Fiebre tsutsugamushi

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FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

DR. LUCAS BURCHARD SEÑORET

MÉDICO VETERINARIO

ASESOR DE ZOONOSIS Y SANEAMIENTO

HOSPITAL DR. CARLOS CISTERNAS DE CALAMA

AGOSTO 2016

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• Fiebre de los matorrales

• Tifus de los matorrales

• Tifus de las malezas

• Tifus tropical

• Enfermedad de Umayado o de Shichito (Japón).

• Del japonés tsutsuga, enfermedad y mushi, insecto

INTRODUCCIÓN

• Los años 2006 a 2016 se detectó la presencia del agente causal

de esta enfermedad en 8 casos autóctonos de habitantes de la

isla de Chiloé, Chile, lo que constituye un hecho inédito en la

historia médica de este país.

• La posibilidad de que la enfermedad se propague en el país

hace necesario difundir conocimientos técnicos al personal

sanitario como medida básica de prevención.

DEFINICIÓN

• Zoonosis infecciosa aguda causada por la rickettsia Orientia

tsutsugamushi, transmitida generalmente por ácaros del

género Leptotrombidium, caracterizada por presentación

estacional en primavera y verano, aparición brusca, fiebre alta,

cefalea, erupción macular con escara en el punto de la picadura

y endémica en el llamado triángulo tsutsugamushi.

AGENTE ETIOLÓGICO

• Orientia tsutsugamushi, parásito intracelular del orden

Rickettsiales fue descubierto en 1930 en Japón.

• Esta rickettsia es transmitida habitualmente a los humanos por

ácaros trombiculídos del género Leptotrombidium.

Orientia tsutsugamushi

AGENTE ETIOLÓGICO

• Existen al menos 6 cepas variables en patogenicidad y virulencia:

• Gillian

• Karp

• Kabu

• Kawasaki

• Kuruki

• Shimokoski

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• Se presentan alrededor de 1.000.000 de casos anuales

principalmente en primavera y verano con unos 140.000

fallecidos.

• Sin tratamiento la mortalidad es de un 10 - 60 %.

• El período de incubación varía de 6 a 21 días con un promedio

de 10 – 12 días

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• La enfermedad es endémica en el llamado Triángulo

Tsutsugamushi:

Irán, India, Camboya, Laos, Vietnam, China, Japón, Coreas, Indonesia, Australia, Malasia, Myanmar, Taiwán, Pakistán, Nueva Guinea, Tadzhikistán, Sumatra, Afganistán.

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• La distribución geográfica está determinada por la distribución

del vector y reservorio el ácaro Leptotrombidium.

• Las condiciones ecológicas son variadas: selva, semidesierto,

desierto montañoso y praderas alpinas del Himalaya.

• Se describen islotes ecológicos de infección determinados por

la presencia del ácaro y especies de mamíferos, especialmente

roedores, de los cuales se alimentan

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• Clínicamente se caracteriza por:

• Aparición brusca,

• Fiebre alta constante (40 – 40,5 ° C),

• Cefalea severa, anorexia, malestar general

• Confusión, sudoración profusa,

• Mialgias, tos seca y náuseas,

• Bradicardia relativa y

• Fotofobia.

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• Erupción macular pálida y escara de 4 – 8 mm en el punto de

picadura del ácaro acompañada a menudo de compromiso de los

ganglios linfáticos regionales. A los 5 – 7 días erupción macular en

tronco y extremidades.

• Esplenomegalia en 30 % de los casos.

• El cuadro puede variar de muy leve a muy grave.

• Casos severos con neumonía, meningoencefalitis, falla multiorgánica,

sangrado e incluso muerte.

GenitalesNalgasBrazosCodoAbdomen inferiorAxilasMuslosRodillasMamasEspacio Interdigital

Eritema macular en fiebre tsutsugamushi

Foto: Chang-Seop Lee

Foto: Shikino et al.

Foto: Shikino et al.

Foto: Viquas Saim

Eritemas maculares en fiebre tsutsugamushi

foto: Ruganpinan et al.

Linfadenopatía en fiebre tsutsugamushi Escara en fiebre tsutsugamushi

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• Los exámenes de laboratorio revelan principalmente:

• Leucopenia con linfopenia

• Trombocitopenia

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• La mayoría de los infectados presentan casos leves. Estudios

revelan un 18 a 77 % de individuos serológicamente positivos

en zonas endémicas.

• Los signos duran unas 2 semanas incluso sin tratamiento

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• El diagnóstico se puede sospechar por signos clínicos que

incluyen fiebre alta constante, erupción macular al término de

la primera semana y antecedentes de viaje a zonas endémicas

de la enfermedad (Triángulo tsutsugamushi).

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI• El diagnóstico diferencial se hace con:

• Dengue,

• Fiebres tifoidea y paratifoidea,

• Leptospirosis,

• Malaria,

• Tifus murino y

• Mononucleosis infecciosa,

• Enfermedad meningocócica,

• Loxoscelismo

• Otras enfermedades exantemáticas febriles.

