Nombre:

Matrícula:

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Unidad:

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Trimestre lectivo:

Horas a la semana:

Título:

Asesor Interno:

Celada Ugalde Karla

89340621

Ingeniería de los Alimentos

lztapalapa

Ciencias Biológicas y de la Salud

682 46 39

97-0

20 horas

Diseño experimental para la f i j a c i Ó n h s l 5 f en piel empleando pigmentos naturales extraídos de la flor de cempasúchil y de pimentón ( paprika ) sobre dos especies: Oreochromis mossambicus y Oreochmrnis niloticus.

Biól. Ricardo Campos Verduzco Profesor Titular "A" de Tiempo Completo Planta Experimental de Producción Acuícola Departamento de Hidrobiología Coordinador de Laboratorios de Docencia CBS UAM-I

Asesor Externo: M. en C. G.enoveva Ingle de la Mora Instituto Nacional de la Pesca Investigador Titular “ A

Lugar donde se realizará: Instalaciones de la planta experimental de producción acuícola y en las instalaciones de la planta piloto de carnes

Fecha de inicio:. 28 de agosto de 1996

Fecha de terminación: 9 de julio de 1997

Clave: lA.029.96

; , entiveva Ingle de la Mora

Karla Celada Ugalde

INDICE

Agradecimientos

Introducción

Objetivos

Metodología

Actividades realizadas

Objetivos y metas alcanzadas

Resultados

Conclusiones

Recomendaciones

Bibliografía

1

2

3

4

7

10

10

36

36

37

Universidad Aukhrna M- - lztapatapa

AGRADECIMIENTOS

+ A Industrias Alcosa S.A. de C.V. especialmente al Ing. Alejandro Omelas Cravioto por el apoyo que me brindó para la realizacion del presente proyecto.

+ A la M. en C. Genoveva Ingle de la Mora por guiarme, apoyarme y ayudarme en la mayor parte de la realización del presente proyecto.

+ AI M. en C. Jose Luis Garcia Calderón por facilitarme las instalaciones del laboratorio de Geología y Limnologia de la UAM-I.

+ A Elena Nuñez Portugal por ayudane a conseguir lo necesario para concluir el proyecto.

Karla Celada Ugalde 1

Planta Experimental de Produccidn Acuicola

El color de los alimentos es muy importante para el consumidor, ya que es probablemente la primera caracteristica percibida por los sentidos y es indispensable para una rápida identifcadón y aceptabilidad del alimento. Los consumidores primero juzgan la calidad de un alimento por su color, el cual también se puede asociar con las propiedades sensoriales. Se ha demostrado que un alimento no sabe igual si el color no es el esperado; la apariencia del alimento afecta las percepciones del olor, sabor y textura. Casi todos los alimentos poseen un color asociado, la homogeneidad del color de los productos durante todo el año es fundamental. Se podría decir que el color es más importante que el sabor en la impresión que brinda al consumidor y también ayuda a identificar el sabor, la concentración y la calidad.

La pigmentación de la piel es una caracten'stica básica en ciertos animales; en peces, aquellos con mas colorido tienen mayor demanda y consecuentemente, mayores precios. La coloración es una característica que determina la demanda de un producto. Tanaka (1978) mostró que los pigmentos ingeridos se pueden depositar en los tejidos de bs peces directamente sin modificación, dependiendo del tejido y la

, capacidad de las especies para asimilar carotenoides.

Los colores de los alimentos se deben a distintos compuestos, principalmente orgánicos, algunos que se producen durante su manejo y procesamiento, y otros que son pigmentos naturales o colorantes sintéticos añadidos. Los pigmentos son sustancias que tienen una función biológica muy importante en el tejido, algunos se extraen de su estado natural y se emplean corno colorantes en la elaboración de un gran número de alimentos.

Un aditivo colorido de acuerdo con la Food and Drug Administration (FDA) es cualquier colorante, pigmento u otra sustancia obtenida por síntesis o artificio similar o extraída, aislada o derivada, con o sin intermediarios det cambio final de identidad a partir de un vegetal, animal o mineral u otra fuente y que cuando es añadida o aplicada a los alimentos, por si misma es capaz (sola o a través de una reacción con otra sustancia) de impartir color. Dicha definición trata de englobar tanto su fuente de procedencia como las partes donde puede ser aplicado el colorante.

En Mkxico, la Secretaria de Salud enfoca su definición sobre el origen de la sustancia, caracteridndola como aquella obtenida de los vegetales, animales, minerales o por síntesis y que es empleada para impartir o acentuar el color, sin especificar su uso o aplicación.

En la producción de pescsdo se buscan especies con resistencia, rápido crecimiento y baja tasa de conversión alimenticia, es así que las mojams africanas conocidas en México como tilapias juegan un papel muy importante en la acuacultura de autoabasto y en la comercialización.

Las tilapias representaron d segundo producto de las pesquerías por volumen durante 1992, su mercado ha sido tradicionalmente en el ámbito nacional, sin embargo ante la apertura de mercado y la exigencia del consumidor por productos pesqueros con ciertas características incluyendo el color nos lleva a realizar este experimento.

