Guía de ejercicios de genéticas - RespuestasOriginal http://www.segenetica.es/docencia.php

Recopilado por Herman Figueroa Vargas

Medicina - Procesos Biológicos III

Facultad de Medicina

UCN. Coquimbo 2009.

ContenidoCARACTERES MENDELIANOS Y VARIACIONES A LA DOMINANCIA..........................2

INTERACCIONES GENICAS....................................................................................................3

DETERMINACION DEL SEXO. GENETICA DEL SEXO.......................................................4

GENES INFLUIDOS POR EL SEXO.........................................................................................6

RECOMBINACION EN EUCARIOTAS....................................................................................6

1.- En caracteres autosómicos..................................................................................................6

A. En caracteres ligados al sexo...............................................................................................7

VARIACIONES CROMOSOMICAS..........................................................................................8

ESTRUCTURA Y ORGANIZACION DEL MATERIAL HEREDITARIO...............................9

INGENIERIA GENETICA........................................................................................................10

RECOMBINACION EN BACTERIAS Y VIRUS....................................................................12

MUTACION GENICA..............................................................................................................13

EXPRESION DEL MATERIAL HEREDITARIO....................................................................14

GENETICA CUANTITATIVA.................................................................................................15

GENETICA DE POBLACIONES.............................................................................................16

CARACTERES MENDELIANOS Y VARIACIONES A LA DOMINANCIA

2.- a) 36; b) 64 ; c) (1/4)6 ; d) (3/4)6

3.- Gametos: 8, 32, 128; Genotipos: 3 nº casos hetero x hetero x 2nº casos homo x hetero: 27, 243, 2187. Fenotipos: 2nº casos hetero x hetero x 2nºcasos hetero x homo recesivo : 8, 32, 128.

4.- (1/2)23 gametos diferentes.

5.- 1º a) 9/128 b) 9/128 c) 18/128 d) 110/128 2º a) (1/2)5 b) (1/2)5 c) 2x(1/2)5 d) 1-2x(1/2)5

6.- a) 1/8 b) 8 y 2 c) 12

7.- a) 1/4 b) 1/4 c) 1/4 d) 1/4

8.- a) 20/64 b) 15/256 c) 1/128 d) 240

9.- 2,37 x 10-15

10.- 4/7

11.- a) 15/64; 1/32; 42/64; 50/64; 42/64; 1/64; 15/64; b) 1/4 c) 1/2; 31,25%

12.- 3/16 b) 54/256

13.- 1: AaCc x AaCc; 2: AACc x A(A-a)cc; 3: AaCC x aaC(C-c); 4: aaCc x aaCc; 5: Aacc x Aacc; 6: AACc x A(A-a)Cc; 7: AaCc x Aacc. Comprobación mediante X2.

14.- a) P: púrpura, p: verde, C: cortado, c: oval. b)PpCc x ppCc; PpCc x Ppcc; PPCc x ppCc; PpCC x ppcc; Ppcc x ppCc. Comprobación mediante X2.

15.- a) 2 loci con 2 alelos b) A= arqueada; a= chocante; B= peluda; b= lampiña c) 1: AaBB; 2: AaBb; 3: Aabb; 4: aabb; 5: AABb

16.- TtggRr x ttGgRr

17.- BB: 4/9; Bb: 4/9; bb: 1/9; Blancos esféricos: 8/9; amarillos esféricos: 1/9

18.- a) F1: Agutí, F2: Agutí-negro (27/64), agutí-negro-himalaya (9/64), agutí-café (9/64), agutí-café-himalaya (3/64), negro (9/64), negro-himalaya (3/64), café (3/64), café-himalaya (1/64); b) 8/27; c) 1/4 ; d) 3/4

19.- 1: flores y semillas rosas; 2: 1/16 flor y semilla roja o blanca, flor blanca semilla roja o flor roja semilla blanca, 1/8 flor roja o blanca y semilla rosa, 1/8 flor rosa y semilla roja o blanca, 1/4 flor y semilla rosa; 3: 1/4 flor rosa y semilla rosa o blanca, 1/4 flor blanca y semilla rosa o blanca; 4: id a 3.

20.- a) 2 loci con 2 alelos; A = motas, a = sin motas; B = rizado, b = liso; c) Parentales: AAbb x aaBB, F1: AaBb x AaBb; F2: 9 genotipos d) X2 = 0.48: no significativa.

21.- 1/2 holandés, 1/4 hereford, 1/4 liso.

22.- 1: sordo dominante, enano recesivo. 2: a) 1/4 b) 1/2 c) 1/2 d) 1/2 3: cruce II-1 x II4 (si II-4 hembra): 1/8; 4: 3/8

23.- A1A1 = blanco, A2A2 = negro, A1A2 = azul

24.- A = calvos, a = normal, AA = letal.

25.- a) (3/4)5; b) 90/1024; c) 9/256; d) 1/4

26.- probabilidad de tener un hijo afectado= 1/9

27.- a) 3/4; b) 1/16; c) probablemente no tendrán hijos afectados

28.- Charlie heterocigoto (Aa) y hembras homocigotas dominantes (AA); algunos descendientes (Aa) cruzados dan 25% de animales rojos y blancos (aa)

29.- 7!/(5! 2!) (2/6)5 (2/6)2

30.- a) Fenotipos = grupos sanguíneos = 4; alelos = 3; genes = 1; genotipos = 6; b) IA=IB>IO; c) IOIO x IAIB = IOIA ó IOIB (no grupo AB ni grupo O); d) grupo A=1/2; grupo B=1/2; e) o bien el macho o bien la hembra no son o el padre o la madre, o ambos.

