SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y DIRECCION DE …

DIRECCION DE SANIDAD ANIMAL

SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y

VIGILANCIA EPIDEMIOLOGICA

PRO-SARVE-04 PROCEDIMIENTO: MUESTREO DE LAS

ENFERMEDADES DE INFLUENZA AVIAR, NEWCASTLE, LARINGOTRAQUEITIS,

SALMONELOSIS Y MYCOPLASMOSIS.

Revisión: 00

Página: 1 de 65







Revisión: 00

Página: 2 de 65

1. OBJETIVO

Asegurar que el muestreo sea representativo para el estudio epidemiológico de la actividad serológica, virológica y bacteriana, según sea el caso, de Influenza Aviar, Newcastle, Laringotraqueitis, Salmonella y Mycoplasma en el país.

2. ALCANCE

Aplica en el ámbito de todas las Direcciones Ejecutivas del Servicio Nacional de Sanidad Agraria – SENASA, en las poblaciones avícolas de los estratos establecidos dentro del estudio.

3. REFERENCIAS

D.S. Nº 029-2007-AG, “Reglamento del Sistema Sanitario Avícola”, Artículo: 19º. D.S. Nº 010-2003-AG, “Reglamento de Control y Erradicación de la enfermedad de Newcastle”. R.J. Nº 230-2002-AG-SENASA, “Plan de acción para la prevención de la enfermedad de Influenza Aviar en el Perú”. PRO-UCDSA-06: Recolección y envío de especímenes/muestras y exámenes solicitados al laboratorio.

4. DEFINICIONES

Confianza: Cuando se trata de demostrar el estatus libre de infección, la confianza es la probabilidad de que el tipo de vigilancia aplicada detecte la presencia de infección si la población está infectada. La confianza depende, entre otros parámetros, del nivel supuesto de infección en una población infectada. El término se refiere a la confianza en la capacidad de detectar la presencia de enfermedad de la vigilancia aplicada y es equivalente a la sensibilidad del sistema de vigilancia. Especificidad: La proporción de unidades verdaderamente negativas que se han identificado correctamente como negativas mediante una prueba. Estudio: Una investigación en la que se recopila información de manera sistemática, que suele llevarse a cabo sobre una muestra de un grupo de población definido, durante un período de tiempo definido. Muestra: El grupo de elementos (unidades de muestreo) tomados de una población en el que se realizan pruebas o se miden parámetros para proporcionar información de vigilancia. Población de estudio: La población de la que se obtienen los datos de vigilancia. Puede ser la misma que la población diana o un subconjunto de ésta. Prueba: Procedimiento utilizado para clasificar una unidad como positiva, o negativa o sospechosa con respecto a una infección o enfermedad. RSSA: Reglamento del Sistema Sanitario Avícola DS Nº 029-2007-AG. Sensibilidad: La proporción de unidades verdaderamente positivas que se han identificado correctamente como positivas mediante una prueba. Sesgo: Tendencia de una estimación a desviarse del valor real en cierta dirección. Sistema de prueba: Combinación de pruebas y reglas de interpretación múltiples que se utilizan para el mismo fin que una prueba.







Revisión: 00

Página: 3 de 65

Sistema de vigilancia: Un método de vigilancia que puede conllevar una o más actividades componentes y que genera información sobre el estatus con respecto a la salud, enfermedad o zoonosis de las poblaciones animales. Unidades de muestreo: La unidad de la que se toman muestras, en un estudio aleatorio o en una vigilancia no aleatoria. Puede tratarse de un sólo animal o de un grupo de animales (por ejemplo, una unidad epidemiológica). Combinadas, constituyen el marco de muestreo. Vigilancia: La recopilación, el cotejo y el análisis sistemáticos y continuos de datos y la comunicación rápida de la información a quienes la necesiten para que puedan tomar medidas.

5. RESPONSABILIDADES

5.1. El Director de Sanidad Animal es responsable de aprobar el presente documento.

5.2. La Subdirección de Análisis de Riesgo y Vigilancia Epidemiológica, es responsable de actualizar el presente documento de manera coordinada con el Programa Nacional de Sanidad Avícola y de coordinar con la OPDI y la OAD la disponibilidad presupuestaria y el envío de los recursos necesarios, respectivamente, a las Direcciones Ejecutivas para la ejecución del presente procedimiento; asimismo de supervisar la correcta aplicación de este procedimiento a través de la evaluación de los expedientes y documentos que en su cumplimiento y aplicación genera la Dirección Ejecutiva.

5.3. El Director de la Dirección Ejecutiva es el responsable de implementar y monitorear el cumplimiento del presente procedimiento.

5.4. El Jefe de Área de Sanidad Animal de la Dirección Ejecutiva, es el responsable técnico y encargado de coordinar y supervisar el cumplimiento del presente procedimiento.

5.5. El Jefe de Gestión de la Dirección Ejecutiva es responsable de brindar las facilidades logísticas necesarias según corresponda, para el cumplimiento del procedimiento.

5.6. El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, a quien se asigne la función en campo (Vigilancia clínica, serológica y virológica), es responsable de ejecutar el presente procedimiento.

6. DESCRIPCIÓN

La vigilancia zoosanitaria es un componente esencial para detectar enfermedades, llevar a cabo el monitoreo de las tendencias de la enfermedad, luchar contra las enfermedades endémicas y exóticas, apoyar las solicitudes para obtener el estatus libre de enfermedad o infección, proporcionar datos para apoyar el proceso de análisis de riesgos, para fines de salud animal y/o pública, y justificar la lógica de las medidas sanitarias. Los datos de vigilancia respaldan la calidad de los informes sobre el estatus sanitario y deberán satisfacer los requisitos de información para realizar un análisis de riesgo preciso para el comercio internacional, así como para la toma de decisiones internas nacionales.







Revisión: 00

Página: 4 de 65

6.1. Enfermedades a muestrear:

Influenza aviar

La influenza aviar de declaración obligatoria es una infección de las aves de corral causada por cualquier virus de influenza de tipo A perteneciente al subtipo H5 o H7 o por cualquier virus de influenza aviar con un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1,2 (o que cause mortalidad en al menos el 75% de los casos), como se describe más abajo. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria se dividen en dos categorías: virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena y virus de influenza aviar de declaración obligatoria levemente patógena. Dependiendo de la edad, el tipo de ave y los factores ambientales, la enfermedad muy virulenta puede variar desde una muerte súbita con pocos signos o sin signos patentes, hasta una enfermedad más característica con síntomas respiratorios, exceso de lagrimeo, sinusitis, edema en la cabeza, cianosis de la piel no cubierta de plumas y diarrea.

a. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena

tienen un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1.2 en pollos de 6 semanas de edad, o causan una mortalidad del 75% por lo menos de los pollos de 4 a 8 semanas de edad infectados por vía intravenosa. Los virus H5 y H7 que no tienen un índice de patogenicidad intravenosa superior a 1.2, o que causan una mortalidad inferior al 75% en una prueba de capacidad letal intravenosa deben ser secuenciados para determinar si en el sitio de división de la molécula de hemaglutinina (HA0) se hallan presentes múltiples aminoácidos básicos. Si la secuencia de aminoácidos es la misma que la observada en otros virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena aislados anteriormente, se considerará que se trata de virus de influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena

b. Los virus de la influenza aviar de declaración obligatoria levemente patógena son

todos los virus de influenza de tipo A pertenecientes a los subtipos H5 y H7 que no son virus de la influenza aviar de declaración obligatoria altamente patógena.

Las aves de corral son «todas las aves domesticadas, incluidas las de “traspatio”, que se utilizan para la producción de carne y huevos destinados al consumo, la producción de otros productos comerciales, la repoblación de aves de caza o la reproducción de todas estas categorías de aves, así como los gallos de pelea, independientemente de los fines para los que se utilicen».

Las aves mantenidas en cautividad por motivos distintos de los enumerados en el párrafo anterior, por ejemplo las aves destinadas a espectáculos, carreras, exposiciones, concursos o a la reproducción o la venta de todas estas categorías de aves, así como las aves de compañía, no se considera que sean aves de corral







Revisión: 00

Página: 5 de 65

Enfermedad de Newcastle - EN

La variación enorme en la virulencia y en los signos clínicos implica la necesidad de definir cuidadosamente lo que constituye la EN para los propósitos del comercio, políticas y medidas de control. Las cepas del virus de la EN se agrupan en cinco patotipos sobre la base de los signos clínicos observados en los pollos infectados. Estos son: 1. Velogénico viscerotrópico: es muy patogénica en la que se observan frecuentemente lesiones intestinales hemorrágicas; 2. Velogénico neurotrópico: se presenta con mortalidad elevada, habitualmente seguida de signos respiratorios y nerviosos; 3. Mesogénico: se presenta con signos respiratorios y signos nerviosos ocasionales pero baja mortalidad; 4. Lentogénico o respiratorio: se presenta con una infección respiratoria leve o subclínica; 5. Entérico asintomático: normalmente consiste en una infección entérica subclínica. Para la OIE, la enfermedad de Newcastle se define como una infección de aves causada por un virus del serotipo 1 del paramixovirus aviar (APMV-1) que cumple uno de los criterios siguientes de virulencia: a. El virus tiene un índice de patogenicidad intracerebral (IPIC) en polluelos de un

día (Gallus gallus) de 0,7 o superior.

b. Se han demostrado en el virus múltiples aminoácidos básicos (o directamente o por deducción) en el extremo C-terminal de la proteina F2 y un residuo de fenilalanina en la posición 117, la cual está en el extremo N-terminal de la proteina F1. El término “múltiples aminoácidos básicos” se refiere a que existen al menos tres residuos de arginina o lisina entre las posiciones 113 y 116. La imposibilidad de demostrar el modelo característico de residuos de aminoácidos como se ha descrito anteriormente requeriría la caracterización del virus aislado mediante una prueba de IPIC.

Laringotraqueitis

La laringotraqueitis infecciosa aviar (LTI) es una enfermedad respiratoria causada por el herpesvirus tipo 1 de las gallináceas, perteneciente a la familia Herpesviridae. Es, sobre todo, una enfermedad de los pollos, aunque también puede afectar a los faisanes, a las perdices y a los pavos.







Revisión: 00

Página: 6 de 65

Los signos clínicos y las reacciones patológicas pueden variar desde una gravedad extrema, con muertes de aves por asfixia, hasta una muy leve, no diferenciable de otras enfermedades respiratorias leves de los pollos. La lesión más importante es la traqueitis. El diagnóstico de laboratorio depende del aislamiento del virus, de la demostración de la presencia del virus o de antígenos víricos y de la detección de anticuerpos específicos en el suero. Puede ser valioso el examen histopatológico de la traquea para inclusiones intranucleares características.

Salmonelosis (S. pullorum, S. gallinarum, S. enteritidis)

La pulorosis de los pollos está causada por una Salmonella entérica subspecie entérica serovariedad Pullorum (Salmonella Pullorum)1 y, en su forma aguda, es una enfermedad septicémica prácticamente exclusiva de los polluelos. Sin embargo, el organismo también se puede asociar con la enfermedad en pavipollos. La transmisión ovárica es la ruta principal de propagación de este organismo. Las aves de caza y las de corrales particulares pueden actuar como reservorios de la infección mientras que las aves silvestres pueden funcionar como vectores del organismo y, como tales, son importantes en la epidemiología de la enfermedad. La tifosis aviar en pollos y pavos está causada por S. Gallinarum y se observa con mayor frecuencia en el final del período de crecimiento y en los grupos de aves adultas. Los signos clínicos en polluelos y pavos jóvenes comprenden anorexia, diarrea, deshidratación, debilidad y muerte. En las aves adultas la enfermedad es menos severa, pero puede tener lugar una producción reducida de huevos, una eclosión escasa y algún incremento en la mortalidad. El serovar Enteritidis (así como otras serovariedades de Salmonella spp.) produce un escaso número de bajas en las granjas y la gran mayoría de animales infectados carecen de sintomatología por lo que aparentemente están sanos. El principal problema es que al localizarse en el tracto digestivo de las aves, es fácilmente transmisible a través de las heces a otros animales y a sus producciones (carne y huevos) y, a través de estas, llegar a al ser humano donde, bajo determinadas circunstancias, es capaz de producir enfermedad.