Existen pocos antecedentes sobre pigmentación de tilapia con pigmentos naturales, Boonyaratpalin, M. & Unprasert, N. (1989) realizaron una investigación para determinar el efecto de diferentes fuentes de pigmento sobre el desarrollo de color, crecimiento, conversión alimenticia y sobrevivencia en tilapia roja. Las cuatro fuentes de pigmento empleadas eran: spirulina, pétalos de calendula, cabeza de camardn y cúrcuma, los cuales fueron agregados a ta dieta basal en base seca al IO%, 5%, 15% y 5% respectivamente y proporcionados a las tilapias durante ocho semanas. Las tilapias alimentadas con spirulina, pétalos de calénduk, cabeza decammín, cúrcuma y la dieta basal sin pigmento mostraran una colorad6n roja, color de llama brillante, color de llama, anaranjada y anaranjada respectivamente. La boca y la base de las aletas de las tilapias alimentadas con pétalos de calendula desarrollaron una coloración amarilla. El crecimiento fue estimulado por la cabeza de camarón e inhibido por la cúrcuma. La conversión alimenticia no presentó diferencia significativa comparada con ía dieta basal excepto a la que se adicionó cúrcuma. La velocidad de sobrevivencia fue esencialmente igual para todas las pruebas y no hubo diferencia significativa con la dieta basal.

El presente experimento se llevó a cabo en un periodo de 45 días y la finalidad fue evaluar comparativamente en lotes precomerciales sobre dos especies de tilapia et efecto pigmentante del extracto PXR-550 proporcionado por Industrias Alcosa S.A. de C.V., en la coloración obtenida en piel así como realizar pruebas de dosificación.

UniwAdad ALctbnama Mstropo#tana - lztapatepe

OBJETIVOS

General

Evaluar el color obtenido en la piel por la incorporación a la dieta de extractos pigmentantes de CaDsicum - annum en tres concentraciones sobre dos especies: Oreochmmis mossambicus roja (Peters, 1852) y Onmchmmis nilotimq gris (Linneaus, 1757).

Especificos

e Determinar la capaddad pigmentante de PXR-550 en dos espeaes- O, m o s s a ~ c u s y a mloticus en un período de 45 días.

Evaluar el color incorporado en la piel de los organismos.

Evaluar a qué tiempo de administración dei extracto pigmentante PXR-550 se obtiene el mejor cambio en coloración.

Evaluar si el color se mantiene durante el proceso de congelación.

Planta Experimental de Pmducci6n Aculcola

METODOLOGíA UTILIZADA DESCRIPCIóN DEL SISTEMA

Se realizó en un sistema semi-cerrado, formado por cuatro tinas de fibra de vidrio con una capacidad de 0.96 m3 incluyendo filtros físico-biológicos cada una, éstos contenían hule espuma y piedras de 1-3 cm. Por cada dos tinas se contaba con calentadores con termostato para mantener la temperatura adecuada a los organismos y con bombas sumergibles para tener recirculación de agua. La aireación fue proporcionada por un Blower de 8 HP canalizandola por una línea de 0.5 pulgadas y distribuyéndola por piedras aireadoras a cada una de las tinas. Diariamente se hacía limpieza de las tinas, se tomaban lecturas de temperatura y oxígeno con un oxímetro marca Yellow Springs Instrument Co. modelo 57 y se recambiaba el 20 % del volumen de agua.

DISEÑO UPERIMENTAL

El experimento se basó en la incorporación de un extracto pigmentante saponificado (PXR-550 proporcionado por Industrias Alcosa S.A. de C.V. derivado del chile Camicum annum con un porcentaje activo de 0.5 *AI que contiene capsantina, p-caroteno, luteína, zeaxantina y diversos ox¡-carotenoides) a la mezcla balanceada para tilapia adquirida en Alimentos de Alta Catidad El Pedregal S.A. de C.V. la cual presentaba los porcentajes mostrados en la Tabla 1 :

,. . , .

Se manejaron 37 organismos de la especie O. niloticus y 12 organismos de la espede O_ mossambicus los cuales provenían de granjas de producción en los estados de Oaxaca y Veracruz respectivamente. Basándonos en el diseño experimental los lotes se homogeneizaron de acuerdo a las características de edad, talla y peso como se representa en la Tabla 2.

