tabla No.2 con tus datos

TABLA No. 2

RATA TLBA TLBC TPBA TPBC #VBA #VBC

5.- Se recopilarán los datos por sección, para después graficar los resultados en

forma de barras parámetro contra fármaco

CUESTIONARIO 1.- Explica el mecanismo de acción de las Benzodiacepinas

2.- ¿Qué otro modelo propones para evaluar los ansiolíticos?

3.- ¿Como se clasifican los ansiolíticos?

4.-¿Que estructuras del SNC están relacionadas con la ansiedad?

5.-¿Como se define a la ansiedad?

6.- Menciona las propiedades farmacocinéticas de:

A) Diacepam

B) Pracepam

C) Clordiacepoxido