MICROSCOPÍA Y FOTOGRAFÍA CIENTIFICA -...

UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS (Universidad del Perú, DECANA DE AMERICA)

FACULTAD DE BIOLOGÍA

ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE BIOTECNOLOGÍA Y GENETICA

DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE PATOLOGÍA

SILABO DE

MICROSCOPÍA Y FOTOGRAFÍA CIENTIFICA (Código: )

AÑO ACADÉMICO: 2017-I

PROMOCIÓN INGRESANTES

PRIMER SEMESTRE ACADÉMICO

CONTENIDO I. DATOS GENERALES. II. SUMILLA. III. COMPETENCIA GENERAL. IV. COMPETENCIAS ESPECÍFICAS. V. PROGRAMACIÓN DE CONTENIDOS DE LA ACTIVIDAD DE APRENDIZAJE. VI. CRONOGRAMA DE CONTENIDOS PARA LA UNIDAD PRÁCTICA. VII. PROCEDIMIENTOS DIDÁCTICOS. VIII. MEDIOS Y MATERIALES EDUCATIVOS. IX. INDICADORE, TÉCNICAS E INSTRUMENTOSDE EVALUACIÓN. X. BIBLIOGRAFÍA.

2017 I. DATOS GENERALES

1.1. Escuela Académico Profesional : Biotecnología y genética. 1.2. Departamento Académico : Patología. 1.3. Nombre de la asignatura : Microscopía y Fotografía Cientifica. 1.4. Código del Curso : . 1.5. Año de Estudios : . 1.6. Créditos : 03 1.7. Total de horas semestrales : 32 HORAS TEORÍA 32 HORAS PRÁCTICA 1.8. N° total de horas semanales : TEORÍA: 2

PRÁCTICA: 2 1.9. HORARIO DEL CURSO TEÓRICO: Lunes: 14:00 a 16:00 horas.

1.10. HORARIO PRÁCTICO : Lunes: 16:00 a 18:00 horas.

1.11. Fecha de inicio : 20 de Marzo de 2017. 1.12. Fecha de término : 10 de julio de 2017. 1.13. Duración : 16 semanas. 1.14. Pre requisito : 1.15. Responsable de la asignatura : Mag. Nancy Rojas Morán.

1.16. Docentes participantes : Mg. Nancy Rojas Morán. Biolg. Elizabeth Neira Alatrista.

1.17. Aulas : Teoría: Aulas del Instituto de Patología

Facultad de Medicina UNMSM. Practicas: Laboratorio de Practicas del Departamento de Patología. Hospital Loayza 1.18. Número de alumnos : 1.19. Relación Docente Estudiante en práctica: 1/ 5. 1.20. Actividad Académica

ACTIVIDAD CREDITOS HORAS TOTAL SEMANAS TOTAL HORAS SEMESTRE

TEORÍA 2 2 16 32

LABORATORIO 1 2 16 32

TOTAL 3 4 16 68

II. SUMILLA

El curso de Microscopía y Fotografía Científica está estructurada para proporcionar conocimientos teóricos de los fundamentos básicos de los diferentes microscopios utilizados para la investigación; así como las técnicas en el manejo de las muestras biológicas y de los equipos complementarios. El curso también brinda los conocimientos teóricos y prácticos de los fundamentos básicos de la fotografía.

III. COMPETENCIA GENERAL

Al concluir el dictado de la asignatura de Microscopía y Fotografía Científica, el alumno propone y diseña la técnica microscópica y fotográfica a utilizar para investigar y llegar a tener resultados que mejore los resultados de su investigación. basándose en los principios teóricos aprendidos, valorando y respetando los principios éticos.

IV. COMPETENCIAS ESPECÍFICAS

PRIMERA UNIDAD DIDÁCTICA MICROSCOPÍA DE LUZ

TIEMPO DIMENSIONES COMPETENCIA

CONCEPTUAL PROCEDIMENTAL ACTITUDINAL

5 SEMANAS

- Compara el fundamento y el funcionamiento de cada una de las técnicas microscópicas estudiadas y su aplicación en el diagnóstico.

- Diseña mapas conceptuales de las partes y funcionamiento del microscopio de campo claro. -Calibra un microscopio

de luz. con la lámina patrón.