. . .,

ALIMENTO

O Elaboración del pelet Se him en el Instituto Nacional de Nutrición Salvador Zubirán; se contaba con la mezda alimenticia

balanceada para Tilapia, se pesaron 4 partes de 5 kg. cada una las cuales se incorporaron con el pigmento respectivo a cada concentración empleando una mezcladora Hobart tomándose la decisión de agregarle un 5% de agua para facilitar el proceso de reconformación del pelet. Posteriormente cada tratamiento se peletizó quedando de un diámetro de 2.4 mm., al recibido se cribaba con tamices para separar el harina la Cual se regresaba a la peletizadora; todo el pelet se introdujo en el secador de charolas marca APEX Construction LTD y modelo 48BE de la Planta Piloto de Frutas de la UAM-I a una temperatura de 45 OC durante 8 horas, posteriormente se volvió a cribar y se metió en bolsas negras para prevenir degradación del pigmento por luz. (Fotos 1,2,3 y 4)

UnivelBiCd Aub5noma MetmpHam - lztapalapa

Fotos 1,2,3 y 4. Mezclada de la harina balanceada para tilapia con et extracto pigmentante PXR-550 y con el agua, y secado

AI alimento elaborado se le hizo un análisis bromatológico en el laboratorio de Industrias Alcosa S.A. de C.V. siguiendo la metodología descrita en la Association of Official Agriculture and Chemistry (A.O.A.C.1975).

O Administración del pelet Considerando la talla de los organismos se les proporcionó el 3% de la biornasa total al día dividido

en cuatro raciones, éstas se daban cada tres horas, siendo la primera a las 9:00 hrs. Cabe mencionar que la primera y última ración correspondían cada una al 3Ooh; la segunda y la teaera cada una al 20%, lo anterior para garantir que consumioren l a r mayor parte d d alimento. El alimento sobrante se sifoneaba diariamente para determinarle humedad empleando para esto una mufla marca Felisa modelo 350 con temperatura controlada, una balanza analítica marca Ohaus modelo GT4800 con una precisión de i: .Otgr., un desecador, y cápsulas de porcelana.

MANEJO DE ORGANISMOS Quincenalmente se realizaron pa~metros morfornéticos a cada uno de los organismos extraídos de

las tinas los cuales fueron pesados en una balanza analítica marca Ohaus modelo GT4800 con una precisión de 2 .O1 gr. Los datos de biornasa por tina se manejaron en cada período determinando incremento en peso y reajustando la tasa de alimentacibn al 3% de la biomasa total.

Karta Celada Ugslde S i

MEDlCIdN DE COLOR

Quincenalmente y al azar se sacrificaban tres organismos grises y uno rojo de cada tina, en el lote testigo sólo dos organismos grises y uno rojo, midiéndoles color en piel con un fotosensor portátil de reflectancia marca Minolta Chroma Meter (L* representa luminosidad, a* rojos y b* amarillos) modelo CR-210 a todos en el mlsmo lugar como se indica en la foto 5.

Foto 5. Sitio en donde se midieron las v i

Los organismos sacrificados fueron etiquetados y congelados a -4% en la Planta Experimental de Producción Acuícota marca Frigidaire modelo CF15EWO para realizar la medición de color a diferentes tiempos de congelamiento.

Quincenalmente al pelet, se le determinaba la concentración de pigmento por H P K en el laboratorio de Industrias Alcosa S.A. de C.V. con la finalidad de verificar la degradación del mismo.

Para el procesamiento de toda la información generada durante la parte experimental se emplearon Microsoft Word y Microsoft Excel para Windows-95, y para el manejo estadístico se empleó el paquete Stadistics versión 5.0.

6

I

Universidad Amnoma Metropolitans - lztapalapa 1 1

ACTIVIDADES REALIZADAS

Etaoa ore-ooeratoria

Karla Celada Ugalde 7

Planta Experimental de Produccidn Aculcola

Etapa exnerimental (Febrero, Marzo y Abril)

Karla Celada Ugalde 8

Universidad Autdnoma Metropolitana - Iztapalapa

Karla Celada UgaMe 9

c

OBJETlVOS Y METAS ALCANZADOS

Los objetivos planteados inicialmente fueron cumplidos con excepción de la evaluación del comportamiento del color durante el proceso de congelación, logrando concluir el experimento con buenos resultados considerando que el presente trabajo fue planeado para evaluar la profundización posterior sobre el tema.

Con respecto a la manipulación de color en tilapia a través del uso de extractos pigmentantes naturales incorporados en el alimento, existen muy pocas investigaciones (Boonyaratpalin, et al. 1989). No obstante lo anterior, los resultados que a continuación se presentan proporcionan indicadores del comportamiento del color a través del empleo de extractos pigmentantes naturales en el alimento para tilapia.

, ANALISIS POBLACIONALES

DE CRECIMIENTO.

RESULTADOS

Para evaluar si las diferentes concentmaones del extrado pigmentante PXR-550 incorporados en el alimento para las especies O. niloiicus y O. mossambicus producían algún efecto en la palatabilidad del mismo se realizaron parrirnetros morfométficos de los organismos en cuatro tiempos experimentales (inicio, a los 15, a los 30 y a los 45 dias) obteniendo los datos mostrados en las tablas 3, 4, 5 y 6 y esquematizados en las grAfica 1,2, 3 y 4.

