UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
TRABAJO DE GRADO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
ODONTÓLOGO/A
TEMA DE INVESTIGACIÓN:
APLICACIÓN DE FIBRINA EN ALVEOLOS POST EXODONCIA DE
TERCEROS MOLARES IMPACTADOS.
AUTOR/A:
PLAZA GURUMENDI ALISON LILIBETH
TUTOR/A:
DR. MIGUEL SALAVARRIA VÉLEZ.
Guayaquil, Junio, 2020
Ecuador
I
CERTIFICACIÓN DE APROBACIÓN
Los abajo firmantes certifican que el trabajo de Grado previo a la obtención del Título de
Odontólogo /a, es original y cumple con las exigencias académicas de la Facultad Piloto de
Odontología, por consiguiente, se aprueba.
…………………………………..
Dr. José Fernando Franco Valdiviezo, Esp.
Decano
………………………………………
Dr. Patricio Proaño Yela, Ms.
Gestor de Titulación
II
APROBACIÓN DEL TUTOR/A
Por la presente certifico que he revisado y aprobado el trabajo de titulación cuyo tema es:
Aplicación de fibrina en alveolos post exodoncia de terceros molares impactados presentado
por el Sr/Srta. PLAZA GURUMENDOI ALISON LILIBETH., del cual he sido su tutor/a,
para su evaluación y sustentación, como requisito previo para la obtención del título de
Odontólogo/a.
Guayaquil Junio del 2020.
…………………………….
Nombre del tutor/a
CC:
III
DECLARACIÓN DE AUTORÍA DE LA INVESTIGACIÓN
Yo, ALISON LILIBETH PLAZA GURUMENDI, con cédula de identidad N°1207134121…,
declaro ante las autoridades de la Facultad Piloto de Odontología de la Universidad de
Guayaquil, que el trabajo realizado es de mi autoría y no contiene material que haya sido tomado
de otros autores sin que este se encuentre referenciado.
Guayaquil,Junio del 2020.
…………………………….
Nombre del estudiante
CC
IV
DEDICATORIA
Este presente trabajo está dedicado en primer lugar a Dios porque sin él
hubiese sido imposible llegar hasta donde he llegado.
Se lo dedico a mi Mama Mariuxi Gurumendi por darme la confianza y
creer en mí siempre, por ser mi sustento y haberme forjado como la
persona que soy en la actualidad con reglas y libertades, pero al final
siempre me motivo a no rendirme en cada circunstancia, a mi padre
Miguel Plaza por darme su apoyo a lo largo de la vida
incondicionalmente.
Dedicado también a mi hermana Thais por darme su aliento a seguir
adelante y poder ser ejemplo para ella.
A mi novio Luis Quito por ser un pilar fundamental, tenerme paciencia y
sobre todo darme la confianza.
V
AGRADECIMIENTO
Estoy agradecida con Dios por todo lo que me ha bendecido para poder
culminar esta carrera universitaria.
Agradezco una vez más a mis padres por brindarme su apoyo a lo largo de
la vida y en esta etapa tan importante de poder ser una profesional.
Agradezco al Dr. Carlos Dávila por saber guiarme, ayudarme con sus
conocimientos y el aporte científico en mi tesis, sobre todo la paciencia y
gentileza en todo momento que le pedí su ayuda.
A mi tutor el Dr. Miguel Salavarria por brindarme sus ideas y aportes para
mi trabajo de titulación.
A mi amigo Robert García por siempre apoyarme a lo largo de toda mi
carrera universitaria..
A mis amigas Silvia, Nicole, Marianella Y Antonella, gracias por siempre
poder contar con Uds. el apoyo y el cariño ha sido mutuo, gracias por
estar presente en esta etapa de mi vida.
VI
CESIÓN DE DERECHOS DE AUTOR
Dr.
José Fernando Franco Valdiviezo, Esp.
DECANO DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
Presente.
A través de este medio indico a Ud. que procedo a realizar la entrega de la Cesión de Derechos
de autor en forma libre y voluntaria del trabajo Aplicación de fibrina en alveolos post
exodoncia de terceros molares impactados , realizado como requisito previo para la obtención
del título de Odontólogo/a, a la Universidad de Guayaquil.
Guayaquil Julio del 2020
…………………………….
Nombre del estudiante
CC:
VII
INDICE GENERAL
CERTIFICACIÓN DE APROBACIÓN .......................................................................................... I
APROBACIÓN DEL TUTOR/A ................................................................................................... II
DECLARACIÓN DE AUTORÍA DE LA INVESTIGACIÓN .....................................................III
DEDICATORIA ........................................................................................................................... IV
AGRADECIMIENTO ....................................................................................................................V
CESIÓN DE DERECHOS DE AUTOR....................................................................................... VI
INDICE GENERAL .................................................................................................................... VII
ÍNDICE DE FIGURAS................................................................................................................. XI
ÌNDICE DE TABLAS ................................................................................................................ XIII
RESUMEN..................................................................................................................................XIV
ABSTRACT................................................................................................................................. XV
INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 1
CAPÍTULO I................................................................................................................................... 3
EL PROBLEMA ............................................................................................................................. 3
1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ............................................................................... 3
1.1. DELIMITACIÓN DEL PROBLEMA ......................................................................... 4
1.1.1. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA .................................................................. 4
1.1.2. PREGUNTAS DE INVESTIGACIÓN ................................................................. 5
1.3. OBJETIVOS ................................................................................................................... 8
1.3.1. OBJETIVO GENERAL ......................................................................................... 8
1.3.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ................................................................................ 8
VIII
CAPÍTULO II ................................................................................................................................. 9
MARCO TEÓRICO........................................................................................................................ 9
2. ANTECEDENTES INVESTIGATIVOS ............................................................................ 9
2.1. FUNDAMENTACIÓN CIENTÍFICA O TEÓRICA................................................ 11
2.1.1. CONCENTRADOS PLAQUETARIOS .............................................................. 11
2.1.1.1. CLASIFICACION DE LOS CONCENTRADOS PLAQUETARIOS ..... 12
2.1.1.2. PREPARACIÓN DE CONCENTRADO PLAQUETARIOS BUFFY
COAT 13
2.2. FIBRINA RICA EN PLAQUETAS ............................................................................ 13
2.2.1. EFECTOS DE LA FIBRINA EN LOS TEJIDOS BLANDOS Y DUROS ...... 15
2.2.4. RESULTADO DE LA OBTENCIÓN DE LA FIBRINA
(CENTRIFUGACIÓN)....................................................................................................... 17
2.2.4.1. INDICACIONES ........................................................................................... 18
2.2.4.2. CONTRAINDICACIONES .......................................................................... 18
2.2.4.3. VENTAJAS .................................................................................................... 18
2.2.4.4. DESVENTAJAS ............................................................................................ 19
2.2.5. HEMOSTASIA ..................................................................................................... 19
2.2.5.1. COÁGULO O TAPÓN PRIMARIO ........................................................... 19
2.2.5.2. COÁGULO O TAPÓN SECUNDARIO...................................................... 20
2.2.6. FORMACIÓN DEL COÁGULO DE FIBRINA DENTRO DE LA CASCADA
DE COAGULACIÓN. ........................................................................................................ 20
2.2.6 CASCADA DE COAGULACIÓN......................................................................... 20
2.3 CICATRIZACIÓN....................................................................................................... 22
2.3.1.1 PRIMARIA O DE PRIMERA INTENCIÓN.............................................. 22
2.3.1.2 SECUNDARIA O FISIOLÓGICA .............................................................. 23
IX
2.3.1.3 TERCERIA O ETAPA DE REMODELACIÒN ........................................ 24
2.4 MECANISMOS DE CICATRIZACIÓN ALVÉOLAR ........................................... 25
2.4.1 OSTEOGÉNESIS ................................................................................................... 25
2.4.2 OSTEOCONDUCCIÓN ......................................................................................... 26
2.4.3 OSTEOINDUCCIÓN ............................................................................................. 26
2.5 IMPLICACIONES DE LA UTILIZACION DE LA FIBRINA EN DIFERENTES
TIPOS DE PACIENTES. ....................................................................................................... 26
2.5.1 LA DIABETES ........................................................................................................ 26
2.5.1.1 HEMOFILIA.................................................................................................. 27
2.5.1.2 HEMOFILIA TIPO B ................................................................................... 27
2.6 INFLAMACIÓN .......................................................................................................... 28
2.6.1 SIGNOS CLÍNICOS DE LA INFLAMACIÓN POSOPERATORIOS ............. 28
2.6.2 FISIOPATOLOGÍA DE LA INFLAMACIÓN.................................................... 28
2.6.2.1 CAMBIOS VASCULARES .......................................................................... 29
2.6.2.2. CAMBIOS CELULARES ............................................................................. 29
2.7. ALVÉOLOS DENTARIOS ......................................................................................... 29
2.7.1. COMPOSICIÓN DEL HUESO ALVEOLAR ................................................... 31
2.7.2. MATRIZ EXTRACELULAR .............................................................................. 31
2.7.3. FUNCIONES DEL HUESO ALVEOLAR ......................................................... 32
2.7.4. VARIACIONES FUNCIONALES Y FISIOLÓGICAS DE LOS ALVEOLOS
DESPUÉS DE LA EXTRACCIÓN ................................................................................... 34
2.7.5. TÉCNICAS DE PRESERVACIÓN ALVEOLAR. ............................................ 35
2.7.6. BIOMATERIALES EN PRESERVACIÓN ALVEOLAR. .............................. 36
2.8. FASES DE REPARACIÓN ÓSEA ............................................................................. 36
X
2.8.1. FORMACIÓN DEL HEMATOMA .................................................................... 37
2.8.2. FORMACIÓN DEL TEJIDO DE GRANULACIÓN ........................................ 37
2.8.3. FORMACIÓN DEL CALLO............................................................................... 37
CAPÍTULO III .............................................................................................................................. 38
MARCO METODOLÓGICO....................................................................................................... 38
3.1 DISEÑO Y TIPO DE INVESTIGACIÓN ................................................................. 38
3.2 MÉTODOS, TÉCNICAS E INSTRUMENTOS ........................................................ 38
3.2.1 TÉCNICAS OBSERVACIÓN CLÍNICA ............................................................. 39
3.2.1 INTRUMENTALES Y MATERIALES DE CLINICA DE CIRUGIA ............... 39
3.3 PROCEDIMIENTO DE LA INVESTIGACIÓN ...................................................... 39
3.3.1 FASES DE LA INVESTIGACIÓN ....................................................................... 39
3.4 DESCRIPCIÓN DEL CASO CLÍNICO (EJEMPLO) ............................................. 40
3.4.1 HISTORIA CLÍNICA ............................................................................................ 40
3.4.2 EXAMEN EXTRAORAL ...................................................................................... 41
3.4.3 EXAMEN INTRAORAL ....................................................................................... 42
3.4.4 Fotos intraorales...................................................................................................... 42
3.4.5 ODONTOGRAMA ................................................................................................ 44
3.4.6 DIAGNOSTICO...................................................................................................... 45
3.4.7 PLANES DE TRATAMIENTO............................................................................. 46
3.4.8 PRONÓSTICO........................................................................................................ 46
3.4.8.1 PROCESO CLÍNICO ................................................................................... 46
3.4.8.1.1 TRATAMIENTO ...................................................................................... 46
3.4.8.1.1.1 ´FASE PREOPERATORIA .............................................................. 48
3.4.8.1.1.2 FASE OPERATORIA -LADO DERECHO DEL PACIENTE .... 49
XI
3.4.8.1.1.3 FASE OPERATORIA -LADO DERECHO DEL PACIENTE ..... 51
3.4.8.1.1.4 FASE POSTOPERATORIO CLÍNICAMENTE ............................ 53
3.4.8.1.1.5 FOTO POSTOPERATORIA RADIOGRÁFICAMENTE (30
DÍAS) 54
3.4.8.1.1.6 FOTO POSTOPERATORIA RADIOGRÁFICAMENTE (3
MESES DE EVOLUCIÓN). .................................................................................. 55
3.5 ANÁLISIS DE RESULTADOS .................................................................................. 55
3.6 DISCUSIÓN .................................................................................................................. 56
3.7 CONCLUSIONES ........................................................................................................ 60
3.8 60
Bibliografía .................................................................................................................................. 62
....................................................................................................................................................... 71
ÍNDICE DE FIGURAS
FIGURA 1.- CAJA FRP UTILIZADA PARA CREAR MEMBRANAS. ............................. 14
FIGURA 2 COAGULO DE FRP DESPUÉS DE LA CENTRIFUGACIÓN ...................... 17
FIGURA 3 CASCADA DE COAGULACIÓN ......................................................................... 21
FIGURA 4 CICATRIZACIÓN POR PRIMERA Y SEGUNDA INTENCIÓN. .................. 23
FIGURA 5 TEJIDOS ÓSEOS ................................................................................................... 25
FIGURA 6 ALVÉOLOS Y ALVEOLITIS .............................................................................. 30
FIGURA 7 CRESTA ALVEOLAR ........................................................................................... 33
FIGURA 8 POST EXTRACCIÓN DENTAL .......................................................................... 34
XII
FIGURA 9 ROSTRO DE FRENTE .......................................................................................... 41
FIGURA 10 TIPO DE SONRISA.............................................................................................. 41
FIGURA 11 FOTO LATERAL DE ROSTRO......................................................................... 42
FIGURA 12 FOTO ARCADA SUPERIOR ............................................................................. 42
FIGURA 13 FOTO ARCADA INFERIOR .............................................................................. 43
FIGURA 14 FOTO FRONTAL EN OCLUSIÓN .................................................................... 43
FIGURA 15 FOTO LATERAL DERECHO ............................................................................ 43
FIGURA 16 FOTO LATERAL IZQUIERDO ......................................................................... 44
FIGURA 17 ODONTOGRAMA ............................................................................................... 44
FIGURA 18 RADIOGRAFÍA PANORÁMICA ...................................................................... 45
FIGURA 19 PROCESO DE OBTENCIÓN DE LA FIBRINA .............................................. 48
FIGURA 20 ASEPSIA .............................................................................................................. 49
FIGURA 21 ANESTESIA E INCISIÓN .................................................................................. 49
FIGURA 22 PROTOCOLO QUIRÚRGICO ......................................................................... 50
FIGURA 23 LIMPIEZA Y SUTURA DE LA CAVIDAD ................................................... 51
FIGURA 24 ANESTESIA E INCISIÓN .................................................................................. 51
FIGURA 25 PROTOCOLO QUIRÚRGICO ........................................................................... 52
FIGURA 26 APLICACIÓN DE FIBRINA Y SUTURA. ..................................................... 52
FIGURA 27 CONTROL POSTQUIRÚRGICO ................................................................... 53
FIGURA 28 CONTROL RADIOGRAFIÓ POST QUIRÚRGICO (30 DÍAS)..................... 54
XIII
FIGURA 29 CONTROL RADIOGRAFIÓ POST QUIRÚRGICO 3 MESES ..................... 55
ÌNDICE DE TABLAS
TABLA 1 DIFERENCIAS ENTRE CICATRIZACIÓN POR PRIMERA Y SEGUNDA
INTENCIÓN ............................................................................................................................... 24
TABLA 2 COMPOSICIÓN DE MATRIZ EXTRACELULAR ............................................. 32
ÌNDICE DE ANEXOS
ANEXO 1: CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES ................................................................. 68
ANEXO 2: PRESUPUESTO...................................................................................................... 69
ANEXO 3: CONSENTIMIENTO INFORMADO................................................................... 70
ANEXO 4: FOTOGRAFÍAS ..................................................................................................... 71
ANEXO 5 HISTORIA CLÍNICA 033 ....................................................................................... 72
ANEXO 6 EXAMEN DE LABORATORIO ............................................................................ 73
ANEXO 7 INSTRUMENTAL QUIRÚRGICO.................................................................... 74
XIV
RESUMEN
La extracción quirúrgica de los terceros molares impactados deja un espacio en el alveolo y el
cuerpo mandibular, provocando inflamación y proliferaciones pos quirúrgicas. La fibrina es un
concentrado plaquetario de segunda generación, se la puede obtener de manera sencilla y es muy
fácil de aplicar. Estudios desarrollados en la universidad de San Marcos, Perú usaron la fibrina
para tratamientos pos exodoncias como alternativa de reparación de tejidos así como la
preservación alveolar. En este estudio se usaron 32 alveolos, en los cuales a 16 se le aplicaron
fibrina y a los otros 16 una cicatrización fisiológica en los que hubo una diferencia de reparación
y cicatrización hasta los 2 primeros meses. El presente trabajo tiene como objetivo determinar la
eficacia de la aplicación de la fibrina en alveolos pos exodoncia de terceros molares impactados,
así como su cicatrización, regeneración de tejidos y estimular la reparación ósea. Se procedió a la
extracción de los terceros molares mandibulares impactados, realizando el respectivo protocolo
quirúrgico y la aplicación de la fibrina en un alveolo pos exodoncia y en el otro solo se realizó la
respectiva sutura y control postquirúrgico. Se pudo determinar que a nivel de tejidos la
aplicación de la fibrina aceleró la cicatrización del mismo y no hubo un edema significativo, a
diferencia del alveolo al que no se aplicó la fibrina que si existió una lenta cicatrización de los
tejidos con un edema y una reparación ósea más lenta.
