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ESCUELA POLITÉCNICA NACIONAL

FACULTAD DE INGENIERÍA CIVIL Y AMBIENTAL

PROPUESTA DE UN PLAN DE MONITOREO DE ESTUARIOS Y EVALUACIÓN DE CALIDAD DEL AGUA. CASO DE ESTUDIO:

ESTUARIO DE LA SUBCUENCA DEL RÍO ATACAMES

PROYECTO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO

DE INGENIERA AMBIENTAL

ANA PAOLA CHANGO CAÑOLA [email protected]

NANCY ESTAFANÍA NACIMBA LOACHAMIN [email protected]

DIRECTOR: ING.MSC.NATHALIA VALENCIA [email protected]

Quito, Diciembre 2015

II

DECLARACIÓN

Nosotras, Ana Paola Chango Cañola y Nancy Estefanía Nacimba Loachamin,

declaramos bajo juramento que este trabajo está realizado por nuestra autoría,

que este trabajo no ha sido presentado antes para ningún grado o calificación

profesional; y se ha revisado las referencias bibliográficas que están descritas en

este documento.

La Escuela Politécnica Nacional, puede hacer uso de los derechos

correspondientes a este trabajo, según lo establecido por la Ley de Propiedad

Intelectual, por su Reglamento y por la normatividad institucional vigente.

_____________________ ______________________ ANA PAOLA NANCY ESTEFANIA CHANGO CAÑOLA NACIMBA LOACHAMIN

III

CERTIFICACIÓN

Certifico que el presente trabajo fue desarrollado por Ana Paola Chango Cañola y

Nancy Estefania Nacimba Loachamin, bajo mi supervisión.

NATHALIA VALENCIA BONILLA, MSC

DIRECTOR DEL PROYECTO

IV

AGRADECIMIENTO

Agradezco a Dios por permitirme llegar hasta este día, a mis padres por estar

conmigo como amigos junto con mis hermanas Isabel y Michelle a mi tío Carlos.

A nuestra directora Ing. Nathalia Valencia MSc. Ella nos ha brindado apoyo

técnico y humano, y, nos ha motivado a mejorar siempre como profesionales.

Al Gobierno Autónomo Descentralizado de Atacames por permitirnos contar con

su apoyo especialmente al Sr. Roger Quintero.

Al Centro de Investigaciones y control Ambiental (CICAM), Martín, Carola,

Jimena, Pablo, Cris, Rubén, Alejo que siempre nos brindaron su apoyo y amistad

así como Carlita y Hairo en si la familia CICAM estuvo siempre con nosotras.

Al Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología (INAMHI) en especial al Ing.

Homero Jácome quien nos animó para terminar con apremio el trabajo.

A la Universidad Técnica Luis Vargas Torres por la información necesaria para

poder llevar a cabo este proyecto.

Al Laboratorio Docente de Ingeniería Ambiental representado por el Ing. Cristian

Ramos quién siempre nos colaboró hasta el final e incondicionalmente.

A Ing. Cristina Torres quién nos brindó mucho de su conocimiento para realizar

nuestro primer muestreo. A mis amigas Estefanía, Stephany, Dámarys. Mis Muu,

Daysi V., Tefa S., Mery R., Isa J., que siempre me han apoyado y me han

brindado su cariño incondicional. Mis amigos Braunis, Bryan (Arroceins), Gaby V.,

Jime E., Lili, Génesis, Carlitos (Charls), Jonathan, Vivi C, Vivi V, Pame S., Abel

T.,.A todos mis amigos del salón de clases Gaby M., Pao E., Sofi A., Will, los

grosos, Anita A., Leslie S., Rachel V., Dani T. , Andre C., Carito L., Ismael, Daniel.

A Nancy has sido una amiga, y colega excelente, el compartir esta etapa contigo

nos ha unido, hemos aprendido muchas cosas y muchas más vendrán.

Ana Chango

V

AGRADECIMIENTO

En primer lugar quiero agradecer a Dios por haberme permitido culminar con una

meta más en mi camino y darme la sabiduría para no rendirme y seguir luchando.

A la Ing. Nathalia Valencia la cual con su tiempo y dedicación siempre nos estuvo

guiando para poder hacer un buen trabajo.

Al Centro de Investigación y Control Ambiental (CICAM) representado por la Ing. Carola Fierro quien supo brindarnos su apoyo y motivación para culminar nuestro proyecto. Además del equipo de analistas Cristina T, Rubén, Cristina P, Martín O,

Jime C, Karlita, Alejo, Pablo y Hairo.

Al Laboratorio Docente de Ingeniería Ambiental representado por el Ing. Christian

Ramos quien nos ayudó incondicional y desinteresadamente.

Al Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología (INAMHI) por su colaboración

en especial al Ing. Homero Jácome, Ing. Byron Ñato e Ing. Julio Terán.

A mis queridas amigas las MUUU (Daysi, Tefa, Isa, Mery, Nathy M y Yadi P), que sin su sincera amistad y locuras no hubiese sido tan gratificante haber pasado por

las aulas de la EPN.

A mis amigos incondicionales Javier, Wilson M, Jonathan, Christian A., que

siempre estuvieron a mi lado aconsejándome y brindándome su apoyo.

A todos mis amigos, que hice a lo largo de mi carrera universitaria de los cuales pude aprender mucho durante estos años. Jime E, Abel, Edu, Gaby V, Carito L, Carlitos D, Wilson G, Isma S, Bryan R, Braulio L, Pame S, Lili Ch, Andre C, Mishell R, Leslie S, Raquel V., los grosos, Lisandro P, Vivi C, Vivi V, Edwin B

(Juanito), Diego E. A l@s chic@s de la materia Calidad del Agua (ciclo 2015-A)

A mis amigas del Colegio THE Quito, Anita T. Paty T, Johana C, Mireya C, Erika

M, Andrea G, Mary Y, Dianita L. Quienes a pesar de tomar caminos diferentes

siempre estuvieron acompañándome en los momentos más importantes.

A mi compañera de tesis Anita gracias a su paciencia, esfuerzo y entusiasmo no hubiese sido posible culminar con este proyecto. También agradezco a sus

padres quienes me recibieron en su casa con cariño y hospitalidad.

Nancy

VI

DEDICATORIA

Este trabajo lo dedico a mis padres que siempre han apoyado cada una de mis

ocurrencias, y que me apoyaron en este emprendimiento con mucho esfuerzo y

dedicación.

A mis hermanas y a mi tío que siempre han estado para mí.

A todas las personas que estuvieron conmigo y siempre me brindaron su

amistad, apoyo y ayuda desinteresada con el único propósito de que cada día sea

mejor persona y estudiante.

A ti quien tiene sueños y metas, solo trabaja por ellos y cuando menos lo pienses

serán tu realidad.

“La constancia vence lo que la dicha no alcanza. “

Dicho popular, Anónimo

Ana

VII

DEDICATORIA

Este proyecto de titulación está dedicado a Dios, mi familia y amigos.

A mis padres Luis y Delia que con su trabajo y esfuerzo me apoyaron siempre en mi carrera universitaria. Mi hermano Andy el cual me apoyó con su tiempo y esfuerzo para poder realizar este proyecto de titulación a mi hermana Milenka que con sus risas y travesuras han alegrado mi vida. A mis tíos que siempre tuvieron

una palabra de apoyo durante toda mi carrera y creyeron en mí.

A quién esté interesado en buscar nuevos retos y lugares para investigar en el

Ecuador y así aportar con el desarrollo del país.

"La llave del éxito es el conocimiento del valor de las cosas".

(John Boyle O'Reilly)

Nancy

VIII

CONTENIDO

DECLARACIÓN ...................................................................................................... II

CERTIFICACIÓN ................................................................................................... III

AGRADECIMIENTO .............................................................................................. IV

DEDICATORIA ...................................................................................................... VI

CONTENIDO ....................................................................................................... VIII

LISTA DE FIGURAS ............................................................................................ XV

LISTA DE TABLAS ............................................................................................. XVII

LISTA DE GRÁFICOS ....................................................................................... XVIII

LISTA DE CUADROS ......................................................................................... XXI

LISTA DE FOTOGRAFÍAS ................................................................................ XXII

SIMBOLOGÍA Y SIGLAS................................................................................... XXIII

RESUMEN ....................................................................................................... XXIV

ABSTRACT ....................................................................................................... XXV

CAPÍTULO 1 ........................................................................................................... 1

INTRODUCCIÓN .................................................................................................... 1

1.1 ANTECEDENTES ................................................................................... 1

1.2 ALCANCE ............................................................................................... 2

1.3 OBJETIVO GENERAL ............................................................................ 3

1.4 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ................................................................... 3

1.5 JUSTIFICACIÓN ..................................................................................... 3

CAPÍTULO 2 ........................................................................................................... 5

ESTUARIOS ............................................................................................................ 5

2.1 DEFINICIONES BÁSICAS ...................................................................... 5

2.2 CLASIFICACIÓN DE LOS ESTUARIOS ................................................. 6

2.2.1 CLASIFICACIÓN FISIOGRÁFICA: ..................................................... 7

2.2.1.1 Valle de río inundado........................................................................ 7

IX

2.2.1.2 Fiordos ............................................................................................. 7

2.2.1.3 Estuarios de barrera ......................................................................... 8

2.2.1.4 Estuarios tectónicos ......................................................................... 9

2.2.2 CLASIFICACIÓN POR RANGO DE MAREA ..................................... 10

2.2.2.1 Estuarios micromareales: ............................................................... 10

2.2.2.2 Estuarios mesomareales: ............................................................... 10

2.2.2.3 Estuario macromareal: ................................................................... 10

2.2.2.4 Estuario hipermareal: ..................................................................... 10

2.2.3 CLASIFICACIÓN POR SALINIDAD ................................................... 10

2.2.3.1 Estuario positivo: ............................................................................ 10

2.2.3.2 Estuario negativo: ........................................................................... 11

2.2.3.3 Estuarios neutros: .......................................................................... 11

2.2.4 CLASIFICACIÓN POR MEZCLA DE AGUA ...................................... 12

2.2.4.1 Estuarios de cuña de sal o estratificados: ...................................... 12

2.2.4.2 Estuarios parcialmente estratificados: ............................................ 12

2.2.4.3 Estuarios bien mezclados: ............................................................. 12

2.2.5 OTRAS CLASIFICACIONES ............................................................. 13

2.2.5.1 Estuario primario ............................................................................ 13

2.2.5.2 Estuario secundario ........................................................................ 14

2.3 CARACTERÍSTICAS FISICO-QUÍMICAS Y BIOLÓGICAS DE LOS

ESTUARIOS ...................................................................................................... 15

2.3.1 PARÁMETROS FÍSICOS .................................................................. 16

2.3.1.1 Temperatura ................................................................................... 16

2.3.1.2 Salinidad ......................................................................................... 16

2.3.1.3 Turbidez y sólidos totales ............................................................... 17

X

2.3.1.4 Parámetros meteorológicos (Tiempo) ........................................... 18

2.3.2 PARÁMETROS QUÍMICOS .............................................................. 19

2.3.2.1 Oxígeno .......................................................................................... 19

2.3.2.2 Nutrientes ....................................................................................... 19

2.3.2.2.1 Nitrógeno ................................................................................... 20

2.3.2.2.2 Fósforo ...................................................................................... 21

2.3.2.2.3 Silicio ......................................................................................... 23

2.3.2.3 Potencial hidrógeno ........................................................................ 24

2.3.2.4 Sulfatos .......................................................................................... 25

2.3.2.5 Hierro .............................................................................................. 26

2.3.2.6 Clorofila “a” ..................................................................................... 26

2.3.2.7 Contaminantes tóxicos ................................................................... 26

2.3.3 PARÁMETROS BIOLÓGICOS (BACTERIAS)................................... 27

2.4 CONTAMINACIÓN POR FUENTES ANTROPOGÉNICAS .................. 27

2.5 MARCO LEGAL .................................................................................... 33

2.5.1 CONSTITUCIÓN DEL ECUADOR ..................................................... 33

2.5.2 LEY DE PREVENCIÓN Y CONTROL DE LA CONTAMINACIÓN

AMBIENTAL ................................................................................................... 34

2.5.3 LEY DE GESTIÓN AMBIENTAL ........................................................ 34

2.5.4 TULSMA, LIBRO V, DE LA GESTIÓN DE LOS RECURSOS

COSTEROS .................................................................................................... 34

2.5.5 TULSMA, LIBRO VI ANEXO 1, NORMA DE CALIDAD

AMBIENTAL Y DE DESCARGA DE EFLUENTES: RECURSO AGUA .......... 35

2.6 EXPERIENCIAS DE REDES DE EVALUACIÓN DE LA CALIDAD

DEL AGUA EN ESTUARIOS ............................................................................. 36

XI

2.6.1 ÍNDICES PARA EVALUAR LA CALIDAD DEL AGUA EN

ESTUARIOS ................................................................................................... 42

2.6.1.1 Índice de estado trófico TRIX (nP) ................................................. 42

2.6.1.2 Índice de calidad NSF .................................................................... 43

CAPÍTULO 3 ......................................................................................................... 45

METODOLOGÍA Y DELIMITACIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO ............................ 45

3.1 DESCRIPCIÓN DEL SITIO DE ESTUDIO ............................................ 45

3.1.1 UBICACIÓN ....................................................................................... 45

3.1.2 DELIMITACIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO ........................................ 46

3.1.3 CLIMATOLOGÍA ................................................................................ 46

3.1.3.1 Precipitación ................................................................................... 46

3.1.3.2 Humedad relativa ........................................................................... 47

3.1.3.3 Nubosidad ...................................................................................... 48

3.1.3.4 Viento ............................................................................................. 48

3.1.3.5 Temperatura ................................................................................... 50

3.1.4 BIODIVERSIDAD ............................................................................... 50

3.1.1 USO DEL SUELO .............................................................................. 52

3.1.5 POBLACIÓN ...................................................................................... 53

3.1.6 EDUCACIÓN ..................................................................................... 54

3.2 CARACTERIZACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA DEL ÁREA

DE ESTUDIO ..................................................................................................... 55

3.2.1 FUENTES DE CONTAMINACIÓN ..................................................... 55

3.3 METODOLOGÍA ................................................................................... 56

3.3.1 MUESTREO ...................................................................................... 56

3.3.2 CAMPAÑAS DE MUESTREO ........................................................... 60

3.3.3 PARÁMETROS ESTUDIADOS ......................................................... 60

XII

3.3.4 TOMA, PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN DE

MUESTRAS DE AGUA ................................................................................... 61

3.3.5 MÉTODOS DE ANÁLISIS Y EQUIPOS ............................................. 63

3.3.6 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO ................................................... 65

CAPÍTULO 4 ......................................................................................................... 66

ANÁLISIS DE RESULTADOS ............................................................................... 66

4.1 RESULTADOS Y DISCUSIÓN ............................................................. 66

4.1.1 SALINIDAD ........................................................................................ 66

4.1.2 HIERRO ............................................................................................. 67

4.1.3 NITRÓGENO AMONIACAL ............................................................... 69

4.1.4 NITRATOS ........................................................................................ 71

4.1.5 NITRITOS .......................................................................................... 73

4.1.6 ORTOFOSFATOS ............................................................................. 74

4.1.7 SILICIO .............................................................................................. 75

4.1.8 OXÍGENO DISUELTO ....................................................................... 76

4.1.9 POTENCIAL HIDRÓGENO ............................................................... 77

4.1.10 TEMPERATURA ................................................................................ 78

4.1.11 TURBIDEZ ......................................................................................... 80

4.1.12 CLOROFILA “a” ................................................................................. 81

4.1.13 DBO 5 ................................................................................................. 82

4.1.14 SULFATOS ........................................................................................ 83

4.1.15 SÓLIDOS TOTALES ......................................................................... 84

4.1.16 COLIFORMES FECALES .................................................................. 86

4.2 EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA ........................................ 87

XIII

4.2.1 CALIDAD DEL AGUA DEL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES

APLICANDO LOS ÍNDICES TRIX (nP) Y NSF ............................................... 87

4.2.2 COMPARACIÓN DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS CON

LA NORMATIVA ECUATORIA ...................................................................... 89

4.3 PROPUESTA DE UN PLAN DE MONITOREO .................................... 92

CAPÍTULO 5 ......................................................................................................... 93

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ........................................................ 93

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ...................................................................... 98

ANEXOS ............................................................................................................. 106

ANEXO N ° 1 ....................................................................................................... 107

UBICACIÓN DE LA ZONA DE ESTUDIO ........................................................... 107

ANEXO N° 2 ........................................................................................................ 111

SERIES METEOROLÓGICAS ............................................................................ 111

ANEXO N° 3 ........................................................................................................ 120

USO DEL SUELO ............................................................................................... 120

ANEXO N° 4 ........................................................................................................ 122

FOTOGRAFÍAS ................................................................................................... 122

ANEXO N° 5 ........................................................................................................ 126

TABLAS DE MAREAS ........................................................................................ 126

ANEXO N° 6 ........................................................................................................ 129

MÉTODOS DE LOS ANÁLISIS EN LABORATORIO. ......................................... 129

ANEXO N° 7 ........................................................................................................ 140

LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO ..................................................................... 140

ANEXO N° 8 ........................................................................................................ 144

TABLAS DE DATOS DE PARÁMETROS ANALIZADOS .................................... 144

XIV

ANEXO N° 9 ........................................................................................................ 147

ÍNDICE TRIX E ÍNDICE NSF .............................................................................. 147

ANEXO N° 10 ...................................................................................................... 150

PLAN DE MONITOREO ...................................................................................... 150

XV

LISTA DE FIGURAS

FIGURA 2.1 ESQUEMA GENERAL DE LA ESTRUCTURA DEL ESTUARIO.

(A) ZONA MARINA, (B) ESTUARIO MEDIO, (C) ESTUARIO SUPERIOR O

FLUVIAL, (D) LÍMITE EFECTIVO FLUVIAL. .......................................................... 6

FIGURA 2.2 ESQUEMA DE UN ESTUARIO VALLE DE RÍO INUNDADO:

(A) VISTA EN PLANTA, (B) PERFIL LONGITUDINAL, (C) PERFIL DE LA

SECCIÓN TRANSVERSAL .................................................................................... 7

FIGURA 2.3 ESQUEMA DE UN FIORDO: (A) VISTA EN PLANTA, (B)

PERFIL LONGITUDINAL, (C) PERFIL DE LA SECCIÓN TRANSVERSAL ........... 8

FIGURA 2.4 ESQUEMA DE UN ESTUARIO DE BARRERA. ............................. 9

FIGURA 2.5 ESQUEMA DE UN ESTUARIO TECTÓNICO (TIPO

COMPUESTO) ....................................................................................................... 9

FIGURA 2.6 TIPOS DE ESTUARIOS EN FUNCIÓN DE LA SALINIDAD A)

ESTUARIO POSITIVO, B) NEGATIVO O INVERSO, C) NEUTRO. .................... 11

FIGURA 2.7 CLASIFICACIÓN DE ESTUARIOS BASADA EN LA MEZCLA

DE AGUA DULCE Y MARINA PROPUESTA POR PRITCHARD (1967). A)

CUÑA SALINA, B) PARCIALMENTE MEZCLADO, C) VERTICALMENTE

HOMOGÉNEO, D) DIFERENCIA EN LA POSICIÓN DE LA CUÑA SALINA

EN FUNCIÓN DE LAS VARIACIONES DEL FLUJO FLUVIAL…………………… 13

FIGURA 2.8 ESTUARIOS PRIMARIOS Y SECUNDARIOS................................. 15

FIGURA 2.9 DISTRIBUCIÓN DE LA SALINIDAD EN UN ESTUARIO. ................ 17

FIGURA 2.10 REPRESENTACIÓN ESQUEMÁTICA GENERAL DE LOS

PROCESOS INVOLUCRADOS EN EL CICLO DE NUTRIENTES EN UN

ESTUARIO. (DSI: SÍLICE DISUELTO) ................................................................ 20

FIGURA 2. 11 COMPUESTOS DE NITRÓGENO Y REACCIONES QUE

TIENEN LUGAR ENTRE ELLOS. ........................................................................ 21

XVI

FIGURA 2.12 DIAGRAMA SIMPLIFICADO DEL CICLO DEL FÓSFORO

EN UN ESTUARIO. ............................................................................................. 22

FIGURA 2.13 CICLO DEL SILICIO EN UN ECOSISTEMA LITORAL .................. 24

FIGURA 2.14 EFECTOS DE LOS FLUJOS CAMBIANTES DE AGUA

DULCE A LOS ESTUARIOS. ............................................................................... 33

XVII

LISTA DE TABLAS

TABLA 2.1 ÍNDICE DEL ESTADO TRÓFICO, TRIX, Y CALIDAD DEL

AGUA, DE ACUERDO A LA LEGISLACIÓN ITALIANA EN LA

EVALUACIÓN DEL ESTADO DEL AGUA DE MAR (PENNA ET AL., 2004). .... 43

TABLA 2.2 PESOS DE LAS VARIABLES PARA EL ÍNDICE DE CALIDAD

DE AGUA NSF ................................................................................................... 44

TABLA 3.1 ESPECIES DE PECES QUE SE ENCUENTRAN EN EL

ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES. .................................................................... 52

TABLA 4.1 VALORES OBTENIDOS DEL CÁLCULO DEL ÍNDICE TRIX

(nP) EN EL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES EN CONDICIONES

CRÍTICAS (BAJAMAR Y ÉPOCA SECA, JUNIO DE 2015) ............................... 88

TABLA 4.2 VALORES OBTENIDOS DEL CÁLCULO DEL ÍNDICE DE

CALIDAD DEL AGUA NSF EN CONDICIONES CRÍTICAS (BAJAMAR

Y ÉPOCA SECA, JUNIO DE 2015) .................................................................... 89

TABLA 4.3 COMPARACIÓN DE LOS PARÁMETROS CON LA NORMA

VIGENTE (MUESTREO ENERO 2015) ............................................................. 90

TABLA 4.4 COMPARACIÓN DE LOS PARÁMETROS CON LA NORMA

VIGENTE (MUESTREO JUNIO 2015) .............................................................. 91

XVIII

LISTA DE GRÁFICOS

GRÁFICO 3.1 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA

PRECIPITACIÓN (PERIODO 1981-2013)............................................................ 47

GRÁFICO 3.2 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA HUMEDAD

RELATIVA (PERIODO 1981-2013) ...................................................................... 47

GRÁFICO 3.3 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA NUBOSIDAD

(PERIODO 1981- 2013) ....................................................................................... 48

GRÁFICO 3.4 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA VELOCIDAD

DEL VIENTO (PERIODO 1981-2013) .................................................................. 49

GRÁFICO 3.5 DISTRIBUCIÓN PORCENTUAL DE LA DIRECCIÓN DEL

VIENTO (PERIODO 1981-2013) ......................................................................... 49

GRÁFICO 3.6 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA TEMPERATURA

MEDIA, MÁXIMA Y MÍNIMA (PERIODO 1981-2013) ........................................... 50

GRÁFICO 3.7 DESCRIPCIÓN DE LA POBLACIÓN ECONÓMICAMENTE

ACTIVA DE LA PARROQUIA ATACAMES ......................................................... 54

GRÁFICO 4.1 VARIACIÓN DE LA SALINIDAD EN PLEAMAR Y

BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO

ÉPOCA SECA. .................................................................................................. 67

GRÁFICO 4.2 VARIACIÓN DE CONCENTRACIÓN DE HIERRO TOTAL

(Fe) EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B)

MUESTREO ÉPOCA SECA. ............................................................................ 69

GRÁFICO 4.3 VARIACIÓN DE NITRÓGENO AMONICAL (N-NH4+) EN

PLEAMAR Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA;

B) MUESTREO ÉPOCA SECA. ....................................................................... 70

GRÁFICO 4.4 VARIACIÓN DE LAS ESPECIES INORGÁNICAS DE

NITRÓGENO EN ÉPOCA LLUVIOSA A) BAJAMAR; B) PLEAMAR. ................. 71

XIX

GRÁFICO 4.5 VARIACIÓN DE LAS ESPECIES INORGÁNICAS DEL

NITRÓGENO EN ÉPOCA SECA A) BAJAMAR; B) PLEAMAR. ........................ 71

GRÁFICO 4.6 VARIACIÓN NITRATOS (NO3) EN PLEAMAR Y BAJAMAR.

A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA SECA. ............. 72

GRÁFICO 4.7 VARIACIÓN DE NITRITOS (NO2) EN PLEAMAR Y


ÉPOCA SECA. .................................................................................................. 73

GRÁFICO 4.8 VARIACIÓN DE ORTOFOSFATOS (PO43-) EN PLEAMAR

Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO

ÉPOCA SECA. .................................................................................................. 75

GRÁFICO 4.9 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SILICIO (SiO2) EN


B) MUESTREO ÉPOCA SECA. ........................................................................ 76

GRÁFICO 4.10 VARIACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO (OD) EN PLEAMAR

Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO

ÉPOCA SECA. .................................................................................................. 77

GRÁFICO 4.11 VARIACIÓN DEL POTENCIAL HIDRÓGENO (pH) EN



GRÁFICO 4.12 VARIACIÓN DE TEMPERATURA EN PLEAMAR Y

BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA

SECA. ................................................................................................................ 79

GRÁFICO 4.13 VARIACIÓN DE LA TURBIDEZ EN PLEAMAR Y


ÉPOCA SECA. .................................................................................................. 81

XX

GRÁFICO 4.14 VARIACIÓN DE LA CLOROFILA A EN EL ESTUARIO

DEL RÍO ATACAMES. (JUNIO, 2015) ............................................................... 82

GRÁFICO 4.15 VARIACIÓN DE LA DEMANDA BIOQUÍMICA DE

OXÍGENO (DBO5) EN EL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES.

(JUNIO, 2015) .................................................................................................... 83

GRÁFICO 4.16 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SULFATO (SO42-) EN



GRÁFICO 4.17 VARIACIÓN DE LOS SÓLIDOS TOTALES EN

FUNCIÓN DE LA SALINIDAD. (A) BAJAMAR ÉPOCA SECA, (B)

PLEAMAR ÉPOCA SECA, (C) PLEAMAR ÉPOCA LLUVIOSA……………..….85

GRÁFICO 4.18 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SÓLIDOS TOTALES

EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B)

MUESTREO ÉPOCA SECA. ............................................................................ 86

GRÁFICO 4.19 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE COLIFORMES

FECALES EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA

LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA SECA. ..................................................... 87

XXI

LISTA DE CUADROS

CUADRO 2. 1 RESUMEN DE CONTAMINANTES COMUNES Y SUS

POSIBLES FUENTES EN AMBIENTES ESTUARINOS.

(ADAPTADO DE USEPA, 1997; MAINE DEP, 1996; USEPA, 1993). .................. 28

CUADRO 2. 2 EFECTOS POTENCIALES DE LAS ALTERACIONES

COMUNES DEL AFLUENCIA DE AGUA DULCE A LOS ESTUARIOS. .............. 31

CUADRO 2. 3 DESCRIPCIÓN DE LA IMPLEMENTACIÓN DEL

PROGRAMA DE MONITOREO ........................................................................... 38

CUADRO 2. 4 PARÁMETROS BÁSICOS COMPARATIVOS A EVALUAR

EN DIFERENTES CUERPOS DE AGUA. ............................................................ 39

CUADRO 2. 5 SELECCIÓN DE LOS PARÁMETROS PARA LA

EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA EN RELACIÓN A SU USO

(NO INDUSTRIAL). .............................................................................................. 40

CUADRO 3. 1 COORDENADAS DE LOS PUNTOS DE MUESTREO. ................ 58

CUADRO 3. 2 TÉCNICAS DE MUESTREO APLICADAS ................................... 62

XXII

LISTA DE FOTOGRAFÍAS

FOTOGRAFÍA 3.1 MUESTREO “IN SITU” DE PARÁMETROS FÍSICO-

QUÍMICOS. .......................................................................................................... 63

FOTOGRAFÍA 3. 2 COLECCIÓN DE MUESTRAS .............................................. 63

XXIII

SIMBOLOGÍA Y SIGLAS

B: Bajamar (cuando el agua del mar alcanza su altura más baja

dentro del ciclo de las mareas).

CICAM: Centro de Investigación y Control Ambiental

DGAC: Dirección General de Aviación Civil del Ecuador

DBO5: Demanda Bioquímica de Oxígeno medida a los 5 días

EPA: Environmental Protection Agency/ Agencia de Protección Medioambiental

GAD: Gobierno Autónomo Descentralizado

INAMHI: Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología

INOCAR: Instituto Oceanográfico de la Armada

Km: kilómetros

mg/L: miligramos por litro

OD: Oxígeno Disuelto

P: Pleamar (cuando el agua del mar alcanza su altura más alta

dentro del ciclo de las mareas)

PDOT: Plan de Desarrollo Y Ordenamiento Territorial

PEA: Población Económicamente Activa

ppt: parts per thousand/ partes por mil

ug/L: microgramos por litro

XXIV

RESUMEN

El presente trabajo propone un plan de monitoreo de calidad del agua del

estuario de río Atacames cantón Atacames provincia de Esmeraldas, en base a

los usos que los pobladores le dan al estuario, y al análisis de la concentración y

distribución de los parámetros físicos, químicos y microbiológicos.

Como parte del estudio se analizaron parámetros de calidad del agua como:

temperatura, pH, salinidad, oxígeno disuelto (OD), concentración de clorofila,

demanda bioquímica de oxígeno (DBO5), concentración de hierro, nitritos, nitratos,

nitrógeno amoniacal, ortofosfatos, concentración de sílice, sólidos totales, turbidez

y coliformes fecales. Los muestreos se realizaron en época seca (pleamar y

bajamar) y en época lluviosa (pleamar y bajamar) en un extensión de

aproximadamente 5 km hacia arriba del río desde mar abierto (Océano Pacífico).