31.- Metafase mitótica 16 pgr; metafase I 16 pgr; metafase II 8 pgr

32.- (10!/(3!3!4!)) (1/4)3(3/4)3(1/2)4

33.- a) Ligada a X ( por alternancia de sexo afectado entre generaciones, por frecuencia distinta entre sexos en la población y por adecuación al pedrigrí (no se excluyen otras alternativas)) y recesivo (por último individuo de la generación III)

b)

c) (1/2)4; d) /1/2)3 x ((1/2)3x (1/4)2)

INTERACCIONES GENICAS

1.- ppRrFF x Pprrff

2.- a) A1A1= cremello; A2A2= castaño; A1A2= palomino b) A1A1bb x A1A2bb; A1A2bb x A2A2bb; A1A2bb x A1A1bb c) cremello x castaño: hijos todos palomino d) todos palomino.

3.- 1: 3/4 normal, 1/4 hairless; 2: 2/3 hairless, 1/3 normal; 3: id a 1; 4: 1/2 hairless, 1/2 normal.

4.- AaBbIi x AaBbIi: 3/64 rojos o amarillo intenso; 1/64 rosas o amarillo pálido; 6/64 naranjas; 2/64 salmón; 48/64 blancos; AaBbIi x AabbIi: 1/32 rojas o rosas o amarillo intenso o amarillo pálido; 2/32 naranjas o salmón; 24/32 blancos.

5.- Se trata de alteraciones en distintos loci. La unión de ambos tipos sanguíneos se complementa, y la sangre coagula.

6.- Epistasia recesiva (9:3:4).

7.- Genes duplicados (15:1).

8.- A y B: genes complementarios; A y C epistasia doble dominante-recesiva. A: color, a: epistático (no color), C: epistático (no color), c: color, B: color, b: no color; Silkie: AAbbcc, Leghorn: AABBCC, Wyandotte: aaBBcc.

9.- Epistasia dominante (12:3:1): A= inhibe color, B= negro, b= castaño.

10.- AB: sacacorchos, Ab: zig-zag, aB: recta, ab: L

11.- a) la misma que en F2 b) genes complementarios c) AAbb x aaBB

12.- Epistasia dominante de B sobre A1 y A2 (codominante): A1A1: redondas, A1A2: largas, A2A2: ovaladas; B: sin hojas, b: con hojas.

13.- A: rojo, a: negro; B1B1: oscurece intenso, B1B2 ennegrece, B2B2: no afecta.

14.- a) 5/16 b) 3/64 c) 3/64 d) no. H es epistático sobre A y B, y S lo es sobre H.

15.- A_ : coloreados, aa: albinos; BB: letal, Bb: amarillo, bb: agutís; a) AaBb x aaBb; b) 3/10 amarillos, 1/5 agutís, 1/2 albinos; c) 1,2

16.- a) F1: todos color; F2: color = 81/256, no color = 175/256; b) (2/3)4; c) 7/175; d) 2 loci; e) 3 loci; f) 15/16

17.- Blancos: 52/64; Negros: 9/64; Grises 3/64; a epistático recesivo, C epistático dominante.

18.- a) 3/16 morados, 3/16 rojos, 5/8 blancos; b) ccrrpp x CcRrPp

19.- a) F1: salvaje, F2: salvaje (9), brown (3), scarlet (3), blanco (1); b) F1: salvaje, F2: salvaje (3), scarlet (1); c) F1: brown, F2: brown (3), blanco (1)

20.- F1 todos salvajes; F2: hembras todas salvajes, machos salvajes (5/8) y vermillion (3/8)

21.- hhIAIB o hhIBi; no se produce la sustancia H y, por tanto, ésta no se puede transformar a A ni a B; epistasia recesiva (h epistático); 1/2 de A y 1/2 de B

DETERMINACION DEL SEXO. GENETICA DEL SEXO

1.- 1/4

2.- a) 1/4 hembras normales o de ojos blancos, 1/4 machos normales o de ojos blancos b) hembras todas normales, 1/4 machos normales o de ojos blancos.

3.- 2/3 hembras WZ, 1/3 machos WW

4.- F1: 3 machos/ 1 hembra; F2: 11 machos/ 5 hembras

5.- a) macho b) 1/2 X 1/2 O c) 24

6.- Dos hembras:un macho; 6 hembras y 5 machos

7.- Hijo: XhXhY; Parentales: XHXhXh y XHY; ó XHXh x XHY

8.- Los determinantes de los caracteres masculinos están en el cromosoma Y en humanos. En Drosophila es la relación cromosomas X/autosomas b) macho en Drosophila y hembra en humanos.

9.- a) 1/2 b) 1/14

10.- a) 1/8 b) 1/4 c) 3/4 d) normal o hemofílico e) normal

11.- a) todos b) ninguna c) 1:1

12.- No. Tiene una probabilidad 1/2 de ser portadora b) si es portadora, 1/2 hijos/as normales 1/2 hemofílicos. Si no lo es, machos normales y hembras portadoras.

