Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

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UNIVERSIDAD DE SAN MARTÍN DE PORRES FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE CIENCIAS BÁSICAS FISIOLOGÍA GUÍA DE PRÁCTICAS PROFESOR FUNDADOR: Dr. Frank Lizaraso Caparó RESPONSABLE DE LA ASIGNATURA: Dr. Enrique Ruiz Mori COORDINADOR DE ASIGNATURA: Mg. José Torres Solís PERSONAL DOCENTE Dr. Víctor Avalo Chávez Mg. Hernán Ruiz Mori Dra. Vilma Santiváñez García Dr Luna Ordoñez Geisen Dr Chipana Ramos Anthony Dr Sanchez Huasipoma Cesar Dr Cano Navarro Jose Dr, Cruz Pasos Roberto Dr Fuentes Rivera Jose Dra Rivara Castro Alda Dr. Jorge Rodriguez Montes de Oca Mg. Juan Carlos Villanes Cárdenas 2016

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UNIVERSIDAD DE

SAN MARTÍN DE PORRES

FACULTAD DE MEDICINA

DEPARTAMENTO DE

CIENCIAS BÁSICAS

FISIOLOGÍA

GUÍA DE PRÁCTICAS PROFESOR FUNDADOR: Dr. Frank Lizaraso Caparó RESPONSABLE DE LA ASIGNATURA: Dr. Enrique Ruiz Mori COORDINADOR DE ASIGNATURA: Mg. José Torres Solís

PERSONAL DOCENTE

Dr. Víctor Avalo Chávez Mg. Hernán Ruiz Mori

Dra. Vilma Santiváñez García Dr Luna Ordoñez Geisen

Dr Chipana Ramos Anthony Dr Sanchez Huasipoma Cesar

Dr Cano Navarro Jose Dr, Cruz Pasos Roberto

Dr Fuentes Rivera Jose Dra Rivara Castro Alda

Dr. Jorge Rodriguez Montes de Oca Mg. Juan Carlos Villanes Cárdenas

2016

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PRACTICA DE LA MEMBRANA CELULAR

VIDEO FORUM

La membrana celular es una estructura fundamental y primordial de todas y cada una de las

células. La membrana está compuesta por una bicapa de lípidos anfifática (cabeza polar

hidrofílica y cola hidrofóbica) que la hace impermeable a los solutos, incluyendo iones,

pequeñas moléculas inorgánicas y proteínas.

OBJETIVO:

Destacar la importancia en la fisiología celular de los sistemas de membrana.

Conocer las funciones que cumple la membrana celular.

Establecer el rol que cumplen los radicales libres.

MATERIAL: Video: La Membrana Celular

SEGUN EL VIDEO DISCUTA Y COMENTE EL SIGUIENTE CUESTIONARIO:

1. ¿Cómo aparece la vida?

2. ¿Por qué se debe utilizar el término de Sistemas Membranales?

3. ¿Cómo está constituida la Membrana Celular?

4. ¿Qué tipo de proteínas hay en la membrana celular?

5. ¿Cuáles son los 5 roles de la Membrana Celular?

6. ¿Cómo se puede explicar el proceso de envejecimiento celular?

7. ¿Qué genera la diferencia de cargas a través de la membrana?

8. ¿En qué consiste la hiperpolarización de la Célula?

9. Explique la cascada del Acido Araquidónico

10. ¿Dónde se produce el Tromboxano A2 y qué función cumple?

11. ¿Dónde se produce la Prostaciclina y qué función cumple?

12. ¿Qué procesos sufren los Acidos Grasos membranales insaturados?

13. ¿Qué es un radical libre?

14. Mencione 3 procesos ocasionados por los Radicales Libres

15. ¿Cuál es la función de los antioxidantes y dónde se encuentran?

PREGUNTAS:

1. Mencione cómo se producen los radicales libres en el organismo

2. Mencione ejemplos de Antioxidantes de membrana, intracelular y extracelular.

3. ¿En qué consiste el estrés oxidativo?

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4. ¿En qué alimentos se encuentran los antioxidantes?

5. Se puede agregar antioxidantes a los alimentos, y ¿para qué serviría?

PRACTICA DE NEUROFISIOLOGIA

REFLEJOS

El reflejo no es más que la respuesta motriz o secretoria, independiente de la voluntad,

provocada inmediatamente después de la aplicación de un estímulo sensitivo o sensorial,

que puede ser o no consciente.

El arco reflejo contiene 5 componentes fundamentales

1- Un receptor

2- Una neurona sensorial

3- Una o más sinapsis dentro del SNC

4- Una neurona motora

5- Un órgano efector que usualmente es un músculo

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Los Reflejos se clasifican en 4 categorías:

• 1. Reflejos osteotendinosos o profundos.

• 2. Reflejos cutáneomucosos o superficiales.

• 3. Reflejos de automatismo medular.

• 4. Reflejos de postura y actitud.

OBJETIVO:

1. Analizar el arco reflejo

2. Estudiar algunos reflejos en el hombre.

MATERIAL:

- Martillo

- Algodón

- Baja lengua

- Linterna

PROCEDIMIENTO:

1. Reflejos osteotendinosos o profundos: Son aquéllos en los que la respuesta se obtiene

por la aplicación de un estímulo mecánico (golpe con el martillo de reflejos) sobre los

tendones y ocasionalmente, sobre el hueso o el periostio. Deben ser considerados como

reflejos propioceptivos. El mecanismo es generado por estiramiento muscular.

1.A. Reflejos del orbicular de los párpados: Percutiendo la arcada superciliar o la raíz de la

nariz estando el enfermo con los párpados entornados, se produce la contracción del

orbicular de los párpados y por lo tanto, la oclusión palpebral bilateral Es recomendable

realizarlos con los ojos cerrados.

1.B. Reflejo maseterino: El sujeto permanece con la boca entreabierta y en esa posición se

percute con el martillo directamente el mentón o se coloca el índice de la mano izquierda

transversalmente debajo del labio inferior. La respuesta es la elevación de la mandíbula.

1.C. Reflejo bicipital. Mantenga el antebrazo del sujeto en semiflexión y semisupinación,

descansando sobre el suyo sostenido por el codo. El explorador apoya el pulgar de su mano

libre sobre el tendón del bíceps del sujeto, en la fosa antecubital y percute sobre la uña del

pulgar con un martillo. Se obtiene la flexión del antebrazo sobre el brazo.

1.D. Reflejo tricipital: Con una mano se toma el antebrazo del sujeto por el codo y se

sostiene sobre su antebrazo, colocado en ángulo recto con el brazo y se percute con la parte

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más ancha del martillo el tendón del tríceps (cuidando de NO percutir el olécranon). La

respuesta es la extensión del antebrazo sobre el brazo (reflejo tricipital).

1.E. Reflejo rotuliano o patelar: Sujeto sentado en una silla con los pies péndulos y

tratando que se encuentre relajado. Se percute directamente sobre el tendón rotuliano. La

respuesta es la extensión de la pierna.

1.F. Reflejo aquíleo. Sujeto puesto de rodillas sobre la cama, camilla o una silla, pies fuera

del borde: se lleva ligeramente hacia delante la planta del pie y se percute sobre el tendón

de Aquiles o tendón calcáneo.La respuesta es la extensión del pie.

2. Reflejos Cutaneo-Mucosos o Superficiales: Se obtienen como respuesta a la

aplicación de un estímulo, ya sea sobre la piel, o sobre las membranas mucosas. Se utiliza

para ello una aguja común, o un alfiler (esto para la exploración a nivel cutáneo) y un

algodón cuando se exploren las mucosas.

2.A. Reflejo Corneano: El estímulo de la córnea y de la conjuntiva bulbar con un pañuelo

(punta de ángulo) o con un pequeño trozo de algodón, provocan la contracción del orbicular

de los párpados. Es necesario introducir el algodón lateralmente desde fuera del campo

visual del sujeto para suprimir el reflejo defensivo. La Vía aferente: V par (rama oftálmica).

La Vía eferente: VII par.

2. B. Reflejo Faríngeo o Nauseoso: Al excitar el velo del paladar o la pared posterior de la

faringe (con un hisopo), se produce la contracción de los constrictores de la faringe,

acompañada de náuseas. La Vía aferente: IX par y la Vía eferente: X par.

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Reflejo Pupilar de acomodación: observe el diámetro pupilar en un sujeto al cual se le

invita a mirar fijamente la punta del dedo índice del operador (colocado a 10 cm de

distancia de los ojos), luego se le indica al observar un objeto colocado a gran distancia.

Compare el diámetro pupilar en ambas situaciones.

Reflejo Fotomotor: ilumine un ojo con una linterna, y observe el diámetro de la pupila del

ojo iluminado y compare con la pupila del otro ojo.

PREGUNTAS:

1. Realice un diagrama que explique un arco reflejo

2. ¿Cuántos tipos de arcos reflejos existen? Mencione ejemplos

3. ¿Qué factores pueden modificar un reflejo?