Para reportar el estado actual del estuario se utilizó el índice de estado trófico

TRIX (nP), con el cual se determinó que en bajamar de época seca el estado de

la calidad del agua es pobre.

Junto con la evaluación del estuario se proponen también cuatro puntos de

muestreo, los cuales presentan altas concentraciones de nutrientes y coliformes

fecales, y concentraciones bajas de oxígeno disuelto (OD). Estos puntos están

ubicados en sitios donde la población de Atacames hace uso directo del estuario

para realizar sus actividades cotidianas.

XXV

ABSTRACT

The present project proposes a plan for monitoring the water quality of the Atacames

river's estuary located in Atacames canton province of Esmeraldas, that basis of the

applications that people give to the estuary, and the analysis of the concentration and

distribution of the physical, chemical and microbiological parameters.

As part of the study were analyzed water quality parameters such as: temperature, pH,

salinity, dissolved oxygen (OD), chlorophyll concentration, demand biochemistry of

oxygen (BOD5), concentration of iron, nitrites, nitrates, ammonia nitrogen, ortho-

phosphates, concentration of silica, total solids, turbidity and fecal coliform. The samplings

were carried out in dry season (low tide and tide) and during the rainy season (high & low

tide) in a section approximately 5 km up river from the open sea (Pacific Ocean).

To report the current state of the estuary was used the rate of trophic state TRIX (nP),

with which it was determined that at low tide of dry season the water quality's state is

poor.

Together with the evaluation of the estuary are also proposed four sampling points, which

have high concentrations of nutrients and fecal coliforms, and low concentrations of

dissolved oxygen (DO). These points are located at sites where the population in

Atacames makes direct use of the estuary to perform their daily activities.

1

CAPÍTULO 1

INTRODUCCIÓN

1.1 ANTECEDENTES

Los estuarios son ecosistemas que juegan un papel importante dentro del

equilibrio de las zonas costeras permitiendo el desarrollo de vida silvestre como

peces, crustáceos, aves, etc. que tienen un valor económico elevado. La flora del

ecosistema estuarino posee diferentes especies de mangle, que ofrecen servicios

ambientales de gran interés para desarrollo de las comunidades cercanas como

es el caso de la ciudad de Atacames. (Matamoros, B., 2013)

El estuario de Atacames ha sufrido deterioro de la calidad de su recurso hídrico

por el limitado acceso que tienen sus pobladores a servicios básicos como

alcantarillado, servicio de agua potable etc. Esto ha impedido el desarrollo normal

de la vida acuática del estuario. (PDOT- Atacames, 2012)

Uno de los primeros estudios en la zona de Atacames los realizó el Instituto

Oceanográfico de la Armada en 2002 “Caracterización de la calidad de las aguas

y sedimentos del río Atacames”, en el cual se concluyó que el ecosistema del río

Atacames en ese momento se encontraba severamente contaminado,

principalmente por los vertidos de aguas residuales (descargadas sin tratamiento

previo) procedentes de la ciudad de Atacames. (Rodríguez, A., 2002)

En 2012, La Pontificia Universidad Católica del Ecuador sede Esmeraldas

(PUCESE) realizó un estudio denominado “La Contaminación del río Atacames y

su impacto en la comunidad de peces” evidenciando una diversidad media de 1,6

según el índice de diversidad de Shannon-Weiner. Los resultados obtenidos de

los parámetros analizados en el ecosistema estuario arrojaron los siguientes

2

datos; para oxígeno disuelto (O2 disuelto) 6,01 mg/l, nitritos 0,0733 ug/l, y

coliformes fecales es 667,11 NMP /100ml. (Jiménez, P., 2011)

En el año 2013 estudiantes de la Universidad Técnica Luis Vargas Torres

realizaron proyectos de medición de la calidad y cantidad del agua de la cuenca

alta, media y baja del río Atacames, donde hicieron muestreos desde junio de

2013 hasta abril de 2014. Estos estudios reflejaron que el agua de la parte baja

del río Atacames no es apta para consumo humano debido a la actividad

antrópica directa. (Martínez, B., 2014)

1.2 ALCANCE

En la actualidad el estuario que rodea Atacames es utilizado como medio para

descargar todas las aguas residuales de los hoteles que operan en su alrededor,

sin contar las descargas y desechos sólidos que cada una de las viviendas

cercanas depositan en él. Pese a eso en el estuario se realizan actividades de

pesca, recolección de crustáceos y bivalvos para la alimentación local y venta de

estos productos.

Todos los factores anteriormente descritos conllevan a un potencial riesgo a la

salud, principalmente de los pobladores que viven a las orilla del estuario, mismos

que consumen los alimentos que se pueden extraer de éste. Además, se observa

el deterioro del paisaje lo cual es perjudicial para el sector turístico ya que ésta

actividad es importante para la población de Atacames.

El área de estudio comprende aproximadamente 5 km y se encuentra ubicada en

la provincia de Esmeraldas cantón Atacames ubicado geográficamente entre los

0°40’53.3’’ y 0°0’6.2’’ de latitud Sur y los 79°32’16’’ y 78°43’58.3’’de longitud

Oeste, en la Costa norte del Ecuador, a 350 Km Noreste de la ciudad de Quito

(PDOT-Atacames, 2012), se tomó en cuenta para el presente proyecto la zona

urbana, comercial y turística de la ciudad de Atacames debido a que las

3

actividades que se realizan en estas zonas tienen influencia directa en la calidad

de agua del estuario del río Atacames.

El objetivo del presente proyecto de titulación es proponer un plan de monitoreo

del estuario con el fin de generar a futuro la posibilidad de recuperarlo y reducir el

riesgo en la salud de la población.

1.3 OBJETIVO GENERAL

Proponer un plan de monitoreo de la calidad del agua para el estuario de la

subcuenca del río Atacames.

1.4 OBJETIVOS ESPECÍFICOS

1. Recopilar y analizar la información existente sobre la subcuenca del río

Atacames.

2. Definir los criterios de diseño para la red de monitoreo de la subcuenca del

río Atacames.

3. Establecer los puntos críticos de muestreo en la evaluación de calidad del

agua del río Atacames en la zona de estudio.

4. Diagnosticar los problemas fundamentales de la calidad del agua del río

Atacames y proponer estrategias para su recuperación.

1.5 JUSTIFICACIÓN

El desconocimiento de los pobladores de una comunidad sobre el daño real o

potencial de su recurso natural, hace a éste vulnerable a peligros relacionados

con su propia salud, por tanto, al aportar con medidas de manejo ambiental en la

zona del estuario del río Atacames sus pobladores estarán informados del daño

que causan, a un medio sensible como es éste.

4

En la ciudad de Atacames, el turismo es una actividad económica importante sin

embargo, también es responsable del crecimiento desordenado del sector

hotelero que junto con los asentamientos humanos a la rivera del estuario

provocan las descargas de aguas residuales a este cuerpo hídrico.

La implementación del plan de monitoreo en el estuario sirve como una

herramienta sólida para que las autoridades tomen medidas de recuperación y

conservación de éste ecosistema de acuerdo con el grado de contaminación que

muestren las distintas zonas monitoreadas. Involucrando a las personas que viven

en el estuario.

5

CAPÍTULO 2

ESTUARIOS

2.1 DEFINICIONES BÁSICAS

Los estuarios son cuerpos de agua semi-cerrados en los cuales confluyen dos

corrientes, una de agua salada procedente del mar abierto y otra por agua dulce

proveniente de un río. La palabra estuario deriva del vocablo latín “aestuarium”

que significa marisma (zona baja y pantanosa) o canal. (Bianchi, T., 2007)

Para una definición más descriptiva de los estuarios, la más acertada resulta ser

la de Perillo (1995) que propone lo siguiente “un estuario es un cuerpo de agua

costero semi-cerrado que se extiende hasta el límite efectivo de la influencia de la

marea, dentro del cual el agua salada que ingresa por una o más conexiones

libres con el mar abierto, o cualquier otro cuerpo de agua salino, es diluido

significativamente con agua dulce derivada del drenaje terrestre y puede sustentar

especies biológicas eurihalinas ya sea por una parte o la totalidad de su ciclo de

vida”. (Perillo, G., Cuadrado, D., 2013)

Los estuarios, geológicamente hablando, han existido desde al menos 200

millones de años, pero los estuarios como se los conoce actualmente se

empezaron a formar desde el periodo interglacial estable, a partir de la mitad

hacia el final del Holoceno y siguió en el Pleistoceno por el aumento en la

extensión y nivel del mar. (Bianchi, T., 2007).

Los estuarios constituyen ecosistemas sensibles, pero además tienen una gran

capacidad asimilativa por lo cual se les considera como sumideros de materia

orgánica ya que tienen una alta productividad, relacionada a la diversidad de

plantas, animales y bacterias que en ellos existen. (Olsen, S.B., Padma, T.V. &

Richter, B.D ,2006).

6

Según el Convención de Ramsar, 2013 los estuarios son considerados

humedales, es decir, una zona donde el agua es el principal factor que controla el

medio de la vida animal y vegetal relacionado a él.

En la FIGURA 2.1 se observa una estructura general del estuario; (a) zona marina

dominada por mareas y agua salada; (b) estuario medio donde el dominio está

dado por la mezcla de agua dulce y salda en diferentes proporciones (su límite

interior de este tramo se estable por la isohalina de 0.1 que marca la máxima

intrusión salina en el valle del río); (c) un estuario superior o fluvial, donde solo

hay agua dulce, afectada por las mareas y (d) zona que se encuentra entre el

límite efectivo de la acción de las mareas y el límite fluvial puro donde no hay

corrientes reversibles (donde la descarga del río se detiene por un corto periodo

de tiempo). (Perillo, G., Cuadrado, D., 2013)

FIGURA 2.1 ESQUEMA GENERAL DE LA ESTRUCTURA DEL ESTUARIO. (A)

ZONA MARINA, (B) ESTUARIO MEDIO, (C) ESTUARIO SUPERIOR O FLUVIAL,

(D) LÍMITE EFECTIVO FLUVIAL.

FUENTE: Clasificación, geomorfología y sedimentología de estuarios. (Perillo, G.,

Cuadrado, D., 2013)

MODIFICADO POR: Chango A., Nacimba N

2.2 CLASIFICACIÓN DE LOS ESTUARIOS

Existen diferentes clasificaciones de estuarios que se pueden establecer según el

criterio que se considere.

7

2.2.1 CLASIFICACIÓN FISIOGRÁFICA:

Consiste en clasificar a los estuarios desde un punto de vista geomorfológico.

2.2.1.1 Valle de río inundado

Este tipo de estuarios se formaron por los procesos tectónicos ocurridos en el mar

al final de la época del Pleistoceno-Holoceno (Perillo, G., 1996) la transgresión

flandriense ocasionó que los cuerpos de agua de llanura fueran inundados por el

océano provocando una sedimentación compuesta por el arrastre de arenas y

fangos. Posteriormente, en un proceso de regresión el mar retrocedió hasta el

nivel actual. (Fernández, J., 2008)

Normalmente tienen forma de embudo con un aumento exponencial de la sección

transversal hacia la desembocadura. La profundidad de estos estuarios en

promedio oscila entre los 10 metros y algunos pueden alcanzar en la

desembocadura de 20 a 30 metros. (Perillo, G., 1996) (VER FIGURA 2.2)

FIGURA 2.2 ESQUEMA DE UN ESTUARIO VALLE DE RÍO INUNDADO: (A)

VISTA EN PLANTA, (B) PERFIL LONGITUDINAL, (C) PERFIL DE LA SECCIÓN

TRANSVERSAL

FUENTE: Geomorphology and sedimentology of estuaries. (Perillo, G., 1996)


2.2.1.2 Fiordos

Su origen es glaciar, están asociados a latitudes altas como en el norte de Europa

y Canadá, pero también se pueden localizar en la costa sur de Chile. Se formaron

8

a medida que el glaciar invadió los valles fluviales formando valles totalmente

diferentes producto de la socavación del hielo sobre la corteza terrestre, y a

medida que el glaciar se retiró, el mar ascendió inundando estos valles.

Su sección transversal tiene forma de “U”. En la desembocadura presentan una

estructura a manera de barrera longitudinal poco profunda. (Perillo, G., 1996).

Esta barra somera sería la que limita el paso de aguas profundas hacia los

fiordos. (Arche, A., 2010) (VER FIGURA 2.3)

FIGURA 2.3 ESQUEMA DE UN FIORDO: (A) VISTA EN PLANTA, (B) PERFIL

LONGITUDINAL, (C) PERFIL DE LA SECCIÓN TRANSVERSAL

FUENTE: Geomorphology and sedimentology of estuaries. (Perillo, G., 1996)


2.2.1.3 Estuarios de barrera

La mayoría de este tipo de estuarios se encuentran en los valles fluviales de

costas de muy bajo relieve con pequeños rangos de marea y descargas de ríos.

Sin embargo, también hay ejemplos en costas meso y macromareales. Por lo que

están mayormente influenciados por el viento y el transporte litoral que pueden

construir una barrera, que encierra a estos estuarios por lo cual se los conoce

como “lagunas costeras”. (Perillo, G., 1996) (VER FIGURA 2.4)

9

FIGURA 2.4 ESQUEMA DE UN ESTUARIO DE BARRERA.

FUENTE: Sedimentología del proceso físico a la cuenca sedimentaria. (Arche, A., 2010)


2.2.1.4 Estuarios tectónicos

Se forman cuando existen movimientos rápidos a lo largo de las placas de la

corteza terrestre que provocan hundimientos profundos. Si el océano queda a

mayor nivel que el deslizamiento producirá un estuario tectónico ya que, el mar

podrá ingresar y mezclarse con el agua dulce de los ríos o arroyos que fluyen

hasta estas nuevas formaciones por las grietas creadas por los mismos

movimientos tectónicos (NOAA, 2008). (VER FIGURA 2.5)

FIGURA 2.5 ESQUEMA DE UN ESTUARIO TECTÓNICO (TIPO COMPUESTO)



10

2.2.2 CLASIFICACIÓN POR RANGO DE MAREA

Según esta categorización se toma en cuenta el ascenso y descenso de la marea,

que es un parámetro físico.

2.2.2.1 Estuarios micromareales:

Su rango de marea es menor a 2 metros .Son dinámicos donde hay prevalencia

de vientos y de la acción de olas. (Arche, A., 2010)

2.2.2.2 Estuarios mesomareales:

En este tipo de estuarios el rango mareal varía de 2 a 4 metros. Con el aumento

de la marea, las barreras de los estuarios se rompen creando nuevas entradas y

transformándose en islas. (Arche, A., 2010)

2.2.2.3 Estuario macromareal:

Su rango de marea va de 4 a 6 metros (Movellán, E., 2003).La influencia de la

marea y de las olas es mucho más dominante en la desembocadura. (Arche, A.,

2010)

2.2.2.4 Estuario hipermareal:

Su rango de marea es mayor a 6 metros. (Movellán, E., 2003)

2.2.3 CLASIFICACIÓN POR SALINIDAD

2.2.3.1 Estuario positivo:

Los aportes de agua dulce superan a las pérdidas (Olsen, S.B., Padma, T.V. &

Richter, B.D ,2006). Este tipo de estuarios se encuentran comúnmente en las

11

zonas templadas. Y la salinidad superficial es menor en el estuario que en mar

abierto (Arche, A., 2010).

2.2.3.2 Estuario negativo:

Estos también denominados estuarios invertidos son sistemas en los cuales la

pérdida de agua dulce es mayor que la entrada. (Olsen, S.B., Padma, T.V. &

Richter, B.D ,2006).Se forman cuando la evaporación excede al volumen de agua

dulce que entra al estuario, lo cual produce condiciones de hipersalinidad. Estos

tipos de estuarios son más comunes en los trópicos. (Arche, A., 2010)

2.2.3.3 Estuarios neutros:

Se les denomina así porque existe un equilibrio entre la cantidad de agua dulce

que entra al estuario y la evaporación que se produce en el mismo, como

consecuencia se tiene salinidad invariable en el estuario. (Arche, A., 2010)

FIGURA 2.6 TIPOS DE ESTUARIOS EN FUNCIÓN DE LA SALINIDAD A)

ESTUARIO POSITIVO, B) NEGATIVO O INVERSO, C) NEUTRO.


12

2.2.4 CLASIFICACIÓN POR MEZCLA DE AGUA

2.2.4.1 Estuarios de cuña de sal o estratificados:

Se forman por los gradientes de salinidad que se producen cuando un río

desemboca en un mar con mareas débiles; cuando la tasa de descarga es baja se

puede formar el estuario de cuña salina de lo contrario lo que se obtiene es una

acumulación de sedimentos y se construirá un delta. Por los gradientes se

densidad y salinidad se desarrolla una haloclina y las dos masas aguas no se

mezclan. (Arche, A., 2010) (VER FIGURA 2.7)

2.2.4.2 Estuarios parcialmente estratificados:

Los estuarios que están parcialmente estratificados se forman cuando un río

desemboca en un mar mesomareal; las corrientes marinas están en constante

movimiento impidiendo así el dominio fluvial y por tanto no se tendrá una haloclina

bien definida. (Arche, A., 2010)

2.2.4.3 Estuarios bien mezclados:

Los estuarios que están bien mezclados por lo general se forman en zonas

costeras anchas y poco profundas, estos tienen la misma salinidad en la

superficie y en el fondo (Arche, A., 2010). En este tipo de estuarios también

llamados verticalmente homogéneos (Movellán, E., 2003) el caudal del río es

menor a las mareas, que se encuentran en un rango de moderadas a fuertes.

(Arche, A., 2010)

13

FIGURA 2.7 CLASIFICACIÓN DE ESTUARIOS BASADA EN LA MEZCLA DE

AGUA DULCE Y MARINA PROPUESTA POR PRITCHARD (1967). A) CUÑA

SALINA, B) PARCIALMENTE MEZCLADO, C) VERTICALMENTE

HOMOGÉNEO, D) DIFERENCIA EN LA POSICIÓN DE LA CUÑA SALINA EN

FUNCIÓN DE LAS VARIACIONES DEL FLUJO FLUVIAL.


2.2.5 OTRAS CLASIFICACIONES

Trabajos actuales muestran la clasificación morfogenética de estuarios. (VER

FIGURA 2.8)

2.2.5.1 Estuario primario

Este tipo de estuarios no han cambio su geomorfología original hasta la

actualidad, y en éstos la acción del mar no ha provocado cambios y/o alteración

de los mismos.

14

Dentro de éstos se encuentran las siguientes categorías: Antiguos valles

fluviales; que se subdividen en Estuarios de planicies costeras y Rías (se

presentan en costas con relieve alto, tiene menor desarrollo longitudinal y

superficial y sus cuencas fluviales son más pequeñas), Antiguos valles glaciales

(se desarrollaron en latitudes altas y en Chile como resultado de la invasión del

mar a los valles glaciales, estos a su vez se subdividen en función de su relieve

en fiordos y fiardos), Ríos influenciados por la marea ( estos están presentes en

los grandes ríos como Amazonas, Misisipi y de la Plata, donde la influencia del

mar no es completa, a su vez estos se dividen en dos subcategorías : (a) ríos

dominados por las mareas estos se asocian con grandes sistemas de ríos que

son influenciados por acción de las mareas, pero la intrusión salina se limita a la

boca (por lo general no bien desarrollada); (b) estuarios de frentes de delta se

encuentran en las secciones de deltas que se ven afectados por acción de las

mareas y/o intrusión salina). Y por último, se encuentran los Estuarios

estructurales que están formados por tectónica como fallas, volcanismo, rebote

postglacial, etc. que se originaron en el Pleistoceno. (Perillo, G., Cuadrado, D.,

2013).

2.2.5.2 Estuario secundario

La forma observada de estos estuarios se debe a los procesos marinos y su

influencia relativa sobre la descarga fluvial que ha actuado desde que el nivel

medio del mar alcanzó aproximadamente la posición presente. Dentro de este tipo

de estuarios la única categoría que se tiene son las “Lagunas costeras” (cuerpos

de agua interiores que generalmente son paralelos a la costa, separados del mar

por una barrera, y conectados al océano por una o más bocas). Se dividen en la

siguientes subcategorías (a) Semiobturada que posee una sola entrada, (b)

Restringida que tiene pocas entradas o una boca muy ancha, (c) Permeables con

varias entradas separadas por islas de barrera. (Perillo, G., Cuadrado, D., 2013)

15

FIGURA 2.8 ESTUARIOS PRIMARIOS Y SECUNDARIOS.

FUENTE: Clasificación, geomorfología y sedimentología de estuarios. (Perillo, G.,

Cuadrado, D., 2013)

2.3 CARACTERÍSTICAS FISICO-QUÍMICAS Y BIOLÓGICAS DE

LOS ESTUARIOS

Para caracterizar el agua de medios estuarinos se debe tomar en consideración

parámetros físicos, químicos y biológicos.

Las características del agua de los sistemas estuarios están sujetas a cambios

continuos y pueden modificarse bruscamente tanto en el tiempo como en el

espacio, y el lugar en que estos sean medidos. Dos fenómenos que influyen

directamente en estos cambios son el flujo mareal y la estratificación. En este

16

contexto se debe considerar que la mezcla del agua en sistemas estuarinos es

compleja en la cual hay continuos cambios de hábitats.

2.3.1 PARÁMETROS FÍSICOS

2.3.1.1 Temperatura

Es importante por la estrecha relación que tiene con muchos procesos biológicos

y químicos del estuario, ya que influye en la tasa de fotosíntesis de las plantas, las

tasas metabólicas de los organismos acuáticos, y la sensibilidad de los

organismos a los desechos tóxicos, parásitos, enfermedades y otros factores de

estrés. Juega papeles importantes en la disolución de los gases. Por ejemplo; a

medida que la temperatura del agua aumenta la capacidad del agua de mantener

el oxígeno disuelto disminuye. (EPA, 2006)

Cambios bruscos de temperatura pueden afectar negativamente a plantas y

animales por lo cual los cambios de temperatura a largo plazo pueden perturbar a

la distribución global y la cantidad de organismos estuarinos. (EPA, 2002)

La variación de la temperatura en un estuario es en función de la profundidad,

variaciones diurnas estacionalidad, procesos de mezcla grado de estratificación y

los afluentes e influencias humanas (EPA, 2006).

2.3.1.2 Salinidad

La salinidad es la cantidad de sales disueltas en el agua y junto a la temperatura

son las responsables de la estratificación en un estuario. A lo largo de un estuario

existen cambios graduales de salinidad y es un parámetro significativo porque

influye en procesos físicos y químicos (floculación y la cantidad de oxígeno en la

columna de agua). Este parámetro también puede ofrecer pistas sobre agentes

patógenos ya que algunos de estos agentes se limitan a secciones que están

dentro de ciertos niveles de salinidad. (EPA, 2006)

17

El agua de mar es más densa que el agua dulce debido a que las sales disueltas

incrementan la densidad del agua y esto hace que el agua salada por ser más

densa se extienda por debajo del agua dulce (Fuentes, F., Massol – Deyá A.,

2002).

En los estuarios los rangos de salinidad que se contemplan son: oligohalinos (0.5-

5.0 ‰), mesohalinos (5.0 a 18.0 ‰), o polihalinos (18.0-30.0 ‰) y cerca de la

conexión con el abierto mar, aguas estuarinas pueden ser euhalino (salinidad

igual a la del mar o cercana a más de 30.0 ‰). (EPA, 2006) (VER FIGURA 2.9)

La salinidad puede ser expresada en g/ Kg, en partes por mil (‰ o ppt) sin

embargo, actualmente a nivel costero la unidad es ups (Unidades Prácticas de

Salinidad). (EPA, 2006)

FIGURA 2.9 DISTRIBUCIÓN DE LA SALINIDAD EN UN ESTUARIO.

FUENTE: Volunteer Estuary Monitoring a Methods Manual. (EPA, 2006)

2.3.1.3 Turbidez y sólidos totales

Tanto a la turbidez como a los sólidos totales se los puede tomar como

indicadores para establecer los efectos de la escorrentía urbana, agricultura,

actividades antropogénicas además, de indicar el aumento o disminución de

erosión en el estuario dependiendo del tipo de sustrato. (EPA, 2006)

18

La importancia de estos parámetros tienen relación con la disponibilidad de

oxígeno disuelto ya que, éste disminuye a medida que la turbidez aumenta, las

partículas suspendidas absorben el calor lo que hace que la temperatura del agua

tienda a aumentar y además afectan al desarrollo de la vida acuática, por otro

lado la sedimentación de sólidos también juega un papel importante en los

estuarios porque estos se depositan en la parte inferior de éste, debido a que los

sólidos se depositan con mayor facilidad en agua salobre que en agua dulce.

(EPA, 2006)

Al ser la turbidez una medida del grado en el que el agua pierde su transparencia

por la presencia de sólidos en suspensión (arcilla, limo, arena, algas, plancton y

otras sustancias). En aguas turbias la interferencia que provocan estas partículas

en suspensión impide que la luz penetre en el agua, impidiendo la realización de

la fotosíntesis en la parte inferior de un cuerpo de agua. (EPA, 2006)

2.3.1.4 Parámetros meteorológicos (Tiempo)

Los parámetros meteorológicos que se deben tomar en cuenta son la velocidad y

dirección del viento, temperatura del aire y lluvia porque ésta información es clave

en la interpretación de los datos de calidad del agua y explicar los cambios que se

producen dependiendo del tipo de condiciones que se tenga.

Las diferentes condiciones meteorológicas como temperaturas elevadas y vientos

ligeros pueden causar estratificación térmica en el estuario, y dar lugar a la

disminución de la mezcla que se da en éste y del oxígeno disuelto, especialmente

en el fondo. (EPA, 2002)

Los fuertes vientos asociados con el paso de una tormenta o frente frío, en

cambio pueden promover la mezcla vertical, lo que aumentará el oxígeno disuelto

(OD) y la concentración de posible material suspendido, particularmente en aguas

poco profundas. Además, el aumento de las precipitaciones disminuirá la

salinidad en las capas superficiales y probablemente se produzca una

estratificación. (EPA, 2002)

19

2.3.2 PARÁMETROS QUÍMICOS

2.3.2.1 Oxígeno

El oxígeno es indispensable para que exista vida acuática constituyendo un

parámetro de interés en el control de calidad del agua. El oxígeno disuelto (OD)

aumenta por las corrientes y las olas generadas por el viento poniendo así más

agua en contacto con la atmósfera. (EPA, 2002)

En el caso de sistemas estuarinos se debe tener en consideración que el agua

salada asimila menos oxígeno que el agua dulce (EPA, 2006); otro factor que se

relaciona con la disminución de oxígeno se asocia con las áreas cercanas a

manglares pues en éstas áreas se presentan procesos intensos de

descomposición de materia orgánica. (Abarca, F., (sf))

En general, los niveles de OD de más de 4 (mg/l) indican un suministro adecuado

de OD para apoyar el crecimiento de las especies acuáticas, mientras que niveles

1-3 (mg/l) indican condiciones de hipoxia, que son perjudiciales para la vida

marina, una concentración de OD por debajo de 1 (mg/l) indica anoxia. (EPA,

2002)

2.3.2.2 Nutrientes

Los nutrientes son sustancias químicas indispensables para el fitoplancton y otros

productores primarios utilizados para el mantenimiento y crecimiento de estos

organismos en concentraciones determinadas. Estas concentraciones varían de

acuerdo con el uso del suelo circundante, temporada, y la geología. El nitrógeno y

el fósforo son fundamentales en los estuarios porque son nutrientes esenciales

para el crecimiento de productores primarios (VER FIRGURA 2.10)

En los ecosistemas costeros tropicales, las fuentes de nutrientes son

suministradas por eventos dinámicos en el borde de la plataforma como

20

consecuencia de la interacción de las mareas, la topografía de la zona,

precipitaciones y procesos atmosféricos, aportes de fuentes difusas o puntuales

(efluentes de desechos urbanos e industriales etc.), descargas de ríos y aguas

subterráneas. (Spetter C., Freije R y Marcovecchio J., 2013)

FIGURA 2.10 REPRESENTACIÓN ESQUEMÁTICA GENERAL DE LOS PROCESOS INVOLUCRADOS EN EL CICLO DE NUTRIENTES EN UN ESTUARIO. (DSi: SÍLICE DISUELTO)

FUENTE: Ciclo Biogeoquímico de los nutrientes en estuarios. (Spetter C., Freije R y

Marcovecchio J, 2013)

2.3.2.2.1 Nitrógeno

El nitrógeno es uno de los principales micro-nutrientes que regulan la producción

primaria en los ecosistemas costeros, éste posee diferentes estados de oxidación,

que van desde +5 a –3, y se pueden encontrar una gran variedad de estos

compuestos en la naturaleza (Romero, I., 2003) puede ser reciclado y utilizado en

la producción primaria en el estuario antes de su transporte a mar abierto o su

devolución a la atmósfera. (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J., 2013)

En la FIGURA 2.11 se puede observar el ciclo del nitrógeno desde su fase

gaseosa pasando por las transformaciones microbianas que involucran cambios

21

en el estado de oxidación. El nitrógeno gaseoso puede incorporarse a

compuestos inorgánicos y orgánicos por medio de procesos altamente

energéticos como relámpagos (Pugibet, E.; Vega, M.; Geraldes, F., 2006), y

mediante la fijación por microorganismos para la conversión en amoníaco (NH3) o

amonio (NH4+). (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J., 2013)

En el caso de los estuarios la mayor parte de la fijación dada por los organismos

planctónicos la realizan las cianobacterias (o algas azul-verdosas). El uso

preferencial del fitoplancton sobre las distintas especies nitrogenadas disueltas

ocurre en la siguiente forma: NH4+ > NO3

- > NO2-; pero también depende de la

disponibilidad de estas especies químicas, generalmente el amonio se asimila

más fácilmente que el nitrito o el nitrato porque el nitrato tiene que ser reducido

antes de ser asimilado por las plantas. (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J.,

2013)

FIGURA 2. 11 COMPUESTOS DE NITRÓGENO Y REACCIONES QUE TIENEN

LUGAR ENTRE ELLOS.