Palabras Claves: Fibrina – alveolo - molares – Pos exodoncia – Cicatrización
XV
ABSTRACT
Fibrin application in alveolar of impacted third molars
Surgical removal of impacted third molars leaves a space in the socket and mandibular body,
thus causing inflammation and proliferation post surgical . Fibrin is a second generation platelet
concentrate which can be obtained in a simple way and it is very easy to apply. Studies
conducted at the “University of San Marcos,” Peru used fibrin for post-dental treatments as an
alternative to tissue repair as well as alveolar preservation. In this study 32 alveoli were used, in
which 16 were applied fibrin and the other 16 a physiological healing in which there was a
difference in repair and healing until the first 2 months. This study aims to determine the
effectiveness of the application of fibrin in post-exodontia alveoli of impacted third molars, as
well as their healing, tissue regeneration and stimulate bone repair. The impacted mandibular
third molars were removed by performing the respective surgical protocol and the application of
fibrin in a post-exodontia alveolus and in the other only the respective suture and post-surgical
control was performed. It was determined that at the tissue level the application of fibrin
accelerated the healing of it and there was no significant edema, unlike the alveolus to which the
fibrin was not applied than if there was a slow healing of the tissues with an edema and a slower
bone repair.
Keywords: Fibrin - alveolus - molars – Post-exodontia - Healing
1
INTRODUCCIÓN
Los terceros molares impactados extraídos quirúrgicamente pueden presentar diversas
complicaciones posoperatorias ya sea por la falta de factores de crecimientos u otros
problemas relacionados con el paciente directamente como la hemofilia por lo que existen
diversos concentrados plaquetarios que aportan grandes beneficios al momento de su
aplicación postquirúrgica.
Este trabajo de tesis está enfocado en un concentrado plaquetario de Fibrina denominado de
segunda generación por Chourkroun en el 2001, se la puede obtener de manera sencilla y
con una alta eficacia en procesos quirúrgicos de extracciones de terceros molares,
levantamientos de seno, cirugías periodontales en la cual ha sido capaces de liberar factores
de crecimiento por lo que van a estimular la regeneración y reparación ósea, además que
desempeñando un papel fundamental en la hemostasia.
Se ha usado la fibrina para preservación del reborde alveolar pos exodoncia , en la
Universidad de San Marcos de Perú en el año 2018, se usó la fibrina en 6 pacientes con
piezas unir radiculares, de los cuales se eligió 16 alveolos para colocación de la fibrina y
en 16 no se colocó ningún material, se usaron guías de acrílico para evaluar la perdida
horizontal y como resultado a pesar de que la fibrina rica en plaquetas obtuvo una menor
pérdida horizontal y vertical tanto en los rebordes en la evaluación clínica y tomográfica, la
diferencia no fue significativa entre ambos grupos. Solo a los 2 meses de evaluación se
obtuvo una mejor preservación de altura de reborde (Quispe, 2018)
Por este motivo, el presente trabajo tiene como objetivo determinar la eficacia de la fibrina
en alveolos post exodoncia de terceros molares impactados.
Presentando un diseño de investigación experimental, descriptiva y cualitativa, ya que se
aplicará la Fibrina en alveolo post exodoncia de terceros molares impactados con un
control A 30 días y luego 3 meses. Al paciente se realizó los respectivos exámenes de
laboratorio prequirúrgico, para luego poder hacer la intervención y el seguimiento
correspondiente.
2
La extracción dental, es uno de los tratamientos odontológicos quirúrgicos que se realizan
con mayor frecuencia por los cirujanos maxilofaciales y odontólogos generales por lo que
estas extracciones podrán ser divididas en simples o complejas (Srinivas, Susarla, Blaeser
& Magalnick, 2015, págs. 177-186). Cuando existen exodoncia de piezas incluidas,
retenidas o impactadas se debe realizar un procedimiento donde se va a utilizar un colgajo
mucoperiostico (Sandner O, 2017).
Así mismo, se debe tener en cuenta los signos y síntomas que un paciente puede presentar
durante el postoperatorio como dolor, trismos e hinchazón, que son complicaciones que se
presentan en un gran número de individuos. (Bui, 2016). Se podrán identificar, las
complicaciones propias de la post extracción, es decir: infecciones, sangrados en exceso,
daños de piezas dentales adjuntas o nervios contiguos, entre otros (Srinivas, Susarla,
Blaeser & Magalnick, 2015).
Otra complicación frecuente es la osteítis alveolar o también conocida como la alveolitis
seca, ya que según lo menciona la literatura estas afectan del 1 al 4% de los pacientes que
se someten a extracciones quirúrgicas, siendo especialmente los problemas encontrados en
el 45% de los terceros molares mandibulares. (Lopes., Rodrigues., Ferreira, Pompermaier,
& Perri de Carvalho, , 2017, págs. 1922-1932). Entre otros estudios, también exponen que
las incidencias de alveolitis posterior a una extracción son del 2 al 5% específicamente los
terceros molares son del 20% al 35% (Bloomer, 2016).
Se define como alveolitis al estado inflamatorio del alveolo (Oginni , 2015) mismo que
tiende a producir dolor severo y pulsátil, en el o alrededor del alveolo. Generalmente, este
dolor inicia inmediatamente o tres días después de la extracción, caracterizándose por la
dispersión o ausencia del coágulo sanguíneo dentro del alveolo. (Oginni , 2015)
3
CAPÍTULO I
EL PROBLEMA
1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La extracción quirúrgica de los terceros molares impactados, deja la presencia de un
espacio en el alveolo y el cuerpo mandibular, la zona tratada quirúrgicamente conlleva a
diferentes fases de cicatrización como son: inflamación, proliferación y remodelado; por lo
que, es necesario se considere que al ser la fibrina, una albúmina fibrilar, cuya capacidad es
la de constituir mallas o redes tridimensionales de vasos sanguíneos y tendones, Esta debe
ser de buena calidad . (Dohan D, Choukroun J, Diss A, Dohan S, Dohan A, Mouhyi J,
Gogly B., 2016). Esta proteína, es la que actuará como un hilo o pegamento entre las
plaquetas que se encuentran expuestas en una herida; por lo que, la fibrina tiene que
cumplir con el objetivo de mantener la estabilidad del coagulo adherido a la herida, hasta
que se regeneren los tejidos. (Grossman S &Mattson C;, 2017)
Entre las características primordiales de esta albúmina, se destaca sin lugar a dudas:
El desarrollo de la coagulación y la importancia que tiene el mismo en el proceso
de cicatrización,
La forma de bastón, con áreas globulares formaran distintas moléculas de fibrina,
con la finalidad de que se forme un coagulo blando. (Felzani, 2015)
La utilización de la fibrina se aconseja como complemento de cicatrización de los tejidos
duros y blandos debido a la incomodidad postquirúrgica causan los en los pacientes, luego
de haber realizado la extracción quirúrgica. Se han desarrollado una serie de terapias que
minimizan la recuperación postquirúrgica, por lo que un sin número de investigadores, se
han centrado en la utilización de materiales de tipo bioactivo, ya que al ser estos de origen
autólogo, incrementan las fibrinas ricas en plaquetas, que favorecen el crecimiento,
disminuyendo así el tiempo en el que se va a tardar la lesión en repararse, esto debido a la
4
estimulación difusa y diferenciada de células en los tejidos en donde se requiera ser
regenerados Los tejidos. (Shobha P & Aditi T. , 2016)
Por lo que, se buscará disminuir las complicaciones que podrán presentarse durante o
después de un procedimiento dental , actualmente existen nuevas generaciones de
concentrados plaquetarios denominados Fibrina Rica en Plaquetas (FRP), misma que se
originó en Francia por primera vez en el año 2001, con la finalidad de que se use de manera
específica en el área de Cirugía Oral y Cirugía Maxilofacial (Hiremath H; Kulkami S &
Hiremath V, 2016).
En lo que respecta a las distintas investigaciones, sobre la fibrina rica en plaquetas (FRP),
estas sirven como un estimulante para la restauración osteológica y tisular guiada, pero
inmediatamente después de efectuar una exploración absoluta de las referencias de utilidad
de las fibrinas rica en plaquetas, se ha logrado evidenciar, que este novedoso procedimiento
tiene muchas propiedades buenas para los pacientes, no obstante, son escasos los estudios
publicados en los que se realiza la evolución y utilidad de este biomaterial en los procesos
de cicatrización, sobre todo en los tejidos blandos de la cavidad bucal. (Corso M & Mazor
Z. , 2016)
1.1. DELIMITACIÓN DEL PROBLEMA
Este trabajo se realizará en la facultad de odontología de la Universidad de Guayaquil, en
la clínica Mayor de Cirugía Bucal en el periodo de 3 meses: noviembre 2019-enero 2020.
Línea de investigación: Salud Oral, Prevención, Tratamiento y Servicios de Salud
Sublínea de investigación: Tratamiento.
1.1.1. FORMULACIÓN DEL PROBLEMA
¿De qué manera, la utilización de fibrina en el tratamiento de alveolos post extracción de
terceros molares mandibulares impactados, es un procedimiento que mejora la recuperación
de los pacientes?
5
1.1.2. PREGUNTAS DE INVESTIGACIÓN
¿Por qué los concentrados plaquetarios, son de gran utilidad en un proceso de
extracción de terceros molares, en los que usara fibrina rica en plaquetas?
¿Cuál es el protocolo de tratamiento cuando se utiliza fibrina en los alveolos
después de la extracción de los terceros morales?
¿Cuáles son las indicaciones, contraindicaciones de utilizar fibrina rica en plaquetas
en la extracción de terceros molares?
¿Cuáles son las ventajas y desventajas de utilizar fibrina rica en plaquetas en la
extracción de terceros molares?
¿Cómo influye la utilización del prf en la cicatrización de los tejidos cuando se
realiza la extracción de terceros molares?
¿En qué pacientes se puede utilizar el prf y en que pacientes no se puede utilizar?
6
1.2. JUSTIFICACIÓN
La fibrina rica en plaquetas, es una proteína, denominada de segunda generación, esta
acelera la cicatrización tisular de las heridas debido a los concentrados plaquetarios. Por
ello, debemos conocer la importancia que posee en el proceso de la coagulación y en la
preservación de rebordes alveolares, Además también sirve para estimular la regeneración
de hueso que recubre la raíz distal del segundo molar inferior cuando se realiza las
exodoncia quirúrgicas de los terceros molares mandibulares ya que existe un número
determinado de pacientes que después de las exodoncia de terceros molares mandibulares
refieren sentir sensibilidad en la cara distal del segundo molar.