4. ¿Qué es un reflejo miotático o de estiramiento?

5. ¿Qué vías sigue el reflejo de Babinski y cuál es su importancia?

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PRACTICA DE NEUROFISIOLOGIA

COORDINACION MOTORA

El cerebelo es el Organo encargado de mantener el equilibrio y la coordinación de los

movimientos.

Se denomina un movimiento coordinado cuando el desplazamiento de un segmento de un

miembro o de todo el cuerpo responde en forma exacta, rápida y adecuada al fin propuesto.

En la coordinación y el equilibrio son necesarias la conjunción armónica de cinco factores:

la sensibilidad propioceptiva, el componente vestibular, el cerebelo, el componente visual y

el área cortical respectiva.

OBJETIVO:

1. Analizar la taxia (coordinación).

2. Estudiar el equilibrio (estático y dinámico)

MATERIAL:

- Reloj

- Silla giratoria

PROCEDIMIENTO:

1. Prueba índice-naríz: Se ordena al sujeto (con los ojos cerrados) tocar la punta de su

naríz con la yema del dedo índice de una mano partiendo de cierta distancia. Primero

lentamente y luego rápidamente. (tipometría, hipermetría).

2. Prueba Oreja-Indice: Con los ojos cerrados se toca la oreja con el índice de la mano del

lado opuesto.

3. Prueba de afrontación de índices: Se ordena al sujeto abrir y cerrar los brazos en forma

repetida, procurando tocarse las puntas de los dedos índices al cerrarlos. Alternar la

maniobra con ojos abiertos y ojos cerrados.

4. Maniobra de Romberg: El sujeto en bipedestación con los pies juntos, se le indica que

cierre los ojos. Cerciorarse que el paciente mantenga esta postura sin presentar oscilación u

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otro movimiento anormal. Ordenar al sujeto inclinarse hacia atrás hasta donde le sea

posible.

5. Coordinación estática: Se ordena al sujeto, con los pies juntos, permanecer en actitud

firme. Luego se le solicita que cierre los ojos. Se le ordenará entonces, que se pare con un

pie delante del otro o en un solo pie adoptando la posición del "4". Se le pedirá que adopte

cada una de estas posiciones, además con los ojos cerrados.

6. Prueba rotacional: El Nistagmus es el movimiento fásico del globo ocular,

caracterizado por la sucesión de dos sacudidas de los ojos. El nistagmus puede ser

espontáneo o provocado.

Se sienta en una silla rotatoria al sujeto, con la cabeza inclinada 30º hacia delante y los ojos

cerrados; se hace girar la silla a 10 vueltas cada 15 segundos, luego de un tiempo

prudencial, se detiene el movimiento y se coloca el dedo del observador a 20cm de la

comisura externa del ojo opuesto al sentido de la rotación, ordenando al sujeto que mire ese

dedo. Se puede observar un Nistagmus de dirección opuesta a la rotación, y cuya duración

debe medirse con el reloj, siendo de 25 seg. para el laberinto izquierdo y de unos 35 seg.

para el derecho.

Luego de un tiempo prudencial se repite la prueba haciendo girar al sujeto en el sentido

contrario. De esta forma se exploran los canales semicirculares horizontales de ambos

laberintos. Si se desea explorar los canales semicirculares verticales se inclina la cabeza del

sujeto 60º hacia atrás.

PREGUNTAS:

1. ¿Cuáles son las funciones del Cerebelo?

2. ¿Qué es la Taxia y qué mecanismos la regulan?

3. ¿Cuál es la función del Vestíbulo en la coordinación de movimientos?

4. Una persona sin visión ¿presentaría nistagmus tras girar sobre sí mismo varias veces

5. ¿Qué indica una marcha zigzagueante y marcha en estrella de Babinski-Weil

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PRACTICA DE NEUROFISIOLOGIA

ORGANO DE LOS SENTIDOS

EVALUACION DE LA VISION

La imagen que se forma sobre la retina es gracias a una serie de estructuras de lentes que

enfocan la imagen sobre la superficie retinal. Esta imagen se encuentra en forma invertida

con respecto al objeto, sin embargo la mente percibe los objetos en su posición normal.

OBJETIVO:

Estudiar ciertas propiedades de la imagen en la retina así como en el cerebro

MATERIAL:

- Cuadros demostrativos

PROCEDIMIENTO:

1. Punto ciego: En a retina hay una zona por donde ingresan las fibras del Nervio Optico

conjuntamente con los vasos sanguíneos, por lo tanto en ese sector no hay receptores

sensoriales. Esta zona se denomina “Punto Ciego” en la visión y no se percibe porque es

superpuesta con la imagen del otro ojo.

Método: observe con cada ojo por separado los cuadros demostrativos, describa e

interprete los resultados

2. Visión Binocular: La visión de un ojo difiere en cierto grado de la del otro ojo debido a

la ubicación de los globos oculares en la cara. La unificación cortical de las dos imágenes

de cada ojo (visión monocular) evita que veamos “doble”.

Método: estirar el brazo y enfocar el dedo pulgar, primero con los dos ojos y después con

el ojo derecho e izquierdo alternativamente. Describa e interprete los resultados.

3. Visión Estereoscópica: las retinas de los ojos reciben imágenes ligeramente distintas,

pero es la corteza visual la que integra dicha información y crea representaciones

tridimensionales de los objetos.

Método: observe los cuadros demostrativos, describa e interprete los resultados

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EVALUACION DE LA AUDICION

La audición es un fenómeno mecanoreceptivo, en que el oído capta el sonido a través de la

vibración de la membrana timpánica, la cual produce una serie de movimiento de los

huesesillos (martillo, yunque y estribo) que conectan sobre la membrana oval, la cual al

vibrar genera un movimiento de la endolinfa del oído interno (caracol) que estimula la

membrana basilar donde se ubica el Organo de Corti.

OBJETIVO:

Estudiar las propiedades de conducción, transmisión y percepción del sonido.

MATERIAL:

- Diapasón de 128 vibraciones.

PROCEDIMIENTO:

1. Prueba de Weber. Se hace vibrar un diapasón y se coloca sobre el vertex de la persona.

El individuo con una audición normal percibirá la vibración de inmediato por ambos lados.

Pero si padece sordera de transmisión en un oído, oirá mejor por el oído defectuoso, ya que

el ruido ambiental es percibido en menor medida por este oído, no interfiriendo en la

percepción de sonido del diapasón que le llega por vía ósea.

2.- Prueba de Rinne. La percepción aérea es casi tres veces más prolongada que la

percepción ósea. Se hace vibrar el diapasón y se apoya sobre el apófisis mastoides, cuando

toda percepción ha cesado, se coloca delante del conducto auditivo externo del mismo lado,

si el paciente refiere que vuelve a escucharlo es Rinne positivo.

3.- Prueba de Schwabach. Se coloca el diapasón vibrando sobre la apófisis mastoides y se

mide el tiempo en segundos que tarda el sonido en desaparecer, si dura más de 18 segundos

se dice que la prueba es prolongada, y si dura menos es acortada.

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EVALUACION DEL TACTO

A nivel de la dermis, se encuentran la mayor parte de las estructuras que son las receptoras

de la sensibilidad cutánea. Estas han sido tradicionalmente divididas en 2 categorías: las

terminaciones nerviosas libres y las terminaciones nerviosas encapsuladas.

De acuerdo con la teoría de Von Frey, existiría una estricta relación entre la naturaleza de

las terminaciones nerviosas y los 4 tipos de sensaciones que pueden lograrse estimulando la

piel. Así, la activación de las terminaciones nerviosas libres produciría la sensación de

dolor, la de las terminaciones de Ruffini la de calor, la de las terminaciones bulbares de

Krause la de frió y la de los corpúsculos de Meissner la de contacto o presión.

OBJETIVO:

Estudiar las diferentes sensaciones que se generan en el cuerpo humano.

MATERIAL:

- Algodón

- Agujas

- Compás

PROCEDIMIENTO:

1. Capacidad de Localización: El sujeto permanecerá con los ojos vendados y se le

aplicará un estímulo con la punta de un lápiz sobre la piel, el sujeto debe precisar la

localización.

2. Exploración Táctil: coloque un trozo de algodón sobre la palma de la mano e invite al

sujeto a informar cuando deja de percibir el trozo de algodón. Explore el pulpejo de los

dedos, la palma y el dorso de la mano, traten de NO tocar los pelos en esta zona. Utilice un

reloj cronómetro para medir el intervalo de tiempo entre el comienzo de la estimulación

táctil y la desaparición de contacto con el algodón.

3. Sensación Dolorosa: con una aguja estimule suavemente diversas regiones de la piel:

mano, antebrazo, cara, tórax. Observe la relación entre la magnitud del estímulo y la

sensación dolorosa evocada.