FUENTE: Comportamiento de nutrientes en la pluma del río Ebro. (Romero, I., 2003) 2.3.2.2.2 Fósforo

En un estuario, el fitoplancton y otras plantas incorporan a sus células fósforo (P),

como PO43-, para su crecimiento, posteriormente se hunde como biodetritus hacia

las capas más profundas y mediante la descomposición de la materia orgánica,

22

los compuestos de (P) orgánico se fraccionan en moléculas orgánicas más

pequeñas y por último se forman los iones PO4 3- . Los cuales pueden ser

devueltos a la capa eufótica por mezcla vertical para ser utilizados por los

microorganismos o difundirse al sedimento. El zooplancton obtiene (P) por el

consumo del fitoplancton y luego remineraliza PO43- por medio de la excreción.

(Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J., 2013)

En los estuarios, más del 90 % del fósforo particulado es remineralizado en los

sedimentos y liberado a través del agua intersticial. Sin embargo, gran parte del

fósforo (P) en los sedimentos estuarinos es adsorbido por las partículas del suelo

o forma compuestos con distintos elementos debido a la gran sensibilidad de este

ión a reaccionar con otros elementos como por ejemplo con el aluminio, o

precipitar con metales bivalentes (Ca+2, Mg+2), ión férrico (Fe+3) a pH neutro o

alcalino. Como resultado de esto, el (P) tiende normalmente a quedar “atrapado”

en los sedimentos del fondo donde normalmente no está disponible para el

crecimiento del fitoplancton. (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J., 2013) (VER

FIGURA 2.12)

FIGURA 2.12 DIAGRAMA SIMPLIFICADO DEL CICLO DEL FÓSFORO EN UN

ESTUARIO.

FUENTE: Ciclo Biogeoquímico de los nutrientes en estuarios. DOP: Dissolved Organic

Phosphorus; DIP: Dissolved Inorganic Phosphorus; SRP: Soluble Reactive

Phosphorus. (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J., 2013)

23

2.3.2.2.3 Silicio

El Silicio (Si) es el segundo elemento más abundante de la corteza terrestre y se

encuentra principalmente en forma de dióxido de silicio (SiO2) o de silicatos que

son las sales del ácido silícico (H4SiO4). (Spetter, C., Freije, R y Marcovecchio, J.,

2013)

El agua de mar contiene en suspensión un amplio espectro de materiales silícicos

finamente divididos, donde muchos de estos provienen de los cauces de los ríos.

Las diversas formas en las que puede aparecer son:

· Sílice disuelta en agua, que se encuentra como ácido ortosilícico monomérico,

Si (OH)4 el cual generalmente no se disocia, excepto en aguas muy alcalinas

y su concentración varía espacial y temporalmente (Romero, I., 2003). Tiene

una concentración variable siendo mayor en aguas continentales (Spetter, C.,

Freije, R y Marcovecchio, J., 2013).

· Sílice particulada mineral, la cual está presente en la columna de agua como

parte de la materia en suspensión y se halla bajo diversas formas

fundamentalmente en forma de sílice cristalina y distintos silicatos. Sin

embargo, usualmente es inerte en los ecosistemas costeros debido a su baja

solubilidad, por lo que tiene poca importancia en el ciclo del silicio. (Romero, I.,

2003).

· Sílice biogénica (sílice particulada de origen biológico): que se encuentra

formando parte de las frústulas de las diatomeas (vivas o muertas) y de los

caparazones de otros organismos (crisofíceas, por ejemplo). (Romero, I., 2003)

En aguas costeras el contenido en sílice disuelta es generalmente alto, debido a

su procedencia (escorrentía de tierra) pero, aun así existe una variación

estacional en su concentración. (Romero, I., 2003)

24

FIGURA 2.13 CICLO DEL SILICIO EN UN ECOSISTEMA LITORAL

FUENTE: COMPORTAMIENTO DE NUTRIENTES EN LA PLUMA DEL RIO EBRO.

(Romero, I., 2003)

1. Absorción de Si (OH)

4 por las diatomeas.

2. Muerte de diatomeas. 3. Ingestión por herbívoros. 4. Excreción del zooplancton y otros animales. 5. Sedimentación de la materia en suspensión (sílice mineral y biogénica) y otros organismos. 6. Resuspensión de la materia en suspensión (sílice mineral y biogénica) 7. Disolución del silicio particulado. 8. Flujo del Si (OH)

4 desde los sedimentos hacia la columna de agua.

9. Aportes de minerales silíceos en suspensión por las aguas continentales. 10. Aportes de Si (OH)

4 por las aguas continentales.

11. Aportes de sílice biogénica por las aguas continentales. 12. Pérdidas de Si (OH)

4 hacia mar abierto.

13. Precipitación del Si (OH)4

14. Aportes de Si (OH)4 desde mar abierto.

2.3.2.3 Potencial hidrógeno

Potencial hidrógeno (pH), mide la actividad del ion hidrógeno (H+) en una

solución, y se expresa como un logaritmo negativo. Los valores de pH pueden

cambiar por la fotosíntesis activa que experimenta el fitoplancton lo que hace que

el pH aumente, y disminuye por la respiración de animales o por concentraciones

grandes de material orgánico y la descomposición de detritos.

Es necesario conocer las variaciones del pH pues, si existen variaciones fuertes

pueden resultar perjudiciales para los ecosistemas estuarinos. Otros factores que

afectan al pH del agua son minerales disueltos en el agua, aerosoles, polvo del

25

aire, actividad bacteriana, los desechos humanos y actividad antrópica como

desbordamientos de aguas residuales; y derrames mineros etc.

La información sobre la distribución del pH tanto horizontal como vertical dentro

de un estuario, puede indicar el grado de descomposición y remineralización de

los compuestos orgánicos. El resultado es la liberación de los micronutrientes

necesarios para las diferentes formas de vegetación.

Los niveles de pH promedio dentro de un estuario están entre 7,0 a 7,5 en

secciones más dulces, y entre 8,0 y 8,6 en las zonas más salinas. Además cabe

mencionar que algunas especies a pH por debajo de 5 o por encima de 9 pueden

presentar problemas para sobrevivir. (EPA, 2006)

2.3.2.4 Sulfatos

La forma más común en la que se encuentra el azufre en el agua es SO42- (ión

sulfato). El sulfato entra al agua por medio de la lluvia y por la disolución de rocas

que contengan compuestos como CaSO4 y FeS2 (pirita), ciertas bacterias en el

agua son responsables de las transformaciones químicas por las que pasa el

azufre del agua, por ejemplo están las bacterias sulfurosas que son reductoras y

otras son oxidantes. (Roldan, G., Ramírez, J., 2008).

En el agua de mar la concentración de sulfatos es mucho mayor que la

concentración media en sistemas de agua dulce. (Colin, B., Cann, M., 2004)

Este ión sulfato (SO4 2- ), pertenece a las sales que van de moderadamente

solubles a muy solubles. El agua dulce contiene de 2 a 150 ppm, y el agua de mar

cerca de 3000 ppm. Aunque en agua pura se satura a unos 1500 ppm, como

CaSO4, la presencia de otras sales aumenta su solubilidad. (Nava, N., 2014)

26

2.3.2.5 Hierro

El hierro es un elemento de interés para la vida en el agua, porque constituye un

elemento esencial para la síntesis de pigmentos respiratorios de muchos animales

(hemoglobina); también hace parte de numerosas enzimas, como la peroxidasa,

la catalasa, el citocromo-oxidasa y la nitrogenasa. Además, el hierro es esencial

para la fotosíntesis porque hace parte al menos de dos citocromos que transfieren

electrones durante este proceso. (Roldan, G., Ramírez, J., 2008).

2.3.2.6 Clorofila “a”

Se define como un pigmento verde que se encuentra en el fitoplancton La

cantidad de clorofila “a” en la columna de agua se traduce en la cantidad de

biomasa de fitoplancton, y ésta indica los niveles de nutrientes en la columna de

agua (o el exceso de nutrientes si se elevan los valores de clorofila “a”). Si se

tiene un exceso de nutrientes y de crecimiento de plantas esto podría significar la

disminución en los niveles de OD y aumento de la turbidez. (EPA, 2002)

2.3.2.7 Contaminantes tóxicos

Son compuestos tóxicos metales como el mercurio, plomo, cadmio, zinc, cromo y

cobre, e hidrocarburos de petróleo y compuestos orgánicos sintéticos como los

hidrocarburos aromáticos policíclicos (PAHs), bifenilos policlorados (PCBs) y

pesticidas (por ejemplo, diclorodifenil-tricloroetano ).Su presencia está relacionada

íntimamente con el avance industrial de las localidades en las que se encuentre el

estuario y representan una problemática ambiental debido a su persistencia en el

ambiente además, estos pueden incorporarse en los sedimentos.

Posteriormente, estos compuestos se concentran en la cadena alimentaria y se

convierten en una amenaza para los animales en los niveles tróficos superiores y

para los seres humanos. (EPA, 2002)

27

2.3.3 PARÁMETROS BIOLÓGICOS (BACTERIAS)

Las bacterias son organismos unicelulares microscópicos que funcionan

principalmente como descomponedores de la materia orgánica en un estuario,

Esta actividad libera nutrientes previamente encerrados en la materia orgánica en

la red alimenticia del estuario. (EPA, 2006)

Sin embargo, mientras las bacterias mencionadas anteriormente habitan en los

estuarios como parte funcional de la cadena alimenticia, las actividades humanas

pueden introducir agentes patógenos a estos ecosistemas como lo son virus,

bacterias y protozoarios que pueden causar enfermedades, y por lo tanto

representan un grave peligro a la salud pública.

La calidad bacteriológica de un cuerpo de agua, puede determinarse en base a la

cuantificación de indicadores tales como los coliformes totales y fecales. Este tipo

de bacterias pueden permanecer en un estuario durante semanas dependiendo

de la zona, por ejemplo, pueden sobrevivir en el sedimento o en bolitas fecales de

aves silvestres. (EPA, 2006)

2.4 CONTAMINACIÓN POR FUENTES ANTROPOGÉNICAS

Las actividades humanas que generan contaminación están relacionadas tanto

con la existencia de asentamientos humanos como con el desarrollo industrial de

la zona. Las fuentes de contaminación pueden ser “puntuales” como en el caso de

los vertidos de aguas residuales o de descargas industriales y fuentes difusas “no

puntuales”, por actividad agrícola, escorrentía urbana etc. (Roldan, G., Ramírez,

J., 2008)

Los impactos causados por la contaminación de los estuarios son los siguientes: i)

Pierden valor turístico (no son aptos para nadar u otras formas de recreación), ii)

Afectan su estética y pueden afectar el valor de los bienes raíces, iii) Generan

problemas de salubridad por el consumo peces y crustáceos que han acumulado

28

toxinas (no aptos para el consumo humano). (Olsen, S.B., Padma, T.V. & Richter,

B.D ,2006). (VER CUADRO 2.1.)

CUADRO 2. 1 RESUMEN DE CONTAMINANTES COMUNES Y SUS POSIBLES FUENTES EN AMBIENTES ESTUARINOS. (ADAPTADO DE USEPA, 1997; MAINE DEP, 1996; USEPA, 1993).

Fuente Contaminantes

comunes Posibles Impactos

Tierras de

cultivo

Sedimentos,

nutrientes, pesticidas

Claridad del agua reducida, hábitats bentónicos

asfixiados, toxicidad en organismos, crecimiento

excesivo de algas, reducción del oxígeno disuelto,

cambios de temperatura en el agua

Tierras de

pastoreo

Bacterias fecales,

sedimentos,

nutrientes

Posible introducción de patógenos, claridad del

agua reducida, hábitats bentónicos asfixiados,

crecimiento excesivo de algas, reducción del

oxígeno disuelto, cambios en la temperatura del

agua.

Forestal Sedimentos


asfixiados, cambios de temperatura del agua.

Minería Descarga de ácidos,

sedimentos


asfixiados, impactos en el pH y la alcalinidad

Descarga

industrial /

comercial

Sedimentos, toxinas


asfixiados, impactos en el pH y la alcalinidad, y

toxicidad en organismos.

29

CUADRO 2.1 CONTINUCACIÓN

Plantas de

tratamiento de

agua

Nutrientes, sólidos en

suspensión, bacterias

fecales

Claridad del agua reducida, crecimiento excesivo

de algas, reducción de oxígeno disuelto/ aumento

de la demanda bioquímica de oxígeno, cambios en

la temperatura y pH del agua, posible introducción

de patógenos.

Construcción Sedimentos, toxinas,

nutrientes


asfixiados, crecimiento excesivo de algas,

reducción del oxígeno disuelto, cambios en la

temperatura del agua, toxicidad en organismos.

Escorrentía

urbana

Sedimentos,

nutrientes, metales,

hidrocarburos de

petróleo, bacterias


asfixiados, crecimiento excesivo de algas,

reducción de oxígeno disuelto / aumento de la

demanda bioquímica de oxígeno, cambios en la

temperatura del agua, toxicidad en organismos,

posible introducción de patógenos.

Sistemas

sépticos

Bacterias fecales,

nutrientes

Crecimiento excesivo de algas, la reducción de

oxígeno disuelto / aumento de la demanda

bioquímica de oxígeno, cambios en temperatura

del agua, posible introducción de patógenos

FUENTE: Volunteer Estuary Monitoring a Methods Manual. (EPA, 2006)


El aporte de desechos sólidos en estuarios y ecosistemas costeros por las

actividades realizadas por el hombre también puede causar graves problemas y

desencadenarse en la degradación de estos hábitats. Se puede encontrar en

estos ecosistemas todo tipo de desechos como colillas de cigarrillos, bolsas de

supermercado, restos de redes de pesca, utensilios plásticos (vasos, platos,

recipientes de comida rápida), y latas de bebidas o botellas. (EPA, 2006)

Estos desechos pueden proceder del arrastre por vía fluvial, por el

desbordamiento de alcantarillas, basura arrojada por los bañistas y/o usuarios del

estuario, desechos descargados de forma accidental o deliberada por

embarcaciones de pesca comercial (redes, líneas de pesca, bolsas de basura) o

30

embarcaciones con fines turísticos. La influencia de la marea también juega un

papel importante en el transporte de desechos dentro del estuario debido a que

en marea alta los desechos son transportados desde el mar hacía arriba del río.

(EPA, 2006)

La problemática de la basura depositada en un sistema estuarino no es

meramente estética, sino que también puede afectar gravemente a los seres

humanos, la fauna y los hábitats. Para la vida silvestre también representan un

peligro potencial, pudiendo causar la muerte de animales propios del ecosistema

estuarino ya que algunos de estos animales pueden quedar atrapados en las

redes y líneas de pesca desechadas, cuerdas, bolsas plásticas u otros desechos

flotantes. Otros animales mueren en cambio por causa de la ingestión de basura.

(EPA, 2006)

Se debe considerar también en el análisis de contaminación antropogénica,

aquella proveniente del río aportante al sistema estuarino. En los estuarios, el

agua dulce que fluye hacia ellos es vital y por ello es importante que se

mantengan las condiciones de afluencia regulares tanto en cantidad, calidad y

pulsos, porque al contaminar el agua dulce o provocar cambios en ésta, se puede

afectar a la vida acuática del estuario debido a que estos ecosistemas son más

complejos y “pequeños”. (Olsen, S.B., Padma, T.V. & Richter, B.D ,2006)

Cuando se agota la afluencia de agua dulce las condiciones de salinidad pueden

cambiar considerablemente, causando la desaparición de especies que dependen

de condiciones específicas de salinidad. Además, los gradientes de salinidad

tienen la función de actuar como barreras eficaces contra los depredadores, los

parásitos y las enfermedades. (Olsen, S.B., Padma, T.V. & Richter, B.D ,2006)

(VER CUADRO 2.2 y FIGURA 2.14)

31

CUADRO 2. 2 EFECTOS POTENCIALES DE LAS ALTERACIONES COMUNES DEL AFLUENCIA DE AGUA DULCE A LOS ESTUARIOS.

TIPO DE CAMBIO EN

LA AFLUENCIA DE

AGUA DULCE

IMPACTOS POTENCIALES SOBRE

LAS FUNCIONES DEL ESTUARIO

IMPACTOS HUMANOS

POTENCIALES

Cantidad de Agua: (Posibles factores que impulsan el cambio en la cantidad incluyen retiros y desvíos de

aguas de superficie, represas, usos del agua subterránea y sequía).

Reducción de la

cantidad (volumen) de

la afluencia de agua

dulce.

• Aumento en la salinidad; mortalidad

de las plantas sensibles a la salinidad;

introducción de animales depredadores

marinos en el estuario; reducciones en

las poblaciones de crustáceos sésiles;

reducciones en las poblaciones de

peces sensibles a la salinidad.

• Reducción del ingreso de nutrientes

naturales; productividad reducida de

plantas y animales.

• Recarga reducida de sedimentos;

pérdida de hábitat de humedales.

• Menor descarga estuarina; aumento

del potencial de eutrofización y otros

impactos de la contaminación causada

por los seres humanos.

• Cosechas reducidas de peces y

crustáceos económicamente importantes.

• Cambios que afectan a las poblaciones

humanas que dependen del estuario,

incluida la pérdida de los medios de

subsistencia de las comunidades

pesqueras.

• Reducción en el área de hábitats con

atracción turística.

• Reducción en el valor recreativo de las

aguas y el valor de los bienes raíces en

las tierras circundantes.

Aumento de la

cantidad (volumen) de

la afluencia de agua

dulce.

•Reducción en la salinidad; mortalidad

de las plantas sensibles a la salinidad;

reducciones radicales en las

poblaciones de crustáceos sésiles;

reducciones en las poblaciones de

peces sensibles a la salinidad.

• Aumento en los nutrientes y

sedimentos.

• Reducción en la extensión espacial

de importantes hábitats bentónicos (por

ej., lechos de pastos marinos).

Cosechas reducidas de peces y






pesqueras.

Pulsos alterados

(momento y volumen

de las afluencias).

Destrucción o degradación de hábitats

adaptados a pulsos estacionales de

agua dulce y cambios estacionales en

la salinidad.

• Reducciones en la población de

organismos adaptados a pulsos

estacionales de agua dulce.

Cosechas reducidas de peces y






pesqueras.

• Reducción en el área de hábitats con

atracción turística.

32

CUADRO 2.2 CONTINUACIÓN Calidad del Agua: (Posibles factores que impulsan el cambio en la calidad incluyen agricultura, actividad

industrial, urbanización, contaminación y dragado).

Aumento en los niveles

de nitrógeno, fósforo o

sílice en las aguas que

entran.

• Eutrofización.

• Aguas anóxicas o hipóxicas.

• Mortalidad de peces económicamente

importantes.

• Pérdida de atracción recreativa y

turística del estuario (en términos de

natación, pesca, navegación).

• Reducción del valor de los bienes raíces

en las tierras que rodean aguas fétidas.

Aumento en los niveles

de sustancias

químicas, metales

pesados y otros

contaminantes tóxicos.

• Concentración de contaminantes en

la cadena alimentaria.

• Reducción en la extensión espacial

de importantes hábitats ecológicos.

• Reducción en la población de los

organismos que no pueden tolerar las

cargas de contaminantes.


importantes.



natación, pesca, paseos en lancha).


en las tierras que rodean las aguas.

• Efectos negativos sobre la salud de los

seres humanos (por ejemplo, por la

ingestión de peces y crustáceos

contaminados).

Cambios en la

morfología de la

cuenca (como

consecuencia del

dragado de la

sedimentación).

• Alteración del tiempo de residencia

del agua dulce en el estuario; cambio

en el tiempo de descarga y la duración

de los contaminantes en el sistema.

• Cambio en la calidad del agua

(especialmente si se perturban los

sedimentos contaminados y los

contaminantes se mezclan nuevamente

en la columna de agua).

• Cambios en el transporte de

sedimentos y los modelos de

deposición dentro del estuario y en la

costa.


importantes.



natación, pesca, navegación).


en las tierras que rodean las aguas.

• Aumento en la erosión de las playas.



33

FIGURA 2.14 EFECTOS DE LOS FLUJOS CAMBIANTES DE AGUA DULCE A

LOS ESTUARIOS.



2.5 MARCO LEGAL

2.5.1 CONSTITUCIÓN DEL ECUADOR

En la Constitución se reconoce al Estado como regulador y veedor “de la

conservación, manejo y uso sustentable, recuperación, y limitaciones de dominio

de los ecosistemas frágiles y amenazados; entre otros, los páramos, humedales,

bosques nublados, bosques tropicales secos y húmedos y manglares,

ecosistemas marinos y marinos-costeros.” (Art.- 406)

Para poder ejercer control sobre el uso y manejo de las cuencas hidrográficas el

estado controlará toda actividad que pueda afectar la calidad y cantidad de agua.

(Art.- 411)

34

2.5.2 LEY DE PREVENCIÓN Y CONTROL DE LA CONTAMINACIÓN

AMBIENTAL

En el Capítulo II en donde se estipula De la Prevención y Control de la

Contaminación de las Aguas, que “Queda prohibido descargar, sin sujetarse a las

correspondientes normas técnicas y regulaciones, a las redes de alcantarillado o

a las quebradas, acequia, ríos, lagos naturales, o artificiales o en las aguas

marítimas así como infiltrar en terrenos, las aguas residuales que contengan

contaminantes que sean nocivos a la salud humana, a la fauna, a la flora y a las

propiedades” (Art.-6)

2.5.3 LEY DE GESTIÓN AMBIENTAL

En el Título V de la Información y Vigilancia Ambiental. Declara que “Las

instituciones encargadas de la administración de los recursos naturales, control de

la contaminación ambiental y protección del medio ambiente, establecerán con

participación social, programas de monitoreo del estado ambiental en las áreas de

su competencia; esos datos serán remitidos al Ministerio del ramo para su

sistematización; tal información será pública.” (Art.-39)

2.5.4 TULSMA, LIBRO V, DE LA GESTIÓN DE LOS RECURSOS COSTEROS

En el Título 1 de la Subsecretaría de Gestión Ambiental Costera determina que,

“La Subsecretaría de Gestión Ambiental Costera tiene como ámbito territorial para

la aplicación de sus competencias, las provincias de la costa: Esmeraldas,

Manabí, Guayas, El Oro y Los Ríos; competencias que están enmarcadas dentro

de los siguientes ámbitos: en materia de manejo costero integrado, esto es, en

playas, estuarios, bahías, manglares, oceanografía y en general, en todo lo

comprendido dentro de dicho concepto en calidad ambiental: prevención y control

de la contaminación, y, gestión ambiental local; y, en coordinación regional

costera para aplicación de las políticas ministeriales.” (Art.1)

35

En el Capítulo IV, Del Aprovechamiento, “Se podrán otorgar concesiones de uso

en las zonas de manejo, fuera de las áreas protegidas, de acuerdo a la categoría

y plan de manejo aprobado, para la construcción de canales de aducción y

descarga para acuacultura, apertura de servidumbres de tránsito y muelles, previo

informe favorable de la Dirección General de la Marina Mercante y del Litoral,

cuando se trate de construcciones dentro de la jurisdicción de la Policía Marítima,

determinada en el Art. 18 del Código de Policía Marítima.” (Art. 34)

En el Capítulo VI, Aspectos Socio- Económicos y Otros, se establece que, “No se

autorizará por parte de ninguna entidad u organismo del Estado, la construcción

de nuevas piscinas o la ampliación de las camaroneras existentes en el

ecosistema de manglar y su zona de transición.” (Art.54)

2.5.5 TULSMA, LIBRO VI ANEXO 1, NORMA DE CALIDAD AMBIENTAL Y

DE DESCARGA DE EFLUENTES: RECURSO AGUA

En el Anexo 1 del Libro VI se determina las normas generales y criterios

propuestos para determinar la calidad de agua marítima y de estuarios, se

expresan los límites máximos permisibles de los parámetros según los usos para

los que se destine el agua, consumo humano, uso doméstico, preservación de

fauna y flora. (Acuerdo Ministerial 028, MAE)

· Criterios de calidad de aguas para la preservación de la vida acuática

y silvestre en aguas dulces frías o cálidas y en aguas marinas y de

estuarios.

Bajo este criterio los usos a los cuales se encuentra destinada el agua son los

siguientes: mantener la vida natural acuática y silvestre de los ecosistemas

asociados sin provocarles ningún tipo de alteración. O actividades que permitan

su reproducción, supervivencia, crecimiento, extracción y aprovechamiento de

especies bioacuáticas en cualquiera de sus formas, tal como en los casos de

pesca y acuacultura.

36

Contempla la ausencia de sustancias que puedan cambiar el olor, color y sabor

del cuerpo de agua, y que no impida el aprovechamiento del mismo.

· Criterios de calidad para aguas con fines recreativos

En este criterio se entiende por uso del agua para fines recreativos, la utilización

en la que existe:

a) Contacto primario, como en la natación y el buceo, incluidos los baños

medicinales y

b) Contacto secundario como en los deportes náuticos y pesca.

· Criterios de calidad para aguas de uso estético

Para destinar el cuerpo de agua a uso estético debe cumplir con los siguientes

requerimientos:

a) Ausencia de material flotante y espumas que provengan de la actividad

humana.

b) Ausencia de grasas y aceites que formen una película visible.

c) Ausencia de sustancias productoras de color, olor, sabor y turbiedad no

mayor al 20% de las condiciones naturales de turbidez (NTU)

d) La relación Nitrógeno-Fósforo de 15:1

2.6 EXPERIENCIAS DE REDES DE EVALUACIÓN DE LA

CALIDAD DEL AGUA EN ESTUARIOS

Para poder establecer un proceso de evaluación de calidad del agua en un

estuario se utiliza guías para establecer un programa de monitoreo, tipos de

muestreo e índices utilizados en la evaluación de la calidad del agua.

37

El monitoreo según diferentes autores se entiende como la evaluación continua y

estructurada de algo con un objetivo específico, que consiste en recolectar datos

para someterlos a análisis e interpretación. (Abarca, F., (sf))

En el momento que se decide realizar actividades de monitoreo en un cuerpo de

agua es necesario definir las razones por las cuales se implementa el programa,

pueden ser razones científicas, razones sociales o por regulación.

Posteriormente, es necesario definir el tipo de cuerpo hídrico que se va a

monitorear a lo largo del tiempo esto facilita la decisión de las variables que se

van a evaluar continuamente, el número de puntos de muestreo, la frecuencia de

monitoreo del cuerpo hídrico, las posibles interferencias que se pueden presentar

y hasta poder establecer un plan de manejo del cuerpo hídrico. (Abarca, F., (sf))

(VER CUADRO 2.3)

Por otro lado los parámetros necesarios a monitorear en cuerpos de agua

estuarinos se detallan en los siguientes CUADROS 2.4 Y 2.5.

38

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2.

3 D

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38

39

CUADRO 2. 4 PARÁMETROS BÁSICOS COMPARATIVOS A EVALUAR EN

DIFERENTES CUERPOS DE AGUA.

FUENTE: Protocolo para el muestreo de calidad del agua en ríos endorreicos y

exorreicos, y en humedales para la aplicación de la Norma de Caudal ecológico. (De la

Lanza, G., 2014)

40

CU

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014)

41

42

2.6.1 ÍNDICES PARA EVALUAR LA CALIDAD DEL AGUA EN ESTUARIOS

2.6.1.1 Índice de estado trófico TRIX (nP)

El índice del estado trófico, TRIX, propuesto por Vollenweider et al., (1998), se

creó con el objeto de poder comparar información en un amplio intervalo de

situaciones, al conjugar factores que están directamente relacionados con la

productividad, clorofila “a” y el oxígeno disuelto, con los nutrientes, nitrógeno y

fósforo. (De La Lanza, G., 2014)

Aranda, N (2004) aplicó este índice para sistemas costeros de la Península de

Yucatán, en su trabajo utiliza la variante TRIX (nP), donde la nomenclatura (nP)

se refiere a las concentraciones inorgánicas disueltas de los nutrientes, así, la

ecuación es:

(2.1)

Dónde:

TRIX (nP): es el índice del estado trófico

Chla: es la concentración de Clorofila a en ug/l

aD%O: es el valor absoluto de la desviación del porcentaje de saturación de

oxígeno disuelto, es decir, |100 - %OD|

DIN: es el nitrógeno inorgánico disuelto, N- (NO2 - + NO3

- + NH4 +), en ug/l

PRS: es la concentración de fosfato reactivo soluble en ug/l

43

TABLA 2.1 ÍNDICE DEL ESTADO TRÓFICO, TRIX, Y CALIDAD DEL AGUA, DE

ACUERDO A LA LEGISLACIÓN ITALIANA EN LA EVALUACIÓN DEL ESTADO

DEL AGUA DE MAR (PENNA ET AL., 2004).

TRIX Estado de la calidad del

agua

Características del agua

2-4

Alta Agua pobremente productiva

Nivel trófico bajo

4-5

Buena Agua moderadamente productiva

Nivel trófico medio

5-6

Mala Agua entre moderada y altamente

productiva

Nivel trófico alto

6-8

Pobre Agua altamente productiva

Nivel trófico más alto

FUENTE: Técnicas para evaluación y monitoreo del estado de los humedales y otros

ecosistemas acuáticos. (Abarca F. (s.f))

2.6.1.2 Índice de calidad NSF

Fue concebido en 1970 por parte de algunos autores (Brown, MacClelland,

Deininger y Tozer) en colaboración con la National Sanitation Foundation de los

Estados Unidos para evaluar el estado de la calidad del agua para ríos

Norteamericanos el fundamento del índice radica en asignar pesos según la

importancia ambiental a las variables tomadas en cuenta como parámetros

críticos para determinar la calidad del agua de dicho cuerpo hídrico. BEHAR R.,

CARDOZO M. ROJAS O., (1997).