Micoplasmosis (M. gallisepticum, M. synoviae)

La micoplasmosis aviar está causada por varios micoplasmas patógenos de los cuales Mycoplasma gallisepticum (MG) es el más importante y el único que ocasiona una enfermedad de declaración obligatoria según la OIE. Las infecciones por Mycoplasma constituyen uno de los procesos infecciosos más severos en la industria avícola mundial. En la actualidad, se reconocen 20 especies de Micoplasma aviares (Márquez, 1995), destacando las especies M. gallisepticum y







Revisión: 00

Página: 7 de 65

M. synoviae, por su mayor importancia económica para la producción avícola en general. Mycoplasma gallisepticum es la causa de una enfermedad respiratoria crónica, especialmente cuando concurre un trato estresante y/o la presencia de otros patógenos respiratorios. La enfermedad se caracteriza por coriza, conjuntivitis, estornudos y sinusitis, particularmente en pavos y aves de caza. Puede originar pérdida de producción y disminución en las aves para carne y en la pérdida de la producción de huevos. Las cepas de MG varían en infectividad y virulencia, y las infecciones pueden ser a veces asintomáticas. El mayor impacto económico de la infección por Mycoplasma synoviae (MS) está referido a gallinas reproductoras y de postura comercial (Ewing et al., 1996; Kleven, 1995). Efectos tales como la disminución marcada de peso y postura, así como la reducción del porcentaje de incubabilidad, aumento de mortalidad embrionaria o la disminución del peso de los pollitos al nacimiento han sido manifestaciones atribuidas a este agente etiológico (Rodríguez-Frías, 1996). La infección por MS tiende a ser muy variable (Kleven, 1990). Este microorganismo puede ingresar vía aerógena y colonizar el tracto respiratorio superior ocasionando dos tipos de manifestaciones infecciosas: sinovitis, por infección vía sanguínea o aerosaculitis, causada como producto de una infección respiratoria crónica. Merece destacar la habilidad de este microorganismo para ser transmitido por vía horizontal y transovárica (Kleven, 1995); sin embargo, se desconocen los patrones de transmisión por el huevo e incluso no se tiene en claro los porcentajes de verticalidad.

6.2. Poblaciones expuestas

Aves: Aves criadas en la industria avícola, crianza de traspatio, aves de riña y aves silvestres (cautiverio y libres - migratorias).

Establecimientos avícolas: Dentro de este concepto se encuentran las granjas avícolas, plantas de incubación, centros de acopio, centros de faenamiento.

6.3. Factores de riesgo existentes

Variables de consideración básica • Granjas tecnificadas: Las granjas tecnificadas son el soporte de la industria

avícola por tanto la población más importante y susceptible (económicamente) a proteger, su movimiento registra entrada de pollos BB de carne, postura o reproducción, y salida de huevos comerciales o para incubación, o aves para beneficio, la aplicación de medidas de bioseguridad esta muy difundida aunque en diferentes escalas. De acuerdo al nivel de bioseguridad las poblaciones más expuestas son las aves de postura comercial por la crianza multiedad que se practica en el país.

• Plantas de Incubación: Constituye un punto obligado de nexo mayormente entre una granja de reproductores que provee de huevos embrionados y otra granja de aves comerciales para huevo o carne que recibe pollos BB, puede darse el caso







Revisión: 00

Página: 8 de 65

en menor escala entre reproductores abuelas y reproductoras padres. Las medidas de bioseguridad están muy difundidas.

• Centros de Faenamiento de Aves a gran escala: Establecimiento al que llegan aves vivas para ser faenadas y destinadas al consumo, el movimiento es de ingreso solamente, aunque las unidades móviles que ingresan provienen de granjas y luego van hacia ellas. Las medidas de bioseguridad son compartidas entre el centro de faenamiento y la granja proveedora, cuando se trata del sistema vertical.

• Centros de Acopio de aves: Son una de las variantes de comercialización de aves; genera movimiento de grandes poblaciones de aves a través del ingreso de estas, de diferentes procedencias, y salida de las mismas, vivas, generalmente con destino de los mercados de expendio de pollo fresco que es el más arraigado en el consumo popular. Las medidas de bioseguridad aún están en proceso de difusión y generalización.

• Centros de faenamiento en pequeña escala: Mayormente ingresan aves en pequeñas cantidades, provienen de los centros de acopio y las aves faenadas son para expendio directo al público consumidor o distribución de impacto urbano localizado. No hay bioseguridad. Distribuidos en todo el país.

• Coliseos de Gallos: Centro de reunión obligada de los criadores de aves de combate, ingresan aves para su concurso, generalmente en gallos de navaja el 50% o más de las aves mueren, en gallos de pico puede ser menos el porcentaje; sin embargo hay una fuerte interrelación entre criadores y acarreo de agentes patógenos, pobre bioseguridad, riesgo mayor en los que se celebran peleas de pico que en los de navaja

• Criadores de aves de combate: Distribuidos en todo el país, de poco conocimiento de bases sanitarias y control de enfermedades de aves, de todos los niveles socioeconómico, constituyen una realidad atada a la tradición de la casta gallera, generalmente existe menor cultura sanitaria entre los de pico; dependiendo del interés de los premios y posibilidades de inscripción se presentan a los diferentes eventos gallísticos que se celebran en los coliseos de gallos, suelen realizar encuentros domésticos con motivo de fiestas familiares y de otro tipo. Las medidas de bioseguridad son muy variables, constituyendo en la mayoría de los casos, poblaciones de alto riesgo.

• Criadores de aves de traspatio: Distribuidos igualmente en todos los ámbitos del país. La crianza de aves de traspatio se caracteriza por responder a necesidades de autosostenimiento (constituyendo una fuente de alimentación y eventualmente de dinero por su venta), ocupación laboral, etc. Las medidas de bioseguridad no se aplican en estas poblaciones. Las buenas prácticas de crianza son promovidas a través de actividades de capacitación (Ver afiche de buenas prácticas: Anexo 1)

• Lugares de estancia de aves migratorias: Centros naturales de reunión de aves migratorias de diferentes orígenes algunos intercontinentales, hay pobre información, por antecedentes de trabajos en el mundo científico se sabe que pueden guarecer aves portadoras de influenza aviar, las cuales son asintomáticas.

• Zoocriaderos: Instalaciones para el mantenimiento en cautividad de especimenes de fauna silvestre, para su reproducción y producción de servicios. Las medidas de bioseguridad son variables.







Revisión: 00

Página: 9 de 65

6.4. Vigilancia clínica:

Se realiza en todas las poblaciones expuestas. La frecuencia de visitas puede variar en función al riesgo de presentación de enfermedad en estas poblaciones, las que son establecidas por la SARVE y el PRONASA.

6.4.1. Para granjas de aves (reproductoras, postura comercial o broilers) o Planta de Incubación:

a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva (D.E.), basado en información del SIGSA, elabora un cronograma de visitas para la inspección de las granjas o planta de incubación activos (inspección basada en el cumplimiento del RSSA, que incluye: evaluación de bioseguridad del establecimiento y de la condición sanitaria de las aves), con una frecuencia SEMESTRAL.

b) Previamente coordina con las empresas avícolas, a fin de asegurar que durante la inspección la granja se encuentre cargada con aves y se respete el periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre establecimientos de diferentes productores; en caso de establecimientos de un mismo productor puede ser menor dependiendo del sistema de crianza y riesgo epidemiológico.

c) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidos el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.

d) El Especialista de sanidad animal, cada inicio de mes enviará el bloque de las visitas del mes, a las empresas vía correo electrónico o coordinará telefónicamente.

e) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.

f) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).

g) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en la granja aplicando el acta de inspección REG-SARVE-10 en caso que la inspección sea a una granja avícola o REG-SARVE-11 en caso la inspección sea a una planta de incubación.

h) La inspección inicia con la verificación de los registros de los parámetros de producción de los lotes correspondientes a las semanas anteriores hasta la fecha de inspección, los hallazgos relevantes compatibles con procesos de mortalidad o morbilidad, baja de postura, baja de consumo de alimento, disminución de la tasa de crecimiento, etc. son anotados en el acta de inspección, caso contrario no se indica.

i) Luego, se realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, respetando las edades de carga (de menor a mayor) en una selección al azar o dirigida en caso se haya detectado alguna irregularidad en los parámetros de producción.

j) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.







Revisión: 00

Página: 10 de 65

k) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y la granja avícola no se

encuentra en la lista seleccionada para Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable de la granja avícola o planta de incubación.

l) Si la granja se encuentra en la lista seleccionada para Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.1.

m) La información obtenida es ingresada al SIGSA según instructivo (Anexo 4). n) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida la

información.

6.4.2. Para Centros de Acopio o de Faenamiento de Aves:

a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, basado en información del SIGSA, elabora un cronograma de visitas para la inspección a Centros de Acopio o Faenamiento (inspección basada en el cumplimiento del RSSA, que incluye: evaluación de condiciones mínimas del establecimiento, buenas prácticas de faenamiento y estado sanitario de las aves durante la comercialización o el faenado), con una frecuencia TRIMESTRAL.

b) Este cronograma de visitas es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de establecimientos operativos. Información que guarda relación con el SIGSA.

c) El Especialista de sanidad animal coordina con el responsable del establecimiento avícola la visita al establecimiento.

d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.

e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2)

f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el establecimiento avícola aplicando el acta de inspección REG-SARVE-12 en caso que la inspección sea a un centro de faenamiento o REG-SARVE-13 en caso la inspección sea a un centro de acopio.

g) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.

h) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y la granja de procedencia no se encuentra en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable del establecimiento.

i) Si la granja de procedencia de las aves, se encuentra en la lista dentro del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.1.

j) La información colectada es ingresada al SIGSA según instructivo (Anexo 5). k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida la

información.







Revisión: 00

Página: 11 de 65

6.4.3. Para Aves de Riña o Traspatio:

a) La inspección sanitaria es un requisito previo a la vacunación de las aves. b) Si la Dirección Ejecutiva tiene establecido realizar campaña de vacunación oficial

contra Newcastle (traspatio y combate): i) El especialista de sanidad animal deberá realizar un cronograma de

seguimiento de las inspecciones realizadas por los vacunadores antes y después de la vacunación.

ii) Este cronograma de supervisiones es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA).

c) Si la Dirección Ejecutiva no tiene establecido realizar campaña de vacunación oficial, la vigilancia clínica de las poblaciones avícolas de traspatio y riña, se hará siguiendo el esquema de muestreo ANUAL realizado para la vigilancia serológica.

d) En ambas situaciones, el Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.


f) El Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el predio de traspatio o combate aplicando el formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).

g) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.

h) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y el predio de traspatio o combate no se encuentra seleccionada en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14 Registro de Vigilancia Activa) y entrega una copia al propietario de las aves.

i) Si el predio de traspatio o combate se encuentra seleccionado en la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.2.

j) La información colectada es ingresada al SIGSA (Ver anexo, 5). k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien así valida y

da conformidad a la información cargada.

6.4.4. Para Zoocriaderos:

a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en estos establecimientos, sobre la base de datos de los empadronamientos realizados, con una frecuencia ANUAL. El mismo que debe coincidir con el cronograma de monitoreos (Vigilancia Serológica y Virológica). Considerar un periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre estos establecimientos.


c) El Especialista de sanidad animal coordina con el propietario del zoocriadero la visita al establecimiento.







Revisión: 00

Página: 12 de 65

d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión

asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.


f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el zoocriadero aplicando el formato de Vigilancia Activa (REG-SARVE-14 Registro de Vigilancia Activa).

g) Realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, respetando las edades de las aves (de menor a mayor).

h) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (Anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.

i) Si las aves se encuentran aparentemente sanas y el zoocriadero no se encuentra seleccionado en la lista de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección y entrega una copia al responsable del zoocriadero.

j) Si el zoocriadero se encuentra dentro de la lista del diseño de Vigilancia Serológica o Virológica, el especialista sigue lo indicado en el item 6.8.4.

k) La información obtenida es ingresada al SIGSA (Ver anexo 5). l) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien así valida y

da conformidad a la información cargada.

6.4.5. Para Coliseos de Gallos:

a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en estos establecimientos durante los principales eventos o reuniones gallísticas (asegurar estar presentes en momentos con mayor volumen de afluencia de aves, importante coliseos con mayor cobertura geográfica del evento, etc), sobre la base de datos de los empadronamientos realizados, con una frecuencia ANUAL.


c) El Especialista de sanidad animal coordina con el propietario del coliseo de gallos o asentista responsable del evento gallístico, la visita al establecimiento.

d) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan los medios de comunicación necesarios (teléfono fijo, celular, nextel, fax, etc.) para que el especialista de sanidad animal realice las coordinaciones e inspección. Asimismo y de ser el caso se otorgan los viáticos y movilidad según corresponda.

e) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).

f) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal realiza la inspección en el coliseo de gallos aplicando el acta de inspección REG-SCEE/PRONASA-18 (Acta de Inspección de Requisitos mínimos para realización de eventos gallísticos).







Revisión: 00

Página: 13 de 65

g) Realiza la inspección ocular del estado sanitario de las aves, antes del inicio de

las peleas. h) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad

notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.

i) Si las aves se encuentran aparentemente sanas, el especialista de sanidad animal, llena el acta de inspección REG-SCEE/PRONASA-18 y entrega una copia al responsable del evento gallístico o al propietario del coliseo de gallos.

j) La información obtenida es ingresada al SIGSA. k) Por último la información es cerrada en el sistema por el JASA, quien valida y da

conformidad a la información cargada.

6.4.6. Para Perihumedales:

a) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, durante la elaboración de su cronograma de visitas para la inspección de la condición sanitaria de las aves en crianzas de aves de traspatio y de riña, incluye a los perihumedales como zonas de vigilancia de aves centinelas (domésticas en zona de exposición o riesgo) y aves silvestres residentes y migratorias.

b) La vigilancia de las aves silvestres en el perihumedal consistirá en la verificación de mortalidad anormal de estas poblaciones en épocas del año donde se realiza la migración, esto es entre los meses de: Octubre a Marzo.

c) Los humedales donde se realzará la vigilancia, son los considerados en el diseño de vigilancia serológica. (ver anexo 7)

d) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 2).

e) El especialista de sanidad animal realiza la inspección en el perihumedal, e indaga sobre anormalidades observadas en estas poblaciones, a los pobladores de estos humedales.

f) Si durante la inspección detecta aves enfermas, con sospecha de enfermedad notificable (ver anexo 3), deberá atender la inspección como una actividad de Vigilancia Pasiva.