4. Discriminación de distancia: mediante las dos puntas de un compás, mida el mínimo de

distancia que es capaz de ser percibida distintamente como dos estímulos separados a nivel

de lo dedos, el dorso de la mano, palma de la mano, brazo y espalda. El estudio se inicia

colocando las dos puntas del compás juntas, separándolas luego poco a poco. Se repite la

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prueba hasta encontrar la distancia en la que se pasa de una sensación de tacto a una donde

se sienta las dos puntas del compás.

5. Estereognosis: con los ojos vendados trate de reconocer al tacto diversos objetos.

EVALUACION DEL GUSTO Y OLFATO

La lengua es el principal órgano gustativo y en su superficie tiene pequeñas papilas

gustativas. La distribución de los receptores gustativos no es homogénea en la lengua sino

que se disponen en áreas concretas de la superficie de la lengua. Las capacidades receptoras

gustativas se agrupan en cuatro categorías primarias; los sabores dulce y salado tienen

máxima sensibilidad en la parte anterior de la lengua, el sabor ácido, a ambos lados de la

misma, y el amargo, en la parte posterior.

Gracias al aire aspirado por la nariz, las moléculas olorosas llegan a la cavidad nasal, y en

su parte superior se ubica el epitelio olfativo (que tiene 3 tipos de células, siendo las

neuronas olfativas las más importantes), el cual a través del I Par Craneal llevan esta

sensación a ser consciente.

OBJETIVO:

Estudiar el sentido del gusto, la distribución de las papilas gustativas.

MATERIAL:

- Cloruro de sodio

- Agua destilada

- Azúcar

- Amargo

- Manzana, cebolla, papa, limón

- Pipetas

PROCEDIMIENTO:

1. Localización de los Receptores Gustativos.

Se realiza un primer lavado de la boca con agua destilada y se deposita una gota de una

disolución sobre las diferentes zonas de la lengua donde se acumulan los receptores

gustativos (parte anterior, laterales y posterior de la lengua), luego realice nuevo lavado de

la cavidad oral y deposite otra solución, haga las veces que fuese necesario.

2.- Confusión Olor-Sabor.

Se solicita que un asistente cierre los ojos y se tapa las fosas nasales, luego se introduce con

unas pinzas en ensayos sucesivos y de forma alternativa un trozo de cebolla, papa, manzana

y limón, pidiendo que lo identifique, a continuación se destapan las fosas nasales y se pide

de nuevo que lo identifique

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PREGUNTAS:

1. ¿Cómo define a los receptores sensoriales?

2. Explique como se produce la Visión Nocturna

3. Explique como un fenómeno sonoro finalmente se transmite al cerebro.

4. ¿Qué diferencia hay entre la sensibilidad epicrítica y protopática?

5. Realice un diagrama de los receptores táctiles y escriba sus funciones?

6. Haga un diagrama de la lengua y en donde se ubican las Papilas gustativas

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PRACTICA DE FISIOLOGÍA CARDIACA

PRESIÓN ARTERIAL

La Presión Arterial expresa el equilibrio entre la capacidad de los lechos vasculares y

su contenido de sangre. Matemáticamente se puede definir como:

Presión Arterial = Gasto Cardiaco x Resistencia Periférica

teniendo en cuenta que el Gasto cardiaco es la cantidad de sangre que sale del

corazón en un tiempo dado (Volumen de Eyección x Frecuencia Cardiaca) y la

Resistencia periférica es la oposición que ejercen los vasos al paso de la sangre

CLASIFICACION DE LA PRESION ARTERIAL

REPORTE DEL JNC 7 y JNC 8

Categoría Presión Sistòlica Presión Diastòlica

Normal < 120 y < 80 mmHg

PreHipertensión 120 – 139 o 80 a 89 mmHg

HIPERTENSION:

Estadío I: 140 - 159 o 90 - 99 mmHg

Estadío II: > 160 o > 100 mmHg

Existen cuatro tipos de Presión básica:

1. Presión Sistólica o Máxima

2. Presión Diastólica o Mínima

3. Presión de Pulso

4. Presión Arterial Media

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OBJETIVOS:

a) Comprender los principios básicos y las fuerzas que determinan la presión arterial, el

flujo sanguíneo y la resistencia periférica en el sistema vascular.

b) Determinar la presión arterial y familiarizarse con la manera de medirla mediante el

método palpatorio o de Riva Rocci y el método auscultatorio de Korotkoff.

MATERIAL Y MÉTODOS:

1) Esfingomanómetro anaeroide ó de mercurio con brazalete adecuado para adultos

2) Estetoscopio

Para realizar la medición de la Presión Arterial se requiere realizar siguiendo la técnica

apropiada, que considera los siguientes elementos:

El paciente debe haber descansado por lo menos por 5 minutos antes de la medición

Estando el paciente sentado, con el brazo apoyado (no debe haber ropa oprimiendo el

brazo) y el brazalete colocado al nivel del corazón y sin haber fumado o consumido cafeína

en los 30 minutos previos a la toma de presión, se iniciará la medición, preferentemente con

un esfingomanómetro de mercurio.

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Asegurarse de que el brazalete sea del ancho adecuado (ha de guardar relación con la del

miembro en que se coloca, así para el brazo el brazalete es de 13 cm de ancho, mientras que

para la pierna es de 18 a 20 cm, cubriendo el 80% de la circunferencia de dicho miembro)

y el borde inferior debe estar a 2 – 3 cm por encima de la flexura del codo, de tal forma que

se pueda colocar el estetoscopio sobre la arteria braquial.

La columna de mercurio debe ser subida unos 30 mmHg por encima del punto en que el

pulso radial desaparece, para que ha continuación se proceda al desinflado lento (2 a 3

mmHg/segundo)

La aparición del primer sonido de Korotkoff (fase 1) se utiliza para definir la presión

sistólica y la desaparición del sonido (fase 5), define la presión diastólica (anotar el brazo

en el cual se realizó la medición).

En aquellas situaciones en que no desaparezca los ruidos auscultatorios como sucede en los

ancianos, niños o en insuficiencia aórtica, se utilizará para la Presión Diastólica la fase 4 de

Korotkoff.

Realizar 2 ó más tomas de presión, separadas por 5 minutos, posteriormente, promediarlas

Si las cifras de presión se encuentran sobre 139/89 mmHg, se sugiere realizar un control

seriado de presión arterial que incluye la medición en por lo menos otras 2 oportunidades,

además de la toma inicial. Luego se deben promediar las cifras y así permitir clasificar al

paciente en una de las etapas de la hipertensión, lo que implica conductas distintas a seguir.

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La primera vez se realiza la medición en ambos brazos luego sólo en el brazo con cifras

mayores.

Presión

Arterial

Decúbito Dorsal Sentado De Pie

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

P. A. Sistólica

P. A. Diastólica

La Presión Arterial no es un valor permanentemente constante, sufre variaciones constantes

dependiendo del estado emocional, de la actividad, del esfuerzo físico, del consumo de

café, tabaco, etc.

Presión

Arterial

Post-Ejercicio Hiperventilando Agua Helada

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

Brazo

Derecho

Brazo

Izquierdo

P. A. Sistólica

P. A. Diastólica

Indice Cintura – Cadera: Es una medida antropométrica específica para medir los niveles

de grasa intraabdominal. Permite evaluar el riesgo para desarrollar enfermedades

cardiovasculares o metabólicas.

El índice según la Organización Mundial de la Salud, se obtiene midiendo el perímetro de

la cintura a la altura de la última costilla flotante, y el perímetro máximo de la cadera a

nivel de los glúteos.

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Interpretación según el ATP III:

ICC = 0,80 normal para mujeres.

ICC = 0,90 normal para hombres.

Interpretación según la OMS

ICC = 0,80 normal para mujeres.

ICC = 1,00 normal para hombres.

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PREGUNTAS:

1. ¿En qué consiste el MAPA y el AMPA?

2. ¿Qué consideraciones se debe tener al realizar un MAPA?

3. ¿Qué consideraciones se debe tener al realizar un AMPA?

4. Haga un diagrama de los ruidos de Korotkoff y explique su importancia

5. ¿Cómo se comporta la presión arterial durante la noche o durante el sueño?

6. ¿Cómo se comporta la presión arterial sistólica y cómo la diastólica durante el

ejercicio?

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PRACTICA DE FISIOLOGIA CARDIACA

ELECTROCARDIOGRAFÍA

El electrocardiograma es la representación gráfica de la actividad eléctrica del corazón que

se obtiene con un electrocardiógrafo.

El electrocardiograma es una gráfica de las variaciones del potencial eléctrico del músculo

cardiaco recogida en la superficie del cuerpo por electrodos adecuadamente posicionados y

conectados a un electrocardiógrafo. Los cambios de este potencial eléctrico durante un

ciclo cardiaco describen una curva característica formada por una serie de ondas,

segmentos e intervalos que ascienden o descienden en relación con la línea basal (nivel

isoeléctrico).

El electrocardiograma es una parte fundamental del estudio y monitoreo de los pacientes ya

que no sólo expresa la actividad eléctrica del corazón sino nos informa del ritmo cardiaco,

la regularidad de los latidos, la posición y el tamaño de las aurículas y los ventrículos.

