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Gerencia Técnica / Programa de Investigación Científica / Septiembre de 2004

ISSN - 0120 - 0178ISSN - 0120 - 0178

MANEJO DE FOCOS DE LLAGAS RADICALESEN CAFETALES

René Alejandro Gutiérrez-Gonzáles*; Bertha Lucía Castro-Caicedo**; Carlos Alberto Rivillas-Osorio***

Las denominadas “Llagas Radicales del Café”, ocasionadaspor los patógenos del suelo

Rosellinia bunodes Berk y Br. y R.pepo Pat., son consideradas de im-portancia económica en la zona

* Estudiante, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Programa de Agronomía. Universidad de Caldas, Manizales.** Investigador Científico I. Fitopatología. Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé. Chinchiná, Caldas, Colombia.*** Asistente de Investigación. Fitopatología. Centro Nacional de Investigaciones de Café, Cenicafé. Chinchiná, Caldas, Colombia.

y en muchos casos por la inutiliza-ción de los suelos contaminadospara la siembra de cualquier tipo deespecie perenne debido al ampliorango de hospedantes que facilitanla presencia de estos hongos (2, 4).

La frecuente presencia de focos deinfección tanto en café como enespecies asociadas a éste han moti-vado la realización de trabajos deinvestigación a nivel de laboratorio,invernadero y campo con el objeti-vo de encontrar un adecuado yefectivo manejo del problema en elcampo, que sea rentable, sosteni-ble y ecológico (1, 5). Los resulta-dos promisorios de dichos traba-jos fueron evaluados en el presen-te experimento en campo, bajocondiciones de infección natural,con el fin de obtener información

cafetera colombiana, debido a queprovocan la muerte de los cafetos,especialmente cuando se estable-cen sobre antiguos bosques o des-pués de la eliminación de árbolesde sombrío(4, 6).

El impacto económi-co de Rosellinia

está repre-sentado en

la dismi-n u c i ó nprogresi-va delnúmerode árbo-les pro-

ductivos,los costos

del manejo deesta enfermedad

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sobre alternativas confiables para el manejo de las llagas, que sirven paradisminuir el avance entre las plantas, la recuperación de áreas afectadasy garantizar la supervivencia de las plantas resembradas en los lotes afec-tados.

MATERIALES Y MÉTODOS

El experimento se estableció en unafinca cafetera en el municipio dePalestina (Caldas), en un lote contopografía plana, conformado por700 árboles de café varie-dad Colombia de 6 añosde edad. Inicialmente, seconstató la presencia delhongo en el lote, dondese identificaron aproxima-damente 400 árboles decafé afectados por llaganegra (Roselliniabunodes).

Las unidades experimenta-les estuvieron conforma-das por árboles que pre-sentaban amarillamiento,árboles muertos y toco-nes o residuos vegetalesde árboles muertos. Encada unidad se verificó lapresencia del patógenoen la raíz y se caracterizóel daño en cada planta,empleando el criterio declasificación sugerido porCastro (3). La proporción dedaño en las raíces osciló en-tre un 84,8% y 93,6%,notándose claramente lasestructuras del hongo en for-ma abundante tanto en lasraíces como en el cuello dela planta (Figura 1).

F igura 1a y b) Plantas de café variedad

Colombia infectadas naturalmentepor Rosellinia bunodes. c) Signos

del patógeno como puntos negrosen el cuello de la planta.

C

A

B

3

El análisis de varianza (Pr>F=0,7932) y la Prueba de Tukey al 5% indicaronque todos los sitios a tratar eran homogéneos en cuanto a la presencia delpatógeno. Por consiguiente, la asignación de los tratamientos o sistemasde manejo fue completamente aleatoria, con 25 sitios por cada tratamien-to. Los sistemas de manejo de la enfermedad se presentan en la Tabla 1.

Tabla 1. Sistemas de manejo de Rosellinia bunodes en sitios de infección donde se establecieron las plantas

SIN SOLARIZACIÓN CON SOLARIZACIÓN

Siembra de plantas posterior a la solarización(Sistema 2)

Aplicación del hongo biocontroladorTrichoderma koningii posterior a la solarización

y siembra de plantas (Sistema 4)

Siembra de plantas previamente asociadas a lamicorriza Glomus manihotis posterior a la

solarización (Sistema 6)

Aplicación del fungicida Topsin® posterior a lasolarización y siembra de plantas (Sistema 8).