-Explica los fundamentos de cada una de las técnicas microscópicas estudiadas. -Selecciona la técnica microscópica a utilizar para una determinada muestra. - Utiliza el programa ImaJ para medir células y tejidos.

- Reconoce la importancia de la luz en la obtención de la imagen en el microscopio.

- Demuestra respeto por cada muestra de estudio.

- Valora la importancia de un buen diagnóstico.

- Es solidario y responsable con las diferentes tareas asignadas.

- Muestra orden, puntualidad y exigencia en el desarrollo de sus trabajos.

- Diferencia el fundamento de cada microscopio estudiado. - Maneja con destreza y seguridad el microscopio de luz compuesto, de campo claro, oscuro, de polarización, contraste de fase y de fluorescencia. - Utiliza con seguridad y destreza el programa imageJ para obtener el tamaño de las estructuras o células vistas al microscopio.

SEGUNDA UNIDAD DIDÁCTICA MICROSCOPÍA ELECTRÓNICA


CONCEPTUAL PRODEDIMENTAL ACTITUDINAL

5 SEMANAS

- Diseña un protocolo para el procesamiento de una determinada muestra teniendo en cuenta la estructura a evidenciar.

Elabora un cuadro con las diferencias entre microscopio electrónico de luz y microscopía de transmisión y de barrido.

-Elabora fluxogramas de procesamientos

- Valora la importancia del conocimiento del procesamiento de muestras. -Demuestra respeto por la muestra en proceso. -Valora la importancia de un correcto procesamiento de la muestra en estudio.

- Diferencia y fundamenta cada uno de los pasos del procesamiento de una muestra.

de diferentes muestras biológicas.

-Discierne la técnica de procesamiento adecuada para cada muestra biológica.

-Demuestra puntualidad, presencia y cumplimiento en las tareas asignadas.

- Coopera con el grupo asignado.

TERCERA UNIDAD DIDÁCTICA FOTOGRAFÍA


CONCEPTUAL PRODEDIMENTAL ACTITUDINAL

6 SEMANAS

- Relaciona todas y cada una de las partes de un dispositivo fotográfico para conseguir una fotografía convencional, macrofotografía o microfotografía adecuada.

- Elabora un mapa conceptual con las partes y funcionamiento de una cámara fotográfica. - Dispone óptimamente los diferentes dispositivos para una correcta toma fotográfica.

- Realiza correctamente cada uno de los pasos del procesamiento fotográfico.

-Valora la importancia de los principios de la luz en la formación de la imagen en una cámara fotográfica.

-Valora la importancia de una buena fotografía en una exposición.

-Muestra disposición para el trabajo en equipo.

-Es solidario, cumplidor y tolerante con sus compañeros.

-Demuestra cumplimiento de las normas morales y éticas.

- Reconoce los diferentes tipos de cámara fotográficas e identifica las partes y su funcionamiento. - Reconoce el equipo y los reactivos utilizados en el procesamiento fotográfico. -Maneja con destreza los equipos utilizados en fotografía.

V. PROGRAMACIÓN DE CONTENIDOS DE LA UNIDAD APRENDIZAJE

CLASES TEÓRICAS INTERACTIVAS. Lunes, 14:00 – 16:00.

PRIMERA UNIDAD DIDÁCTICA

MICROSCOPÍA DE LUZ

Semana

Fecha Tema Actividad

Responsable

Aula

1 Marz, 27. Principios de Óptica: Luz. Tipos de lentes. Microscopio: Historia. Microscopio compuesto: Partes. Funcionamiento. Aplicaciones. Micrometría: Principios, Elementos.

Clase Interactiva.

Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira..

Inst. de Patología

2 Abril, 03. Microscopía de Contraste de Fase: Placas de Fase: Preparados de Fase. Fase Positiva y Negativa. Microscopía de Interferencia. Microscopía de Campo Oscuro. Microscopía de Polarización: Cuerpos Anisótropos e Isótropos. Prisma de Nicol. Polaroides. Analizador y Polarizador. Aplicación. Demostración y manejo del microscopio de polarización.

Clase Interactiva.

Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira.