1. La excitación inicia en el nodo sinoauricular que está localizado en la pared derecha

proximal a la desembocadura de la vena cava inferior. El potencial de acción del

nodo sinoauricular se propaga por las aurículas y estas se contraen a su paso

generando la formación de la ONDA P

2. El potencial de acción llega al nodo auriculoventricular, localizado en el tabique

entre las aurículas y pasa al Haz de His, el retardo en la conducción genera el

SEGMENTO PR.

3. El potencial de acción se distribuye por las ramas izquierda y derecha del haz de His

hacia las fibras de Purkinje.

4. Las fibras de Purkinje distribuyen el potencial de acción en los ventrículos y estos

se contraen 200 ms después de las aurículas, generando el COMPLEJO QRS

5. Finalmente el ventrículo se repolariza: ONDA T.

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Lectura de un Electrocardiorama:

1. Frecuencia

2. Ritmo

3. Eje eléctrico: En que cuadrante se ubica

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4. Medidas de Ondas e Intervalos.

Onda P: < 0.10”

Intervalo PR: 0.12 a 0.20”

Complejo QRS: < 0.10”

Intervalo QT: según tablas FC: 100 QT: 0.30”

95 QT: 0.31

90 QT: 0.32

Intervalo QT corregido: QTc = QT medido / √ intervalo R-R em seg

(Fórmula de Bazett)

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OBJETIVOS:

1) Interpretar las diferentes ondas, segmentos e intervalos de un ECG normal

2) Determinar la utilidad del ECG en la práctica clínica

3) Conocer el procedimiento del registro de un electrocardiograma

MATERIAL Y MÉTODOS:

1) Camilla para la toma de ECG

2) Electrocardiógrafo, electrodos, cables de conexión, papel de registro

electrocardiográfico y material conductor (gel o alcohol).

3) Se nombrará un alumno voluntario para la toma de ECG por cada turno de práctica.

Para el registro de ECG el alumno deberá estar acostado sobre una superficie plana. El

lugar donde se coloquen los electrodos debe estar limpio y se debe colocar gel para que el

contacto eléctrico sea completo.

Los electrodos han de colocarse el los lugares correctos y deben fijarse con firmeza, pero

sin apretar demasiado, el alumno no se deberá mover ni hablar durante el procedimiento,

deberá mantener una respiración tranquila.

Los electrodos de miembros se deben colocar sin equivocarse en brazo derecho, brazo

izquierdo, pierna derecha y pierna izquierda. Mientras que los seis electrodos precordiales

según el diagrama.

Page 24: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Derivadas Bipolares de miembros:

Derivada I: brazo izquierdo (+) y brazo derecho (-)

Derivada II: pierna izquierda (+) y brazo derecho (-)

Derivada III: pierna izquierda (+) y brazo izquierdo (-)

Derivada Unipolares de miembros:

aVR: se evalúa la actividad eléctrica desde el brazo derecho

aVL: se evalúa la actividad eléctrica desde el brazo izquierdo

aVF: se evalúa la actividad eléctrica desde la pierna izquierda.

Derivada Unipolares Precordiales: V1 a V6

Consideraciones mientras se realiza la toma del EKG:

• Para evitar interferencias en el trazado desconectar aparatos eléctricos cercanos a la

camilla.

• Seleccione la velocidad Standard del equipo a 25 mm/seg.

• Calibre o pulse el botón “auto” de acuerdo al modelo del aparato.

• Selecciones y registre las derivaciones (6 segundos, 3 complejos).

• Observe la calidad del trazado si no es adecuado repítalo nuevamente.

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Posteriormente los alumnos se desplazarán por grupos a sus respectivas mesas con sus

tutores donde se realizará la lectura de los trazos electrocardiográficos.

PREGUNTAS:

1) Describa como se genera una onda positiva en el EKG y cómo una onda negativa.

2) En un gráfico correlacione el potencial de acción con las ondas del EKG

3) ¿Qué datos se deben consignar en un informe electrocardiográfico?

4) Haga un diagrama de las regiones que exploran las derivaciones de miembros y de

las derivaciones precordiales.

5) ¿En qué consiste el Holter y cuál es su utilidad?

Page 26: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PRACTICA DE FISIOLOGIA RESPIRATORIA

ESPIROMETRIA

La ventilación es el proceso por el cual el aire ingresa a través de las vías respiratoria

(inspiración) y es eliminado (espiración). El volumen de aire que se moviliza en cada ciclo

respiratorio se denomina Volumen Tidal o Volumen de aire corriente, el cual suele ser en

un individuo normal de aproximadamente 500 ml.

La espirometría de "spiros" soplar, respirar y "metría" medida, es el registro y la medición

de los volúmenes pulmonares durante la respiración, la cual puede ser realizada en forma

normal o en forma forzada. Esta prueba de función pulmonar se realiza con el espirómetro,

en cual puede ser de diferentes modelos: campana sellada con agua, secos de pistón, secos

de fuelle y pneumotacógrafos.

ESPIRÓMETROS DE AGUA O DE CAMPANA. Fueron los primeros aparatos que se

utilizaron, y aún se emplean en laboratorios de función pulmonar. Se trata básicamente de

un circuito de aire que empuja una campana móvil, que transmite su movimiento a una guía

que registra el mismo en un papel milimetrado. La campana va sellada en un depósito de

agua. Sirve para registrar los volúmenes pulmonares (excepto el volumen residual). Se

utilizan principalmente en los laboratorios de función pulmonar.

Page 27: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Espirómetro de agua. a) Boquilla. b) Tubo del espirómetro. c) Campana. d) Cilindro de doble pared. e) Agua para sellar la campana

1. Capacidad vital forzada (FVC o CVF): es el máximo volumen de aire espirado, con el

máximo esfuerzo posible, partiendo de una inspiración máxima. Se expresa como volumen

(en ml) y se considera normal cuando es mayor del 75% de su valor teórico.

2. Volumen espirado máximo en el primer segundo de la espiración forzada (FEV1 o

VEMS): es el volumen de aire que se expulsa durante el primer segundo de la espiración

forzada.

3. Relación FEV1/FVC(FEV1%): expresada como porcentaje, indica la proporción de la

FVC que se expulsa durante el primer segundo de la maniobra de espiración forzada. Es el

parámetro más importante para valorar si existe una obstrucción, y en condiciones normales

ha de ser mayor del 75%.

4. Flujo espiratorio forzado entre el 25% y el 75% de la capacidad vital forzada

(FEF25%-75%): este parámetro sirve en teoría para reflejar el estado de las pequeñas vías

aéreas (las de menos de 2 mm de diámetro), lo que serviría para detectar tempranamente las

obstrucciones. Sin embargo presenta una gran variabilidad interindividual, por lo que ha

caído en desuso.

PRINCIPALES PATRONES ESPIROMÉTRICOS

1. PATRÓN OBSTRUCTIVO:

Indica una reducción del flujo aéreo y es producido bien por aumento de la resistencia de

las vías aéreas (asma, bronquitis), bien por la disminución de la retracción elástica del

parénquima (enfisema).

Se define como una reducción del flujo espiratorio máximo respecto de la capacidad vital

forzada, y se detecta mediante la relación FEV1/FVC, que será menor del 75%.

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2. PATRÓN RESTRICTIVO:

Se caracteriza por la reducción de la capacidad pulmonar total, ya sea por alteraciones del

parénquima (fibrosis, ocupación, amputación…), del tórax (rigidez, deformidad) o de los

músculos respiratorios y/o de su inervación.

Se determina patrón restrictivo cuando la relación de Capacidad Vital versus el ideal es

menor del 75%.

Page 29: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

OBJETIVOS:

1. Interpretar las curvas de espirometría

2. Conocer el sustento científico de la espirometria

MATERIALES

Espirómetro Benedict-Roth u otro modelo equivalente.

Reservorio de cal soldada o de otro compuesto químico que absorba el CO2.

Quimiógrafo anexo, con registro gráfico de los volúmenes pulmonares en función del

tiempo.

PROCEDIMIENTO

1.-Control: registrar los movimientos respiratorios en el cilindro del quimógrafo en función

del tiempo, pero sin conectar el reservorio del absorbente del CO2.

Previamente se debe registrar el efecto de la altura del tambor en función del tiempo, para

verificar la condición de equilibrio debido a la fuerza de la gravedad (peso) y del empuje

del agua (sello).

2.-Repetir pasó 1, intercalando el absorbedor del CO2 (cal sodada).

3.-Determinar la capacidad vital.

4.-Determinar el aire corriente y la frecuencia respiratoria.

5.-Determinar las reservas inspiratoria y espiratoria.

6.-Realizar un ejercicio estandarizado (bicicleta estacionaria) y medir ventilación pulmonar,

comparando luego con los valores obtenidos en reposo en el mismo sujeto.

