UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO FACULTAD DE MEDICINA HUMANA

ESCUELA PROFESIONAL DE MEDICINA HUMANA MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA MEDICAS

SEMESTRE ACADEMICO 2011-II

SILABO I. DATOS GENERALES 1.1. NOMBRE DE ASIGNATURA : MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGIA MEDICAS 1.2. CÓDIGO : MEHU-196 1.3. CICLO DE ESTUDIOS : V 1.4. CRÉDITOS : 6 1.5. TOTAL DE HORAS AL SEMESTRE : 70 1.6 Nº DE HORAS POR SEMANA : TEORÍA : 4h PRÁCTICA : 4h. TOTAL : 8 horas. 1.7 FECHA DE INICIO : 15 de Agosto 2011 1.8 FECHA DE TERMINO : 14 de Diciembre 2011 1.9 DURACIÓN : 17 SEMANAS 1.10 PRE REQUISITOS : 10BIOQUIO (9) y 10 INMGENO (14) . 1.11. PROFESORES : NICANOR IBÁÑEZ HERRERA (NIH).

Prof. Principal T.C. (Coordinador) Doctor en Ciencias Profesor Fundador y Emérito de la Facultad de Medicina de la Universidad Nacional de Trujillo. nih@hotmail.com MARCO ANTONIO ZÁRATE ARCE (MZA) Asociado. Tiempo Parcial Médico Cirujano Maestro en Ciencias: Microbiología Clínica. Doctorando en Microbiología mzaratea@upao.edu.pe

Dr. EDUARDO FERNÁNDEZ VÁSQUEZ Ex Docente de la Facultad de Ciencias Médicas de la Universidad Nacional de Trujillo. Ex jefe del Laboratorio Regional de la Libertad.

MARTHA ARQUIÑO HUERTA. (MAH) Auxiliar. Tiempo Parcial. Microbióloga Maestra en Ciencias de Educación con mención en Docencia e Investigación. marquinoh@upao.edu.pe JOSÉ GONZALEZ CABEZA (JGC) Auxiliar. Tiempo Parcial. Maestro en Ciencias. Mención en Microbiología Industrial. Doctor en Ciencias Biológicas. Biotecnología. jgonzalezc1@upao.edu.pe

II. FUNDAMENTACION: APORTE AL PERFIL PROFESIONAL Microbiología y Parasitología Médica es asignatura de naturaleza teórica práctica, con clases magistrales y dinámica grupal de trabajo por competencias, que estudia los microorganismos y que contribuye al conocimiento para que el estudiante se inicie en la investigación microbiológica y parasitológica y la pueda aplicar en el campo profesional, para el diagnóstico de las diferentes enfermedades infecciosas prevalentes en nuestra región y país. III SUMILLA Como la ciencia y la tecnología modernas se apoyan en la Microbiología y Parasitología que estudian los microorganismos en la interrelación huésped Parásito, es necesario el aprendizaje de los microorganismos desde una base teórica así como el diagnóstico microbiológico y parasitológico. Proporcionando al educando competencias sobre los microorganismos patógenos para el hombre, en los órdenes genético, morfológico, fisiológico y fisiopatológico. Aborda la teoría microbiana de la enfermedad, la relación huésped-parásito y mecanismos generales de patogenicidad. Estudia bacterias, virus, hongos y parásitos de importancia en las enfermedades humanas prevalentes en nuestro país. En el aspecto entomológico, aborda el estudio de los insectos y artrópodos nocivos para la salud humana sea por acción directa o como agentes transmisores de enfermedades. El educando debe poner en práctica habilidades para realizar e interpretar las pruebas diagnósticas de uso frecuente en nuestro país. COMPETENCIAS DE MICROBIOLOGIA IV COMPETENCIAS DE ASIGNATURA COMPETENCIAS GENERICAS: 1. CAPACIDAD DE APRENDER: Capacidad de actualizarse permanentemente con la Información recibida, con responsabilidad social y compromiso ciudadano, respetando la diversidad y multiculturalidad. 2. CAPACIDAD DE ANALISIS Y SINTESIS: Capacidad de análisis, síntesis y de aplicación de los conocimientos en la práctica.

3. CAPACIDAD DE RESOLUCION DE PROBLEMAS: Capacidad para identificar, plantear, resolver problemas, plantear nuevos problemas y tomar decisiones. 4. CAPACIDAD DE REALIZAR INVESTIGACION: Capacidad de realizar investigación científica pertinente, demostrando habilidades para buscar, procesar y analizar información procedente de diversas fuentes. Al finalizar el proceso de enseñanza aprendizaje el alumno estará en la capacidad de: 1. Reconocer las características generales de los microorganismos que conforman la flora normal y los que causan enfermedades infecciosas en el ser humano y aplicar los procedimientos básicos de laboratorio para el diagnóstico básico y el control de los microorganismos patógenos frecuentes en la región y país mostrando interés en el trabajo grupal, respetando las ideas de sus compañeros y teniendo en cuenta los principios de ética. 2. Reconocer la estructura y función de las bacterias que causan enfermedades infecciosas en el ser humano y aplicar procedimientos básicos de laboratorio para el diagnóstico básico y control de las bacterias patógenas más frecuentes en la región y país, mostrando dinamismo e interés en el trabajo grupal, respetando las ideas de sus compañeros de clase y los principios de ética. 3. Reconocer y analizar la morfo fisiología de los hongos y virus que afectan piel, anexos y mucosas, sangre y tejidos, aparato respiratorio, sistema genitourinario, nervioso y digestivo utilizando el diagnóstico microbiológico y principios epidemiológicos para la prevención de estas enfermedades, mostrando solidaridad, responsabilidad y tolerancia en el trabajo grupal. V PROGRAMACION DE LAS UNIDADES DE APRENDIZAJE SUB-UNIDAD 01 : MICROBIOLOGÍA MÉDICA GENERAL CAPACIDAD 1 Identificar las características morfológicas, culturales, tintoriales de los microorganismos y explicar su fundamento. CAPACIDAD 2 Realizar la toma de muestras patológicas de pacientes, preservarlas y transportarlas adecuadamente para su procesamiento en el laboratorio. CAPACIDAD 3 Reconocer los microorganismos que conforman la flora normal del cuerpo humano, de acuerdo al área anatómica que colonizan y su papel que desempeñan en la patogenicidad y virulencia. CAPACIDAD 4 Aplicar los agentes físicos, químicos y mecánicos para el control de los microorganismos en base a sus mecanismos de acción y seleccionar los que se usan en la asepsia médica quirúrgica, en la desinfección y esterilización de material limpio y contaminado y en ambientes, que se usan en los diferentes establecimientos de salud. CAPACIDAD 5 Reconocer los mecanismos de acción de los antibióticos y quimioterápicos, su uso racional y los mecanismos de resistencia microbiana.

