CAPíTULO 1:

LA EMPRESA U ORGANIZACIÓN.

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1.1.- Origen y evolución:

El Instituto de Investigaciones Agropecuarias, INIA, es la principal Institución de Investigación Agropecuaria de Chile, es una corporación de derecho privado, sin fines de lucro, dependiente del Ministerio de Agricultura.

Fue creado en 1.964 por el Instituto de Desarrollo Agropecuario, la Corporación de Fomento de la Producción, la Universidad de Chile, la Pontificia Universidad Católica de Chile y la Universidad de Concepción.

Cuenta con una cobertura geográfica nacional, la que está compuesta por 11 Centros Regionales de Investigación (CRI), ubicados en las regiones de Coquimbo, de Valparaíso, Metropolitana, del Libertador Bernardo O’Higgins, del Maule, del BíoBío, de La Araucanía, de Los Lagos, del General Carlos Ibáñez del Campo y de Magallanes. De los CRI dependen los Centros Experimentales y las Oficinas Técnicas.

1.2.- Misión:

La misión del INIA es “Generar y transferir conocimientos y tecnologías estratégicas a escala global para producir innovación y mejorar la competitividad en el sector agroalimentario”.

1.3.- Objetivos:

El gran objetivo final del Instituto de Investigaciones Agropecuarias es que sus tecnologías y conocimientos se encuentren a disposición de los usuarios, quienes son los encargados de utilizarlas para, así, lograr el mejoramiento de sus propias actividades y contribuir al desarrollo de Chile. Estas tecnologías en muchos casos adoptan la forma concreta de productos y servicios que pueden ser utilizados como insumos en el ámbito agropecuario. Es importante señalar que, en un contexto internacional que tiende a facilitar el intercambio, los servicios y productos también se encuentran disponibles para interesados de otros países.

Una manera de lograrlo es entregando información y conocimientos a través de su red de bibliotecas, de sus publicaciones y otros medios de comunicación, de las actividades de capacitación y divulgación que se llevan a cabo.

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1.4.- Actividades que desarrolla:

El instituto de Investigaciones Agropecuarias, INIA, cuenta con siete centros provistos de laboratorios (Intihuasi, La Platina, Raihuén, Quilamapu, Carrilanca, Remehue y TamekAike), que realizan análisis orientados a diagnosticar y recomendar soluciones para un amplio rango de materias, que van desde la fertilización de frutales y cultivos o detección de enfermedades, pasando por la nutrición animal, hasta aspectos relacionados con la calidad industrial de productos.

Los laboratorios de estos Centros están equipados para desarrollar investigación en Biotecnología, Entomología, Fitopatología, Microbiología, Fitomejoramientos de Forrajeras, Trigo de Calidad, Control de Calidad de Leche, Física de Suelos y Farinología.

A los anteriores se suma la venta de plantas a través de sus viveros, a solicitud pública o privada ofrece servicios de validación de ensayos, realiza estudios y entrega información.

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1.5.- Organigrama de la empresa Osorno

DirectorioRegional

Comité DirectorioInterno

Consejo Directivo

Unidad de Planificacion

Unidad de Vinculacion

y Tranferencia Tecnologica

Unidad de Comunicaciones

Grupos de Transferencia Tecnologica

Subdirección de Administración y

Finanzas

Subdireccion de Investigación y

Desarrollo

Recursos Humanos

ContabilidadCoordinacion de

Investigacion Biblioteca Computación

Unidad de Carne

Subdirección Centroexperimental La Pampa

Subdirección Centroexperimental Butalcura

Biotecnologia y Fitomejoramiento

Produccion Pecuaria

Laboratorio de Nutricion Animal y Medio Ambiente

Unidad de Leche

Recursos Naturales y Medio Ambiente

Gestion y Sistemas Productivos

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1.6.- Departamento, Sección o Unidad de Desarrollo de la Práctica Profesional

La práctica laboral fue realizada en el laboratorio de Nutrición Animal y Medio ambiente dependiente de INIA a cargo del Ingeniero Agrónomo Sergio Iraira, en este laboratorio se realiza todos los análisis físico-químicos referentes a la nutrición de los animales de pastoreo, tales como: proteína cruda, energía metabolizable, Fibra cruda, Fibra de detergente Acido y Fibra de detergente Neutro en forrajes, ensilajes, concentrados y granos entre otros.