Testigo de referencia: Siembra inmediata de plantas sobre sitios sanos (Sistema 9)

Siembra inmediata de plantas (Sistema 1)

Aplicación del hongo biocontrolador Trichodermakoningii y siembra de plantas (Sistema 3)

Siembra inmediata de plantas previamenteasociadas con la micorriza Glomus manihotis

(Sistema 5)

Aplicación del fungicida Topsin® y siembra deplantas (Sistema 7)

En todos los casos se procedió a laerradicación del árbol y limpieza ri-gurosa del hoyo, eliminando los tro-zos de raíces y raicillas, y depositán-dolos en estopas o bolsas para que-marlos. Los dos sistemas principa-les de manejo fueron consolarización (exposición a los rayosdel sol) y sin solarización de los si-tios afectados durante un períodode 6 meses (Figura 2).

En los sitios previamente asigna-dos a los sistemas de manejo con

solarización después de la erradi-cación del árbol afectado (siste-mas 2, 4, 6 y 8), se ahoyó el sue-lo a una profundidad de 40 cm x50 cm de ancho, aproximadamen-te; en algunos sitios el ancho y laprofundidad del hoyo estuvierondeterminados por el tamaño delsistema radical de la planta. El sue-lo infestado se esparció en unacapa delgada alrededor del hoyopara su solarización. Durante los6 meses que duró dicha práctica(noviembre de 2001 a mayo de

2002), para lograr un mejor efec-to de la solarización se cubrieronlos sitios con un plástico negro,buscando incrementar la tempe-ratura del suelo y evitar posiblesproblemas de erosión. Además,se efectuaron volteos del suelocada 30 días y se mantuvo el sitiolibre de arvenses (Figura 2). Trans-cur r idos se i s meses desolarización, se aplicaron los tra-tamientos en todos los sitios conel fin de evaluar su efecto sobreR. bunodes.

4

Figura 2.Procedimiento para laerradicación de un árbolde café afectado porRosellinia bunodes. a)Extracción del sistemaradical. b) Búsqueda deresiduos vegetales yraicillas en el hoyo. c)Residuos para quemar.d) Hoyos con suelo a sualrededor para conseguiruna buena solarización.e) Solarización del suelocubierto con plástico.

C

D

E

A

B

5

Aplicación deTrichoderma koningii

Se utilizó un aislamiento de T.koningii, evaluado previamente enlaboratorio e invernadero comoantagonista de R. bunodes . En laPlanta Piloto de Control Biológi-co de la Disciplina deEntomología, ubicada enCenicafé, La Granja, se preparóel biocontrolador con base en uncultivo líquido en dos fases y unaformulación de 1x108 esporas deT. koningii/gramo de sustrato dearroz molido (8). Al momento dela siembra y en cada sitio se apli-caron 50 gramos de la formula-ción, dirigidos internamente alre-dedor del hoyo, con el fin de quequedara en contacto directo conel sistema radical de la nueva plan-tación de café (Figura 3).

Figura 3.Aplicación de Trichoderma koningii al momentode la siembra: a, b y c) Aplicación delbiocontrolador en el hoyo para la siembra.Nótese la distribución del hongo en las paredesy en el fondo del orificio. d y e) Siembra de laplanta de café en un sitio tratado.

A

B

C

D E

6

Aplicación delfungicida

El fungicida Topsin®

(tiofanato de metilo)se aplicó a una con-centración de 2,0 cc/L de agua en un vo-lumen de 2,0 litrospor hoyo, dirigido alfondo y alrededorde éste, inmediata-mente antes de lasiembra de las plan-tas (Figura 4).

Preparación del materialvegetal para la resiembra

Se emplearon colinos de café va-riedad Colombia para la resiembraen los sitios tratados. En el almáci-go las plantas se separaron en 2 gru-pos, un grupo de chapolas se sem-bró en una mezcla de suelo y pulpade café (proporción 3:1). El otrogrupo se sembró en el mismosustrato, pero cada planta fue ino-culada con 25 g de la micorrizaarbuscular (MA) Glomus manihotis(sistemas de control 5 y 6) (5). Lamicorriza se aplicó al momento detransplantar las chapolas a la bolsa,de forma tal que quedaran en con-tacto directo con las raíces, con elfin de que ocurriera la colonización

Figura 4.Aplicación de Topsin® (tiofanato demetilo) en un sitio infestado porRosellinia bunodes. a y b) Preparaciónde la mezcla del fungicida. c)Aplicación del Topsin® en el hoyoantes de la siembra.

en los 5 meses que permanecieronen almácigo. Para verificar el efectofavorable de la micorriza al momen-to de la siembra en el campo, se se-leccionaron 10 plantas tratadas conmicorriza y 10 sin micorriza, y encada una se evaluó la altura, el nú-mero de hojas, el diámetro del ta-llo, el peso seco de la raíz y el pesoseco de la parte aérea. Posterior-mente se evaluó el porcentaje decolonización de micorrizas en lasraíces, siguiendo el método pro-puesto por Rivillas (9).