Grtdica l. L m d promedio (cm) de O. nibticus por tratamiento durante el perlodo qmirnental

22 40.7appm +2b7.93 pp *

Universidad AuWnoma MetrcpoMana - lztapalapa

N.O. 0.m no d l m t b k

Grafica 2. Longitud promedio (cm) de O. mossambicus por tratamiento durante el periodo experimental

22

Ie40.78pprn +267.93ppm(:

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O 15 30 45

Karla Celada Ugalde 1 1 ".. . ,

Grafiw 3. Pesa promedio (gr) de 0,niMicUs par tratamiento durante el período experimental

I S

h h M a d Aut6noma Metropolrtana - lztapakpa

GrAfica 4. Peso promedio (gr) de 0.rnossembiwg por htamiento durante el perfodo experimental

Karla Celada U g a k 13

Planta Experimentat de Produccien Aculcola

CONVERSldN ALlMENTlClA

Tabta 7. Valores de incremento en peso promedio y factor de conversidn alimentlda por tratamiento y tiempo durante el

Con lo anteriormente expuesto y como se observa en la tabla 7 , el factor de conversión alimenticio !,F.C.A.) a los 15 y 30 días del período experimental se mantuvo en un rango entre 1.3 y 1.9 presentándose el valor mas bajo en el tratamiento 4 correspondiente at testigo (sin extracto pigmentante PXR-550). Estos resultados muestran que la incorporación del extracto pigmentante PXR-550 intluyó negativamente en la conversión alimenticia. A los 45 días del período experimental la evaluación del factor de conversión alimenticio (F.C.A.) resultó negativa por la presencia de factores que influyeron en la ingesta del alimento percatándonos que al disminuir la densidad de organismos se presenta una tenitoriedad marcada por parte de las especies, aunado a una disminución notable en el consumo del alimento.

En relación al peso ganado (%) para los primeros 15 días del período experimental se obtuvo un incremento entre 23-25% y a los 30 días entre 1&29%. Se observó nuevamente que el porcentaje mas alto se presentó en el tratamiento 4 (sin extracto pigmentante PXR-550) lo que confirma que la adición del extracto pigmentante PXR-550 al alimento influyó negativamente en el crecimiento de los peces. A los 45 días del periodo experimental el porcentaje de peso ganado disminuyó con respecto a los dos tiempos anteriores, no obstante el tratamiento 4 (sin extracto pigmentante PXR-550) se mantuvo como el mas alto.

E3 manejo estadístico de la información en relaa6n at factor de conversión alimenticio (F.C.A.) y al peso ganado (%) de los organismos en las diferentes concentraciones del extracto pigmentante PXR-550 incorporadas en el alimento no se realizó debido a que el número de ejemplares fue disminuyendo durante et período experimental (O. níloticus de 10 a 3 y O. mossarnbicus de 3 a 1). Por 10 anteriormente expuesto, se decidió que con el tamaño de muestra manejado el análisis estadístico no presentaría confiabilidad alguna.

Karla Cetada Ugakle 14

Universidad Autbnoma MetropdiEemr - tztapalapa

DE MORTALIDAD

A los 33 días del pen'odo experimental los organismos del tratamiento 1 (40.78 ppm) murieron, lo cual se atribuyó a dos posibles causas: 1. Una averia en el sistema de calentamiento del agua ocasionó el incremento de la temperatura hasta los

40 "C (la especie tiene un límite superior de tolerancia entre los 37OC y los 42OC) y 2. Debido a que los organismos presentaban pérdida de escamas se decidió administrarles permanganato

de potasio a una concentración de 5 ppm. Sin embargo, esta sustancia a parte de ser un oxidante muy fuerte se considera muy agresivo para los peces a la vez que es muy tóxico, aumentando la toxicidad con la temperatura. Se debe tener precaución si existe poca materia orgánica en el estanque, en este caso hay que disminuir la dosis a administrar (Snieszko, S.F.) La aplicación del químico debe ser conducida con gran precaucidn para evitar mortalidad en los peces; la solución madre debe ser aplicada gradualmente y el agua debe estar intensamente aireada antes de la aplicación. (LázaroGhávez Elba). Al finalizar el tratamiento se recomienda transferir a los peces a agua limpia para evitar mortalidad: el agua debe ser removida por dilución gradual. (Van Duijin, C. Jr).

ANALISIS NUTRICIONALES DEL ALIMENTO ELABORADO

Se realizó el analisis bromatológico para constatar si durante el proceso de reconstitución del petet se presentaron modificaciones en los nutrimentos pudiéndonos percatar que esta fue mínima y que por lo tanto se trabajó con una dieta similar a la utilizada comercialmente.

La pérdida del extracto pigmentante PXR-550 en el alimento durante el período experimental se presenta en la tabla 9, donde se observa una pérdida media de un 27% entre los tres tratmientos experimentales y las cuatro evaluaciones de concentración del extracto pigmentante PXR-550. En relación al tratamiento 4 las concentraciones encontradas se atribuyen a la presencia de astaxantina encontrada en la harina de camarón, ingrediente principal en relación al aporte proteico de la dieta.

Grafica 5. Degradaci6n del exlracto pigmentante en el alimento de l o s diferentes tratamientos durante el periodo experimental.