VARIABLES DE FUNCIÓN RESPIRATORIA DEL HOMBRE EN REPOSO

N° Función Abreviación Valor numérico (L)

1 Capacidad pulmonar total TLC 6

2 Capacidad vital CV 4.7

3 Volumen residual VR 1.3

4 Aire corriente Vt 0.5

5 Volumen de reserva inspiratoria IRV 3.0

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6 Volumen de reserva espiratoria ERV 1.2

7 Capacidad funcional residual FRC 2.5

8 Capacidad inspiratoria IC 3.5

9 Espacio muerto Vd 0.15

10 Frecuencia respiratoria Fr 12 x min

11 Volumen minuto respiratorio Ve 6 Lx min

12 Ventilación máxima Vmáx 120 Lx min

ESPIROMETRIA 2:

MATERIALES:

Espirómetro de Benedict

Curvas Espirométricas.

PROCEDIMIENTO:

1. Reconozca los principios de una prueba espirométrica.

2. Se registrará la edad, talla y sexo de la persona a someterse a la prueba. Se sienta

cómodamente y se coloca el clip en la nariz, luego la persona debe realizar una Inspiración

profunda y luego pondrá la boquilla entre los labios, asegurándose de no perder parte del

aire espirado, y soplará todo lo que pueda.

3. Cada grupo tendrá diversas Curvas de Espirometría, las cuales las desarrollará con su

profesor.

PRUEBA BRONCODILATADORA (PBD): La prueba broncodilatadora (PBD) tiene por

objeto poner de manifiesto la posible existencia de reversibilidad de la obstrucción

bronquial. Para ello, se practica en primer lugar una espirometría basal al paciente; luego se

le administra al paciente en cámara espaciadora 3 o 4 “puffs” de salbutamol y se espera

entre 15 a 20 minutos. Pasado ese tiempo, se le realiza una nueva espirometría.

PREGUNTAS:

1. ¿Cuántos tipos de espirómetros existen y cómo funcionan?

2. ¿Cómo se determina el volumen residual?

3. ¿Qué evalúa la espiración forzada?

4. ¿En qué casos se usa el VEF 25-75%?

5. ¿Qué es el salbutamol y cómo influye en la prueba de espirometría?

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PRACTICA DE FISIOLOGIA ENDOCRINA

INDICE DE MASA CORPORAL, MASA MAGRA, CIRCUNFERENCIA ABDOMINAL

La evaluación nutricional de un individuo incluye una encuesta alimentaria, el examen físico

que incluya la Antropometría y algunos exámenes de laboratorio (hemoglobina, albúmina,

ferritina, etc).

La antropometría deriva del término antropo = hombre y de metria = medida, es decir la

medición del cuerpo humano, es la técnica más usada en la evaluación nutricional y incluye:

1. Peso y Talla

2. El Índice Masa Corporal

3. Evaluación de los pliegues.

4. Indice Cintura – Cadera

Peso: El peso como parámetro aislado no tiene mayor importancia, tiene que expresarse en

función de la edad de la persona y de su talla.

Talla: La talla también debe expresarse en función de la edad y del desarrollo de la

persona. Se acepta como normal una talla entre el 95% y el 105% del Standard.

Indice de peso para la talla: El índice de peso para la talla ha sido utilizado clásicamente

para evaluar el estado nutricional.

Indice de masa corporal: El índice de masa corporal (IMC) es considerado como el mejor

indicador de estado nutricional, por su buena correlación con la masa grasa en sus

percentiles más altos y por ser sensible a los cambios en composición corporal con la edad.

IMC = peso (kg) / talla2 (m2)

Clasificación del estado nutricional en función del índice de masa corporal (IMC)

Clasificación IMC Riesgo de comorbilidad

Delgadez o desnutrición < 18.5 Bajo (pero existe riesgo de otros calórica Problemas clínicos) Normal 18.5-24.9 Medio Sobrenutrición >25 Sobrepeso 25-29.9 Aumentado Obesidad grado I 30-39.9 Moderado Obesidad grado II 35_39.9 Severo Obesidad grado III > 40 Muy severo

Pliegues cutáneos: La medición de pliegues cutáneos es un indicador de masa grasa

subcutanea corporal y por lo tanto es especialmente útil para el diagnóstico de la obesidad.

Los pliegues pueden medirse en diferentes sitios, la OMS sugiere la medición de los

pliegues tricipital y subescapular.

Page 32: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Para medirlos se requiere de un calibrador ("caliper").En esencia consiste en un aparato

dotado de 2 valvas que mantienen una presión constante en sus extremos, y permiten ver la

separación entre ambas en una escala graduada en milímetros (con una precisión de 0.2

mm) con una escala efectiva de 3 a 33 mm.

El pliegue tricipital se mide en el punto medio entre acromion y olécranon, en cara

posterior del brazo, teniendo la precaución de no incluír el músculo en la medición. La

determinación del espesor del pliegue cutáneo se deberá hacer sobre el brazo izquierdo para

las personas diestras y en el contrario si el sujeto fuera zurdo, con ello se busca que el

desarrollo muscular más acentuado en el brazo mas hábil influya lo menos posible en las

determinaciones biométricas.

El pliegue subescapular se mide 1 cm por debajo del ángulo inferior de la escápula, en

diagonal siguiendo la línea natural de la piel en un ángulo de 45° con la columna vertebral..

Los pliegues subcutáneos deben ser medidos en tres ocasiones, escogiendo la media

(medio) de estos tres valores.

Indice Cintura – Cadera: Es un parámetro que permite evaluar el riesgo para desarrollar

enfermedades cardiovasculares o metabólicas.

El índice se obtiene midiendo el perímetro de la cintura a la altura de la última costilla

flotante, y el perímetro máximo de la cadera a nivel de los glúteos.

Page 33: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Interpretación:

ICC = 0,71-0,85 normal para mujeres.

ICC = 0,78-0,94 normal para hombres.

Interpretación según el ATP III:

ICC = 0,80 normal para mujeres.

ICC = 0,90 normal para hombres.

Interpretación según la OMS

ICC = 0,80 normal para mujeres.

ICC = 1,00 normal para hombres.

OBJETIVO Familiarizarse con los test de antropometría e interpretarlos

MATERIALES

Un tallímetro y balanza

Un centímetro

Un cáliper

PROCEDIMIENTO

2. Se les tomarán medidas de peso, talla, índice de masa corporal (IMC), relación

cintura/cadera a cada alumno del grupo.

3. Con los datos de IMC se clasificaran a los alumnos en eutróficos, con sobrepeso u

obesos.

4. Se proceder a seleccionar a un alumno de cada tipo para realizar el estudio de los

pliegues.

PREGUNTAS:

1. ¿Cómo define el peso normal de un sujeto?

2. ¿Qué evalúa la relación cintura/cadera?

3. ¿Para qué nos sirve el IMC?

4. ¿Qué es la masa magra? ¿Cuál es el porcentaje de la masa corporal total que corresponde

a los músculos y cuál a la grasa?

5. ¿Por qué es útil la medida de los pliegues?

Page 34: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PRACTICA DE FISIOLOGIA ENDOCRINA

METABOLISMO DE LA GLUCOSA

La glucosa plasmática varía en relación a la ingesta de carbohidratos. Sin embargo, siempre

sus valores se encontrarán en rangos considerados “normales”, gracias a la secreción basal

y estimulada de la insulina.

Cuando falla la respuesta a la insulina o su secreción, las glicemias se elevarán por fuera de

los límites ya establecidos.

Fisiológicamente frente al ejercicio extenuante, se consume glucosa y eso hace que las

hormonas contrarreguladoras se eleven en sangre a fin de liberar glucosa del hígado.

En el test de ejercicio, se estimula la liberación de GH mediante la actividad física. Se

emplea en la práctica clínica como tamizaje de déficit de hormona de crecimiento..

CRITERIOS DIAGNOSTICOS DE LOS TRASTORNOS DEL METABOLISMO DE

LOS CARBOHIDRATOS BASAL

GLICEMIA BASAL GLICEMIA 2 HORAS DIAGNOSTICO

POST CARGA DE GLUCOSA

<110 MG% <140 MG% NORMAL

110-126 MG% 140 – 199 MG% INTOLERANCIA A

LA GLUCOSA

>126 MG% >200 MG% DIABETES MELLITUS

OBJETIVOS:

Interpretar y realizar los exámenes de glicemia

MATERIALES

Un glucómetro capilar, lancetas, cintas reactivas

Glucosa anhidra 75 gramos (3 paquetes)

Agua, limones

PROCEDIMIENTO

Los alumnos seleccionados previamente de acuerdo a su IMC (dos eutróficos, dos con

sobrepeso y dos obesos), tendrán un ayuno de por lo menos 2 horas previas a la práctica. Se

les dividirá en 2 grupos (de tres alumnos cada uno)

GRUPO A: TEST DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA MODIFICADO

1. Se les tomará la glicemia capilar con el glucómetro, luego se les dará a beber la glucosa

anhidra diluida en 300 cc de agua con jugo de limón. Quedarán en reposo.