PROGRAMACIÓN SEMANAL DE CONTENIDOS POR SUB-UNIDADES:

Nº de la semana

Contenidos Conceptuales Contenidos Procedimentales

Contenidos actitudinales

Primera Semana Segunda Semana Tercera semana

Clase inaugural. Explicación de syllabus por competencias. Clase Magistral 1 Panorama histórico de la Microbiología Médica. Papel de Louis Pasteur y Robert Koch. Estructura de la célula Procariótica y Eucariótica. Características generales de una bacteria. Reproducción, fisión binaria. Componentes celulares de la bacteria. Práctica 1 1. Bioseguridad de un laboratorio microbiológico- Microscopía óptica. Enfoque correcto. Clase Magistral 2 Nutrición bacteriana. Necesidades de crecimiento. Crecimiento bacteriano. Factores que influyen sobre el crecimiento. Metabolismo microbiano. Práctica 2 2. Técnica de coloración de Gram. Azul de metileno. 3. Observación de estructuras bacterianas: capsula, esporas, pared celular. Formas bacterianas. Clase Magistral 3 Postulados de Koch y la identificación de agentes patógenos. Virulencia bacteriana. Toxinas, enzimas. Flora normal del cuerpo humano. Patogénesis y defensa. Práctica 3

Clase Magistral. Desarrollo de las capacidades 1 y 2. Participación activa del estudiante. Reconocimiento de formas, agrupaciones bacterianas en láminas coloreadas y diferenciación de bacterias gram (+) y gram (-) Práctica 1. Clase Magistral. Participación activa del estudiante. Entrenamiento en el procesamiento de muestras de laboratorio y de técnica de coloración de estructuras y formas. Desarrollo de capacidad 3.

Valora la importancia del contenido de la asignatura. Establece la diferencia de la terminología que se utilizará durante el desarrollo de la asignatura. Demuestra correctamente la forma de aplicación de las normas de bioseguridad. Demuestra el manejo adecuado del microscopio Demuestra la técnica de coloración Gram correctamente y diferencia las bacterias Gram + y Gram- . Establece la diferencia entre formas y agrupaciones bacterianas. Valora importancia del estudio de microorganismos en base a sus necesidades de crecimiento. Valora la importancia de la identificación de los microorganismos utilizando los medios de cultivo. .

Nº de la semana

Contenidos Conceptuales Contenidos Procedimentales

Contenidos actitudinales

Cuarta Semana

5. Procedimiento para el aislamiento de los microorganismos. Técnica de siembra y coloración 6. Medios de cultivo selectivos y no selectivos. Acción de Agentes Físicos Clase Magistral 4 Quimioterapia antimicrobiana. Antibióticos y sus mecanismos de acción. Quimioterápicos. Resistencia microbiana. Objetivo 5 Los Antibióticos y su Uso Clínico.- Selección, uso indiscriminado, combinación. Desventajas. Sinergismos. Quimioprofilaxis en pacientes normales y sensibles y cirugía. Resistencia, usos clínicos, efectos colaterales Práctica 4 7. Acción de los agentes químicos sobre las bacterias. 8. Actividad antimicrobiana in vitro: Espectro antibiótico y antibiograma.

Clase Magistral Adiestramiento en la toma de muestra en el laboratorio haciendo uso de los medios de cultivo. Reconocimiento de las características de los medios de cultivo más utilizados. Clase Magistral 4 Práctica 4. Desarrollo de capacidades 4 y 5. Participación activa del estudiante. Establece la importancia del uso adecuado del antibiograma. Reconoce la importancia del uso in vitro de los agentes químicos y antimicrobianos.

Demuestra el uso correcto del material utilizado para la siembra y aislamiento de microorganismos. Valora la importancia de los agentes físicos utilizados para el control de los microorganismos patógenos Valora la importancia de los métodos químicos para el control de microorganismos. Establece la diferencia entre antibiograma y espectro antibiótico. Establece la importancia del uso adecuado de antibióticos y quimioterápicos. Valora la importancia de la resistencia antibiótica a los microorganismos. Demuestra el uso correcto y la técnica adecuada para la realización de los antibiogramas.

SUB-UNIDAD 02 : BACTERIOLOGÍA MÉDICA CAPACIDAD 1 Reconocer la fisiología y estructura de bacilos gram positivos formadores de esporas (Bacillus anthracis; Clostridium botulinum, C. tetani y C. perfingrens, C. difficile.), así como no formadores de esporas (Corynebacterium diptheriae, Listeria monocytogenes.); toxinas y sus principales mecanismos de acción, principales métodos de laboratorio para diagnóstico microbiológico, factores epidemiológicos y medidas de prevención que se deben adoptar. CAPACIDAD 2 Reconocer la fisiología y estructura de los estafilococos y estreptococos, sus factores de virulencia, mecanismos fisiopatológicos que generan los síntomas y síndromes clínicos,

aplica técnicas y procedimientos de diagnóstico para identificar especies, establece medidas de prevención para evitar la diseminación de las enfermedades. CLASE MAGISTRAL Reconocer características estructurales y culturales de enterobacterias (Escherichia coli, Salmonella, Shigella, Vibrio cholerae, Proteus, Helicobacter Pylori, Pseudomonas aeruginosa, Yersinia enterocolítica y Campylobacter jejuni), correlacionar a sus factores de patogenicidad, mecanismos fisiopatológicos que generan síndromes clínicos, así como solicitar, interpretar y procesar muestras de laboratorio, como aplicar medidas preventivas específicas. CAPACIDAD 3 Analizar características estructurales y fisiológicas de microorganismos (Haemophilus Influenzae, H. ducreyi., Bordetella pertussis., Brucella melitensis. Yersinia pestis y Neisseria meningitidis.). determinando factores de virulencia para la fisiopatología, reconociendo cuadros clínicos, procedimientos de laboratorio así como medidas preventivas para las infecciones que causan. CAPACIDAD 4 Reconocer la morfología y fisiología de los microorganismos que causan enfermedades de transmisión sexual: bacterianas (Neisseria gonorrhoeae, Treponema pallidum, Haemophylus ducrey, Donovania granulomatis., Gardnerella vaginalis, Chlamydia trachomatis, Mobiluncus sp.), virales (Virus Herpes II, Virus de papiloma humano), interpretar la fisiopatología y el diagnóstico y utilizar los principios de la epidemiología en la prevención de estas enfermedades. CAPACIDAD 5 Reconocer características morfológicas y fisiológicas de los microorganismos causantes de infección de vías urinarias (IVU) (E.coli, Klebsiella sp, Proteus) mediante el método microbiológico y su interrelación con el huésped, aplicando las medidas preventivas. CAPACIDAD 6 Identificar estructura y función de los microorganismos (Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium leprae, Bartonella bacilliformis)., así como aspectos epidemiológicos, fisiopatológicos, de diagnóstico y preventivos. CAPACIDAD 7 Reconocer los microorganismos causantes de infección intrahospitalaria, clasificación de acuerdo al IPI, elaborar juicios clínicos para el diagnóstico clínico - microbiológico, papel de las estrategias para el control de las infecciones intrahospitalarias.

Nº de la semana

Contenidos Conceptuales

Contenidos Procedimentales

Contenidos actitudinales

Quinta Semana Sexta Semana

Bacilos Gram Positivos formadores de Esporas: a) Aerobios: Bacillus anthracis. b) Anaerobios: Clostridium botulinum, C. tetani y C. perfringens, C. difficile. Bacilos Gram Positivos no formadores de Esporas: Corynebacterium diptheriae, Listeria monocytogenes. Práctica 5 9. Observación de cultivo de B. Anthracis. Observación de láminas de B. Anthracis, difteroides y bacilos gram positivos C. tetani. 10. Discusión de los medios para aislamiento de anaerobios, forma y procedimiento de aislamiento. Cocos: a) Estafilococos. Staphylococcus aureus, S. Epidermidis,Saprophyticus. Estreptococos.- Streptococcuspyogenes, St. pneumoniae, y otros de importancia médica. Streptococcus Anaerobios. Práctica 6 11. Cultivos de secreción faríngea en Agar Sangre y Tioglicolato, secreción nasal en Agar Salado o Manitol. Prueba de la catalasa y coagulasa. 12. Coloración gram y observación microscópica de estreptococos, estafilococos.