Inst. de Patología

3 Abril,10. Microscopía. de Fluorescencia. Fluorescencia primaria: Fluorócromos. Fluorescencia Secundaria. Aplicaciones. Microscopio de luz ultravioleta.

Clase Interactiva.


Inst. de Patología

4 Abril, 17 Microscopía confocal. Principios y aplicaciones. Microscopio de efecto túnel. Microscopio de Fuerza.

Clase Interactiva.


Inst. de Patología

SEGUNDA UNIDAD DIDÁCTICA MICROSCOPÍA DE LUZ

Semana Fecha Tema Actividad Responsable Aula

5 .Abril, 24. El Microscopio Electrónico: Historia y Fundamentos. Microscopio Electrónico de transmisión y de Barrido.

Clase Interactiva. Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira.

Inst. de Patología

6 Mayo,08. Procesamiento de muestras biológicas para microscopía electrónica de transmisión. Procesamiento y para microscopía electrónica de Barrido. Secado por punto crítico. Cobertor iónico.

Clase Interactiva.


Inst. de Patología

7 Mayo,15. Procesamiento de material particulado: células en suspensión, bacterias y virus para microscopía electrónica de transmisión. Membranas de soporte. Coloración negativa. Sombreado. Evaporador al vacío. Réplica. Criofractura. Enzimología y Microscopía Electrónica. Inmunotécnicas. Isótopos. Radioactividad. Autoradiografía en Microscopía Electrónica.

Clase Interactiva.


Inst. de Patología

8 Mayo,22. Crioelectromicroscopía. Fundamentos. Procesamiento de muestras biológicas

Microscopio electrónico de barrido ambiental.

Clase Interactiva.


Inst. de Patología

9 Mayo,29. Primer examen teórico. Examen teórico. Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira.

Inst. de Patología.

TERCERA UNIDAD DIDÁCTICA FOTOGRAFÍA


10 Junio,05. Fotografía. Principios de Fotografía. Historia. Fotografía Médica. La cámara fotográfica: Principios, partes y tipos.

Clase Interactiva. Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira.


11 Junio,12. El Objetivo: Propiedades, tipos de objetivos. Distancia focal y ángulo de visión. Objetivos especiales: Zoom. Macro: Lentes suplementarias. La Apertura. El Obturador. Fotómetros. Profundidad de campo. Flash. Filtros fotográficos. Iluminación. Exposición. Películas. Tipos.

Clase Interactiva.



12 Junio,19. Reveladores y fijadores. Procesamiento fotográfico. Positivado fotográfico: La Ampliadora. Papel fotográfico: Tipos de papel. Cálculo de la exposición.

Clase Interactiva.



13 Junio,26. Fotomacrografía. Lentes de aproximación, Tubos de extensión y fuelle. Objetivo macro. Principios básicos de microscopía para la toma de fotografías. Tipo de imagen en el microscopio de luz. Fotografía con cámara de objetivos fijos y objetivos intercambiables. Aumento. Iluminación. Profundidad de Campo.

Clase Interactiva.



14 Julio, 03. Fotografía a color. Procesamiento: Revelado y Positivado.

Clase Interactiva.



15 Julio. 10.

Cámara digital. Clase Interactiva.



16 Julio, 12. Julio, 14

Segundo examen. Segundo examen práctico

Examen. Examen. .

Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira. Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira. .

Aula Prácticas. Hosp.A.Loayza. Aula Prácticas. Hosp.A.Loayza.

VI. PROGRAMACIÓN DE CONTENIDOS PARA LA ACTIVIDAD PRÁCTICA

Lunes, 16:00 – 18:00 am. Grupo de Práctica.


1 Marz, 27. Coordinación de prácticas. Directivas. Formación de grupos. Observación, conocimientos, manejo y cuidados del microscopio compuesto. Micrometría. Calibración de los objetivos del microscopio compuesto. Medición de organismos y estructuras

Clase Práctica.


Aula Prácticas Inst.Patología Hosp.A.Loayza.

2 Abril, 03. Demostración del manejo del microscopio de campo oscuro y del microscopio de polarización.

Clase Práctica.


Aula Prácticas. Inst.Patología Hosp.A.Loayza.

3 Abril,10. Demostración del microscopio de contraste de fases y microscopio de fluorescencia.

Clase Práctica.