Para su obtención se usa una técnica muy sencilla y fácil de adquirirla, es viable ya que es
compatible con el organismo, autólogo porque se lo extrae de la propia sangre del paciente,
no produce reacciones ajenas al cuerpo, no se requiere de ningún anticoagulante o aditivo
en ninguno de sus procesos de obtención; posee gran cantidad de factores de crecimientos,
apresurando el proceso de regeneración tisular y regeneración ósea.
Diversos estudios han demostrado su eficacia no solo en extracciones de terceros molares,
sino que también se ha llevado a cabo en cirugías mayores, veterinarias y en la odontología
se la ha usado en tratamientos postoperatorios de cirugías de levantamientos de seno,
cirugías periodontales, recubrimientos de raíces dentales y también en pacientes con
periodontitis crónicas.
No solo se enfoca en la regeneración y cicatrización, sino que también diversos estudios
demuestran su efectividad en la disminución del dolor e hinchazón postoperatoria, por lo
que es de mucha importancia que los estudiantes de odontología, odontólogos y
especialistas lo manejen como alternativa de tratamiento que se presente en el campo
odontológico.
7
La fibrina rica en plaquetas, se conforma de células madres de una matriz a base de fibrina,
así mismo esta tiene plaquetas, citoquinas y glóbulos blancos que son de gran importancia y
dan excelentes resultados al realizar procedimientos quirúrgicos y también se ha observado
que a nivel periodontal sus tejidos se regeneran de una mejor calidad. Cabe recalcar, que
los leucocitos, influyen directamente en la liberación de elementos de crecimiento, que
regularizan las funciones inmunológicas de las actividades antiinfecciosas, renovando la
matriz, durante el proceso de cicatrización (Leighha R, 2013).
Estos procesos, han demostrado que posterior a la centrifugación, el 90% aproximadamente
de las plaquetas y el 50% de leucocitos aproximadamente se concentran en el producto de
fibrina rica en plaquetas (Bolukbasi N; Yeniyol S; Tekkesin M; & Altunatmaz K, 2016).
(Dohan D; Bielecki T & Jimbo R, 2017), evidenciaron, la lenta liberación de los distintos
componentes del crecimiento de los derivados de las plaquetas (FCDP), del factor de
crecimiento transformante beta 1 (TGF-β1), del factor de crecimiento endotelial vascular
(FCEV) y de glicoproteínas; como la fibronectina y vitronectina especialmente durante los
primeros 7 días. (Zumstein A; Berger S & Schober M ;, 2017)
No obstante, (Zumstein A; Berger S & Schober M ;, 2017), durante los estudios realizados,
evidenciaron que la liberación fue continua, hasta un máximo de 28 días, pero es un
complemento para que los tejidos se recuperen y renueven, esto debido a las propiedades
propias de la fibrina rica en plaquetas, ya que el biomaterial que tiene este componente
combinado con distintos sustitutos acelera rápidamente la regeneración ósea.
8
1.3. OBJETIVOS
1.3.1. OBJETIVO GENERAL
Determinar la eficacia de la aplicación de fibrina en alveolos pos exodoncia de terceros
molares impactados y el confort pos quirúrgico para el paciente.
1.3.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Determinar de qué manera los concentrados plaquetarios sirven para la
reparación de los tejidos.
Estudiar que es la fibrina rica en plaquetas, cuáles son las indicaciones y
contraindicaciones de uso y aplicabilidad en procesos de extracción dentaria.
Analizar los fundamentos teóricos de la cicatrización, posterior a una
intervención de extracción de terceros morales.
Evidenciar, cuáles son los signos clínicos de la inflamación y los cambios
fisiopatológicos que tiene este proceso quirúrgico.
Demostrar clínica y rx la preservación de alveolo utilizando fibrina rica en
plaquetas.
9
CAPÍTULO II
MARCO TEÓRICO
2. ANTECEDENTES INVESTIGATIVOS
El estudio desarrollado por Quispe (2018), en la Universidad de San Marcos consistió en el
uso de fibrina en el tratamiento pos exodoncia con el fin de preservar los rebordes
alveolares. Se evaluaron 32 alveolos en seis pacientes, divididos en dos grupos, un grupo
de 16 alveolos a los cuales se colocó fibrina y un grupo control de 16 alveolos. Para la
evaluación horizontal y vertical del hueso se utilizó guías de acrílico bimensualmente. Los
resultados obtenidos manifiestan que no hubo diferencia significativa de pérdida ósea
durante los dos primeros meses.
Se logro demostrar, que la regeneración de los tejidos blandos y óseos mejoraron con la
aplicación de un agregado de plaquetas, con grandes cantidades de fibrina, testificando su
efectividad. Para ello, se analizó en un grupo de personas de entre 20 a 30 años de edad,
evidenciando que la regeneración ósea de los tejidos si mejoro, pero no tan rápidamente
como en las personas de entre 16 a 19 años de edad, en quienes los resultados de
cicatrización fueron mejor y más rápida, así mismo, se dividió en géneros a los
participantes, destacándose el sexo masculino por la mejor cicatrización en relación con el
género femenino, que tardo un poco más en repararse (Gúzman , 2017).
En otro estudio se usó la fibrina como preservador del reborde alveolar y en un periodo de
8 A 12 semanas después de la extracción, se realizó una muestra de 10 pacientes, donde se
tomó 11 zonas de estudio en el cual se realizó exodoncias mínimamente traumáticas y se
usó la fibrina (PRF) en dientes que no se pudieran hacer la respectiva rehabilitación. Para
ello se tomó medidas de volumen pre exodoncia y también en el periodo de 8 A12 meses
después de haber realizado las exodoncias, los resultados observados fueron que a nivel de
tejidos blandos no hubo alteraciones de la línea mucogingival y a nivel horizontal si hubo
10
un grado mayor de alteración, pero donde más hubo depresiones fue en el punto central.
(Rincon L, 2016).
En el año 2017 en la Universidad Autónoma de Barcelona se usó la fibrina en caballos
para validar su proceso de regeneración tisular .El caballo había presentado sarcoide en el
canto medial del ojo derecho, fue atendido por un veterinario y la cirugía fue muy
favorable sin presentar complicaciones, tuvo un defecto iatrogénico en el seno por lo que
dejaba expuesta la cavidad, se le procedió a realizar la cirugía logrando que el periostio y
el musculo elevador naso labial cubriesen el defecto, colocaron PRF y posteriormente la
sutura. (Jimenez, 2017).
En el 2017 se usó la fibrina como producto para valorar la cicatrización ósea y gingival en
la cirugía de terceros molares realizada en el centro quirúrgico de la Universidad central del
Ecuador por medio de un estudio comparativo realizado en 30 pacientes, se hizo control de
los pacientes durante 8 días mediante observación directa de las heridas y 60 días posterior
a la cirugía, se tomó radiografías panorámicas examinado por el software RadiAnt dicom
Viewer (Guzman G, Paltas M, Benenaula J, Nuñez K, Simbaña D , 2017).
El análisis comprobó que la cicatrización de tejido blando y tejido óseo perfecciona con el
uso de PRF, afirmando de esta manera su efectividad. El grupo de edad, de 20 a 23 años
presentó mejor cicatrización de tejido óseo, comparado con el de 16 a 19 años que presentó
el mejor resultado en cicatrización de tejido blando. Con relación al sexo masculino y
femenino presentó mejor cicatrización el sexo masculino (Guzman G, Paltas M, Benenaula
J, Nuñez K, Simbaña D , 2017).
El plasma rico en fibrina fue usado como tratamiento para la osteonecrosis por bifosfonatos
en un paciente donde se suspendió el uso de medicamentos, se procedió hacer la limpieza
de la afección, con la eliminación del hueso necrótico y la utilización de fibrina rica en
plaquetas. Se realizó seguimiento de control después de un mes y 6 meses en donde la
paciente se mostró asintomática y con la herida avanzando en su proceso de cicatrización,
por lo que este estudio garantizo el uso de la L-PRF como agente de regeneración ósea en
la necrosis mandibular por bifosfonatos (León J, 2018)
11
La fibrina rica en plaquetas es un concentrado plaquetario de segunda generación, del cual
podemos obtener un coágulo y/o una membrana con gran cantidad de factores de
crecimiento, leucocitos y citoquinas, esta se consigue activando la cadena de coagulación
mediante la centrifugación de sangre autóloga. (Camara C, 2016). En este protocolo no se
manipula químicamente la sangre, lo que la convierte en una técnica accesible y sencilla
para ser usada en la práctica diaria.
El presente caso describe la preservación de reborde post exodoncia del remanente
radicular de la pieza 1.5 mediante exodoncia atraumática y la utilización de la fibrina rica
en plaquetas obtenida con el protocolo de Choukroun como biomaterial de regeneración. El
coágulo de fibrina fue dividido en dos partes, una parte como material de relleno autólogo
(osteoinductor, osteoconductor) y otra como membrana autóloga para evitar el colapso del
alveolo. A la evaluación clínica y radiográfica de seguimiento (1 mes y 12 meses), se
evidencia la regeneración de la zona intervenida y la favorable evolución clínica. (Camara
C, 2016)
2.1. FUNDAMENTACIÓN CIENTÍFICA O TEÓRICA
2.1.1. CONCENTRADOS PLAQUETARIOS
Los concentrados plaquetarios se adquieren mediante una muestra de sangre a través de
tubos de ensayo, los cuales se colocan a centrifugación con el único propósito de aislar
componentes sanguíneos que no van a ser de utilidad (Glóbulos rojos) y Solidificar
elementos con fines terapéuticos (Plaquetas, factores de crecimiento, fibrina, células
circulantes en solución y plasma) (Quispe, 2018).
Cabe recalcar, que el plasma rico en plaquetas, también se podrán definir como el volumen
de albuminoides autólogos, que comprenden la concentración de plaquetas superiores al
nivel basal, (150.000-350.000/μL), lo que, sin duda alguna, corresponderá a una porción
del plasma centrifugado con comprensiones (Wroblewski A, Melia H & Wright V. , 2016)
De igual manera, el plasma plaquetario, se consigue a partir de la sangre del paciente, esto
mediante la utilización de un procedimiento de división celular, donde se realiza una
12
centrifugación diferencial, que busca dividir en distintas fases a los plasmas plaquetarios,
así se lograrán adquirir las de mayor utilidad. Los nuevos procesos tecnológicos, han
permitido, que se reduzca la extracción a cantidades manejables. Así se adquirirá de 6 a 12
ml de plasma rico en plaqueta, prescindiendo de la sangre que no se utilizará, por lo que no
será necesaria una reinfunsión ya que se prohibirá su reutilización en el área dental.
(Lobado & Criado, 2016)
La gran acumulación, de ciertos elementos de crecimiento que se encuentran presentes, en
los gránulos alfa plaquetarios, así como la capacidad de síntesis de proteínas, su actividad
microbicida y moduladora de la inflamación benefician la proliferación e
inmunomodulación celular y la síntesis de matriz extracelular, ayudando a la cicatrización
de heridas. Es así como se ha llevado a plantear el uso del plasma autólogo rico en
plaquetas para la reparación de varios tejidos (Acosta E, 2017).
2.1.1.1. CLASIFICACION DE LOS CONCENTRADOS
PLAQUETARIOS
Los concentrados plaquetarios se van a clasificar según la familia, esto va a depender ya
sea de su contenido celular así como de la arquitectura de la fibrina así como de la
composición celular : si estos son netamente puros se denominan con la letra (P) y si son
leucocitos (L), en el caso de plasma rico en plaquetas puro (P-PRP), Plasma rico en
plaquetas y leucocitos (L –PRP), fibrina rico en plaquetas puro (P-PRF) y Fibrina rico en
plaquetas y leucocitos (L-PRF) . (Quispe, 2018)
Los concentrados plaquetarios son de dos generaciones conocidos comúnmente como el de
primera generación el Plasma rico en plaquetas y este luego se propuso un nuevo
concentrado plaquetario denominado Plasma rico en factores de crecimiento por el Dr.
Anitua. Luego de haber evaluado diversos factores como la complejidad, tiempo de
preparación y porque no decir algunas inconsistencias en el año 2001 el Dr. Chourkroun
fue el que sumergió la fibrina rica en plaquetas como concentrado plaquetario de segunda
generación (Quispe, 2018).
13
2.1.1.2. PREPARACIÓN DE CONCENTRADO PLAQUETARIOS
BUFFY COAT
Este proceso constará de dos facetas, mismas se dividirán de la siguiente manera:
Primera fase, se deberá realizar una centrifugación pesada (concentración
3.000 rpm a 10 min) con la finalidad de que separen las siguientes capas:
o En el sobrenadante, el plasma exento de células,
o La capa intermedia es leuco plaquetario (Buffy-Coat), y
o Hematíes en la capa inferior. (Rubio G, 2016)
Por lo que, con el fraccionamiento de estas capas mencionadas, se podrá utilizar de manera
más adecuada un equipo automático, de esta manera la obtención del plasma en la bolsa y
el concentrado de hematíes, se conservar de forma adecuada.
Dentro de la segunda fase, la bolsa matriz Buffy-Coat, deberá reposar durante 3 horas
aproximadamente, con la finalidad de que se pueda realizar un proceso de centrifugación
leve, ya que lo que se pretende obtener es el concentrado plaquetario del Buffy-Coat
(Castellanos J & Gay O., 2016).
2.2. FIBRINA RICA EN PLAQUETAS
La fibrina rica en plaquetas de Choukroun (PRF), se define como de segunda generación de
concentrados plaquetarios, con agregados de citoquinas y glicoproteínas ordenados dentro
de una red de fibrina lentamente polimerizada (Meza J; Lecca M; Correa E & Rios K,
2016).
Actualmente, el conocimiento sobre los factores de crecimiento aparece cuando los estudios
en el campo de la regeneración ósea, se basan en promover la migración, proliferación y
diferenciación de las células que se aglomeran para la regeneración, por lo que la
14
utilización de fibrina rica en plaquetas, es un procedimiento apto y óptimo para los casos en
los que se extraen los terceros molares. (Salgado P; Salgado G; & Arriba F, 2017)
Figura 1.- Caja FRP utilizada para crear membranas .