Desarrollo de capacidad 1. Práctica 5 Clases magistrales Participación activa del estudiante. Reconocimiento microscópico de los microorganismos estudiados en láminas coloreadas. Reconocimiento de los cultivos de los microorganismos estudiados y su identificación mediante pruebas de laboratorio. Reconocimiento de los medios de cultivo selectivos para aislamiento de anaerobios. Desarrollo de la capacidad 2. Práctica 6 Clases magistrales: Participación activa del estudiante. Reconocimiento microscópico de los microorganismos estudiados. Reconocimiento macroscópico en medio de cultivo y mediante pruebas bioquímicas de identificación de los microorganismos estudiados.

Diferencia las Características morfológicas de los microorganismos estudiados. Identifica microscópicamente los agentes causantes de enfermedades. Demuestra correctamente la manera de realizar las coloraciones y cultivos para aislar los microorganismos estudiados. Valora la manera correcta de realizar las coloraciones de microorganismos. Valora la manera correcta de identificación microscópica. Diferencia las características morfológicas y bioquímicas de cada microorganismo.

Nº de la semana

Contenidos Conceptuales

Contenidos Procedimentales

Contenidos actitudinales

Séptima semana Octava Semana Novena semana

Clase Magistral 5 Bacilos Gram Negativos: Enterobacterias.- Escherichia coli, Salmonella, Shigella, Vibrio cholerae, Proteus. Helicobacter pylori, Pseudomona aeruginosa, Yersinia enterocolítica, Campylobacter jejuni. Práctica 7 13. Aislamiento de Enterobacterias de muestras clínicas y alimentarias. 14. Determinación de anticuerpos específicos contra salmonella (Reacción de Widal). Determinación de anticuerpos específicos contra Brucella (Reacción de Huddleson). Aislamiento de Vibrio de preparados crudos de mariscos. Lectura set completo enterobacterias. Haemophilus: H. influenzae, H. ducreyi.; Bordetelas: Bordetella pertussis. Zoonosis:Brucella melitensis,Yersinia pestis y Peste.; Neisseria meningitidis. Práctica 8 15. Observación de algunos de los microorganismos estudiados. Clase Magistral 6 Infección de vías urinarias: E. Coli, Proteus, Streptococcus faecalis, Proteus mirabilis.

Clase Magistral 5 Clases magistrales: Participación activa del estudiante. Reconocimiento macroscópico y microscópico de las enterobacterias causantes de enfermedades. Práctica 7 Aplica las pruebas inmunológicas para Diagnostico de fiebre tifoidea y Brucelosis. Reconoce el set completo de identificación de Enterobacterias. Desarrollo de capacidad 3. Clases magistrales: Participación activa del estudiante. Reconocimiento microscópico de los microorganismos estudiados. Reconocimiento macroscópico de los microorganismos estudiados. Práctica 8. Desarrollo de capacidades 4 y 5. Participación activa del estudiante. Clases magistrales

Valora la importancia de la toma de muestra adecuadas para aislar enterobacterias. Establece la diferencia microscópica y macroscópica de las diferentes bacterias estudiadas. Diferencia los medios de cultivo correctamente para Identificación de Enterobacterias. Diferencia las características bioquímicas en los medios de cultivo de los microorganismos estudiados. . Establece la diferencia entre los diferentes agentes estudiados. Diferencia las características particulares de cada microorganismo. Demuestra correctamente los medios de cultivo utilizados para aislamiento. Establece la diferencia entre los principales agentes causantes de ETS. Diferencia las características particulares de cada microorganismo. Demuestra correctamente los medios de cultivo utilizados para aislamiento.

Décima semana Décima primera Semana

Agentes de Transmisión Sexual : Neisseria gonorrhoeae, Treponema pallidum, Haemophylus ducrey, Donovania granulomatis; Vaginosis bacteriana, Gardnerella vaginalis, Chlamydia trachomatis, Mobiluncus sp., Granuloma inguinal, Virus Herpes II, Virus de papiloma humano. Práctica 9 16. Aislamiento de Neisseria en agar chocolate. Observación de Neisseria gonorrhoeae, pruebas rápidas para el diagnóstico de Gardnerella vaginalis. 17. Pruebas de VDRL y RPR para sífilis. Micobacterias: Mycobacterium tuberculosis, Mycobacterium leprae, Micobacterias atípicas. Bartonella bacilliformis. Infecciones intrahospitalarias. Práctica 10 18. Coloración de Zielh- Neelsen y observación de bacilos ácido – alcohol resistentes. Observación de cultivos de Mycobacterium y micobacterias atípicas. 19. Observación B. bacilliformis en láminas.

Reconocimiento microscópico de algunos agentes de trasmisión sexual. Reconocimiento macroscópico de algunos microorganismos estudiados causantes de IVU y de enfermedades de trasmisión sexual. Práctica 9 Desarrollo de las capacidades 6 y 7. Clases magistrales: Participación activa del alumno Entrenamiento en la toma de muestras para aislamiento de los microorganismos estudiados. Reconocimiento de las características de los medios de cultivos más utilizados y siembra y aislamiento. Demostración de la coloración de Zielh-Neelsen para investigación de Baar Práctica 10 .

Diferencia las características particulares de los microorganismos. Demuestra correctamente la manera de realizar una coloración Zielh-Neelsen. Reconoce microscópicamente y macroscópicamente el agente causante de la tuberculosis. Reconoce los agentes causantes de infección intrahospitalaria. Reconoce los factores de riesgo de infección intrahospitalaria.

SUB-UNIDAD 03 : MICOLOGÍA Y VIROLOGÍA MÉDICAS CAPACIDAD 1 Reconocer las características morfológicas y fisiológicas de los hongos: Dermatofitos (Trichophyton, Microsporum y Epidermophyton), No Dermatofitos (Candida albicans, Malassesia furfur), de micosis subcutáneas (Sporotrix Schenkii, causantes de micetomas y otros), fuentes de contagio, vías de transmisión así como realizar los métodos y procedimientos de diagnóstico, medidas profilácticas aplicables a estas enfermedades. CAPACIDAD 2 Reconocer estructuralmente y culturalmente a los agentes de micosis sistémicas y oportunistas (Coccidiodes inmitis, Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis, Paracoccidiodes brasilensis, Candida albicans, Criptococcus neoformans, Aspergillius sp., Nocardia Rhyzopus, Fusarium sp.), interpretar la fisiopatología, identificar los síndromes clínicos, métodos de diagnóstico de laboratorio y medidas preventivas aplicables. CAPACIDAD 3 Describir las características morfológicas de los herpes virus, virus de la Hepatitis A, B, y otras hepatitis; parotiditis, virus respiratorio sincitial; patogenia, características epidemiológicas, diagnóstico clínico y de laboratorio así como medidas preventivas. CLASE MAGISTRAL Reconocer la naturaleza y morfología del virus de la inmunodeficiencia humana (VIH ), identificar vías frecuentes de transmisión, poblaciones de riesgo, estructuras antigénicas así como pruebas diagnósticas, medidas de prevención e infecciones oportunistas asociadas. CAPACIDAD 4 Reconocer estructura, replicación, mecanismos fisiopatológicos, manifestaciones clínicas, pruebas de laboratorio para diagnóstico y medidas de prevención de los virus que afectan el sistema respiratorio. CAPACIDAD 5 Reconocer características del virus sarampión, rabia, rotavirus, poliovirus, rubéola, morfología y biología, mecanismos fisiopatológicos, epidemiología. Cuadro clínico, mecanismos de prevención general e inmunológica y complicaciones más frecuentes. CAPACIDAD 6 Reconocer estructura y biología del virus del dengue y fiebre amarilla; epidemiología, mecanismos de transmisión, cuadro clínico, diagnóstico virológico y medidas de prevención. Informe analítico de la epidemia en nuestra localidad. CAPACIDAD 7 Analizar características de los virus oncogenes, fisiopatología, epidemiología, cuadro clínico, diagnóstico y medidas de prevención Al finalizar la unidad el alumno estará en capacidad de: Reconocer y analizar la morfofisiología de los hongos y virus y los interrelacionará con el huésped en el proceso salud enfermedad mostrando interés en las enfermedades mas