4 Abril, 17 Demostración del microscopio electrónico de Transmisión.

Clase Práctica.



5 .Abril, 24. Toma de muestras para microscopía electrónica de transmisión. Fijación y lavado.

Clase Práctica.



6 Mayo,08. Deshidratación e imbibición de las muestras biológicas. Preparación de resina. Inclusión en cápsulas de gelatina y en moldes plásticos.

Clase Práctica.

Mg. N. Rojas. Biolg. E.Neira


7 Mayo,15. Obtención de cuchillas en la máquina. Preparación de las cuchillas para los cortes. Tallado de los bloques para cortes semifinos. Análisis de las cuchillas para los cortes.

Clase Práctica.



8 Mayo,22. Obtención de cortes semifinos para microscopía óptica de alta resolución; MOAR. Tinción. Análisis de los cortes. Esquemas.

Clase Práctica.



9 Mayo,29. Primer examen práctico. Examen Práctico.



10 Junio,05. La cámara fotográfica: Observación, conocimientos y cuidados. Tipos de cámaras: Partes y accesorios.

Clase Práctica.



11 Junio,12. Toma de fotografías. Tipos de objetivos: Utilización. Iluminación. Enfoque.

Clase Práctica.



12 Junio,19. Procesamiento de las películas: revelado, fijado y secado. Análisis de los negativos.

Clase Práctica.



13 Junio,26. Positivado. Copias por contacto. Análisis de los positivos.

Clase Práctica.



14 Julio, 03. Positivado. Copias por contacto. Revelado, fijado y acabado fotográfico.

Clase Práctica.



15 Julio. 10.

Lente macro. Dispositivos para fotomacrografías. Conocimiento e instalación del equipo para fotomacrografía.

Clase Práctica.



16 Julio 17 Segundo examen práctico. Examen Práctico.



VII. PROCEDIMIENTOS DIDÁCTICOS En el desarrollo del curso se utilizarán: clases magistrales, clases interactivas y clases prácticas en el laboratorio. Teoría: Clases teóricas

Serán desarrolladas en forma expositiva por el profesor, se mantendrá abierta para las preguntas y discusión de los temas con los alumnos durante el tiempo de dictado de clase. Clases prácticas en el laboratorio Las clases prácticas serán realizadas con los diferentes tipos de microscopios, los alumnos preparan y visualizarán las muestras en los microscopios de campo claro, oscuro, polarización, contraste de fase y fluorescencia. Procesarán muestras para microscopía óptica de alta resolución y para microscopía electrónica de transmisión. Reconocerán diferentes tipos de cámaras fotográficas, tomarán fotografías y las procesarán para obtener los negativos y positivos. Clases interactivas El docente participará como orientador, presentará los objetivos de la clase y los alumnos irán exponiendo por partes el tema y podrán utilizar ayudas audiovisuales. VIII. MEDIOS Y MATERIALES EDUCATIVOS

RECURSOS HUMANOS DOCENTES Profesor Responsable del curso: - Mag. Nancy Rojas Morán Profesores del curso: - Mg. Nancy Rojas Morán. Prof. Principal a TC. - Biolg. Elizabeth Neira Alatrista. Prof. Auxiliar a TP. EQUIPOS: - Proyector de multimedia. - Pizarra y tiza. - Microscopios de luz. - Microscopio Electrónico. - Ultramicrótomo. - Máquina para hacer cuchillas. -Cámara fotográfica. -Ampliadora. MATERIALES - CD. - Videos.

IX.INDICADORES, TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE EVALUACIÓN

La evaluación de los estudiantes se basa en el Reglamento del Régimen de Estudios y del sistema de Evaluación de los estudiantes de pre-grado de la Facultad de Medicina, aprobado en la IX sesión del Órgano de Gobierno de la Facultad de Medicina de fecha 16 de Febrero del 2001, ratificado por Resolución Rectoral N° 00553-R-02 y sus modificatorias, que señala:

Art. 20: La Evaluación es un sistema inherente al proceso enseñanza aprendizaje. Es continua, integral y objetiva, orientada a los objetivos de la asignatura y por lo tanto al perfil académico profesional. Art. 26 La evaluación de los conocimientos teóricos será de preferencias mediante pruebas escritas, las que por su magnitud y condición pueden ser: a. Exámenes parciales, se toman al concluir uno o más capítulos, módulos o unidades de instrucción. Pueden ser cancelatorios o no. Los contenidos de un examen cancelatorio no se vuelven a evaluar. Cuando una asignatura cuente con este tipo de evaluación, será obligatoria la aprobación de 60% (sesenta por ciento) o más de los exámenes teóricos para aprobar la asignatura. b. Exámenes finales (cuando los exámenes parciales no son cancelatorios) c. Exámenes de recuperación, se toman cuando el alumno no rindió un examen en su

oportunidad debido a alguna de las siguientes causas: o Problemas de salud, que obliguen a guarda reposo debidamente respaldos

por certificado medico o Ausencia por representar a la Universidad, la facultad o su Escuela

Académico Profesional correspondiente, con la constancia respectiva emitida por la autoridad competente.

o Por enfermedad grave o fallecimiento de familiar (padre, madre, hijos, hermanos y cónyuge)

El examen de recuperación se rendirá dentro del mismo periodo lectivo del examen rendido. d. Examen de desaprobados: Son exámenes que se dan exclusivamente cuando el alumno ha sido desaprobado en un examen y solo para el caso de los exámenes de teoría. Solamente tendrá derecho a rendir examen de desaprobados los alumnos que hayan aprobado el 50% (cincuenta por ciento o más de los exámenes teóricos. El examen de desaprobados solo puede ser rendido una vez, dentro de los diez días útiles de haber sido publicadas el total de calificaciones de la asignatura. La nota obtenida sustituye a la nota original. La calificación máxima alcanzada en estos exámenes de desaprobados no sobrepasará la nota promedio obtenida por los estudiantes que aprobaron dicho examen en el calendario normal. Notas inferiores a estas conservan su valor. Art. 27: En cuanto las habilidades prácticas., estas se evaluarán parcialmente en el capítulo, modulo o rotación respectiva y tendrán dos componentes: Práctica propiamente dicha 60% Examen práctico 40% La nota final de la práctica se obtendrá de la sumatoria de las evaluaciones parciales, siendo obligatoria la aprobación del 80% de los exámenes prácticos. La nota de la práctica propiamente dicha se obtendrá del promedio de notas de seminarios, trabajos monográficos, desempeño de actividades clínicas, conversatorios y otras actividades prácticas, dependiendo de la naturaleza de las asignaturas, las mismas que se especificarán en el syllabus. La nota del examen Práctico se obtendrá del promedio de los exámenes prácticos, los mismos que pueden ser orales o escritos. Art. 29: Cuando los alumnos NO se hayan presentado en ningún momento a clases y a ninguna evaluación programada durante el desarrollo de la asignatura, el profesor de la asignatura consignará en el acta promocional no se presentó (NSP), siendo la nota 00.

Art. 30: Los alumnos que no cumplan con haber asistido a un 70% o más de las actividades lectivas de la asignatura, independientemente de las calificaciones obtenidas en las evaluaciones rendidas será calificado en el acta promocional como desaprobado por inasistencia (DPI), equivalente a la calificación de cero. Para estos efectos, se contabiliza por separado la asistencia a las clases teóricas y a las clases prácticas, seminarios o similares, debiendo cumplirse con el 70% de asistencia a cada una de ellas. Art. 31: Los alumnos que no alcancen el mínimo de notas parciales aprobatorias especificado en el artículo 27, inciso a) y en el artículo 28, automáticamente tendrán una calificación de diez (10), aun cuando el promedio de las calificaciones resulte aprobatorio.

Durante el Curso, se aplicará un proceso de evaluación continua. Se establecerá a través de la calificación de las prácticas de laboratorio, los seminarios de fisiología serán evaluadas como parte de la práctica y las evaluaciones, parcial y final, de teoría programadas por la Universidad. Prueba de entrada: Al inicio del curso (en la clase inaugural) se tomará la prueba de entrada cuya nota será para evaluar los conocimientos previos de los cursos requisitos. Las evaluaciones teóricas se llevarán a cabo durante las semanas: novena y décimo sexta, los exámenes no son cancelatorios y consta de preguntas de alternativas múltiples y de desarrollo. Cada examen tendrá un peso de 50%. La evaluación de las clases interactivas: Se llevará a cabo en las semanas programadas en el silabo, una semana antes los alumnos harán llegar al delegado del curso el material bibliográfico recopilado para cada tema de forma electrónica y el día de la clase interactiva presentarán su PPT que les ayudará a explicar el tema de la clase. El promedio obtenido de todas las participaciones y la presentación del material bibliográfico y el ppt tendrán un valor de 20% de la parte interactiva.