6.5. Vigilancia Serológica:

a) Las aves de granjas de Engorde o Broilers son muestreadas para colección de sangre y obtención de SUERO con el propósito de evaluar la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar (ELISA), mientras que para el caso de Reproductoras y Ponedoras Comerciales se evalúa la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar (ELISA) y Mycoplasma (gallisepticum y sinoviae) (ELISA).

b) Las aves de las crianzas de traspatio, traspatio perihumedal y combate, son muestreadas para colección de sangre y obtención de SUERO con el propósito de evaluar la presencia de anticuerpos contra el virus de Influenza Aviar. Se utilizan las siguientes pruebas:







Revisión: 00

Página: 14 de 65

Enfermedad Prueba a Realizar

Influenza Aviar ELISA (*)

Mycoplasmosis ELISA

(*) Confirmación con Inmunodifusión en gel de agar

6.6. Vigilancia Virológica o de Identificación de Agente:

En las aves de granjas tecnificadas (reproductoras, postura comercial y broilers o engorde), de combate, de traspatio, de traspatio que se encuentren cercanas al perihumedal y aves de zoocriaderos, se colectará muestras para identificación viral (del virus de Newcastle, Influenza Aviar y Laringotraqueitis) empleando la técnica de PCR. Para el caso específico de Granjas de Reproductores y Ponedoras comerciales, se colectarán, además, hisopos de arrastre de los galpones, para la identificación de Salmonella. Se aplicarán las siguientes técnicas:

Enfermedad Técnica a Realizar

Influenza Aviar PCR

Newcastle PCR

Laringotraqueitis PCR

Salmonellosis Cultivo e Identificación de Salmonella

6.7. Diseño muestral:

6.7.1. Poblaciones a muestrear:

Considerando los objetivos de medición se realizarán muestreos en:

a. Aves de crianza tecnificada b. Aves de crianza familiar en traspatio c. Aves de crianza familiar perihumedal. d. Aves de combate e. Aves silvestres en cautiverio (zoocriaderos)







Revisión: 00

Página: 15 de 65

6.7.2. Ámbito del muestreo:

Se realizará en todos los departamentos del Perú distribuidos en las áreas de influencia de las Direcciones Ejecutivas del SENASA.

6.7.3. Tamaño de muestra

La fórmula para determinar el tamaño de muestra es la siguiente (Cannon y Roe, 1982)

Donde:

n = Tamaño de la muestra requerida N = Tamaño de la población d = Número de animales enfermos en la población (para la prevalencia propuesta en %) NC = Nivel de confianza (95%)

6.8. DESCRIPCIÓN:

6.8.1. Para granjas de aves (reproductoras, ponedoras o broilers):

a) Se realiza SEMESTRALMENTE durante los meses de Mayo a Junio y Octubre a

Noviembre. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un

cronograma de muestreos en las granjas o planta de incubación. Previa coordinación con las empresas avícolas, a fin que durante el muestreo la granja se encuentra cargada con aves y se respete el periodo de cuarentena de 48 hrs. mínimo, entre establecimientos de diferentes productores.

c) Para elaborar la lista de las granjas seleccionadas al azar, se emplea la información de los registros del SIGSA. Filtrar la información que corresponda sólo a explotaciones comerciales.

d) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:

Tipo de Explotación Edad de muestreo Broilers Edad de venta (35-45

dias) Postura Comercial Mayores de 18 sem Reproductoras Mayores de 18 sem.

n = [1- (1 – NC)1/d] x [N – (d-1)] 2







Revisión: 00

Página: 16 de 65

e) Este cronograma será diseñado de tal manera que coincida con el cronograma de

vigilancia clínica, sólo para aquellos establecimientos donde se hagan ambas actividades (vigilancia clínica y serológica).

f) El Especialista de sanidad animal coordina con la empresa avícola el muestreo en el establecimiento.

g) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Anexo 6)

h) Para granjas de Broilers el muestreo se hará en los Centros de Faenamiento, debiendo para ello coordinar con el productor o responsable de la granja avícola la fecha y lugar donde se faenen las aves.

i) En la fecha acordada, el Especialista de sanidad animal acude a la granja de Reproductoras y Ponedoras o centro de faenamiento (para el caso de Broilers) para realizar la toma de muestras.

j) El número de muestras a colectar por tipo de establecimiento es el que se indica en la Tabla Nº 1.

k) De cada granja se toma muestras de sangre de 33 aves para obtención de suero. l) El total de sueros serán remitidos al laboratorio de Patología Aviar, generando

solicitud de diagnóstico en el SIGSA, de sólo 30 de ellos, a fin de que si alguno llega en cantidad insuficiente o en mal estado pueda ser reemplazado por los otros 3 (Prevalencia intragranja: 10% NC: 95%).

m) Las muestras de sangre se toman del tercer galpón de la granja. n) En caso la granja tenga menos de tres galpones, toma 16 aves de cada galpón

(16 x 2= 32 muestras) o las 33 del único galpón. o) Si alguna de las granjas tiene una población extremadamente superior al

promedio excluyéndola (ejemplo: 5 a 10 veces o más de la población promedio) ameritará realizar un muestreo específico de 150 aves, distribuidas en 5 galpones a razón de 30 aves por galpón, los galpones se pueden escoger también de módulos o grupos de galpones, los galpones se elegirán de manera sistemática es decir dividiendo el número total de galpones entre 5, la cifra obtenida será el intervalo entre el cual se elige un galpón a muestrear.

p) La toma de muestra de sangre se realizaran siguiendo lo indicado en el procedimiento de toma y envío de muestras. (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).

q) Las pruebas diagnósticas a solicitar son las que se indican en el Anexo 8. r) La vigilancia virológica consiste en la colecta de hisopos de mucosa traqueal,

para identificación viral por PCR (Influenza Aviar, Newcastle, Laringotraqueitis).

s) De cada granja se colecta 5 hisopados, los cuales son conservados en un tubo con medio de transporte viral, formando un pool.

t) La toma de muestra virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).

u) Para la vigilancia de Salmonella, se colecta 4 hisopados de arrastre: 1 pool de 2 hisopos, en 2 galpones, siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras de hisopados de arrastre (Anexo 7)







Revisión: 00

Página: 17 de 65

Nro de Granjas Sueros*

Pool de Hisopos Traqueales (5 hisopos x pool)**



Pool de Hisopos de arrastre (2 hisopos x pool)***



Pool de Hisopos de arrastre (2 hisopos x pool)***

total granjas

Total aves (suero)*

Total pools de hisopos traqueales **

Total de pools de Hisopos de Arrastre

Lima Callao 81 2673 81 10 330 10 20 20 660 20 40 111 3663 111 60La Libertad 26 858 26 13 429 13 26 28 924 28 56 67 2211 67 82Ica 17 561 17 5 165 5 10 24 792 24 48 46 1518 46 58Tacna 24 792 24 1 33 1 2 9 297 9 18 34 1122 34 20Arequipa 15 495 15 2 66 2 4 4 132 4 8 21 693 21 12Loreto 7 231 7 0 0 0 0 2 66 2 4 9 297 9 4Lambayeque 2 66 2 1 33 1 2 3 99 3 6 6 198 6 8San Martín 2 66 2 1 33 1 2 3 99 3 6 6 198 6 8Madre de Dios 3 99 3 1 33 1 2 1 33 1 2 5 165 5 4Ancash 2 66 2 1 33 1 2 0 0 0 0 3 99 3 2Piura 2 66 2 0 0 0 0 1 33 1 2 3 99 3 2Puno 0 0 0 2 66 2 4 1 33 1 2 3 99 3 6Junín 1 33 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 33 1 0Cusco 0 0 0 1 33 1 2 0 0 0 0 1 33 1 2Cajamarca 0 0 0 0 0 0 0 1 33 1 2 1 33 1 2TOTAL 182 6006 182 38 1254 38 76 97 3201 97 194 317 10461 317 270

*** para aislamiento e identificación de Salmonella, sólo para Reproductoras y Ponedoras Comerciales, por SEMESTRE.

Muestreo Granjas Tecnificadas

* para pruebas de ELISA (Influenza Aviar y Micoplasma), por SEMESTRE

** para aislamiento viral DE IA, ENC y LT, por SEMESTRE

Broiler Reproductoras Ponedoras TOTAL

Tabla Nº 1







Revisión: 00

Página: 18 de 65

v) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar

análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).

w) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.

x) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos

georeferenciales. ii. Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves,

Tipo de Crianza. iii. Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS

ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, Laringotraqueitis, Salmonellas y Micoplasmas)

y) Cada tipo de muestras (sueros, hisopos de mucosa traqueal e hisopo de arrastre)

es ingresada en fichas diferentes, para ello generada una ficha, debe copiar la ficha y sólo cambiar el tipo de muestras a ingresar. Ver instructivo Anexo 5.

z) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.

aa) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas en refrigeración, al laboratorio de sanidad animal, en el plazo que se indica a continuación:

Tipo de muestra Tiempo máximo de remisión de muestra (*)

Suero sanguíneo refrigerado 1 semana Suero sanguíneo congelado Hasta 1 mes

Hisopo en medio de transporte viral 36 horas Hisopo de arrastre en medio Cary

Blair 5 días

(*) Considerar el tiempo desde la toma de muestra hasta el INGRESO a la UCDSA. bb) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega

informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. cc) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, estos serán entregados a los

propietarios de las aves.

6.8.2. Para aves de combate y traspatio:

a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Mayo a Junio. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un

cronograma de muestreos en estas crianzas. c) Para elaborar la lista de crianzas de traspatio y combate seleccionadas al azar, se

emplea la información de los registros del SIGSA de las campañas de vacunación. d) Para aquellas direcciones donde no se realice campaña de vacunación oficial, la

información se elabora en base a la información del censo agropecuario o por el histórico en la región, priorizándose los distritos por:







Revisión: 00

Página: 19 de 65

a. Población de aves que exista en los distritos o provincias. b. Presencia de granjas tecnificadas de aves. c. Coliseos de gallos. d. El histórico de ocurrencias de enfermedades en aves.

e) La cantidad de aves de riña y traspatio a muestrear por departamento se distribuirá por predio y por distrito, dando preferencia a los distritos que presenten granjas tecnificadas de aves.

f) En caso de departamentos que no presenten granjas tecnificadas, dar preferencia a los distritos con presencia de coliseos de gallos o al histórico de ocurrencias de enfermedades en aves.

g) La cantidad de aves a muestrear por distrito, se obtendrá de la siguiente operación:

a. Seleccionar los distritos con granjas, coliseos de gallos y/o con historial de ocurrencia de enfermedades en aves.

b. Dividir el total de predios asignado a su departamento, entre el número de distritos que cuenta con granjas, coliseos de gallos y/o historial de ocurrencia de enfermedades de aves; la cifra obtenida corresponde a la cantidad de predios a visitar por distrito seleccionado.

c. Aplicar redondeo simple excepto en caso que el valor sea 0, donde se redondeará hacia 1 es decir muestrear al menos en una casa. Ejemplo:

Región X: Cuenta con 25 distritos en total, de los cuales sólo en 13 distritos existen

granjas, coliseos de gallos o tiene historial de ocurrencia de enfermedades en aves, o ambos.

Número de predios asignados de acuerdo al diseño muestral: 10

Cálculo:

d. Redondeando se obtiene un predio por distrito, por lo tanto se muestrea en 13 predios distribuidos en 13 distritos a razón de un predio por distrito.

h) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:

Tipo de Explotación Edad de muestreo Aves de combate (♀ o ♂)

Mayores de 8 meses

Crianzas de traspatio Pollos Mayores de 8 semanas Gallinas Mayores de 12 semanas

10 ------ = 0.769 13







Revisión: 00

Página: 20 de 65

i) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal

(JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos seleccionados para el muestreo.

j) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.

k) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Ver anexo 6).

l) El número de muestras a colectar es el que se indica en la Tabla 2.