Para evaluar la calidad del agua se utilizan factores de ponderación para cada

uno de los parámetros propuesto por NSF. Este índice fue aplicado por Lofiego

A., Noir G., Urciulo A., e Iturraste R en el estuario del Río Grande de Tierra del

Fuego que desemboca en la costa Atlántica para evaluar la calidad del agua.

(Lofiego A., Noir G., Urciulo A., Iturraste R, 2009)

44

TABLA 2.2 PESOS DE LAS VARIABLES PARA EL ÍNDICE DE CALIDAD DE

AGUA NSF.

Variable Peso ponderado (%)

Temperatura 10

Oxígeno disuelto 17

10

Sólidos Totales 7

Turbidez 8

Fosfatos 10

Nitratos 10

pH 11

Coliformes Fecales 16

ELABORADO POR: Chango A., Nacimba N

REFERENCIA:http://home.eng.iastate.edu/~dslutz/dmrwqn/water_quality_index_calc.htm

45

CAPÍTULO 3

METODOLOGÍA Y DELIMITACIÓN DEL ÁREA DE

ESTUDIO

3.1 DESCRIPCIÓN DEL SITIO DE ESTUDIO

3.1.1 UBICACIÓN

El estuario de la subcuenca del río Atacames se encuentra ubicado en la

parroquia de Atacames perteneciente al cantón Atacames, limitando al norte con

el Océano Pacífico, al sur con el cantón Esmeraldas, al este con Tonsupa y al

oeste con Súa y la Unión de Atacames. Cuenta con una extensión aproximada de

7275.96 ha. (PDOT- Atacames, 2012.)

La zona del estuario que se considera en este estudio se encuentra ubicada en la

área más poblada de este cantón (parroquia urbana de Atacames/ ciudad de

Atacames), donde las actividades antrópicas (descarga de aguas residuales sin

previo tratamiento directamente al estuario) que se desarrollan en esta parroquia

están relacionadas con la contaminación del estuario.

El Director del Departamento de Gestión Ambiental GAD – Atacames expresa que

el estuario sirve como vía de transporte para las embarcaciones que se dedican a

la pesca; hábitat de especies de peces (pinchagua, robalo, pargo etc.) que sirven

para el consumo interno de los habitantes; también es usado para la ubicación de

los puntos de anclaje de lanchas. Además, de tener un importante uso para el

sector turístico porque es utilizado como balneario para los turistas. (R. Quintero,

comunicación personal, 9 de diciembre de 2015).

46

3.1.2 DELIMITACIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO

En el presente caso de estudio se analizarán aproximadamente 5 Km dentro del

estuario del río Atacames, iniciando desde la desembocadura del río Atacames en

el Pacífico, hasta el barrio Nueva Esperanza. Se escogió esta zona de estudio

debido a los asentamientos humanos y las actividades de acuacultura que allí se

encuentran. (VER ANEXO 1)

3.1.3 CLIMATOLOGÍA

La caracterización climática de la parroquia de Atacames se realizó en función de

la información meteorológica procedente de la estación meteorológica del

aeropuerto de Esmeraldas operada por la Dirección General de Aviación Civil,

DGAC (latitud 0.0° 58' N; longitud 79°37' W; elevación 7 m). Con estos datos se

obtuvo la variación media mensual de la precipitación, velocidad y dirección del

viento, temperatura máxima, media, y mínima, humedad relativa y nubosidad. El

periodo utilizado para esta caracterización climática fue 1981-2013. (VER ANEXO

2)

3.1.3.1 Precipitación

Según los datos obtenidos de la estación meteorológica escogida se determinó

que en la zona de estudio existe un periodo lluvioso comprendido entre los meses

de diciembre/enero a mayo y un periodo seco que está comprendido en los

meses de junio a noviembre. La precipitación media anual es de 69.9 mm. (VER

GRÁFICO 3.1)

47

GRÁFICO 3.1 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA PRECIPITACIÓN

(PERIODO 1981-2013)

FUENTE: (DGAC, 2014)


3.1.3.2 Humedad relativa

La variación interanual de la humedad relativa muestra un periodo con menor

humedad entre los meses julio a diciembre y un periodo con mayor humedad

entre los meses de enero a junio. Con una media anual de 79%. (VER GRÁFICA

3.2)

GRÁFICO 3.2 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA HUMEDAD RELATIVA

(PERIODO 1981-2013)



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48

3.1.3.3 Nubosidad

La nubosidad media anual es de 6 octas en la zona de estudio. Además como se

observa en el GRÁFICO 3.3 en la zona de estudio el cielo se encuentra nublado

durante todo el año. (VER)

GRÁFICO 3.3 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA NUBOSIDAD

(PERIODO 1981- 2013)



3.1.3.4 Viento

Los valores característicos de velocidad media del viento presentan variaciones

entre 2.6 y 3.4 m/s. En el GRÁFICO 3.4 se aprecia la variación de la velocidad

media del viento y se puede observar que en los meses de enero a julio la

velocidad media del viento es relativamente menor a la registrada en meses

agosto a diciembre

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49

GRÁFICO 3.4 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA VELOCIDAD DEL

VIENTO (PERIODO 1981-2013)



La distribución porcentual de la dirección del viento en la zona de estudio muestra

que las direcciones dominantes son en S, SSW, W y WNW. (VER GRÁFICO 3.5)

GRÁFICO 3.5 DISTRIBUCIÓN PORCENTUAL DE LA DIRECCIÓN DEL VIENTO

(PERIODO 1981-2013)



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3.1.3.5 Temperatura

La variabilidad estacional de la temperatura para la zona de estudio muestra que

la temperatura media es de 26.8 °C, la temperatura máxima media anual es de

31.8 °C y la temperatura mínima media anual es de 20.9°C (VER GRÁFICO 3.6)

GRÁFICO 3.6 DISTRIBUCIÓN MEDIA MENSUAL DE LA TEMPERATURA

MEDIA, MÁXIMA Y MÍNIMA (PERIODO 1981-2013)



3.1.4 BIODIVERSIDAD

La parroquia de Atacames cuenta con una extensa biodiversidad debido a su

ubicación a nivel del mar que permite la existencia de diferentes especies tanto de

flora como de fauna.

Dichas especies han sido mermadas con el paso del tiempo, siendo el factor

antropogénico un punto clave para que hoy en día los pobladores expliquen que

las condiciones actuales del estuario son muy malas con respecto a las

condiciones de hace 20 años. (PDOT-Atacames, 2012)

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51

La zona está ubicada en la provincia de Esmeraldas, que cuenta aún con la

influencia del Chocó. De esta forma la parroquia de Atacames está dentro del piso

climático que se describe a continuación. (Sierra, R., 1999)

§ Sector Tierras Bajas dentro de este encontramos manglar, éste tipo de

vegetación se encuentra a nivel del mar las especies predominante son las

diferentes especies mangles que tienen las raíces zancudas, pueden crecer

simultáneamente con especies de otras familias como Bromeliaceae y

Orchidaceae. (SIERRA R., 1999)

En lo que respecta a la zona de manglar el estuario del río Atacames cuenta con

30 ha de manglar, la cual en su totalidad está intervenida. (Matamoros, B., 2013)

en el cual se encuentran especies de mangle rojo (rizophora mangle), mangle

blanco (laguncularia racemosa) y mangle jelí (conacarpus erecturs) (Guevara, J.,

Granda, V., 2009); y especies de árboles maderables como la teca (Tectona

grandis), cedro (Cedrela odorata), tangaré (Carapa guianensis) y guayacán

pechiche (Minquartia guianensis). (PDOT-Atacames, 2012)

Dentro de la fauna existente en el estuario del río Atacames están los crustáceos

como el cangrejo de caparazón azul (Cardisoma crassum) y cangrejo rojo (Ucides

occidentalis) (PDOT-Atacames, 2012); moluscos como concha (Anadara sp),

almejas (Donax sp) y mejillones (Mytella strigata) (Guevara, J., Granda V, 2009);

aves como fragatas (Fregata magnificens), gaviotas (Larus magnificens),

pelícanos (Pelecanus occidentalis), gaviotín común (Sterna hirundo), petrel

(Oceanites oceanicus) y gallinazos de cabeza roja (Catharthes aura) (Guevara, J.,

Granda V, 2009); y peces (VER TABLA 3.1)

52

TABLA 3.1 ESPECIES DE PECES QUE SE ENCUENTRAN EN EL ESTUARIO

DEL RÍO ATACAMES.

Zona Nombre científico /familia o género Nombre común

Mar Del género Brótula Corvina

Estuario/Mar Centropomus armatus Róbalo

Mar Lutjanus colorado Pargo

Mar Del género Caranx Caballita

Estuario Rhoadsia altipinna Gallo

Estuario Astyanax cf. fasciatus Tacuana

Estuario/Mar Ariopsis seemanni Canchimala

Estuario Pseudopoedilia cf. fria Millonaria

Estuario/Mar Haemulon sp. Roncador

Estuario Aequidens coeruleopunctatus Vieja

Estuario Dormitator latifrons Chame

Estuario Eleotris pictus Mongolo

Estuario Gobiomorus maculatus Cagua

Estuario/Mar Gerres cinereus Mojarra

Estuario/Mar Achirus mazatlanus Lenguado

Estuario/Mar Sphoeroides trichocephalus Trambollo

Estuario/Mar Arinus sp. Ñato

FUENTE: Guevara J, Granda V (2009); Jiménez P (2012)


3.1.1 USO DEL SUELO

La parroquia de Atacames cuenta con una superficie aproximada de 7,275. 96 ha,

de las cuales 470.47 ha corresponden al área urbana.

Este estudio se realizó en la zona urbana de la parroquia donde el suelo es

utilizado para actividades tales como comercio, turismo y residencia además, el

suelo de Atacames también es utilizado por empresas camaroneras las cuales

ocupan el 2.4% del suelo disponible en toda la cuenca del Río Atacames.

(Guerrero, Y., 2014)

53

El suelo urbano en el cual están ubicados los barrios de la parroquia Atacames

está caracterizado por ser bajo e inundable. Estos barrios están ubicados en la

parte central de la parroquia donde se concentra el mayor movimiento comercial

del cantón, provocando problemas de movilización, transporte y comercio.

(PDOT-Atacames, 2012)

Las edificaciones avanzan hasta la franja costera de la playa de Atacames donde

existen construcciones privadas que tienen relación con el turismo. En esta zona

se cuenta con 16,000 plazas hoteleras que no han contado con un verdadero plan

de ocupación del suelo provocando una sobre explotación del suelo costero, a

esto se le debe sumar que la parroquia de Atacames recibe turistas durante todo

el año pero, existen épocas en donde el flujo de turistas incrementa

considerablemente. (PDOT-Atacames, 2012) (VER ANEXO 3)

3.1.5 POBLACIÓN

La parroquia Atacames cuenta con una población de 16,855 habitantes de los

cuales 15,463 viven en la zona urbana de éstos 7,775 hombres y 7,688 son

mujeres (PDOT-Atacames, 2012), la tasa de crecimiento para la parroquia de

Atacames es de 2,7% además, cuenta con una población flotante de

aproximadamente 15,000 personas en temporadas turísticas altas, entre junio y

septiembre (Jiménez, P., 2012) que se concentran más en las playas. (VER

GRÁFICO 3.7)

En general la población de Atacames es joven el 36,47% de la población se

encuentra entre 0 y 14 años, el 59, 32% se encuentra entre 15 a 64 años. Estos

altos porcentajes se deben a factores como migración, fecundidad, demografía

etc. Que permiten que la población sea dinámica, la densidad poblacional de la

parroquia de Atacames 159,1hab/km2. (PDOT-Atacames, 2012)

Por otro lado los niveles de pobreza extrema en la parroquia de Atacames de

acuerdo al índice por necesidades básicas insatisfechas es de 35.1% y el

porcentaje de personas en viviendas con servicios inadecuados es de 50.4%.

54

(PDOT-Atacames, 2012)

La mayor parte de las actividades laborarles se desarrollan en la cabecera

cantonal, Atacames, con un 44% de la población económicamente activa que

basa su subsistencia en el turismo. (VER GRÁFICO 3.7)

GRÁFICO 3.7 DESCRIPCIÓN DE LA POBLACIÓN ECONÓMICAMENTE

ACTIVA DE LA PARROQUIA ATACAMES

FUENTE: PDOT-Atacames, 2012


3.1.6 EDUCACIÓN

Según el censo del 2001, el porcentaje de analfabetismo en la parroquia de

Atacames es del 9, 3 %, la parte de la población que ha culminado sus estudios

primarios es del 60,1%, estudios secundarios 14,9% y por último el porcentaje

que ha culminado sus estudios universitarios es del 12,8%. Estos porcentajes de

carencia de educación afecta en su mayoría a las mujeres y adultos mayores a 35

años. (PDOT-Atacames, 2012)

55

3.2 CARACTERIZACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA DEL

ÁREA DE ESTUDIO

3.2.1 FUENTES DE CONTAMINACIÓN

Las fuentes de contaminación del estuario se deben principalmente a los

asentamientos humanos en forma desordenada. Desde el año 1970 empieza un

crecimiento urbano desordenado, donde hubo la proliferación de urbanizaciones y

edificios. Esto produce la contaminación de los cuerpos de agua por la descarga

en sus lechos de aguas residuales sin tratamiento previo. A esto le siguió la

implementación de camaroneras en el año 1985 para lo cual hubo reducción de

las zonas boscosas (destrucción del bosque nativo) con sistemas de producción

poco eficiente y que contribuían a la contaminación de los recursos naturales.

(PDOT-ATACAMES, 2012)

Además, las actividades de pesca y turismo también están relacionadas con la

contaminación del estuario.

A continuación se detalla los principales factores que contribuyen a la

contaminación del Estuario del río Atacames:

· Déficit en servicios básicos.

· Sobreexplotación del recurso playa (ubicación de ventas y de turistas

superando la capacidad de carga)

· Carencia y mal estado de las redes de alcantarillado pluvial.

· Déficit del 78% de conexión a las redes de alcantarillado sanitario. (R.

Quintero, comunicación personal, 9 de diciembre de 2015).

56

· Inexistencia de puertos especializados en pesca comercial dotados de una

infraestructura adecuada.

· Falta de compromiso por parte de la ciudadanía a los programas de

educación ambiental sobre los desechos y desperdicios que son arrojados

y que se concentran dentro del estuario.

· Ausencia de un sistema de recolección y manejo de los residuos sólidos y

líquidos provenientes de embarcaciones pesqueras (lanchas y/u otros

medios de transporte acuáticos).

· Uso inadecuado del suelo (Por ejemplo zonas que inicialmente se utilizaron

para camaroneras, y después de su cierre fueron rellenadas y utilizadas

para urbanizaciones)

· Desvío inadecuado del cauce del río para la implementación y desarrollo

de actividades pecuarias.

3.3 METODOLOGÍA

3.3.1 MUESTREO

El tipo de muestreo utilizado para la evaluación de la calidad del agua del estuario

fue un muestreo dirigido, debido a los evidentes problemas de contaminación y

fácil identificación de las fuentes emisoras.

La selección de los puntos de muestreo se realizó mediante salidas campo

durante la mañana los días 2 y 4 de diciembre de 2014 los cuales contaron con la

colaboración y asesoramiento de la dirección de medio ambiente del municipio de

Atacames. El recorrido se llevó a cabo en lancha partiendo desde mar abierto

hasta el barrio Nueva Esperanza ubicado rio arriba.

57

En el reconocimiento de la zona se evidenció: descargas directa de aguas

residuales al estuario, tuberías expuestas, acumulación de desechos (basura y

hojarasca), puntos de anclaje de lanchas ubicados aleatoriamente, presencia de

redes de pesca, desvió del cauce normal del río para camaroneras del sector y

uso del estuario como balneario.

En base a la información obtenida (fuentes contaminantes y usos del estuario)

se establecieron ocho puntos de muestreo considerando la accesibilidad y la

seguridad para realizar el muestreo en cada punto. (CUADRO 3.1)

58

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60

3.3.2 CAMPAÑAS DE MUESTREO

Se realizaron dos campañas de muestreo, una el 18 de enero de 2015 dentro de la

época considerada como lluviosa y otra el 27 de junio de 2015 dentro de la época

considerada como seca. (VER ANEXO 4)

Las condiciones de marea bajo las que se realizó este estudio fueron pleamar y

bajamar, por lo cual las salidas de campo se efectuaron en horas donde se tuvieran

dichas condiciones, es decir, para el 18 de enero de 2015 el muestreo se realizó a

las 09:00 (bajamar) y 14:35 (pleamar) y para el 27 de junio de 2015 el muestreo se

realizó a las 08:00 (bajamar) y 13:00 (pleamar). Esta información se obtuvo de las

tablas de marea del Instituto Oceanográfico de la Armada del Ecuador (INOCAR).

(VER ANEXO 5)

3.3.3 PARÁMETROS ESTUDIADOS

Los parámetros físico-químicos y microbiológicos a ser muestreados fueron

seleccionados en base al cuerpo de agua estudiado, fuentes contaminantes y la

importancia de estos parámetros en la determinación de la calidad del agua. Por lo

cual, en cada punto de muestreo se tomaron “in situ” los siguientes parámetros:

potencial hidrógeno (pH), temperatura (T° C), salinidad (ppt), turbidez (NTU) y

oxígeno disuelto (mg/l).También se colectaron muestras para posteriormente ser

sometidas a ensayos de laboratorio de los siguientes parámetros ortofosfatos (PO43-),

sulfatos (SO42-), hierro total (Fe), nitritos (NO2), nitratos (NO3

-), nitrógeno amoniacal

(expresado como N-NH4+), sílice (SiO2), sólidos totales, DBO5, clorofila a y coliformes

fecales. (VER CUADRO 3.2, 3.3 Y 3.4)

61

3.3.4 TOMA, PRESERVACIÓN Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DE AGUA

En este estudio se recolectó muestras simples, las cuales permiten determinar la

composición del agua en un momento determinado. Consisten en tomar un volumen

de muestra de agua en un sitio una sola vez. (VER CUADRO 3.5)

62

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FISICO-QUIMICOS

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MICROBIOLÓGICOS

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ºC

8

hora

s

62

63

FOTOGRAFÍA 3.1 MUESTREO “IN SITU” DE PARÁMETROS FÍSICO-

QUÍMICOS.

FUENTE: Chango A., Nacimba N

FOTOGRAFÍA 3. 2 COLECCIÓN DE MUESTRAS

FUENTE: Chango A., Nacimba N

3.3.5 MÉTODOS DE ANÁLISIS Y EQUIPOS

Los ensayos de laboratorio se realizaron en la Escuela Politécnica Nacional

(Laboratorio Docente de la Facultad de Ingeniería Civil y Ambiental FICA y Centro

de Investigación y Control Ambiental CICAM), los métodos de laboratorio

utilizados se describen en el ANEXO 6. Equipos y métodos se detallan a

continuación:

64

CUADRO 3. 3 PARÁMETROS Y MÉTODOS DE ANÁLISIS

Parámetro Expresión Unidades Método Equipo

In s

itu

Oxígeno disuelto** OD mg/l APHA 4500 O G

Oxi 3210 con electrodo de membrana

CellOx ® 325 (Marca WTW

Potencial hidrógeno pH - APHA 4500-H+B

pH metro FISHER */ pH

3110 con

electrodo

SenTix® 41-3

(Marca

WTW¨**

Salinidad - ppt APHA 2510 Multiparámetro

YSI-30

Turbidez - NTU APHA 2130 B Turbidímetro ( HACH-2100P)

Temperatura - °C APHA 2550 B Multiparámetro

YSI-30

Materia flotante - - Visible -

Lab

ora

tori

o D

oce

nte

FIC

A Demanda Bioquímica

de Oxígeno DBO5 mg/l APHA 5210 B

Equipo de laboratorio

Coliformes fecales - NMP/100ml APHA 9222 C Equipo de laboratorio

Fósforo reactivo (ortofosfatos)

PO4-3 mg/l APHA 4500-P C

HACH DR 2800

Sólidos totales ST mg/l APHA 2540 C Equipo de laboratorio

Oxígeno disuelto* OD mg/l APHA 4500-O C Equipo de laboratorio

Lab

ora

tori

o C

ICA

M

Clorofila a - ug/l APHA 10200 H HACH DR

2800

Nitritos NO2 mg/l APHA 4500-

NO2- B HACH DR

2800

Nitratos NO3 mg/l APHA 4500-

NO3- B SHIMADZU

UV-1601

Hierro Total Fe mg/l APHA 3500-Fe

B HACH DR

2800

Sílice SiO2 mg/l APHA 4500-Si HACH DR

2800

Nitrógeno amoniacal N-NH4+ mg/l

Método HACH 8038

HACH DR 2800

Sulfatos SO4 2- mg/l

APHA 4500-SO4-

2 E HACH DR

2800 *primer muestreo

**segundo muestreo

FUENTE: Standard Methods for the Examination of Water and Wasterwater, 2012;

HACH, 2007


65

3.3.6 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO

El levantamiento batimétrico en la zona de estudio se realizó en condiciones de

bajamar el día 24 de abril de 2015 con el apoyo del Instituto Nacional de

Meteorología e Hidrología (INAMHI), éste se inició en el Barrio Nueva Esperanza

y culminó en la desembocadura del río Atacames hacía mar abierto.

El recorrido se realizó desde el último punto de muestreo, es decir, desde el punto

BNE y se continuó río abajo tomando como último punto PDL, no se consideró el

punto MOP porque éste se encuentra en mar abierto lo cual dificultaba la

realización de la batimetría.

Para llevar a cabo el levantamiento batimétrico se utilizó una lancha; a la cual se

adecuó el equipo ADCP (Acoustic Doppler Current Profiler) modelo WHRZ1200 y

una computadora portátil, posteriormente se sumergió el equipo en el estuario

recorriéndolo horizontalmente de orilla a orilla.

Los perfiles tomados en los puntos de muestreo se muestran en el ANEXO 7.

66

CAPÍTULO 4

ANÁLISIS DE RESULTADOS

4.1 RESULTADOS Y DISCUSIÓN

En este capítulo se describen y discuten los resultados obtenidos en este estudio,

para lo cual se debe tomar en cuenta que el uso del suelo en la zona de estudio

es mayoritariamente urbano, comercial y turístico con excepción de la zona del

barrio Nueva Esperanza (punto BNE) donde, se realizan actividades de cría de

camarones por lo tanto las descargas al estuario serán de este origen. Los

resultados obtenidos han sido tratados bajo la hipótesis de mezcla completa en el

estuario en época lluviosa (bajamar) y en época seca (bajamar y pleamar),

justificado en los factores que favorecen a esta condición, como: la magnitud de la

onda de marea (con una altura máxima a los 3 metros) y profundidad de los

esteros (de 2 a 3 metros) (Silva A & Acuña J, 2006).

A continuación se detalla las variaciones de cada parámetro estudiado en pleamar

y bajamar; las tablas de datos por muestreo se encuentran en el ANEXO 8.

4.1.1 SALINIDAD

El rango de concentración de salinidad (ppt) en época lluviosa oscila en bajamar

entre 6.1- 31.1 ppt y en pleamar entre 9.6-31.4 ppt, y en época seca oscila en

bajamar entre 1.5-33.0 ppt y en pleamar entre 1.7-33.0 ppt, siendo siempre más

salina el agua en los puntos más cercanos al mar.

En época lluviosa en condiciones de bajamar predomina el agua dulce dentro del

estuario con salinidades entre 6.1 y 7.3 ppt pues, el nivel mínimo que alcanza el

mar en el momento de la realización del muestreo (0.6 metros) no fue suficiente

para que el agua de mar ingrese plenamente al estuario. (VER GRÁFICO 4.1 (A))

67

En cambio, en bajamar de época seca el nivel mínimo que alcanza el mar (1.1

metros) en el momento de la realización del muestreo fue suficiente para que el

agua de mar ingrese plenamente al estuario con salinidades entre 1.5 y 33 ppt.

(VER GRÁFICO 4.1 (B))

Por otro lado, en pleamar el agua de mar ingresó fácilmente al estuario tanto en

época lluviosa como en época seca siendo más salina el agua en los puntos más

cercanos al mar, lo cual se debe a que los niveles que alcanzó el mar en pleamar

(2.7 metros (época lluviosa) y 2.6 metros (época seca)) fueron suficientes para

que el mar ingrese al estuario.

Además, en el punto MOP (mar abierto) los valores de salinidad obtenidos en

bajamar fueron similares a los valores obtenidos en pleamar debido a que en mar

abierto la salinidad no tuvo variación, de igual manera en el punto BNE los valores

obtenidos son similares pues, en este punto predomina el agua dulce.

GRÁFICO 4.1 VARIACIÓN DE LA SALINIDAD EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A)

MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA SECA.

(A) (B)


4.1.2 HIERRO

Los valores de concentración de hierro total obtenidos en este estudio son

menores a 0.35 mg/L en época lluviosa, y menores a 0.40 mg/L para época seca,

estas concentraciones son inferiores a las obtenidas en trabajos realizados

05

101520253035

MOP PDL OR MA HO PV BR BNE

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pp

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Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

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15

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25

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35


Sa

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ida

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pp

t)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

68

anteriormente en la zona de estudio que están en el rango de 0.87 mg/L

(Jiménez, P., 2012) esto se debe a que el estuario es un ambiente de constante

cambio y los compuestos se redistribuyen o se liberan al mar.

En el GRÁFICO 4.2 se muestra la variación de hierro total en pleamar y bajamar

para época lluviosa y seca, la tendencia observada es la existencia de mayor

concentración de hierro en bajamar y en los puntos con mayor influencia fluvial, lo

que muestra claramente que los mayores aportes de hierro son de origen

continental pues, en mar abierto (punto MOP) existen menores concentraciones

de hierro (<0.08 mg/L) además, se considera que las variaciones de la

concentración de este parámetro en el estuario se atribuyen a aportes realizados

desde los sedimentos, que son de tipo limo-arcilloso, limo-arenoso y rocoso,

porque aparentemente no existe otro factor que aporte hierro al estuario, al no

encontrar industrias que lo bordeen que puedan ser fuente del mismo.

Por otro lado en pleamar el contenido de hierro disminuye en la mayoría de los

puntos esto se debe a la entrada de agua salada, por un lado con menor

concentración en este parámetro, y por otro aumentando la profundidad del punto

de muestreo y la influencia de los sedimentos sobre el mismo.

En el medio marino este metal se encuentra principalmente en los sedimentos

(Galeano, A. Duarte, M., y Marciales, C., 1990), por lo cual las concentraciones

de hierro en los puntos de muestro pueden variar constantemente pues, los

sedimentos son transportados continuamente y depositados en diversos lugares

por la acción del agua. (Díaz, J., et al, 2007)

Sin embargo, los puntos PDL (época lluviosa) y BR (en época lluviosa y seca)

presentan unos valores anómalos, especialmente elevados, que no se ajustan ni

al patrón de resuspensión de sedimentos, ni a los aportes de fuentes puntuales,

ya que no se mantienen constantes en el mismo punto.

69

GRÁFICO 4.2 VARIACIÓN DE CONCENTRACIÓN DE HIERRO TOTAL (Fe) EN

PLEAMAR Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO

ÉPOCA SECA.

(A) (B)


4.1.3 NITRÓGENO AMONIACAL

En este estudio se observó que el rango de concentración de nitrógeno amoniacal

(N-NH4+) no tuvo variación entre épocas pues, en época lluviosa los valores de

este nutriente oscilan entre 0.21-1.70 mg/L, y en época seca oscilan entre 0.43-

1.82 mg/L. Pero la distribución espacial de este parámetro no es semejante entre

épocas.

En época lluviosa y seca se observa que existe mayor concentración de N-NH4+

en los puntos con mayor influencia fluvial lo cual muestra que el agua dulce es la

que aporta este nutriente al estuario.

En pleamar de época lluviosa disminuye la concentración de este nutriente en la

mayoría de los puntos, lo cual se atribuye a la entrada de agua salada (con menor

concentración de este parámetro) al estuario que aumenta la profundidad del

punto de muestreo (VER GRÁFICO 4.3 (A)).Sin embargo, en pleamar de época

seca la concentración de este parámetro no disminuye pese a que al igual que en

época lluviosa existe un aumento de la profundidad del punto de muestreo. Una

de las razones para este comportamiento pudo ser un aporte de materia orgánica

0.00

0.10

0.20

0.30

0.40

0.50


Hie

rro

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(mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0.00

0.10

0.20

0.30

0.40


Hie

rro

to

tal

(mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

70

por parte de fuentes antropogénicas difusas ya que, el estuario está ubicado en la

zona urbana, comercial y turística de Atacames. (VER GRÁFICO 4.3 (B))

Los picos de nitrógeno amoniacal en bajamar se encontraron en el punto PV

(época lluviosa) y HO (época seca) los cuales guardan relación con las descargas

que se tienen en estas zonas pues, en el punto PV existen descargas aguas

residuales por medio del alcantarillado pluvial y en el punto HO existe zona

hotelera que pudo verter aguas residuales al estuario.

Otro punto donde existe una alta concentración de N-NH4+ es en mar abierto

(punto MOP) en bajamar en época seca. Este comportamiento no guarda relación

con las descargas de aguas residuales, sin embargo, puede atribuirse a la fijación

del nitrógeno molecular (N2) por microorganismos, como las cianobacterias (o

algas azul-verdosas), que lo convierten en amonio. (Spetter C., Freije R y

Marcovecchio J., 2013)

GRÁFICO 4.3 VARIACIÓN DE NITRÓGENO AMONICAL (N-NH4+) EN


ÉPOCA SECA.