prevalentes de su entorno, reconociendo los factores causales para tomar las medidas preventivas adecuadas y utilizar el método microbiológico y principios epidemiológicos para la prevención de estas enfermedades, mostrando solidaridad, responsabilidad y tolerancia en el trabajo grupal.

Nº de la semana

Contenidos Conceptuales Contenidos Procedimentales

Contenidos actitudinales

Décima segunda Semana Décima tercera Semana

Clase Magistral 7 Los hongos: Generalidades. Acción patógena. Métodos de diagnóstico. Dermatofitos: Trichophyton, Microsporum y Epidermophyton. No Dermatofitos: Cándida albicans, Malassesia furfur. Micosis subcutáneas : Sporotrix Schenkii. Cromomicosis y Micetomas. Micosis oportunistas: Cándida y levaduras relacionadas, Criptococcus, Aspergilosis, Cigomicosis, Actinomicosis, Nocardiosis, Fusarium sp, Histoplasma Capsulatum Prácticas 11 y 12 20. Observación macroscópica y aislamiento de dermatofitos y no dermatofitos estudiados. 21. Observación macroscópica y microscópica de hongos causantes de micosis profundas y oportunistas CLASE MAGISTRAL 8 Virología: Características y propiedades generales de los virus. Clasificación. Virus RNA y DNA. Reacción ante agentes físicos y químicos. Replicación viral. Modo de transmisión. Interferón. Vacunas. Virus con ADN: Herpes virus (simple, varicela, Herpes zoster, Epstein Barr, citomegalovirus, Herpes 6,

Clase Magistral Desarrollo de las capacidades 1 y 2 de Micología. Reconoce las estructuras que identifican a los hongos. Reconocimiento microscópico de algunos hongos estudiados en láminas preparadas. Reconocimiento macroscópico en los cultivos de los hongos estudiados. Prácticas 11 y 12. Clase Magistral de Características generales Virus. Desarrollo de las capacidades 3 y 4. Participación activa del estudiante. Adiestramiento en la utilización de los kits de diagnóstico utilizados para algunas enfermedades virales.

Valora la importancia del estudio de las micosis y sus agentes causantes. Establece las principales características de los hongos. Aplica los métodos de diagnostico para investigar hongos. Demuestra correctamente la manera de realizar un preparado para investigar hongos. Establece las diferencias morfológicas entre los hongos ambientales y patógenos observados mediante microscopia. Valora la importancia del estudio de los virus. Establece las principales características de los virus. Valora la importancia y métodos diagnósticos de enfermedades virales. Establece la diferencia entre las diferentes técnicas de diagnostico viral.

Décima cuarta Semana Décima quinta semana Décima sexta Semana Décima séptima semana

Herpes 7, Herpes 8). Virus de la Hepatitis A, Virus de la hepatitis B, otras hepatitis, Parotiditis, Virus respiratorio sincitial, Virus respiratorios. Práctica 13 22. Efecto citopático de los virus - Medios y técnicas aislamiento Virus Paramyxovirus: Sarampión, Rhabdovirus: Virus de la Rabia Reovirus: Rotavirus Poliovirus. Togavirus: Rubéola Clase Magistral 9 Retrovirus: Lentivirus y SIDA Infecciones asociadas con el SIDA. Práctica 14 23. Determinación de antígeno de superficie - HBSAg 24. Invest. Ac HIV mediante ELISA Flavivirus: Fiebre amarilla, dengue Clase Magistral: Virus oncogenes. EXAMEN PARCIAL TEORICO Y PRÁCTICO. EXAMEN DE APLAZADOS.

Práctica 13 Desarrollo de capacidad 5. Diagnóstico de la hepatitis B. Aplica la prueba de diagnostico para investigación de HIV Reconocimiento de las Características diferenciales de los virus estudiados. Clase Magistral VIH. Práctica 14. Desarrollo de capacidad 6. Clase Magistral 10 Reconocimiento de las formas larvarias y adultos de los vectores trasmisores de dengue y fiebre amarilla. Ingreso de notas a páginas web Ingreso de notas Aplazados

Demuestra correctamente la ejecución en el diagnostico de hepatitis B Valora la importancia de los virus estudiados. Valora la importancia de las enfermedades virales que producen estos virus. Valora la importancia del diagnóstico de estas virosis. Valora la importancia de los virus estudiados. Valora la importancia de las enfermedades virales que producen estos virus. Valora la importancia del diagnóstico de estas virosis.

VI ESTRATEGIA METODOLÓGICA Se utilizará el método inductivo – deductivo utilizando diferentes motivaciones. Algunas veces se plantearan cuestionamientos teóricos sobre tópicos específicos por ejemplo la morfología de un microorganismo, o su fisiología; otras veces se pedirá contrastar en el laboratorio lo aprendido en la teoría; se propondrán casos clínicos para la aplicación del método microbiológico. DISCUSIÓN EN PEQUEÑOS GRUPOS: TRABAJO POR CAPACIDADES Se tomarán en cuenta los siguientes momentos: A. Motivación: Por parte del docente con la presentación de alguna transparencias y o videos sobre el tema para lo cual utilizará retroproyector y palabra, Televisor, Equipo de Multimedia VH, en un tiempo de 20 minutos. B. Exploración y problematización: Diálogo para determinar los saberes previos de los alumnos sobre el tema, y planteamiento e interrogantes en un tiempo de 15 minutos para lo cual se utilizará cuestionario de autoevaluación. C. Construcción de conocimientos: Se realiza lectura individual de los contenidos, previamente se forman grupos pequeños. D. Se aplica rompecabezas, discusión de los temas del contenido de clase y se elabora material para la exposición. Se contará con recursos como bibliografía de los temas, papeles impresos, transparencias, plumón, pizarra y como instrumentos de evaluación: guías de observación y listas de cotejo. E. Se emplea un tiempo de 90 minutos. F. Transferencia: Presentación de los temas programados en la semana con exposición y consolidación en plenario, presentar informes grupales, dando ejemplos prácticos en algunos temas. Se utilizará como recursos retroproyector, transparencia, papelógrafo, Televisor equipos multimedia VH, con la participación de los estudiantes. El docente actúa como facilitador del proceso enseñanza – aprendizaje. Se emplea un tiempo de 60 minutos. G. Evaluación: En pequeños grupos los alumnos analizarán sus desempeños y se darán sugerencias para mejorar el método. Se pueden aplicar cuestionarios de autoevaluación en 10 minutos. PRÁCTICA DE LABORATORIO Se realizan de acuerdo a programación, dividiéndose la promoción en 7grupos. El estudiante ingresa al laboratorio con lo mínimo indispensable de libros o valija, para evitar contaminaciones, con mandil blanco limpio, planchado y pulcramente presentado. El profesor inicia la práctica con una motivación no mayor de quince minutos, y a continuación se desarrolla según los contenidos y competencias programadas. Es especialmente importante que cada uno de los estudiantes se adiestre en los procedimientos incluidos en la práctica, para estar preparado al rendir su examen práctico de unidad. Todos los estudiantes deben contar con una calificación en cada práctica la cual contribuirá a su nota de práctica de unidad, junto a su examen práctico, como