13.- D: disco, d: normal; en segmento diferencial del cromosoma X. X2 de comparación.

14.- cut ligado al segmento diferencial del cromosoma X; sepia autosómico

15.- Carácter holándrico. En el cromosoma Y

16.- a) hembras salvajes y machos de ojos blancos b) 3/8 hembras de ojos blancos o salvajes, 1/8 hembras de ojos blancos y vestigiales o sólo vestigiales; segregación de machos igual que hembras. c) 1: 1/2 hembras salvajes o vestigiales, 1/4 machos salvajes o vestigiales o de ojos blancos o de ojos blancos y alas vestigiales. 2: hembras y machos de ojos blancos

17.- No. Surgen diferencias en las frecuencias de machos y hembras dependiendo del tipo de cruce.

18.- Carácter: hemofilia; herencia: recesiva ligada a X. Si 2 hijos son hemofílicos significa que la madre es portadora (con que uno lo fuese deduciríamos lo mismo), por lo que el resto de los hijos quedan dispensados de la circuncisión. En este caso, las hermanas de la madre también pueden ser portadoras, por lo que sus hijos también quedan dispensados. Sin embargo, no hay dispensa para los hijos que el padre pudiera tener con otra mujer porque a priori niguno de los dos es portados. Sugerencias: rebajar a un hijo muerto el motivo de la dispensa; incluir en la dispensa a los hermanos de la madre portadora.

19.- Xip Xip x XIpY

XIpXip x XipY

XIpXip + XipXip + XIpY + XipY

NOTA: Todos los descendientes del segundo cruce puden ser utilizados como parentales a fin de repetir el ciclo completo de mejora las veces que sea necesario.

20.- (a): Xg+Y; (b): Xg+Xg; (c): XgY; (d): Xg+Xg; (e): Xg+Xg+; (f): Xg+Xg; (g): XgY; (h): Xg+Y; (i): Xg+Y.

21.- a) en hembras mayor frecuencia el dominante; b) en machos igual frecuencia el dominante y el recesivo.

22.- AA: negro, Aa: marrón, aa: crema; B: color, b: no color (epistático); B,b ligado al sexo y A,a autosómico.

23.- Ligado al cromosoma X. El X de los machos viene siempre de la madre. Ejemplo: el problema anterior.

GENES INFLUIDOS POR EL SEXO

1.- Machos: clavos 1/2 corto, 1/2 largo; hembras de dedo largo 1/2 calvas, 1/2 no calvas.

2.- a) hembras 3/4 rojo, 1/4 caoba; machos 3/4 caoba, 1/4 rojo b) CRCc (hembra) c) CcCc (macho)

3.- Hembras: 1/4 sin barbas y orejas cortas o largas, 3/4 con barbas y orejas cortas o largas; machos 1/4 con barbas y orejas cortas o largas; 3/4 sin barbas y orejas cortas o largas.

4.- a) 1/8; b) 3/16

5.- F1= hembras blancas sin cuernos y machos blancos con cuernos; F2 = machos blancos con cuernos 9/16, blancos sin cuernos 3/16, negros con cuernos 3/16 y negros sin cuernos 1/16, hembras blancas con cuernos 3/16, blancas sin cuernos 9/16, negras sin cuernos 3/16 y negras con cuernos 1/16

RECOMBINACION EN EUCARIOTAS

1.- En caracteres autosómicos

2.- Bbrr= 0.04

3.- AB= 0.075, Ab= 0.425, aB= 0.425, ab= 0.075

4.- Lila (AB) 53.5%, celeste (Ab) 21.5 %, morado (aB) 21.5%, azul (ab) 35%

5.- Lila (AB) 12%, rosa (Ab) 38%, albino (aB+ab) 50%

6.- a) Ab: 30%, AB: 20%, ab: 20%, aB: 30% b) Ab: 0.5, aB: 0.5

7.- Blanco con bandas (LZ) 35%, blanco (Lz) 15%, amarillo con bandas (lZ) 15%, amarillo (lz) 35%.

8.- Loci ligados p=0.17

9.- Deforme (AB): 73.3%, normal (Ab): 26.6%

10.- rojas-verdes (CCDD) 6.92%, rojas-amarillas (CCDd) 32.3%, rosas-verdes (CcDD) 16.15%, rosas-amarillas (CcDd): 44.61%

11.- Loci ligados. Parentales y F1 en fase de repulsión.

12.- Loci ligados. p=0.2

13.- Sí hay ligamiento. p1=0.3, p2=0.16

14.- 1: Sí. 2: acoplamiento. 3: p=0.39

15.- Loci ligados. Acoplamiento. p=0.12

16.- Ligados. Acoplamiento en hembra y repulsión en macho. p=0.07

17.- Sí. Acoplamiento. AB=71.25%, Ab=3.75%, aB=3.75%, ab=21.25%

18.- Los machos son aquiasmáticos.