(A) (B)


Existe presencia de nitrógeno amoniacal en concentraciones considerables dentro

del estuario lo cual es irregular puesto que, en condiciones aerobias la

concentración de amonio es baja (Roldan G., Ramírez J., 2008) pero en este

estudio esa condición no se cumple por la influencia que tienen las descargas de

0.0

0.5

1.0

1.5

2.0


N-N

H4

+ (

mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0.0

0.5

1.0

1.5

2.0


N-N

H4

+ (

mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

71

aguas residuales en el estuario ya que, aproximadamente el 50-60% del nitrógeno

total en las aguas de desechos se encuentra en forma de amonio (compuesto que

es el producto inicial de la descomposición de los desechos orgánicos

nitrogenados) (Pugibet, E.; Vega, M.; Geraldes, F., 2006).Este comportamiento

muestra la influencia de las actividades antrópicas en el estuario. (VER GRÁFICO

4.4 y 4.5)

GRÁFICO 4.4 VARIACIÓN DE LAS ESPECIES INORGÁNICAS DE

NITRÓGENO EN ÉPOCA LLUVIOSA A) BAJAMAR; B) PLEAMAR.

(A) (B)


GRÁFICO 4.5 VARIACIÓN DE LAS ESPECIES INORGÁNICAS DEL

NITRÓGENO EN ÉPOCA SECA A) BAJAMAR; B) PLEAMAR.

(A) (B)


4.1.4 NITRATOS

En este estudio se observó que el rango de concentración de nitratos (NO3) no

tuvo variación entre épocas pues, en época lluviosa los valores de este nutriente

0

0.5

1

1.5

2


mg

/L

Puntos de muestreo

NO2_BNO3_BN-NH4_B

0

0.5

1

1.5

2


mg

/L

Puntos de muestreo

NO2_PNO3_PN-NH4_P

0

0.5

1

1.5

2

2.5

MOP PDL OR MA HO PV BR BNEPuntos de muestreo

NO2_P

NO3_P

N-NH4_P

mg

/L

0

0.5

1

1.5

2

MOP PDL OR MA HO PV BR BNEPuntos de muestreo

NO2_BNO3_BN-NH4_B

mg

/L

72

oscilan entre 0.08-1.86 mg/L, y en época seca oscilan entre 0.20-2.02 mg/L.

Además, los valores más altos de este parámetro se observaron en los puntos

con mayor influencia de agua salada, lo cual sugiere que el agua salada es la

aportante de este nutriente al estuario.

La variación de la concentración de NO3 en las dos condiciones de marea para

época lluviosa y seca se muestra en el GRAFICO 4.6 (los valores que no constan

en este gráfico son los aquellos inferiores al límite de detección del método

utilizado (0.20 mg/L)) donde, se puede observar claramente que cuando hubo

mayor influencia del agua de mar , es decir, en pleamar (de época lluviosa y seca)

y bajamar (de época seca) el nitrato es mayor en mar abierto (punto MOP) y va

disminuyendo conforme se mezcla con el agua dulce. Esto se demuestra

claramente en el GRÁFICO 4.6 (A) pues, al no haber influencia de agua de mar

en bajamar de época lluviosa los puntos PDL, OR, MA, HO no se registran

nitratos contrario a lo ocurre en pleamar pues, la concentración de nitratos

aumenta en todos los puntos dentro de estuario. Por otro lado en los puntos PV,

BR y BNE para las dos condiciones de marea hay presencia de nitratos lo cual

está relacionado con los vertidos de aguas residuales en estas zonas y con los

aportes de las piscinas de cría de camarón.

GRÁFICO 4.6 VARIACIÓN NITRATOS (NO3) EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A)


(A) (B)


0.00

0.50

1.00

1.50

2.00


NO

3 (

mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0.00

0.50

1.00

1.50

2.00

2.50


NO

3(m

g/L

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

73

4.1.5 NITRITOS

La variación de la concentración de NO2 para las dos condiciones de marea entre

época lluviosa y seca se muestra en el GRÁFICO 4.7 (los valores que no constan

en este gráfico son los aquellos inferiores al límite de detección del método

utilizado (0.03 mg/L))., donde se observa que el contenido de nitritos es bajo (<

0.09 mg/L NO2) con un rango en época lluviosa oscila entre 0.03-0.09 mg/L NO2,

y en época seca oscila entre 0.03-0.06 mg/L NO2. Estos valores se deben a que

en aguas oxigenadas la concentración de nitritos es baja pero, a medida que las

condiciones se tornan hipóxicas la concentración de este compuesto aumenta.

(Roldan G., Ramírez J., 2008) otras de las razones para que su concentración

sea baja es porque es un ión inestable y muy reactivo que puede actuar como

agente oxidante y reductor. (Albert, L., 1997).

En el GRÁFICO 4.7 (A) se observa como en bajamar de época lluviosa (donde al

no haber mezcla solo hay aporte fluvial) existe concentración de nitritos en todos

los puntos dentro del estuario esto muestra que en agua dulce este compuesto se

encuentra más estable.

Además, el nitrito está presente en las dos épocas de muestreo en los puntos

HO, PV, BR y BNE lo cual se puede asociar a la baja de oxígeno disuelto en estas

zonas.

GRÁFICO 4.7 VARIACIÓN DE NITRITOS (NO2) EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A)


(A) (B)


0.00

0.02

0.04

0.06

0.08

0.10


NO

2 (

mg

/l)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0.00

0.02

0.04

0.06

0.08


NO

2(m

g/L

)

Puntos de Muestreo

PleamarBajamar

74

4.1.6 ORTOFOSFATOS

Al igual que con los compuestos nitrogenados el rango de concentración de

ortofosfatos (PO43-) es el mismo para las dos épocas del año pues, en época

lluviosa oscila entre 0.07-1.78 mg/L y en época seca oscila entre 0.05-1.62 mg/L.

Y se puede observar en el GRÁFICO 4.8 que existe mayor concentración de este

nutriente en los puntos con mayor influencia fluvial.

En época lluviosa se observa como este parámetro se concentra en bajamar,

demostrando que el agua dulce es la que aporta este nutriente al estuario pues

como ya se lo ha mencionado en esta época y para esta condición de marea la

influencia del agua salada es mínima.

En pleamar en las dos épocas de muestreo disminuye la concentración de PO43-

en la mayoría de puntos dentro del estuario, lo cual se puede atribuir al ingreso de

agua salada, por un lado con menor concentración en este parámetro, y por otro

aumentando la profundidad del punto de muestreo y la influencia de los

sedimentos sobre el mismo. (VER GRÁFICO 4.8)

Los puntos con mayor influencia fluvial (PV, BR y BNE) tanto en época seca como

en época lluviosa muestran mayor concentración de ortofosfatos, lo cual está

relacionado con las descargas de aguas residuales y de piscinas camaroneras.

Por otro lado, existen picos de ortofosfatos en los puntos OR (época lluviosa) y

MA (época seca), donde existe un aporte significativo de este compuesto por

parte de las aves marinas en estos sitios ya que éstas forman un depósito de

guano (excremento de aves marinas), rico en fósforo.(ROLDÁN G, RAMÍREZ J,

2008).

75

GRÁFICO 4.8 VARIACIÓN DE ORTOFOSFATOS (PO43-) EN PLEAMAR Y


SECA.

(A) (B)


4.1.7 SILICIO

La concentración de SiO2 en el estuario es mayor con respecto a las

concentraciones de los demás nutrientes (nitrógeno y fósforo) ya que el contenido

de silicio (expresado como SiO2) varía en época lluviosa entre 0.9-46.9 mg/L y en

época seca oscila entre 2.9-49.5 mg/L.

En mar abierto (punto MOP) el contenido SiO2 es bajo y tiende a incrementarse

en la mayoría de los puntos río arriba, este comportamiento se considera normal

pues, en ecosistemas costeros la fuente principal de este compuesto es la

escorrentía de tierra. (Movellán, E., 2003). (VER GRÁFICO 4.9)

Además, este nutriente se concentra más en bajamar y se diluye en pleamar por

el avance del agua salada (con baja concentración de SiO2) que aumenta la

profundidad del punto de muestreo.

0.00

0.50

1.00

1.50

2.00


PO

43

- (m

g/L

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0.00

0.50

1.00

1.50

2.00


PO

4-3

(m

g/L

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

76

GRÁFICO 4.9 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SILICIO (SiO2) EN PLEAMAR

Y BAJAMAR. A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA

SECA.

(A) (B)


4.1.8 OXÍGENO DISUELTO

El valores obtenidos OD tanto en época lluviosa como en época seca y para las

dos condiciones de marea están en el rango de 2.0-6.9 mg/L, éstos valores son

semejantes a los valores que se obtuvieron en estudios anteriores (4.0 a 7.0

mg/L) siendo también mayor la concentración de OD en mar abierto. (Rodríguez,

A, 2002)

La variación de OD para las dos condiciones de marea en la época lluviosa se

muestra en el GRÁFICO 4.10 (A) donde, se puede observar que en los puntos BR

y BNE existe mayor concentración de oxígeno disuelto en pleamar lo cual está

relacionado con la turbulencia que causa la acción mareal. En los demás puntos

no fue posible obtener datos completos por problemas de logística.

En el punto PV para el muestreo de enero en bajamar la concentración de OD es

superior a la del muestreo realizado en época seca bajo la misma condición de

marea, esto está ligado al hecho que en este punto existe una estructura metálica

(restos de un puente dentro del estuario) que genera turbulencia en este sitio lo

que altera la concentración de OD dependiendo del flujo y reflujo mareal.

0

10

20

30

40

50


SiO

2

(mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0

10

20

30

40

50

60


SiO

2 (

mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

77

El comportamiento del OD (Oxígeno Disuelto) en época seca a lo largo del

estuario muestra que en mar abierto (punto MOP) y en los puntos cercanos a la

desembocadura los valores registrados de oxígeno disuelto son más elevados

que en los puntos ubicados río arriba. Pues, en estos puntos el contenido de los

nutrientes disminuye e influye más la acción mareal y del viento (VER GRÁFICO

4.10 (B)). En pleamar por problemas de logística no fue posible obtener datos.

Por otro lado, en estudios anteriores el oxígeno disuelto en la cuenca baja del río

Atacames antes de ingresar a la zona urbana está en el rango de 7.2 -10.7 mg/L

(Martínez F., 2014), sin embargo, como se observa en este estudio al llegar a la

zona camaronera y urbana el oxígeno disuelto disminuye y vuelve a aumentar

cuando la actividad antrópica disminuye en los puntos cercanos a la

desembocadura.

GRÁFICO 4.10 VARIACIÓN DE OXÍGENO DISUELTO (OD) EN PLEAMAR Y


SECA.

(A) (B)

ELABORADO POR: Chango A., Nacimba

4.1.9 POTENCIAL HIDRÓGENO

Los valores de pH obtenidos en este estudio varían entre 7.68 a 8.14, los cuales

están dentro del rango de valores obtenidos en estudios anteriores en la zona de

estudio que oscilan entre 7.13 a 8.82 (Jiménez, 2012). Estos valores están dentro

0

2

4

6

8


OD

(m

gl)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0

2

4

6

8


OD

(m

g/L

)

Puntos de Muestreo

Bajamar

78

del rango normal (7.5 a 9.5) que presentan cuerpos de agua semicerrados de alta

producción primaria. (De la Lanza, G., 2014)

En el GRÁFICO 4.11 se muestra la variación de pH en las dos condiciones de

marea donde, se observa que en época lluviosa y época seca este parámetro

presenta leves diferencias entre pleamar y bajamar mostrándose más alcalino en

mar abierto lo cual está relacionado con la presencia de carbonatos y sulfatos en

el agua de mar, por tanto al existir mezcla, el pH en los puntos más influenciados

por el mar se tornaran más alcalino. (VER GRÁFICO 4.11 (B))

GRÁFICO 4.11 VARIACIÓN DEL POTENCIAL HIDRÓGENO (pH) EN


ÉPOCA SECA.

(A) (B)


4.1.10 TEMPERATURA

Los valores de temperatura registrados en los muestreos realizados en época

seca y época lluviosa para las dos condiciones de marea oscilan entre 27.2- 29.7

°C; estos datos están dentro del rango de temperaturas obtenidas en otros

estudios donde, se han registrado temperaturas entre 25-30 °C (Rodríguez, A.,

2002). Además, no se registran incrementos considerables de temperatura por

tanto se puede decir que el oxígeno disuelto (OD) no se ve perturbado por la

influencia de la temperatura pues, en latitudes tropicales las pérdidas oxígeno se

7.40

7.60

7.80

8.00

8.20


pH

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

7.50

7.70

7.90

8.10


pH

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

79

producen a partir de incrementos mayores de 5°C sobre el máximo registrado.

(De la Lanza, 2014).

La variación de la temperatura para las dos condiciones de marea se muestra en

el GRÁFICO 4.12., donde se observa que la temperatura en la mayoría de los

puntos de muestreo es superior en pleamar tanto en época lluviosa como en

época seca. Esto está relacionado con el aumento de la temperatura ambiente

(Del Blanco L, Asteasuain R, Arlenghi J, Avena M y Marcovecchio J, (sf)) ya que,

los muestreos de pleamar se realizaron al medio día cuando hay más irradiación

solar.

Por otro lado, el punto BR en bajamar de época lluviosa presenta un

comportamiento anómalo lo cual se debe a la existencia en este punto de varias

fuentes difusas de contaminación que descargan aguas residuales al estuario y

las cuales pueden alterar la temperatura del agua.

GRÁFICO 4.12 VARIACIÓN DE TEMPERATURA EN PLEAMAR Y BAJAMAR.

A) MUESTREO ÉPOCA LLUVIOSA; B) MUESTREO ÉPOCA SECA.

(A) (B)


26

27

28

29

30


Te

mp

era

tura

(°C

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

25

26

27

28

29

30


Te

mp

era

tura

°C

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

80

4.1.11 TURBIDEZ

El rango de concentración de turbidez (NTU) en época lluviosa oscila en bajamar

entre 7.35-39.70 NTU y en pleamar entre 5.58-23.40 NTU, y en época seca oscila

en bajamar entre 4.41-38.40 NTU y en pleamar entre 2.38-27.35 NTU.

La variación de turbidez para las dos condiciones de marea entre época lluviosa

y seca se muestra en el GRAFICO 4.13., donde se observa que existe mayor

turbidez en bajamar, lo que demuestra que la marea influye en la transparencia

del agua porque al incrementarse la profundidad del punto de muestreo en

pleamar, se observa una dilución de las partículas suspendidas lo que sugiere

que el agua proveniente del mar aparentemente no contiene partículas en

suspensión para aportar al estuario y por tanto la turbidez disminuye. Además, la

turbidez es menor en los puntos cercanos a la desembocadura y aumenta en los

puntos río arriba.

Por otro lado en el punto ubicado en mar abierto (punto MOP) la turbidez registra

valores bajos y similares tanto en pleamar como en bajamar, lo mismo ocurre en

el punto BNE este comportamiento demuestra que en estos puntos el efecto de la

marea tiene menor influencia que para el resto de puntos.

Los picos de turbidez se presentan en bajamar en los puntos PDL, HO (en época

lluviosa y seca), y BR (época seca), lo cual se puede atribuir a un proceso de

erosión de las orillas del estuario ya que, en estos existe poca vegetación por la

tala del mangle.

81

GRÁFICO 4.13 VARIACIÓN DE LA TURBIDEZ EN PLEAMAR Y BAJAMAR. A)


(A) (B)

ELABORADO POR: Chango A., Nacimba

4.1.12 CLOROFILA “a”

El rango de concentración de clorofila “a” (ug/L) en época seca (solo se realizó el

muestreo de este parámetro en esta época por la limitación de recursos) oscila en

bajamar entre 0.02-0.6 ug/L y en pleamar entre 0.02-0.40 ug/L, el valor máximo se

registró en bajamar en el punto BNE (0.60 ug/L) donde predomina el agua dulce y

se tiene mayor concentración de nutrientes.

La variación de clorofila “a” para las dos condiciones de marea se muestran en el

GRÁFICO 4.15., donde se observa que existe menor contenido de clorofila “a” en

pleamar en la mayoría de los puntos pues, cuando la salinidad aumenta existe

menor actividad fitoplanctónica por estrés salino (Romero, I., 2003).

Se observa picos de concentración de clorofila “a” para condiciones de pleamar

en los puntos OR y HO, esto se puede atribuir a la presencia de bosque de

mangle que existe en estos puntos ya que en los puntos cercanos a la costa y

con gran cantidad de restos vegetales puede existir clorofila “a” de origen

fitoplanctónico o no fitoplanctónico. (Romero, I., 2003)

0

10

20

30

40


Tu

rbid

ez

(NT

U)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0

10

20

30

40

50


Tu

rbid

ez

(NT

U)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

82

GRÁFICO 4.14 VARIACIÓN DE LA CLOROFILA a EN EL ESTUARIO DEL RÍO

ATACAMES. (JUNIO, 2015)


4.1.13 DBO 5

Se tiene datos de este parámetro solo en época seca y en bajamar porque se

consideró evaluar la situación más crítica del estuario.

El rango de concentración de DBO5 (mg/L) oscila en bajamar entre 15.3-330 mg/l

el valor máximo se registró en el punto BNE (330 mg/L) donde existe alta

concentración de nutrientes lo cual indica un aporte importante de materia

orgánica y el mínimo se registró en el punto MOP (15.3 mg/L) caracterizado por

bajas concentraciones de nutrientes (a excepción de los nitratos).

Por otro lado el valor de DBO 5 en el punto OR es anómalo ya que en este punto

no se registran altas concentraciones de nutrientes sin embargo existen

concentraciones considerables de hierro y sulfato las cuales pueden causar

interferencias en el ensayo y causar resultados erróneos. (Juárez, M., Franco,

Marina., Ascencio, V., 2009)

0

0.1

0.2

0.3

0.4

0.5

0.6

0.7


Clo

rofi

la a

(

ug

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

83

GRÁFICO 4.15 VARIACIÓN DE LA DEMANDA BIOQUÍMICA DE OXÍGENO

(DBO5) EN EL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES. (JUNIO, 2015)

ELABORADO POR: Chango A., Nacimba N.

4.1.14 SULFATOS

El rango de concentración de sulfatos (SO4 2-) entre épocas muestra variaciones

importantes ya que en época lluviosa los valores oscilan en bajamar entre 4-1200

mg/L y en pleamar entre 5-44 mg/L, en cambio en época seca no fue marcada la

variación pues los valores oscilan en bajamar entre 225-2350 mg/L y en pleamar

entre 225-1950 mg/L.

En época lluviosa se registran valores atípicos en los puntos PDL (1,000 mg/L) y

BR (1,200 mg/L) en bajamar, estas altas concentraciones de sulfatos pueden

deberse al ingreso de este compuesto al agua por la disolución de rocas ya que al

no ingresar el agua de mar en el momento de muestreo en esta condición de

marea el contenido de sulfatos no se puede atribuir al ingreso de agua de mar

(que contiene sulfatos). En pleamar en cambio se tiene elevadas concentraciones

de sulfatos en los puntos cercanos a la desembocadura, estos puntos se

caracterizan por tener mayor influencia del mar. (VER GRÁFICO 4.16 (A))

En época seca se observa una distribución decreciente para el sulfato siendo

menor en los puntos con mayor influencia fluvial tanto en bajamar como en

pleamar pues, para estas dos condiciones de marea existió mezcla con el agua

de mar. (VER GRÁFICO 4.16 (B))

0

50

100

150

200

250

300

350


DB

O5

(mg

/L)

Puntos de Muestreo

Bajamar

84

GRÁFICO 4.16 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SULFATO (SO4-2) EN


ÉPOCA SECA.

(A) (B)

ELABORADO POR: Chango A., Nacimba N.

La presencia de HS-, H2S y (SO4)-2 guarda estrecha relación con el pH de manera

general, en valores de pH mayores a 8 se puede encontrar el azufre reducido en

forma (SO4)-2 (Roldan G., Ramírez, J., 2008). Los valores de pH en el estuario en

época lluviosa van de 7,8 -7,9, y en época seca varían entre 7,7 – 8,14; a éste

rango de pH la mayoría de azufre reducido existe en solución como HS- y (SO4)-2;

en cambio, el H2S se encuentra en mínimas concentraciones y su olor es

imperceptible (Roldan G., Ramírez, J., 2008), por tanto en esta zona no se deben

presentar olores desagradables. Cabe puntualizar que durante las campañas de

muestreo no se percibieron malos olores.

4.1.15 SÓLIDOS TOTALES

Los datos obtenidos en los muestreos realizados muestran que, la concentración

de sólidos totales es alta pues, el rango de concentración oscila en época lluviosa

oscila entre 7,262-43,954 mg/l y en época seca entre 1,738-38,636 mg/l. Además,

los sólidos totales tienen un comportamiento semejante al de la salinidad en

pleamar (época seca y lluviosa) y en bajamar (época seca) lo cual indica que la

mayoría de los sólidos presentes en el estuario son sólidos disueltos. (VER

GRÁFICO4.17)

0

10

20

30

40

50


SO

4 2

- (m

g/L

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar1200 mg/L

0

500

1000

1500

2000

2500


SO

4 2

- (

mg

/L)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

85

y = 1164.5x - 335.74

R² = 0.9961

0

10000

20000

30000

40000

50000

0 10 20 30 40

ST

(m

g/l

)

SALINIDAD (PPT)

En bajamar de época lluviosa no se puede ver relación de los sólidos totales con

la salinidad porque no existe un aporte de agua de mar por tanto el contenido de

sólidos para esta condición de marea proviene del arrastre de material

sedimentario del río, el cual puede proceder de la erosión del suelo de la zona de

estudio que es limo-arenoso y limo-arcilloso. (VER GRÁFICO 4.18)

GRÁFICO 4.17 VARIACIÓN DE LOS SÓLIDOS TOTALES EN FUNCIÓN DE LA

SALINIDAD. (A) BAJAMAR ÉPOCA SECA, (B) PLEAMAR ÉPOCA SECA, (C)

PLEAMAR ÉPOCA LLUVIOSA.

(A) (B)

(C)


y = 1186.7x - 952.23

R² = 0.9967

0

10000

20000

30000

40000

50000

0 10 20 30 40

ST

(m

g/l

)

SALINIDAD (PPT)

y = 1048.6x + 3994.5

R² = 0.9864

0

5000

10000

15000

20000

25000

30000

35000

40000

0 10 20 30 40

ST

(m

g/l

)

SALINIDAD (PPT)

86

0

10000

20000

30000

40000

50000

Só

lid

os

tota

les

(m

g/l

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

GRÁFICO 4.18 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE SÓLIDOS TOTALES EN


ÉPOCA SECA.

(A) (B)


4.1.16 COLIFORMES FECALES

El contenido de coliformes fecales (NMP/100ml) registra el valor máximo en

época lluviosa (110000 NMP/100ml) en los puntos MA, PR y BR estos valores se

deben al aporte de las descargas de aguas residuales domésticas. En las dos

campañas de muestreo la mayor concentración de coliformes fecales se muestra

en época lluviosa en condiciones de bajamar a lo largo del estuario esto

demuestra que existe un riesgo para la salud, ya que el punto PDL es utilizado

como balneario. En época seca se registra el valor máximo en el punto PV

(46000 NMP/100ml) en pleamar. Sin embargo, comparando los datos entre

épocas se observa que existe mayor contenido de coliformes fecales en época

lluviosa en condiciones de bajamar, ya que en época seca existió disminución de

este parámetro, lo cual es resultado del programa de conexión al alcantarillado

que empezó a promover el municipio de Atacames del cual algunos habitantes de

las riveras del estuario han acogido el mismo y se han conectado.

La variación de coliformes fecales para las dos condiciones de marea se muestra

en el GRÁFICO 4.19 (por facilidad de representación gráfica de coliformes

fecales se utilizó logaritmo en base 10), donde se observa que existe mayor

contenido de coliformes fecales en bajamar. No se observan en el GRÁFICO

0

10000

20000

30000

40000

50000

Só

lid

os

To

tale

s (m

g/l

)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

87

4.18 representados algunos valores porque el contenido de coliformes fecales es

menor a 3 NMP/100ml.

La concentración de coliformes fecales disminuye en condiciones de pleamar

para la época lluviosa lo cual sucede por el avance del agua de mar (con menor

contenido de coliformes fecales) que aumenta la profundidad en el punto de

muestreo.

GRÁFICO 4.19 VARIACIÓN DEL CONTENIDO DE COLIFORMES FECALES EN


ÉPOCA SECA.

(A) (B)


4.2 EVALUACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA

4.2.1 CALIDAD DEL AGUA DEL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES

APLICANDO LOS ÍNDICES TRIX (nP) Y NSF

La evaluación de la calidad del agua del estuario del río Atacames se realizó con

los índices TRIX (nP) y NSF, para lo cual se consideraron las condiciones más

críticas, es decir, época seca y bajamar. (VER ANEXO 9)

Según el índice trófico TRIX (nP) en bajamar el estuario del río Atacames

presenta niveles de producción altos (TRIX (nP): 5.2-7.4) en los puntos MOP, OR,

0123456

Log

Co

lifo

rme

s

(NM

P/1

0m

l)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

0

1

2

3

4

5

Log

Co

lifo

rme

s

(NM

P/1

00

ml)

Puntos de Muestreo

Pleamar

Bajamar

88

MA, HO, PV, BR y BNE; y niveles de producción medios (TRIX (nP): 4.6) en el

punto PDL. (VER TABLA 4.1)

La evaluación de la calidad del agua del estuario en bajamar utilizando el índice

de calidad del agua NSF revela que presenta condiciones malas (NSF: 44) en los

puntos MA, BR y BNE; y medias (NSF: 39-63) en los puntos MOP, PDL, OR, HO

y PR, lo cual está relacionado con el bajo aporte de oxígeno disuelto y los altos

valores de DBO5 en los puntos de muestreo analizados dónde es evidente que

existe una elevada contaminación. (VER TABA 4.2)

TABLA 4.1 VALORES OBTENIDOS DEL CÁLCULO DEL ÍNDICE TRIX (nP) EN

EL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES EN CONDICIONES CRÍTICAS (BAJAMAR

Y ÉPOCA SECA, JUNIO DE 2015).

PUNTO TRIX (nP) ESTADO DE LA CALIDAD DEL

AGUA CARACTERÍSTICAS DEL AGUA

MOP 5.2 MALA AGUA ENTRE MODERADA Y ALTAMENTE PRODUCTIVA

NIVEL TRÓFICO ALTO

PDL 4.6 BUENA AGUA MODERADAMENTE

PRODUCTIVA NIVEL TRÓFICO MEDIO

OR 5.5 MALA AGUA ENTRE MODERADA Y ALTAMENTE PRODUCTIVA

NIVEL TRÓFICO ALTO

MA 6.8 POBRE

AGUA ALTAMENTE PRODUCTIVA

NIVEL TRÓFICO MÁS ALTO

HO 7.4 POBRE

PV 7.1 POBRE

BR 6.2 POBRE

BNE 7.4 POBRE


89

TABLA 4.2 VALORES OBTENIDOS DEL CÁLCULO DEL ÍNDICE DE CALIDAD

DEL AGUA NSF EN CONDICIONES CRÍTICAS (BAJAMAR Y ÉPOCA SECA,

JUNIO DE 2015)

Muestra Índice Equivalencia

MOP1B 63 Medio

PDL1B 57 Medio OR1B 57 Medio MA1B 44 Malo HO1B 59 Medio

PRVB 50 Medio

BR1B 39 Malo BNE1B 43 Malo


El índice que describe mejor la calidad del agua del estuario es el Índice trófico

TRIX (nP) porque al usar el índice NSF las variables que se toman en cuenta para

el cálculo no están relacionados con la contaminación del estuario sino que son

propias del mismo, estas variables son sólidos totales y temperatura.

4.2.2 COMPARACIÓN DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS CON LA

NORMATIVA ECUATORIA

A continuación se muestra la comparación de los parámetros estudiados con la

normativa ecuatoriana vigente en base a los criterios de calidad de aguas para la

preservación de la vida acuática y silvestre en aguas dulces frías o cálidas y en

aguas marinas y de estuarios, criterios de calidad para aguas con fines

recreativos y criterios de calidad para aguas de uso estético.

.

90

TA

BL

A 4

.3 C

OM

PA

RA

CIÓ

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B

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230

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230

2400

0 23

0 24

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150

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1100

0 43

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0.3

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2 0.

08

0.35

0.

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0.21

0.

27

0.17

0.

16

0.19

0.

17

0.25

0.

09

0.23

0.

08

0.15

0.

32

Mat

eria

flo

tant

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igen

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N/A

N

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Ausencia

Ausencia

Ausencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

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Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

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200

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0.0

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07

< 0

.03

0.04

0.

03

0.07

0.

08

0.06

0.

04

0.04

0.

06

0.04

<

0.0

3

pH

N/A

N

/A

6.5

-9.5

8.

0 7.

9 7.

7 7.

8 7.

8 7.

9 7.

9 7.

7 7.

9 7.

9 7.

9 7.

9 7.

8 7.

9 7.

8 7.

9

Oxí

geno

D

isue

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2 N

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0

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89.3

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75.7

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78.1

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33.4

47

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90

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02

0.10

0.

06

0.11

0.

06

0.10

0.

08

0.21

0.

16

0.23

0.

15

0.40

0.

21

0.16

0.

26

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Presencia

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Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

Presencia

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05

0.03

0.

06

0,04

0,

06

0,06

0,

04

0,06

pH

N/A

N

/A

6.5

-9.5

8.

13

8.14

8.

11

8.12

8.

09

8.06

7.

76

7.81

7.

68

7.89

7.

69

7.87

7.

70

7.77

7.

72

7.77

Oxí

geno

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2 N

/A

< 6

0

88.0

-

81.3

-

71.2

-

45.1

-

31.4

-

34.4

-

27.0

-

25.5

-

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ELA

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N

91

92

4.3 PROPUESTA DE UN PLAN DE MONITOREO

En el presente estudio se propone monitorear algunas variables para evaluar la

calidad del agua del estuario del río Atacames. (VER ANEXO 10)

93

CAPÍTULO 5

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

El estuario cumple las funciones de un sumidero de desechos captando los

nutrientes que se encuentran presentes para así poder mantener su propio

ecosistema. Sin embargo, por el uso intensivo que este sufre (relleno, descarga

de aguas residuales y tala de su bosque nativo (mangle)) pierde esta capacidad

asimilativa, permitiendo que los contaminantes se movilicen a lo largo de su

cauce.