Fuente. - (Camara C, 2016)
El objetivo, de reportar casos en los que las extracciones de terceros molares necesiten
rellenos en los alveolos con fibrina son necesarios, para que se demuestre la fácil
aplicabilidad de la fibrina rica en plaquetas, ya que al ser un biomaterial autólogo en
técnicas de tejidos y con un costo accesible , se ha brindado como una de las alternativas
más viables para los pacientes que no cuentan con los recursos monetarios suficientes, para
realizarse procesos de regeneración convencional debido a que su costo es mayor. (Lekovic
V, Kenney EB, Weinlaender M, & Han T,, 2017)
Los resultados de los estudios realizados por (Lekovic V, Kenney EB, Weinlaender M, &
Han T,, 2017), demuestran que la pérdida de altura ósea, necesita un mayor relleno
osteológico del alvéolo debido a la menor reabsorción horizontal, por no usar las
membranas. (Toffle M; Toscano N; Holtzclaw D & Corso M, 2018)
Por lo que, las ventajas que tiene el plasma rico en plaquetas, radican directamente en la
facilidad de su preparación ya que es diferente al plasma rico en plaquetas (PRP), esta
técnica no necesita de anticoagulante, ni de ningún otro gelificante a diferencia de los
15
numerosos materiales que se usan en los alvéolos después de la extracción, como un
material netamente de relleno. (Toffle M; Toscano N; Holtzclaw D & Corso M, 2018)
Cabe recalcar, que el uso de los materiales de relleno, son los que ayudan a la prevención
de un desvanecimiento en las paredes del alvéolo, durante o posteriormente a la extracción
de una pieza dentaria, ya que lo que se pretende es que no se pierdan los tejidos blandos y
duros, de esta manera se reducirá el número de procedimientos aportando óptimos
resultados estéticos. (Ashman A, 2016)
Según lo expresado por Wang, existe un promedio de 40 a 60% de ancho y altura original
en lo que se refiere a la cresta, esta podrá perderse en los 2 primeros años después de la
cirugía, lo que significa que la mandíbula tendrá un incremento de 0,4 mm al año en
relación a la maxila que solamente crecerá el 0,1 mm, provocando un gran perjuicio para el
resultado final de la rehabilitación ósea en el lugar de la extracción. (Wang K, 2015).
Por lo tanto, lo más importante es seguir buscando los mejores biomateriales para así
preservar el reborde, no solamente como relleno, sino también como una membrana, que
servirá a su vez de soporte para que no colapse el alvéolo. La utilidad, de esta membrana,
eliminara los problemas de migración de partículas hacia el injerto, fuera del sobrante del
alvéolo, previniendo así la invaginación del tejido epitelial y blando dentro del alvéolo
permitiendo una mejor cicatrización. (Fowler E; Breault L, & Rebitski G; , 2016)
2.2.1. EFECTOS DE LA FIBRINA EN LOS TEJIDOS BLANDOS Y
DUROS
En la actualidad el PRF es muy usado debido a sus propiedades, en donde se demuestra que
luego del proceso de centrifugado este poseería el 90% de leucocitos y el 50% de plaquetas
se concentrarían en el PRF.
Se ha considerado el análisis de la fibrina y su activación ya sea por procedimientos
químicos y físicos. Es necesario saber cuándo empieza a suceder la angiogénesis, Esta
16
membrana es de gran importancia pues protege las heridas abiertas y acelera la
cicatrización, además que esta contiene leucocitos. De forma Biológica la fibrina se
considera matriz de soporte por lo que es reconocida por la proteína morfogenética ósea
(BMP) la cual genera procesos de cicatrización favorables. (Rincon L, 2016)
2.2.2. PROCEDIMIENTO DE OBTENCIÓN DE LA FIBRINA
El procedimiento de obtención de la fibrina es tomar una muestra de 10 ml de sangre de la
vena ante cubital en un tubo de ensayo, si hay alguna dificultad de localizar dicha vena
procederemos a la canalización de otra, cabe recalcar que el tubo de ensayo debe estar
completamente vacío sin ningún anticoagulante ni aditivo. Una vez extraída la sangre en el
tubo de ensayo lo colocamos en la centrifugas a 3.000 rpm por 10 minutos. Cada Tubo de
ensayo corresponde a una membrana de fibrina. Cuando termina el proceso procedemos a
sacarla del tubo de ensayo y la limpiamos de los eritrocitos adheridos a coagulo para poder
colocarla en la herida (Salgado, 2017).
2.2.3. PROCEDIMIENTO DE LA COLOCACIÓN DE FIBRINA
Antes de realizar una adecuada técnica de anestesia y extracción del tercer molar se
procederá a medir el grosor del reborde alveolar en la zona media, así mismo, en la parte
media comprendida entre fondo del surco de la pieza dental y la zona crestal de la misma.
(Anitua E, 2017).
Una vez realizado el paso anterior, se obtendrán tres fases en un tubo, dividiéndose en:
La base de corpúsculos rojos,
La parte media el Plasma Rico en Fibrina gelificado y
La parte superior el Plasma Pobre en Plaquetas. (Lichtman M, 2016)
No obstante, durante el procedimiento es esencial, la rapidez con la que se obtenga las
muestras de sangre, ya que el centrifugado debería realizarse inmediatamente, empieza el
proceso de coagulación. Puesto que, al momento en el que se realiza esta técnica o
procedimiento de manera correcta, la exodoncia de la pieza dental, se irrigará el alvéolo
17
rápidamente con solución salina esterilizada, para luego tomar el Plasma Rico en Fibrina
con una pinza dividiendo el mismo en dos partes, con la finalidad de que sirva para rellenar
el alvéolo, siendo la otra parte la que se realice la sutura, así se protegerá al coagulo que se
ubica en el alveolo desinfectado, para proceder a realizar la sutura, de esta manera se
evitará la salida esporádica del PRF del alvéolo (Bonilla S., Valarezo T., Macio P., &
Medrano N,, 2017).
2.2.4. RESULTADO DE LA OBTENCIÓN DE LA FIBRINA
(CENTRIFUGACIÓN)
El Producto obtenido de la centrifugación consta de 3 fases: La primera es Fase de plasma
acelular reducido en plaquetas este tiene un tono amarillento, la segunda es la fase que
corresponde a la Fibrina pura y la tercera fase esta fase es color rojo que correspondería
básicamente a los eritrocitos o hematíes. El coagulo de PRF contiene 90% de leucocitos y
aproximadamente más del 50% del coágulo de inicio, donde se obtiene la matriz de fibrina
que se encarga de libertar a los factores de crecimiento que promueve la multiplicación y
distinción de células (Salgado, 2017).
Figura 2 Coagulo de FRP después de la Centrifugación
Fuente: (Camara C, 2016)
18
Los leucocitos y citoquitas que se encuentran en el coagulo de fibrina pueden ayudar a
disminuir diversos factores inflamatorios e infeccioso incluso cuando se usa la fibrina con
otro material de relleno, haciendo que el proceso de cicatrización se realice de manera más
acelerada
2.2.4.1. INDICACIONES
La colocación de la fibrina está totalmente indicada en el campo de la Odontología;
En pacientes Diabéticos debido a la dificultad de cicatrización.
Pacientes con osteonecrosis por bifosfonatos.
Alveolos post-extracción dental como complemento a una mejor coagulación y
acelerador de cicatrización, disminución de la inflamación.
Pacientes con inmunodepresiones.
Regeneración periodontal.
Levantamientos de seno maxilar
En lechos de injerto de paladar
2.2.4.2. CONTRAINDICACIONES
Pacientes con trastornos de coagulación
Pacientes con Obesidad debido que su sangre contiene los niveles elevados de
grasa.
Pacientes con Endocarditis Bacteriana
No se conoce mayor contraindicación debido que la Fibrina es un material autólogo por lo
que en pacientes relativamente sanos si es de mayor uso.
2.2.4.3. VENTAJAS
Su obtención es sumamente sencilla y fácil de realizar
No es necesario ningún anticoagulante o aditivo.
19
Se extrae de la propia sangre.
Durante 7dias in vitro, se produce la liberación de sus factores de crecimiento por
ello ayuda a una acelerada cicatrización
Considerado de menos riesgo ya que no se expone a los pacientes a los agentes
anticoagulantes derivados de animales
2.2.4.4. DESVENTAJAS
Hoy en día no existen desventajas o inconvenientes del cual no se pueda hacer uso del PRF,
ya que en la actualidad se puede usar con el retraso de hasta 3 horas siempre y cuando no se
hayan retirado de la caja del PRF se lo puede usar con cautela y el paciente este en las
condiciones adecuadas de salud (Salgado, 2017).
2.2.5. HEMOSTASIA
Es el mecanismo de defensa por el cual se impide la salida de sangre a través de sus
componentes y la pared vascular, involucrando un mecanismo de estado físico de la sangre
de líquido a sólido. Dada por la formación de la fibrina y este coagulo a una malla
insoluble. Este proceso de hemostasia es con frecuencia se podría planificar de manera
simultánea tales como; vasoconstricción localizada, adhesión de las plaquetas al
subendotelio, formación del tapón plaquetario, reforzamiento de éste a través del depósito
de la fibrina, activación de mecanismos inhibitorios de regulación y, finalmente,
degradación del material depositado a través del sistema plasminógeno plasmina
(Martinuzzo, 2017).
Existen 2 fases de la hemostasia:
2.2.5.1. COÁGULO O TAPÓN PRIMARIO
Es la formación del coagulo cuando se une el colágeno que está localizado en el
subendotelio, cuando el colágeno migra del subendotelio al endotelio vascular este se adosa
a la superficie de la herida y permite que las plaquetas se adhieran en presencia del factor
20
von willebrand favoreciendo a la hemostasia del coagulo primario y el tiempo de duración
es máximo de 1 a 3 minutos y esto se produce en los vasos sanguíneos capilares.
2.2.5.2. COÁGULO O TAPÓN SECUNDARIO
Se forma a partir de los 10 a 12 minutos constituido por la fibrina y la trombina, la fibrina
se produce a partir del fibrinógeno y la trombina a partir de la tromboplastina. La fibrina es
el coagulo y la trombina es la malla que lo fortalece. Cuando existe alguna alteración en la
formación de la fibrina es decir que hay carencia de los factores de la coagulación y esto
determina que no se produzca una buena hemostasia.
2.2.6. FORMACIÓN DEL COÁGULO DE FIBRINA DENTRO DE LA
CASCADA DE COAGULACIÓN.
La trombina en un volumen de concentración alto produce la formación de fibrinógeno en
fibrina. Este Fibrinógeno contenido de una glicoproteína, posee tres cadenas de
polipéptidos (Aa, Bb Y g), se puede diferenciar tres dominios: Estructura central amino,
Terminal denominada dominio E y dos extremos laterales caborxi-terminales llamados
dominios D. El proceso de formación de la fibrina esta básicamente dada a través de 3
procedimientos: Proteólisis, polimerización y estabilización.
2.2.6 CASCADA DE COAGULACIÓN
La hemostasia debe iniciarse a partir de una herida o vía de continuidad, esta se basa en
tres vías: vía extrínseca, vía intrínseca y la vía común que son las tres vías por las cuales se
va a formar el coagulo. Los Factores pertenecientes a las 3 vías son:
Vía Extrínseca O tisular: Factor III o Factor tisular, Factor VII.
Vía intrínseca o de contacto: factor XII, factor II y el factor IX, factor VII y factor X.
Vía común: factor X, factor V, factor I, factor XII.
21
Primero se tiene la herida o lesión , segundo se produce una vasoconstricción refleja que
evita que la sangre siga o también denominado vasoespasmo, tercero la formación de tapón
primario que este como es soluble e inestable se va a perder, cuarto formación del tapón
secundario , entre el Tapón primario y el secundario los que intervienen para que se haga
solido son los factores de la coagulación y por último la fibrinólisis que es después de
varias horas o días de haberse formado el coagulo este debe disolverse.
Una vez ocasionada la lesión o herida hay salida de colágeno, ya que al momento de
ocasionarse esta se expone el subendotelio que es quien libera colágeno, una vez liberado el
colágeno este convoca a las plaquetas y hacen solida la unión en donde interviene el factor
VIII y se forma el tapón primario que se va perder rápidamente.
Figura 3 Cascada de Coagulación
Fuente: (Giner D; González C; Orodñez S;, Martín-Granizo, R., & Berguer, A., 2016)
Colágeno, plaquetas y la consolidación del factor VIII llegan hasta el Factor X que
vendría a ser el inicio de la vía común.
22
Vía intrínseca se activa por la misma lesión pero hay dos precursores que van hacer
que esta vía comience: la calicreína y el quininógeno que estimulan al factor XII,
este activa al XI, este activa al factor IX, el factor VIII se activa solo, una vez que
estemos el factor VIII Y IX producto del proceso ambos van a llegar al mismo sitio
donde llego la vía extrínseca que es factor X que es donde inicia la vía común pero
aún no está totalmente consolidado.
El factor X más el factor V forman la protrombina, esta forma a la trombina, luego se forma
el fibrinógeno y de aquí se forma la red de fibrina. Para que aquel de tapón de fibrina sea
muy sólido y no se pierda no interviene el factor XIII Factor estabilizante de la fibrina en
donde ya está reparada la lesión y se produce la fibrinólisis.
2.3 CICATRIZACIÓN
La cicatrización es el proceso Fisiológico multifactorial que se realiza para reparar o
regenerar el tejido afectado ya sea por una herida intencional o accidental. En donde se
presentan una serie de eventualidades bioquímicas, biológicas con el objetivo de reparar el
tejido que se encuentra afectado. El tercer molar luego de una extracción
postquirúrgicamente presenta cicatrización por segunda intención, esta conlleva mayor
tiempo. La producción de los tejidos lesionados durante la cirugía es una entidad de
cualquier procedimiento quirúrgico, por lo que es muy importante que el profesional que
realice este procedimiento le dé gran importancia y conozcan la biología de la reparación
tisular (Guzman G, Paltas M, Benenaula J, Nuñez K, Simbaña D , 2017).