Región predios

aves* (13 aves x predio)

Pool de hisopos (5 hisopos por pool)** predios

aves* (13 aves x predio)

Pool de hisopos (5 hisopos por pool)**

Lima Callao 48 624 48 9 117 9La Libertad 29 377 29 0 0 0Ica 19 247 19 0 0 0Tacna 10 130 10 5 65 5Arequipa 10 130 10 0 0 0Loreto 10 130 10 0 0 0Lambayeque 10 130 10 1 13 1San Martín 10 130 10 10 130 10Madre de Dios 10 130 10 10 130 10Ancash 10 130 10 10 130 10Piura 10 130 10 10 130 10Puno 10 130 10 0 0 0Junín 10 130 10 10 130 10Cusco 10 130 10 10 130 10Cajamarca 10 130 10 5 65 5Tumbes 10 130 10 10 130 10Amazonas 10 130 10 10 130 10Huanuco 10 130 10 10 130 10Pasco 10 130 10 10 130 10Huancavelica 10 130 10 10 130 10Ayacucho 10 130 10 10 130 10Apurimac 10 130 10 10 130 10Moquegua 10 130 10 10 130 10Ucayali 10 130 10 10 130 10

306 3978 306 170 2210 170* para pruebas de ELISA (IA)

** para aislamiento viral o PCR (ENC, IA, LT)

Muestreo aves de riña y traspatioriña traspatio

Tabla Nº 2

m) De cada predio o propietario se colecta 13 muestras de sangre (Prevalencia intradomiciliaria: 20%, NC: 95%) para identificación de anticuerpos (ELISA) contra Influenza Aviar y 5 hisopos, los cuales son conservados en un medio de







Revisión: 00

Página: 21 de 65

transporte viral, formando un pool, para identificación viral mediante PCR para Newcastle , Influenza Aviar y Laringotraqueitis.

n) La toma de muestra serológica y virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7).

o) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar análisis de los resultados obtenidos, empleando formato de vigilancia activa (REG-SARVE-14).

p) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.

q) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente:

i) Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos georeferenciales.

ii) Datos prediales: Nombre del Productor o propietario de las aves, Tipo de Crianza.

iii) Historia Clínica: Sintomatología, Vacunación (CONSIDERAR LAS ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)

r) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.

s) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al laboratorio de sanidad animal.

t) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05.

u) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán entregados al propietario de las aves.

6.8.3. Para aves de traspatio perihumedal:

a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Abril a Mayo. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un

cronograma de muestreos en estas crianzas. c) Para elaborar la lista de crianzas de traspatio perihumedal, seleccionadas al azar,

se emplea la información de los registros del SIGSA de las campañas de vacunación. En aquellas regiones donde no se realiza campaña de vacunación, se empleará la información de los anteriores monitoreos.

d) Los humedales que serán vigilados de manera indirecta, son los que se encuentran en el anexo 9.

e) Las aves a muestrear alrededor de cada humedal corresponde a 63 aves por villa ubicada en la periferia del humedal, para detectar anticuerpos contra Influenza Aviar (ELISA) y Newcastle (HI)

f) De estas aves se colecta muestras de sangre para obtención de suero (Prevalencia: 5%, NC: 95%); escoger 7 aves por vivienda, muestrear en 9 viviendas seleccionadas con preferencia a las que se encuentren más cercanas a la orilla.

g) Las aves de traspatio ubicadas alrededor de los humedales, también están sujetas a vigilancia virológica y se realizan hisopados traqueales, para







Revisión: 00

Página: 22 de 65

identificación viral por PCR del virus de Newcastle, Influenza Aviar y Laringotraqueitis.

h) Se colecta 5 hisopos traqueales del primer predio a visitar por Villa Perihumedal, formando 1 pool por Villa.

i) En aquellos predios donde existan más de una especie de aves, seleccionar a la especie que se encuentre en mayor porcentaje, dándole mayor importancia a las especies que son mas susceptibles a la Influenza Aviar, siendo el siguiente el orden: pollos, gallinas, gallos, pavos.

j) La edad del ave para el muestreo será el siguiente:

Tipo de Explotación Edad de muestreo Crianzas de traspatio Pollos Mayores de 8 semanas Gallinas Mayores de 12 semanas

k) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal

(JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos seleccionados para el muestreo.

l) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.

m) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad. (Ver anexo 6).

n) El número de muestras a colectar es el que se indica en la tabla Nº 3. o) La toma de muestra serológica y virológica se realizará siguiendo lo indicado en el

instructivo de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 7). p) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar


q) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.

r) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos



ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)

s) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la

conformidad a la información y CIERRA la ficha. t) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al

laboratorio de sanidad animal. u) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega

informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. v) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán

entregados al propietario de las aves.







Revisión: 00

Página: 23 de 65

traspatio perihumedal

Regió

n

Muestreo Aves de Traspatio perihumedal

humedales aves*grupos 5 hisopos**

Lima Callao 8 504 8La Libertad 13 819 13Ica 14 882 14Tacna 1 63 1Arequipa 10 630 10Loreto 3 189 3Lambayeque 1 63 1San Martín 0 0 0Madre de Dios 0 0 0Ancash 0 0 0Piura 0 0 0Puno 8 504 8Junín 0 0 0Cusco 0 0 0Cajamarca 1 63 1Tumbes 0 0 0Amazonas 0 0 0Huanuco 0 0 0Pasco 0 0 0Huancavelica 0 0 0Ayacucho 0 0 0Apurimac 0 0 0Moquegua 0 0 0Ucayali 0 0 0

59 3717 59

traspatio perihumedal

Regió

n

** para aislamiento viral o PCR (ENC, IA, LT)

* para pruebas de ELISA (IA)

Tabla Nº 3

6.8.4. Para aves de zoocriaderos:

a) Se realiza ANUALMENTE durante los meses de Abril a Mayo. b) El especialista de sanidad animal de la Dirección Ejecutiva, elabora un

cronograma de muestreos en estas crianzas. c) El muestreo en estas poblaciones se hará en el total de zoocriaderos según

información en Anexo 10. d) El número de muestras a colectar en cada zoocriadero, es de 5 hisopos

traqueales, formando un pool por zoocriadero. e) Si las aves son muy pequeñas, colectar como mínimo, 5 gramos de muestras de

heces frescas de la jaula. La colecta de heces debe hacerse en las primeras horas de la mañana y serán conservadas en el medio de transporte viral.







Revisión: 00

Página: 24 de 65

f) Previamente coordinar con el propietario a fin de que en las primeras horas de la

mañana, coloque en la base de la jaula papel kraft o papel aluminio, a fin de recolectar las heces más frescas.

g) La vigilancia virológica se realizará para la identificación por PCR del virus de Newcastle e Influenza Aviar.

h) El cronograma de muestreos es remitido al Jefe de Área de Sanidad Animal (JASA), quien verifica que estén incluidas el 100 % de los establecimientos.

i) El Jefe de Área de Sanidad Animal en coordinación con el Jefe de Gestión asignan, de ser el caso, los viáticos y movilidad según corresponda.

j) El especialista de sanidad animal, acude a la inspección con los materiales necesarios para realizar su actividad (Ver anexo 7).

k) El número de muestras a colectar es el que se indica:

** para aislamiento viral o PCR (ENC e IA)

l) La toma de muestra virológica se realizará siguiendo lo indicado en el instructivo

de toma y envío de muestras (PRO-UCDSA-06 y Anexo 8). m) El especialista de sanidad animal, recava la información necesaria para realizar


n) La información recavada, es ingresada al SIGSA, en VIGILANCIA ACTIVA, en el motivo: MUESTREO PRONASA.

o) La información considerada como condicional para el cierre es la siguiente: i. Ubicación Geográfica: Departamento, Provincia, Distrito y datos



ENFERMEDADES A MONITOREAR: Newcastle, y Laringotraqueitis)

p) Una vez generada la solicitud de diagnóstico en el SIGSA, el JASA da la conformidad a la información y CIERRA la ficha.

q) Las muestras se envían debidamente rotuladas, empacadas y conservadas, al laboratorio de sanidad animal.

prediosgrupos 5 hisopos**

Lima Callao 11 11La Libertad 1 1Ica 2 2Tacna 1 1Arequipa 5 5Lambayeque 2 2Cajamarca 2 2Amazonas 1 1Huanuco 1 1

26 26

Regió

nZoocriaderos







Revisión: 00

Página: 25 de 65

r) El centro de diagnóstico de sanidad animal, recepciona las muestras y entrega

informe de ensayo en el SIGCED, siguiendo lo indicado en el PRO-UCDSA-05. s) Una vez se cuente con los resultados de laboratorio, copia de estos serán

entregados al propietario de las aves.

7. REGISTROS

REG-DSA/PRONASA-03: Acta de Interdicción. REG-SARVE-10: Acta de Inspección de Bioseguridad en Granjas Avícolas. REG-SARVE-11: Acta de Inspección de Bioseguridad en Plantas de Incubación. REG-SARVE-12: Acta de Inspección de Bioseguridad y Buenas prácticas durante el faenado. REG-SARVE-13: Acta de Inspección de Bioseguridad y Buenas prácticas durante la comercialización de aves vivas. REG-SARVE-14: Registro de Vigilancia Activa. REG-SCEE/PRONASA-18: Acta de Inspección de requisitos mínimos para realización de eventos gallísticos.

8. ANEXOS

Anexo 1: Volante: “Buenas Prácticas de Crianza”. Anexo 2: Materiales y Equipos Necesarios para la Vigilancia Clínica. Anexo 3: Lista de Enfermedades Aviares de Notificación Obligatoria. Anexo 4: Instructivo de Ingreso de Información de Vigilancia Clínica (Inspección de Bioseguridad y Estado Sanitario de Aves) Anexo 5: Relación de Humedales vigilados a nivel nacional. Anexo 6: Instructivo de ingreso de información de vigilancia activa al SIGSA. Anexo 7: Materiales y equipos necesarios para la vigilancia serológica. Anexo 8: Instructivo toma y envío de muestras al laboratorio. Anexo 9: Cuadro de pruebas por tipo de establecimiento. Anexo 20: Lista de zoocriaderos

9. CONTROL DE CAMBIOS

PARRAFO DICE DEBE DECIR







Revisión: 00

Página: 26 de 65

REG-DSA/PRONASA-03

ACTA DE INTERDICCIÓN Nro ___________-200_-AG-SENASA-__________ En la ciudad o localidad de ________________________; el ______ de ____________ del dos mil_______; siendo las ______ horas, el suscrito; _______________________________________________________________, Médico Veterinario, Especialista en Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad Agraria, se hizo presente en _______________________________________________________________de propiedad del Sr (a): _________________________________________ con DNI _________________ a fin de realizar la siguiente diligencia: ______________________________________________________________________________________________________________________________contando con la participación de : ___________________________________con DNI__________________ y _______________________________________________________________ con DNI _________________ , donde se constató la presencia de aves con sintomatología compatible con Influenza Aviar, razón por la que se procede a interdictar el predio__________________________________________________________, hasta la obtención de los resultados del Laboratorio de Sanidad Animal del Servicio Nacional de Sanidad Agraria. El propietario, Sr.________________________________________ con DNI:________________, se compromete a no movilizar sus aves, productos o subproductos avícolas hasta el levantamiento de la interdicción por el SENASA, salvo autorización de este último. ________________________ ___________________________ Nombre Completo: Nombre Completo: DNI: DNI: ___________________________ ____________________________ Nombre Completo: Nombre Completo: DNI: DNI:







Revisión: 00

Página: 27 de 65

REG-SARVE-10 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD EN GRANJAS AVÍCOLAS

Nº de Acta____________________

Datos de la Granja Avícola01 Nombre de la Granja 02 Número de Registro SENASA

03 Productor Avícola 04 Departamento

05 Provincia 06 Distrito

07 Teléfono 08 Ubicación Geográfica

Norte Este

09 Giro Comercial

Carne Postura Comercial Reproductores de Carne Reproductores de Postura Otros

10 Categoría Animal

Pollos Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces

Datos del Responsable de Sanidad de la Granja11 Apellido Paterno 12 Apellido Materno

13 Nombre(s) 14 Nº Colegiatura (CMVP)

Datos del Especialista que realiza la Inspección 15 Apellido Paterno 16 Apellido Materno 17 Nombres

18 Fecha de Inspección:

19 Área Externa

Aislamiento de granja respecto a otras

Aislamiento de granja respecto de centros poblados

Aislam. de granja respecto a Planta de Incubación

Aislam. de granja respecto a Planta de Alimento Balanceado

Aislam. de granja respecto a Centro de Faenamiento

Aislam. de granja respecto a Centro de Acopio

Aislam. de granja respecto a Centros de Lavado (Lavaderos de Camiones y Equipos avícolas)

Aislamiento de Granja respecto a Humedales, bofedales o lagunas.

Distancia de granja a carreteras

Garita de control

Cerco perimétrico o Barreras

Desinfección de vehiculos

Registros de ingreso

Programa con sus vecinos, medidas de bioseguridad conjunta en su zona

20 Área Interna

Duchas para el personal y visitas

Disponibilidad de agua caliente

Viviendas dentro del área de crianza

Instalaciones de fácil higienización

Los galpones se encuentran enmallados de tal manera que eviten el ingreso de aves.(solo si se

encuentra cerca de Humedales)

Cumplimiento

9

9

SI NO9

9

9

9

9

Cambio de ropa para ingreso a granja

Comp. 3ra.

Artículo Condición

Comp. 3ra

Obligación

Obligación

36

Obligación

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Obligación

Obligación

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Bioseguridad

Dirección Desconcentrada :

Fecha Ejecución :







Revisión: 00

Página: 28 de 65

Presencia de aves de edades múltiples

Fumigación de huevos fértiles (sólo reproductoras)

Condiciones adecuadas para almacén de huevos comerciales o fértiles

Presencia de otras aves dentro de granja

Presencia de otras especies dentro del area de crianza

Existe un programa de limpieza y desinfección

Existe un programa de control de plagas

Agua limpia y libre de microrganismos patógenos: Se realiza manejo sanitario o control del agua

Del sistema de abastecimiento: Los reservorios de Agua se encuentran adecuadamente cubiertos.