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I

Karla Celada Ugalde 1s

PIGMENTANTES

COLORlMETRfA PERtODICA

A los 15, 30 y 45 días del período experimental se sacrificaron tres organismos grises y un rojo extraídos al azar de los cuatro tratamientos. Los cambios en relación a los sitios de depositaci6n del extracto pigmentante PXR-550 observados en la especie O. mossembicus durante el período experimental fueron: incremento en la coloración de la boca, parte de la c a b e z a , parte superior del cuerpo y de les aletas caudal, dorsal y pélvica. El mismo comportamiento se obsewó en la especie O. niloticuq difiriendo de la especie Q. mssambicus en la tonalidad de rojo obtenida (rojo oscuro intenso como guinda). Ver fotos 6, 7 y 8

Fotos 6,7 y 8. Coloracih adquirida de todos l o s tratamientos durante d perlodo ewperimental

COLORlMETRiA POST-COSECHA

Durante el proceso de congelación se observó que en la especie O. niloticus el tono guinda adquirido se intensificó provocando una apariencia muy desagradable ya que parecía que estaban golpeados, y en la especie O. mossambicus se observó el mismo comportamiento pem con menor intensidad y la apariencia del organismo era aceptable. (Fotos 9, 1 O y 11)

15 días de pigmentación y 45 diaS de cingelación

30 dias de pigmentación y 30 dias de congelación

45 dias de pigmentacibn y 25 di8S de-&mgelación

17 I

'

Planta Experimental de Pruducci6n Acuícola-

ESTADíSTICOS

Para el manejo estadístico de los resultados obtenidos, mostrados en las tablas 17 a la 24 se empleó el paquete Stadistics versión 5.0. A los datos de cada una de las especies utilizadas se les aplicó la prueba de homogeneidad de varianza. ANOVA de una cola y contraste de medias.

ESPECIE O. niloticus

Los resultados de la medición instrumental de los valores de color L*a*b* CIE (1976) se muestran en las tablas 11, 12 y 13 y están esquematizados en las gráficas 6, 7, 8, 9 y IO. En general entre los cuatro tratamientos analizados las variables de color a*(rojos) y b*(amarillos) presentaron diferencia estadísticamente significativa p<0.05 en relación a la variable de color L* (luminosidad) que no presentó diferencia estadísticamente significativa p>0.05. Sin embargo respecto al período experimental las tres variables de color L*a*b* presentaron diferencia estadísticamente significativa ~ ~ 0 . 0 5 .

Se presentó diferencia estadísticamente significativa p<0.05 entre las variables de color L*a*b* CIE (1976) entre las tres concentraciones del extracto pigmentante PXR-550 y el testigo. Con respecto a la variación de color en las variables L*a*b* CIE (1976) entre los cuatro tiempos del período experimental en los tratamientos 1 y 2 a los que se les incorporaron las dosis de 40.78 ppm y 100.20 ppm del extracto pigmentante PXR-550 respectivamente presentaron diferencia estadísticamente significativa ~ ~ 0 . 0 5 en las tres variables de color L*a'b*, y en el tratamiento 3 al que se le incorporó la dosis de 267.93 ppm del extracto pigmentante PXR-550 y en el testigo la diferencia estadísticamente significativa p<0.05 se presentó en las variables L* y b* pero no en la variable a*.

ESPECIE O. mosambica

Los resultados de la medición instrumental de los valores de color L*a*b* CIE (1976) se muestran en las tablas 14, 15 y 16 y están esquematizados en las gráficas 11, 12. 13, y 14. En esta especie no se presentó diferencia estadísticamente significativa con una p>0.05 entre las variables de color L*a*b* CIE (1976) entre las tres concentraciones del extracto pigmentante PXR-550 y el testigo. Sin embargo con respecto al período experimental las variables de color L* y b* presentaron diferencia estadísticamente significativa p<0.05 y la variable de color a* no presentó diferencia estadísticamente significativa p>0.05.

No obstante, con respecto a la variación de las variables de color de cada tratamiento con respecto al tiempo de ingestlón se encontró que en el tratamiento I donde se incorpori, la dosis de 40.78 ppm del extracto pigmentante PXR-550 no se presentó diferencia estadísticamente significativa p>0.05 en la variable b* (amarillos), pero sí se detectó diferencia estadísticamente significativa con una p<0.05 en las variables L* (luminosidad) y a* (rojos),

En los tratamientos 2 y 3 donde se incorporaron las dosis de 100.20 ppm y 267.93 pprn del extracto pigmentante PXR-550 respectivamente y en el testigo se encontró diferencia estadísticamente significativa p<0.05 con respecto a las tres variables de color L*a*b'.

Con respecto a los datos de los peces sometidos al proceso de congelación, no se analizaron estadísticamente debido a la poca información disponible para su manejo.

