Planes de limpieza y desinfección en explotaciones...
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Redacción Planes de limpieza y desinfección en explotaciones porcinas Redacción Mantener unas buenas condiciones de higiene en la explotación ayuda a reducir la aparición de enfermedades infecciosas y parasitarias. La suciedad también favorece la proliferación de insectos y roedores que, como otros animales domésticos pueden actuar como transmisores de enfermedades. Se ha sugerido que el 85% de las enfermedades se pueden evitar con unas buenas condiciones de higiene, nutrición y manejo. Ninguna explotación puede mantenerse completamente libre de patógenos y por tanto el objetivo es mantener un equi- librio entre estos y las defensas de los animales. Un indicador importante para poder valorar si el trabajo de limpieza y desinfección ha sido efectivo es el TVC (recuento de bacterias viables por cm 2 ). Este indicador tiene una buena correlación también con la presencia de virus en el ambiente. El dato ideal de obtención es de 1000 TVC/cm 2 después de la realización de una limpieza y des- infección. k Limpieza • Existen dos enemigos claros de una buena desinfección: la materia orgá- nica y los depósitos de grasa en las superficies. La actividad de cualquier desinfectante quedará en entredicho por la presencia de cualquiera de estos dos elementos. • Limpiar las salas, las naves y los patios cada vez que se vacían y antes de meter nuevos animales. • Mantener limpio y ordenado todo el recinto perimetral de la explotación y cortar la vegetación cada vez que sea necesario. • Limpiar las cuadras lo antes posible, una vez se han vaciado de animales. • Limpiar los depósitos del agua una vez al año, como mínimo. • Vaciar totalmente los silos y eliminar los restos de pienso que pueda haber incrustados al final de cada engorde o como mínimo una vez al año. 18
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Redacción
Planes de limpieza y desinfección en explotaciones porcinas
Redacción
Mantener unas buenas condiciones de higiene en la explotación ayuda a reducir la aparición de enfermedades infecciosas y parasitarias. La suciedad también favorece la proliferación de insectos y roedores que, como otros animales domésticos pueden actuar como transmisores de enfermedades. Se ha sugerido que el 85% de las enfermedades se pueden evitar con unas buenas condiciones de higiene, nutrición y manejo.
Ninguna explotación puede mantenerse completamente libre de patógenos y por tanto el objetivo es mantener un equi-librio entre estos y las defensas de los animales. Un indicador importante para poder valorar si el trabajo de limpieza y desinfección ha sido efectivo es el TVC (recuento de bacterias viables por cm2).
Este indicador tiene una buena correlación también con la presencia de virus en el ambiente. El dato ideal de obtención es de 1000 TVC/cm2 después de la realización de una limpieza y des-infección.
�k Limpieza
• Existen dos enemigos claros de una buena desinfección: la materia orgá-nica y los depósitos de grasa en las superficies. La actividad de cualquier
desinfectante quedará en entredicho por la presencia de cualquiera de estos dos elementos.
• Limpiar las salas, las naves y los patios cada vez que se vacían y antes de meter nuevos animales.
• Mantener limpio y ordenado todo el recinto perimetral de la explotación y cortar la vegetación cada vez que sea necesario.
• Limpiar las cuadras lo antes posible, una vez se han vaciado de animales.
• Limpiar los depósitos del agua una vez al año, como mínimo.
• Vaciar totalmente los silos y eliminar los restos de pienso que pueda haber incrustados al final de cada engorde o como mínimo una vez al año.
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socioeconómicos y el impacto que tiene sobre el comercio internacional. En vista de la gran cantidad de pruebas que demues-tran la ineficacia de los antibióticos para controlar la enfermedad respiratoria cau-sada por M. bovis, los esfuerzos de inves-tigación ahora se orientan al desarrollo de vacunas eficaces que podrían ser utilizadas o incorporadas con las ya existentes para luchar contra las bacterias y los patógenos respiratorios virales.