Las clases prácticas de laboratorio: serán evaluadas en forma continua: Los pasos de cada clase tendrán un peso de 50% de la nota práctica. Los informes de cada clase tendrán un peso de 10%. En las fechas programadas en el silabo se tomarán los exámenes prácticos cada examen práctico constituye el 40% de la nota de práctica El promedio de pasos, informes y exámenes, constituirá el 50% de la nota Final.

Evaluaciones Porcentaje total

Evaluación de Teoría

Primer examen (Novena semana) ………………………………50%

Segundo examen (Décima sexta semana) …………………….50%

Evaluación Continua de laboratorio

Evaluación de las clases interactivas…………………………….. 20%

50%

Pasos semanales ………………………………………………30%,

informes……………………………………………………………….10%

Exámenes de laboratorio ………………………………………40%

50%

Evaluación de las Teorías - Primer examen (Novena semana) - Segundo examen (Décima sexta semana)

Mayo, 08. Julio, 17.

Evaluación de Laboratorio - Primer examen. (Novena semana). - Segundo examen. (Décima sexta semana).

Mayo, 08. Julio, 17

X.BIBLIOGRAFÍA

1. JUAN LUIS MARTINEZ.2012. Microscopia electrónica aplicada a la biología. Facultad de ciencias biológicas UNMSM.

2. COTO-MONTES, A. GONZALES, A., MARTINEZ, J. L. MARTINEZ-FRAGA, J.

MARTINEZ- NISTAL, ATOLIVIA, D. 2002. Técnicas de imágenes en Biología. Juan Luis Martínez (Ed.) Universidad de Oviedo. España.

3. ANNEQUIN A., J. Boutingny.1986. "Curso de Ciencias Físicas. Optica II". Ed.

Reverté. S.A. España.

4. BRUCE, Albert et. al.2010. "Molecular Biology of the Cell".Garland Rebishing, Inc. New York. London.

5. CASTILLO, E. N. ROJAS Y A. LOPEZ1996. La Microscopía Electrónica en el Perú.

Ed. CONCYTEC.

6. CASARTELLI J. D.1986. "Microscopía teórico-práctica". Ed. Urmo

7. DI FIORE S.H. Mariano.1986. "Diagnóstico histológico". Tomo I. Ed. El Ateneo. Argentino.

8. HALL C.E.1970. "Microscopía Electrónica". Ed. Urmo.

9. Mercer R.M. 1982. “Manual de Microscopia electrónica para Biólogos”.

REFERENCIAS DE INTERNET 13. Light microscopy (microscopy & imaging, cellular imaging core, swehsc).htm. 14. Fluorescence techniques (microscopy & imaging, cellular imaging core, swehsc).htm. 15. Advanced electron microscopy & imaging.htm 16 :\microscope history.htm 17. Electron optics philips. Bulletin, 1991 (131) dic. Photography through the

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18. Enciclopedia técnica. Fotografía práctica. 1989. Edición nueva lente. 19. Enciclopedia planeta de la fotografía. 1983. Edición planeta. España. 13. Light microscopy (microscopy & imaging, cellular imaging core, swehsc).htm 20.- Procedures in electron microscopy basic. Biological preparation techniques for TEM.

Fixatives and fixation. Jhon wiley & sons ltd.1993. Vol (5). 21. http://www.thewebfoto.com/Thewebfoto-Curso-de-fotografia-digital.pdf 22. http://www.aulafacil.com/cursos/t357/aficiones/fotografia/fotografia

http://www.thewebfoto.com/Thewebfoto-Curso-de-fotografia-digital.pdf

http://www.aulafacil.com/cursos/t357/aficiones/fotografia/fotografia

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