FIEBRE TSUTSUGAMUSHI

• El diagnóstico de laboratorio se hace:

• Serología, en zonas no endémicas,

• Inmunofluorescencia Indirecta (IFI), método ideal,

• PCR

TRATAMIENTO

• El tratamiento es en base a antibióticos:

• Primera línea: Doxiciclina (200 mg/día), Tetraciclina (500 mg

c/6 horas) o cloranfenicol (500 mg c/6 horas) todos por 3 a 7

días.

• Segunda línea: Rifampicina (600 – 900 mg/día) o Azitromicina

(500 mg inicial y 250 mg los días siguientes) por 7 días

• No se han desarrollado vacunas efectivas

VÍAS DE TRANSMISIÓN

ÁCARO VECTOR

TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA

TRANSUTERINA rara

no comprobada

principal

ÁCAROS VECTORES

• Se han descrito unas 40 especies, de los siguientes géneros,

conocidas o sospechosas de ser vectores de Orientia tsutsugamushi:

• Leptotrombidium (25 especies),

• Neotrombicula (6 especies),

• Ascoschoengastia (2 especies),

• Euschoengastia (2 especies)

• Walchia (2 especies).

ÁCAROS VECTORES

• Sin embargo, se describen como los más importantes:

• Leptotrombinium akamushi,

• Leptotrombinium deliense

• Leptotrombinium scutellare y

• Leptotrombinium pallidum.

Leptotrombidium scutellare Leptrombidium akamushi

Larva de Leptotrobidium spp (foto Nikolai Kushpela)

HUMANO

LARVA ALIMENTADA

LARVA HEMATOFAGA

HUEVO

ADULTO DEUTONINFA

PROTONINFA

TRITONINFA

SUELO

CICLO DE VIDALeptotrombinium

inactiva

inactiva

activapredadora

activopredadormaduro8 patas

cae al suelo

activa6 patas

picadura

Larva de Leptotrombidium spp.

Picadura Leptotrombidium

Leptotrombidium

ALIMENTACIÓN ÁCAROS

• Las ninfas y adultos se alimentan de huevos, estados inmóviles

y de otros artrópodos que habitan en el suelo.

• La larva, que mide 0,5 mm, se alimenta de sangre de roedores

silvestres y aves.

• La larva se adhiere y pica a un solo huésped por lo que no

puede transmitir la enfermedad a otro huésped.

ALIMENTACIÓN ÁCAROS

• Al alimentarse la larva inocula al huésped saliva contaminada

con Orientia o puede ingerir sangre con Orientia.

• La Orientia ingerida se concentra en el tejido ovárico del ácaro

donde permanece y pasa a integrar los huevos de forma que las

nuevas larvas que nacen ya vienen infectadas (transmisión

transovárica).

HUÉSPEDES NATURALES

• Principalmente roedores silvestres de los géneros:

• Apodemus

• Microtus

• Leopoldamys

• Maxomys y

• Rattus.

Apodemus spp (foto James Lindsay)

Leopoldamys spp (foto www.metazoa.us)

Microtus spp. (foto José Ramón Pato Valente)

Maxomys spp. (foto: www.cse.ffpri.affrc.go.jp)

Rattus spp.

HUÉSPEDES NATURALES

• Asimismo un amplio rango de aves silvestres y domésticas

como:

• Palomas (Columbia livia)

• Gallinas (Gallus domesticus)

• Faisanes

• Las aves son resistentes a la infección aunque algunas pueden

sufrirla transitoriamente.

HÁBITAT ÓPTIMO ÁCAROS

• Ecosistemas con alta humedad,

• Temperatura ambiental moderada a alta,

• Suelos húmedos,

• Suelos intervenidos por agricultura, por explotaciones

forestales o campos abandonados los que favorecen la

aparición de malezas o matorrales de transición.

PROFILAXIS

• Uso de repelentes (dietiltoluamida [DEET], bencilbenzoato y

dibutilftalato),

• Remoción de malezas,

• Aplicación de insecticidas,

• Uso de pantalón y mangas largas y

• Quimioprofilaxis (200 mg de doxicilina por semana).

• No se recomienda el control de roedores silvestres.

BIBLIOGRAFÍA

• Schlossberg, D. (2008). Clinical Infectious diseases. Cambridge

University Press. 1549 pp.

• Kraves, H et al.(2003) Zoonosis. Third Edition AMS Press.

Canada. 456 pp.

• Marquardt, W et al. (2005). Biology of Disease Vectors. 2nd

Edition. Elsiever Academic Press. 785 pp.

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Edition. Kluver Academic Publishers, Netherlands. 659 pp.

• Kettle, DS. (2005). Medical and Veterinary Entomology. 2nd

Edition. CABI Publishing,USA. 723 pp.

• Mully, G y Durden,L (2002). Medical and Veterinary Entomology.

Academic Press, USA. 579 pp.

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2nd Edition. Harcourt Academic Press, USA. 702 pp.

• Del Ponte, E. (1958). Manual de Entomología Médica y

Veterinaria Argentinas. Eds. Librería del Colegio, Buenos Aires.

349 pp.

• Hubálek, Z y Rudolf, I. (2011). Microbial Zoonoses and

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www.cdc.gov/eid.Vol 17, September 2011:1659 – 1663.