�k Referencias
1. AYLING, R.D., NICHOLAS, R.A.J. & JOHANSSON, K.E.
(1997) APPLICATION OF THE POLYMERASE CHAIN
REACTION FOR THE ROUTINE IDENTIFICATION OF
MYCOPLASMA BOVIS. VETERINARY RECORD 141,
307-308.
2.
R.A.J. (2004) MYCOPLASMAS AND RELATED ORGA-
NISMS IDENTIFIED FROM RUMINANTS 1990-2000.
VETERINARY RECORD 155, 413-416.
3.
HOGG, R., AND BYRNE, W. (2005) LSOLATION OF
MYCOPLASMA BOVIS FROM THE BRAIN TISSUE OF
CALVES. VETERINARY RECORD 156, 391-392.
4.
A.J., & NICHOLAS, R.A.J. (2000) COMPARISON OF
IN VITRO ACTIVITY OF DANOFLOXACIN, FLORFE-
NICOL, OXYTETRACYCLINE, SPECTINOMYCIN AND
TILMICOSIN AGAINST RECENT FIELD ISOLATES OF
MYCOPLASMA BOVIS. VETERINARY RECORD 146,
745-747.
5.
BALL, H.J. (2007) LSOLATION OF MYCOPLASMA
BOVIS FROM CATTLE IN NORTEHRN LRELAND
FROM 1999 TO 2005. VETERINARY RECORD 161,
452-453.
6.
J., MCCONNELL, W. & BALL, H.]. (2000) LSO-
LATION OF MYCOPLASMA BOVIS FROM CATTLE
IN NORTHERN LRELAND 1993-1998. VETERINARY
RECORD 146, 643-644.
7.
THE AETIOPATHOGENESIS OF MYCOPLASMA PNEU-
MONIA IN CALVES. ARCHIV FUR EXPERIMENTE/LE
VETERINARMEDIZIN 43, 685-689.
8.
R., BAKER, S.E., AYLING, R.O. & NICHOLAS R.A.J.
(2000) APPLICATION OF AN INDIRECT ELISA TO MILK
SAMPLES TO IDENTIFY COWS WITH MYCOPLASMA
BOVIS MASTITIS. VETERINARY RECORD 146, 368-
369.
9.
B. & BALL, H.J, (2001) LSOLATION OF MYCOPLASMA
BOVIS FROM BOVINE CLINICAL SAMPLES IN THE
REPUBLIC OF LRELAND. VETERINARY RECORD 148,
331-333.
10.
MESSLER, S. (2005) DETERMINATION OF
MYCOPLASMA BOVIS SUSCEPTIBILITIES AGAINST
SIX ANTIMICROBIAL AGENTS USING THE E TEST
METHOD. VETERINARY MICROBIOLOGY 105, 57-64.
11.
& NICOLET, J. (1999) DNA REPAIR GENES UVRC
AS GENETIC TARGETS FOR DISCRIMINATION OF
CLOSELY RELATED MYCOPLASMAS. IN: STIPKOVITS
L, ROSENGARTEN R, FREY J, EDS. MYCOPLASMAS
OF RUMINANTS: PATHOGENICITY, DIAGNOSTICS,
EPIDEMIOLOGY AND MOLECULAR GENETICS VOL 3.
BRUSSELS: EUROPEAN COMMISSION 40-43.
12.
TILT, N., ROWAN, T.G. AND SUNDERLAND, S. J.
(2004) EFFICACY OF TULATHROMYCIN IN THE
TREATMENT OF BOVINE RESPIRATORY DISEA-
SE ASSOCIATED WITH INDUCED MYCOPLASMA
BOVIS INFECTIONS IN YOUNG DAIRY CALVES. VET
THERAPY 6, 96-102.
13.
LNCREASED SEVERITY OF CALF PNEUMONIA ASSO-
CIATED WITH THE APPEARANCE OF MYCOPLASMA
BOVIS IN A REARING HERD. VETERINARY RECORD
124, 420-422.
14.