2. A los 60 y 90 minutos después se les medirá la glicemia capilar.

Page 35: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

alumno 1 alumno 2 alumno 3

glucosa basal

60 minutos post ingesta

90 minutos post ingesta

GRUPO B: TEST DE EJERCICIO MODIFICADO

1. Se tomará la glicemia capilar basal, luego serán sometido a ejercicio aeróbico continuo

durante 30 minutos.

2. Se medirá la glicemia cada 15 minutos hasta finalizar el ejercicio.

alumno 1 alumno 2 alumno 3

glicemia basal

glicemia a los 15 min

glicemia a los 30 min

PREGUNTAS

1. Grafique la curva de glicemia en las personas sin alteraciones del metabolismo de

carbohidratos, en los intolerantes a la glucosa y en los diabéticos.

2.¿ En qué consiste la Hemoglobina glicosilada y cuál es su importancia?

3. ¿Qué entiende por hormonas contrarreguladoras y cuáles son? En que orden actúan

frente a la disminución de la glicemia?

4. ¿Cuál es la base fisiológica para el test de ejercicio?

5. ¿En qué consiste el índice HOMA y cuál es su utilidad?

Page 36: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PRACTICA DE HEMATOLOGÍA

HEMATOCRITO, VELOCIDAD DE SEDIMENTACIÓN,

La sangre es una suspensión de glóbulos rojos, leucocitos, plaquetas en una solución

compleja (plasma) de gases, sales, proteínas, lípidos. Para obtener un índice del estado

sanguíneo en lo que respecta a los elementos formes de la sangre se recurre a la

determinación del Hematocrito. Conociendo el hematocrito se puede determinar el nivel de

Hemoglobina.

El volumen de sangre circulante suma aproximadamente el 7% del peso corporal,

Alrededor del 55% de la sangre es plasma, con un contenido de proteínas de 7g/dl.

La principal proteína de los eritrocitos es la hemoglobina compuesta por el hemo que

contiene hierro, unido a la globina

La afinidad de la Hemoglobina por el oxígeno varía en relación al pH, la temperatura, la

concentración del 2-3 difosfoglicerato.

OBJETIVO:

Determinar el hematocrito y la velocidad de sedimentación

MATERIALES:

Agujas hipodérmicas

Jeringas esterilizadas descartables

Heparina

Algodón, alcohol,

Torniquete

Centrífuga

Tubos capilares

PROCEDIMIENTO:

Hematocrito: Es la relación porcentual entre la cantidad de elementos formes y el plasma.

Se usa sangre con anticoagulante extraída de la vena.

1. Tomar con una pipeta Pasteur una cantidad de sangre

2. Introducir la pipeta hasta el fondo del Tubo de Wintrobe

3. Una vez que está en el fondo, oprimir el bulbo para que la sangre pase al tubo, al mismo

tiempo que se saca lentamente la pipeta Pasteur, depositar la sangre hasta que llegue a la

marca de 100.

4. Centrifugar el tubo por 30 minutos a 3 mil revoluciones por minuto, al final del cual hay

una separación completa entre el plasma y los glóbulos rojos.

5. Leer en la escala ascendente el nivel al cual ha llegado la columna de los glóbulos rojos.

Esta cifra es el Hematocrito expresada en porcentaje.

Velocidad de sedimentación globular: Es la velocidad con que sedimenta la sangre y

depende principalmente de la densidad del medio que está relacionada con la concentración

del fibrinógeno.

Page 37: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

1. Colectar 5 cc de sangre venosa en un tubo de ensayo con 1 cc de citrato de sodio como

anticoagulante.

2. Agitar la sangre y luego llenar los tubos pipetas graduadas de 300 mm de largo x 2.5 mm

de diámetro hasta la marca cero o un tubo de hematocrito hasta la señal de 10 cm..

3. El tubo se mantendrá en posición perfectamente vertical durante la sedimentación de los

eritrocitos.

4. Después de transcurrido una hora, leer la distancia a la cual han caído los glóbulos rojos

TIEMPO DE SANGRIA – GRUPO Y RH

La Hemostasia se lleva a cabo a través de la vasoconstricción, la agregación plaquetaria y

la coagulación sanguínea

La coagulación de la sangre es un proceso complejo que consiste en la activación

secuencial de diversos factores presentes en ella. La cascada de reacciones en la que un

factor activado va activar al siguiente y así sucesivamente.

Muchos factores son sintetizados en el hígado como Vitamina K, y factores de coagulación

Los grupos sanguíneos son importantes para la compatibilidad de las transfusiones

sanguíneas.

En el ser humano existen cuatro grupos sanguíneo principales: O, A, B, AB.

Además de los grupos sanguíneos existen grupos o factor rhesus Rh positivo y negativo

OBJETIVOS:

1. Observar el fenómeno de coagulación

2. Determinar el grupo sanguíneo que tiene cada alumno

MATERIALES:

Agujas hipodérmicas

Jeringas esterilizadas descartables

Heparina

Algodón, alcohol,

Torniquete

Sueros para determinar grupos sanguíneos

Cronómetro

Centrífuga

Tubos capilares

PROCEDIMIENTO:

Tiempo de sangría: tiempo que demora en detenerse la sangría producida por una pequeña

incisión cutánea. Representa un índice global de la hemostasia, con especial consideración

de la función plaquetaria.

1. Previa limpieza del lóbulo de la oreja, se efectuará una punción con una lanzeta.

2. Iniciar el cronometraje y absorber la sangre con papel filtro cada 30 segundos.

3. El tiempo que demora para deternerse el flujo sanguíneo es el tiempo de sangría.

Page 38: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Grupo sanguíneo:

1. Con una lanceta estéril, previa limpieza de la piel con alcohol, se punza el dedo de un

alumno voluntario y se recoge tres gotas de sangre en un portaobjeto.

2. Agregar anticuerpos de grupos sanguíneos Anti-A, Anti-B y Anti-Rh.

3. Mezclar bien la suspensión con el suero y al cabo de dos minutos observar cual de los

portaobjetos ha tenido reacción de aglutinación.

PREGUNTAS:

1. ¿Qué elementos pueden hacer variar el hematócrito?

2. ¿Cómo define la Velocidad de Sedimentación Globular y cuál es su importancia?

3. ¿Qué evalúa el tiempo de sangría?

4. ¿Cuántos tipo de clasificación de Grupos sanguíneos hay?

6. ¿En qué consiste el sistema fribrinolítico?

Page 39: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PRACTICA DE NEFROLOGIA

SOLUCIONES, OSOMOLARIDAD, CALCULOS Y RELACIONES

La concentración de solutos en soluciones de uso clínico se expresa de diferentes maneras,

como son molaridad, molalidad, equivalencia y osmolaridad,

Como consecuencia del uso permanente en nuestra práctica médica de diversas soluciones

estándares, nos obliga a poder comprender las conversiones para un mejor manejo de las

mismas.

Solución: es la mezcla homogénea de dos o más sustancias independientemente del estado

físico que presenten. Consta de dos partes el Soluto y el Solvente.

Molaridad Un mol es un número de gramos de una sustancia o compuesto igual al peso

fórmula, y contiene un número de Avogadro (Nº Av) de moléculas, iones. Por ejemplo, 180

gramos de glucosa (Peso Molecular, o PM = 180) representan 1 mol (o peso molar) de la

misma, y al mismo tiempo un Nº Av de moléculas de glucosa. 180 miligramos de glucosa

representarían 1 milimol, o sea 1/1000 del número de Avogadro de moléculas (6,02 x 1020).

En el caso del NaCl (Peso Fórmula, o PF = 58,45), 58,45 g representan 1 mol (un peso

molar) del compuesto, y al mismo tiempo 1 Nº Av de "unidades" de NACI, que llamaremos

"unidades formulares" del compuesto. Esta denominación es porque cuando se disuelve 1

mol de NaCl en agua, la solución de los iones se representa así,

H2O

NaCl Na+ + Cl-

1 mol 1 mol 1 mol

Solución Molar: es cuando en un litro de solución hay una mol de un soluto.

Solución Molal: es la que contiene una Mol de soluto en un kilogramo de solvente.

La fórmula es: Solución Molal = moles/kg solvente

Equivalente: relaciona el peso iónico de una sustancia cargada eléctricamente (electrolito)

entre el número de cargas que lleva.Para definir la equivalencia como método de expresión

de concentración debemos considerar primero el peso equivalente.

Page 40: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

Peso Equivalente de un ión: es la masa atómica dividida por la valencia. Para un ión

monovalente como el sodio, una mol tendría 1 Equivalente; mientras que un ión divalente

como el calcio tendríamos que una mol de calcio contiene 2 equivalentes.

peso equivalente = pe = Peso Fórmula (Peso atómico) / # de cargas

Osmolaridad.

