006 Protocolo Anestesia Aves

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    PROTOCOLO DE ANESTESIA DE AVES

    1. INTRODUCCIN

    La anestesia de aves en la prctica clnica frecuentemente presenta altas mortalidades, lo que laconvierte en un procedimiento delicado. Debe conocerse suficientemente la funcin cardiopulmonar, ylos efectos y farmacocintica de los anestsicos disponibles

    1.1 . EVALUACIN PREANESTSICA

    Evaluar al ave por lo menos un da antes del procedimiento.

    Realizar un examen clnico y si es posible, evaluar parmetros sanguneos como cuadro hemtico,perfil renal y heptico y calcio y fsforo.

    Un examen general por observacin, es la herramienta ms til en aves estresables.

    Se recomienda hacer pruebas preanestsicas de hematocrito, protenas plasmticas totales, BUN yGlucosa

    1.2. AYUNO

    El ayuno preanestsico en aves depende del estado de salud, la especie y la edad del ave.Evita que haya broncoaspiracin por regurgitacin desde el buche, y aumenta la eficiencia de laventilacin

    Las aves pequeas (paseriformes, periquitos, palomas, colibres) poseen metabolismo rpido, por elloes riesgoso aplicar el ayuno, ya que puede conducir a hipoglicemia y muerte. En estas especies nodebe hacerse ayuno prequirrgico.

    En aves medianas el tiempo de ayuno puede ser de mximo dos horas, y en aves grandes, de 4horas.

    1.3. PREMEDICACIN

    Por lo general no se usa en aves, ya que requiere de restricciones manuales repetidas, lo que estresaal animal, y puede complicar el procedimiento.Puede ser til en aves muy ansiosas y estresadas, minimizando el estrs y proporcionando analgesia.

    Los frmacos ms usados son el m idazolam y el diazepam (benzodiacepinas) y el butorfanol(opioide).

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    Los parasimpaticolticos (atropina, glicopirrolato) no se usan en especies pequeas porque puedenincrementar el espesor de la saliva, bloqueando la trquea.

    1.4. PREPARACIN

    Preparar con anticipacin el equipo de anestesia y una fuente de calorCalcular las dosis de frmacos de emergencia.

    Las complicaciones ms frecuentes en esta fase son las arritmias, la bradicardia y la apnea, que

    llevan a paro respiratorio y a paro cardaco. Estas pueden evitarse disminuyendo el estrs, trabajandoen un lugar oscuro y tranquilo.

    El pectoral del ave (pechuga) nunca debe ser comprimido, porque se impide la normal respiracin.

    1.5. INDUCCIN Y MANTENIMIENTO

    El ave debe posicionarse en decbito lateral, sin impedir la respiracin, y facilitando el monitoreo.La temperatura debe monitorearse continuamente, ya que la hipotermia induce bradicardia ehipotensin, e interfiere con el metabolismo normal.

    El monitoreo cardiorespiratorio sigue los principios del monitoreo en mamferos.

    Para procedimientos largos se aconseja usar anestesia inhalada, mientras que para procedimientoscortos es til el empleo de anestesia fija inyectable.

    Como mnimo se debe monitorear la frecuencia cardiaca, frecuencia respiratoria, y temperaturacorporal.Pueden usarse monitores que incluyan ECG y Doppler. Los pulso-oxmetros estn calibrados paramamferos, por ello su confiabilidad es incierta en aves.Administrar fluidos y proporcionar una fuente de calor, principalmente en aves pequeas.

    Las reas principales de prdida de calor son las patas y los sacos areos. Mantenga una fuenteexterna de calor y envuelva las patas del ave en una tela que mantenga el calor.

    1.6. RECUPERACION

    Es un periodo crtico, por lo que debe monitorearse al ave para evitar depresin cardiorespiratoria.Es aconsejable suministrar oxgeno mediante sonda traqueal o por medio de una mascarilla.

    Se recomienda que el ave est posicionada en decbito lateral para evitar broncoaspiracin.

    Si hay regurgitacin, la cabeza del ave debe colocarse ms baja que el cuerpo, y posteriormente debe

    limpiarse con cuidado la cavidad bucal, usando hisopos.