G.K. & JANZEN E.D. (2001) THE IMMUNOHISTO-
CHEMICAL DETECTION OF FEEDLOT CATTLE WITH
CHRONIC UNRESPONSIVE RESPIRATORY DISEA-
SE AND/OR ARTHRITIS. CANADIAN VETERINARY
JOURNAL 42, 857-860.
15.
& STULA, E.F. (1962) BOVINE MASTITIS CAUSED BY
MYCOPLASMA SPECIES CORNELL VETERINARIAN
52, 582-591
16.
RAPID DETECTION OF MYCOPLASMA BOVIS IN
MILK SAMPLES AND NASAL SWABS USING THE
POLYMERASE CHAIN REACTION. JOURNAL OF
APPLIED BACTERIOLOGY 80, 505-510.
17.
GOURLAY, R.N. & TAYLOR, G. (1987) PROTECTION
AGAINST RESPIRATORY DISEASE IN CALVES INDU-
CED BY VACCINES CONTAINING RESPIRATORY
SYNCYTIAL VIRUS, PARINFLUENZA TYPE 3 VIRUS,
MYCOPLASMA BOVIS AND M. DISPAR. VETERINARY
RECORD, 121, 372-376.
nº 40
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nº 44Planes de limpieza y desinfección en explotaciones porcinas
• Mantener limpio el contenedor de cadáveres, limpiándolo y desinfec-tándolo cada vez que sea necesario.
�k Desinfección
El proceso de desinfección siempre se ha de realizar tras una buena limpieza y el secado de la superficie, aunque no es conveniente que pasen más de 24 horas desde la realización de la limpieza.
• Para utilizar productos zoosanitarios es indispensable tener el carnet de aplicador de productos zoosanita-rios, nivel básico; también sirve el carnet de aplicador de productos fitosanitarios. Si la aplicación la efectúa un trabajador de la explo-tación, el titular de ésta debe tener el nivel avanzado de aplicador de productos zoosanitarios (o fitosa-nitarios).
• Una vez hemos limpiado es nece-sario desinfectar para eliminar los microorganismos patógenos. Las superficies han de estar limpias por-que la presencia de suciedad impide la correcta acción del desinfectante.
CuadroEfecto de las condiciones sanitarias en el rendimiento de los cerdos.
Fase de crecimiento 6-27 kg 27-112 kgCondiciones sanitarias Buenas Malas Buenas Malas
Ingesta ED (MCal/d) 3,40 2,98 7,49 6,63GMD (g/d) 654 507 854 688
Ganancia proteína (g/d) 106 80 117 88Requerimiento lisina (% dieta) 1,15 1,00 0,60 0,51
Williams et al 1997.
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�k Referencias
1. AYLING, R.D., NICHOLAS, R.A.J. & JOHANSSON, K.E.
(1997) APPLICATION OF THE POLYMERASE CHAIN
REACTION FOR THE ROUTINE IDENTIFICATION OF
MYCOPLASMA BOVIS. VETERINARY RECORD 141,
307-308.
2.
R.A.J. (2004) MYCOPLASMAS AND RELATED ORGA-
NISMS IDENTIFIED FROM RUMINANTS 1990-2000.
VETERINARY RECORD 155, 413-416.
3.
HOGG, R., AND BYRNE, W. (2005) LSOLATION OF
MYCOPLASMA BOVIS FROM THE BRAIN TISSUE OF
CALVES. VETERINARY RECORD 156, 391-392.
4.
A.J., & NICHOLAS, R.A.J. (2000) COMPARISON OF
IN VITRO ACTIVITY OF DANOFLOXACIN, FLORFE-
NICOL, OXYTETRACYCLINE, SPECTINOMYCIN AND
TILMICOSIN AGAINST RECENT FIELD ISOLATES OF
MYCOPLASMA BOVIS. VETERINARY RECORD 146,
745-747.
5.
BALL, H.J. (2007) LSOLATION OF MYCOPLASMA
BOVIS FROM CATTLE IN NORTEHRN LRELAND
FROM 1999 TO 2005. VETERINARY RECORD 161,
452-453.
6.