19.- sc y ec están ligados. vg es independiente. p=0.055

20.- v--gl--e. p1=0.18, p2=0.14. I=40% , p=0.29

21.- p1=0.1, p2=0.18, I= 50%

22.- a) A-B y C-D, b) ABcd/ABcd y abCD/abCD c) B,b--10 m.--A,a/D,d--30 m.--C,c d) I=50%

23.- a) 0.36 b) 2.6 10-9 c) 0.006

24.- a) 34% b) 34% c) 1.5% d) 6%

25.- a) 30% b) 3:1

26.- b-cn-wx; p1= 0.103, p2 = 0.147, I= 27,3%; F1 negra-encerada-cinabrio=0

27.- Parentales: macho A1A2 BC/bc x hembra A1A2 bc/bc; A1A1: letal, A1A2 black, A2A2 white; B y C ligados (p=0.201).

28.- a) Sí y machos aquiasmáticos; b) p¡= 0 ; p de hembras=0.05; c) sí (demostrarlo)

29.- a) 0.953; b) 0.053; c) 0.143

30.- a) Análisis de ligamiento entre ellos y con otros genes. Si uno de ellos está ligado a un tercero y el segundo considerado tambien, los tres están en el mismo cromosoma.

31.- a) mutante curled; b) macho; c) sumar los sólo curled y los sólo Stubble y dividirlos entre el total

32.- E----0.4-----C---0.2---A---0.3---B--0.1-D

33.- a) ade= 0.105, trp=0.173 b) 0.278 ade--10.5--centróm.--17.3--trp

34.- a) ade=0.065, trp=0.32; b) 0.255; c) centrómero--6.5--ade--25.5--trp

35.- La conversión génica. Explicar.

A. En caracteres ligados al sexo

1.- Hembras: 0.90 normales, 0.1 albinas; machos: 0.6 normales, 0.4 albinos

2.- Hembras: ojos azules y cuerpo negro = 53,34 % = ojos azules y cuerpo gris; ojos marrones y cuerpo negro = 13,34% = ojos marrones y cuerpo gris; machos: ojos azules y cuerpo negro = 9,34%, ojos marrones y cuerpo negro =34,8%, ojos azules y cuerpo gris = 4%, ojos marrones y cuerpo gris = 16%

3.- Loci A,a y B,b en segmento apareante del cromosoma X. B,b a 31,5 morgans de A,a y A,a a 21,5 morgans del segmento diferencial.

4.- 40% A1A2, mosáico; 10% A1A2, amarillo; 10% A2A2, mosáico; 40 % A2A2, amarillo

5.- Descendencia= hembras normales, machos: 47% ciegos y sin enzima, 47% normales, 3% ciegos, 3% sin enzima.

6.- Hembras: todas de pelo marrón, 1/2 de ojos marrones, 1/2 de ojos blancos, 90% a y 10% A; machos: 4 % a-marrón-blanco o a-blanco-marrón; 1 % a-marrón-marrón o a-blanco-blanco; 36% A-marrón-blanco o A-blanco-marrón; 9 % A-marrón-marrón o A-blanco-blanco.

7.- a) Debe existir relación con el sexo b) B,b__17 m.__ A,a__12 m.__C,c en segmento diferencial del X.

8.- No puede determinarse la posición de C y E; A, B y D: ligados al sexo (en el segmento diferencial del cromosoma X); A,a__30 m.__B,b__10 m.__D,d.

9.- Hembras de B. mori aquiasmáticas= para cualquier valor de p la descendencia será 1/2 con fenotipo dominante, 1/4 con fenotipo dominante para un caracter, 1/4 de fenotipo dominante para el otro caracter. Habrá doble proporción de machos que de hembras.

10.- 1-a) Cumplen la 1ª ley pero no la 2ª; b) a+c y +b+ = 33; c) +bc y a++; d)a,+__33m__c,+__20m__b,+; e) s=0.01Å0; f) +cb/a++; 2- X+cb= 0.21, Xa++= 0.20, X+++= 0.27, X+c+= 0.025, X++b= 0.04, Y++= 0.19, Ya+= 0.05, Y+c= 0.015

11.- a) Hembras parentales Xa++ X+bc; b) el gen c en el centro; c) X+++Y; d) a,+__0.05__c,+__0.1__b,+, e) I=80%

12.-cv< cv+, y<y+, los dos genes ligados a X; frec. de recombinación= 0.13; la segregación de sexos es la esperada, (X2= 6.6x10-3)

13.- a)a++/+bc; b) ab+ y ++c (dobles recombinantes muy poco frecuentes); c) a-----0.07-----c---0.02--b

VARIACIONES CROMOSOMICAS

1.- a) (n-1) O cromosomas sexuales, b) XX e YY

2.- No, se deben a alteraciones en la embriogénesis inducidas por el virus.

3.- Hembra XDXd, macho XDY: no disyunción paterna, probablemente en la primera división meiótica. Hijo Xd0 b) Hembra XDXd, macho XDY: no disyunción materna, en la segunda división meiótica. Hijo XdXdY

4.- a) mosáicos XDXd/Xd0 b) mosáico Klinefelter XDXdY/XdY

5 X21X21X21X21: 1/4 (letales), X21X21X21: 1/2 (Down), X21X21: 1/4 normales.

6.- a) pérdida de un X en mitosis b) cigoto Klinefelter, no disyunción de Y c) no disyunción temprana de X d) no disyunción tardía.

7.- Cromosoma 3

8.- a) inversión paracéntrica b) deleción intersticial c) inversión pericéntrica d) duplicación adyacente.