    La recuperacin debe hacerse en un lugar tranquilo, cmodo, oscuro y tibio (20C), como un guacalkennel o una caja, utilizando bolsas de agua tibia para facilitar la pronta recuperacin de latemperatura corporal normal. Las bolsas no deben estar muy calientes porque pueden quemar al aveo inducir hipertermia.

    Envolver las alas en una toalla de papel para reducir las lesiones por aleteo.

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    La extubacin debe hacerse cuando el ave est consciente, respirando por s sola, y haya recuperadoel reflejo deglutorio. Debe examinarse la glotis antes de retirar la sonda, para verificar que no hayasecreciones que puedan taponar la trquea.

    Es importante que el ave coma luego de la completa recuperacin, debido a su elevado metabolismo.Aves pequeas (menos de 200g) deben recuperarse rpidamente y empezar a comer en la siguientemedia hora.

    2. ANESTESIA INHALADA2.1. GENERALIDADES

    Es el mtodo preferido en aves porque incluye una rpida induccin y recuperacin, permite hacerajustes rpidos en la profundidad anestsica, tiene una mnima biotransformacin, mnimos efectoscolaterales cardiopulmonares, y baja toxicidad. Es la anestesia de eleccin en aves con falla hepticay/o renal.

    La depresin cardiopulmonar es ms significativa en aves que en mamferos, y es dosis-dependiente.Por ello se recomienda la ventilacin asistida, y el monitoreo constante.

    El Isoflurano, Desflurano y el Sevoflurano son los agentes inhalados ms utilizados. Este ltimopresenta una induccin ms rpida y es menos irritante.

    Debe usarse siempre un circuito anestsico semi-abierto para que e l gas no se acumule en los sacosareos.

    2.2. PROTOCOLO PARA LA ANESTESIA INHALADA

    2.2.1. INDUCCIN

    2.2.1.1. Mascarilla

    No hay disponibles en el mercado mascarillas que sirvan para todas las especies, por ello deben seradaptadas.

    En aves grandes y medianas, es importante verificar que las narinas estn incluidas dentro de lamscara. En especies pequeas, debe incluirse toda la cabeza del ave.

    Usar mascarilla en aves dciles, y cmara anestsica en aves de difcil manejo. Las mascarillas puedenincrementar la prdida de anestsico, debido a la dificultad de colocarlas correctamente.

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    FUENTE: http://libertywildlife.blogspot.com

    Hay dos mtodos de induccin, en el primero se incrementa gradualmente la dosis de anestsico, perotiene la desventaja de que prolonga el tiempo de restriccin fsica, y por lo tanto aumenta el estrs delpaciente. Este mtodo puede usarse en aves premedicadas con agentes inyectables.

    El segundo mtodo consiste en iniciar con una dosis alta e ir disminuyndola: (4-5% de isoflurano en1-2 L/min de oxgeno) para la induccin, seguida del mantenimiento (2-3% de isoflurano). Esta ltimarequiere de un estrecho monitoreo del paciente, y de ir disminuyendo la dosis a medida que vafinalizando el procedimiento.

    Cuando se alcanza un plano de anestesia ligero, la mascarilla se reemplaza por la sonda endotraqueal.

    2.2.1.2. Intubacin endotraqueal

    Intubar al ave luego de la induccin, para mayor seguridad, y para evitar la prdida de anestsico. Laintubacin permite realizar ventilacin manual, previene la posibilidad de broncoaspiracion, y proveeun mejor control de la profundidad anestsica.

    La glotis se localiza en la base de la lengua, y como las aves carecen de epiglotis, se visualiza muyfcilmente.

    Las sondas traqueales para aves carecen de bulbo, ya los anillos traqueales son completos y muyfrgiles. Se deben usar sondas del tamao apropiado, pero en especies pequeas es preferible nousar sonda porque puede bloquearse fcilmente con las secreciones respiratorias.

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    Glotis. Fuente: http://ocw.tufts.edu/Content/60/lecturenotes

    Sonda endotraqueal. Fuente: http://ocw.tufts.edu/Content/60/lecturenotes

    2.2.1.3. Intubacin del saco areo

    Se usa como procedimiento de emergencia en caso de obstruccin de las vas areas superiores(cuerpos extraos, masas, granulomas). Tambin se usa como una alternativa a la intubacinendotraqueal, en caso de necesitar un libre acceso a la cavidad bucal (traqueoscopia, traqueotoma).