Mesa de necropsia

Eliminación o manejo de Desechos: Existe infrestructura adecuada para la eliminación de aves

muertas u otros desechos

Existen SSHH para el personal

El personal está capacitado con las buenas prácticas de higiene

Cuenta con un registro de ocurrencias sanitarias

El profesional responsable cuenta con documentación sobre el destino de la producción

Buenas práct icas en el manejo de plumas, guano o productos de desecho, antes de salir de la

granja.

Los materiales utilizados para el transporte de aves vivas y huevos son descartables o

higienizables.

21 Otras Inspecciones

Del Nº de Registro del Establecimientos Avícolas (guías de remisión)

De las condiciones del transporte de huevos

De los equipos empleados para el transporte de aves vivas y huevos

22 Parámetros de Producción

Porcentaje de mortalidad:

Porcentaje de morbilidad:

Causa de la ocurrencia:

Edad y Peso de las aves:

Dest ino de Cama:

Medicación administrada:

23 Calendario Sanitario:

Edad de Aplicación Nombre Comercial de vacuna y Vía de aplicación Lote Nº de Serie Laboratorio

24 Conclusiones

Firma Firma Veterinario Responsable Especialista SENASA

Observaciones (si es no conforme detallar artículos observados)Confomidad

Si No

Obl igación

23

35

33 y 34

36

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Requisito

Requisito

Bioseguridad

Requisito

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Obligación

Obligación

24

33 y 34

59







Revisión: 00

Página: 29 de 65

REG-SARVE-11 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD EN PLANTAS DE INCUBACIÓN

Nº de Acta____________________

Datos de la Planta de Incubación01 Nombre de la Planta de Incubación 02 Número de Registro SENASA

03 Productor Avícola 04 Departamento



Norte Este

09 Categoría Animal

Pollos Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces

Datos del Responsable de Sanidad de la Planta de Incubación10 Apellido Paterno 11 Apellido Materno


Datos del Especialista que realiza la inspección 14 Apellido Paterno 15 Apellido Materno 16 Nombres


18 Área Externa

Aislamiento de P. Incubación respecto a otras P Incubación 9Aislamiento de P. Incubación respecto a Granjas 9Aislamiento de P Incubación respecto de centros poblados

Aislam. de P Incubación respecto a Carreteras

Aislam. de P Incubación respecto a Planta de Alimento balanceado 9Aislam. de P Incubación respecto a Centro de Faenamiento 9Aislam. de P Incubación respecto a Centro de Acopio 9Garita de control

Cerco perimétrico o Barreras

Desinfección de vehiculos

Registros de ingreso

19 Área Interna

Duchas y Vestidores

Disponibilidad de indumentaria

Programa de limpieza y desinfección en nacedoras

Programa de limpieza y desinfección en ambientes

Programa de monitoreo microbiológico en Incubadoras

Programa de monitoreo microbiológico en nacedoras

Programa de monitoreo microbiológico en ambientes

Programa de control integral de plagas

Se realiza adecuada eliminación de desechos 34Existen SSHH para el personal


Realiza control de Ingreso y salida de huevos fértiles y pollitos BB 25Agua limpia y libre de microrganismos patógenos: Se realiza manejo sanitario o control del agua


Cuenta con un registro de ocurrencias sanitarias

El profesional responsable cuenta con documentación sobre el destino de la producción

Buenas práct icas en el manejo de productos de desecho, antes de salir de planta de incubación

Desagüe adecuado, en forma tal que no afecta a terceros.

CumplimientoArtículo

SI NO

Programa de limpieza y desinfección en Incubadoras 36

36

36

36

36

36

35

23

24

Obligación

Obligación

Obligación

Obligación

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Obligación

Obligación / Requiisto

Bioseguridad

Condición

Bioseguridad

Obligación

Requisito

Bioseguridad

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Obligación

Bioseguridad

Obligación

Obligación

Obligación

Requisito

34


Fecha Ejecución :







Revisión: 00

Página: 30 de 65


Del Nº de Registro del Establecimientos Avícolas (en guías de remisión)

De las condiciones del transporte de huevos

De los equipos empleados para el transporte de aves vivas y huevos

21 Estado Sanitario:

Porcentaje de nacimientos:

% de Pollos BB 1ra

% Pollos BB 2da

% de Incubabilidad

% de Descartes

22 Conclusiones

Firma Firma Veterinario Responsable Especialista SENASA

Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar artículos observados) y Recomendaciones

Si No







Revisión: 00

Página: 31 de 65

REG-SARVE-12 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y BUENAS PRÁCTICAS DURANTE EL FAENADO

Nº de Acta____________________

Datos del Centro de Faenamiento de Aves01 Nombre del Centro de Faenamiento 02 Número de Registro SENASA

03 Propietario del Establecimiento 04 Departamento



Norte Este

09 Tipo de aves que se faenan

Pollos Gallinas Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces Otros

10 Capacidad de faenamiento por: 11 Número de aves que se benefician por:

Día: Día: Mes: Año:

Datos del Responsable de Sanidad del C. de Faenamiento12 Apellido Paterno 13 Apellido Materno




20

Disponibilidad de agua potable

Dispone de suficiente agua a una temperatura mayor de 60ºC y/o vapor de agua.

Sistema que asegura la limpieza en el centro de faenamiento

Del mantenimiento de las instalaciones

Del Sistema de lavado de vehículos, jabas u otros elementos para el transporte

Servicios higiénicos completos y proporcionales.

Zona de despacho

Un sistema adecuado de recolección y eliminación de la basura y el estiércol.

Un sistema que asegure la destrucción de las aves desechadas.

El establecimiento debe realizar una adecuada eliminación, disposición y tratamiento de las aguas

producto de las actividades de faenamiento.

Solo si presta servicio de congelación: Cuenta con infraestructura que asegura enfriamiento óptimo.

La iluminación tiene una intensidad igual o mayor de:

a. 325 lux (30 bujías - pie) en los ambientes en general

b. 540 lux (50 bujías - pie) en la sección de inspección sanitaria

c. La iluminación no afecta los colores y estará dirigida sobre el ave, en forma apropiada.

Del manejo de los productos condenados.

Del sistema de destrucción de lo condenado.

Las mesas de trabajo, el equipo de sangrado y los recipientes para recolectar la sangre son de

material impermeable, inoxidable, de fácil higienización y no contaminante.

CumplimientoArtículo

SI NO

El flujo de aire es de áreas limpias a áreas sucias y no al revés. No se concentran gases ni

malos olores en el área de faenamiento..


Fecha Ejecución :







Revisión: 00

Página: 32 de 65

Cuenta con un Programa de Control Integral de Plagas.

Adecaudo almacenamiento de Plaguicidas

Del personal que interviene en el Faenamiento de las aves y de las buenas prácticas de higiene.

Del Reconocimiento médico del Personal

Del equipo y accesorios empleados durante el faenamiento.

Estado de Salud de las aves e inspección antes del faenamiento

Inspección Post faenamiento

Métodos de insensibilización

Del procedimiento de degüello, sangrado, escaldado y desplume

Del Procedimiento de evisceración

Del Procedimieto de lavado de carcasas

Del manejo de los despojos o de desechos

Presencia de otros animales en el cent ro de faenamiento.

Del beneficio de otras especies aviares.

Personas ajenas no autorizadas estan alejadas de las áreas de faenamiento de aves.

Mantiene Información del faenado de las aves


Control de las Guías de Remisión: Las aves que se transportan disponen de sus respectivas guías

de remisión, en las que se identifica el número de registro vigente de la granja.

22 Conclusiones

Firma Firma

Veterinario Responsable Especialista SENASA

Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar art ículos observados) y Recomendaciones

Si No







Revisión: 00

Página: 33 de 65

REG-SARVE-13 ACTA DE INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y BUENAS PRÁCTICAS DURANTE LA COMERCIALIZACIÓN DE AVES VIVAS (CENTROS DE ACOPIO)

Nº de Acta____________________

Datos del Centro de Acopio de Aves01 Nombre del Centro de Acopio 02 Número de Registro SENASA

03 Propietario del Establecimiento 04 Departamento



Norte Este

09 Tipo de aves que se acopian

Pollos Gallinas Pavos Patos Gansos Codornices Avestruces Otros

10 Capacidad de acopio por: 11 Número de aves que se acopian por:

Día: Día: Mes: Año:

Datos del Responsable de Sanidad del C. de Acopio12 Apellido Paterno 13 Apellido Materno




20 Requsitos

Disponibilidad de agua potable

Sistema que asegura la limpieza en el centro de acopio

Sistema de lavado de vehícu los, jabas u otros elementos para el transporte

Servicios higiénicos completos y proporcionales.

Zona de despacho

Un sistema que asegure la destrucción de las aves desechadas.

El establecimiento debe realizar una adecuada eliminación, disposición y

tratamiento de las aguas producto de las actividades de comercialización.

Cuenta con un Programa de Control Integral de Plagas.

Inspección del estado de salud de las aves en el centro de acopio21 Otras Inspecciones

Control de las Guías de Remisión: Las aves que se transportan disponen de sus respectivas guías

de remisión, en las que se identifica el número de registro vigente de la granja.

22 Conclusiones

Firma Firma

Veterinario Responsable Especialista SENASA

Cumplimiento ArtículoSI NO

Art. 12

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 12, Anexo 4

*Art. 35

Art. 40

Confomidad Observaciones (si es no conforme detallar art ículos observados) y Recomendaciones

Si No


Fecha Ejecución :







Revisión: 00

Página: 34 de 65

Ubicación Geográfica 04 Ubigeo Datos Prediales

01 Departamento 11 Propietario de los Animales (Razón Social/Nombre) 12 DNI 13 RUC

02 Provincia 14 Propietario del Predio (Razón Social/Nombre) 15 DNI 16 RUC

03 Distrito 17 Nombre de la Granja/Hato y/o Camal 18 Tipo Explotacion

05 Localidad 06 Este 07 Norte 19 Tipo de Crianza 20 Tecnificada

Intensiva Semi Extensiva Extensiva Trashumante SI NO

08 Altitud 09 Zona Horaria 10 Referencia 21 Ase. Técnico Instalaciones 22 Vías de Acceso 23 Crianza de edades múltiples

Motivo Tec. Maquina. Población SI NO

24 Nº Granjas / Hatos total del lugar

Poblacion Animal Granja/Hato Historia Clínica

25 26 Observación de Sintomatología27 Vacunados 28 Signos Observados

Especie Total Población Animal SI NO SI NO

Bovinos 29 Lesiones Observadas

Ovinos 30 Sospecha de Brote Anterior

Caprinos SI NO

Porcinos 31 Tratamiento y Medicamento 32 Tipo de Alimento y Agua 33 Protocolo Necrópsia

Equinos SI NO

Camélidos Calendario Sanitario

Aves 34 Nº Animales Vacunados 35 Prevención Enfermedad 36 Fecha 37 Nombre y Tipo de Biológico 38 Lote 39 Nº Cert.

Fauna silvestre

REG-SARVE-14 REGISTRO DE VIGILANCIA ACTIVANº de Registro:____________________________

Dirección Ejecutiva : Enfermedades Monitoreadas : 1 2 (Diagnósticos) 3 4

Año : Nº Ficha :







Revisión: 00

Página: 35 de 65

Toma de Muestras

40 Código 41 Tipo de 42 Identificación 43 Tipo de 44 45 46 47 48 Fecha 49 Procedencia Animal

de la Muestra Identificación Amimal Muestra Edad Sexo Raza y/o Línea Categoría Colección Local Foraneo

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

24

25

26

27

28

29

30

Observaciones

Nº

Firma del Responsable







Revisión: 00

Página: 36 de 65

REG-SCEE/PRONASA-18 ACTA DE INSPECCIÓN DE REQUISITOS MÍNIMOS PARA REALIZACIÓN DE EVENTOS GALLÍSTICOS

Nº de Acta____________________

Datos Generales del Solicitante01 Razón Social 02 Estado del Solicitante 03 RUC

P. Natural P. Jurídica

04 Apellido Paterno 05 Apellido Materno

06 Nombre(s) 07 Tipo Doc. 08 Nº Doc

DNI CE

Datos del Evento Gallístico09 Nombre del Evento Gallístico 10 Tiempo de duración del evento (meses del año)

De: A:

11 Periodicidad

Anual Mensual Quincenal Semanal Lunes Martes Miércoles Jueves Viernes Sábado Domingo

12 Nombre del Coliseo de Gallos 13 Apellido Paterno y Materno del propietario del Coliseo 14 Nombres del propietario del Coliseo

15 Departamento 16 Provincia

17 Distrito 18 Direccion


Norte Este

21 Capacidad Total para albergar aves 22 Alcance del Evento:

Internacional Nacional Departamental Provincial



29 Condiciones mínimas

Disponibilidad de Agua Potable

Condiciones para el mantenimiento de Limpieza en el local

Instalaciones para albergue de aves, mantenidas en condiciones higiénicas

Sistema de eliminación de insectos y roedores

Sistema que asegure la eliminación de los desechos generados (aves muertas,guano, plumas,

sacos, etc)

30

Control de Certificados de Vacunación contra Newcastle

31 Observaciones y Recomendaciones

Firma FirmaApellidos y nombres Apellidos y nombresdel Solicitante Especialista SENASADNI: DNI:

CumplimientoSI NO

Otras Inspecciones (no condicionales para la autorización pero si para vigencia) Art. 27 del D.S. Nº 029-2007-AG