2.3.1 CLASIFICACIÓN DE LA CICATRIZACIÓN
La cicatrización se dividirá en:
2.3.1.1 PRIMARIA O DE PRIMERA INTENCIÓN
Esta requiere de la sutura donde los bordes de la herida quedan unidos como están antes de
realizar el procedimiento aquí se va a proceder a disminuir la presión, contracción menor
depósito de colágeno, esta sería la forma ideal por la cual se debería tratar la herida, aunque
23
en ciertos casos si está contraindicado la sutura, un ejemplo de ello es cuando la herida ha
estado expuesta por un tiempo prolongado, entonces no se recomienda cerrarla o suturarla
debido que es lo más probable que haya una infección de la misma, otro caso sería cuando
se ha hecho un procedimiento quirúrgico y hay contenido purulento, esta se da en un
tiempo promedio de 1 a 2 meses.
Figura 4 Cicatrización por primera y segunda intención.
Fuente: (Felzani, 2015)
2.3.1.2 SECUNDARIA O FISIOLÓGICA
Este cierre ocurre de manera espontánea, donde la herida realiza su contracción y
revitalización voluntaria. En este tipo de cicatrización se prolongará el cierre de la herida,
por lo que su tejido estéticamente va a tener cambios, debido a ciertos procedimientos
como los abscesos se recomiendan dejar la herida abierta para que los fluidos puedan
drenar y se proceda a dar la reparación de la misma aquí aparece un tejido de granulación
en donde hace que la epitelización sea más lenta.
Genera una cicatriz de gran tamaño en relación a la cicatriz por primera intensión, es
recomendado dejarlo que se realice por segunda intención en extracciones simples donde
no se ha causado mayor trauma quirúrgico.
24
Tabla 1 Diferencias entre Cicatrización por Primera y segunda intención
Fuente: (Felzani, 2015)
2.3.1.3 TERCERIA O ETAPA DE REMODELACIÒN
La fase de remodelación, se constituye como una de las etapas finales del proceso de
cicatrización, denominada como maduración de la herida, cabe señalar, que durante esta
etapa diversos nervios o fibras de colágeno, fueron colocadas de modo anárquico
destruyéndolas y siendo suplidas por nuevas fibras, mismas que cumplen con la finalidad
de resistir la fuerza de la tensión en donde se localiza la herida. En lo que se refiere, a la
firmeza de la herida, esta aumentará lentamente, no de igual manera como ocurrió durante
la fase fibroblástica.
Por lo que, la fuerza de la herida nunca alcanza el 80% u 85% de la resistencia que el tejido
tenía previo a la lesión. (Howe G, 2015). Algunas fibras de colágeno son removidas para
dar suavidad a la cicatriz. Como el metabolismo de la lesión se reduce, la vascularidad
también disminuye y por ende el enrojecimiento de la herida. La elasticidad en ciertos
tejidos como la piel y ligamentos no es recuperada durante la cicatrización, lo que genera
pérdida de flexibilidad a lo largo de la cicatriz. (Ganong W, 2015)
Finalmente, en el último periodo de la fase fibroblástica y cuando inicia la remodelación de
la herida, esta termina por contraerse. (Donado M, 2015). Por lo que, en distintos casos,
esta contracción es de suma importancia para la recuperación y reparación final de la
herida. En mucho de los casos, la contorsión es de vital importancia, en lo que se refiere a
la reconstrucción de la herida. Cabe señalar, que, durante el periodo de remodelación, los
25
bordes de la encía migrarán hacia el centro, mientras que en una herida en la que los bordes
no fueron situados convenientemente, la contracción reduce el tamaño de la misma,
favoreciendo a la regeneración del tejido.
Sin embargo, la contracción podrá causar una serie de problemas en distintos casos, como
es el de las quemaduras cutáneas de grado tres, en las que debido a la exposición al fuego
en la que se ha encontrado la piel esta se deforma y debilita con mayor fuerza. Otra de las
desventajas, propias de la contracción, se da cuando la piel sufre cortes curvos, que
producen eversión a los bordes.
2.4 MECANISMOS DE CICATRIZACIÓN ALVÉOLAR
Los tejidos óseos, normalmente poseen, grandes potenciales, regenerativos, mismo que
pueden restaurarse completamente, ya sea estructural o funcionalmente, no obstante, la
presencia o aparición de ciertos defectos óseos, impedirá que el proceso natural ocurra. Por
lo tanto, los mecanismos biológicos para injertar el hueso, son tres, siendo estos:
Figura 5 Tejidos Óseos
Fuente: (Felzani, 2015)
2.4.1 OSTEOGÉNESIS
Este se producirá, al momento en el que se trasplanten osteoblastos factibles,
así como las células predecesoras de los osteoblastos, quienes, junto con los
26
materiales de injertos, establecerán una especie de centros de constitución
del hueso in situ.
2.4.2 OSTEOCONDUCCIÓN
Se produce, al momento en el que se usan, materiales que no son
transcendentales, sirviendo como andamiaje, ya que su finalidad de que crezcan
precursores de los osteoblastos en el interior del defecto.
Generalmente, debe existir la absorción de manera gradual, ya que el hueso
cortical autólogo y los aloinjertos son un ejemplo de osteconducción. (Arenas
C, 2016)
2.4.3 OSTEOINDUCCIÓN
Este tipo de cicatrización incluirá nuevas formaciones del hueso, debido a la
diferenciación de las células de los tejidos conjuntivos y células formadoras de
osteoblastos, mismo que se localizaran bajo la influencia de sustancias
inductivas, como es la matriz ósea desmineralizada. (Gonzales V, 2016)
2.5 IMPLICACIONES DE LA UTILIZACION DE LA FIBRINA EN
DIFERENTES TIPOS DE PACIENTES.
2.5.1 LA DIABETES
La diabetes, al ser una enfermedad crónica, que altera el sistema humano en su totalidad,
afecta directamente a los sistemas de coagulación, siendo estos los que principalmente
sufren estas alteraciones:
Disfunción Endotelial,
Hiperactividad Plaquetaria,
Generación de Trombina y:
Fibrinólisis Disminuida.
27
Siendo, este último factor, el que favorece a que se den cuadros de trombosis en pacientes
con diabetes.
2.5.1.1 HEMOFILIA
La Hemofilia, es considerada, como una de las complicaciones de la sangre, debido a que
esta se tarda en coagular, siendo dos tipos de hemofilia, los que más aparecen en pacientes
con problemas dentarios, y cuya afectación altera la recuperación del mismo, siendo estos:
Hemofilia Tipo A (hemofilia clásica, o deficiencia de factor VIII)
Hemofilia Tipo B (enfermedad de Christmas, o deficiencia de factor IX) ( Caunedo A,
2015)
La hemofilia es causada por la falta de suficiente factor de coagulación VIII o IX en la
sangre. En la mayoría de los casos, la hemofilia se transmite de padres a hijos (hereditaria).
La mayor parte del tiempo, se transmite a los hijos varones ( Caunedo A, 2015).
2.5.1.2 HEMOFILIA TIPO B
La hemofilia de tipo B, se considera como uno de los trastornos de coagulación sanguínea,
heredada por la falta de proteínas en el plasma, cuya denominación es factor IX, mismo que
produce afectación en la propiedad de coagulación de la sangre directamente. Cabe
señalar, que la hemofilia, al provocar un desorden hemorrágico, cuya causa es hereditaria,
altera los factores determinados de la coagulación, clasificándola así en diferentes tipos,
conteniendo a la hemofilia A y B, siendo, la primera es 7 veces más común que la segunda.
La hemofilia B, se origina por la insuficiencia del factor IX de la coagulación, estando
ligada esta alteración genética al rasgo recesivo del cromosoma X, en donde se localizará el
gen defectuoso, presentándose, de manera principal en los varones, aunque las mujeres
también pueden presentar este tipo de problemas genéticos, al tener un cromosoma X, si el
gen descompuesto es IX, este será compensado por el otro cromosoma.
28
Las mujeres con un gen defectuoso del factor IX son portadoras de este rasgo. El 50% de la
descendencia masculina de las mujeres portadoras tendrá la enfermedad y el 50% de la
descendencia femenina será portadora. Asimismo, todas las hijas de un varón hemofílico
son portadoras del rasgo (Espinoza B; Campal F; Gonzalez M, 2017).
2.6 INFLAMACIÓN
El organismo posee un mecanismo de defensa conocido como inflamación ante cualquier
agresión de los tejidos, Debido a estas agresiones endógenas y exógenas de los tejidos a
través de la inflamación logra aislar la lesión, donde se produce la destrucción del patógeno
y empieza la reparación del tejido, dando así la funcionalidad y rehabilitación de los tejidos
afectados anteriormente.
También se la considera una respuesta inespecífica que brinda un efecto de salud al
huésped. Si no se produjera la inflamación los procesos infecciosos no podrían controlarse,
la reparación de las heridas no se obtendría y los órganos y tejidos no pudiera recuperar su
funcionalidad (Villalva, 2018).
2.6.1 SIGNOS CLÍNICOS DE LA INFLAMACIÓN
POSOPERATORIOS
Calor: Se aumenta la vasodilatación
Rubor: Mayor irrigación de la zona con la afección.
Dolor: Por el cambio de tamaño de los tejidos
Ardor: Mayor volumen de permeabilidad y producción de líquido intersticial
(Villalva, 2018).
2.6.2 FISIOPATOLOGÍA DE LA INFLAMACIÓN
Las etapas de la inflamación comienzan su proceso que va de 3 a 5 días
postquirúrgicos esta se da después que se ha producido el acto quirúrgicamente o e l
tejido se ha lesionado por la misma causa (Gonzales V, 2016)
29
En la inflamación ocurren diversos cambios fisiopatológicos.
2.6.2.1 CAMBIOS VASCULARES
Inicia con la vascular que es la vasoconstricción formándose el coágulo en la zona
lesionada que evita la pérdida de sangre (Gonzales V, 2016) , Cuando se produce la
inflamación en los vasos sanguíneos ocurren diversos ciclos de cambios ya sea en el flujo
como en su grosor en donde va a permitir la salida en mayor volumen de proteínas y células
plasmáticas desde la circulación hasta el sitio de la inflamación. La vasodilatación es lo
primero que sucede esta está dada por la histamina, por células sebáceas y el ácido nítrico
actuando directamente sobre el musculo liso vascular, lo dilata y se produce la salida de la
sangre microvascular, Se produce la presión hidrostática y la disminución de la osmótica
provocando la salida de fluidos del espacio intravascular a extravascular formando el
edema (Villalva, 2018).
2.6.2.2. CAMBIOS CELULARES
Los leucocitos son los indicados en realizar el proceso de viajar hasta la luz de los vasos
sanguíneos hasta el foco de la lesión en donde van a proceder a realizar su defensa del
agente patógeno. Este ciclo es conocido como extravacion y consta de tres etapas:
Marginación, rodadura y adhesión al endotelio.
Diapédesis
Migran los tejidos intersticiales (Villalva, 2018).
También interviene la etapa celular, en la que los leucocitos polimorfonucleares y
los macrófagos son los procuradores de destrucción de bacterias u otros agentes
extraños (Gonzales V, 2016).
2.7. ALVÉOLOS DENTARIOS
Los alvéolos dentarios, se consideran como las divisiones, que se presentas en
los huesos alveolares, en donde se insertarán los dientes, espaciados entre sí,
30
por un parapeto interalveolar óseo. Por lo que, el alvéolo presentará tres
regiones principales siendo estas:
Figura 6 Alvéolos y Alveolitis
Fuente: (Bloomer, 2016)
Placas corticales,
La esponjosa y;
La alveolar propiamente dicha.
Siendo, las placas cortiales las que se colocan en el sentido labial y lingual,
desarrollando como un sostén resistente de los huesos para que estos se
compacten, siendo estas revestidas por huesos porosos, de esta manera se
constituye una capa esponjosa, esta es la que rodeará una capa delgada
alrededor de un hueso compactado, por lo que el hueso alveolar, tiene una
morfología que se refleja por la forma de la raíz, que se suspende en el interior.
31
2.7.1. COMPOSICIÓN DEL HUESO ALVEOLAR
Es una variedad de tejido conectivo, que se constituye directamente por la
matriz extracelular y células.
Ilustración 6 Composición del Hueso Alveolar
Fuente: (Bloomer, 2016)
2.7.2. MATRIZ EXTRACELULAR
La matriz orgánica es de aproximadamente el 95% y se constituye por fibras de
colágeno tipo 1, dentro de las que se depositarán hidroxiapatita de cristales; así
mismo, el colágeno categoría V, se estructura como una parte de la matriz
básica, forman la estructura básica de la matriz, cabe recalcar, que también
existen varios tipos de colágenos como son el III y el XII, siendo el colágeno II
y el I, los que se mezclan uniformemente en las fibras de Sharpey, las que se
insertarán desde los ligamentos periodontales directamente al hueso alveolar,
que se fijan a la pieza dental.
32
FASE INO RGÁNICA FASE O RGÁNICA
Hidroxiapatita Colágeno I, II, III, XII
Carbonato Agua
Citrato Sialoproteína, osteonectina, la
osteopontina, proteínas sanguíneas
(albumina
inmun
oglobulinas)
proteoglicanos (ácido hialurónico,
condritinsulfato, dermatansulfato)
Cloro, flúor, potasio,
plomo, cobre, hierro.
péptidos procolagenicos, fibronectina y
vironectina
Sodio Polisacáridos, lípidos, citoquinas
Magnesio Osteoblastos
Osteoclastos
Osteocitos
Tabla 2 Composición de matriz extracelular
Fuente: (Gonzales V, 2016)
2.7.3. FUNCIONES DEL HUESO ALVEOLAR
Las funciones del hueso alveolar, tiene como función principal la de proporcionar a las
distintas cavidades alveolares, que se encuentran alojadas en las piezas dentarias, y cuya
33
finalidad es la de fijar los dientes mediante los ligamentos periodontales, cuya formación es
la de articular los dientes, de esta manera, la fuerza que se generará durante la masticación,
la deglución y fonación.