Después de las aplicaciones de losdiferentes tratamientos se realizóla siembra de las plantas de café, 25plantas por cada tratamiento, inclu-yendo el testigo de referencia. Los

árboles que se encontraban alrede-dor de las plantas enfermas en unradio de 2 metros a la redonda, tam-bién fueron eliminados al momen-to de la siembra como medidafitosanitaria, así éstos no presenta-ran síntomas externos de la enfer-medad.

A partir de la siembra de las plantasse realizó la revisión periódica delas mismas con el fin de determinarun posible ataque de llagas radica-les. Ocho meses después se toma-ron 5 plantas de cada uno de lostratamientos y se evaluó su sistemaradical. Se continuó la observacióndel resto de plantas durante dosaños, las cuales no presentaron sín-tomas de enfermedad.

A

B

C

7

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Efecto de la micorrizasobre las plantas de

almácigo

Los análisis estadísticos de la evalua-ción de las plantas de almácigo colo-nizadas o no por micorrizas, realiza-da al momento de la siembra, mos-traron diferencias en la variable altu-ra a favor del grupo de plantas aso-ciadas con G. manihotis (Tabla 2); las

Inoculada con Glomus

manihotis

Únicamente con las micorrizasnativas del sustrato

Media

17,4 a*

17,7 a

CV

57,9

30,6

Total HojasAl tura P lanta

( c m )

Media

40,3 a

31,5 b

CV

10,2

13,7

Diámetro Tal lo( c m )

Media

0,6 a

0,6 a

CV

21,4

20,4

Peso Seco Raíz( g )

Media

3,1 a

2,7 a

CV

54,5

41,0

Parte Aérea( g )

Media

2,9 a

2,6 a

CV

64,0

36,5

Plantas de almácigo

* Letras no comunes implica diferencias estadísticas entre promedios según prueba de Tukey al 5%.

Tabla 2. Variables de crecimiento de los dos grupos de plantas que se tuvieron en el almácigo (G. manihotis + MAnativa y MA nativa).

demás variables de crecimiento nopresentaron diferencias estadísticasen sus valores promedios. Es impor-tante anotar que pese a no ocurrirdiferencias estadísticas en el pesoseco de la raíz de los grupos de plan-tas en almácigo, la morfología de és-tas fue mucho más uniforme en lasplantas asociadas con la especie demicorriza arbuscular introducida, de-bido a que presentaron mayor canti-

dad de raíces secundarias y terciarias.Lo mismo se observó en la alturade las plantas, como respuesta a laasociación simbiótica con G.manihotis (Figura 5). La presencia deG. manihotis más las MA nativas enlas raíces de las plantas de café antesdel trasplante fue del 47%, mientrasque el nivel de colonización en lasraíces de las plantas donde no se adi-cionó la MA introducida, fue del 27%.

F igura 5.Colinos de café de la variedad Colombia de

5 meses de edad, sembrados en unsustrato de suelo y pulpa. La planta de la

izquierda fue inoculada con Glomusmanihotis y la de la derecha no fue

inoculada. Nótese la diferencia entre laaltura de las plantas y el sistema radical.

8

Efecto de los tratamientossobre la presencia de

llaga negra en las plantasresembradas

En la primera evaluación efectuada 8meses después de la siembra no seobservaron indicios del ataque de lla-ga negra en el sistema radical de lasplantas evaluadas. Dos años despuésde establecido el experimento, lasplantas de café pertenecientes a losdiferentes tratamientos se encontra-ban en buen estado. De esta manerase logró el principal objetivo del ex-perimento que era recuperar los si-tios afectados por R. bunodes. Por

Edic ión: Héctor Fabio Ospina OspinaFotograf ía : Bertha Lucía Castro Caicedo

Gonzalo Hoyos SalazarDiagramación: Olga Lucía Henao Lema

Centro Nacional de Investigaciones de Café

"Pedro Uribe Mejía"