Expresa la actividad osmótica que ejercen las partículas activas por Kilogramo de agua, y

depende de su concentración. El verdadero término debe ser de Osmolalidad. Su

importancia es básica para definir la tonicidad de soluciones.

peso osmolar = po = PF / # partículas

El peso osmolar es un parámetro que se usa para establecer los osmoles contenidos en la

cantidad de sustancia que se colocará en solución.

La osmolaridad (Osm), como expresión de concentración, se define así:

Osm = osm / litro

miliosmolaridad = mOsM = miliosmoles / litro

Osmolaridad = Osm = molaridad (M) x # partículas

Tonicidad: Se refiere a la osmolalidad efectiva de una solución.

Solución Isotónica: es la que tiene la misma osmolalidad que la del plasma (285 mOsm/L)

Solución Hipertónica: es cuando la solución tiene mayor osmolalidad que la del plasma.

Solución Hipotónica: es cuando la solución tiene menor osmolalidad que la del plasmas.

OBJETIVO

Conocer y calcular las concentraciones de las diferentes soluciones

MATERIALES:

1. Sales de rehidratación oral

2. 01 ampolla de ClNa 20%

3. 01 ampolla de ClK 20%

4. 01 fco de ClNa 9‰

5. 01 frasco de Glucosa 5% AD

Page 41: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PROCEDIMIENTO: Realice cada uno de los siguientes ejercicios:

1. Calcular la Osmolaridad de las siguientes soluciones:

a. 1 litro de Cloruro de sodio 0.9%

b. 1 ampolla de 20cc de Cloruro de sodio al 14.9%

c. 1 ampolla de 20 ml de Cloruro de sodio al 20%

d. 1 ampolla de 10 cc de Cloruro de potasio 14.9%

e. 1 ampolla de 20 cc de Cloruro de potasio 20%

f. 1 litro de dextrosa al 5%

g. 1 litro de dextrosa al 10%

h. 1 ampolla de dextrosa 20 cc al 33%

i. 1 ampolla de 20 cc de gluconato de calcio al 10%

j. 1 ampolla de 10 cc de cloruro de calcio al 10%

h. 1 ampolla de 20 cc de bicarbonato de sodio al 10%

2. Cuantos mEq hay en las siguientes soluciones:

a. 1 ampolla de 20 cc de ClNa al 20%

b. cuantos mEq de K hay en una ampolla de 1g de ClK

c. Cuantos mEq de bicarbonato existen en una ampolla de 20cc de bicarbonato 8.4%

d. Cuantos mEq de calcio hay en una ampolla de 10cc de cloruro de calcio al 10%

3. Calcule la osmolaridad plasmática de un paciente con el siguiente perfil:

Sodio 148 mEq/l Potasio 3.5 mEq/l Cloro 105 mEq/l

Calcio 9.8 mEq/l Glucosa 380 mg% Urea 80 mg% Creatinina 0.5 mg%

4. Cual es la tonicidad de las siguientes soluciones

a. NaCl 200 mM en Agua destilada 1000 cc

b. NaCl 58.5 g en Agua destilada 1000 cc

c. NaCl 5.85 g en Agua destilada 1000 cc

5. Un paciente de 70 Kg (cuando estaba sano), ha perdido 5% de su peso corporal debido a

diarreas, con valores de sodio de 125 mEq/l, un déficit de bicarbonato de 120 mEq y de

potasio 100 mEq. Prepare las soluciones que deben administrarse, si contamos con dextrosa

en agua destilada al 5% frascos de 1 litro; cloruro de sodio al 20% ampollas de 20 cc;

bicarbonato de sodio al 8.4% ampollas de 20 cc y cloruro de potasio al 14.9% ampollas de

10cc.

PREGUNTAS:

1. ¿Cuál es la diferencia de osmolaridad plasmática y osmolalidad plasmática?

2. ¿Los osmómetros de laboratorio pueden servir para medir la osmolaridad?

3. ¿Cuál es el principal reflejo de la hirdatación intracelular?

4. ¿Qué solutos contribuyen a la osmolaridad plasmática?

5. Haga un esquema de como se controla la osmolaridad de los fluidos corporales

Page 42: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

PRACTICA DE FUNCIÓN RENAL

EXAMEN DE ORINA

Los riñones son órganos excretores y reguladores, al excretar agua y solutos libran al

organismo de un exceso de agua y de productos de deshecho.

Junto al sistema cardiovascular endocrino y nervioso, regulan el volumen y la composición

de los líquidos corporales dentro de límites estrechos.

Gracias a la acción homeostática de los riñones, los tejidos y las células del organismo

pueden llevar a cabo sus funciones normales en un medio relativamente constante.

OBJETIVO

Reconocer las características físicas de la orina

Comprender las funciones del riñón

MATERIALES:

Probetas graduadas de 100 ml.

Densitómetro para la orina

Tiras reactivas de Ph ,albumina , cetonas

Tiras para medir glucosa en orina

PROCEDIMIENTO:

1. Evaluar las características físicas de la orina

2. Determinar la densidad urinaria

3. Determinar pH , presencia o ausencia de glucosa , albumina , cetonas.

CONCENTRACION Y DILUCION DE LA ORINA

El riñón depura los elementos de la sangre, ajusta la cantidad de agua y solutos necesaria

para compensar las pérdidas y mantener el balance del organismo.

El LIC vuelca los desechos al LEC y es el sistema renal el que depura.

El riñón realiza un filtrado de la sangre y lo procesa para obtener la orina (1.5 L x día ).

Para producir orina el riñón realiza tres procesos secuenciados:

a) Filtrado glomerular: base del funcionamiento renal; TFG es de 180 litros x día ,se

estima mediante el cálculo del clearance de creatinina.

b) Reabsorción tubular :permite la recuperación de la mayor parte del filtrado y ajusta

los parámetros de volumen , osmolalidad y pH.la reabsorción tubular es de 178.5

Litros x día

c) Secreción tubular: permite el ajuste de los niveles de potasio, eliminación de

protones ,depuración de aniones y cationes orgánicos.

La densidad de la orina depende de la cantidad y de la calidad de los alimentos ingeridos

así como la cantidad de líquidos consumidos.

Page 43: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

La concentración de solutos en la orina depende del túbulo colector quien concentra la

orina y puede calcularse a base del coeficiente de Long, multiplicando las dos últimas

cifras decimales del peso específico por el coeficiente 2.66.

MATERIALES:

1 Cronómetro por grupo de trabajo

Agua mineral en botella.

Vasos descartables

Cápsulas de cloruro de sodio de 1.5 gramos

Solución de bicarbonato de sodio al 4%

Vasos de precipitado numerados para recoger la muestras de orina

Probetas graduadas de 100 ml.

Densitómetro para la orina

Tiras reactivas de Ph

Gradillas con tubos de ensayo

Termómetro para líquido

Tiras reactivas Urotron –Combur 8 test-U

Lancetas, alcohol. algodón

Azúcar

PROCEDIMIENTO:

Por grupo de práctica se seleccionara con anticipación a un alumno voluntario para

ejecutar el experimento, quién desde dos horas antes de inicio de la práctica no puede

ingerir alimentos o líquidos.

En el laboratorio por cada grupo de práctica se designará el desarrollo de los siguientes

experimentos:

a) Ingesta de agua a razón de 10 cc. por Kg. de peso corporal.

b) Ingesta de 5 cc de agua por Kg. de peso, además de 7.5 gr. de Cloruro de Sodio.

c) Ingesta de 5 cc de solución de bicarbonato de sodio al 4% por Kg. de peso.

d) Grupo control, en el que el alumno no realiza ninguna intervención.

Antes de iniciar el experimento, los participantes deben vaciar su vejiga y colectar la

orina que servirá de control basal.

Con cinta reactiva se realizará un examen colorimétrico de componentes urinarios como

son pH, proteínas, glucosa, cuerpos cetónicos, urobilinógeno, bilirrubina, sangre,

hemoglobina (agregar 3 a 4 gotas de sangre obtenido luego de una punción digital de la

lanceta, a la orina y evaluar en la cinta reactiva la presencia de sangre; así mismo agregar

azúcar a la orina y evaluar en la cinta reactiva la presencia de azúcar)

Al momento de iniciar cada experimento poner en marcha el cronómetro y luego

recoger las muestras de orina cada 30 minutos, el análisis de cada muestra consiste en

medir:

a) volumen de orina emitida en el periodo de tiempo;

Page 44: Fisiolog Guia Pract 2016 Aula

b) densidad de la muestra introduciendo el densitómetro en la probeta graduada

c) medición de pH sumergir un extremo de la cinta de ph en la muestra de orina y

comparar por cambio de coloración.

PREGUNTAS:

1. Describir las características físico-químicas de la orina?

2. Describir los cambios fisicoquímicos de la orina cuando se producen cambios en el

equilibrio hidrosalino?

3. Calcular la concentración de solutos en la orina por el coeficiente de Long?

4. Explicar la base fisiológica de los cambios observados en los tres experimentos en

relación al grupo control?