Fecha Ejecución :







Revisión: 00

Página: 37 de 65

ANEXO 1 : Buenas Prácticas de Crianza







Revisión: 00

Página: 38 de 65

ANEXO 2: MATERIALES Y EQUIPOS NECESARIOS PARA LA VIGILANCIA CLÍNICA

1. Acta de inspección de bioseguridad de Granjas Avícolas (REG-SARVE-10) 2. Acta de inspección de bioseguridad de Plantas de Incubación (REG-SARVE-11) 3. Acta de Interdicción (REG-DSA-PRONASA-03) 4. Botas de Jebe 5. Chaleco 6. Desinfectante 7. Equipo GPS 8. Formatos de Vigilancia Pasiva 9. Lapicero 10. Papel Copia 11. Pilas 12. Protector facial de Poli carbonato incoloro 13. Tableros 14. Unidad de Comunicación (Teléfono, celular, radio, etc)







Revisión: 00

Página: 39 de 65

ANEXO 3: LISTA DE ENFERMEDADES AVIARES DE NOTIFICACIÓN

OBLIGATORIA

1. Bronquitis infecciosa aviar 2. Bursitis infecciosa (enfermedad de Gumboro) 3. Clamidiosis aviar 4. Cólera aviar 5. Coriza Infecciosa 6. Enfermedad de Marek 7. Enfermedad de Newcastle 8. Enteritis viral del pato/Peste de los patos 9. Coronaviridae): patos 10. Hepatitis a cuerpos de inclusión 11. Hepatitis viral del pato 12. Influenza aviar altamente patógena e influenza Aviar levemente patógena en aves de

corral de acuerdo con el Capítulo 2.7.12., del Código Sanitario para los Animales Terrestres - OIE

13. Laringotraqueítis infecciosa aviar 14. Micoplasmosis aviar (M. gallisepticum) 15. Micoplasmosis aviar (M. synoviae) 16. Pulorosis 17. Rinotraqueítis del pavo 18. Salmonelosis 19. Tifosis aviar 20. Tuberculosis aviar







Revisión: 00

Página: 40 de 65

ANEXO 4: INSTRUCTIVO DE INGRESO DE INFORMACIÓN DE VIGILANCIA

CLÍNICA (INSPECCIÓN DE BIOSEGURIDAD Y ESTADO SANITARIO DE AVES) Toda información referida a supervisión sanitaria a Centros de Producción Avícolas, deberá ingresarse por el Módulo de Vigilancia.

1. Ingresar a la opción Centros de Producción y seleccionar: Supervisión Sanitaria.

2. El sistema le mostrará la siguiente ventana :

3. Si se va registrar una ficha nueva, presionar el botón y el sistema le mostrara la siguiente ventana :







Revisión: 00

Página: 41 de 65

4. Ingresar la información en Datos Generales: Buscar el Centro de Producción,

por Código, Tipo o Nombre del mismo y seleccionar.

5. El Dato de Productor saldrá por defecto, en vista que esta información ya ha sido ingresada en el Padrón de Productores Pecuarios, toda vez que ya se haya ingresado en el sistema al productor y los predios del productor, condición que debe darse como primera instancia.

6. En la opción de Formato, deberá seleccionar el tipo de Formato empleado en la

Supervisión sanitaria realizada.

7. Seleccionar la Opción: Bioseguridad- Granja o Bioseguridad-Planta de Incubación.

8. Luego, en la opción: Ejecutor, buscar y seleccionar el nombre o código de la

persona que realizó la supervisión y dar aceptar.

9. Digitar la Fecha de ejecución de la supervisión sanitaria.

10. Digitar el Nombre del responsable del Centro de Producción con el que se realizó la inspección o en su defecto, la del Médico Veterinario responsable de la Sanidad de las aves.

11. Digitar el Giro del Centro de Producción.

12. Luego, Grabar esta información y dependiendo del Formato elegido, se mostrará el detalle de items de la ficha de supervisión.

13. Detallar en observaciones, las razones de la inconformidad a cada punto.







Revisión: 00

Página: 42 de 65

14. En Calendario Sanitario ingresar: a. Edad de inmunización: en días. b. Nombre Comercial de la vacuna aplicada. c. Cepa vacunal empleada. d. Nombre del Laboratorio del biológico.







Revisión: 00

Página: 43 de 65

15. Cada inmunización será ingresada de manera independiente en CS1, CS2, etc.

(CS1: Calendario Sanitario 1) 16. En información complementaria ingresar los siguientes datos:

a. Edad: en día o meses. b. Mortalidad Acumulada: Expresado en porcentaje, a la fecha de

inspección. c. Causas de mortalidad: Si la mortalidad es insignificante, especificar

causas de mortalidad en campañas anteriores. d. Peso de las aves: Promedio de pesos a la fecha de inspección. e. Conversión alimenticia: Promedio a la fecha de inspección. f. Destino de Cama o yacija: al final de la campaña. g. Niveles de Cloro en agua: en el pozo principal y en el bebedero del último

galpón o galpón más alejado de pozo principal.

17. Si la inspección es a una planta de incubación registrar la siguiente información:

a. Capacidad de carga, por modelo de las incubadoras. b. Capacidad de carga, por modelo de las nacedoras. c. El estado sanitario, expresado en:

i. Porcentaje de nacimientos: a la fecha de inspección. ii. Porcentaje de Pollos BB de 1ra. iii. Porcentaje de Pollos BB de 2da. iv. Porcentaje de Descartes v. Porcentaje de Incubabilidad: a la fecha de inspección.







Revisión: 00

Página: 44 de 65

18. Por último, ingresar conclusiones finales de la supervisión y GRABAR. 19. Para Obtener el Reporte de la supervisión realizada, seleccionar la opción

Presentación Preliminar y podremos imprimir la Ficha de Supervisión Sanitaria Ejecutada.

20. Para realizar el CAMBIO DE ESTADO seleccionar el botón de Cierre, ya que cuando se inicia el registro esta información esta en estado ABIERTO.







Revisión: 00

Página: 45 de 65

21. Cuando se concluye con todo el registro y esta conforme se debe cerrar la ficha, de tal manera que solamente se podrá visualizar o consultar, a la misma.

22. Todo Cierre debe tener Conclusiones Finales a la Supervisión, caso contrario no podrá cerrarse dicha ventana.

23. Si no se cierra esta ventana no se podrá visualizar la supervisión realizada en la

consulta de Supervisiones de Centros de Producción.







Revisión: 00

Página: 46 de 65

ANEXO 5: RELACIÓN DE HUMEDALES VIGILADOS A NIVEL NACIONAL

Región Humedal, Bofedal, Playa, etc.TUMBES Santuario Nacional Manglares de Tumbes (Anexos)

Humedal Albuferas de Medio MundoHumedal Baños de BozaHumedal de VentanillaHumedal El ParaisoHumedal La EncantadaHumedal Puerto ViejoHumedal Santa RosaLago La SalinasPantanos de VillaHumedal Agua SantaHumedal CaucatoHumedal Las TotoritasLagunilla San LuisLagunilla Tupac AmaruPisco PlayaPlaya CanchamanaPlaya Cruz verdePlaya JahuayPlaya Las VioletasPlaya LurinchinchaPlaya ParacasPlaya San andresPlaya San PedroPlaya Las DeliciasPuerto MorinCerro PrietoHumedal Balsares De HuanchacoHumedal Choc ChocHumedal GuañapeHumedal TizalPlaya Buenos AiresPlaya HuanchaquitoHumedal El JaimeHumedal LaramineHumedal POZA DEL GATOLago TiticacaLaguna CoccanLaguna ArapaRivera de Rio AzangaroLago JulyLago UmayoEstuario de VirriláManglares San Pedro de VicePlaya de Paita Represa San LorenzoLaguna ÑapiqueRepresa de LanconesHumedal De IteLago Suches o HuaytiriHumedales y arrozales de CamanaSantuario Nacional Lagunas de MejiaLaguna sulluscochaRepresa gallito ciegoPantano del IlucanLaguna de HuarangoRio San MarquinoParedonesColectorGallitoCienagoEten (pueblo, puerto)San JuanLaguna BoroHumedal ColliqueCaminos de IncaReservorio Tinajones

LAMBAYEQUE

LIMA

ICA

AREQUIPA

CAJAMARCA

LA LIBERTAD

PUNO

PIURA

TACNA







Revisión: 00

Página: 47 de 65

ANEXO 6: INSTRUCTIVO DE INGRESO DE INFORMACIÓN DE VIGILANCIA ACTIVA

AL SIGSA Vigilancia Activa Una vez seleccionado el Módulo de Vigilancia, mostrará la siguiente ventana, la cual

permitirá mostrar vía opciones las actividades automatizadas de la actividad de Vigilancia

Activa de la Dirección de Vigilancia Zoosanitaria.

2.1.1 Registro Opción que permitirá registrar la información de los Diagnósticos Situacionales y

Monitoreo Serológicos, desde las Direcciones Ejecutivas, las cuales pertenecen a la

Vigilancia Activa.







Revisión: 00

Página: 48 de 65

1. Una vez seleccionada la opción de registro, se mostrara la siguiente pantalla:

2. Debiendo especificar el motivo del ingreso de información, en este caso: MUESTREO PRONASA.

3. El Sistema mostrará una ventana en la cual deberán registrar los parámetros

iniciales con lo cual se podrá visualizar las fichas ya registradas. En la ventana se podrá ingresar datos en los siguientes campos: • Dirección, que por defecto es la Dirección en la cual esta inscrito el Usuario.

Solamente cuando se ingresa como Nivel Central podrán seleccionar otras Direcciones Desconcentradas.

• Estado, permitirá seleccionar los diferentes estados de la ficha : Activo, Cerrado, Rechazado o Anulado.

• Motivo, aquí seleccionaran el componente por la cual se lleva la actividad • Año y Mes, es la fecha en la cual se registro la ficha

“Toda actividad generada por la Dirección de Vigilancia en la actividad Vigilancia Activa debe registrarla en el módulo, así como la remisión de muestras por esta actividad la solicitud debe generarse del módulo”

4. Si la Acción es Registrar una Nueva Ficha, seleccionar el icono , con lo cual activará la siguiente ventana:







Revisión: 00

Página: 49 de 65

5. Los nombres de los campos que se encuentra en color azul serán ingresados con obligatoriedad.

6. En el campo de Productor, mostrara la relación a Nivel Nacional (%), usando el

ícono: , además existe la opción de mostrar la lista de productores filtrando por nombre.

7. Si el productor no exíste, realizar el registro rápido, usando el ícono: . “Los Datos que se consignan en la ventana esta basado en el Formato de Vigilancia Activa.”

� Datos de la Ficha

• Responsable Registro: Por defecto se registra el nombre del usuario que ingresa su pasword.

• Motivo, Actividad por el cual se originó el registro de la Ficha, en este caso: MUESTREO PRONASA.

• Fecha de Ejecución, Fecha de realización de la actividad. • Fauna Silvestre: Dar check si la actividad se realiza en esta población.

� Ubicación Geográfica

• Básicamente se detalla la localización basándose en el Departamento, Provincia,

Distrito, Localidad y Referencia con respecto al origen de la información, así







Revisión: 00

Página: 50 de 65

mismo se debe consignar la información de Georeferenciada a través de los datos de Este, Norte, Zona Horaria y Altitud en valores UTM (GPS).

� Datos Prediales

• Es importante seleccionar al Productor (Propietario de los animales), al cual lo

deben buscar con el botón y si no lo encontrarán deberán registrarlo con el

botón .

• Los Predios que dependan del Productor deberán ser buscados con el botón y

en caso de no encontrarlo deberán presionar para inscribirlos, se debe tener en cuenta que el Predio puede ser de una tercera persona al cual deberá registrarlo como tal.

• La Granja / Hatos depende del Productor, y deberán buscarlo con el botón de

y si no registrarlo con el botón de .

• Así mismo se solicita identificar información adicional como si el Tipo de Crianza: Intensiva, Mixta, Extensiva, Transhumancia.

• El Tipo de Explotación Animal: Aves Silvestres, Aves de Combate, Carne, Crianza Familiar, Postura Comercial, Reproductoras de Carne, Reproductoras de Postura, Zoocriadero.

• Crianza de Edad Múltiple y Número de galpones.

� Población Animales Vivos

1. Animales: Se detallará la población de animales de la Granja / Hato por especie animal.

2. Fauna Silvestre: Especie según base de datos y número de animales capturados.

� Botón Calendario Sanitario

En esta opción, mostrará la siguiente ventana :

En esta ventana se podrá registrar todas las actividades de vacunación realizadas a los

animales de la Granja / Hato, para un mejor control de los productos registrados en SENASA,







Revisión: 00

Página: 51 de 65

primero seleccionen Prevención (Enfermedad) y luego en el campo Rg. SENASA, se

visualizarán los productos Biológicos por Enfermedad del Padrón de productos registrados en

la Dirección de Insumos Pecuarios.

� Botón Historia Clínica

En esta opción, mostrará la

siguiente ventana :

Si seleccionan la opción de

SI en Sintomatología, le

permitirá registrar las

Lesiones y Signos en

Animales.

Además podrán registrar algunas características adicionales como si existió Brote

anteriormente de la Enfermedad Monitoreada, Tipo de Alimento y Tratamiento Médico

� Información Complementaria

En este campo se registrará la información adicional del monitoreo que no están contemplados

como campos predefinidos para el registro.