Chinchiná, Caldas, Colombia

Te l . (6 ) 8506550 Fax . (6 ) 8504723

A.A. 2427 Maniza lescen ica fe@cafedecolombia .com

Los t raba jos suscr i tos por e lpe r sona l t écn i co de l Cen t roNacional de Invest igaciones deCafé son parte de las invest i -gaciones real izadas por la Fe-derac ión Nacional de Cafete -ros de Colombia. S in embargo,tanto en este caso como en elde personas no pertenecientesa este Centro, las ideas emit i -das por los autores son de suexclus iva responsabi l idad y noexp resan necesa r i amen te l a sopin iones de la Ent idad.

tanto, cualquiera de los tratamientosaplicados, exige extracción rigurosade raíces y residuos afectados por R.bunodes con el fin de reducir elinóculo potencial como fuente de in-fección de nuevas siembras.

Este resultado confirma lo encontra-do por Fernández y López (7), en elsentido de que una de las razonespara que R. bunodes no alcance lafase parasítica se debe al agotamien-to del sustrato, es decir, de las raíces,las cuales facilitan o limitan el proce-so de infección, mecanismo directode transmisión de éste hongo. Lasiembra de plantas de café asociadascon G. manihotis, las aplicaciones del

hongo biocontro-lador y del fungicida,con o sin solarización, pueden em-plearse efectivamente para detener ysanear un foco de infección de llagasradicales. Con la adición de MA seestimula el crecimiento de las plantasy se protegen las raíces.

Con base en los resultados obtenidos,la recomendación práctica para elmanejo de focos de llagas radicalesen árboles de café, consiste en ex-traer la planta afectada y las vecinas,retirar los residuos de raíces que de-ben colocarse en estopas o costalesy quemarlos fuera del lote, para asíevitar la dispersión de la enfermedad.

LITERATURA CITADA

1. CASTRO C., B.L. Antagonismo de algunosaislamientos de Trichoderma koningii,originarios de suelo colombiano contraRosellinia bunodes, Sclerotiniasclerotiorum y Pythium ultimum.Fitopatología Colombiana 19(2):7-17.1995.

2. CASTRO C., B.L. Las Llagas del cafeto.Avances Técnicos Cenicafé No. 268:1-8. 1999.

3. CASTRO C., B.L. Manejo y control de laLlaga Radical Negra. In: CentroNacional de Investigaciones de Café.Cenicafé. Chinchiná. Colombia.Informe anual de labores de laDisciplina de Fitopatología. Chinchiná,Cenicafé, 1992. (Mimeografiado).

4. CASTRO C., B.L.; DUQUE O., H.;MONTOYA R., E.C. Incidencia deLlagas radicales (Rosellinia sp.), en elsistema café - yuca en el departamentodel Quindío. In: Congreso de laAsociación Colombiana deFitopatología y Ciencias Afines, 24.Armenia, Junio 25-27, 2003. Memo-rias. Armenia, ASCOLFI, 2003. p. 32-33.

5. CASTRO T., A.M. Efecto deEntrophospora colombiana, Glomusmanihotis y Burkholderia cepacia en elcontrol de Rosellinia bunodes Berk. yBr. agente causal de la Llaga Negra delcafeto. Manizales, Universidad deCaldas. Facultad de CienciasAgropecuarias, 2001. 220 p. (Tesis:Magister Scientiae).

6. FERNÁNDEZ B., O.; LÓPEZ D., S. LasLlagas Radiculares Negra (Roselliniabunodes) y Estrellada (Rosellinia pepo)del cafeto. I. Patogenicidad einfluencia de la clase de inoculo en lainfección. Cenicafé 15 (3): 126-144.1964.

7. FERNÁNDEZ B., O.; LÓPEZ D., S. Efectode la humedad y pH del suelo en lainfección de Rosellinia spp. Cenicafé18 (2): 61- 67. 1967.

8. LÓPEZ U., A.B.; CASTRO C., B.L. Evaluaciónde diferentes sustratos para la multiplica-ción de Trichoderma koningii antagonis-ta de Rosellinia bunodes en café. In:Congreso de la Asociación Colombianade Fitopatología y Ciencias Afines, 18.Palmira, Julio 30 - Agosto 2, 1997.

Memorias. Palmira, ASCOLFI-CIAT,1997. p. 30.

9. RIVILLAS O., C.A. The effects ofarbuscular mycorrhizal fungi on towdifferent coffee varieties fromColombia and tjeir biochemicaldetection in roots. Kent (Inglaterra),University ok Kent. Research Schoolof Biosciences, 1995. 88p (TesisMaster of Science).