Karla Celada Ugalde 18

Universidad Aut6noma Metropoiitana - lztapalepa

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Karla Celada Ugalde 19

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7. (hvortarniento de la variable de color b' en la espacie O. ni/oticus de los cuatro tratamientos durante el periodo experimental.

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Universidad Aut6noma Metropolkana - lztapalapa

Tabla 13.Valores promedio de la variable de color L* en la piel de la especie O. ni/oticus para cada tratamiento durante el

G r a b 8. Comportamiento de la variable de c o l o r L* en la especie O. niloticus de l o s cuatro tratamientos durante el período experimental.

iBR1

Tntsm*nlo 1 (40.78 ppm PXR550)

Karla Celada UgaMe 21

Planta Experimental de Producd6n Acuicola

Grhfica 9. Comportamiento de las tres variables de color L'a'b' en la especie O. niloticus de los cuatro tratamientos.

16 I

Kah Celada Ugalde 22

Universidad Autdnoma Metropolitana - lztapalapa

G ~ f i c a 10. Comportamiento de las tres variables de color L'a'b* en la especie O. ndoticus de cada uno de los tratamientos durante el perlodo experimental.

i

Planta Expenmental de Pmducci6n AarIcola

Tabla 14.Valores promedio de la variaMa de cdor a* en la p i e l de la especie O. rnosembicus para cada tratamiento durante

GrN~ca 11. Compottamiento de la variable de color a' en la especie O. rnosambicus de l o s cuatro tratamientos durante el . periodo experimental.

Universidad moms Metropolitana - lztapalapa

TaMa 15.Valores promedio de la variable de color b' en la pid de la especie O. mosambicus para cada tratamiento durante el

Gráfica 12. COmPOrtamiMto de la variable de color b' en la especie O. mosambicus de los cuatro batamientos durante el período experimental.

m T r a t a m i i 1 (40.78 ppm PXR-550)

naw Tratamiento 2 (100.20 ppn PXR-550)

.....

Karla Celada Ugalde 25

Planta Experimental de Producción Acuicoia

Tabla 16.Valores promedio de la variable de cobr L' en la piel de la especie O. rnosembicus para cada traFemiento durante

N.D. DaM no d ~ l b l e

, Gráfica 13. Comportamiento de la variable de cdor L' en la especie p. rnosambicus de los cuatro tretamientos durante el período experimental.

T8w

TrsLamienpo 2 (I 00.20 ppm PXR-550)

Trabmien(o 3 (287.93 Ppm PXR-590) Trata- 4 fl-)

Karla Celada U@& 26

Universidad Autdnoma Metropolitana - lztapalapa

Grafica 14. Comportamiento de las tres variables de d o r L+a'b+ en la especie O. rnosambicus de l o s cuatro tratamientos.

4, I m, I

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Karla Celada Ugalde 27

GrMca 15. Compoitamiento de las tres variables de color L*a'b* en la especie O. rnosambicus de cada uno de los tratamientos durante el perlodo experimental.

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Universidad Aut6noma Metropolitana - lztapalapa

En el manejo de la información de color con respecto a su variación durante el período experimental para la especie O. ni/oticus en relación a los valores de a* solo se encontró un incremento paulatino con respecto al tiempo en los tratamientos I y 2 a los que se les adicionaron 40.78 ppm y 100.20 ppm del extracto pigmentante PXR-550 respectivamente (gráfica 6), con respecto a los valores de b* se detectó una disminución paulatina con respecto al tiempo en todos los tratamientos experimentales (gráfica 7), se refleja que a los 15 días de ingesta del alimento se presentaron los valores mas bajos de L* en los cuatro tratamientos experimentales (grdfica 8).

En el manejo de la información de color de la especie O. niloticus con respecto a su variación en relación a la concentración del extracto pigmentante PXR-550 manejada durante el período experimental se observó una disminución de los valores de a* al aumentar la concentración, un comportamiento inverso se presentó con los valores de b* y uno irregular en los valores de L* (gráfica 9).

En el comportamiento de las variables de color L*a*b' CIE (1976) considerando solamente el tiempo de ingestión se observa un aumento de los valores de a*, una disminución en los valores de b* y un comportamiento irregular en los valores de L* (gráfica 10).

Dentro del análisis anteriormente expuesto, no se incluyó el tiempo 4 correspondiente a los 45 dias del período experimental debido a lbs problemas mencionados en la parte de conversión alimenticia.

En el manejo de la información de color con respecto a su variación durante el período experimental presentado en las gráficas 11, 12 y 13 para la especie O. mossambicus refleja un comportamiento irregular no predecible con respecto al tiempo de ingestión en las variables de color L*a*b* CIE (1976).

En el manejo de la información de color de la especie O. mosambicus con respecto a su variación en relación a la concentración del extracto pigmentante PXR-550 manejada durante el período experimental se observó un incremento paulatino de los valores de a* y b*, y una disminución en los valores de L* (gráfica 14).

En el comportamiento de las variables de color L*a*b* CIE (1976) considerando solamente el tiempo de ingestión se observa un incremento paulatino en los valores de a*, un comportamiento irregular en los valores de b* y una disminución en los valores de L* (gráfica 15).