9.- a) inversión entre d y p b) dobles recombinantes esporádicos entre regiones alejadas

10.- B (inversión paracéntrica xyz--yxz)--D (translocación zxy con klm y pérdida de centrómero)-- E (translocación abc con def, y pérdida de centrómero)-- A (inversión pericéntrica de "b" a "e")--C.

11.- Una translocación 14-21, por ejemplo, explicaría fácilmente la aparición de varios casos de trisomía en la misma familia, por la aparición de gametos con duplicaciones que se obtienen en las meiosis de individuos portadores.

12.- G. thurberin (2n1=26) x G. arboreum (2n2=26): planta estéril (n1+n2) que por duplicación dará G. hirsutum (2n1+2n2), es decir, G. hirsutum es un alotetraploide obtenido a partir de las otras dos especies.

13.- La especie B (2n2=14) tiene 5 pares cromosómicos con cierta homología respecto a los de la especie A (2n1=10). El polen (n3=5) del híbrido se obtiene por esa homología. La fertilización de B con ese polen da lugar a un cigoto (n2+n3=12) que se duplicaría para dar la planta 2n=24.

14.- Es posible. Demostrar que en las meiosis de bivalentes con inversiones y con translocaciones recíprocas se obtienen altas tasas de gametos inviables.

15.- Cruce y duplicación cromosómica con colchicina.

16.- a) 63; b) 63; c y d) no es posible ninguno de los dos cruces, puesto que burdéganos/as y mulos/as son híbridos de dos especies y, por tanto, con meiosis I desequilibradas.

ESTRUCTURA Y ORGANIZACION DEL MATERIAL HEREDITARIO

1.- b) GC=43.75% c) valores de Cot bajos (existen secuencias palindrómica)

3.- a) No es cierto, pues al alterar la disposición de los nucleótidos (la secuencia) se obtiene un ADN informativamente diferente

4.- a) no b) si c) si d) no e) si

5.- T: 22%, C: 28%, G: 28%

6.- Polioma: 1.66 micras, 490 vueltas; Fago lambda 16.6 micras, 4897 vueltas; fago T4 66.5 micras, 19559 vueltas; E. coli 2000 micras, 588235 vueltas.

7.- a) Púricas 5: pirimidínicas 4 b) (A+T)/(G+C)= 2 (A+G)/(T+C)= 4/5

8.- La timidina es específica del ADN; la metionina es específica de proteinas y ocupa la primera posición en las proteinas.

9.- a) determinar si poseen T ó U: diferenciamos ADN de ARN b) Proporción de (A+G)/(T+C) diferencia duplexo de simplexo c) centrifugación en gradiente de densidad: contenido en GC, diferentes tamaños d) disociación-reasociación (hibridación): coincidencia, o no, de las secuencias de ambos ácidos nucléicos.

10.- Hombre: ADN duplexo, rico en AT; E. coli: ADN duplexo, proporciones similares de AT-GC; Virus de la gripe: ARN simplexo; Reovirus: ARN duplexo.

11.- a) Las bandas corresponden al ADN ligero, al híbrido ligero-pesado, al ADN pesado b) No hay ADN híbrido (el ADN no se ha disociado) c) la banda superior el del ADN ligero de D. pneumoniae y la inferior del pesado de E. coli.

12.- Los tres puentes de hidrógeno del enlace G-C hace necesario aportar más energía para romperlos. b) Tm E. coli > Tm hombre

13.- Repartido, porque quedan retenidas, con el repetitivo, secuencias de copia única.

14.- Vaca: ADN duplexo; Trigo: ADN duplexo (1/3 de C en forma de 5-metil-C); VMT: ARN simplexo; QX174: ADN simplexo; T2: ADN duplexo (5-metilcit. en lugar de C); VTH: ARN duplexo.

15.- Recta de regresión: densidad = 1.66+0.00098(GC); b) 1.743 corresponde a 84.7% de GC.

16.- Se producen regiones duplexas intracadena.

17.- a) inversión b) duplicación c) deleción terminal

18.- El ADN del virus se ha insertado en el ADN de la célula tumoral.

19.- Existen tres clases cinéticas en este organismo: ADN altamente repetitivo (20% del ADN total, Cot 10-4-10-2), ADN moderadamente repetitivo (35%, Cot 10-1-10), y ADN de copia única (40%, Cot 103-105). Existe un 7% del ADN palindrómico (reasociado al inicio de la reacción).

20.- a) ADN simplexo b) banda 1: ADN viral marcado; banda 2: ADN duplexo bacteriano; banda 3 ADN duplex (híbrido) no radiactivo, del virus. d) El ARN debe ser complementario del ADN que lo produce (hebra +), complementaria, de la inicial del virus (hebra -).

21.- a) El medio mínimo obliga a la expresión de gran parte de los genes de la bacteria, para sintetizar las moléculas necesarias para el metabolismo celular. Por tanto, gran parte del ADN hibridará con el ARN (si consideramos la hebra informativa); b) todo el ARN hibridará con el ADN; c) el medio completo hace que se expresen menos genes, lo que implica que una menor proporción del ADN hibridará con el ARN; d) mediante marcaje radiactivo del ADN o el ARN y cuantificación en columna de hidroxiapatito.