5. Como explicaría la presencia hipotética de glucosuria en alguna de las muestras?

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PRACTICA DE FUNCIÓN RENAL

EQUILIBRIO ACIDO BASE

TABLA DE COMPENSACION EN LOS DESEQUILIBRIOS ACIDO BASE

Estado HCO3 (mEq/L) paCO2 (mmHg0

Acidosis metabólica 1 1,25

Alcalosis respiratoria 1 0,8

Acidosis respiratoria aguda: 1 10

crónica: 3 10

Alcalosis respiratoria aguda: 2 10

crónica: 5 10

Anion gap: Na - (Cl + HCO3) (V.N. 12 +/- 2)

OBJETIVO: Reconocer y calcular el estado ácido-base de un paciente.

PROCEDIMIENTO: Desarrolle con su profesor los siguientes problemas:

1. Un paciente diabético de 17 años de edad, ingresa a la emergencia con respiración de

Kussmaul y pulso irregular, sus gases sanguíneos son con aire ambiental: pH = 7.05,

pCO2 12 mmHg pO2 108 mmHg HCO3 8 mEq/l EB - 30 mEq/l

2. Una mujer con 66 años con antecendetes de neuropatía obstructiva crónica entra a

emergencia con evidente edema agudo pulmonar. Sus gases son: pH 7.1 pCO2 25 mmHg

pO2 40 mmHg HCO3 8 mEq/l EB – 20 mEq/l

3. Una joven de 17 años con severa cifoescoliosis ingresa al hospital con neumonía, su

AGA con oxigenoterapia al 40% son. pH 7.37 pCO2 25 mmHg pO2 70 mmHg

HCO3 14 mEq/l EB – 7 mEq/l

4. La paciente al ser dada de alta sus gases eran: pH 7.41 pCO2 27 mmHg

pO2 63 mmHg HCO3 16 mEq/l EB 6 mEq/l

5. Defina el trastorno acido básico en los siguientes AGA

pH: 7,8 paCO2: 30 mmHg HCO3: 22 mEq/dL

pH 7,2 paCO2: 32 mmHg HCO3: 18 mEq/L Na: 140 mEq/L K: 5,6 mEq/L Cl: 115

pH 7,3 paCO2: 46 mmHg HCO3: 25 mEq/L

pH 7,6 paCO2: 45 mmHg HCO3: 30 mEq/L

PREGUNTAS: Complete el siguiente texto:

1. El metabolismo de carbohidratos y grasas produce grandes cantidades de CO2 que

normalmente se elimina por ……. mientras que el metabolismo de las proteínas produce

…….. que son tamponados por el …… y son eliminados por …..

2. El tiempo que demoran en activarse los mecanismos de compensación o corrección del

medio sanguíneo es:

a) Buffers …….

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b) Mecanismo respiratorio ……….

c) Mecanismo Renal ………….

3. ¿A qué se denomina ácido fuerte y cuándo ácido débil? Mencione 3 ejemplos de cada

caso

4. ¿Qué es el anión gap?

5. ¿Cuál es la importancia del anión gap?

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PRACTICA DE FISIOLOGIA DIGESTIVA

pH Y ACIDEZ GASTRICA

La pepsina secreta en las glándulas gástricas es la enzima encargada de iniciar la digestión

de las proteínas. Esta enzima tiene actividad máxima a un pH de 2 a 3 y tiende a inactivarse

cuando el pH es mayor de 5. En consecuencia para que esta enzima actúe sobre las

proteínas, los jugos gástricos han de ser ácidos y es el ácido clorhídrico, que es

secretado por las células parietales, el que le confiere dicha característica.

Los antiácidos son compuestos básicos que neutralizan el ácido en la luz gástrica y su uso

está indicado en gastritis y como adyuvante en enfermedad úlcera péptica.

OBJETIVO:

Reconocer la importancia de la acidez gástrica

MATERIALES:

Placas Petri

Ácido clorhídrico al 0,1N

Tiras Reactivas para medición de pH

Un frasco de antiácido líquido

Un tarro de leche.

PROCEDIMIENTO:

1. Colocar 2cc de ácido clorhídrico al 0,1N en las placas petri evaluándose el pH de la

solución con las tiras reactivas.

2. Agregar en una de ellas el antiácido y en la otra la leche diluida, en volúmenes de 1 cc.

3. Medir el pH en cada una de las soluciones.

PREGUNTAS:

1. ¿Qué elementos forman parte del jugo gástrico?

2. ¿Cuál es la función de cada célula de una glándula gástrica?

3. Haga un esquema de los mecanismos de la producción de ácido gástrico.

4. Mencione las fases de la secreción ácida gástrica.

5. ¿Cuáles son las sustancias que inhiben y cuales las que estimulan la secreción ácida

gástrica?

6. Mencione los efectos de los diferentes tipos de alimentos (carbohidratos, lípidos,

proteínas) sobre la secreción ácida y el vaciamiento gástrico

7. ¿Cuáles son los mecanismos de protección de la mucosa gástrica? explique sus funciones

8. ¿Si la persona ingiere abundantes alimentos que sucede con la acidez, aumenta o

disminuye; y qué sucede si se ingiere pocos alimentos?

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PRACTICA DE FISIOLOGIA DIGESTIVA

DIGESTION DE CARBOHIDRATOS (PARTE I)

La digestión de carbohidratos se inicia en la boca, gracias a procesos casi simultáneos la

masticación, salivación y deglución.

Cuando el alimento ingresa a la cavidad oral se inician mecanismos reflejos de salivación y

masticación hay información aferente a través del olfato y gusto y en los centros nerviosos

vienen órdenes por vías eferentes a los músculos masticatorios y a las glándulas salivales

para el procesamiento del alimento ingerido, los dientes fraccionan el alimento y se produce

la mezcla de estas partículas con la saliva gracias a la ayuda de la lengua.

La digestión de los hidratos de carbono se inicia por la amilasa salival o también llamada

ptialina, enzima que fragmenta el almidón en dextrinas, maltotriosa y maltosa, a nivel de

enlaces 1-4.

La digestión consiste en la conversión de grandes moléculas de nutrientes en pequeñas

moléculas que puedan ser absorbidas después. Esto se realiza mediante la hidrólisis que es

la introducción de una molécula de agua para fraccionar enlaces, en este caso de tipo 1-4.

Al deglutirse el alimento sigue actuando la amilasa salival hasta que el pH gástrico ácido la

inactiva.

Sentido Olfato

Aferencias centrales Evocación e identificación del alimento

Hipotálamo

Sentido Gusto

Centro Salivar Protuberancia Bulbo

Sublingual Submaxilar Parótida

Actividad simpática y parasimpática

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Posteriormente también actúa la amilasa pancreática, secretada por el páncreas y las

enzimas secretadas por la mucosa intestinal como la maltasa o dextrinasa que actúa sobre

la maltosa, maltotriosa y dextrinas convirtiéndolas en glucosa; la lactasa que actúa sobre

la lactosa convirtiéndola en glucosa más galactosa; la sucrasa o sacarasa que actúa sobre la

sacarosa o sucrosa convirtiéndola en glucosa más fructuosa.

OBJETIVO:

Interpretar los mecanismos de la digestión de los carbohidratos

MATERIALES:

Galletas de soda

Placas petri

Lugol

PROCEDIMIENTO:

Cada alumno ingiere y mastica una galleta de soda hasta triturarla y luego coloca el bolo

triturado en la placa petri y coloca 2 o 3 gotas de lugol y se observa el cambio de color de

la mezcla y define el sabor percibido hasta ese momento.

Posteriormente se introduce otra galleta y la mastica sin deglutirla por 15 minutos para

luego deglutir el bolo triturado, ahora define el nuevo sabor percibido.

DIGESTION DE CARBOHIDRATOS (PARTE II)

MATERIALES:

Dos placas petri Acido clorhídrico 0,1 N Cápsula de lactasa Un tarro de leche Tiras reactivas para la medición de glucosa (glucocintas)

PROCEDIMIENTO:

1. Colocar 5 cc de leche diluida en dos placas petri 2. Medir con tira reactiva los niveles de glucosa en los petri 3. Agregar en uno de los petri parte del contenido de una cápsula de lactasa y

agitar 4. Agregar en el segundo petri la cápsula previamente disuelta en ácido 0.1N 5. Medir los niveles de glucosa con las tiras reactivas

PREGUNTAS:

1. ¿Qué carbohidrato contiene la galleta de soda y que otra sal está presente?

2. ¿Qué es el lugol para que sirve?

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3. ¿Cómo es el sabor inicial salado o dulce por qué?

4. ¿Cómo es el sabor luego de 15 minutos de mezcla con la saliva salado o dulce, por

qué?

5. ¿Qué es un enlace 1-4 y 1-6 que enzima actúa en cada tipo de enlace?

6. Hacer un mapa conceptual con las enzimas digestivas que actúan sobre los

carbohidratos a lo largo del tracto bucogastrointestinal y páncreas: colocando lugar

de acción, enzima, tipo de enlace, sustrato y producto final.