El resto, de los sentidos óseos participan metabólicamente alrededor del hueso alveolar,
como una especie de reservorio de calcio, lo que también implicará un control progresivo
en la calcemia; por lo que, durante la infancia la medula ósea se forma de la capa esponjosa
alveolar participa en la actividad hematopoyética del organismo.
Cabe señalar, que la capacidad que tiene el hueso alveolar, para que este se remodele es
fundamental, al momento en el que se compensan los movimientos dentales, consecuencia
de las fuerzas oclusales y secundarios, estos movimientos se precisan en la ortodoncia. Por
lo que, las fuerzas, que tensionan la estimulación, formación y las distintas actividades
osteoblásticas, son las denominadas fuerzas compresivas.
El hueso alveolar, se una pieza dependiente del diente, ya que una vez que este se ha
perdido, la cresta alveolar, se va reduciendo de manera progresiva, sucediendo lo mismo
cuando existe una inflamación o un trauma ligado con una enfermedad periodontal.
Figura 7 Cresta Alveolar
Fuente: (Bloomer, 2016)
34
2.7.4. VARIACIONES FUNCIONALES Y FISIOLÓGICAS DE LOS
ALVEOLOS DESPUÉS DE LA EXTRACCIÓN
La mejoría de un alvéolo, después de un procedimiento de extracción dentaria o molar, se
caracterizará por los distintos cambios o variaciones internas, esto debido a la formación
del hueso interior del alvéolo, estas variaciones conducen a la perdida de anchura y altura
de la cresta alveolar. (Arenas C, 2016).
Figura 8 Post Extracción Dental
Fuente: (Bloomer, 2016)
La reabsorción, se considera el punto final, de un procedimiento que pasa por distintas
fases; siendo estas las características principales:
El alvéolo, durante las 24 primeras horas, deberá ser rellenado por un coágulo
sanguíneo, después de ello, se realizará una hemólisis, que es el inicio del proceso
inflamatorio.
Después de dos o tres días, se procederá a reemplazar el coágulo, por un tejido
granulado, rico en fibras de colágeno y vasos sanguíneos.
Cuatro días después deberán observarse, como han aumentado el número de
fibroblastos, proliferando el epitelio, desde la herida, apareciendo osteoclasto que
35
empezarán por la reabsorción del hueso.
Una semana después, el tejido se granulará con grandes redes vasculares, que es un
tejido joven, osteodico en porción apical del alvéolo y una cubierta epitelial sobre la
herida.
Después de tres semanas, se percibirá, un tejido denso y trabéculas de hueso
neoformadas. Esta formación, podrá ser observada después de 100, mediante una
radiografía.
Poco después de dos meses o más habrá un relleno completo en el hueso, pero se
deberá tener en cuenta la anchura del alvéolo original, por lo que la colocación de
implantes dentarios podría tardarse.
2.7.5. TÉCNICAS DE PRESERVACIÓN ALVEOLAR.
Debido a la situación problemática, que sin duda ocasiona la reabsorción de la cresta
alveolar, ha desarrollado una serie de técnicas que propongan la subsistencia alveolar, estas
incluirán cualquier tipo de proceso, mismo que se llevará a cabo durante el proceso de
extracción, posteriormente se diseñara una técnica de reabsorción externa de la cresta lo
que maximizara la formación ósea del alveolo. (Bloomer, 2016)
Habitualmente, las técnicas de aumento óseo, consistente en la realización de extracciones
seguidas de la implantación de un material ósea injertado, el que contendrá al alveolo vacío,
con la finalidad de prevenir la reabsorción alveolar, después de la extracción. (Gonzales V,
2016).
36
2.7.6. BIOMATERIALES EN PRESERVACIÓN ALVEOLAR.
Las técnicas de preservación alveolar, pretenderá disminuir la perdida excesiva de volumen
óseo, después de que se ha realizado una extracción dental, para lo que se buscará
conseguir un grosor óseo suficiente que admita una restauración protésica estética y
funcional. Por lo que, el uso de materiales de relleno, ayudará en la prevención de un
colapso de las capas alveolares, tras el proceso de extracción. En lo que se refiere a los
procesos que aumentan el grosor de hueso alveolar, esto a menudo implicará la utilización
de materiales que se injertaran a las barreras alveolares, de esta manera la actividad celular
aumentaría, poblando el tejido durante el procedimiento alveolar.
En lo que se refiere a los materiales de barrera como son las membranas, o demás
materiales de relleno, estos impedirán que las células de la membrana gingival y del tejido
conjuntivo irrumpan las zonas que consecutivamente se han ido regenerando. Estos
utensilios de injertos, consiguen conducirse mediante tres dispositivos que causan la
mejoría y regeneración del alveolo después de la extracción, siendo estos:
Osteogénesis
Osteoinducción
Osteoconducción.
Cabe señalar que estos materiales, no vitales, sirven de armazón para la inserción de
osteoblastos precursores en el defecto.
2.8. FASES DE REPARACIÓN ÓSEA
Los procesos de reparación ósea, podrán dividirse en cinco circuitos, mismos
que se describirán de la siguiente manera:
37
2.8.1. FORMACIÓN DEL HEMATOMA
Se produce al momento, en el que existe una lesión, durante este evento ocurrirá una gran e
intensa hemorragia, ya que, como resultado de la lesión, un sin número de vasos sanguíneos
se han roto.
2.8.2. FORMACIÓN DEL TEJIDO DE GRANULACIÓN
Este aparecerá, una vez disminuyan los síntomas de inflamación, ya que se
caracteriza principalmente por presenciar abundantes actividades fibroblásticas.
2.8.3. FORMACIÓN DEL CALLO
Se hará referencia, a dos de las vías mediante las cuales se podrá estudiar la formación
ósea, siendo estas:
a. El tejido fibroso conectivo es el que inicia la formación de tejidos ternillosos, que
aumentan vascularmente, mediante la acción de células osteoblásticas que serán
reemplazadas por el hueso.
b. El tejido fibroso conectivo, pasa directamente a la formación del hueso, sin que el
cartílago aparezca, debido a las sustancias osteoides que producen los osteoblastos.
38
CAPÍTULO III
MARCO METODOLÓGICO
3.1 DISEÑO Y TIPO DE INVESTIGACIÓN
El presente trabajo de titulación comprende un tipo de estudio descriptivo y cualitativo
porque se detallan cada una de las características de las variables estudiadas.
Descriptivo: Se realiza la descripción del procedimiento realizado al paciente, así como el
objetivo por el cual se realizó el tratamiento.
Cualitativo: Se hará el estudio mediante un paciente la cual se hizo el análisis del caso
postoperatorio y el tiempo de reparación tisular y alveolar mediante el uso de un coagulo de
fibrina
Transversal: Denominado de tal manera ya sé que ana
lizo datos recopilados en un periodo .
3.2 MÉTODOS, TÉCNICAS E INSTRUMENTOS
Deductivo – inductivo: Es considerado de tal manera para poder realizar estratégicamente
un razonamiento lógico y poder llegar a las conclusiones, así como también para llegar a
una conclusión especifica.
Analítico: Ayudará a distinguir el resultado de un procedimiento, en la cual se usará PRF
en una cavidad y en la otra será de manera fisiológica.
Documental: Se permitió recolectar información por medio de este método mediante
artículos, revistas y sitios web de mayor interés.
39
3.2.1 TÉCNICAS OBSERVACIÓN CLÍNICA
Se observará clínicamente, la reparación de los tejidos.
3.2.1 INTRUMENTALES Y MATERIALES DE CLINICA DE CIRUGIA
Centrifuga
Tubo de ensayo
Hojas de bisturí
Hilos de sutura
Fresas redondas
Micromotor
Separador minesota
Sindesmotomia
Anestésicos
Jeringa Carpule
Suero fisiológico
Elevadores rectos finos y anchos
3.3 PROCEDIMIENTO DE LA INVESTIGACIÓN
Se evaluará un paciente que tenga que realizarse la extracción de los terceros molares
impactados, que se lo atenderá en la clínica de cirugía de la facultad Piloto de odontología.
Sera necesario realizar un examen radiográfico y Hemograma completo de tal manera se
evaluar el estado de salud del paciente.
3.3.1 FASES DE LA INVESTIGACIÓN
Fase 1: Levantamiento de información acerca de la fibrina
Fase 2: Diagnóstico del paciente y evaluación radiografiada y hematológica.
Fase 3: Establecer el objetivo terapéutico.
40
Fase 4: Extracción de la sangre al paciente, para esto se lo sienta y se ubica la región
donde se realizará la extracción de la sangre, con una jeringa de 20cc y con una
mariposa.
Fase 5: Colocación de la sangre en un tubo de ensayo, introducirlo en la centrifuga
Fase 6: Realización de la cirugía: asepsia, anestesia, incisión triangular,
levantamiento de colgajo, osteotomía, odontosepción y la extracción previa.
Fase 7: Luego de haber realizado la extracción se aplicará la fibrina en el lado
derecho y en el lado izquierdo se procederá a suturar, posteriormente vamos a
realizar dichas radiografías para poder ver la regeneración ósea
3.4 DESCRIPCIÓN DEL CASO CLÍNICO (EJEMPLO)
Paciente de sexo femenino, de 21años de edad, llega a la consulta odontológica con dolor
en la zona retromolar y dolor de oído. Al examen intrabucal se observó inflamación en la
zona retromolar que correspondería a las piezas 38 y 48, también se pudo observar
inflación de las encías.
3.4.1 HISTORIA CLÍNICA
Datos personales
Nombre del paciente: Kerly María Matías Chele
Edad: 21 años Sexo: Femenino Procedencia: Mestizo Ocupación: Estudiante
Dirección: Salinas, barrio pueblo nuevo
Signos vitales
P/A: _125/80 Temperatura: 36 °C Pulso: 80”
Motivo de Consulta
“Tengo dolor en la parte de atrás, me molesta al masticar y también dolor de oído”
41
Anamnesis
Paciente no presenta antecedentes.
Enfermedad o Problema actual: Dolor en la zona retromolar
Antecedentes personales: No refiere
Antecedentes familiares: No refiere
3.4.2 EXAMEN EXTRAORAL
Figura 9 rostro de frente
Fuente propia del trabajo
Figura 10 Tipo de Sonrisa
Fuente propia del trabajo
Tipo de sonrisa: Baja
Ligera desviación de la
mandíbula hacia la derecha.
Ojos
Conjuntivas palpebrales
rosadas e hidratadas
Globos oculares simétricos
Nariz
punta de nariz Con pequeña
desviación
Labios
Labio superior e inferior
normoquélicos
Selle labial competente
en reposo
Constitución: Leptosomico
Biotipo facial: Dolicofacial
Biotipo craneal: Dolicocéfalo
Tipo de Rostro: Triangular
Simetría en sus tercios faciales
42
Figura 11 Foto lateral de rostro
Foto propia del trabajo
3.4.3 EXAMEN INTRAORAL
3.4.4 Fotos intraorales
Figura 12 Foto arcada superior
Fuente propia del trabajo
Tipo de perfil: cóncavo
Oídos
Pabellón auricular de
implantación normal
Sin lesiones.
Tipo de arco: Ovoide
Dentición permanente
Restauraciones de las piezas #16 y
# 26
Paladar
Blando: normocrómico sin
alteraciones aparentes, permite
movimientos normales.
43
Figura 13 Foto Arcada inferior
Foto propia del trabajo
Figura 14 Foto frontal en oclusión
Foto propia del trabajo
Figura 15 Foto lateral derecho
Fuente propia del trabajo
Tipo de arco: Ovoide
Dentición permanente
Macroglosia
Restauraciones de la pieza #36 y #46
Línea media: Si coincide
Encías: Enrojecidas
Mucosas: Hidratadas sin lesiones
evidentes
Maloclusión según angle : Clase I
Presencia de guía Canina: Clase I
44
Figura 16 Foto lateral izquierdo
Fuente propia del trabajo
3.4.5 ODONTOGRAMA
Figura 17 Odontograma
Fuente propia del trabajo
Oclusión de angle : Clase I
Presencia de guía Canina: Clase I
45
Imágenes radiográficas:
Figura 18 Radiografía panorámica
Fuente propia del trabajo
Radiográficamente se puede observar en las piezas # 16, #26, #36 y #46 restauraciones por
oclusal.
En caso de panorámica deberán ir en el desarrollo y anexos. (12 cm de ancho por 6 cm
de alto)
3.4.6 DIAGNOSTICO
a) Biotipo craneal: Dolicocéfalo
b) Biotipo facial: Leptoprosopo
c) Hábitos: onicofagia
d) Gingivitis.
e) Restauraciones de las piezas #16-#26-#36-#46
46
3.4.7 PLANES DE TRATAMIENTO
El plan de tratamiento fue el siguiente:
Alternativa 1:
Profilaxis
- Extracción quirúrgica de las piezas # 38 y #48
- Uso de fibrina rica en plaquetas leucocitarias en alveolo post-extracción
- Restauración de las piezas #36 y # 46
Alternativa 2:
Profilaxis
- Extracción quirúrgica de las piezas #38 y #48
- Obturación pieza # 36 y #46
3.4.8 PRONÓSTICO
El pronóstico es favorable para el paciente.
3.4.8.1 PROCESO CLÍNICO
3.4.8.1.1 TRATAMIENTO
Debido al diagnóstico radiográfico, el definitivo y plan de tratamiento se basa en los
siguientes puntos en el cual este procedimiento constara solo y únicamente cirugía bucal
con un control postoperatorio de cicatrización, así como el radiográfico en la cual se va a
poder observar la evolución del tratamiento.