J., MCCONNELL, W. & BALL, H.]. (2000) LSO-
LATION OF MYCOPLASMA BOVIS FROM CATTLE
IN NORTHERN LRELAND 1993-1998. VETERINARY
RECORD 146, 643-644.
7.
THE AETIOPATHOGENESIS OF MYCOPLASMA PNEU-
MONIA IN CALVES. ARCHIV FUR EXPERIMENTE/LE
VETERINARMEDIZIN 43, 685-689.
8.
R., BAKER, S.E., AYLING, R.O. & NICHOLAS R.A.J.
(2000) APPLICATION OF AN INDIRECT ELISA TO MILK
SAMPLES TO IDENTIFY COWS WITH MYCOPLASMA
BOVIS MASTITIS. VETERINARY RECORD 146, 368-
369.
9.
B. & BALL, H.J, (2001) LSOLATION OF MYCOPLASMA
BOVIS FROM BOVINE CLINICAL SAMPLES IN THE
REPUBLIC OF LRELAND. VETERINARY RECORD 148,
331-333.
10.
MESSLER, S. (2005) DETERMINATION OF
MYCOPLASMA BOVIS SUSCEPTIBILITIES AGAINST
SIX ANTIMICROBIAL AGENTS USING THE E TEST
METHOD. VETERINARY MICROBIOLOGY 105, 57-64.
11.
& NICOLET, J. (1999) DNA REPAIR GENES UVRC
AS GENETIC TARGETS FOR DISCRIMINATION OF
CLOSELY RELATED MYCOPLASMAS. IN: STIPKOVITS
L, ROSENGARTEN R, FREY J, EDS. MYCOPLASMAS
OF RUMINANTS: PATHOGENICITY, DIAGNOSTICS,
EPIDEMIOLOGY AND MOLECULAR GENETICS VOL 3.
BRUSSELS: EUROPEAN COMMISSION 40-43.
12.
TILT, N., ROWAN, T.G. AND SUNDERLAND, S. J.
(2004) EFFICACY OF TULATHROMYCIN IN THE
TREATMENT OF BOVINE RESPIRATORY DISEA-
SE ASSOCIATED WITH INDUCED MYCOPLASMA
BOVIS INFECTIONS IN YOUNG DAIRY CALVES. VET
THERAPY 6, 96-102.
13.
LNCREASED SEVERITY OF CALF PNEUMONIA ASSO-
CIATED WITH THE APPEARANCE OF MYCOPLASMA
BOVIS IN A REARING HERD. VETERINARY RECORD
124, 420-422.
14.
G.K. & JANZEN E.D. (2001) THE IMMUNOHISTO-
CHEMICAL DETECTION OF FEEDLOT CATTLE WITH
CHRONIC UNRESPONSIVE RESPIRATORY DISEA-
SE AND/OR ARTHRITIS. CANADIAN VETERINARY
JOURNAL 42, 857-860.
15.
& STULA, E.F. (1962) BOVINE MASTITIS CAUSED BY
MYCOPLASMA SPECIES CORNELL VETERINARIAN
52, 582-591
16.
RAPID DETECTION OF MYCOPLASMA BOVIS IN
MILK SAMPLES AND NASAL SWABS USING THE
POLYMERASE CHAIN REACTION. JOURNAL OF
APPLIED BACTERIOLOGY 80, 505-510.
17.
GOURLAY, R.N. & TAYLOR, G. (1987) PROTECTION
AGAINST RESPIRATORY DISEASE IN CALVES INDU-
CED BY VACCINES CONTAINING RESPIRATORY
SYNCYTIAL VIRUS, PARINFLUENZA TYPE 3 VIRUS,
MYCOPLASMA BOVIS AND M. DISPAR. VETERINARY
RECORD, 121, 372-376.