22.- Tubo 1: curva ideal de ADN de secuencia única (sin repeticiones); tubo 2: curva típica del ADN de eucariotas con 3 cinéticas de reasociación (la del altamente repetitivo, la del moderadamente repetitivo y la de secuencia única); tubo 3: como no habrá hibridación entre los ADNs de las dos especies esperamos una curva con las 3 cinéticas del eucariota, pero en general con valores de Cot más altos que en el tubo 2 porque partimos de mayor número de fragmentos distintos. Además la cinética correspondiente al ADN de secuencia única tendrá valores de Cot mucho mas altos que en el tubo 2 por estar incluído aquí el ADN de E.coli.

23.- Aproximadamente el 5%. LINE, SINEs, VNTRs.

24.- Primero mitosis y luego meiosis.

25.- Las histónicas más conservadas. Más heterogeneidad entre tejidos del mismo individuo en las no histónicas, por estar implicadas en la activación e inactivación génica.

26.- 1.- a) Híbrido N15-N14 b) híbrido 50%, ligero 50% c) híbrido 25%, ligero 75%

INGENIERIA GENETICA

1.- Sma I BamHI HindIII

0 720 2560 4970 5800

2.- En los individuos 1 y 3 el fragmento inicial de 17kb se ha reducido a 14kb por la aparición de una diana de restricción adicional para HindIII. El individuo 1 es homocigoto para esta diana nueva, mientras que el 3 es heterocigoto. Como el cromosoma con la diana adicional lleva ligado el gen de la enfermedad y este es dominante, tanto 1 como 3 estarán afectados.

3.- Cortar el genoma del maiz con EcoRI, para no romper el gen gln2. Clonar el resultado de la digestión en el plásmido previamente digerido con EcoRI, aprovechando la complementariedad de los extremos entre ambos genomas por el corte escalonado de EcoRI. Transformar la cepa de E.coli sensible a amp y tet con los plásmidos resultantes y seleccionar las colonias transformadas con el plásmido recombinante (deberán ser resistentes a ampicilina pero no a tetraciclina).

4.- Familia 1: secuencia localizada en el cromosoma X ya que los machos tienen una única banda que heredan de la madre y las hembras dos bandas, una del padre y otra de la madre. Familia 2: dos caracteres autosómicos multialélicos con segregación independiente. Familia 3: dos caracteres: la enfermedad de Huntington y un fragmento de 5kb en el ADN. Ligamiento en esta familia entre la presencia de una diana de restricción adicional (3kb+2kb=5kb) y la enfermedad, salvo en el último hijo, lo cual podría ser consecuencia de una recombinación entre ambos caracteres. A pesar de tener pocos individuos, podríamos estimar la distancia entre los dos caracteres: p=1/9.

5.- Extraer el ADN de Podospora y digerirlo con HaeII. Digerir el plásmido pBR con HaeII. Ligar y clonar en pBR todo el genoma de Podospora. Transformar E.coli con plásmidos recombinantes y hacer siembras en presencia de tetraciclina. Las colonias crecidas, sembrarlas a una placa con kanamicina y si son Kans seleccionarlas pues son plásmidos recombinantes. Hibridar con la secuencia clonada de la - tubulina de Neurospora previamente marcada. Revelar y seleccionar clon/es con hibridación positiva.

6.- Patrón de bandas del individuo 1 idéntico al del semen, por lo que individuos 2 y 3 descartados. La secuencia de ADN no varía apreciablemente entre tejidos. Describir la técnica de finger-printing

7.- a)

b) X3Y X4X3; X3Y, X3X4, X3X3, X4Y, X3X3/X3Y

c) No se puede saber el sexo

d) No

8.-II.2 sí; II3 no

9.-a) W-A B/Normal A; b) será macho no afectado; c) estimando la probabilidad de recombinación; d) 5%

RECOMBINACION EN BACTERIAS Y VIRUS

1.- 1500 colonias

2.- El B

3.- ADBIEGHCF ó ADBIEGHFC

4.- trp y tyr están ligados; p= 0.588

5.- Cepa 2 donadora, 1 aceptora. No se transmite la resistencia.

6.- a) BKARMCOEQLDN b) B1N, L2D, D3C, M4C, R5M c) 1-N, 2-N, 3-C, 4-R, 5-M

7.- a) 5´- AGCTAT-3´ pesada b) 5´-AGCTAT-3´ ligera

3´- TCGATA-5´ ligera 3´-TCGATA-5´ pesada

8.- a) El factor F se ha liberado (Hfr--->F+). En la conjugación se transfiere el factor F' con el gen lac.

9.- a) Si ser A representa resistencia, serán A b) ambos resistentes c) semejante a A (en las regiones de transformación).

10.- a) ligados b)0.2778 c) preferencia en la complementación del gen b

11.- MPZ b) MP=0.25, MZ=0.074

12.- a) B b) ADC

13.- a) Ala, Pro y Trp b) Pro-Ala-Trp c) Ala-Pro: 0.84, Pro-Trp: 0.99, Ala-Trp:0.77.