Es importante destacar las diferencias encontradas en la respuesta de las variables de color L*a*b* CIE (1976) entre las dos especies manejadas.

Karla Celada Ugalde 29

Planta Experimental de Producción Acuicola

Tabla 17. Valores de las variables de color L'a'b' de la especie O. niloticus del tratamiento 1 (40.78 ppm del extracto

1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

1 1 1 1 1 1 2 2 2 2 2 2 2 2 2 3 3 3 3 3 3 3 3 3

1 2 3 4 5 6 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 1 1 2 2 2 3 3 3

1 1 I 1 1 1 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3

64.84 63.1 O 64.75 62.03 65.72 67.31 61.14 62.13 62.45 50.42 47.93 46.07 53.77 54.53 54.57 56.6 53

55.26 60.86 59.1 58.59 56.97 56.36 55.89

-3.65 -2.19 -1.43 -3.78 -1.64 -0.57 -2.06 -1.26 -1.50 2.23 7.59 0.85 2.89 2.89 2.99 1

0.61 0.7 0.95 -0.02 0.05 1.96 0.95 1.87

6.18 6.96 4.67 7.56 8.12 6.88 4.00 3.89 4.24 3.49 2.50 2.46 4.62 5.30 5.15 0.53 -0.22 0.24 0.36 -0.62 -0.81 -0.18 -0.49 -0.36

Karta Celada UgaMe 30

Universidad Autdnoma Metropolitana - lztapalapa

Tabla 18. Valores de las variables de color L*a'b' de la especie O. niloticus del tratamiento 2 (100.20 ppm del extracto

Tratamiento Tiempo Pez a* 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2 2

1 1 1 1 1 1 2 2 2 2 2 2 2 2 2 3 3 3 3 3 3 3 3 3 4 4 4 4 4 4 4 4 4

1 2 3 4 5 6 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 1 1 2 2 2 3 3 3

1 1 1 1 1 1 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3

65.36 54.03 63.43 58.09 56.56 55.67 52.52 51.55 51 .!S 49.80 50.18 49.74 53.28 53.96 53.08 53.71 53.79 53.53 55.77 58.21 55.46 55.57 55.16 54.76 63.89 61.56 60.99 54.06 52.04 52.63 61.91 59.87 60.44

-3.79 -0.77 -2.60 -2.22 -2.27 -0.88 -0.26 0.02 0.65 0.70 0.58 0.69 -1.62 -1.63 -1.35 1.9 1.88 1.87 0.16 -0.44 0.27 2.55 2.04 1.44 -0.22 -0.58 0.59 -0.38 - 0 . 6 4

-0.88 0.01 -1.32 -0.91

b* 5.75 4.74 5.15 7.58 6.37 4.98 3.73 3.49 3.74 3.73 3.78 3.85 2.65 2.85 2.81 2.45 2.08 2.1 1 1.71 2.29 1.27 1.17 0.75 0.17 17.08 16.31 16.05 13.73 12.82 13.16 17.18 19.71 17.7

Karla Celada Ugakie 3 1

Planta Experimental de Produccidn Aculcola

Tabla 19. Valores de las variables de color L'a'b' de la especie O. niloticus del tratamiento 3 (267.93 ppm del extract0 gmentante PXR-550) durante el perlodo experimental. Tratamiento Tiempo Pez Medici6n L*

3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3

1 1 1 1 1 1 2 2 2 2 2 2 2 2 2 3 3 3 3 3 3 3 3 3 4 4 4 4 4 4 4 4 4

1 2 3 4 5 6 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 1 1 2 2 2 3 3 3 1 1 1 2 2 2 3 3 3

I I 1 1 1 1 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3

60.72 66.59 51.58 69.66 52.99 58.04 55.42 54.35 54.92 53.88 53.80 53.83 59.19 59;OO 58.13 58.69 58.74 60.02 61.26 61 .O5 60.24 58.47 59.17 58.86 51 .O1 51.95 51.4 52.47 52.23 51.37 55.81 55.36 55.5

a' 0.04 -1.47 -1.79 -1.25 -2.86 -1.56 -1.40 -1.53 -1.37 0.25 -0.34 0.32 1 .O5 0.30 1.13 -1.31 -1.17 -2.06 0.35 0.22 0.32 -1.92 -0.99 -1.88 1.68 0.62 1 .O5 -3.57 -3.39 -2.49 -0.51 -0.33 -0.61

b' 3.39 8.41 4.1 1 7.66 6.47 6.72 5.76 5.07 5.50 4.54 4.26 4.62 6.78 6.31 6.03 5.03 5.15 5.06 4.14 5.41 4.29 3.13 1.85 2.47 15.29 15.47 15.28 15.09 15.07 15.37 16.6 16.8 16.5

Karla Celada Ugalde 32

Universidad Aut6noma Metropolitana - lttapalapa

Tabla 20. Valores de las variables de color L*a'b' de la especie O. niloticus del tratamiento 4 (testigo) durante el periodo " - -