� Botón Cerrar

Permitirá cerrar en forma definitiva la ficha para que solamente se active como consulta, para

ello deberá registrar su Password .

Teniendo como premisa que por una muestra se podrían descartar la presencia de una o mas enfermedades en animales y que por cada enfermedad se pueden correr una o varias Pruebas., se debe registrar en “ENFERMEDADES Y PRUEBAS SOLICITADAS” las Enfermedades ha descartar y las Pruebas que desean correr para ello le mostrará la siguiente ventana:







Revisión: 00

Página: 52 de 65

Para Insertar debe presionar el Icono “Añadir” Luego presentará la siguiente ventana:

Esta ventana le permitirá registrar la Enfermedad y la Prueba que desean correr. Para una Próxima Prueba deberán repetir el mismo paso solo cambiando la nueva Prueba. Recuerde que por cada tipo de muestra debe generar una nueva ficha, es decir:

1. Registro para muestras serológicas: � Influenza Aviar: Prueba: ELISA � Enfermedad de Newcastle: Prueba: ELISA para NDV Velogénico. � Micoplasmosis Aviar: ELISA Micoplasma Gallisepticum y Synoviae.

2. Registro para muestras virológicas: � Influenza Aviar: Prueba: PCR � Enfermedad de Newcastle: Prueba: PCR-RT. � Laringotraqueitis: Prueba: PCR

3. Registro para muestras Bacteriológicas: � Salmonelosis: Influenza Aviar: Prueba: Cultivo e Identificación de

Salmonellas. Para registrar las muestras coleccionadas, deberán seleccionar la pestaña de la ventana denominada “DATOS DE MUESTRA”, si esta opción esta en color plomo, significa que no esta activa y que necesita grabar previamente los datos de la primera ventana.







Revisión: 00

Página: 53 de 65

Tienen dos formas de registrar las muestras:

1. Individualmente, en esta forma presionarán el botón de Insertar y registrarán la información solicitada para el envío de cada muestra.

2. Por Lote, en esta opción se registrará en forma masiva la información de la muestra, para ello deberán presionar el botón “Insertar Lote”, y mostrará la siguiente ventana :

Se solicita la información para el registro de muestra, con la particularidad de que existe un campo “Cantidad”, la cual copiará tantas veces la cantidad.

Concluido con el proceso del registros de muestras y el cierre de la ficha, deberán GENERAR LA SOLICITUD (Paso 1), se insertará automáticamente en el campo Nº Solicitud, el número de Solicitud del Padrón del Laboratorio (Paso 2), por último para visualizar la ficha presiono el icono de visualización (Paso 3), donde se podrá imprimir la solicitud







Revisión: 00

Página: 54 de 65

Además existe una opción para la impresión de etiquetas (Paso 4), una vez seleccionada se mostrará una ventana la cual permitirá seleccionar los diferentes tamaños de las etiquetas, se mostrará inicialmente la presentación preliminar, para que puedan ser impresos. Estas etiquetas contienen los códigos generados por el SIGSA, al momento que se registran los datos de las muestras, las cuáles deben ser utilizadas para identificar las muestras, a través del rotulado de viales y/o otros medios utilizados para la remisión de muestras.

Como medio de respaldo a la información registrada en el sistema, existe la opción de consulta e impresión del “Reporte de Monitoreo de Vigilancia Activa”, por cada ficha registrada, el reporte contendrá toda la información registrada por cada ficha, para acceder a esta opción deberán presionar el siguiente botón :

Por último, los resultados de diagnóstico podrán ser vistos e impresos para la entrega al usuario interesado, a través de la opción: Consulta de Resultado de Muestras, requiriendo el Password del Jefe de Sanidad Animal (JASA).







Revisión: 00

Página: 55 de 65

Para imprimir los resultados deberá nuevamente ingresar el Password del JASA:

El Informe de Ensayo deberá ser firmado por el Director de la Dirección Ejecutiva.







Revisión: 00

Página: 56 de 65







Revisión: 00

Página: 57 de 65

ANEXO 7: MATERIALES Y EQUIPOS NECESARIOS PARA LA VIGILANCIA SEROLÓGICA

1. Acta de Interdicción (REG-DSA-PRONASA-03) 2. Acta de Notificación 3. Agua peptonada en frascos de 500 ml 4. Agujas Descartables 20 x ½ pulgada 5. Baja lengua 6. Botas de Jebe 7. Bolsas para desechos. 8. Bolsas de plástico de 2 kg. 9. Coolers o cajas de tecnopor. 10. Chaleco 11. Desinfectante 12. Equipo GPS 13. Equipo de necropsia 14. Formatos de Vigilancia Pasiva 15. Frascos o Bolsas para colección de órganos. 16. Geles refrigerantes 17. Guantes de vinil 18. Hisopos de Dacrón 19. Hisopos de Gasa 20. Lapicero 21. Medio de transporte Cary Blair en frascos de boca ancha de 250 ml. 22. Papel Copia 23. Pilas 24. Plumón indeleble 25. Registro de Vigilancia Activa (REG-SARVE-…..) 26. Tableros 27. Tijeras 28. Tubos de polypropileno para colecta de sangre. 29. Tubos com médio de transporte viral. 30. Unidad de Comunicación (Teléfono, celular, radio, etc)







Revisión: 00

Página: 58 de 65

ANEXO 8: INSTRUCTIVO TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS AL LABORATORIO

La calidad en la COLECCIÓN, CONSERVACIÓN Y ENVÍO de las muestras al laboratorio son determinantes para obtener un resultado de óptimo. En este sentido, el profesional de campo o encargado, tiene la responsabilidad de seleccionar, recolectar, preservar y enviar adecuadamente las muestras convenientes para el diagnóstico. La flora normal y los contaminantes pueden complicar la colecta de la muestra y afectar la interpretación de resultados.

En este instructivo se indican las técnicas apropiadas para la colección y el manejo de muestras para laboratorio.

TOMA DE MUESTRAS DE SANGRE

1. Las muestras de sangre para obtención de suero, se obtienen de la vena braquial del ave. 2. Para exponer la vena, retire algunas plumas de la superficie ventral de la región humeral

del ala. La vena se observa recorriendo en una depresión entre los músculos bíceps y tríceps braquial. La aplicación de alcohol u otro desinfectante sin color para humedecer la superficie de la zona facilita la observación de la vena. Para facilitar la punción extender ambas alas dorsalmente y sujetarlas conjuntamente en la parte distal con la mano izquierda.







Revisión: 00

Página: 59 de 65

3. Se debe usar una aguja Nº 20 x ½ ’’ es esencial que el bisel de la aguja este en buenas

condiciones 4. Inserte la aguja dentro de la vena del ala derecha, manteniéndola con la mano derecha, la

aguja debe ser insertada en dirección opuesta al flujo sanguíneo. 5. Colecte aproximadamente 2 ml. a 3 ml. de sangre en un tubo limpio y estéril. 6. Por regla general, es seguro extraer a las aves vivas entre 0,3 cc y 0,6 cc de sangre por

cada 100 g de masa corporal. No obstante, siempre es mejor extraer la menor cantidad de sangre posible para realizar los análisis.

7. Una vez se haya extraído la sangre, se cubrirá el punto de venopunción con una gasa o

algodón y se aplicará presión con los dedos hasta que cese la pérdida de sangre (entre 30 y 60 segundos).

8. Las muestras de sangre nunca deben ser refrigeradas inmediatamente después de la colección, debido a que ello interfiere con el proceso de coagulación.

9. Coloque el Tubo en posición inclinada casi horizontal hasta que la sangre se haya coagulado totalmente a temperatura ambiente.







Revisión: 00

Página: 60 de 65

10. Después de formado el coagulo el tubo debe retornar a la posición vertical para permitir la

colección del suero en la base del tubo, trasvasar el suero a los viales. 11. El suero de aves adultas puede tener una coloración lechosa debido la presencia de

lípidos. 12. La muestra de suero en los crioviales puede ser congelada para su consolidación y

envío por lotes. Verificar temperatura de congeladora diariamente a fin de asegurar la adecuada conservación.

TOMA DE MUESTRAS DE HISOPADOS TRAQUEALES 1. Las muestras virológicas, se obtendrán de la mucosa traqueal. 2. Retirar el envoltorio de un hisopo de dacrón desde el mango, teniendo cuidado en no tocar

la punta del hisopo. 3. Con la mano derecha sujetar la base del cráneo del ave y hacer presión con el dedo pulgar

y el dedo medio cerca de la comisura del pico a fin de abrirlo. 4. Con la mano izquierda coger el hisopo por el mango e introducir suavemente la punta del

hisopo en la tráquea esperando hasta que el ave respire y el cartílago protector de la tráquea se abra para permitir el paso del aire. Tocar suavemente con la punta del hisopo la parte posterior y los laterales de la tráquea.

5. Retirar el hisopo y soltar al ave. 6. Coger con la mano izquierda, el tubo con medio de transporte viral y con la ayuda del dedo

meñique y la palma de la mano derecha, destapar el tubo. 7. Colocar la punta del hisopo en el medio de transporte aproximadamente a una altura de ¾

hacia el fondo del tubo. 8. Cortar con tijera, el mango del hisopo de forma que éste permanezca en el vial y la tapa

correspondiente pueda enroscarse bien ajustada. 9. Se deberá dejar en el tubo, todo el hisopo y una porción del mango. 10. Cerrar herméticamente e introducirlo en la caja conservadora de frío. 11. Limpiar las tijeras con alcohol al 70 %. TOMA DE MUESTRAS DE HECES FRESCAS 1. Las muestras virológicas para aves exóticas o silvestres de zoocriaderos, se obtendrán de

las heces frescas que se colecten del piso de las jaulas. 2. En las primeras horas de la mañana colocar una bolsa de plástico, papel periódico, kraft o

cartón, a fin de recoger las heces del día. 3. Mínimo deberá recogerse 3 gramos de heces con la ayuda del hisopo de dacrón. 4. Cortar con tijera, el mango del hisopo de forma que éste permanezca en el vial y la tapa

correspondiente pueda enroscarse bien ajustada. 5. Se deberá dejar en el tubo, todo el hisopo y una porción del mango. 6. Cerrar herméticamente e introducirlo en la caja conservadora de frío. 7. Limpiar las tijeras con alcohol al 70 %.







Revisión: 00

Página: 61 de 65

TOMA DE MUESTRAS DE HISOPADOS DE ARRASTRE 1. Las muestras para cultivo e identificación de Salmonellas, se obtendrán del hisopado de la

yacija o cama mediante hisopados de arrastre. 2. Retirar la envoltura protectora de los hisopos de gasa. 3. Embeber el hisopo con la mitad del contenido del frasco 1 (agua peptonada). 4. Colocar el hisopo humedecido sobre la cama o yacija del galpón seleccionado y arrastrarlo

por entre los comederos y bebederos, dando preferencia a aquellos lugares donde se encuentran concentradas las aves y por ende materia fecal.

5. Escoger un corral representativo del galpón por cada hisopo. 6. Colocar el hisopo con materia fecal dentro del frasco 2 o pote que contiene el medio de

transporte Cary Blair con la ayuda del baja lengua. 7. Tapar herméticamente y cuidando de no contaminar el medio. 8. Repetir la operación en el segundo corral del mismo galpón, desinfectándose las manos

previamente. 9. El hisopo del segundo corral irá dentro del mismo frasco o pote. (2 hisopos por pote o

frasco). 10. Rotular con plumón indeleble, el frasco 2 indicando:

a. Fecha de colección. b. Hora c. Origen: Galpón “X”, de Granja “Y”.

11. Colocar el frasco cerrado herméticamente dentro de la caja conservadora de frío. NORMAS GENERALES

1. Las muestras deben estar apropiadamente identificadas con el código y la etiqueta que

genera el SIGSA. 2. No se procesarán muestras que no cumplan con esta condición. 3. Utilizar siempre el material enviado para estos fines. 4. Tapar herméticamente todo frasco, tubo o vial, antes de introducirlo en la caja

conservadora de frio.

Almacenamiento de muestras

1. Las muestras, incluidas en medio de transporte viral para el aislamiento de virus, deberán mantenerse a 4 °C y transportarse al laboratorio rápidamente.

2. Si las muestras son transportadas al laboratorio en un plazo de dos días, deberán mantenerse a 4 °C; de lo contrario, habrán de congelarse a un máximo de -70 °C hasta que puedan transportarse al laboratorio.

3. Deberán evitarse las congelaciones y descongelaciones repetidas a fin de prevenir la pérdida de infectividad.

4. Los sueros podrán almacenarse a 4 °C durante una semana aproximadamente, pero después habrán de congelarse a -20 °C.







Revisión: 00

Página: 62 de 65

5. Las muestras para cultivo e identificación de salmonella deberán mantenerse en el medio

de transporte Cary Blair, a temperatura de refrigeración y ser remitidas en un lapso no mayor a 5 días. Tiempo calculado desde la toma de muestras hasta el ingreso a la UCDSA.

TRANSPORTE DE MUESTRAS

Todas las muestras que vayan a ser transportadas deberán envasarse con un triple embalaje formado por tres capas.