1.7.- Organigrama de la Sección de Desarrollo.

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1.8.- Tareas específicas de esa sección en la empresa:

En el laboratorio de nutrición animal y medioambiente se llevan a cabo diferentes tipos de análisis, entre los cuales se cuentan:

Proteína cruda Proteína soluble Energía metabolizable Minerales Extracto etéreo Determinación de nitrógeno amoniacal Fibra cruda Fibra Detergente Acido (FDA) Fibra Detergente Neutro (FDN) Materia Seca Carbohidratos solubles Determinación de Cenizas Determinación de Boro

1.9.- Integrantes, cargos, responsabilidades y dinámica de funcionamiento de la sección:

Sergio Iraira: Ingeniero Agrónomo y jefe de laboratorio.

Rodolfo Saldaña: Analista jefe, responsable análisis de Minerales y Carbohidratos solubles además de revisar informes de resultados de análisis previo al envió a clientes.

Rosamel Melendre: Asistente analista, responsable análisis de Energía Metabolizable, Determinación de Boro, Nitrato y Amonio.

Macarena Aros: Asistente Analista, responsable análisis de Proteína cruda, Proteína Soluble, Extracto Etéreo y Determinación de nitrógeno amoniacal.

Yacqueline Campos: Asistente Analista, Responsable análisis de Fibra Cruda, Fibra detergente neutro (FDN) y Fibra detergente ácido (FDA).

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CAPíTULO 2:

DESARROLLO DE LAS TAREAS.

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2.1.- Tareas o funciones desarrolladas en la Práctica Laboral

2.1.1.- Determinación de Fibra detergente neutro

Este método es aplicable a la determinación de Fibra detergente neutro, en muestras de alimento animal (ensilaje, forraje, concentrados y granos, heno, pellets), recibidas en el laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente.

El método del detergente neutral para constituyentes de paredes celulares es un método rápido para la determinación de la fibra total en alimentos de origen vegetal. Separa los constituyentes solubles y nutricionalmente de aquellos que son aprovechables de manera incompleta y dependen de la fermentación microbiana.

Fundamento del método : Consiste en la digestión de una muestra seca y molida con detergente neutro en ebullición. El proceso separa las fracciones de hemicelulosa, celulosa y lignina de la pared celular.

Equipos y materiales:

equipo digestor de fibra Crisoles filtrantes Bomba de vacio Vasos Berzelius Balanza analítica Pinzas metálicas Desecador Matraz Kitasato  Matraz de 2 litros Bagueta Piseta Estufa de convección natural Dispositivo spray

Reactivos: Solución detergente neutra Solución Amilasa Sulfito de sodio

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Acetona octanol

Procedimiento

1.-Preparaciòn de la muestra

a) Pesar aproximadamente 0.49 gramos de muestra molida y se coloca en un vaso Berzelius de 600 ml.

b) Agregar 0.25 g de sulfito de sodio.c) Vaciar al vaso 50ml de solución detergente neutra.d) Agregar 200 µL de amilasa y añadir 3 gotas de octanol.

2.- Digestión de la muestra

a) Encender el digestor y abrir la llave de paso de agua b) Llevar los vasos al digestor, esperar que hierva y tomar el tiempo dejar 60

minutos que la muestra hierva a temperatura baja para evitar espuma.