El estuario del río Atacames considerando las tablas de marea presenta

características micro y mesomareales ya que la altura de las mareas va 0.7 – 2.8

metros. Y por definición siendo la salinidad superficial menor dentro del estuario

a la salinidad del mar se concluye que este estuario corresponde a un estuario

positivo.

El agua del estuario del río Atacames presenta altos niveles de troficidad en las

zonas que se encuentran más pobladas.

En condiciones de bajamar la desembocadura del río Atacames que da hacía el

Océano Pacífico utilizada como balneario turístico no es adecuada para el uso

recreativo.

Para la evaluación continua de la calidad del agua del estuario del río Atacames

se determina que es necesario usar cuatro puntos de muestreo los cuales están

ubicados en sitios donde la población tiene contacto directo con el agua y hace

uso del estuario.

El punto de muestreo puerto de lanchas (PDL) propuesto en el plan de monitoreo

presenta niveles medios de troficidad y altos valores de coliformes fecales por lo

94

cual no es apto para los usos que se destina a esta zona y debe ser monitoreado

continuamente para así poder controlar y evitar problemas de salud pública.

El punto manglar (MA) propuesto en el plan de monitoreo presenta un pobre

estado de la calidad del agua por esta razón debe monitorearse por las

actividades pesqueras que se desarrollan en este sector y porque este es un sitio

en el cual el bosque de mangle se encuentra en proceso de recuperación.

El punto barrios (BR) debe monitorearse ya que existen asentamientos humanos

ubicados a la rivera del estuario que hacen uso de éste y presenta mayores

problemas de incumplimiento con la normativa (coliformes fecales) además, de

tener un estado de la calidad del agua pobre.

El último punto propuesto en la red de monitoreo es BNE (barrio Nueva

Esperanza) él cual está ubicado en una zona camaronera pues en este punto se

ve afectado el flujo de agua dulce al estuario.

El desvío del cauce del río Atacames producto de la actividad camaronera

provoca menor aporte de agua dulce al estuario afectando el normal

funcionamiento del ecosistema estuarino.

Dentro del plan de monitoreo la frecuencia del muestreo es mensual porque esto

permite establecer un seguimiento continuo del comportamiento del estuario pues,

la ciudad de Atacames es una zona turística donde los aportes de contaminantes

tienden a aumentar en los meses con mayor afluencia de turistas.

El relleno artificial de la desembocadura del estuario del río Atacames no permite

que el aporte de agua proveniente del mar sea el suficiente para mantener la

dinámica el estuario.

95

Este estudio muestra que el rango de concentración de los nutrientes estudiados

es similar dentro del estuario tanto en época lluviosa (enero, 2015) como en la

época seca (junio, 2015).

96

RECOMENDACIONES

Para el análisis de los parámetros físico-químicos y microbiológicos se

recomienda enviar las muestras de aguas correctamente conservadas a

laboratorios acreditados que tengan experiencia en el análisis de agua salobre

porque en este estudio no se logró obtener datos completos de algunos de los

parámetros estudiados debido a la presencia de interferencias al momento de

realizar el análisis causadas por el alto grado de salinidad presente en las

muestras de agua.

Para la realización del muestreo de aguas de un estuario, la logística es

fundamental ya que la colección de muestras y preservación de las mismas, es un

proceso complejo porque este implica transportarse dentro del estuario con el uso

de lanchas o canoas las cuales no son un medio de transporte estable, es decir,

al movilizarse dentro del estuario con estos medios de transporte es muy probable

que se produzcan eventos inesperados que obstaculicen el muestreo. Por lo cual

la planificación, coordinación y capacitación del personal son procesos básicos

dentro de un programa de monitoreo.

Por el alcance que tuvo este estudio solo se determinó parámetros básicos de la

calidad del agua; por lo tanto es necesario también hacer una caracterización de

los sedimentos del estuario; realizar análisis de la presencia de hidrocarburos

porque este estuario sirve como medio de transporte para muchas embarcaciones

pesqueras las cuales descargan accidentalmente o a propósito los residuos de

combustible que generan sus embarcaciones.

La realización de un análisis a los sedimentos del estuario es necesaria para

obtener datos sobre la distribución y comportamiento de los parámetros físico-

químicos y microbiológicos, así también permitirá conocer que tipos de

contaminantes se acumulan en el fondo del estuario.

97

Se recomienda también realizar el perfil batimétrico en cada punto de muestreo al

menos una vez al año para poder conocer si el estuario está siendo rellenado

artificialmente.

Los puntos de monitoreo propuestos están sujetos a cambios de acuerdo a la

base de datos que se vaya obteniendo a lo largo del tiempo o por las actividades

que se puedan establecer o desarrollar en el estuario.

En el caso de no poder realizarse el monitoreo continuo por razones externas se

debe trabajar por épocas, es decir, época lluviosa y seca o después de un

fenómeno natural importante.

El muestreo de todos los parámetros descritos en el plan de monitoreo son

trascendentales para conocer el comportamiento del estuario sin embargo, al no

poder realizarse el monitoreo de todos los parámetros se recomienda priorizar el

monitoreo de coliformes fecales y oxígeno disuelto por su importancia en la salud

de los pobladores y en la vida acuática del ecosistema estuarino respectivamente.

Se sugiere que en caso de no poder acceder al sitio estipulado de muestreo

realizar un registro minucioso del lugar en donde se colectó la muestra.

98

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ANEXOS

107

ANEXO N ° 1

UBICACIÓN DE LA ZONA DE ESTUDIO

108

109

110

111

ANEXO N° 2

SERIES METEOROLÓGICAS

112

TABLA 1. SERIE DE DATOS DE PRECIPITACIÓN ESTACIÓN AEROPUERTO “GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)

*Actualmente el aeropuerto de Esmeraldas lleva el nombre de Coronel Carlos Concha

Torres, ubicado en Tachina. FUENTE: (DGAC, 2014)

REGISTRO HISTORICO DE LA CANTIDAD TOTAL MENSUAL DE PLUVIOSIDAD EN mmAEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S

LATITUD 0.0° 58' N LONGITUD 79°37' W ELEVACION 7m

AÑO ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC S.T Prom Mx.Ab Mn.Ab

1980 84.2 54.6 118.9 111.1 30.3 13.6 1.0 9.9 Trz 17.0 14.1 12.1 466.8 42.4 118.9 Trz1981 59.7 227.7 35.6 99.8 6.4 27.5 64.4 13 32.8 2.6 4.9 78.9 653.3 54.4 227.7 2.61982 99.9 120.7 146.5 78.1 63.2 15.1 30.3 7.3 1.8 15.9 127.2 99.2 805.2 67.1 146.5 1.81983 225.7 358.0 198.6 120.3 96.0 149.7 128.7 48.7 52.9 151.7 79.5 26.7 1636.5 136.4 358.0 26.71984 38.5 211.8 81.7 108.2 20.3 111.1 34.8 3.4 36.5 29.8 3.8 65.6 745.5 62.1 211.8 3.41985 52.1 181.0 47.2 13.6 56.0 18.8 2.2 6.4 14.6 2.5 41.8 63.6 499.8 41.7 181.0 2.21986 373.7 55.8 262.6 112.4 17.6 21.3 8.6 3.9 5.1 28.3 13.0 25.7 928.0 77.3 373.7 3.91987 173.8 445.2 151.3 158.9 63.5 15.8 46.1 20.0 26.8 3.8 19.9 70.7 1195.8 99.7 445.2 3.81988 218.4 105.8 11.7 198.1 97.4 23.1 18.7 13.0 13.3 4.7 43.0 31.6 778.8 64.9 218.4 4.71989 264.5 118.9 1.4 100.1 110.4 51.1 14.7 18.1 12.4 49.0 11.0 22.3 773.9 64.5 264.5 1.41990 88.5 117.4 72.8 36.4 35.0 42.5 6.0 3.3 9.1 23.4 0.9 63.8 499.1 41.6 117.4 0.91991 68.1 146.9 30.8 94.8 33.0 22.2 20.1 25.0 14.5 6.4 7.4 8.7 477.9 39.8 146.9 6.41992 58.2 168.5 138.9 103.6 107.0 92.4 8.3 10.9 17.5 11.0 3.4 17.8 737.5 61.5 168.5 3.41993 96.2 242.1 392.4 18.8 30.0 26.4 34.6 10.3 6.9 25.6 6.0 8.1 897.4 74.8 392.4 6.01994 250.4 45.6 78.7 118.2 161.7 39.1 16.6 5.0 38.6 15.0 0.7 41.5 811.1 67.6 250.4 0.71995 175.1 61.6 16.2 144.2 40.0 17.2 29.6 3.5 15.3 3.3 3.2 10.6 519.8 43.3 175.1 3.21996 158.0 78.0 83.3 73.0 15.2 7.1 17.5 3.9 11.7 7.9 1.9 27.2 484.7 40.4 158.0 1.91997 111.5 117.5 138.2 70.9 54.7 117.4 63.7 70.6 198.1 63.2 209.6 207.0 1422.4 118.5 209.6 54.71998 330.2 426.0 483.1 491.8 188.9 221.5 51.4 19.8 47.5 1.6 3.0 4.1 2268.9 189.1 491.8 1.61999 50.2 208.3 160.5 239.5 178.0 50.5 17.1 6.0 48.4 27.5 40.9 14.4 1041.3 86.8 239.5 6.02000 6.4 193.0 51.7 89.1 112.5 37.5 14.3 1.1 14.3 19.3 1.5 142.2 682.9 56.9 193.0 1.12001 169.7 32.8 95.8 156.2 73.8 20.4 25.1 3.1 24.8 0.6 5.3 49.5 657.1 54.8 169.7 0.62002 85.1 246.0 151.8 313.6 63.1 51.9 29.7 13.9 30.6 17.1 16.2 106.6 1125.6 93.8 313.6 13.92003 212.5 191.4 134.6 79.3 94.5 46.5 4.8 25.3 50.0 45.7 50.1 43.7 978.4 81.5 212.5 4.82004 71.5 106.2 65.6 52.1 195.4 12.1 17.4 3.7 24.8 14.8 8.5 8.3 580.4 48.4 195.4 3.72005 90.1 244.8 78.8 239.6 13.4 1.7 9.2 2.0 23.3 3.5 7.8 18.1 732.3 61.0 244.8 1.72006 75.3 217.3 87.4 49.6 25.0 19.5 15.8 11.7 23.1 1.9 87.7 21.0 635.3 52.9 217.3 1.92007 55.8 53.1 162.2 198.4 230.6 68.1 19.4 3.6 2.9 19.1 7.8 10.0 831.0 69.3 230.6 2.92008 176.3 48.7 146.2 87.7 49.0 54.5 45.2 7.4 11.6 44.0 9.9 11.0 691.5 57.6 176.3 7.42009 169.1 209.7 52.8 69.6 52.8 11.8 19.4 21.3 2.5 0.9 7.0 8.9 625.8 52.2 209.7 0.92010 154.1 220.7 246.7 201.7 173.0 29.3 30.7 11.4 8.3 1.9 25.2 176.7 1279.7 106.6 246.7 1.92011 92.8 122.5 24.5 49.1 14.7 11.7 35.4 9.6 60.3 3.9 2.3 12.1 438.9 36.6 122.5 2.32012 251.5 230.1 157.5 77.7 124.5 51.2 24.1 22.0 1.2 6.0 16.9 4.1 966.8 80.6 251.5 1.22013 171.1 151.5 15.1 120.8 95.5 7.3 9.6 17.3 11.4 25.1 1.4 10.8 636.9 53.1 171.1 1.4

Prom 139.9 169.4 121.2 125.8 80.1 44.3 26.9 13.4 27.1 20.4 26.0 44.8 838.4 70.0 230.9 5.5Máx 373.7 445.2 483.1 491.8 230.6 221.5 128.7 70.6 198.1 151.7 209.6 207.0 2268.9 189.1 491.8 54.7Mín 6.4 32.8 1.4 13.6 6.4 1.7 1.0 1.1 1.2 0.6 0.7 4.1 438.9 36.6 117.4 0.6D.S. 86.2 100.3 102.5 91.6 59.9 45.6 23.8 13.7 34.2 27.6 42.6 49.4 373.7 31.0 88.6 9.9

r 71.2 64.3 71.2 68.9 71.2 68.9 71.2 71.2 68.9 71.2 68.9 71.2 838.4 69.9 71.2 64.3p 2.0 2.6 1.7 1.8 1.1 0.6 0.4 0.2 0.4 0.3 0.4 0.6 12.1 1.0 2.6 0.2

Prom= Promedio; D.S.=Desviación Estándar ; r= Distribución uniforme de la precipitación;P= Coeficiente Pluviométrico.

113

TABLA 2. SERIE DE DATOS DE HUMEDAD RELATIVA ESTACIÓN AEROPUERTO “GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)



REGISTRO HISTORICO DE HUMEDAD RELATIVA MEDIA MENSUAL EN %AEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S



1980 78 81 81 82 79 79 73 75 72 74 73 74 921 77 82 721981 79 85 80 81 76 74 78 76 79 75 73 76 932 78 85 731982 81 81 80 80 81 77 76 72 71 74 78 82 933 78 82 711983 82 81 79 78 79 79 77 77 77 78 76 76 939 78 82 761984 77 79 79 77 80 80 79 76 78 77 75 70 927 77 80 701985 82 82 80 77 77 78 74 75 75 72 74 77 923 77 82 721986 84 80 80 82 81 79 75 75 73 73 74 74 930 78 84 731987 81 84 80 82 82 78 79 78 76 75 74 78 947 79 84 741988 82 84 80 82 84 81 80 80 78 75 76 76 958 80 84 751989 83 83 78 81 82 80 78 75 75 77 74 76 942 79 83 741990 78 82 82 82 77 79 75 73 72 72 72 75 919 77 82 721991 78 85 80 80 79 77 75 74 72 71 72 75 918 77 85 711992 79 82 84 82 82 83 79 77 76 76 74 74 948 79 84 741993 79 84 81 78 79 78 79 75 75 73 75 76 932 78 84 731994 82 83 80 80 85 81 79 75 75 74 72 77 943 79 85 721995 83 83 75 81 81 79 78 76 74 73 73 74 930 78 83 731996 77 81 80 80 81 78 77 75 76 73 72 75 925 77 81 721997 78 81 83 79 79 79 79 80 80 79 82 82 961 80 83 781998 86 84 85 83 85 82 82 81 81 77 79 78 983 82 86 771999 79 86 82 83 82 82 79 77 80 79 77 79 965 80 86 772000 74 80 82 81 87 84 81 78 80 79 77 83 966 81 87 742001 89 89 88 90 89 85 83 79 79 78 80 82 1011 84 90 782002 84 87 86 86 85 80 78 76 76 81 78 82 979 82 87 762003 85 87 84 85 86 86 83 84 82 81 79 83 1005 84 87 792004 82 85 87 82 82 83 77 74 76 74 74 73 949 79 87 732005 78 84 81 81 80 78 77 72 75 72 75 74 927 77 84 722006 78 83 82 79 82 79 77 78 76 74 85 75 948 79 85 742007 81 82 82 82 85 85 82 78 79 77 78 77 968 81 85 772008 85 82 82 80 81 81 83 78 77 78 75 77 959 80 85 752009 83 85 83 82 85 80 78 81 79 78 79 81 974 81 85 782010 82 87 86 85 85 85 84 81 81 79 81 86 1002 84 87 792011 85 83 81 80 78 79 81 78 79 79 77 80 960 80 85 772012 88 85 87 86 88 86 84 82 81 80 80 82 1009 84 88 802013 88 85 88 85 85 80 79 77 76 78 75 80 976 81 88 75

Prom 81 83 82 82 82 80 79 77 77 76 76 78 953 79 85 75Máx 89 89 88 90 89 86 84 84 82 81 85 86 1011 84 90 80Mín 74 79 75 77 76 74 73 72 71 71 72 70 918 77 80 70D.S. 3 2 3 3 3 3 3 3 3 3 3 4 27 2 2 3

Prom= Promedio; D.S. Desviación Estándar.

114

TABLA 3. SERIE DE DATOS DE NUBOSIDAD PERIODO AEROPUERTO

“GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* (1981-2013)



REGISTRO HISTORICO NUBOSIDAD MEDIA MENSUAL EN OCTASAEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S


AÑO ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGOS SEP OCT NOV DIC S.T Prom Mx.Ab Mn.Ab

1980 6 6 6 5 6 6 6 6 6 6 5 4 68 6 6 41981 6 6 6 6 6 6 6 6 6 6 6 6 72 6 6 61982 7 7 6 6 7 6 6 6 6 7 6 6 76 6 7 61983 6 6 6 6 6 6 5 6 7 7 6 6 73 6 7 51984 6 6 6 6 6 7 7 7 7 7 7 7 79 7 7 61985 7 7 7 6 7 7 7 7 7 6 5 7 80 7 7 51986 8 7 6 7 7 7 7 7 6 7 6 6 81 7 8 61987 7 7 6 7 7 6 7 6 6 7 6 6 78 7 7 61988 7 7 6 7 7 7 7 7 7 7 6 6 81 7 7 61989 7 6 6 7 7 7 7 7 7 7 7 7 82 7 7 61990 6 7 6 7 7 7 7 6 6 7 6 6 78 7 7 61991 6 7 7 6 7 6 7 6 6 6 6 6 76 6 7 61992 7 7 6 6 7 7 6 7 6 7 6 6 78 7 7 61993 7 7 6 7 7 7 6 6 7 6 6 7 79 7 7 61994 6 6 7 7 7 7 6 6 6 6 6 6 76 6 7 61995 7 7 6 7 7 7 7 7 7 7 7 7 83 7 7 61996 6 6 6 6 7 7 6 6 7 6 6 6 75 6 7 61997 7 6 7 5 6 6 6 6 6 7 7 7 76 6 7 51998 7 7 7 6 7 7 6 7 7 6 6 5 78 7 7 51999 6 7 6 6 6 7 6 6 7 7 6 6 76 6 7 62000 6 6 6 6 6 6 6 6 6 6 6 7 73 6 7 62001 6 6 6 6 6 6 6 5 6 6 6 6 71 6 6 52002 6 6 6 6 6 7 6 6 6 6 6 6 73 6 7 62003 6 7 6 6 6 6 6 7 7 7 6 6 76 6 7 62004 6 6 7 6 7 6 6 5 7 6 6 5 73 6 7 52005 6 6 6 6 7 6 6 6 6 6 6 6 73 6 7 62006 6 7 6 6 6 6 6 6 6 6 6 5 72 6 7 52007 6 6 6 6 7 6 6 6 6 6 6 6 73 6 7 62008 7 6 6 5 6 6 6 6 6 7 6 6 73 6 7 52009 6 6 6 6 6 6 5 6 5 6 6 6 70 6 6 52010 6 7 7 6 7 7 6 6 7 6 7 7 79 7 7 62011 6 6 6 5 6 6 6 6 6 6 5 6 70 6 6 52012 6 6 6 6 6 6 7 6 5 6 6 6 72 6 7 52013 7 6 6 6 7 6 6 7 6 6 6 6 75 6 7 6

Prom 6 6 6 6 7 6 6 6 6 6 6 6 76 6 7 6

Prom= Promedio.

115

TABLA 4. SERIE DE DATOS DE VELOCIDAD DEL VIENTO AEROPUERTO

“GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* (PERIODO (1981-2013)



REGISTRO HISTORICO DE LA VELOCIDAD MEDIA DEL VIENTO EN KT.AEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S

LATITUD 0.0° 58' N LONGITUD 79°37' W ELEVACION 7 m

AÑO ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SEP OCT NOV DIC S.T Prom Máx Mín

1980 6 5 5 5 6 6 7 7 8 8 8 7 78 7 8 51981 6 5 5 6 6 6 6 7 6 8 8 7 76 6 8 51982 6 5 5 5 5 6 6 6 8 6 6 5 69 6 8 51983 4 4 5 5 6 5 6 5 6 6 6 6 64 5 6 41984 6 5 5 6 6 6 6 7 6 7 7 6 73 6 7 51985 6 6 6 7 7 7 7 8 8 9 8 7 86 7 9 61986 7 8 6 5 6 5 6 6 9 7 8 9 82 7 9 51987 5 5 5 6 6 4 7 4 6 7 7 4 66 6 7 41988 6 5 6 5 6 7 8 7 6 5 6 7 74 6 8 51989 5 6 6 7 8 6 8 6 6 5 5 5 73 6 8 51990 8 6 7 4 5 5 5 5 4 4 4 6 63 5 8 41991 7 4 7 7 5 4 5 5 5 4 5 8 66 6 8 41992 7 4 3 3 6 4 4 5 4 5 5 4 54 5 7 31993 7 4 5 7 6 4 4 5 7 5 7 7 68 6 7 41994 6 6 5 5 6 4 5 9 9 9 6 7 77 6 9 41995 6 5 5 6 5 6 5 5 5 5 6 8 67 6 8 51996 6 4 5 5 6 6 6 6 6 6 7 7 70 6 7 41997 6 5 4 5 5 5 4 4 5 5 5 5 58 5 6 41998 7 7 7 6 7 7 6 7 7 6 6 5 78 7 7 51999 6 3 3 5 5 4 5 4 3 5 4 2 49 4 6 22000 4 3 3 4 7 5 6 6 10 7 11 6 72 6 11 32001 4 4 6 4 4 6 6 12 12 13 12 10 93 8 13 42002 10 4 4 8 5 5 6 6 7 4 4 3 66 6 10 32003 4 4 7 7 3 4 5 5 5 5 5 3 57 5 7 32004 3 4 7 3 4 4 4 4 4 4 4 8 53 4 8 32005 3 4 3 6 3 6 7 7 7 4 7 8 65 5 8 32006 4 3 9 6 8 4 5 4 5 10 3 3 64 5 10 32007 8 5 4 6 5 5 4 6 7 7 7 6 70 6 8 42008 5 8 7 7 4 4 5 9 10 7 7 10 83 7 10 42009 8 4 7 7 8 7 4 6 6 6 5 10 78 7 10 42010 9 7 4 7 7 4 9 6 5 5 5 4 72 6 9 42011 4 7 4 6 6 6 6 7 7 7 7 6 73 6 7 42012 5 5 4 5 4 5 6 7 7 7 7 13 75 6 13 42013 5 5 5 5 5 6 7 7 6 6 6 7 70 6 7 5

Prom 6 5 5 6 6 5 6 6 7 6 6 6 70 6 8 4

1 KT=0,514791 m/s; 1,85325 km/hProm= Promedio

116

TABLA 5. SERIE DE DATOS DE LA FRECUENCIA DEL VIENTO EN RUMBOS AEROPUERTO “GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)



RE

GIS

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NW

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S.T

1981

17

10

21

16

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614

804

339

278

639

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184

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4380

1982

55

22

72

21

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741

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4380

1983

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00

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350

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4380

1984

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83

21

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601

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231

133

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1985

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607

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349

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776

462

320

390

286

4368

1986

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12

21

10

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427

273

405

565

641

318

359

789

4380

1987

131

45

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37

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587

377

282

242

614

577

99

366

958

4380

1988

59

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10

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22

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600

278

215

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48

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1989

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4380

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20

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235

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203

183

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1991

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15

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4380

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1993

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00

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1995

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784

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1996

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1997

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602

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4380

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43

191

1391

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4392

2001

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4320

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4775

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217

26

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117

TABLA 6. SERIE DE DATOS DE LA TEMPERATURA MEDIA AEROPUERTO

“GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)



REGISTRO HISTORICO DE TEMPERATURA MEDIA MENSUAL EN °CAEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S



1980 26.8 26.6 26.6 27.2 27.2 27.0 26.7 26.4 26.6 26.7 26.4 26.8 321.0 26.8 27.2 26.41981 26.0 26.2 27.3 27.0 26.9 26.9 26.5 26.1 26.1 26.3 26.6 26.6 318.5 26.5 27.3 26.01982 26.4 26.8 26.8 26.8 27.1 27.5 27.2 27.1 27.4 27.5 27.7 27.4 325.7 27.1 27.7 26.41983 27.9 27.9 28.4 28.6 28.6 28.2 28.0 27.5 26.9 26.8 26.7 26.7 332.2 27.7 28.6 26.71984 26.4 26.7 27.0 27.4 27.2 26.6 26.0 26.2 25.7 25.9 26.1 26.2 317.4 26.5 27.4 25.71985 25.5 26.1 26.5 26.9 26.8 26.8 26.0 26.1 26.1 26.6 26.3 26.0 315.7 26.3 26.9 25.51986 25.6 26.4 26.9 26.5 26.6 26.3 26.7 26.7 26.6 26.9 27.3 27.3 319.8 26.7 27.3 25.61987 27.0 27.0 28.0 27.8 27.6 27.8 27.2 27.1 27.2 27.4 27.2 27.2 328.5 27.4 28.0 27.01988 26.7 26.7 26.8 26.9 26.9 26.0 25.8 25.8 25.6 26.4 26.2 26.4 316.2 26.4 26.9 25.61989 25.9 26.0 26.6 26.9 26.6 26.4 26.1 26.4 26.5 26.6 26.6 26.4 317.0 26.4 26.9 25.91990 26.8 26.7 26.7 24.1 27.6 27.3 26.9 26.6 26.6 26.8 26.6 26.6 319.3 26.6 27.6 24.11991 26.8 26.4 27.6 27.5 27.5 27.4 27.3 27.2 27.0 27.3 27.5 27.6 327.1 27.3 27.6 26.41992 27.2 26.9 27.4 28.0 27.6 27.3 26.8 26.7 26.6 26.6 26.8 27.1 325.0 27.1 28.0 26.61993 26.7 26.4 27.3 28.1 27.5 27.8 27.2 26.8 26.5 27.1 27.0 26.9 325.3 27.1 28.1 26.41994 26.3 26.6 26.4 26.7 26.6 26.4 25.9 26.6 26.4 27.2 27.3 27.4 319.8 26.7 27.4 25.91995 26.9 26.8 27.3 27.1 27.1 27.1 26.5 26.7 26.7 27.1 26.4 26.8 322.5 26.9 27.3 26.41996 26.6 26.8 27.2 27.0 26.9 26.2 25.8 26.1 26.1 26.3 26.4 26.4 317.8 26.5 27.2 25.81997 26.2 26.8 27.4 27.5 28.0 27.8 28.2 28.0 27.8 28.3 27.4 28.1 331.5 27.6 28.3 26.21998 28.1 28.6 28.6 28.9 28.5 28.1 27.5 26.9 26.5 26.7 26.6 26.8 331.8 27.7 28.9 26.51999 26.9 26.2 27.2 26.9 27.0 26.2 26.0 25.8 25.8 25.8 25.9 26.0 315.7 26.3 27.2 25.82000 26.6 26.4 26.6 27.4 26.2 26.4 26.3 26.6 26.1 26.6 26.3 26.3 317.8 26.5 27.4 26.12001 26.0 26.5 27.1 26.9 26.3 26.2 26.4 26.9 26.3 26.7 26.1 26.6 318.0 26.5 27.1 26.02002 26.8 27.0 27.3 27.4 27.5 27.0 26.7 26.7 26.5 27.5 27.4 27.0 324.8 27.1 27.5 26.52003 26.6 26.4 27.3 27.2 27.1 26.1 26.3 26.5 26.3 26.5 27.1 26.6 320.0 26.7 27.3 26.12004 26.5 26.7 26.7 26.9 26.6 26.3 26.2 26.3 26.4 27.0 27.3 27.0 319.9 26.7 27.3 26.22005 26.9 25.8 27.0 27.6 27.2 26.4 26.6 27.2 26.4 26.8 26.9 26.6 321.4 26.8 27.6 25.82006 26.6 26.1 26.6 26.9 26.4 26.6 26.8 27.0 27.1 27.5 26.9 26.7 321.2 26.8 27.5 26.12007 27.0 26.9 26.8 26.9 26.3 26.1 25.9 25.7 25.8 26.2 26.4 26.2 316.2 26.4 27.0 25.72008 25.5 26.4 26.7 27.3 26.6 26.4 26.4 26.6 26.6 25.9 26.2 26.4 317.0 26.4 27.3 25.52009 25.9 26.1 26.2 26.9 26.7 26.8 27.2 27.1 27.0 27.2 27.2 27.2 321.5 26.8 27.2 25.92010 27.2 27.2 27.8 27.8 27.3 26.5 26.0 26.2 26.1 26.1 25.5 25.1 318.8 26.6 27.8 25.12011 25.8 26.5 27.0 27.1 27.2 27.3 26.7 26.8 26.3 25.7 25.8 26.0 318.2 26.5 27.3 25.72012 25.6 26.4 26.7 27.1 27.2 27.0 26.3 26.1 26.4 26.3 26.3 26.2 317.6 26.5 27.2 25.62013 26.0 26.4 26.6 27.3 26.1 26.5 26.0 26.1 26.4 26.3 26.8 26.5 317.0 26.4 27.3 26.0

Prom 26.5 26.6 27.1 27.2 27.1 26.8 26.6 26.6 26.5 26.7 26.7 26.7 321.1 26.8 27.5 26.0Máx 28.1 28.6 28.6 28.9 28.6 28.2 28.2 28.0 27.8 28.3 27.7 28.1 332.2 27.7 28.9 27.0Mín 25.5 25.8 26.2 24.1 26.1 26.0 25.8 25.7 25.6 25.7 25.5 25.1 315.7 26.3 26.9 24.1D.S. 0.6 0.5 0.5 0.7 0.6 0.6 0.6 0.5 0.5 0.6 0.5 0.6 4.7 0.4 0.5 0.5

Prom= Promedio; D.S.= Desviación Estándar.

