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Introducción a la clínica de pequeños mamíferos I: Roedores

Jordi Grífols Ronda, LV MS

Ferran Bargalló Saumell, LV

Albert Martínez-Silvestre, LV MS

Zoològic Badalona Veterinària.

Telèfon: 933885354. zbv@hzb.es

los roedores son el mayor grupo los roedores son el mayor grupo de mamíferos (representan un de mamíferos (representan un 40% del total). su éxito evolutivo 40% del total). su éxito evolutivo probablemente se debe al pe-probablemente se debe al pe-queño tamaño de la mayor parte queño tamaño de la mayor parte de ellos, al corto ciclo reproduc-de ellos, al corto ciclo reproduc-tivo, y a la capacidad de roer y tivo, y a la capacidad de roer y comer gran variedad de alimen-comer gran variedad de alimen-tos. existen entre 2000 y �000 tos. existen entre 2000 y �000 especies, distribuidos por todos especies, distribuidos por todos los continentes excepto la antár-los continentes excepto la antár-tida. la mayoría son de pequeño tida. la mayoría son de pequeño tamaño, el roedor más pequeño tamaño, el roedor más pequeño es el ratón Pigmeo africano es el ratón Pigmeo africano (Mus minutoides), con 6 cm y 7 (Mus minutoides), con 6 cm y 7 g de peso, el más grande es la g de peso, el más grande es la capibara (Hydrochoerus hydro-capibara (Hydrochoerus hydro-chaeris), con 45 kg de peso.chaeris), con 45 kg de peso.

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Al igual que sucede con los conejos, los

roedores no tienen caninos, observándose

un espacio sin dientes (diastema) entre los

incisivos y los premolares. Además, los inci-

sivos de ambos lados no están unidos entre

sí, permitiendo una cierta movilidad de los

mismos. A diferencia de los lagomorfos en

los roedores sólo hay una hilera de incisivos

superiores. Tanto los incisivos como los mo-

lares crecen durante toda la vida del animal

en cobayas y chinchillas, en el resto sólo los

incisivos tienen crecimiento continuo. Si las

piezas dentarias no se desgastan sufi ciente

y adecuadamente durante la masticación de

los alimentos puede dar lugar a problemas de

sobrecrecimiento dental. De igual manera to-

dos los roedores realizan un cierto grado de

cecotrofi a (mayor en las especies herbívoras

estrictas como la Chinchilla o Cobaya).

En cuanto a los aspectos reproductivos, en

los machos de los roedores, al igual que los

lagomorfos, se mantiene el canal inguinal

abierto, el macho presenta hueso peneano;

la diferenciación del sexo en cobayas y chin-

chillas se basa en la prolapsación manual del

pene junto con la visualización de los testí-

culos y en roedores menores se basa en la

medición de la distancia ano-genital (mayor

en machos que en hembras).

La mayoría de roedores generan un tapón co-

pulatorio durante la cópula, consiste en una

serie de secreciones del macho que taponan

exteriormente la vulva de la hembra. Las fun-

ciones de este tapón copulatorio se suponen

que tienen que ver en el almacenamiento de

esperma, prevención de pérdida de esperma

y prevenir una posterior fertilización por otro

macho. Se podría considerar un mecanismo

natural delante de la poligamia, frecuente en

la mayoría de roedores.

La longevidad varía según la especie, en-

contramos roedores con un año y poco de

esperanza de vida, como los hámsteres ena-

nos, otros de 5 – 6 años, como las cobayas

y perritos de las praderas, y hasta 10 o más

años en Chinchillas.

De la misma manera, la gestación también

variará según la especie. En especies altricia-

les como los pequeños roedores y perritos de

las praderas, la gestación será corta (de unos

35 días o menos), naciendo crías poco desa-

rrolladas, con los ojos cerrados y sin pelo, y

donde el periodo de latación será largo. En

las especies precociales, como la Chinchilla y

la cobaya, la gestación será larga, entre 70 y

180 días, las crías nacen muy desarrolladas,

con pelo y ojos abiertos, y con un destete rá-

pido. El tamaño de la camada será mayor en

especies altriciales.

Los signos clínicos que se observan

no son casi nunca específi cos de una enfermedad y por

tanto deben realizarse pruebas laboratoriales

para descartar el agente causal

Los incisivos de los

roedores tienen

crecimiento contínuo, y

son de color blanco en

las cobayas.

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Existe multitud de especies de

roedores mantenidos cómo ani-

males de compañía. El motivo

original de su mantenimiento en

cautividad es muy variado (pele-

tería, como comida, investigación

biomédica…), pero paulatina-

mente se han ido transformando

en mascotas. Conviene saber

diferenciar los roedores de los

mamíferos insectívoros —erizos,

musarañas…— (sin diastema y

con caninos) y de los pequeños

marsupiales —ardillas volado-

ras— (con marsupio), ya que los

requerimientos y aspectos veteri-

narios son totalmente diferentes.