nº 40
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Redacción
Cuadro 1. Características y usos de los distintos desinfectantesDesinfectante Actividad Seguridad Usos principales
Amonio cuaternario (QACa)
Limitada, disminuida por el material orgánico Tóxico para peces Pre-limpieza,
saneamiento de aguas
FormaldehidoBuena, reducida en
condiciones de ambiente frío
Muy irritante para la piel, el sistema
respiratorio y los ojos. Peligroso para el medio
ambiente
Fumigación de equipos y edificios vacíos
Glutaraldehido Buena, se necesita contacto prolongado
Como el formaldehido. Cuidado- se necesita
mascarilla para el olor
Desinfección de superficies
QAC/Glutaraldehido Como el anterior Como el anterior Desinfección de superficies
Acidos de alquitrán
Buen viricida, bactericida y funguicida. Resistente a la actividad de la materia orgánica
El olor puede reducir la ingestión de alimentos.
Corrosivo
Desinfección de todo tipo- superficie, baños
de pies, etc.
Fenoles sintéticos Como el anterior, pero menos eficiente Como el anterior Como el anterior
Yodoforos Actividad reducida con la materia orgánica
Tóxico para peces. Provoca tinción Para todo uso
Acido peracético Actividad vírica limitada Algo tóxico para peces. Corrosivo
Desinfección de superficies
Peroxígeno en polvoAmplio espectro. Inactivado por la materia orgánica
Irritante en polvo. Puede ser corrosivo. Utilizar diluciones no tóxicas
Para todo uso, incluido nebulización y saneamiento de aguas
Compuestos que liberan cloro
Inactivado por la materia orgánica
Corrosivo. Irritante para piel y sistema
respiratorio. Peligroso para el medio ambiente
Desinfección de superficies y limpieza
de tanques, tuberías de agua, etc.
Anfóteros
Inactivados por la materia orgánica.
Reducido en condiciones de frío
Sin problemas importantes
Procesado de alimentos, desinfección de
vehículos
Compuestos que liberan amoniaco
Activo contra huevos de parásitos
Muy irritante para la piel, sistema respiratorio
y ojos. Requiere equipo de protección
especializado
Control de coccidiosis
Desinfectantes en seco Amplio espectroPolvoriento y levemente irritante para el sistema
respiratorio
Corrales para partos, comederos de lechones,
suelo macizos
Fuente: John D. Mackinnon. Limpieza y desinfección de las instalaciones para cerdos. http://www.3tres3.com/los-expertos-opinan/limpieza-y-desinfeccion-de-las-instalaciones-para-cerdos_1246/
• Es recomendable disponer de un programa de limpieza y desinfección y disponer de algún registro para dejar constancia de los tratamientos de desinfección. Si no se dispone de un registro específico, cabe anotar las desinfecciones realizadas en el Registro de tratamientos veterinarios.
�k Productos
Solo debemos utilizar productos autori-zados para uso ganadero (la etiqueta lo debe hacer constar y tiene que llevar un número de autorización o de registro), respetando siempre la dosificación y las instrucciones de uso dadas por el fabricante. Estos productos se han de guardar en el envase original, tapado y separado de alimentos y medicamentos, de manera que no puedan acceder los animales.
• Vaciarlo completamente• Eliminar los restos de pienso mediante
una retirada física en seco• En la medida de lo posible, desprender
los restos incrustados en las paredes• Pulverizar con un desinfectante con
actividad antifúngica • Dejar secar totalmente antes de
volverlo a llenar
Para limpiar un silo
• Vaciarlo completamente• Limpiarlo con un cepillo duro y lejía
(lejía pura, sin aditivos) o con cualquier otro desinfectante apto para la desinfección del agua
• Enjuagarlo muy bien con agua abundante antes de volverlo a llenar
Para limpiar un depósito
• En primer lugar retirar la suciedad más grosera
• Eliminar la materia orgánica con agua a presión (mínimo 120 bares)
• Limpiar con agua, preferentemente caliente (40-60ºC) y jabón espumante
• Enjuagar con agua fría a presión, de arriba abajo y de atrás a delante, eliminando toda la suciedad
• Hay que tener especial cuidado con los rincones, los bebederos, los comederos y los lugares donde se acumula la suciedad.
Para limpiar las cuadras
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