Tratamiento Tiempo Pez Medición L' a' b' 4 1 1 1 67.67 -1 .o0 6.90 4 1 2 1 69.24 -1 .O8 7.79 4 1 3 1 66.93 -2.76 11.12 4 1 4 1 66.33 -0.51 5.08 4 1 5 1 64.40 I S7 7.05 4 2 1 1 59.03 -0.52 -0.58 4 2 1 2 57.67 -1 .?9 -1.37 4 2 1 3 57.04 -1.73 -0.30 4 2 2 1 59.36 -2.58 1.65 4 2 2 2 57.96 -3.26 0.81 4 2 2 3 57.43 -3.10 1.06 4 3 1 1 54.64 0.31 0.22 4 3 1 2 54.85 0.45 O. 16 4 3 1 3 55.46 0.27 0.05 4 3 2 1 56.88 -2.29 1 .O? 4 3 2 2 55.85 -2.14 0.64 4 3 2 3 56.24 -1.72 1.24 4 4 1 1 41.32 -1.67 14.06 4 4 ? 2 44.23 -1.52 15.39 4 4 1 3 43.88 -1.88 14.9 4 4 2 1 51.18 -3.47 15.99 4 4 2 2 50.69 -3.2 15.69 4 4 2 3 49.97 -3.55 14.96

"7""

I

ptanta Experimental de Produccidn Acuhla

.y;-

..

Tabla 22. Valores de las variables de color L*a'b* de la especie O. mossambicus del tratamiento 2 (1 00.20 ppm del extracto

e , : , . ' ,

. .

Universidad Aut6noma Metropolitana - lztapalapa

Tabla 23. Valores de las variables de color L*a'b' de la especie O. mossambicus del tratamiento 3 (267.93 ppm del emCt0

Tabla 24. Valores de las variables de color L'a'b' de la especie O. mossambicus del tratamiento 4 (testigo) durante el período 1 - Tratamiento Tiempo Pez Medición L* a* b'

4 1 1 1 73.26 0.47 6.30 4 1 2 1 83.35 -1.35 3.92 4 1 3 I 79.27 -1.65 6.76 4 2 1 1 74.57 -2.36 0.47 4 2 1 2 73.43 -2.81 -0.41 4 2 1 3 73.36 -2.96 -0.39 4 3 1 1 67.05 -1.13 3.6 4 3 1 2 67.08 0.93 4.52 4 3 1 3 66.46 -0.47 4.81 4 4 1 1 68.25 1.17 21.36 4 4 1 2 69.63 1.86 22.57 4 4 1 3 69.51 1.42 22.1 1

Karla Celada

Planta Experimenta¡ de Producci6n Acuícola

CONCLUSIONES 6 De los datos derivados de la presente investigación se observó un efecto negativo en el factor de

conversión alimenticio (F.C.A.) y en el peso ganado (%) en los tratamientos donde se incorporó el extracto pigmentante PXR-550 en comparación con el testigg.

6 Las tres concentraciones del extracto pigmentante PXR-550 no presentaron diferencia estadísticamente significativa p>0.05 con respecto a los valores de color obtenidos. Sin embargo, sí se encontri, diferencia entre cada tratamiento con respecto al período experimental, no obstante el color obtenido mejora la apariencia de la especie O. mossambicus por lo que es conveniente continuar la investigación sobre esta misma. La especie O. niloticus presentó una tonalidad que no favorece la apariencia.

+ La pérdida del extracto pigmentante en el alimento estaba prevista dadas las características del mismo; paralelamente están trabajando algunos investigadores sobre el micmencapsulado d d pigmento para evitar degradación del mismo.

+ Los datos obtenidos fueron manejados estadísticamente, no obstante que el tamaño de muestra no fue representativo dada la poca información existente sobre el tema. Por lo tanto los resultados solo proporcionan un indicador del comportamiento de las variables de cdor an las muestras analizadas.

RECOMENDACIONES

+ Probar diferentes pigmentos para conocer la respuesta de color antes de dar inicio a un estudio de evaluación de color con diferentes concentraciones.

4 Continuar el estudio con la especie O. mossambicus, aumentar el tamaño de muestra, marcar a cada uno de los organismos para que puedan ser identificados y medidos durante d período experimental, y no sacrificados para la medición de color en piel.

4 Evaluar la concentraci6n de extracto pigmentante depositada en el músculo y en la piel.

4 Evaluar el color obtenido.

4 Microencapsular el extracto pigmentante para evitar degradación y así mantener la concentración deseada durante todo el período experimental. r

+ Alargar el período de experimentación hasta los 60 días para observar si se presenta saturación del extracto pigmentante.

4 Independientemente de que el proyecto se diseñe para un estudio piloto, deberá considerarse un muy buen diseño experimental.

.; ,_ .. L

Karla Cehda Ugalde 36

Universidad Aut6noma Metropditana - lztapalapa

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Karla Celada Ugglde 37