3.-Filtrado:

a) Colocar crisoles Gooch previamente tarados en un matraz kitazato b) Vaciar el contenido del vaso al crisol y filtrarc) Lavar el vaso con abundante agua caliente (90°-100°C)d) Lavar con acetona y secar succionando por vacío

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4.- Secado y pesado

Secar el crisol a 100°C, por 8 horas o toda la noche y pesar.

5.- Cálculos

FDN (%) Base seca = ((Wo – Wt)*(10000) /S))/Ms105ºC

Dónde:

Wo = Peso del crisol secado en estufa, más la fibra (g)Wt = Tara del crisol vacío secado en estufa (g)S = Peso de la muestra inicial (g)MS105 = Materia seca a 105ºC para expresar el resultado en 100% base seca.

6.- Llenado de registros

Una vez terminado el análisis, llene los registros en papel y los de la planilla en el PC. (Anexo Nº1)

2.1.2.-Determinación de Fibra Detergente Acido (FDA)

Este método es aplicable a la determinación de fibra detergente acida, en muestras de alimento animal (ensilaje, forraje, concentrados y granos, heno, pellets), recibidas en el laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente.

Principio del método: Este procedimiento provee un método rápido para la determinación de lignocelulosa en alimentos. El residuo incluye también sílice. La diferencia entre los constituyentes de paredes celulares y la fibra detergente acido es una estimación de la hemicelulosa; aunque esta diferencia incluye algo de proteína adherida a las paredes celulares.

La determinación de Fibra Detergente Acido es utilizada como un paso previo a la determinación de lignina.

Equipos y materiales:

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equipo digestor de fibra Crisoles filtrantes Bomba de vacío Vasos Berzelius Balanza analítica Espátula Pinzas metálicas Desecador Matraz Kitasato  Matraz de 2 litros Bagueta Piseta Estufa de convección natural Dispositivo spray

Reactivos:

Solución Detergente Acida (FDA) Octanol

Procedimiento

1.-Preparación de la muestra

a) Pesar aproximadamente 0.49 gramos de muestra molida y se coloca en un vaso Berzelius de 600 ml.

b) Vaciar al vaso 50ml de solución detergente acida.c) Añadir 3 gotas de octanol

2.- Digestión de la muestra

a) Encender el digestor y abrir la llave de paso de agua b) Llevar los vasos al digestor, esperar que hierva y tomar el tiempo dejar 60

minutos que la muestra hierva a temperatura baja para evitar espuma.

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3.-Filtrado:

a) Poner crisoles Gooch previamente tarados en un matraz kitazato b) Vaciar el contenido del vaso al crisol y filtrarc) Lavar el vaso con abundante agua caliente (90°-100°C)d) Lavar con acetona y secar succionando por vacío

4.- Secado y pesado de crisol

Secar el crisol a 100°C, por 8 horas o toda la noche y pesar usando desecadores para enfriarlo.

5.- Cálculos

FDA (%) Base seca = ((Wo – Wt)*(10000) /S))/Ms105ºC

Dónde:

Wo = Peso del crisol secado en estufa, más la fibra (g)Wt = Tara del crisol vacío secado en estufa (g)S = Peso de la muestra inicial (g)

6.- Llenado de registros

Una vez terminado el análisis, llene los registros en papel y los de la planilla electrónica en el PC. (Anexo N°2)

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2.1.3.-Determinación de fibra cruda

Este método es aplicable a la determinación de fibra cruda en muestras de alimento animal (ensilaje, forraje, concentrado, granos, heno, pellets, etc.), en el laboratorio de nutrición animal y medio ambiente.