instrumento de evaluación indicadores de evaluación de desempeño de práctica de laboratorio. CLASE MAGISTRAL Se dicta por el profesor experto en la materia de preferencia que el tópico este incluido en una línea de investigación. Esta actividad cuenta con material visual de primera calidad elaborado por el docente. En estas clases los docentes aportarán algunas experiencias obtenidas en el campo profesional y de la investigación. VII MATERIALES EDUCATIVOS O EQUIPOS DE ENSEÑANZA : 1. Pizarra, diapositivas, retroproyector, materiales didácticos (transparencias, televisor VH), equipo multimedia, cuaderno de práctica, proyector, textos, revistas, boletines, plumones de pizarra, videos. 2. Reactivos de cristalería y medios de cultivo, equipos de laboratorio de microbiología, Laminas fijadas y coloreadas. Muestras frescas patológicas, cultivos preparados previamente en el laboratorio, microscopios ópticos y estéreo microscopios. VIII INDICADORES, INSTRUMENTOS Y TÉCNICAS DE EVALUACIÓN DEL APRENDIZAJE. Será en función de los niveles de logro y conductas observables, se realiza en cada una de las secciones mediante lista de cotejos o escala de observación. La evaluación es permanente y sumativa. La ponderación a considerar en el curso en la siguiente:

Dimensión de la evaluación

Técnica o Procedimiento

Instrumentos Peso

Competencias (capacidades)

Ev. teórica (I y II evaluación parcial) Dinámica grupal Prueba Práctica Evaluación práctica

Prueba objetiva Intervención Oral de Competencia en discusiones escala de evaluación participación de grupo. Prueba escrita Evaluación desempeño de prácticas

2 1 2

Actitudes Observación de procedimientos + Evaluación práctica de mesa

Criterios de evaluación práctica de laboratorio, evaluación desempeño prácticas. Escala para intervenciones orales

1

Total 6

Calificación promedio de la Unidad: Se obtiene de la multiplicación de la nota de cada instrumento de evaluación por su coeficiente respectivo, se suman los productos y se divide entre el total de coeficientes. Evaluación Teórico práctica (Prueba Objetiva): Cada examen teórico consta de 40 preguntas con un tiempo de una hora. Tendrá peso dos para la calificación de la unidad. El examen práctico constará de 20 ítems con una duración de 20 minutos y se desarrolla en el laboratorio, realizando observaciones al microscopio, observando pruebas microbiológicas, solicitando al estudiante que realice procedimientos de laboratorio, o respondiendo preguntas concretas por escrito. Generalmente tiene una duración de veinte minutos. Tiene peso dos. Para el control práctico de mesa (actitudes) se tendrá en cuenta los siguientes criterios: nivel de conocimiento, responsabilidad en el trabajo, destrezas, cooperación grupal, interés, responsabilidad, normas de bioseguridad. Tendrá peso uno. Se aplica instrumento de evaluación del desempeño de prácticas. Dinámica grupal: Los estudiantes revisarán con anticipación el tema programado, durante el desarrollo de las competencias debe haber una participación activa y constante del estudiante tanto del punto de vista cognoscitivo como procedimental y actitudinal. Tendrá peso 1 se aplica instrumentos de evaluación de grupo y escalas de discusiones de grupo e intervenciones orales. Nota promocional: Se obtiene del promedio de las dos notas parciales

PP1 + PP2 P = -------------------------

2 Nota aplazados.- Tiene un valor independiente y resulta del examen teórico práctico. Comprenderá todo el contenido del curso. en la nota promocional y de aplazados el medio punto (0,5) se considera como unidad a favor del alumno. REQUISITOS DE APROBACIÓN DE UNIDAD: 1. Asistir al 70% de actividades programadas. El control de asistencia será permanente de acuerdo a las normas establecidas por la Universidad. 2. Rendir los exámenes en las fechas programadas. La fecha de examen es de carácter IMPRORROGABLE. 3. Aprobar el examen parcial y obtener promedio de 11. 4. Participación activa durante práctica de laboratorio. 5. Participar en el desarrollo de competencias activa y permanentemente. 6. El estudiante con nota promedio del curso menor de 07 no podrá rendir examen de aplazados. IX PROGRAMA DE TUTORIA Y CONSEJERIA Los docentes apoyarán y orientarán a los alumnos durante el desarrollo del curso en los aspectos académicos, sociales, familiares así como problemas personales que estos presenten, haciendo la evaluación respectiva y consejería necesaria, para lo cual se tomarán 2 horas semanales en horario y ambiente previamente establecido por el coordinador del curso.

X. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS : A. Bibliografía Básica : Brooks G. y col. Microbiología Médica de Jawetz, Melnick y Adelberg. 18a edic. El manual moderno. México. 2007. Murray P., Drew Lawrence W., Kobayashi G. Microbiología Médica. 6ta edición. Times Mirror. España. 2009. Mims, Playfair. Microbiología Médica. 2º edición. Edit. Doyma. 1998. B. Bibliografía complementaria : Brock T. y Mandingan. Microbiología. 6 ta edic. Prentice hall. S.A. México. 1993. Wistreich G. y M. Lechtman. Práctica de Laboratorio en Microbiología. 2 da. Edic. Limusa. México. 1989. Pelczar M. Y col. Microbiología. 3ra edic. Mac Graw Hill. México. 1989. Zapater. Micología Médica. Edit. El Ateneo. Buenos Aires. 1981. Koneman. Diagnóstico Microbiológico. 3º edición. Edit. Médica Panamericana. Buenos Aires 1992. Zinsser. Microbiología Médica. Uthea. 1997. Liebana Ureña J. Microbiología oral- 3º Edición Interamericana- Mc Graw- hill España 2,005 INTERNET. http://microbilogia.com.ar/esterilizacion/agentesquimicos.html http://www.atl-gestion.com/asepsiaydesinfeccion.htm http://www.simiconsultora.com.ar/hobbyciencia/esterelizacion/esterelizacion.htm http://www.alfinal.com/salud/esterelizo.html http://www.lafacu.com/apuntes/medicina/desinfectantes/default.htm http://escuela.med.pue.el/paginas/publicaciones/patolquir004.html http://www.servicom.es/gesida/diapos 98/ 98 htm http://www.cdc.gov/ncidad/ncid.htm REVISTAS CIENTIFICAS REVISTA PERUANA DE MEDICINA TROPICAL BOLETIN DE LA ORGANIZACION MUNDIAL DE LA SALUD REVISTA PANAMERICANA DE SALUD PUBLICA ANNUAL REVIEW OF MICROBIOLOGY ANNUAL REVIEW OF PARASITOLOGY ACTA TROPICA Trujillo, agosto de 2011