    Use una sonda con fenestraciones en sus paredes. Use una sonda de 4 mm de dimetro para un ave de 350 g. Incremente el dimetro de

    acuerdo al tamao del ave. Se usa una aproximacin lateral izquierda, extendiendo la pierna izquierda caudalmente y

    haciendo una pequea incisin entre la ltima costilla y el fmur. Use una pinza hemosttica pequea para entrar al celoma en direccin craneal,

    accediendo al saco areo torcico caudal.

    Introduzca la sonda por la incisin, asegrela con puntos de sutura a la piel, y conctela alequipo de anestesia. Para mantener la anestesia por esta va, debe usar un flujo alto (50% ms elevado que el

    flujo normal). La sonda puede dejarse in situ de 1 a 3 semanas.

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    Fuente: http://www.lafebervet.com/avian-medicine-2/avian-emergency-medicine/air-sac-cannula

    Fuente: http://www.lafebervet.com/avian-medicine-2/avian-emergency-medicine/air-sac-cannula

    Fuente: http://www.lafebervet.com/avian-medicine-2/avian-emergency-medicine/air-sac-cannula

    2.2.2. MANTENIMIENTO

    2.2.2.1. Tasa de flujo y ventilacin

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    Se recomienda el uso de ventilacin asistida en aves.

    La frecuencia recomendada de ventilacin es de 10-25 respiraciones/min en especies grandes, y de30-40 respiraciones/min para especies medianas y grandes. La ventilacin se monitorea por medio delos movimientos del pectoral o mediante el uso de un capngrafo. La fuerza de ventilacin no debeexceder los 5-15 cm de H2O, para prevenir el trauma de los sacos areos. Debe evitarse elsobrellenado de los sacos, ya que aumenta la presin intracelmica, y disminuye el retorno venoso.Se recomienda el uso de ventiladores peditricos con alarma.

    2.2.2.2. Posicionamiento

    La posicin recomendada es el decbito lateral, ya que el decbito esternal o dorsal pueden impedir elmovimiento del esternn y comprimir los sacos areos abdominales.

    2.2.3. RESUMEN

    Coloque la cabeza del ave en la mascarilla o dentro de la cmara de induccin, conIsoflurano.

    Cuando el ave est en recumbencia y permita su manipulacin, sondee la trquea, con unasonda sin bulbo.

    Durante la anestesia, mantenga una ventilacin con flujo positivo de O2, para reducir laacumulacin de CO2 en los sacos areos.

    3. ANESTESIA FIJA (INYECTABLE)

    Se prefiere en condiciones de campo, o cuando no hay agentes inhalados disponibles. Los efectoscolaterales cardiopulmonares son dosis-dependientes.

    Los anestsicos ms reportados son el Propofol y la Ketamina sola o en combinacin conbenzodiacepinas, opioides o alfa-agonistas.

    3.1. PROPOFOL

    Presenta una induccin suave y rpida, aunque puede desencadenar depresin respiratoria ehipotensin, por lo que se recomienda el uso de ventilacin asistida. Se reporta una recuperacinprolongada y brusca. Por estas razones, su uso en aves no es recomendado.

    3.2. FRMACOS DISOCIATIVOS

    Ketamina:

    Requiere altas dosis y provee una pobre relajacin muscular, lo que lleva a la presentacin detrmores, contracciones tnicas, opisttonos y una recuperacin brusca. No tiene reversor, por ellolos tiempos de recuperacin tienden a ser prolongados (hasta 100 minutos en algunos casos). Por logeneral no se alcanzan planos anestsicos profundos, por ello su uso no se recomienda enprocedimientos invasivos. Puede emplearse para procedimientos no invasivos, rpidos y que nogeneren dolor.

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    La combinacin de ketamina con benzodiazepinas o alfa 2 agonistas, busca mayor relajacinmuscular, mayor profundidad anestsica y una recuperacin ms suave.

    3.3. OTROS FRMACOS

    Benzodiazepinas

    Tienen un efecto relajante, sedante y ansioltico. Sus efectos cardiovasculares son mnimos. Por ello

    se emplean para reducir las dosis de otros frmacos durante la induccin y el mantenimiento.El Diazepam no es soluble en agua y por ello no se recomienda su uso intramuscular. Se prefiereutilizar Midazolam por su solubilidad en agua, y la posibilidad de aplicarlo por va intramuscular. Elantagonista en el Flumazenil, y puede emplearse en caso de sobredosis o en recuperacionesprolongadas, aplicndolo por va IV lenta.