Fase Preoperatoria:
Adquirir la muestra de sangre
47
Proceso de división celular /centrifugación
Adquisidor de la fibrina
Realización de asepsia
Fase intraoperatoria
Troncular, con refuerzo mentoniano
Sindesmotomia
entaria
derecho
en ambas cavidades
Fase postoperatoria:
10 días post-exodoncias
postratamiento radiografía a los 3 meses
48
3.4.8.1.1.1 ´FASE PREOPERATORIA
Figura 19 Proceso de obtención de la fibrina
Fuente propia del trabajo
A. Se toma la muestra de 10 ml de sangre en 2 tubos de ensayo que no contenga ningún
aditivo ni anticoagulantes. B.- Se coloca las muestras de sangre que las contienen los
tubos de ensayo y se las procede a colocar de inmediato en la centrifuga esta estará a
3000 rpm en aproximadamente 10minutos. C.-El resultado de la centrifugación dará en
la parte superior el plasma acelular, en la parte media el coagulo de fibrina y en la parte
inferior los eritrocitos. D.-Coagulo de fibrina (se recogerá solo el coagulo de fibrina y
se lo separará de los eritrocitos.
A B
C D
49
Figura 20 Asepsia
Fuente propia del trabajo
A.- Se procede a realizar la asepsia extraoral con yodopovidona de tal manera que los
labios, cuello triángulo nasal queden desinfectados y la intrabucal con enjuague bucal
Encident que este contiene clorhexidina para eliminar la carga bacteriana, así se podrá
evitar posibles contaminaciones, B.- Colocación del campo protector totalmente estéril
separando a zona en la cual se va a realizar la intervención.
3.4.8.1.1.2 FASE OPERATORIA -LADO DERECHO DEL PACIENTE
Figura 21 Anestesia e incisión
Fuente propia del trabajo
B A
A B C
50
A.-Se procede a realizar la anestesia troncular, la cual bloqueara el nervio dentario inferior
y ramos terminales del nervio lingual , la punción se la hará a nivel del espacio
pterigomandibular en el cuello de la mandíbula , se procede a realizar el bloqueo del nervio
mentoniano a nivel de los premolares inferiores, se utiliza anestesia con vasoconstrictor B.-
Se realiza las respectivas pruebas de sensibilidad de tal manera que nos aseguraremos que
la técnica de anestesia este correctamente . C.-Se realiza una incisión Triangular con hoja
de bisturí # 15 y mango # 3, indicada para la extracción de los terceros molares nos da
mayor visualización de la zona a tratar.
Figura 22 Protocolo quirúrgico
Fuente propia del trabajo
A.- Se realiza la sindesmotomia y periostotomia con el fin de desprender los tejidos y
dejando al descubierto el alveolo, usando un sindesmotomia y un periostotomo. B.- Alveolo
propiamente dicho. C.-Se realiza la osteotomía D.- Luxación de la pieza con elevador
recto, rompimiento de las fibras periodontales. E.- Extracción propiamente dicha con una
pinza hemostática.
A B C
D E
51
Figura 23 Limpieza y sutura de la cavidad
Fuente propia del trabajo
A.-Limpieza de Cavidad alveolar propiamente dicha con suero fisiológico.B.-
Posteriormente se procede a la sutura de la cavidad con hilo reabsorbible catgut 3-0.
3.4.8.1.1.3 FASE OPERATORIA -LADO DERECHO DEL PACIENTE
Figura 24 Anestesia e incisión
Fuente propia del trabajo
A.- Del mismo modo se va a realizar la anestesia troncular, la cual bloqueara el nervio
dentario inferior y ramos terminales del nervio lingual , la punción se la hará a nivel del
espacio pterigomandibular en el cuello de la mandíbula , se procede a realizar el bloqueo
del nervio mentoniano a nivel de los premolares inferiores, se utiliza anestesia con
A
52
vasoconstrictor B.- Se realiza una incisión Triangular , indicada para la extracción de los
terceros molares nos da mayor visualización de la zona a tratar. C.-Se realiza la
sindesmotomia y periostotomo con la finalidad de separar los tejidos y dejar expuesto el
alveolo
Figura 25 Protocolo Quirúrgico
Fuente propia del trabajo
A.- Alveolo expuesto B.- Se hace osteotomía con la finalidad de quitar fragmentos de hueso
que impide la extracción de la pieza dentaria C.- Luxación de la pieza con elevadores rectos
desprendiéndola de los tejidos de sostén seguido del lavado de la cavidad con solución
fisiológica.
Figura 26 Aplicación de Fibrina y sutura.
Fuente propia del trabajo
B C A
A B
53
A.- Se coloca el coagulo de fibrina en la cavidad alveolar recordando que la parte de los
eritrocitos debería estar en relación con la zona tratada que se quiere regenerar, en
donde hay mayor cantidad de factores de crecimiento. B.- Sutura o síntesis de los
tejidos para ello se usó un hilo reabsorbible catgut 3.0.
3.4.8.1.1.4 FASE POSTOPERATORIO CLÍNICAMENTE
Figura 27 Control postquirúrgico (10 dias )
Fuente propia del trabajo
A.-Foto extraoral del paciente con el lado derecho de su cara inflamado al 3er día
postoperatorio no se aplicó la fibrina y el lado izquierdo con una leve inflamación
donde si se aplicó la fibrina. B. -Lado derecho de la extracción de la pieza # 48 se puede
observar una leve cavidad, en este lado no se usó aplico la fibrina. - Lado izquierdo de
la extracción de a pieza # 38 se puede observar la regeneración tisular casi completa.
A
B C C
54
3.4.8.1.1.5 FOTO POSTOPERATORIA RADIOGRÁFICAMENTE (30 DÍAS)
Figura 28 Control Radiografió post quirúrgico (30 días)
Fuente propia del trabajo
A.- Se puede observar mediante la radiografía tomada los 30 días postoperatorios en
donde se evidencia la reparación ósea más lenta con cavidad alveolar no muy contenida
en hueso .B.- En el lado izquierdo inferior se puede observar un proceso de reparación
ósea mucho más acelerada en el cual este lado se aplicó la fibrina .
A B
55
3.4.8.1.1.6 FOTO POSTOPERATORIA RADIOGRÁFICAMENTE (3 MESES DE
EVOLUCIÓN).
Figura 29 Control Radiografió post quirúrgico 3 meses
Fuente propia del trabajo
A.- Se puede observar mediante la radiografía tomada los 3 meses de evolución se
evidencia la reparación ósea más lenta .B.- En el lado izquierdo inferior se puede
observar un proceso de reparación ósea mucho más acelerado con una cavidad alveolar
en reservación , aquí si se aplicó la fibrina .
3.5 ANÁLISIS DE RESULTADOS
Luego de hacer una sistematizada revisión bibliográfica, se realizó el análisis de los
resultados en la cual fue de la siguiente manera:
Por medio de revisión de artículos de los últimos 5 años se pudo observar que la aplicación
de fibrina tiene grandes resultados no solo a nivel odontológico sino también en la
medicina.
Se procedió al análisis del caso clínico de la aplicación de fibrina en cavidades
alveolares de terceros molares impactados y se determinó que es de gran impacto la
A
B
B
56
reparación que se produjo en el alveolo ya que radiográficamente se evidenció
mayor reparación de tejido óseo, clínicamente se pudo observar que existió una
mayor reparación de tejidos blandos, además de que se demostró que la
cicatrización fue en menor tiempo que en el del lado opuesto donde no se colocó
fibrina
El paciente indicó que no presentaba dolor, además que del lado que se aplicó la
fibrina el aumento de volumen fue totalmente insignificante en comparación al lado
opuesto. lo que demuestra que la fibrina también produce un efecto de conforten el
paciente sometido un procedimiento de exodoncias quirúrgicas.
Mediante el análisis clínico, en el que se utilizó fibrina rica en plaquetas, se logró
evidenciar, que la lesión médica en el séptimo día, ya se hallaba en fase
inflamatoria, empezando a tener un aspecto rojizo, granular. En el día décimo, la
incisión se encontraba ya en una etapa proliferativa, por lo que se encontraba sellada
y con reparación conjuntiva, a los 15 día ya estaba empezando la cicatrización y
remodelación, los fibroblastos fueron reemplazados por miofibroblastos, por lo que
la cicatriz, ya era de color rosado, es decir se había regenerado tisularmente después
de 6 a 7 semanas.
3.6 DISCUSIÓN
En un estudio realizado por Quispe (2018) a 32 alveolos de seis pacientes, en la
Universidad de San Marcos se demostró que el uso de la fibrina en el tratamiento post
exodoncia ayudó a preservar los rebordes alveolares de los pacientes que habían
empleado fibrina, ya que los resultados obtenidos manifestaron no mostrar ninguna
diferencia significativa de pérdida ósea durante los dos primeros meses. En
comparación con el caso clínico realizado a la paciente de nuestro estudio, se pudo
57
observar una semejanza en los resultados de manera general, puesto que indicaron que
con el uso de la fibrina pudo darse una regeneración tisular casi completa a los diez días
del post operatorio preservando también los alveolos del paciente donde se había
aplicado la fibrina tal y como ocurrió en el estudio mencionado.
(Guzmán, 2017) de la universal central del Ecuador, demostró, que la regeneración de
los tejidos blandos con la aplicación de un agregado de plaquetas, con grandes
cantidades de fibrina, comprobaron su efectividad de uso. En este estudio el sexo
masculino tuvo una mejor cicatrización en relación con el género femenino, ya que
tardó un poco más en cicatrizarse. En relación al caso clínico analizado con nuestro
paciente se pudo ver que existió una mayor semejanza en los resultados, ya que ambos
mostraron una regeneración de los tejidos casi completa luego de haberse aplicado la
fibrina, lo que sustenta los resultados obtenidos en nuestro caso clínico.
En relación a la investigación realizada por (Rincón, 2016) a diez pacientes acerca del
uso de la fibrina como un preservador alveolar en aquellos dientes que no se pudieron
hacer la rehabilitación, se indicó que los tejidos blandos no tuvieron alteraciones en la
línea mucogingival, sin embargo, a nivel horizontal si hubo un grado mayor de
alteración al igual que en el punto central. Comparando los resultados de este estudio
con nuestro caso clínico, se puede analizar que el resultado de la cicatrización y
regeneración de tejidos fue más visible en los molares donde la fibrina fue aplicada y en
un menor periodo, la Fibrina si se puede considerar como alternativa válida para
preservar el alveolo con fines de implantación temprana.
En otro de los estudios analizados se observa que se empleó la fibrina rica en plaquetas
para los procedimientos clásicos, lo que ocasionó que la paciente se muestre sin
58
síntomas y con la herida en su proceso de cicatrización luego del seguimiento de
control en un periodo de un mes y luego de seis meses, por lo que este estudio garantizó
el uso de la fibrina como agente de regeneración ósea en la necrosis mandibular por
bifosfonatos (León J, 2018). En relación al caso clínico de nuestra paciente, el resultado
fue muy similar en los procesos post operatorios, puesto que después de realizarse una
radiografía de control a los tres meses de la operación los resultados mostraron una
mejoría avanzada en la cavidad alveolar donde fue aplicada la fibrina a diferencia del
sector en el que solo se realizó un sistema de control.
Al comparar nuestro estudio con el caso clínico realizado por la Universidad Católica
de Santa María en Perú se pudo observar que en la evaluación clínica y radiográfica de
seguimiento en ambos casos evidenciaron una mejor regeneración de la zona
intervenida gracias al uso de la fibrina y además la favorable evolución clínica a los
diez días del post operatorio (Cámara C, 2016).
Al analizar los resultados de este estudio realizado a 18 pacientes de ambos sexos y
compararlo con nuestro caso clínico, se pudo demostrar que el uso de la fibrina si causó
una aceleración en el proceso de la cicatrización luego de los primeros 10 y 30 días de
control, sin embargo, el resultado más completo se lo pudo observar en la radiografía
realizada a los 3 meses. Por dicho estudio se considera la fibrina rica en plaquetas si
contribuye en el cierre de la mucosa alveolar y también disminuye los síntomas en los
pacientes.
Ahora al comparar dichos resultados con el estudio realizado por (Lobatón,
Mantilla, Felzani, Suarez, González, 2015), se puede observar que en esta investigación
la cicatrización del lado de donde la fibrina fue aplicada reduce el dolor y síntomas del
59
paciente demostrando una vez más que el uso de la fibrina en estos procesos clínicos si
genera el resultado esperado a diferencia de aquellos sectores donde no se aplica dicho
componente.
Luego de realizar la comparación entre los diversos estudios existentes, se pudo
evidenciar que clínicamente la cicatrización a través de la fibrina tuvo un menor tiempo
de recuperación de lo normal y a nivel radiográfico a los 30 días se observó una sombra
radiopaca, una evidente reparación ósea en el alveolo donde se aplicó la fibrina en
comparación con el que no se aplicó. Además de eso se observó una zona radiolúcida
debido a que el espacio no se había reparado en su totalidad. Sin embargo, después de
los 3 meses se pudo notar que casi había una similitud con respecto a la reparación
alveolar tal y como ocurrió en los estudios mencionados.
Cabe recalcar que no se encontraron estudios en los que se pueda observar que el uso de
la fibrina en los alveolos no haya generado una mejoría de sus tejidos en comparación a
los sectores en los que no se aplicó dicho componente, sin embargo, para estos casos es
importante tener en cuenta siempre los síntomas del paciente y ver cómo va
desenvolviéndose su salud en los controles post operatorios a los cuales se los ha citado,
para que de esa manera se pueda tener un mejor panorama de estudio y se puedan tomar
las acciones pertinentes.
60
3.7 CONCLUSIONES
Luego de resolver los objetivos específicos, realizar el análisis de resultados y las pruebas
clínicas del caso, se llegaron a las siguientes conclusiones:
Los concentrados plaquetarios sirven para la reparación de los tejidos, debido a que
la acumulación de factores de crecimiento que intervienen en la migración,
proliferación y reparación aceleran la cicatrización.