PARASITOLOGÍA Y ENTOMOLOGÍA MÉDICA V. COMPETENCIAS DE UNIDAD: Al finalizar el proceso de enseñanza-aprendizaje el alumno: III.1. Explica la relación huésped-parásito en el proceso vital salud-enfermedad, integrando los conocimientos de la estructura y fisiología de Protozoarios, Tremátodos, Céstodos, Nemátodos y Artrópodos, los mecanismos de defensa del hospedero y de agresión y evasión de los parásitos causantes de las parasitosis mas frecuentes en nuestro medio. Mostrando interés en el trabajo grupal y respetando las ideas de sus compañeros de clase. III.2. Reconoce la estructura y función de los Protozoarios, Tremátodos, Céstodes, Nemátodos y Artrópodos que causan enfermedades parasitarias en el ser humano y aplica procedimientos básicos de laboratorio para el diagnóstico y control de los parásitos patógenos más frecuentes en la región y el país; mostrando interés en el trabajo grupal, responsabilidad y respetando los conceptos de sus compañeros de clase

4.- PROGRAMACION SEMANAL

No. Semana

CONTENIDOS CONCEPTUALES CONTENIDOS PROCEDIMENTALES CONTENIDOS ACTITUDINALES

1 2 3

TEORÍA Parásitología: Generalidades. Clasificación. Relación Huésped-Parásito-Ambiente, Clases de Huéspedes: Definitivos, Intermediarios, Accidentales. Formas evolutivas y Formas infectantes. Vectores: mecánicos y biológicos. Reservorios. Protozoarios parásitos del Aparato Digestivo del Hombre: Amebianos: Entamoeba coli; Entamoeba histolytica: morfología, biología y ciclo vital. Comparación . Mención de Iodamoeba butschlii. Amebas de vida libre: Acanthamoeba, Naegleria y Balamuthia. Flagelados: Giardia lamblia, Chilomastix mesnili: trofozoitos y quistes.Trichomonas hominis y Trichomonas vaginalis. Ciliados: Balantidium coli: morfología, biología y ciclo vital. PRACTICA Para el trabajo práctico el alumnado portará sus propias muestras de heces para su entrenamiento en el procesamiento de muestras en el laboratorio. En láminas preparadas y coloreadas se estudiarán la morfología de E. histolytica, E. coli, G. lamblia, T. vaginalis.

- Clases magistrales por parte del docente - Participación activa del estudiante. - Para el trabajo práctico el alumnado aportará sus propias muestras de heces para su entrenamiento en el procesamiento de muestras en el laboratorio. - Preparación de Láminas en Fresco y Reconocimiento de parásitos en láminas coloreadas

Valora la importancia del contenido de la asignatura. Establece la relación Huésped- Parásito-Ambiente. Establece la diferencia de la terminología que se utilizará durante el desarrollo de la asignatura. Demuestra correctamente la manera de realizar un diagnóstico coproparasitológico Diferencia las características particulares de los protozoarios estudiados.

4 TEORÍA Leishmania spps: Leishmaniasis o Leishmaniosis: tipo uta o cutánea; tipo espundia o mucocutánea; tipo visceral o kala-azar. Vectores de Leishmaniosis en el Viejo y en el Nuevo Mundo.

- Clases magistrales por parte del docente - Participación activa del estudiante

-Valora la importancia del estudio de las histo y hemoparásitosis . - Establece la diferencia de la terminología que se utiliza en las parasitosis estudiades

5 Vectores importantes en el Perú. Enfermedad de Chagas: agente etiológico Trypanosoma cruzi. Vectores en el Perú y Sudamérica. Mención de enfermedad del sueño y T. gambiense. T. rangeli y T. lewisi. PRACTICA En láminas coloreadas y montadas se estudiarán la morfología de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados en la clase teórica; así como también los insectos vectores.

‐Reconocimiento en láminas coloreadas de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados. - Identificación de vectores en material entomológico conservado y en láminas montadas.

‐Establece la importancia de la toma de muestra para el diagnóstico de histo y hemoparásitos. - Demuestra correctamente la manera de realizar un diagnóstico parasitológico utilizando los métodos estudiados. - Diferencia las características particulares de cada uno de los protozoarios estudiados.

6 7

TEORÍA Esporozoarios hemáticos y tisulares: Formas de paludismo en el Perú determinados por Plasmodium vivax, Plasmodium malarie y Plasmodium falciparum. Plasmodium ovale Vectores importantes en el país. Toxoplasma gondii: Toxoplasmosis en el Perú y el mundo. Formas de transmisión y diagnóstico. PRACTICA En láminas preparadas coloreadas y montadas se estudiarán microscópicamente las estructuras diferenciales de las formas evolutivas de las especies de esporozoarios descritas en la clase teórica.

-Clases magistrales por parte del docente - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento en láminas coloreadas de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados. - Identificación de vectores en material entomológico conservado y en láminas m

-Valora la importancia del estudio de las histo y hemoparásitosis . - Establece la diferencia de la terminología que se utiliza en las parasitosis estudiades - Establece la importancia de la toma de muestra para el diagnóstico de histo y hemoparásitos. - Demuestra correctamente la manera de realizar un diagnóstico parasitológico utilizando los métodos estudiados.

8 9

TEORÍA Helmintología. Helmintos Parásitos. Descripción morfológica, biología, ciclos vitales y clasificación. Distribución geográfica. Platelmintos: Tremátodos del hígado: Fasciola hepatica, Clonorchis sinensis. Trématodos del intestino: Fasciolopsis buski; Mención de Heterophyes heterophyes. Tremátodos del Sistema Sanguíneo: Schistosoma mansoni. Hospedadores intermediarios y formas de transmisión. Tremátodos del pulmón: Paragonimiasis o paragonimiosis: Paragonimus peruvianus y otras especies de América y del Mundo

-Clases magistrales por parte del decente - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento en láminas coloreadas de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados. -Identificación de formas evolutivas útiles para el diagnóstico. - Identificación de principales

-Valora la importancia del estudio de Los helmintos. - Establece la clasificación de las enfermedades parasitarias originadas por helmintos (tremátodos) y diferencia la terminología que se utiliza en las parasitosis estudiadas - Diferencia características particulares de las formas evolutivas de cada uno de los parásitos estudiados así como

PRACTICA En el laboratorio se mostrarán los especímenes adultos y larvarios de los parásitos estudiados: conservados y en láminas coloreadas y montadas; además se mostrarán los huéspedes intermediarios.

hospedadores intermediarios en material conservado

también de sus hospedadores intermediarios.

10 11

TEORIA Céstodos: Taenia solium y T. saginata. Cisticercosis.Hospedadores intermediarios en el Perú y América. Hidatidosis: Quiste hidatídico. Echinococcus granulosus. Hymenolepis nana e H. diminuta. Dypilidium caninum. Diphyllobothrium pacificum y D. latum. Hospedadores intermediarios. PRACTICA En el laboratorio se realizará el estudio diferencial de cada una de las especies estudiadas; se mostrarán los especímenes adultos y larvarios en láminas coloreadas y montadas. En heces preservadas se estudiaran microscopicamente, los huevos. Se expondrá y realizará el diagnóstico de Cisticercosis mediante la Técnica de Western Blot.