    Alfa 2 agonistas

    Se usaron antiguamente en combinacin con Ketamina, pero presentan severos efectos depresorescardiopulmonares, por ello no se recomienda su utilizacin.

    3.4. PROTOCOLO ANESTESIA FIJA (PARENTERAL)

    Antes de dosificar al ave, realice un pesaje preciso. Intube para mantener el flujo de oxgeno.

    Algunos protocolos reportados por la literatura son: Ketamina 5 a 40 mg/Kg IM. Es controversial su efecto analgsico, puede ser peligrosa en

    pacientes con dao renal o heptico. Ketamina 5 mg/Kg + Xilacine 0,25-1 mg/Kg. IM. Puede ocasionar depresin respiratoria

    severa. Mantener el flujo de oxgeno y la ventilacin asistida. Ketamina 5-20 mg/Kg + Midazolam 0,25 mg/Kg. IM. Provee una buena sedacin,

    relajacin muscular y recuperacin. Ketamina 3-6 mg/Kg + Medetomidina 0,15- 0,3 mg/Kg IM. La Medetomidina pueden revertirse con Atipamezole (5 veces la dosis de Medetomidina)

    4. RESUCITACIN CARDIOPULMONAR (RCP)

    1. Use Doxapram 5 a 7 mg/Kg IM o sublingual2. Intube al ave3. Inicie ventilacin con presin positiva (1 cada 5 segundos)4. Si hay arresto cardiaco, presione el pecho (1 vez por segundo)5. Administre Adrenalina 1:1000 (00,5 0,5 mg/Kg) I.Cardiaco, I.seo, I.Celmico o I.Traqueal.6. Puede usar Atropina si se detecta bradicardia (0,04 0,1 mg/Kg) o si se requiere RCP (0,5

    mg/Kg), por va I.Cardiaca, I.sea, I.Celmica o I.Traqueal.7. Puede usar Glicopirrolato, aunque su efecto es ms lento que el de la Atropina (0,01 0,02

    mg/Kg) va IM o IV

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    5. TABLA DE DOSIFICACIN DE FRMACOS INYECTABLES

    FRMACO DOSIS (mg/Kg) VIA OBSERVACIONESMidazolam 0,2 1 IM PremedicacinButorfanol 0,2 1 IM PremedicacinDiazepam 0,2 - 1 IM IV PremedicacinFlumazenil 0,02 0,1 IM

    IVAntagonista de lasbenzodiazepinas

    Ketamina 5 - 40 IM Procedimientos rpidosde baja invasividad

    Ketamina + Xilacine K (5) + X (0,25 1) IM Puede causar depresinrespiratoria severa.Ketamina + Midazolam K (5 20) + Mi (0,25) IMKetamina +Medetomidina

    K (3 6) + Me (0,15 0,3) IM

    Atipamezole 0,75 1,5 (5 veces la dosis deMedetomidina)

    IM Antagonista de laMedetomidina

    Doxapram 5 7 IMSLIV

    Estimulante respiratorio

    Adrenalina 1:1000 0,05 0,5 ICaICeIO IT

    RCP, bradicardia

    Atropina 0,04 - 0,10,5

    ICaICeIO IT

    BradicardiaRCP

    Glicopirrolato 0,01 0,02 IM IV RCP, bradicardia

    6. BIBLIOGRAFA

    Edling, T. 2004. Updates in anesthesia and monitoring. Clinical Avian Medicine. 11 pp: 747-760

    Gunkel, C. 2007. Avian anesthesia and analgesia. Autumn Meeting 2007 Universitat Leipzig. pp: 6-13

    Lee, L. 20??. Anesthesia for exotic species. Veterinary Surgery I. Center for Veterinary HealthSciences.

    West, G., Heard, D., Caulkett, N. 2008. Zoo Animal and Wildlife Immobilization and Anesthesia. JohnWiley & Sons. 656 p.

    http://www.lafebervet.com/avian-medicine-2/avian-emergency-medicine/

    Elaborado por: Claudia Brieva R.

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