14.- a) Trp-His-Tyr b)Trp-His:0.34, Trp-Tyr: 0.4, His-Tyr: 0.13 c) Trp--0.34--His--0.13--Tyr. I=.88

15.- m--0.128--r--0.208--tn b) son mayores

16.- Análisis de cruzamientos recíprocos entre b+c-a+ y b-c+a- y obtención de cepas b+c+a+

17.- a) Ade-z2-z1 ; b) sirve para eliminar la cepa donadora y seleccionar sólo los Ade+ recombinantes.

18.- a)ExpI: MM+pro+his; expII: MM+pur+his; expIII: MM+pur+pro; b) pur-his-pro: c) his-pro los mas cercanos; d) pur-his-pro+ 2 sobrecruzamientos; pur+his-pro+ 4 sobrecruz.; pur-his+pro+ 2 sobrecruz.; pur+his+pro+ 2 sobrecruz. pero pur alejado (independiente).

19.- orden: lacY, lacZ, proC; Str para eliminar las donadoras y seleccionar las conjugantes.

20.- el gen c es independiente de a y de b; frecuencia de recombinación entre a y b= 0.252

21.- a)

b) cepa A: gal, cepa B: xyl; cepa C: ser; cepa D: str s; cepa E: mal

22.- a) cys+throleuo; b) 1: cys+leu+thro; 2: cys+leuothr+; 3: cys+leu+thr+; c)1: cys+leu+thr-; 2:cys+ leu-thr+; leu--cys-----thr

MUTACION GENICA

1.- Nitroso: sustitución G-C por A-T y A-T por G-C. b) hidroxilamina cambia C-G por T-A.

2.- a) transversión C-G a A-T y T-A a G-C b) C-G a A-T

3.- Hip. (ADN) CA_ - GT(T/C) - TG_ - CA_ ........ - GT(A/G)

corión (ADN) AA(A/G) GG_ TG_ TA(A/G/T) TT(A/G)

GC a TA TA a GC CG a TA GC a TA

(transversión) (transversión) (transición) (transversión).4.-a) No. b) Sí. ACC a ATT c) No.

5.- a) GC-TTA-CCG-AGG-CTC-CAG-CTT-AAC-GGT-AAT-GGA; b) GCT-TAC-CGA-GGC-TCC-AGC-TTC-ACG-GTA-TTT-GGA

6.- Gly(GGA) a Arg(AGA)--->Ile(AUA)--->Thr(ACA)--->Ser(AGPy)--->Gly(GGA)

_ Glu(GAA)--->Ala(GCA)--->Val(GUA)

7.- a) deleción de base 7 (A), adición base 22 (G) b) adición base 7 (GU), adición base 19 (G) c) deleción bases 7 y 8 (GA), adición base 16 (NC)

8.- a) 2 por cigoto humano b) 80000 mutaciones por generación y locus.

9.- 3´-ACC CAG TGT CGA AGT ACC TAC -5´ Informativa

5´-TGG GTC ACA GCT TCA TGG ATG -3´

10.- 2 transversiones: 1 transición a) Si. X2=0.85. No significativa

11.- Meso--->Oxi

_ Vasotocina---> Vaspresina (mamif.)---->Vasopresina (Hipop. y cerdo)

12.- 1: Thr-Ser-Ile-Ala 2) Vaca, oveja y caballo: transiciones T a C; ballena T a C y A a G; hombre C a T 3) Perro, cerdo y ballena (esperma).

13.- Ac. Nitroso: transiciones A-T a G-C ó CG a TA; 5-BU: transiciones T-A a C-G ó G-C a A-T; Proflavina: corrimiento de pauta de lectura; Hidroxilamina: transiciones G-C a A-T; EMS: transiciones G-C a A-T; 1 y 4: transición G-C a A-T; 2: deleción; 3 y 6: corrimiento de pauta de lectura; 5: transición A-T a G-C; 7 y 8: transversión (7: TA a GC; 8 C-G a A-T).

14.- Espontánea e inducida. Espontánea: 1.6x10-3; Inducida 2.04x10-2; en otros puntos 1.78x10-1.

15.- tasa de mutación= 9.9x10-7.

16.- Acondroplasia, podría ser. Hemofilia, no.

17.- Es un alelo dominante "A" que muta a "a", o sufre deleción; a) 6/900; b) 6 (que deberían ser hembras)/ total de hembras

EXPRESION DEL MATERIAL HEREDITARIO

1.- Se forman bucles en el ADN correspondientes a las regiones A, B, C, D, E, F y G (intrones).

2.- Lis:AAA, Iso:AAU, Tyr:AUU, Fen:UUU

3.- a) 1/8 b) 1/4 c) 1/8 d) 1/8

4.- a) 6 Fen, 30 Ser, 30 Leu, 150 Pro b) 1 Lys, 5 Asn, 6 Thr, 1 Gln, 5 His, 80 Fen, 40 Leu, 20 Thr, 24 Ile, 24 Ser, 4 Stop c) 3 Pro, 2 Thr, 1 Lys, 1 Asn, 1Gln, 1 His.

5.- a) No. La relación (A+U)/(C+G) se mantiene para una o dos hebras. b) Si. Si es duplexo (A+G)/C+U)= 1. B. subtilis puede tenerlo duplexo; E. coli, no.

6.- a) AA(A/G) AGU CCA UCA CUU AAU GC_ AA(A/G) ARN normal

AAA GUC CAU CAC UUA AUG GC_ ARN mutado. Deleción de tercera base (A ó G), inserción de G (en posición 18).