- Clase Magistral - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento de Taenias adultas y de los Cisticercos; así como también de los Hospedadores intermediarios y de huevos. - Reconocimiento en láminas coloreadas de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados. -Identificación de formas evolutivas útiles para el diagnóstico y de principales hospedadores intermediarios en material conservado.

-Valora la importancia del estudio de los céstodos. - Establece la clasificación de las enfermedades parasitarias originadas por céstodos y diferencia la terminología que se utiliza en las parasitosis estudiadas - Diferencia características particulares de las formas evolutivas de cada uno de los parásitos estudiados así como también de sus hospedadores intermediarios.

12 13

TEORÍA Nematelmintos: Nemátodos del Aparato Digestivo del hombre: Ascaris lumbricoides, Enterobius vermicularis, Trichocephalus trichiuris. Nemátodos que se adquieren por intermedio de formas larvarias: Strongyloides stercoralis, Ancylostoma duodenale y Necator americanus. Mención de Ancylostoma braziliense y A. caninum. Filaroideos: Wuchereria bancrofti, Onchocerca volvulos, Mansonella ozzardi, Dirofilaria inmitis. Vectores principales. PRACTICA En el laboratorio se estudiarán morfológicamente las

- Clase Magistral - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento de nemátodos adultos machos y hembras; así como también de los Hospedadores intermediarios y de huevos. - Reconocimiento en láminas coloreadas de cada uno de las formas evolutivas de los parásitos citados. -Identificación de formas evolutivas útiles para el

-Valora la importancia del estudio de los helmintos memátodos. - Establece la clasificación de las enfermedades parasitarias originadas por helmintos (nemátodos ) y diferencia la terminología que se utiliza en las parasitosis estudiadas - Diferencia características particulares de cada uno de los parásitos estudiados así como también de sus hospedadores

estructuras diferenciales de cada una de las especies citadas en la clase teórica.

diagnóstico y de principales hospedadores intermediarios en material conservado.

intermediarios.

14 15

TEORIA Artrópodos de importancia médica. Moscas productoras de miasis: Cochlyomia hominivorax, Dermatobia hominis, Oestrus ovis. Pediculus humanus var. Capitis, Pediculus humanus var. corporis, Phthirus pubis. Pulicidos transmisores de la peste bubónica: Xenopsylla - Clases Magistrales - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento de insectos adultos machos y hembras en láminas montadas -Valora la importancia del estudio de los artrópodos productores de enfermedades en el ser humano. - Establece la clasificación y la diferencia de las enfermedades originadas y transmitidas por cheopis, Ceratophylus fasciatus, Ctenocephalides canis y otros. Acaros productores de sarna: Sarcoptes scabiei, Demodex folliculorum. Arañas venenosas: Loxosceles laeta y Latrodectus mactans. PRACTICA En el laboratorio y en especímenes conservados y en láminas coloreadas se estudiarán morfológicamente las estructuras diferenciales de cada una de las especies citadas en la clase teórica.

- Clases Magistrales - Participación activa del estudiante. - Reconocimiento de insectos adultos machos y hembras en láminas montadas - Reconocimiento en material conservado de las formas evolutivas de los artrópodos citados. -Identificación de otros artrópodos en material conservado.

-Valora la importancia del estudio de los artrópodos productores de enfermedades en el ser humano. - Establece la clasificación y la diferencia de las enfermedades originadas y transmitidas por insectos. - Diferencia características particulares de cada uno de los artrópodos estudiados. -Valora la importancia de la participación de la Enfermera en el diseño de estrategias para prevenir las enfermedades producidas por artrópodos. .

16 EVALUACIÓN TEÓRICA Y PRACTICA Prueba Objetiva y Hoja de Respuestas

17 EXAMEN DE APLAZADOS Prueba Objetiva y Hoja de Respuestas

ESCALA DE EVALUACIÓN DE LA PARTICIPACIÓN DE LOS ESTUDIANTES EN LAS DISCUSIONES DE GRUPO

FECHA: TEMA: PROFESOR: COMPETENCIA EVALUADA: Participa activamente en las dinámicas de grupo ofreciendo aportes técnicos y constructivos. INSTRUCCIONES: - Anotar el nombre de los estudiantes que participan en la dinámica. - Marcar en las columnas de criterios, la puntuación que le corresponde al estudiante de acuerdo a su desempeño: 1: Inadecuado o incompleto, 2. Regular, 3: Bueno ó 4: Excelente - Obtener la nota del estudiante, para ello se debe sumar el puntaje obtenido y traducir a la escala vigesimal considerando que 28 = 20. - Presente la evaluación a cada estudiante y realice el refuerzo correspondiente

Criterios Estudiantes

Mantiene el interés durante la reunión

Sus aportes contribuyen a profundizar el tema

Ofrece aportes constructivos

Escucha con atención a sus compañeros

Presenta sus aportes con claridad

Evita distracciones que perturben la dinámica

CALIFICACIÓN OBTENIDA Resulta de la suma de la puntuación obtenida traducida a la escala vigesimal

1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4

1

2

3

4

5

6

7

VI ESTRATEGIAS METODOLOGICAS Se empleará el método deductivo e inductivo. Se estructurarán cuadros sinópticos de cada tópico de clase. Asimismo, se explicará con esquemas a colores la estructura de los microorganismos en estudio. Se utilizará proyecciones de slides, seleccionados para cada clase. Las clases prácticas necesariamente se realizarán con la ayuda de microscopios y estéreo microscopios en el laboratorio. Se utilizarán láminas coloreadas, láminas montadas, material biológico conservado o fresco según las necesidades en cada clase. VII. MATERIALES EDUCATIVOS Y OTROS RECURSOS DIDACTICOS Para las clases teóricas se brindará al alumnado las aulas que están acondicionadas con cortinas para las proyecciones de slides. Para las clases prácticas necesariamente se utilizará el laboratorio, donde se dispondrá de material biológico fresco o conservado en formol acético o alcohol 70% y láminas coloreadas y montadas en Bálsamo de Canadá. También es deseo de la CÁTEDRA estructurar un museo PARASITOLOGICO con muestras de Protozoarios, Tremátodos, Céstodos, Nemátodos y Artrópodos parásitos, lo cual permitirá un mejor aprendizaje y adiestramiento de los estudiantes. VIII. INDICADORES, TECNICAS E INSTRUMENTOS DE EVALUACIÓN L a evaluación del estudiante se regirá por el Reglamento de Evaluación de la Universidad. La escala de evaluación es vigesimal y en cada UNIDAD se evaluará aspectos teóricos y prácticos de la siguiente manera: - Examen Teórico, Prueba Escrita (COEFICIENTE 1) - Examen Práctico: Hoja de respuestas e instrumento de evaluación (COEFICIENTE 1). 1. La NOTA DE UNIDAD será el promedio aritmético de las notas del EXAMEN TEÓRICO y del EXAMEN PRACTICO. La nota mínima de aprobación será 11 (ONCE). Nota de Unidad : Nota Examen Parcial Teórico + Nota Práctica -------------------------------------------------------------------- 2 La NOTA PROMOCIONAL será el promedio aritmético de las 2 (DOS) UNIDADES. La NOTA PROMOCIONAL MÍNIMA ES 10.5. Nota Promocional: Nota Unidad Microbiología + Nota Unidad Parasitología --------------------------------------------------------------------------------- 2 3. El alumno podrá rezagar SOLAMENTE un (1) examen teórico de unidad, el cual lo rendirá al final del curso. Los exámenes prácticos no se rezagarán. 4. Con 30% de inasistencias del alumno, será considerado como INHABILITADO. 6. El EXAMEN DE APLAZADOS se rendirá en fecha única y comprenderá aspectos teóricos y prácticos de las dos grandes unidades del curso. NO tienen derecho a éste examen los alumnos con nota promocional inferior a 07 o los que se encuentren en condición de INHABILITADOS. 7. La NOTA PROMOCIONAL no se tomará en cuenta en el cálculo de la nota de APLAZADOS (la nota de aplazados es su promedio final). IX PROGRAMA DE TUTORIA Y CONSEJERIA Los docentes apoyarán y orientarán a los alumnos durante el desarrollo del curso en los aspectos académicos, sociales, familiares así como problemas personales que estos presenten, haciendo la evaluación respectiva y consejería necesaria, para lo cual se tomarán 2 horas semanales en horario y ambiente previamente establecido por el coordinador del curso.