118

TABLA 7. SERIE DE DATOS DE LA TEMPERATURA MÁXIMA AEROPUERTO

“GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)



REGISTRO HISTORICO DE TEMPERATURA MAXIMA ABSOLUTA EN °CAEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S



1980 33.0 31.5 31.3 32.4 32.0 31.0 32.0 31.6 32.0 32.0 33.0 31.5 383.3 31.9 33.0 31.01981 32.0 30.0 32.0 30.2 32.0 31.5 31.3 31.0 30.3 31.4 31.4 31.7 374.8 31.2 32.0 30.01982 31.0 31.3 30.3 32.0 32.2 32.8 31.8 31.5 32.6 32.2 31.2 31.7 380.6 31.7 32.8 30.31983 33.4 33.0 33.5 32.5 33.6 32.5 32.4 31.5 30.3 31.0 30.2 31.5 385.4 32.1 33.6 30.21984 30.6 31.6 31.0 32.6 31.7 33.3 30.6 31.4 30.5 30.7 31.6 31.5 377.1 31.4 33.3 30.51985 31.3 30.8 30.4 30.1 31.5 30.7 30.4 30.8 31.6 31.7 31.4 29.9 370.6 30.9 31.7 29.91986 29.8 31.4 30.6 30.6 31.3 30.8 31.3 31.4 31.5 31.8 32.6 31.2 374.3 31.2 32.6 29.81987 32.3 31.7 31.9 31.7 32.1 31.8 32.0 31.4 33.4 32.1 32.1 32.0 384.5 32.0 33.4 31.41988 30.9 31.0 31.3 32.1 31.0 31.2 30.5 30.5 31.0 31.5 30.8 32.0 373.8 31.2 32.1 30.51989 31.4 30.6 30.5 31.0 30.6 31.5 31.5 31.9 31.7 32.0 31.7 31.5 375.9 31.3 32.0 30.51990 31.0 30.2 31.0 31.5 32.8 31.0 31.6 31.7 32.0 33.0 32.0 31.0 378.8 31.6 33.0 30.21991 31.2 31.7 32.2 32.0 32.4 31.8 31.3 32.0 32.1 31.5 32.8 32.0 383.0 31.9 32.8 31.21992 32.3 31.3 31.9 32.2 31.9 31.3 32.0 31.2 32.4 31.6 32.7 33.1 383.9 32.0 33.1 31.21993 32.0 31.7 31.6 31.7 31.2 33.0 31.0 33.5 32.0 32.6 32.1 32.3 384.7 32.1 33.5 31.01994 31.5 31.2 30.9 30.5 30.7 31.6 31.2 31.6 31.2 32.2 32.2 31.9 376.7 31.4 32.2 30.51995 31.7 30.7 31.5 31.0 31.6 31.4 31.4 31.7 32.1 32.4 32.0 31.2 378.7 31.6 32.4 30.71996 34.0 31.4 31.6 30.8 31.8 31.6 31.1 31.8 30.6 31.6 31.8 31.2 379.3 31.6 34.0 30.61997 31.2 32.2 31.8 32.1 32.2 31.6 32.2 32.4 32.2 32.8 31.5 32.2 384.4 32.0 32.8 31.21998 32.3 34.2 34.0 33.7 33.2 32.6 31.9 37.8 30.9 32.0 31.8 31.4 395.8 33.0 37.8 30.91999 32.9 31.0 31.6 30.4 31.2 30.3 30.4 31.2 30.9 30.8 31.9 30.6 373.2 31.1 32.9 30.32000 32.3 32.0 31.8 31.6 31.4 31.0 30.6 32.4 31.7 31.1 31.7 31.5 379.1 31.6 32.4 30.62001 30.7 30.9 31.0 31.1 30.6 30.3 31.8 32.2 31.9 32.1 30.9 31.5 375.0 31.3 32.2 30.32002 31.3 31.6 32.4 31.2 31.8 31.6 31.4 31.9 31.6 33.9 33.6 31.4 383.7 32.0 33.9 31.22003 32.0 32.5 32.2 32.2 32.5 31.7 31.6 31.8 31.6 31.4 32.6 32.2 384.3 32.0 32.6 31.42004 31.8 31.4 31.8 32.4 32.0 31.5 31.8 34.5 32.5 33.8 32.5 32.5 388.5 32.4 34.5 31.42005 31.9 31.6 34.5 32.3 34.0 31.8 32.5 32.8 34.0 32.2 36.5 32.4 396.5 33.0 36.5 31.62006 32.5 31.5 32.0 31.5 31.5 32.0 32.5 32.8 36.0 35.2 32.5 32.0 392.0 32.7 36.0 31.52007 33.5 32.5 32.0 33.5 32.4 33.0 31.5 31.9 32.0 32.7 32.4 32.5 389.9 32.5 33.5 31.52008 30.2 32.5 34.5 35.0 32.0 34.4 32.0 32.5 33.0 32.0 31.8 32.6 392.5 32.7 35.0 30.22009 31.6 30.6 32.9 32.5 33.7 31.5 33.9 32.5 32.7 33.0 33.5 32.2 390.6 32.6 33.9 30.62010 32.6 32.5 33.7 33.6 32.5 31.2 31.6 33.0 31.5 32.8 31.4 30.8 387.2 32.3 33.7 30.82011 30.2 31.5 32.8 32.2 32.4 32.0 31.6 33.0 31.0 30.2 31.0 31.0 378.9 31.6 33.0 30.22012 30.7 30.6 31.2 31.3 31.1 31.9 31.5 31.1 31.4 32.1 31.9 31.7 376.5 31.4 32.1 30.62013 30.1 31.9 31.2 31.6 30.5 31.6 30.7 31.7 31.4 31.6 32.2 31.5 376.0 31.3 32.2 30.1

Prom 31.7 31.5 31.9 31.9 31.9 31.7 31.6 32.1 31.9 32.1 32.1 31.7 382.0 31.8 33.3 30.7Máx 34.0 34.2 34.5 35.0 34.0 34.4 33.9 37.8 36.0 35.2 36.5 33.1 396.5 33.0 37.8 31.6Mín 29.8 30.0 30.3 30.1 30.5 30.3 30.4 30.5 30.3 30.2 30.2 29.9 370.6 30.9 31.7 29.8D.S. 1.0 0.8 1.1 1.0 0.9 0.8 0.7 1.3 1.1 1.0 1.1 0.6 6.6 0.6 1.3 0.5

Prom= Promedio; D.S.= Desviación Estándar.

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TABLA 8. SERIE DE DATOS DE LA TEMPERATURA MÍNIMA AEROPUERTO “GRAL. RIVADENEIRA “– TACHINA* PERIODO (1981-2013)


Torres, ubicado en Tachina. FUENTE: (DGAC, 2014

REGISTRO HISTORICO DE TEMPERATURA MINIMA ABSOLUTA EN °CAEROPUERTO " GRAL. RIVADENEIRA " - TACHINA

E S M E R A L D A S



1980 21.2 21.0 20.6 21.0 21.9 21.0 20.5 19.5 19.0 20.5 17.5 20.0 243.7 20.3 21.9 17.51981 21.4 21.8 21.2 22.4 19.7 19.3 19.6 20.0 20.4 19.3 20.0 19.5 244.6 20.4 22.4 19.31982 21.0 20.0 21.0 17.8 20.0 19.9 20.2 20.5 20.2 22.5 22.1 21.0 246.2 20.5 22.5 17.81983 21.7 21.5 22.0 21.6 22.1 21.0 21.0 20.6 22.3 20.5 21.4 19.0 254.7 21.2 22.3 19.01984 19.4 20.4 19.4 20.0 20.0 21.6 20.3 20.3 20.0 21.4 19.3 21.5 243.6 20.3 21.6 19.31985 21.2 20.9 20.8 21.4 20.2 21.5 20.3 21.5 20.6 20.0 20.1 21.5 250.0 20.8 21.5 20.01986 21.6 21.1 21.2 21.3 21.0 20.5 20.2 20.6 21.0 20.8 20.7 21.0 251.0 20.9 21.6 20.21987 22.2 22.1 21.8 22.5 21.9 21.6 21.6 20.2 19.8 21.0 20.7 21.5 256.9 21.4 22.5 19.81988 21.6 20.9 20.2 21.1 22.1 21.2 20.0 20.0 20.3 19.0 21.0 19.5 246.9 20.6 22.1 19.01989 20.5 20.9 18.6 20.9 21.0 21.2 19.9 19.5 19.3 21.5 20.4 20.2 243.9 20.3 21.5 18.61990 20.2 21.8 21.0 21.5 21.2 21.9 20.2 19.8 20.8 20.8 21.6 20.2 251.0 20.9 21.9 19.81991 20.2 22.0 21.8 22.0 21.6 22.0 21.4 21.0 20.3 21.3 20.6 21.6 255.8 21.3 22.0 20.21992 21.6 21.4 22.3 22.8 21.7 21.3 20.2 20.4 20.2 20.4 19.2 19.4 250.9 20.9 22.8 19.21993 20.1 21.8 20.9 22.6 21.2 21.9 21.2 20.3 19.9 21.1 20.0 20.6 251.6 21.0 22.6 19.91994 21.2 21.7 20.9 21.2 21.8 20.7 20.0 19.7 19.3 19.4 21.0 21.8 248.7 20.7 21.8 19.31995 21.8 21.1 19.8 20.4 20.6 21.6 20.5 21.0 20.4 21.8 20.0 20.0 249.0 20.8 21.8 19.81996 20.7 21.0 21.6 20.8 21.4 20.0 18.8 18.8 20.0 20.7 19.4 21.2 244.4 20.4 21.6 18.81997 20.5 20.7 22.0 21.5 21.4 21.2 21.9 21.9 21.8 22.2 21.8 22.0 258.9 21.6 22.2 20.51998 22.6 23.0 23.9 23.2 22.2 21.6 21.4 21.2 21.6 20.2 19.6 19.4 259.9 21.7 23.9 19.41999 21.2 21.6 21.6 22.2 22.7 21.0 20.1 20.5 21.1 20.1 19.4 20.4 251.9 21.0 22.7 19.42000 19.2 21.2 19.5 22.0 19.5 21.0 18.8 19.4 21.1 20.4 19.7 19.9 241.7 20.1 22.0 18.82001 21.4 21.4 20.6 21.9 21.0 19.8 20.5 19.9 21.1 20.2 21.0 20.7 249.5 20.8 21.9 19.82002 20.8 21.0 22.9 21.4 22.8 21.0 20.4 20.3 20.5 22.2 21.7 21.9 256.9 21.4 22.9 20.32003 21.9 21.2 21.4 21.0 22.6 21.5 21.2 21.4 21.2 21.0 21.6 19.3 255.3 21.3 22.6 19.32004 20.6 21.0 21.4 21.8 19.0 18.0 18.0 18.0 19.5 21.0 20.5 20.5 239.3 19.9 21.8 18.02005 21.4 21.2 22.0 22.4 22.0 20.0 18.8 20.5 20.9 21.2 19.0 17.8 247.2 20.6 22.4 17.82006 18.2 22.0 21.6 21.0 20.2 20.8 20.4 21.0 18.4 20.6 21.6 18.3 244.1 20.3 22.0 18.22007 21.6 20.0 21.0 22.6 20.5 19.4 21.6 19.8 20.9 20.6 21.0 21.6 250.6 20.9 22.6 19.42008 21.2 21.4 21.4 21.0 21.0 21.5 21.4 21.8 21.5 21.0 20.1 20.5 253.8 21.2 21.8 20.12009 21.4 21.0 21.2 20.4 21.2 21.0 22.2 22.0 20.4 20.0 19.4 21.5 251.7 21.0 22.2 19.42010 22.0 22.6 22.4 22.6 22.6 22.6 21.5 21.6 21.9 20.7 18.8 19.9 259.2 21.6 22.6 18.82011 21.3 21.6 21.2 21.9 21.2 21.4 21.6 21.5 21.5 20.4 19.5 20.6 253.7 21.1 21.9 19.52012 21.8 22.0 22.6 22.2 22.2 22.0 21.7 21.2 20.9 20.1 21.6 21.1 259.4 21.6 22.6 20.12013 22.5 21.6 22.3 22.6 22.1 21.0 21.6 21.3 21.4 21.6 21.5 21.7 261.2 21.8 22.6 21.0

Prom 21.1 21.4 21.3 21.6 21.3 21.0 20.6 20.5 20.6 20.8 20.4 20.5 250.8 20.9 22.2 19.3Máx 22.6 23.0 23.9 23.2 22.8 22.6 22.2 22.0 22.3 22.5 22.1 22.0 261.2 21.8 23.9 21.0Mín 18.2 20.0 18.6 17.8 19.0 18.0 18.0 18.0 18.4 19.0 17.5 17.8 239.3 19.9 21.5 17.5D.S. 0.9 0.6 1.0 1.0 1.0 0.9 1.0 0.9 0.9 0.8 1.0 1.0 5.7 0.5 0.5 0.8

Prom= Promedio; D.S. Desviación Estándar.

120

ANEXO N° 3

USO DEL SUELO

121

122

ANEXO N° 4

FOTOGRAFÍAS

123

FOTOGRAFÍA 1. PRESENCIA DE RESIDUOS SÓLIDOS EN EL ESTUARIO

DEL RÍO ATACAMES.

FOTOGRAFÍA 2: ESTRUCTURA DE UN PUENTE ANTERIOR QUE COLAPSO

Y QUEDÓ ATRAPADO EN EL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES VISUALIZADO

EN CONDICIONES DE BAJAMAR.

124

FOTOGRAFÍA 4. DESCARGAS DIRECTAS DE AGUAS RESIDUALES

MEDIANTE TUBERÍADOMÉSTICAS AL ESTUARIO DEL RÍO ATACAMES EN

CONDICIONES DE BAJAMAR. (PRIMER MUESTREO)

FOTOGRAFÍA 5. REALIZACIÓN DE LA BATIMETRÍA

125

FOTOGRAFÍA 6. CONECCIONES DE LAS RESIDENCIAS AL

ALCANTARILLADO. (SEGUNDO MUESTREO)

126

ANEXO N° 5

TABLAS DE MAREAS

127

TABLA 1. PREDICCIÓN DIARIA DE MAREAS EN EL ECUADOR-ESMERALDAS 2015.( PRIMER MUESTEO)

FUENTE: INOCAR, 2015

128

TABLA 2. PREDICCIÓN DIARIA DE MAREAS EN EL ECUADOR-ESMERALDAS 2015.( SEGUNDO MUESTEO)

FUENTE: INOCAR, 2015

129

ANEXO N° 6

MÉTODOS DE LOS ANÁLISIS EN LABORATORIO.

130

Análisis de Laboratorio

Para los ensayos de laboratorio los métodos que se utilizaron se basaron en el

Standard Methods For the Examination of Water and Wasterwater y los

procedimientos establecidos en el Manual HACH e instructivos proporcionados

por el CICAM.

a) Determinación de DBO 5

El procedimiento utilizado para la determinación de la es el método

específico PEE/CICAM/06 según el Centro de Investigaciones y Control

Ambiental, el método proporciona la cantidad de oxígeno necesario para oxidar la

materia orgánica biodegradable que se encuentre en la muestra de agua que

resulta de la oxidación aerobia bioquímica. Para la determinación de la

primero se realiza un inóculo con una carga orgánica referencial conocida para

poder cultivar los microorganismos, las diluciones que se realicen deben permitir

tener un valor de 1mg/l de oxígeno residual y al menos un OD inicial consumido

de 4mg/l, las diluciones se establecen por medio de la relación teórica de la

y DQO se establece que el valor teórico de la es la mitad de la DQO pero

esta relación no es fija, para aguas residuales se evalúa una relación menor a 0,2

para descargas inorgánica, para una descarga biodegradable se estima una

relación mayor a 0,6, para poder establecer el criterio del análisis se debe tomar

en cuenta el origen de la muestra.

Dónde:

OD = Diferencia de oxígeno disuelto final y el inicial mg/l

f = Factor dilución (adimensional)

131

Dónde:

= OD de la muestra antes de la incubación, mg/l

= OD de la muestra después de la incubación, mg/l

= OD antes de la incubación del blanco, mg/l

= OD antes de la incubación del blanco, mg/l

= Volumen de aforo donde se realiza la dilución (volumen de la probeta), ml

= Volumen de dilución, ml

b) Determinación de Nitritos

Para la determinación de este parámetro se utilizó el procedimiento interno del

Centro de Investigación y Control Ambiental (CICAM). El cual está basado en el

Método Colorimétrico 4500-NO2- B del Standard Methods For the Examination of

Water and Wasterwater. Este método consiste en la formación del compuesto

diazonio que resulta de la diazotización de la sulfanilamida con nitritos en el agua

bajo condiciones ácidas y este por copulación con diclorhidrato N-(1-Naftil)

etilendiamina forma un color púrpura rojizo que es medido

espectrofotométricamente a 543 nm. (NMX, 2011)

El contenido de Nitritos es directamente proporcional a la intensidad de color.

(MACAS, 2011)

c) Determinación de Nitratos

Para la determinación de este parámetro se utilizó el procedimiento interno del

Centro de Investigación y Control Ambiental (CICAM). El cual está basado en

Método Espectrofotométrico Ultravioleta Selectivo 4500-NO3- B del Standard

Methods For the Examination of Water and Wasterwater. La curva de calibración

de NO3- verifica la ley de Beer hasta 11 mg N /L (STANDARD METHODS, 2012).

132

La muestra que se va a analizar se la coloca en las celdas, de igual forma se

tomará un blanco en este caso será agua destilada o desionizada. Primero se

ajustará la absorbancia del blanco a cero del cual se tomarán “dos lecturas de la

muestra frente al blanco” a diferentes longitudes de onda 220 nm que

corresponde al valor de los nitratos incluido las interferencias y 275 nm que

corresponde al valor de las interferencias, se debe tener una curva de

absorbancia vs la concentración de nitratos corregida en la cual se ingresará los

datos Abs corregida = λ220 – 2Abs λ 275 los datos se los obtiene como (N-NO3

Además de los procesos ya descritos se debe acidificar y filtrar la muestra y con

los datos obtenidos se procede a ingresarlos en una hoja de cálculo, para lo cual

se utilizó las hojas de cálculo proporcionadas por el CICAM.

d) Determinación del Nitrógeno Amoniacal

Este parámetro se determinó con el Método Nessler (Método Hach 8038), cuyo

principio es la utilización de un estabilizante mineral el cual disminuye la dureza

en las muestras, seguido de un agente dispersante alcohol polivinílico que

contribuye a la formación de la coloración en la reacción del reactivo Nessler con

los iones de amonio. Como resultado de estas reacciones se forma un color

amarillo proporcional a la concentración de amoniaco. Los resultados del ensayo

se miden a 425 nm. (HACH COMPANY, 2007)

La concentración se puede expresar como N-NH3- y N-NH4

+.

e) Determinación de Hierro

El Hierro total se determinó con el Método FerroVer (Método HACH 8008), el

principio operativo de este método es la reacción del reactivo FerroVer con el

hierro disuelto y la mayoría de las formas insolubles del hierro presentes en la

133

muestra para producir hierro ferroso soluble. El hierro ferroso reacciona con la

fenantrolina 1,10 de este reactivo formando un color naranja proporcional a la

concentración de hierro. Los resultados del ensayo se miden a 510 nm. (HACH

COMPANY, 2007).

f) Determinación de Fósforo Reactivo (Ortofosfato)

Para la determinación de fósforo reactivo se utilizó en Método de ácido ascórbico

(Método Hach 8048), cuyo principio operativo se basa en la reacción del

ortofosfato con molibdato en un medio ácido, formando un complejo de

fosfomolibdato. El ácido ascórbico reduce entonces el complejo, dando un intenso

color azul de molibdeno. Los resultados del ensayo se miden a 880 nm. (HACH

COMPANY, 2007)

g) Determinación de Sílice

La determinación de contenido de sílice con el Método de silicomolíbdico (Método

Hach 8185), donde la sílice y el fosfato de la muestra reaccionan con los iones de

molibdato en condiciones ácidas para formar complejos de ácido silicomolíbdico

amarillo y complejos de ácido fosfomolíbdico. Al adicionar ácido cítrico se

destruyen los complejos de fosfato. El contenido de sílice se determina midiendo

el color amarillo remanente Los resultados del ensayo se miden a 452 nm. (HACH

COMPANY, 2007)

h) Determinación de Sulfatos

Este parámetro se determinó con el Método SulfaVer 4 (Método Hach 8051), el

principio de este método se basa en que los iones de sulfato en la muestra

134

reaccionen con bario del SulfaVer 4 y forman una turbidez de sulfato de bario

insoluble (Hach Company, 2000).

La cantidad de turbidez formada es proporcional a la concentración de Sulfato.

Los resultados del ensayo se miden a 450 nm. (Hach Company, 2007)

i) Determinación de Clorofila a

Para determinar la cantidad de clorofila a que existe en un cuerpo de agua se

debe tomar una muestra de alrededor 500 ml con el sistema de filtración al vació

y el filtro de fibra de vidrio AP 40 se filtra un volumen de muestra que va entre 50

– 150 ml en campo, hasta que el filtro se sature. Una vez que se tenga el filtro se

procede a conservarlo en papel aluminio y un frasco alrededor de 4°C si no se

puede realizar el análisis inmediatamente. Para la realización del método se

coloca el filtro en 30 ml de etanol al 95% estos vasos de precipitación se llevan a

baño maría hasta alcanzar una temperatura entre 75 -80°C, estos vasos se dejan

en oscuridad por 24 horas al término de un día se procede a medir la absorbancia

en el espectrofotómetro a una longitud de 665nm y 750nm, a la muestra

preservada le afora hasta completar los 30 ml con etanol al 95% en caso de que

haya existido evaporación. Con las celdas del espectrofotómetro el blanco es el

etanol y registra las absorbancias de la muestra una vez realizado esto procede a

acidificar la muestra con 4 gotas de HCl 1N esperar la reacción por el lapso de 5

minutos y repetir las lecturas a 665nm y 750nm. El proceso de acidificación

permite la degradación de la molécula de clorofila que contiene la muestra y estos

pigmentos presentan su máxima absorbancia a las longitudes de onda que se

leyó la clorofila. Este proceso permite conocer el aporte de clorofila “a” sin

productos degradados. (AUBRIOT L., BONILLA S, 2013)

135

)

Donde:

A665 y A750 las absorbancias del extracto (sin acidificar)

Aa665 y Aa750 las absorbancias luego de la acidificación

v: volumen del extracto (ml),

V: volumen de la muestra filtrada (l)

L: largo de la cubeta (cm).

El factor 29,6 incluye el coeficiente de absorción específico de la clorofila a pura

en etanol (en l/µg cm).

j) Determinación de Sólidos

· Sólidos Totales

Para la determinación de los sólidos totales se utilizó el método establecido en el

Standard Methods 2540 B. Después de la evaporación de un determinado

volumen de muestra en un recipiente y su posterior secado en la estufa a una

temperatura definida el residuo que se obtiene se le denomina sólidos totales,

dentro de los sólidos totales se encuentras los sólidos totales suspendidos y los

sólidos disueltos totales, las características que se deben considerar son área y

espesor del filtro, la naturaleza de la muestra y la cantidad de residuo que se

tenga en el recipiente son factores que intervienen en la separación de los sólidos

suspendidos y disueltos.

Para la realización del ensayo de sólidos totales se llevará a cabo en un crisol

previamente secado y a peso constante a un horno a 103 -105°C. Para realizar el

análisis el volumen de muestra que se va a elegir tiene que representar entre 2,5

y 200 mg de residuo sólido, esta placa será llevada al horno a la temperatura

136

señalada para sólidos totales luego de esto deje enfriar en un desecador.

(STANDARD METHODS, 2012).

Dónde:

A = peso del residuo seco + la placa mg,

B = peso de la placa mg.

Dónde:

A = peso del filtro + residuo seco, mg

B = peso del filtro, mg

k) Determinación de Oxígeno Disuelto

El método utilizado para la determinación de del oxígeno disuelto está basado en

el procedimiento IEE/CICAM/41 el cual se usa para evaluar aguas claras y aguas

residuales en un rango de temperatura de 25° C a 35° C las interferencias que se

pueden presentar en el método de determinación en presencia de los iones

yoduro en una solución el estado divalente es revertido se libera el yodo en

proporciones equivalentes al OD.

Al envase winkler (previamente fijado en campo) se debe titular un volumen inicial

con tiosulfato de sodio 0,025 N hasta lograr un color amarillo pálido y después

añadir unas gotas de almidón y seguir titulando hasta que se produzca un cambio

del color azul y llegue a tornarse incoloro.

137

l) Determinación de Coliformes Fecales

El procedimiento de NMP para coliformes fecales 9221 C del Standard Methods

For the Examination of Water and Wasterwater donde se utilizó medio EC para la

determinación de CF.

La determinación de coliformes fecales puede hacerse por prueba de tubos

múltiples. Se realiza la prueba presuntiva con caldo lactosa para sembrar las

coliformes que existen dentro de la muestra de agua, se seleccionan el número de

tubos de acuerdo a las diluciones establecidas por las coliformes esperadas

según la naturaleza de la muestra, se preparan 13 gramos de medio en 1 litro de

agua destilada el pH debe encontrarse entre 6.9 +/- 0,2 luego dispense 10 ml de

este caldo en los tubos de ensayo y también colocar en cada tubos campanas

Durham por último tapar los tubos para su respectiva esterilización.

El agua de dilución que se va a utilizar en el ensayo se esteriliza junto con los

tubos del caldo lactosa por el lapso de 15 minutos, luego de que los tubos se

enfríen se procederá a la siembra.

Para la siembra la muestra debe estar a temperatura ambiente y se debe agitar

previamente, con puntas estériles se debe sembrar en las diluciones que se

hayan establecido, las series deben tener al menos tres diluciones: 10.0 ,

1.0 y 0.1 o puede tener diluciones 1.0 y 0.01 cada dilución deber

tener al menos 3 o 5 tubos. Los tubos inoculados se incuban a una temperatura

de 35 °C durante 24 horas, transcurrido este tiempo se debe examinar los cultivos

en una primera lectura y realizar la última lectura a las 48 horas, se consideran

positivos a los tubos que presentan turbidez, formación de gas o cambio de

coloración estos tubos tienen que resembrarse. Para esto se debe preparar el

medio EC, 34 g en 1 litro de agua destilada y dispensar en los tubos luego se

procede a esterilizar, una vez que se encuentren fríos se inocula para esto se

dispone de un mechero de bunsen o una lámpara de alcohol, un asa y procede a

poner en contacto el asa con la llama que genera el mechero, luego se sumerge

el asa en el tubo que contiene el medio EC para enfriar y así evitar matar los

138

microorganismos, luego se toma una asada del tubo positivo y se agita en el tubo

con medio EC a esta prueba se la llama confirmativa.

Incubar los tubos respectivamente etiquetados durante 24 horas a una

temperatura de 44°C a baño maría, los tubos positivos sembrados deben tener

presentar cambio de coloración y turbidez. Para la determinación del número de

coliformes y presentación de resultados revise la siguiente TABLA 3.13 o en caso

de no encontrar las tablas puede utilizar la siguiente ecuación:

139

TABLA 1. ÍNDICE DEL NMP Y LÍMITE CONFIABLE DE 95% PARA VARIAS

COMBINACIONES DE RESULTADOS POSITIVOS Y NEGATIVOS CUANDO SE

USAN: 3 TUBOS CON PORCIONES DE 10 , 3 CON PORCIONES DE 1

Y 3 CON PORCIONES DE 0.1 .

FUENTE: NMX-AA-42-1987

140

ANEXO N° 7

LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO

141

FICHA N.1 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “PDL”

Descripción del punto de muestreo

Nombre: Puerto de lanchas Código: PDL

Zona: 17 N Elevación: 7 m.s.n.m

Coordenadas

UTM:

X Y

629005 96763

Ancho de sección: 31,91 m

Profundidad máxima: 2,5 m

Área: 52,82 m2

Fuente: Ñato B, 2015

FICHA N.2 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “OR”


Nombre: Orillas Código: OR


Coordenadas

UTM:

X Y

628740 96689

Ancho de sección:

71,74 m Profundidad

máxima: 1,79 m

Área: 86,22 m2



FICHA N.3 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “MA”


Nombre: Manglar Código: MA

Zona: 17 N Elevación: 11m.s.n.m

Coordenadas

UTM:

X Y

628181 96429



Área: 63,15 m2

142




FICHA N.4 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “HO”


Nombre: Hoteles Código: HO


Coordenadas

UTM:

X Y

627748 96200

Ancho de sección:

31,13 m Profundidad

máxima: 2,26 m

Área: 42,16 m2

FICHA N.5 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “PV”


Nombre: Puente Vehicular Código: PV


Coordenadas

UTM:

X Y

627706 95953



Área: 41,58 m2

FICHA N.6 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “BR”


Nombre: Barrios Código: BR

Zona: 17 N Elevación: 17

m.s.n.m

Coordenadas UTM:

X Y

628105 95840

Ancho de sección:

18,75 m Profundidad

máxima: 2,84 m

Área: 33,41 m2

143

FICHA N.7 LEVANTAMIENTO BATIMÉTRICO DEL PUNTO DE MUESTREO “BNE”


Nombre: Barrio Nueva Esperanza

Código: BNE

Zona: 17 N Elevación: 21

m.s.n.m

Coordenadas UTM:

X Y

628653 95714



Área: 39,53 m2


144

ANEXO N° 8

TABLAS DE DATOS DE PARÁMETROS ANALIZADOS

14

5

Tab

la 1

Dat

os

de

los

par

ám

etr

os

an

aliz

ad

os

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146

147

ANEXO N° 9

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14

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149

150

ANEXO N° 10

PLAN DE MONITOREO

0

Chango A, Nacimba N

Escuela Politécnica Nacional

Chango A, Nacimba N

Escuela Politécnica Nacional

PLAN DE MONITOREO DE ESTUARIOS. CASO DE ESTUDIO: ESTUARIO DE LA SUBCUENCA DEL RÍO ATACAMES

1

PRESENTACIÓN

A lo largo del último periodo el Gobierno Autónomo Municipal de Atacames se ha

preocupado por la recuperación del río Atacames, siendo de nuestro interés la parte

baja de la cuenca del río Atacames que desemboca en el Océano Pacífico formando

un estuario, el cual es un recurso de interés para los pobladores de la parroquia

Atacames, por lo que se propone un plan de monitoreo.