7.- a) 120 nucleótidos b) 1.- parentales CA(A/G) y AG(U/C); Recombinantes I CG(U/C) y AA(A/G); Recombinantes II CA(UC) y AG(A/G); Dobles recombinantes CG(A/G) y AA(U/C). 2.-: 4 x10-7.

8.- Debería tener 2.92 x 105 aminoácidos, que supera al número codificable por su ADN. En moléculas grandes, los errores harían no funcionales a la gran mayoría. Sin embargo, en moléculas pequeñas (137 aminoácidos por péptido), habría un error en uno de cada 73 péptidos.

9.-a) Asn 2A:1C; Gln 2A:1C; His 2C:1A; Leu 2U:1C ó 1U:2C; Lys 3A; Fen 3U; Pro 1A:2C, 3C, 2C:1U; Ser 2U:1C, 1U:2C; Thr 2A:1C ó 2C:1A b) Si, porque para algún aminoácido existe más de un triplete codificante.

10.- Arg: AGA, Glut: GAG; Glu-Lys GAA; Lys-Glu AAG; Gln: GAC; Thr ACA; Asp CAG.

11.- Mutantes: 1: cambio de base (5´-12); 2: cambio de base (codón STOP 5´-9); 3: deleción (5´- 7) e inserción (5´- 19); 4: inversión del ADN y cambio de hebra patrón. b) 3´- CG_ GG_ ACC TCA CTT TTT AC(G-T) GT(T-G)-5´

12.- a) Una de las pautas de lectura origina un codón sin sentido. b) se encuentra un codón sin sentido durante la lectura c) consultar tabla del código.

13.- Genotipo Producción de -galactosidasa

--------------------------------------------------------------------------------------

No lactosa Lactosa

--------------------------------------------------------------------------------------

I+O+Z+ - +

I-O+Z+ + +

IsOcZ+ - -

I+OcZ- - -

GENETICA CUANTITATIVA

1.- Si aparecen individuos mayores o menores será debido a la varianza ambiental, pues la varianza genética es cero en parentales y F1.

2.- a) 16 cm. b) corresponden a los términos del desarrollo de (p+q+r)3, donde p=1/4, q=1/2 y r=1/4. c) 2/64 d) 20/64. La altura viene dada por 4+ 8 x exponente de p + 4 x exponente de q.

3.- Dos loci con dos alelos y aditividad de los dominantes o recesivos.

4.- Media= 47,92, s2=97,32 b) si.

5.- Media= 12,65, s2= 12,03. Dos grupos de valores con distribución próxima a la normal.

6.- a) En la F2 deberían aparecer individuos con los caracteres extremos, y otros con valores intermedios, siendo la F1 homogénea en torno a los valores intermedios. b) ajustando la proporción de los individuos de fenotipo extremo de la F2 a la de una segregación de 1, 2, 3....... loci.

7.- Dos loci con dos alelos.

8.- a) La variabilidad de la F1 es ambiental. La de la F2 es genética y ambiental. b) Al efecto de los distintos genotipos unido al del ambiente. c) Depende de la importancia del componente genético de este carácter. d) Posiblemente no, porque el alto número de hojas tendría un componente fundamentalmente ambiental.

9.- a) 75 b) Se esperaría que fueran iguales, con mayor varianza la F2. c) 15/64 d) 12/64 e) 3/256 f) 2/256

10.- a) Media 1= 10.4, media 2= 10.3; las dos muestras no diferen significativamente. b) 1: 12,92 crías, 2: 6.36 crías.

11.- Si: t=35, existen diferencias significativas.

12.- a) B= 0.34 b) 14.2

13.- VA= 29.05, VD= 2.43, VE= 8.864

GENETICA DE POBLACIONES

1.- No está en equilibrio. Frecuencias de equilibrio: p=0.14, q=0.86.

2.- 32%

3.- a) LM=0.755, LN=0.245 b) 210

4.- t=0.44

5.- No. p=0.28, q=0.34, r=0.38. AA=0.0784, AB=0.1904, AO=0.2128, BB=0.1156, BO=0.2584, OO=0.1444

6.- m=0.25

7.- No varían

8.- 0.00005

9.- p=0.33, q=0.66

10.- qt= 0.038

11.- 90 generaciones

12.- Indice más corto que anular (AA): 4%; índice más largo que anular (Aa+aa): 96%.

13.-No estaba en equilibrio.

14.- No está en equilibrio.

15.- a) 3º b) p=0.3, q=0.7. Np2=9, N2pq=42, Nq2=49 c) Pobl.1: 2 generaciones; pobl.2 y 4: 1 generación.

16.- a) No son la misma población. b) p1=0.75, q1=.25

17.-a) Las frecuencias alélicas no cambian b) p=0.614, q=0.385

18.- a) p2+q2+r2+2pq+2pr+2qr b) p=0.6, q=0.3, r=0.1 c) 4:4:1

19.- X2=132.3 : no está en equilibrio. b) se alcanzará el equilibrio: p=0.505, q=0.32, r=0.17 c) granate (AA): 25.5%, carmesí (AB): 32.32%, rojo pálido (AC): 17.17%, rojo fucsia (BB): 2.89%, rosa pálido (BC): 10.88%, blanca (CC): 10.24%