1. Colocar en la base de la caja conservadora de frío, suficiente cantidad de geles refrigerantes, a fin de conservar la cadena de frío y dependiendo del tiempo promedio que demoran en llegar las muestras a la UCDSA.

2. Distribuir adecuadamente los frascos y tubos en la caja térmica. Colocarlos previamente en bolsa de plástico.

3. Envolver los recipientes con algodón hidrófilo.

4. Rociar desinfectante sobre la superficie de los recipientes.







Revisión: 00

Página: 63 de 65

5. Terminar de envolver con el algodón hidrófilo (material absorbente).

6. Tapar la caja hermética, sellando con masking tape. El embalaje estará construido y cerrado de tal manera que se impida toda pérdida de contenido que pudiera producirse en las condiciones normales de transporte, por vibraciones o por cambios de temperatura, humedad o presión.

7. Rotular adecuadamente, indicando remitente y destinatario. Rotular la parte superior de la caja indicando el lado que debe ir hacia arriba.

Por último, remita lo más pronto posible al laboratorio de la UCDSA, acompañando las muestras, siempre, con la solicitud de diagnóstico generada en el SIGSA.

Recuerde que el éxito en el diagnóstico depende de una correcta toma, conservación, remisión e identificación de las muestras.







Revisión: 00

Página: 64 de 65

ANEXO 9: Cuadro de pruebas por tipo de establecimiento.

Vig

ilan

cia

Tip

o d

e ex

plo

taci

ón

En

ferm

edad

Lu

gar

de

mu

estr

eoM

ues

tra

Ed

ad d

e m

on

ito

reo

Tes

tT

est

com

ple

men

tari

o

GA

, PI,

CA

, C

F

Est

able

cim

ien

tos

avíc

ola

s:

Insp

ecci

ón d

e al

men

os d

os

galp

ones

o lo

tes

prob

lem

as

iden

tific

ados

en

la e

valu

ació

n de

par

ámet

ros

de p

rodu

cció

n.

Tra

spat

io y

C

omba

te

Tra

spat

io y

Co

mb

ate:

In

spec

ción

del

100

% d

e la

po

blac

ión.

Zoo

cria

dero

sIn

spec

ción

del

100

% d

e la

po

blac

ión

Bro

iler

IAC

F35

- 4

5 dí

asID

GA

IAC

F, G

AM

ycop

lasm

a

(gal

lisep

ticum

y

sino

viae

)

CF

, GA

IAC

F, G

AM

ycop

lasm

a

(gal

lisep

ticum

y

sino

viae

)

CF

, GA

Com

bate

May

or a

los

8 m

eses

Tra

spat

ioP

ollo

s: >

a 8

sem

.

Gal

linas

: > a

12

sem

.

Bro

iler

EN

C,IA

, LT

CF

His

opo

traq

ueal

PC

RA

VE

NC

,IA,L

TC

F, G

AH

isop

o tr

aque

alP

CR

AV

Sal

mon

ella

sp

GA

His

opo

de a

rras

tre

culti

vo e

iden

tific

ació

nbi

oquí

mic

as

EN

C,IA

,LT

CF

, GA

His

opo

traq

ueal

PC

RA

V

Sal

mon

ella

sp

GA

His

opo

de a

rras

tre

culti

vo e

iden

tific

ació

nbi

oquí

mic

as

Tra

spat

io y

C

omba

teE

NC

,IA, L

TT

rasp

atio

y

Com

bate

His

opo

traq

ueal

PC

RA

V

Zoo

cria

dero

sE

NC

, IA

Zoo

cria

dero

sH

eces

fres

cas

PC

RA

V

GA

: G

ran

ja a

víc

ola

; C

A:

cen

tro

de

aco

pio

, C

F: C

en

tro

de

Fae

nam

iento

, P

I: P

lan

ta d

e In

cub

ació

n;

AV

: A

isla

mie

nto

vir

al.

Pos

tura

C

omer

cial

Rep

rodu

ctor

esM

ayor

es d

e 18

sem

anas

Ser

oló

gic

a

IA

Pos

tura

co

mer

cial

Tra

spat

io y

C

omba

te

ELI

SA

AV

AV

AV

Tod

osT

odas

Tod

as

Vir

oló

gic

a/A

gen

te

cau

sal

Las

mis

ma

aves

a la

s qu

e se

re

aliz

a vi

gila

ncia

ser

ológ

ica

Rep

rodu

ctor

es

Eva

luac

ión

Clín

ica

Sue

ro

Clín

ica







Revisión: 00

Página: 65 de 65

ANEXO 20: LISTA DE ZOOCRIADEROS

DE

PA

RT

AM

EN

TO

ZO

OC

RIA

DE

RO

TE

LE

FO

NO

/e-m

ail

RE

SP

ON

SA

BL

E D

IRE

CC

ION

ZO

OC

RIA

DE

RO

AM

AZ

ON

AS

TU

NA

AN

TS

jem

pe@

bloc

kbus

ter.

com

.pe

P. C

harle

s P

asca

lD

ihar

ce A

guirr

e, S

.J.Q

da. d

e T

unin

, mar

gen

izq.

Del

Río

Nie

va,

parc

ela

38, S

anta

Mar

ía d

e N

ieva

, Con

dorc

anqu

i - A

maz

onas

AR

EQ

UIP

AC

IRE

S-P

ER

U

( )

5716

41 fa

x (

) 57

1183

, ci

res@

mix

mai

l.com

MS

c. B

ened

icto

Bac

a R

osad

o La

Joy

a I P

rovi

ncia

y d

istr

ito d

e T

ambo

pata

AR

EQ

UIP

AP

ILP

INT

O05

4-44

4821

054

-973

7194

S

r. J

ose

Vill

anue

va B

ustio

sF

undo

San

ta R

osa

Late

ral H

Irrig

ació

n Z

amac

ola

– C

erro

Col

orad

o A

requ

ipa

AR

EQ

UIP

AR

UP

ICO

LA S

.R.L

. (0

54)

2746

76,

cesa

rort

iz74

@ho

tmai

l.com

Sr.

Cés

ar A

dolfo

Ort

iz Z

eval

los

Urb

. San

ta S

ofía

Mz.

A -

6 C

halla

pam

pa, d

istr

ito C

erro

Col

orad

o,

prov

. y D

pto.

Are

quip

a

AR

EQ

UIP

AS

UR

I UN

O

(Ave

stru

ces)

05

4-96

0740

4, F

ax: 0

5223

884

Sr.

Gon

zalo

Flo

res

Cas

tro

Km

996

Pan

amer

ican

a S

ur -

La

Joya

- A

requ

ipa

AR

EQ

UIP

AZ

OO

MU

ND

O

054-

9301

010

054-

9730

390,

sg

m_a

gp@

hotm

ail.c

omS

ra. S

ocor

ro G

arcí

a M

árqu

ez

Bal

near

io d

e Je

sús

S/N

Pau

carp

ata-

Are

quip

a.

CA

JAM

AR

CA

AT

AH

UA

LPA

JE

RU

SA

LEN

(076

)-36

5631

gr

anja

porc

on@

yaho

o.co

m

Coo

pera

tiva

agra

ria "

Ata

hual

pa

Jeru

salé

n" d

e tr

abaj

ador

es L

TD

AK

m 3

5 C

arre

tera

Caj

amar

ca a

Bam

bam

arca

CA

JAM

AR

CA

EL

CA

JAM

AR

QU

EZ

rest

aura

ntel

caja

mar

quez

@ho

tma

il.co

mS

r. M

ario

Pas

co V

arga

s Jr

. Am

azon

as 7

80 C

ajam

arca

HU

AN

UC

OY

AH

UA

R C

ON

DO

R(0

62)

5195

59 S

r. F

ortu

nato

Tib

urci

o F

ano

Fun

do "

Der

repe

nte"

, loc

alid

ad d

e H

uaca

r, d

istr

ito d

e H

uaca

r, p

rov

y de

part

amen

to d

e H

uánu

co

ICA

EL

SA

JIN

O

034-

6036

20

zooc

elsa

jino@

latin

mai

l.com

Sr.

Gui

llerm

o B

aigo

rria

Ch.

Jr. A

brah

am V

alde

lom

ar N

º 45

0 P

isco

, Km

. 235

Pan

. Sur

-Pis

co

ICA

MU

ND

O S

ILV

ES

TR

E w

ww

.mun

do-s

ilves

tre.

com

056

-22

9156

gm

asia

s@vi

abcp

.com

Sr.

Ant

onio

Mas

ias

Fel

ipa

Ex

Fun

do S

anta

Ros

a s/

n-C

achi

che-

Ica

LA L

IBE

RT

AD

WIL

DLI

FE

& F

ISH

2106

16,

6555

50In

és C

lotid

e B

elén

Zar

zosa

C.

Ane

xo C

omun

al V

icto

r R

aul-V

aldi

via

alta

Hua

ncha

co, L

a Li

bert

ad

LAM

BA

YE

QU

EB

AR

BA

RA

D´A

CH

ILLE

cr

acid

ae@

pava

alib

lanc

a.or

g,

cham

aepe

tes@

gmai

l.com

Ing.

Fer

nand

o A

ngul

o P

roto

long

oF

undo

San

Ram

ón, A

ntig

ua P

anam

eric

ana

km 1

03, L

as P

ampa

s -

Lam

baye

que

LAM

BA

YE

QU

EW

ISE

(A

vest

ruce

s P

erú)

(0

74)9

6561

63,

aves

truc

espe

ru@

alte

rn.o

rgS

r. V

ícto

r R

icar

do C

asta

ñeda

W

ise

Sec

tor

Bal

dera

Dis

trito

San

Jos

é, L

amba

yequ

e

LIM

AA

LEJA

ND

RA

9758

090,

368

2357

Dr.

Man

uel C

asta

ñeda

J.

Av.

El L

inde

ro N

º 43

4, L

as L

agun

as L

a M

olin

a

LIM

AC

HA

KR

AS

44

6-95

87 4

7987

39

alfo

nsoe

scaj

adill

o@ya

hoo.

com

Sr.

Alfo

nso

Esc

ajad

illo

O'C

onno

rA

v. T

ambo

Nue

vo s

/n M

z H

, Lot

e 12

Dis

trito

de

Cie

negu

illa

-Lim

a

LIM

AD

AN

Y

5750

499,

cel

. 904

7866

, cel

. 81

1371

6S

r. J

orge

Agu

ena

Nak

ama

Av.

Jos

é C

arlo

s M

aria

tegu

i Nº

1460

Ate

Vita

rte

LIM

AD

OU

GLA

S C

HIO

NG

3710

656

Sr.

Vic

tor

Dou

glas

Chi

ong

Las

Gav

iota

s M

z. P

2 Lo

te L

2 H

uach

ipa

Ate

Vita

rte

LIM

AE

L A

LET

O 4

4732

42/ 9

90-3

0113

, de

nisc

isne

ros@

hotm

ail.c

omS

r. D

enis

Cis

nero

s A

lcáz

ar

Cal

le R

amón

Zav

ala

361,

Mira

flore

s

LIM

AE

L H

UA

YC

O

371-

1588

940

-004

45,

jaot

ero@

viab

cp.c

omS

r. J

osé

Ote

ro C

orbe

ttoC

alle

3 M

z O

Lot

e II,

Hua

chip

a; C

alle

Bal

taza

r La

Tor

re N

º 72

0, S

an

Isid

ro

LIM

AF

ALC

ON

IFO

RM

ES

B

RE

ED

ING

CE

NT

ER

99

4082

820,

no

rman

_qb@

hotm

ail.c

om,

Em

pres

a C

ontr

ol R

apaz

S.A

.C.,

Nor

man

Qui

rós

/ Ser

gio

Qui

rós

Av.

Ric

ardo

Elia

s A

paric

io N

º 50

8 U

rb. C

lub

Cam

pest

re L

as L

agun

as

de L

a M

olin

a, L

a M

olin

a

LIM

AG

OLD

EN

EM

U 4

27-7

522

Eliz

abet

h H

iga

km. 3

0.5,

Car

rete

ra P

anam

eric

ana

Sur

, San

Ped

ro, L

urin

.

LIM

AJE

AN

DE

CO

NIN

CK

DE

W

AE

LLE

9931

787

2512

996

Sr.

Jea

n de

Con

inck

A

v. E

l sol

Nº

953

La C

ampi

ña C

horr

illos

LIM

AO

RN

I 100

47

9091

3 jm

chan

g52@

hotm

ail.c

omS

r. M

igue

l Cha

ng C

astil

lo

Av.

La

Mol

ina

Nº

1441

, Urb

.El S

ol d

e La

Mol

ina

LIM

AS

AF

AR

I JO

HN

47

7-33

97S

r. M

ario

Esp

inoz

a M

onto

ya

Jr. T

acna

Nº

409

Sur

co

TA

CN

AG

US

TA

VO

DE

RIV

ER

O

BU

ST

AM

AN

TE

05

4-41

1432

052

-965

9796

, 054

-65

9796

Dr.

Alo

nso

de R

iver

o B

usta

man

te

Cal

le A

rias

Ara

güez

Nº

180

Tac

na

Fu

en

te IN

RE

NA

, 20

08

SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y DIRECCION DE …

Documents

Transcript of SUBDIRECCION DE ANALISIS DE RIESGO Y DIRECCION DE …