Equipos y materiales:

equipo de digestión de fibra crisoles filtrantes estufa de convección natural mufla pinzas metálicas espátula desecadores vasos Berzelius matraz de 2 litros matraz kitasato bomba de vacío balanza analítica bagueta embudo buchner de polipropileno piseta vaso pp

Reactivos requeridos:

ácido sulfúrico 0,255N hidróxido de sodio 0,313 N octanol acetona

Procedimiento

1.-Preparación de la muestra

a) Pesar 0,50 g en balanza analítica (si la muestra contiene más de 1g de grasa debe ser extraída con éter de petróleo

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b) Transferir la muestra pesada al vaso berzelius; en el caso de que se le haya realizado extracto etéreo vaciar la muestra del dedal (Soxhlet) al vaso con ayuda de un pincel. Agregar trozos de porcelana al vaso.

2.- Digestión ácida

a) Agregar 200 ml de ácido sulfúrico 0,255 N, hirviente y agregar gotas de octanol.

b) Hervir exactamente durante 30 minutos con ácido sulfúrico rotando el vaso periódicamente.

3.- Primera filtración a vacío

a) Filtrar en caliente la muestra utilizando el embudo Buchner.b) Lavar el filtrado obtenido con 50 a 75 ml de agua caliente para eliminar

el resto de ácido, repetir el lavado con 3 porciones de 50 ml de agua o hasta que cese la reacción acida.

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4.-Digestión básica

a) Retornar el residuo al vasob) Agregar 200ml de NaOH 0,313 N, hirvientec) Digestión básica por 30 minutos

5.- Segunda filtración a vacío

a) Filtrar en caliente la muestra utilizando un crisol Gosch b) Lavar el filtrado obtenido con 50 a 75 ml de agua caliente para eliminar el

resto de hidróxido de sodio, repetir el lavado con 3 porciones de 50 ml de agua o hasta que cese la reacción básica.

6.- Secado y pesado del crisol

a) Secado de la muestra obtenida por 12 horas a 100ºCb) Enfriar en desecador y pesar crisol más muestra

7.- Calcinación de la muestra

a) Incinerar la muestra a 500ºC por 12 horasb) Posterior pesado del incinerado

8.- Cálculos

% Fibra Cruda = w1-w2 X 100 W0

Fibra cruda (%) en base seca = %Fibra cruda x100

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Materia seca a 105° C

Dónde:

W0 = Peso de muestraW1 = Peso de Crisol con residuo secoW2 = Peso de Crisol con residuo calcinado

9.- Llenado de registros

Una vez terminado el análisis, llene los registros en papel y los de la planilla electrónica en el PC. (Anexo N°3)

2.1.4.-Preparación de muestras de ensilajes para el NIR

La espectrometría de infrarrojo cercano (NIR) es la medición de longitud de onda e intensidad de la absorción de luz infrarroja cercana realizada para determinados componentes químicos de la muestra. Tiene energía suficiente para excitar sobre tonos y combinaciones de vibraciones moleculares a altos niveles de energía. La espectroscopia NIR es típicamente usada para medición cuantitativa de grupos funcionales orgánicos. Su práctica permite analizar, de forma rápida y relativamente fácil, un gran número de muestras.

Equipos y materiales:

vasos Bomex Moulinex Bandeja Tijera Plumón Bolsas plásticas NIR

Procedimiento

Se tienen las muestras y se colocan en bandejas Se procede a moler en una moulinex Cortar con tijera el ensilaje que no se muele Moler hasta que la muestra este uniforme Vaciar a vasos Bomex y rotular

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Llevar las muestra al NIR para su lectura.

2.1.5.-Determinación de carbohidratos solubles

Este método es aplicable a la determinación de carbohidratos solubles en muestras de alimento animal (ensilaje, forraje, concentrados, granos, heno, pellets, etc.), en el laboratorio de nutrición animal y medio ambiente.

Fundamento del método : Los carbohidratos solubles son extraídos con agua bajo agitación. La concentración de carbohidratos expresada como glucosa es determinada espectrofotométricamente como un complejo verde-azulado el cual es formado cuando los carbohidratos son calentados con antrona en ácido sulfúrico.