X. BIBLIOGRAFIA DE UNIDAD 9.1. BIBLIOGRAFIA BASICA: ATIAS A. 2003. Parasitología Médica. Publicaciones Técnicas Mediterráneo Ltda. Santiago, Chile. 9.2. BIBLIOGRAFIA COMPLEMENTARIA: BIAGI, F. 2004. Enfermedades Parasitarias. 3ª. ed. Edit. El Manual Moderno S.A. de C.V. México. BOTERO, D. y M. RESTREPO. 1998. Parasitosis Humanas. 3ra. edición. Corporación para Investigaciones Biológicas. Medellín, Colombia. BROWN, H. Y F. NEVA. 1985. Parasitología Clínica. 5a. edición. Nueva Editorial Interamericana S.A. de C.V. México. CRAIG y FAUST. 1974. Parasitología Clínica. Salvat Editores, México. 9.3. REVISTAS CIENTIFICAS REVISTA PANAMERICANA DE SALUD PUBLICA REVISTA PERUANA DE PARASITOLOGIA ACTA TROPICA MEMORIAS DEL INSTITUTO OSWALDO CRUZ INTERNATIONAL JOURNAL OF PARASITOLOGY PARASITOLOGY RESEARCH ANNUAL REVIEW OF PARASITOLOGY ANNUAL REVIEW OF ENTOMOLOGY 9.4. WEB SITES http://www.who.int http://www.who.int/tdr http://www.who.int/ctd/intpara http://www.rbm.who.int http://www.who.int/wer/ http://www.dbbm.fiocruz.br/ http://www.sbpflap.cjb.net http://www.ufrgs.br/para_site/imagens/ http://www.parasitology_online.com

UNIVERSIDAD RIVADA ANTENOR ORREGO FACULTAD DE MEDICINA HUMANA MICROBIOLOGIA Y PARASITOLOGIA MÉDICAS

INSTRUMENTO DE EVALUACIÓN DEL DESEMPEÑO EN PRÁCTICAS ESTUDIANTE: UNIDAD: TEMA: FECHA: INSTRUCCIONES PARA EL INSTRUMENTO: 1. La evaluación es individual 2. Anotar en la columna correspondiente el puntaje obtenido por el alumno, considerando que 4=Excelente, 3=Bueno, 3=Regular y 1= deficiente / incompleto. 3. Sumar el puntaje obtenido por el alumno y obtener la nota correspondiente, considerando que 48 = 20. 4. Presentar la evaluación al estudiante y realizar los refuerzos necesarios. ITEM INDICADORES ESCALA

4 3 2 1 1 Asistencia a las prácticas programadas 2 Cumplimiento de las indicaciones del docente 3 Participación activa en la práctica 4 Cumplimiento de las tareas propuestas 5 Lavado de manos con agua y jabón antes y después

de realizar la práctica

6 Manejo de las muestras patológicas 7 Coloca el material contaminado en el depósito con

desinfectante

8 Usa adecuadamente los materiales y equipos de laboratorio.

9 Identifica acertadamente las estructuras sugeridas 10 Interpreta correctamente las estructuras observadas. 11 Esquematiza apropiadamente lo observado. 12 Deja el material y equipos utilizados ordenados en la

mesa de trabajo

CRITERIOS 4 : Excelente; 3 : Bueno ; 2: Regular ; 1: Deficiente / incompleto.

FIRMA DEL DOCENTE

FACULTAD DE MEDICINA

EVALUACIÓN DE PRÁCTICA EN EL LABORATORIO

UNIDAD CALIFICACION POR UNA UNIDAD (Anotar la fecha) PROMEDIO DE LA

UNIDAD NOMBRES Y APELLIDOS DEL ESTUDIANTE

PRACTICA 1 PRACTICA 2 PRACTICA 3 PRACTICA 4

INTRUCCIONES PARA SU APLICACIÓN: - Para la aplicación del instrumento adecuar los criterios a la terminología y naturaleza de la asignatura. - La evaluación es individual y debe ser aplicada a través de la observación del desempeño del estudiante. - Marcar con un aspa(x) el puntaje asignado al estudiante, según la exigencia de la asignatura. - Sumar el puntaje y obtener la Nota Final. Para ello debe traducir el puntaje obtenido a la escala vigesimal, considerando que 40 = 20. - Anotar el promedio de la Unidad en la casilla correspondiente. - Anotar las sugerencias que considere conveniente, presentando al estudiante los resultados de la evaluación.

CRITERIOS DE EVALUACION ESCALA VALORATIVA DEFICIENTE REGULAR BUENO MUY

BUENO 1 2 3 4

Sustento teórico de los contenidos tratados

Investigación, complementación o ampliación del contenido tratado

Manipulación de muestras, materiales, equipos, instrumentos o insumos

Ejecución de procedimientos o técnicas Clasificación y rotulación de materiales o muestras

Aplicación de medidas de bioseguridad Presentación personal y empleo del uniforme apropiado

Responsabilidad, asistencia y puntualidad Relación interpersonal con el docente, grupo de práctica y equipo de laboratorio

Disposición para adecuarse a la práctica de laboratorio. Espíritu de superación y capacidad de logro

Orden y cuidado con los equipos y materiales

ESCALA PARA EVALUAR INTERVENCIONES ORALES EN PRÁCTICA UNIDAD: PROFESOR: FECHA: INSTRUCCIONES: - Anotar el nombre de los estudiantes que participan en la asignatura. - Marcar en las columnas de criterios el puntaje otorgado al estudiante de acuerdo a su desempeño en la intervención oral. Sumar los puntajes parciales y obtener la nota de cada estudiante. - Presentar la evaluación a cada estudiante y realizar la retroalimentación correspondiente.

CRITERIOS Claridad de la intervención

Sustento teórico y técnico de la intervención

Contribución de la intervención para profundizar el tema en estudio

Seguridad durante su participación

Aportes constructivos para el grupo de estudiantes

NOTA OBTENIDA POR EL ESTUDIANTE

PUNTAJE= 20 4 5 4 4 3 ESTUDIANTES 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20