El presente trabajo “PROPUESTA DE UN PLAN DE MONITOREO PARA

ESTUARIOS. CASO DE ESTUDIO ESTUARIO DE LA SUBCUENCA DEL RÍO

ATACAMES” se desarrolla sobre las experiencias de los trabajos realizados por

entidades gubernamentales y privadas, así como de las experiencias que se

obtuvieron en campo.

2

CONTENIDO

CONTENIDO ........................................................................................................... 2

LISTA DE CUADROS ............................................................................................. 4

LISTA DE FIGURAS ............................................................................................... 4

LISTA DE FICHAS .................................................................................................. 4

1 INTRODUCCIÓN .............................................................................................. 5

2 OBJETIVO ........................................................................................................ 5

3 ESTRUCTURA ORGANIZACIONAL DEL PLAN DE MONITOREO ................. 5

4 VARIABLES A MONITOREAR ......................................................................... 7

4.1 Oxígeno Disuelto .................................................................................... 7

4.2 Nutrientes ................................................................................................ 7

4.3 Turbidez .................................................................................................. 8

4.4 Temperatura ........................................................................................... 8

4.5 pH ........................................................................................................... 8

4.6 Salinidad ................................................................................................. 8

4.7 Clorofila a ................................................................................................ 9

4.8 Sulfatos ................................................................................................... 9

4.9 Contenido de sólidos .............................................................................. 9

4.10 Parámetros biológicos............................................................................. 9

5 FRECUENCIA ................................................................................................ 10

6 PROTOCOLO DE MUESTREO EN ESTUARIOS .......................................... 10

6.1 Medio de transporte .............................................................................. 11

6.2 Sitio de muestreo .................................................................................. 11

6.3 Envases ................................................................................................ 11

6.4 Recolección de muestras ...................................................................... 11

6.5 Identificación de envases ...................................................................... 12

6.7 Equipos ................................................................................................. 12

3

6.8. Preservación de muestras .................................................................... 12

6.9. Almacenamiento ................................................................................... 12

6.10. Transporte de muestras ........................................................................ 12

7 UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO ........................................... 15

8 ALMACENAMIENTO DE DATOS ................................................................... 17

9 MEDIDAS DE SEGURIDAD EN CAMPO ....................................................... 18

9.1 Precaución con los reactivos ................................................................ 19

9.2 Disposición de los residuos producidos en el monitoreo ...................... 20

9.3 Implementos para el día del monitoreo ................................................. 21

9.4 Materiales para el muestreo de agua ................................................... 21

10 ESTRATÉGIAS DE CONSERVACIÓN PARA EL ESTUARIO DEL RÍO

ATACAMES ........................................................................................................... 22

11 Costo de la implementación del plan de monitoreo ..................................... 23

4

LISTA DE CUADROS

CUADRO 1 ORGANIZACIÓN DEL PLAN DE MONITOREO. ................................. …6

CUADRO 2 FRECUENCIA DE MONITOREO…………………………………………...10

CUADRO 3 TÉCNICAS PARA RECOLECCIÓN Y CONSERVACIÓN DE

MUESTRAS DE AGUA………………………………………………………….…………14

CUADRO 4 CONSIDERACIONES GENERALES PARA DEFINIR LOS

PUNTOS DE MUESTREO…………………………………………………………………15

CUADRO 5 CONSIDERACIONES GENERALES PARA DEFINIR LOS

PUNTOS DE MUESTREO…………………………………………………………………16

CUADRO 6 PRESUPUESTO ESTIMADO DE LA IMPLEMENTACIÓN DE UN

PLAN DE MONITOREO PARA ESTUARIOS………………………………..................24

LISTA DE FIGURAS

FIGURA 1 TOMA DE MUESTRAS DE AGUA PARA PARÁMETROS

FÍSICO QUÍMICOS………..………………………………………………………………..13

FIGURA 2 LLENADO DE ENVASES PARA COLIFORMES FECALES. .................. 13

FIGURA 3 UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO. ................................... 17

LISTA DE FICHAS

FICHA 1 REGISTRO DE DATOS EN CAMPO .......................................................... 25

FICHA 2 CADENA DE CUSTODIA ........................................................................... 26

FICHA 3 LISTA DE CHEQUEO PARA EL MUESTREO DE ESTUARIOS ................ 27

5

1 INTRODUCCIÓN

Los estuarios representan una zona costera donde el agua dulce se mezcla con el

agua marina, produciendo interacciones en el flujo de agua, de nutrientes y flujos

biológicos, convirtiéndose en un recurso importante para las poblaciones costeras. A

lo largo del tiempo asentamientos humanos y la sobrepesca, han provocado cambios

en la calidad del agua de los estuarios, el caso del estuario del río Atacames no es

diferente debido al crecimiento urbano dentro de la parroquia Atacames además este

estuario también ha sido para actividades camaroneras, y como fuente de alimentos

para la subsistencia de los pobladores. Estas actividades han provocado cambios en

la topografía del estuario así como en la calidad del agua.

Los programas de monitoreo se han establecido para llevar un control del cuerpo de

agua y poder determinar su calidad en el tiempo, conforme los usos que se le dé a

éste, por ello se propone este manual como guía técnica para realizar un monitoreo

continuo de los estuarios.

2 OBJETIVO

Proponer los procedimientos técnicos para el monitoreo de la calidad del agua en

estuarios en función de dos condiciones de marea (bajamar y pleamar) y establecer

los parámetros, frecuencia y métodos de muestreo para realizar la evaluación de la

calidad del agua.

3 ESTRUCTURA ORGANIZACIONAL DEL PLAN DE MONITOREO

Para la ejecución de un plan de monitoreo de calidad de agua se requiere involucrar

a entidades gubernamentales, educativas y a la población de la localidad. (VER

CUADRO 1)

6

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7

4 VARIABLES A MONITOREAR

Los parámetros que se proponen monitorear en el estuario del río Atacames se

establecieron con base a su importancia, debido a que éste es un ecosistema

complejo por tanto es necesario utilizar índices para sistemas costeros como es el

índice trófico TRIX (nP). Estos parámetros se describen a continuación:

4.1 Oxígeno Disuelto

Este parámetro químico es crítico para evaluar la calidad del agua del ecosistema

estuarino ya que la biodiversidad que existe en él depende en gran medida de la

concentración de oxígeno disuelto además, de ser una variable crítica en procesos

como fotosíntesis, oxidación-reducción, solubilidad de minerales, y la

descomposición de materia orgánica (Fuentes et al.,2002). Este parámetro es

recomendado evaluar bajo el criterio de uso del cuerpo de agua como en el caso de

vida acuática y pesca, salud y recreación o como parte de un monitoreo básico

(Chapman, D., 1991)

Además, de los parámetros anteriormente mencionados es necesario monitorear el

parámetro de DBO5 ya que permite conocer la cantidad de oxígeno requerido para la

oxidación de materia orgánica biodegradable en el agua estuarina.

4.2 Nutrientes

Los nutrientes son importantes para el desarrollo de la vida acuática, pero al

incrementarse la carga de nutrientes al punto de que los cuerpos de agua ya no

puedan asimilar estas concentraciones que provienen de las descargas de aguas

residuales por actividades domésticas e industriales podrían llevar a una condición

de eutrofización, debido a que existe proliferación excesiva de algas que al

descomponerse reduce la disponibilidad de oxígeno en el ecosistema estuarino. (De

8

la Lanza, G., 2014), los nutrientes importantes son nitratos, nitritos, nitrógeno

amoniacal, ortofosfatos y sílice.

4.3 Turbidez

El monitoreo de la turbidez es importante en los cuerpos de agua estuarinos porque

cuando existe una medida de turbidez alta, interfiere en los procesos biológicos como

la fotosíntesis lo que provoca una reducción de la disponibilidad de oxígeno. (EPA,

2006)

4.4 Temperatura

La temperatura es uno de los parámetros más rápidos de medir y tiene mucha

influencia en los procesos biológicos, estos pueden acelerar o disminuir sus

funciones por cambios bruscos de la temperatura. Cuando la temperatura aumenta o

disminuye intempestivamente puede causar daño en la distribución de las

poblaciones de organismos así como también afectar en su abundancia. (EPA, 2006)

4.5 pH

Al medir el pH se mide la actividad del ión hidrógeno (H+) en una solución que puede

tornarse ácida o básica. La escala de medición de pH va de 0- 14, el pH del agua

debe ser neutro 7 por debajo de este valor el agua se torna ácida, si supera el valor

de 7 el agua es básica, en los ecosistemas de estuario el pH varía por la presencia

de minerales, actividades humanas, o reacciones que se presentan en el estuario.

(EPA, 2006)

4.6 Salinidad

La salinidad es la concentración de sales disueltas, es importante dentro de un

cuerpo de agua costero ya que permite el crecimiento de especies que se desarrollan

9

a diferentes concentraciones de salinidad. La salinidad es equivalente a la

conductividad, clorinidad y sólidos disueltos totales. (EPA, 2006; De la Lanza, G.,

2014)

4.7 Clorofila a

Es un pigmento verde que se encuentra en el fitoplancton. Es un indicativo de la

cantidad de biomasa producida en el estuario. (EPA, 2002)

4.8 Sulfatos

En algunas zonas costeras, donde se acumulan grandes cantidades de materia

orgánica, se produce una reducción intensa del sulfato a sulfuro de hidrógeno por

tanto estas zonas se tornan virtualmente inhabitables por causa del olor fétido y del

efecto tóxico del H2S. (Fuentes, F., Massol-Deyá A, 2002)

4.9 Contenido de sólidos

El contenido de sólidos totales es importante en un estuario ya que permiten saber

las condiciones de este, es decir, cuanta materia se encuentra en dilución o en

suspensión. El contenido de sólidos suspendidos totales también representa un

parámetro importante a monitorear porque la excesiva materia en suspensión tiene

efectos adversos dentro de la vida acuática como la obstrucción de branquias de los

peces lo que impide el intercambio de oxígeno y dióxido de carbono, reduce la

resistencia de los peces a las enfermedades, reduce las tasas de crecimiento, y la

capacidad de los depredadores acuáticos a detectar sus presas. (EPA, 2006)

4.10 Parámetros biológicos

Los microorganismos patógenos pueden provocar problemas en la salud de las

personas que utilizan los recursos del estuario, dentro de los microorganismos que

10

se analizan se encuentran virus, bacterias, parásitos, etc. Para el monitoreo se

toman muestras de agua para determinar la existencia de microorganismos

indicadores como la E. Coli, estas bacterias se encuentran frecuentemente en los

animales de sangre caliente. (EPA, 2006)

5 FRECUENCIA

La frecuencia de los muestreos dentro de este plan de monitoreo debe ser mensual

por los resultados obtenidos en los muestreos realizados ya que la distribución de los

parámetros analizados cambia continuamente además, al ser Atacames una ciudad

turística el estuario está sujeto a recibir mayor contaminación en feriados pues,

aumenta la población y con ello las descargas de aguas residuales. (VER CUADRO

2)

CUADRO 2 FRECUENCIA DE MONITOREO

Parámetros Frecuencia

Oxígeno Disuelto Mensual DBO 5 Mensual

Nutrientes (sílice, nitratos, nitrógeno amoniacal, nitritos y fósforo)

Mensual

Turbiedad Mensual Clorofila a Mensual

Temperatura Mensual Salinidad Mensual

Coliformes fecales Mensual pH Mensual

Sulfatos Mensual Contenido de sólidos (sólidos totales y sólidos

suspendidos totales) Mensual

Elaborado por: Ana Chango y Nancy Nacimba

6 PROTOCOLO DE MUESTREO EN ESTUARIOS

Para realizar un muestreo en zonas costeras se debe cumplir los siguientes

lineamientos generales:

11

6.1 Medio de transporte

En zonas costeras principalmente en estuarios por sus dimensiones (ancho de

sección y profundidad), el muestreo es necesario realizarlo en lancha u otro medio de

navegación. Al momento de muestrear la embarcación debe estar apagada y tener

estabilidad para que el personal pueda realizar sus labores.

6.2 Sitio de muestreo

Este debe encontrarse donde, las descargas se hayan mezclado completamente

con el cuerpo de agua receptor (estuario), evitando las áreas de turbulencia

excesiva, considerando la profundidad, la velocidad de la corriente y la distancia de

separación entre ambas orillas (mitad del cauce). (VER FICHA 1)

6.3 Envases

Los recipientes requeridos en la toma de muestras deben ser de polietileno de primer

uso preferiblemente y con tapa hermética; estar limpios y secos para evitar la

contaminación de las muestras y dependiendo del parámetro a medir también es

necesario el uso de envases de vidrio.

Los recipientes deben ser homogenizados con el agua del sitio de muestreo (2 a 3

veces), estos enveses no deber ser llenados hasta el tope, sino que se debe procurar

dejar un espacio para evitar derrames. Sin embargo, en el caso de frascos estériles

la muestra de agua se toma directamente sin homogenizar y se los llena hasta sus

2/3 partes.

6.4 Recolección de muestras

Se realiza en dirección opuesta al flujo del agua. En el caso de estuarios en bajamar

se toma la muestra en dirección contaría al flujo normal del río, en pleamar debido a

12

que predomina la afluencia de agua del mar se toma la muestra en dirección

contraria al flujo que sigue el agua del mar. Esto permite que cualquier escombro o

desecho sea evitado y no pueda ingresar en el recipiente. (VER FIGURA 1 Y 2)

6.5 Identificación de envases

Los recipientes utilizados en la recolección de muestras deben ser etiquetados

correctamente y colocar únicamente la información necesaria para economizar

tiempo (código, fecha, nombre del muestreador y condición de marea).

6.7 Equipos

Los dispositivos utilizados en campo para la toma de parámetros “in situ” deben ser

calibrados y verificados antes de su uso para así asegurar su perfecto

funcionamiento.

6.8. Preservación de muestras

Se utiliza persevantes químicos, los más comunes son ácido sulfúrico, clorhídrico,

nítrico y deben ser manipulados con precaución. (VER CUADRO 3)

6.9. Almacenamiento

Las muestras requieren temperaturas bajas entre 1° y 5°C por lo cual para conservar

estas temperaturas es necesario el uso de hieleras.

6.10. Transporte de muestras

El transporte de las muestras se debe realizar en condiciones de seguridad, asepsia

y procurando evitar movimientos bruscos para que no existan derrames ni incidentes,

por lo cual cada hielera debe estar perfectamente asegurada y etiquetada con el tipo

13

de muestra que lleva y los análisis que se requieren para cada muestra hasta que

estas lleguen a un laboratorio acreditado para su posterior análisis.

FIGURA 1. TOMA DE MUESTRAS DE AGUA PARA PARÁMETROS FÍSICO

QUÍMICOS

.

FUENTE: GÓMEZ R., SÁNCHEZ M. (sf)

FIGURA 2. LLENADO DE ENVASES PARA COLIFORMES FECALES.

FUENTE: TOMASINI A, (sf)

14

CUADRO 3 TÉCNICAS PARA RECOLECCIÓN Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DE AGUA.

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Salinidad* P,V 100 S N/A N/A

Oxígeno disuelto

(OD)* P,V 100 S N/A N/A

Turbidez* P,V 1000

Se enfría a entre 1 °C y 5 °C. Mantener las muestras almacenadas

en la oscuridad. N/A

Fósforo reactivo (ortofosfatos)

V o VB o P 250 s Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 1 mes

P 250 Congelar a - 20 °C. La muestra debe ser filtrada en el lugar en el momento

del muestreo 1 mes

Nitritos (NO2) P,V 200 S Refrigeración a 4ºC 24 horas

P o V 250 Acidificar entre pH 1 a 2 con HCl 7 días

Nitratos (NO3) P,V 250 S Refrigeración a 4ºC 24 horas

Nitrógeno amoniacal P,V 500 S Conservación con H2SO4, pH<2 24 horas

Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO)

P o V 1 000 S Se enfría a 1 °C y 5 °C

(Llenar contenedor completamente para excluir el aire)

24 horas

P 1000 S Congelar a -20 ºC 1 mes

Nitrógeno amoniacal P,V 500 S Conservación con H2SO4, pH<2 28 días

pH* P,V 100 S Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 6 horas

Sólidos Totales P,V 100 S Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 24 horas Sólidos Suspendidos

totales P,V 500 S Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 2 días

Clorofila

P,V (Botellas ámbar) 1000

S Se enfría hasta 1 °C y 5 °C.

24 horas

P,V (Botellas ámbar) 1000 S

Después de la filtración y la extracción con etanol caliente,

congelar a - 20 °C. 1 mes

P,V (Botellas ámbar) 1000 S Después de la filtración, de frío - 80

°C 1 mes

Sulfatos P,V 200 S Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 1 mes

Sílice P,V 200 Se enfría hasta 1 °C y 5 °C. 28 días

Mic

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Coliformes fecales

P,V (estériles)

100

S Refrigerar a 4ºC

8 horas

*Parámetros que preferiblemente se deben analizar in Situ V, vidrio; P, plástico; VB, vidrio borosilicatado; S Simple

ELABORADO POR: Ana Chango y Nancy Nacimba.

FUENTE: INEN 2169:3013; TOMASINI A (sf); HACH 2007

15

7 UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO

Los puntos seleccionados para realizar el muestreo dentro del programa de

monitoreo de calidad del agua para estuarios deben ser seleccionados en función de

su importancia, accesibilidad y representatividad. (VER CUADRO 4)

Además, en el caso de ecosistemas estuarinos es necesario conocer el

comportamiento en bajamar y pleamar debido a que cambia dependiendo de las

condiciones de marea.

CUADRO 4 CONSIDERACIONES GENERALES PARA DEFINIR LOS PUNTOS DE

MUESTREO.

Identificación

El punto de muestreo, debe ser reconocido mediante Sistemas de Posicionamiento Satelital (GPS), para

determinar la ubicación exacta de cada punto es necesario colocar una referencia física (puente, árbol, pared, etc.) las

cuales deben estar señalizadas correctamente lo cual permitirá hallar los puntos fácilmente en muestreos

futuros.

Accesibilidad Es necesario que se pueda llegar con facilidad a los puntos de muestreos y que su acceso sea seguro.

Representatividad

El muestreo se debe realizar en puntos donde exista una problemática de contaminación del cuerpo de agua

(estuario) y represente riesgo para la población que hace uso de este.

ELABORADO POR: Chango A, Nacimba N

Para el estuario del río Atacames se establecieron cuatro puntos de muestreo dentro

del programa de monitoreo los cuales fueron seleccionados en función de los datos

obtenidos de la evaluación de la calidad del agua y de los puntos donde se incumple

la normativa ecuatoriana. (VER CUADRO 5 Y FIGURA 3)

16

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16

17

FIGURA 3. UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO.


8 ALMACENAMIENTO DE DATOS

Cuando ya se tienen los resultados de los análisis de laboratorio lo que se debe

realizar es la interpretación de los datos obtenidos, esta base de datos crudos deben

estar respaldados con la cadena de custodia que debió seguirse durante el

muestreo, para el tratamiento de estos datos se utilizó plantillas de Excel. (VER

FICHA 2)

Los datos que se han colectado deben ser almacenados debido a que esta

información permite establecer registros en el tiempo. En la actualidad la

digitalización de la información permite una transferencia de datos más rápida y

eficiente.

18

Para el almacenamiento de datos de acuerdo a la cantidad que se maneje en el

proyecto se puede utilizar una hoja de cálculo o desarrollar una base de datos para

manejarlos y poder presentar gráficas, estadísticas, tendencias de estos, desarrollar

un software para la transmisión de datos ofrece mayor velocidad, algunos ejemplos

de programas que ayudan a administrar la base de datos son Access, MySQL

database, Visual FoxPro. (EPA, 2006)

9 MEDIDAS DE SEGURIDAD EN CAMPO

Para emprender las campañas de muestreo dentro del programa de monitoreo para

estuarios es necesario tomar en cuenta diferentes medidas de seguridad que sirven

para prevenir los inconvenientes que suelen presentarse durante el muestreo ya que

los errores se ven reflejados en la calidad de los datos.

En las salidas a campo el grupo de trabajo (al menos dos personas) debe recibir

capacitación definir y confirmar la hora y fecha del muestreo, así como verificar las

condiciones del tiempo en la fecha propuesta y las condiciones de marea, realizar la

revisión de equipos, materiales, reactivos, etc.

En la recolección de las muestras, el técnico debe realizar observaciones detalladas

del lugar (condiciones del tiempo o posibles fuentes de contaminación) porque

después éstas contribuirán a la interpretación de los datos.

Las consideraciones complementarias a las campañas de muestreo son: i) Tener en

cuenta el sitio de muestreo y si en éste existe tiene cobertura para la realización de

llamadas telefónicas, en este caso resulta útil llevar un teléfono móvil y en caso de

no tener señal una radio puede servir. ii) Tener a la mano el número del centro de

salud más cercano y pedir que cada miembro del grupo de muestreo llene un

formulario médico en donde detalle contactos de emergencia, detalles de seguro, así

como detalles de sanidad como alergias, enfermedades como diabetes, etc. iii)

19

Contar con un botiquín de primeros auxilios que cuente con los números de

emergencia de la policía, ambulancia, así como los contactos de emergencia de cada

uno de los miembros del grupo. (VER FICHA 3)

Es esencial para la salida de campo llevar:

· Un manual de primeros auxilios.

· Vendas, curitas, vendas elásticas.

· Gasas

· Una aguja para eliminar astillas

· Alcohol

· Antiestamínicos (necesarios para las alergias reportadas en el equipo)

9.1 Precaución con los reactivos

El uso de reactivos que no se encuentren en buen estado influye en la calidad de los

datos por tal motivo se debe tener cuidado con los factores que afectan a los

reactivos que se necesitan para tomar mediciones en campo. (EPA, 2006)

Los factores que pueden afectar a los reactivos son:

· Exposición al sol

· Existen reactivos que se descomponen cuando están expuestos directamente

a la luz solar, los reactivos dispuestos a la titulación o conservación pueden

reaccionar y cambiar de color.

· Aire

· Puede existir evaporación, o reacción con el oxígeno o el dióxido de carbono

que contiene el aire.

20

· Contaminación.

La limpieza inadecuada después de cada medición durante el muestreo puede

causar problemas en los equipos por lo cual es necesario tomar las siguientes

recomendaciones:

· Prevenir la degradación de los reactivos.

· No exponga, o en caso de ser necesario la exposición reduzca al máximo el

tiempo de exposición de los reactivos al sol.

· No abra los recipientes que contienen los reactivos más de lo necesario.

· Los frascos de los reactivos deben estar bien tapados.

· Si va a utilizar goteros, disponga uno para cada reactivo y no mezcle.

9.2 Disposición de los residuos producidos en el monitoreo

Residuos líquidos:

Los residuos que se generan por parte de algunos reactivos no deben ser vertidos al

estuario por tal motivo es recomendable que lleve consigo la hoja de seguridad de

cada reactivo. Todos estos líquidos se los debe colocar en recipientes separados

por lo cual se debe contar con recipientes destinados para este propósito los cuales

no deben ser iguales o similares a los que se lleven para bebidas ya que pueden

confundirse y causar problemas. Al final del monitoreo los desechos producidos se

deben disponer correctamente según el tipo de desecho que se tenga.

Residuos sólidos:

Para la disposición de los recipientes del agua o bebida hidratante es necesario

colectarlos todos y depositarlos en los contenedores de basura adecuadamente.

(EPA, 2006)

21

9.3 Implementos para el día del monitoreo

Para el día de la campaña de muestreo los integrantes del grupo de trabajo deben

traer consigo los siguientes materiales:

· Guantes de goma o de látex para protegerse.

· Repelente de Insectos.

· Bloqueador solar

· Pilas adicionales que se ajusten para cada equipo

· Silbato en caso de emergencia

· Teléfono o radio

· Agua o bebida hidratante

· Chaleco salva vidas

· Permisos e identificaciones (licencia de conducir o permisos de entrada)

Ropa

· Camisa manga larga

· Botas

· Sombrero

· Calzado adecuado

· Gafas o protector para los ojos

9.4 Materiales para el muestreo de agua

Dentro de los materiales que se necesitan para el día del muestreo se encuentran:

· Implementos para muestrear o un muestreador

22

· Respectivos contenedores para diferentes muestras

· Llevar suficiente reactivo para el muestreo en campo.

· Hojas de datos

· Bolígrafos y marcadores

· Manual de los equipos que se van a llevar

· Etiquetas

· Suministro de agua destilada (picetas)

· Cinta métrica

· Hieleras para conservar las muestras

· Cámara

· Cuerda

· Bolsas de plásticos

· Repuestos para los equipos

· Tabla de marea

· Ancla

· Combustible extra

· Tijeras

· GPS

10 ESTRATÉGIAS DE CONSERVACIÓN PARA EL ESTUARIO DEL

RÍO ATACAMES

Por los problemas de contaminación existentes en el estuario del río Atacames y el

deterioro de este cuerpo de agua se detallan a continuación medidas para su

recuperación.

· Ubicar dentro de los programas de limpieza del estuario que realiza el municipio de

Atacames los puntos donde se concentra mayoritariamente la basura (en las orillas y

dentro del agua); y emprender en estos sectores programas de educación ambiental en

23

los cuales se explique el riesgo a la salud y a la vida acuática que genera la emisión de

desechos a cuerpos de agua.

· Proveer de puertos pesqueros a los pobladores de la ciudad de con la infraestructura

adecuada para controlar la basura y los desechos de la limpieza de mariscos que se

genera en cada puerto de anclaje y que son tirados directamente al estuario.

· Prohibir el relleno del estuario para la colocación de viviendas, y la alteración en el cauce

del río para la captación de aguas hacia las camaroneras porque esto modifica las

condiciones naturales del estuario afectando la comunicación entre el río y el mar, lo cual

constituye una acción mortífera para especies de bosque como el mangle ya que,

dependen de la salinidad del estuario.

· Evitar toda situación que frene la circulación normal del agua en el estuario del río

Atacames.

· Recuperar las zonas abandonadas por camaroneras y prohibir los asentamientos

humanos en estos sitios. Además, donde se haya recuperado naturalmente la zona

estuarina declararla como zona protegida para su conservación.

· Identificar los sectores donde existan conexiones ilegales de descargas

domésticos a la red pluvial y sancionar a los responsables.

11 Costo de la implementación del plan de monitoreo

En los valores que se detallan a continuación se presenta un costo referencial de la

implementación del plan de monitoreo tomando en cuenta únicamente los equipos

necesarios en campo y el costo de los análisis de los parámetros que son necesarios

enviar a un laboratorio acreditado por Servicio de Acreditación Ecuatoriano, (SAE).

24

Este presupuesto se realizó sin tomar en cuenta los costos de personal debido a que

los trabajadores del municipio pueden ser capacitados y entrenados para ejecutar el

plan de monitoreo. (VER CUADRO 6)

CUADRO 6 PRESUPUESTO ESTIMADO DE LA IMPLEMENTACIÓN DE UN PLAN

DE MONITOREO PARA ESTUARIOS.

EQUIPO

ITEM CANTIDAD

COSTO UNITARIO

COSTO TOTAL

Medidor portátil Multiparámetro modelo HQ40d. 1 1,434.31 1,434.31

Sonda Inteligente estándar para pH, con 1 m de cable 1 293.56 293.56 Sonda estándar de conductividad para HQ40D con 1 metro de cable 1

493.10 493.10

Sonda inteligente estándar para Oxígeno Disuelto, LDO, con 1m de cable. 1

981.22 981.22

Turbidímetro portátil 2100Q 1 1,662.18 1,662.18

TOTAL 4,864.37

ANÁLISIS DE LABORATORIO EN UN AÑO DE CAMPAÑAS DE MUESTREO

PARÁMETRO CANTIDAD COSTO

UNITARIO COSTO TOTAL

Clorofila a 24 35 840

Coliformes fecales 24 27 648

Demanda bioquímica de oxígeno DBO5 24 41 984

Fosfatos (PO43-) 24 10 240

Nitratos (NO3) 24 11,5 276

Nitritos (NO2) 24 13 312

Nitrógeno Amoniacal 24 17 408

Sílice (SiO2) 24 22 528

Sólidos suspendidos 24 12 288

Sólidos totales 24 10 240

Sulfatos (SO4 2-

) 24 12 288

Subtotal 5052

Anual 5052

IVA 606.24

TOTAL 5,658.24


25

FICHA 1 REGISTRO DE DATOS EN CAMPO


Simple: Compuesta:

Oxígeno Disuelto

Salinidad pH Temperatura TurbiedadOxígeno Disuelto

Salinidad pH Temperatura Turbiedad

mg/l ppt °C NTU mg/l ppt °C NTU

N.Hora Hora

Punto de muestreo

PleamarBajamar

Observaciones generales:

Clima:

Tipo de muestra:

Localización:

Fecha de muestreo:

Tipo de muestreo:

Número de muestras:

Responsable de muestreo:

PLAN DE MONITOREO DE ESTURIOS

26

FICHA 2 CADENA DE CUSTODIA

FUENTE: SATH (Servicios Ambientales, Ing. Cristina Torres), (sf) MODIFICADO POR: Chango A, Nacimba N

Núm

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27

FICHA 3 LISTA DE CHEQUEO PARA EL MUESTREO DE ESTUARIOS

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28

FICHA 3 CONTINUACIÓN

FUENTE: SATH (Servicios Ambientales, Ing. Cristina Torres), (sf) MODIFICADO POR: Chango A, Nacimba N

Mat

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