Equipos y materiales:

frascos de 150ml de polietileno, boca ancha agitador embudo matraz Erlenmeyer papel filtro whatman n°1 de 125 mm. tapas de goma matraz aforado tubos de ensayos gradilla olla tapones de goma

Procedimiento

Preparación del extracto

a) Pesar 0.1 g de muestra y vaciar un frasco plástico de 100 ml b) Agregar 100 ml de agua destilada c) Colocar los frascos con tapón de goma en el agitador y atornillar bien d) Agitar por 1 hora a 180 agitaciones/ minutoe) Filtrar y recolectar 50 ml en matraz erlenmeyer f) Tomar una alícuota de 1 ml del filtrado a un tubo de ensayog) Guardar en congelador el tubo con la alícuota.

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CAPÍTULO 3.

EVALUACIÓN CRÍTICA DE LA PRÁCTICA PROFESIONAL.

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3.1.- Nivel de dificultad en tareas y funciones asignadas

El nivel de dificultad realizado en mi práctica laboral no fue difícil al comienzo, ejemplo realizando las muestras para el NIR, pero cuando comencé a realizar los análisis como Fibra detergente Neutro (FDN), Fibra detergente ácido (FDA) y Fibra cruda fue bastante difícil al principio, pero después con la práctica fui aprendiendo y realizando estos análisis correctamente.

3.2.- Volumen de tarea asignada

Las tareas asignadas en el comienzo de la práctica laboral fue solo una por lo que el nivel fue bajo, más adelante en la práctica se me encargaron tareas de análisis más complejas por lo que el volumen si era elevado ya que se debía hacer análisis a muchas muestras.

3.3.- Adecuación de estudios en la tarea

Lo que más me ayudo de las asignaturas fue Análisis químico, ya que en el laboratorio de nutricional animal y medio ambiente donde realice mi práctica laboral está centrada principalmente a análisis químicos por lo que entendía un poco los fundamentos de estos análisis, además que gracias a los prácticos de laboratorios realizados en el Instituto Profesional la Araucana y la asignatura Técnicas de laboratorio pude entender y aprender cómo se trabaja en un laboratorio.

3.4.- Claridad de información, orientación y apoyo

La información entregada para realizar las tareas que se me encomendaron durante mi práctica laboral fue proporcionada de manera clara y entendible, en el momento de realizar los análisis, corrigiendo de buena manera las veces que fueron necesarias y en el momento de no saber o no entender siempre se explicó con una buena disposición.

3.5.- Disponibilidad de recursos materiales para sus labores

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El laboratorio de nutrición animal y medio ambiente contaba con todo lo necesario para realizar las tareas ya sea en materiales como vasos, matraz, pipetas, etc. o equipos como estufas, destilador de agua, balanzas, bomba de vacío, mufla, etc. Además de una gran variedad de reactivos necesarios para los análisis que se realizan.

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ANEXOS

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ANEXO 1

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ANEXO 2

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ANEXO 3

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ANEXO 4

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V.-Bibliografía

1. Héctor Zumbado Fernández : Análisis Químico de los Alimentos Métodos Clásicos, Instituto de Farmacia y Alimentos, Universidad de la Habana, 2004.

2. Laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente : Método de ensayo, Determinación de Fibra Detergente Acida, INIA Remehue, Osorno, Chile, 2011.

3. Laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente : Método de ensayo, determinación de Fibra Cruda en muestras de alimentos, Utilizando el Sistema Fibertec, INIA Remehue, Osorno, Chile, 2011.

4. Laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente : Método de ensayo, Determinación de Carbohidratos Solubles, INIA Remehue, Osorno, 2011.

5. Laboratorio de Nutrición Animal y Medio Ambiente : Método de ensayo, Determinación de Fibra Detergente Neutro, INIA Remehue, Osorno, Chile, 2011.

6. www.INIA.cl

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V.-Antecedentes personales

Nombre : Sofia Elizabeth Torres Perales

Teléfono móvil : 97634586

Correo electrónico : storresperales@gmail.com

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