El uso de la fibrina en estos procesos clínicos es de gran importancia, ya que actúa
como un agente de protección en la herida mejorando el proceso de cicatrización en
un menor tiempo posible y también porque disminuye el proceso inflamatorio.
Dentro de sus ventajas es muy fácil de adquirirla y que su costo es económico, no
necesita anticoagulantes y no existen desventajas específicas.
Luego de una extracción de tercer molar impactado, los tejidos quedan lesionados
por lo que es necesario que el profesional conozca la biología de la reparación
tisular y se procese a la síntesis de los tejidos para su posterior cicatrización.
Dentro de los signos clínicos más importantes de la inflamación, se puede observar
que cuando hay el contacto de la fibrina con la cavidad alveolar en donde se extrajo
el tercer molar no se produce una inflamación notoria, pero en el lado que no se
aplica si hay un edema muy evidente debido a los cambios vasculares. Es
importante tener en cuenta estos síntomas para que de esa manera el doctor a cargo
del proceso clínico sepa cómo actuar de manera segura y rápida.
Se pudo evidenciar que clínicamente la cicatrización a través de la fibrina tuvo un
menor tiempo de recuperación de lo normal y a nivel radiográfico en 30 días se
observó una sombra radiopaca, una evidente reparación ósea en el alveolo donde se
aplicó la fibrina en comparación con el que no se aplicó, además de eso se observó
una zona radiolucida debido a que el espacio no se ha reparado en su totalidad.
Luego en los 3 meses se pudo notar que casi había una similitud con respecto a la
reparación alveolar, sin embargo hubo una pequeña diferencia en el alveolo en el
cual se aplicó la fibrina.
61
3.8 Recomendaciones
Aumentar el número de pacientes en futuras investigaciones para comprobar y
corroborar el nivel de eficacia del uso de la fibrina en distintas situaciones
odontológicas, tal y como ocurrió en el presente caso clínico.
Se recomienda utilizar la fibrina para aquellos procedimientos odontológicos que
presenten a pacientes con dificultad de cicatrización, sin embargo, no es posible
usarlas en pacientes con trastornos de coagulación y pacientes con obesidad, ya que
en su sangre tienen mayor cantidad de grasa y por ende no sería posible una
correcta cicatrización.
Evaluar y proponer el uso de la fibrina en los procedimientos de extracción
quirúrgica, de tal manera que se use como una alternativa de confort postquirúrgico
para el paciente, ya que simplifica la cicatrización y disminuye los diversos signos
y síntomas postoperatorios.
Considerar si existen limitaciones al momento de su eficacia en su aplicación en
pacientes con problemas sistémicos.
Extender el estudio de la fibrina en cuanto a la preservación alveolar.
62
Bibliografía
Caunedo A. (2015). La hemofilia complicaciones sanguineas. Murcia: Instituto de
Hematología e Inmunología.
Acosta E. (2017). Evaluación del efecto del plasma rico en plaquetas en concentración de
plaquetas de diferentes tiempos y concentraciones. Colombia : Universidad
Pontifiicia Javeriana.
Anitua E. (2017). Un nuevo enfoque en la regeneración ósea: plasma rico en factores de
crecimiento. Edición VII. España: Puesta al Día editorial.
Arenas C. (2016). Comparación histológica de la reparación ósea alveolar post exodoncia.
Barcelona.
Ashman A. (2016). Ridge preservation: important buzzwords in dentistry. . Gen Dent .
Bloomer. (2016). Alveolar Osteitis Prevention by Immediate Placement of Medicated
Packing. Minesota.
Bolukbasi N; Yeniyol S; Tekkesin M; & Altunatmaz K. (2016). The use of platelet-rich
fibrin in combination with biphasic calcium phosphate in the treatment of bone
defects: a histologic and histomorphometric study. . Minessota: Curr Ther Res Clin
Exp. .
Bonilla S., Valarezo T., Macio P., & Medrano N,. (2017). Procedimiento de colocación de
plasma rico en plaquetas PRP en la cicatrización del tejido mucoso. Chile: Dialnet.
Bui. (2016). Types, Frequencies, and Risk Factors for Complications After Third Molar
Extraction. Washington: Journal of Oral Maxillofacial Surgery.
63
Camara C. (2016). FIBRINA RICA EN PLAQUETAS UTILIZADA PARA PRESERVACIÓN
DE REBORDE POST EXODONCIA: REPORTE DE CASO . Arequipa. :
Universidad Católica de Santa María. .
Castellanos J & Gay O. (2016). Medicina en Odontología. México: El Manual Moderno.
Castellanos S. (2016). Unidad de endocrinologia y diabetes. Murcia: Revista Española.
Castellanos, J., Días, L., & Lee, E. . (2015). Medicina en Odontología: Manejo dental de
pacientes con enfermedades sistémicas. León México: El Manual Moderno.
Corso M & Mazor Z. . (2016). The Use of Leukocyte- and Platelet-Rich Fibrin During
Immediate Postextractive Implantation and Loading for the Esthetic Replacement of
a Fractured Maxillary Central Incisor. . Los Angeles: Journal of Oral
Implantology. .
Diabetes Education Online. (17 de 02 de 2020). Diabetes Education Online. (2007 -
2018).Diabetes Education Online. (2007 - 2018). Diabetes Teaching Center at the
University of California. Obtenido de https://dtc.ucsf.edu/es/tipos-
dediabetes/diabetes-tipo-2/comprension-de-la-diabetes-tipo-
2/datosbasicos/diagnostico-de-la-diabetes/
Dohan D, Choukroun J, Diss A, Dohan S, Dohan A, Mouhyi J, Gogly B. (2016). Platelet-
Rich fibrin PRF a second-generation platelet concentrate . March.
Dohan D; Bielecki T & Jimbo R. (2017). Do the fibrin architecture and leukocyte content
influence the growth factor release of platelet concentrates? An evidence-based
answer comparing a pure platelet-rich plasma (P-PRP) gel and a leukocyte and
platelet-rich . Curr Pharm Biotechnol.
Donado M. (2015). Cirugìa bucal; Patologìa y Tècnica. Barcelona: Masson.
Escalante , Catro ,y Geraldo. (2016). Fibrina rica en plaquetas (FRP) :ALternativa
terapeutica en odontologia. Revista estomatologica Herediana.
64
Espinoza B; Campal F; Gonzalez M. (2017). Técnicas de análisis hematológicos. Ediciones
Paraninfo, S.A.
Felzani. (2015). Cicatrización de los tejidos con interés en cirugía bucal: revisión de la
literatura. Caracas: Scielo.org.
Fowler E; Breault L, & Rebitski G; . (2016). Ridge preservation utilizing an acellular
dermal allograft and demineralized freeze-dried bone allograft: Part I. . J
Periodontology.
Ganong W. (2015). Fisiologìa Mèdica. Mèxico: El manual moderno.
Giner D; González C; Orodñez S;, Martín-Granizo, R., & Berguer, A. (2016). Cascagada
de Coagulación. Murcia: Revista Española de la Cirugia Oral y Maxilofacial.
Gonzales V. (11 de enero de 2016). Fisiologia de cicatrizacion del alveolo. Obtenido de
Academia:
https://www.academia.edu/31670779/Fisiolog%C3%ADa_de_la_cicatrizaci%C3%
B3n_del_alveolo
Grossman S &Mattson C;. (2017). Fisiología Porth. Alteraciones de la salud, conceptos
básicos 11o. Edición. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins.
Gúzman . (2017). Cicatrización de tejido óseo y gingival en cirugías de terceros molares
inferiores. Estudio comparativo entre el uso de fibrina rica en plaquetas versus
cicatrización fisiológica . México: Revista Odontologica Méxicana .
Guzman G, Paltas M, Benenaula J, Nuñez K, Simbaña D . (2017). Cicatrizacion de tejidos
oseos y gingivales en cirugias de terceros molares inferiores,Estudio comparativo
entre el uso de fibrina rica en plaquetas versus cicatrización fisiológica. Revista
odóntologica Mexicana, 21(2), 114-120.
65
Hiremath H; Kulkami S & Hiremath V. (2016). Second-generation platelet concentrate
(PRF) as a pulpotomy medicament in a permanent molar with pulpitis: a case
report. . Washington: Int Endod J. .
Howe G. (2015). Cirugìa bucal menor. Mèxico: El manual moderno.
Jimenez. (2017). Validar el uso de a Fibrina rica en plaquetas y leucocitos (L-PRF).
Bellaterra: Departamento de medicina y cirugia veterinaria .
Leighha R. (2013). Potential of platelet rich fibrin in regenerative periodontal therapy:
literature review. . Washington : Can J Dent Hyg.
Lekovic V, Kenney EB, Weinlaender M, & Han T,. (2017). A Bone regenerative approach
to alveolar ridge maintenance following tooth extraction. Cases. J Periodontology.
León J. (2018). CASO CLINICO: Aplicacion de fibrina en factores de crecimiento en el
tratamiento de osteonecrosis de los maxilares por bisfosfonatos.
Odontoinvestigacion.
Lichtman M. (2016). Platelet morphology biochemistry and function Williams Hematology.
New Yord: McGraw Hill Medical Co, 12ma Ed.
Lobado & Criado. (2016). Plasma rico en plaquetas en la Lobato y Criado. Gaceta Dental,
25-86.
Lopes., Rodrigues., Ferreira, Pompermaier, & Perri de Carvalho, . (2017). Clinical
Concepts of dry socket . Minesota: Journal of oral maxillofacial surgery.
Martinuzzo, M. (2017). Sistema de coagulación. Buenos Aires: Blood Coagulation System
Physiology.
Meza J; Lecca M; Correa E & Rios K. (2016). Fibrina rica en plaquetas y su aplicación en
periodoncia; revisión de literatura. Rev Estamol Herediana.
66
Ministerio de Salud Pública. (17 de febrero de 2019). Dirección Nacional de Vigilancia
Epidemiológica. Obtenido de Obtenido de http://www.salud.gob.ec/direccion-
nacional-de-vigilanciaepidemiologica/epidemiologica; 2017
Oginni . (2015). Dry Socket: A Prospective Study of Prevalent Risk Factors in a Nigerian
Population. Washington: Journal of oral maxillofacial surgeon.
Organización Mundial de la Salud. (17 de 02 de 2020). Organización Mundial de la Salud.
(2018). OMS. Obtenido de Obtenido de
http://www.who.int/topics/diabetes_mellitus/es/
Quispe, M. (2018). Efecto del uso de la fibrina rica en plaquetas, según el protocolo de
Choukroun, como unico material en la preservacion de reborde alveolar
postexodoncia. LIma -Peru.
Rincon L. (2016). USO DE PRF (Fibrina Rica en Plaquetas) EN PRESERVACION DE
REBORDE ALVEOLAR . Bogota-Colombia.
Rubio G. (2016). Rendimiento Plaquetario en paciente crítico. . Oviedo: Universidad de
Oviedo Centro Internacional de Posgrado.
Salgado P; Salgado G; & Arriba F. (2017). Nuevas tendencias en regeneración tisular:
fibrina rica en plaquetas y leucocitos. Francia: Revista Española de Cirugía Oral y
Maxilofacial.
Salgado, A. (2017). Nuevas tendencias en regeneración tisular: fibrina rica en plaquetas y
leucocitos. Rev Esp Cirug Oral y Maxilofac [Internet]., 39( 2 ): 91-98.
Sandner O. (2017). Tratado de Cirugía Oral y Maxilofacial. Instroducción Básica a la
Enseñanza. Bogota: Amolca.
Shobha P & Aditi T. . (2016). Platelet Concentrate: Past, Present and Future. Minessota:
.J Maxillofac Oral Surg. .
67
Srinivas, Susarla, Blaeser & Magalnick. (2015). Third molar surgery and associated
complication. Washington: Oral and Maxillofacial Surgery Clinics.
Toffle M; Toscano N; Holtzclaw D & Corso M. (2018). Introducing Choukroun’s platelet
rich fibrin (PRF) to the reconstructive surgery milieu. . Implant Adv Clin Dent.
Villalva, E. (2018). Inflamación. Rev. Act. Clin. Med.
Wang K. (2015). Socket augmentation: rationale and technique. Implant Dent .
Wroblewski A, Melia H & Wright V. . (2016). Application of platelet-rich plasma to
enhance tissue repair. Washington : Oper Tech Orthop.
Zumstein A; Berger S & Schober M ;. (2017). Leukocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF)
for long-term delivery of growth factor in rotator cuff repair: review, preliminary
results and future directions. Curr Pharm Biotechnol.
68
ANEXO 1: CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES
ACTIVIDADES NOVIEMBR
E
DICIEMBRE ENERO FEBRE
RO
MARZO ABRIL
Aprobación del tema 11/12/19
2/12/2019
Toma de radiografía
Panorámica
11/12/2019
Realización de
exámenes de
laboratorio
11/12/19
Realización de caso
clínico
16/12/19
1 Control
Postoperatorio
16/01/20 2/03/20
2 Control
postopertaorio
2/03/2020
Sustentación 10/6/20
69
ANEXO 2: PRESUPUESTO
INSUMOS COSTO
Gasas $1,60
Bisturí $0,10
Hilo de sutura 3.0 $1,00
Tubos de ensayo $1,25
Alquiler de centrifuga $15.00
Anestésicos 3m $ 0.60
Suero fisiológico $ 2.00
3 Radiografías Panorámicas $15.00
1 Jeringa 20cc $0.25
Total $36.80
70
ANEXO 3: CONSENTIMIENTO INFORMADO
Fuente: Propia del trabajo
71
ANEXO 4: FOTOGRAFÍAS
Fuente: Propia del trabajo
72
ANEXO 5: HISTORIA CLÍNICA DE CIRUGIA
Fuente: Propia del trabajo
73
ANEXO 6 EXAMEN DE LABORATORIO
Fuente: Propia del trabajo
74
ANEXO 7 INSTRUMENTAL QUIRÚRGICO
Fuente: Propia del trabajo
75
76
77
78
79
80