En general, dividiremos los roe-

dores en:

Grandes roedores:

• Cobaya o conejillo de indias

(Cavia porcellus).

• Chinchilla (Chinchilla laniger).

• Perrito de las Praderas

(Cynomys ludovicianus).

• Ardilla de Richardson (Sper-

mophilus richardsonii).

Pequeños roedores:

• Hámster (Mesocricetus, Pho-

dopus, Cricetulus, Cricetus).

• Rata canguro (Dipodomys).

• Jerbo (Jaculus jaculus).

• Ardilla listada o chipmuck (Ta-

mias minimus).

• Ratón espinoso (Heteromys

spp.).

• Ratón común (Mus musculus).

• Rata común (Rattus norvegi-

cus).

Manejo y alimentación

Los roedores deben mantenerse

en jaulas en el interior o en el exte-

rior. No debe olvidarse proveerles

una caja de madera a modo de

escondrijo, ya que en situaciones

de miedo o estrés la emplearán

como refugio. Dependiendo del

tamaño de la jaula y de la especie

mantenida pueden estar solos o

con congéneres.

Si se mantienen en jaulas exterio-

res, éstas deben estar provistas de

un refugio que les proteja tanto de

la lluvia, el viento y las bajas tem-

peraturas, como del sol directo a

medio día. Los roedores toleran

bien el frío pero son muy sensibles

a las altas temperaturas.

Es preferible el empleo de jaulas

metálicas, con bandeja de plás-

tico y sin rejilla metálica. La jaula

ha de ser espaciosa (sobre todo

en chinchillas), y aun así debe

permitirse que el animal salga de

ella durante cortos periodos de

tiempo, diariamente, para ejerci-

tarse (o emplear ruedas de ejer-

cicio o “pelotas de paseo” para

moverse por dentro de casa). Es

necesario añadir mobiliario muy

variado a la jaula para posibilitar

el ejercicio y la distracción de es-

tas mascotas.

Como substrato puede emplear-

se viruta de madera, viruta com-

pactada, papel, o heno, pero

nunca sepiolita ya que su inges-

tión accidental puede dar lugar a

procesos de obstrucción intes-

tinal. La sepiolita es causa tam-

bién de dermatitis en las extremi-

dades, y de trastornos oculares y

respiratorios de vías altas.

Los roedores beben y se ali-

mentan según los hábitos ca-

racterísticos de cada especie

principalmente al atardecer y de

madrugada en roedores noctur-

nos. No se recomienda el empleo

de mezclas de semillas como

base de la alimentación (hay po-

sibilidades de que escojan según

aspecto y gusto, y ninguna semi-

lla contiene la proporción exacta

de los nutrientes requeridos). Los

piensos comerciales que ofrece

el mercado suelen tener un con-

tenido alto en proteína y bajo en

fi bra; unidos a su baja dureza,

estos alimentos tampoco son re-

comendables como alimentación

exclusiva de los roedores (provo-

can alteraciones dentales y di-

gestivas —por défi cit de fi bra—).

Cachorro de chinchilla de pocos días de vida. Obsérvese el gran

desarrollo de las crías de esta especie precocial.

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La composición de una dieta equilibrada para

este tipo de mascota debe contener los si-

guientes:

1. Porción de pienso o mezcla de semillas:

un pienso compuesto comercial (en for-

ma de pellets o extrusionado), de calidad,

suplementado con vitaminas. O bien, una

mezcla de semillas muy variadas (siempre

y cuando coman proporcionalmente de

todas)

2. Porción de fibra o verdura lavada: hierba

seca, diente de león seco, alfalfa seca y

fresca, trébol, pellets de alfalfa, sal-

vado, pan integral duro, heno,

paja, hojas de col, de

bróculi, de nabo,

endibias, esca-

rola, hojas de coliflor, zana-

horia y sus hojas, patatas,

menestra de verduras,

algarrobas…

3. Complementos:

fruta (manzana,

kiwi, cítricos…),

frutos secos, yo-

gurt…

En especies herbívo-

ras estrictas como las chinchi-

llas, cobayas y perritos de las praderas, el

aporte de heno y verduras debe mayor que en

el resto de roedores.

Las cobayas tienen requerimientos especí-

ficos de vitamina C (hay que asegurar la in-

gestión diaria de cítricos, kiwi.. o verduras con

vitamina C, o suplementarla a diario directa-

mente en boca)

Los hámster y ardillas tienen requerimientos

proteicos más elevados, se puede añadir

pienso de perro o gato a la dieta habitual o

utilizar un pienso alto en proteína.

Manejo clínico

Exploración clínica

Ante todo, debemos tener en cuenta que en

general, los roedores son muy estresables, no

Jerbo de Mongolia en su jaula, con un sustrato de viruta de madera y papel. Es muy importante proporcionar una caja o nido a modo de escondrijo en cualquier roedor.

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admitiendo ser manipulados ni explorados en detalle. Suelen ser animales

muy chillones y agresivos, produciendo dolorosos mordiscos al manipula-

dor (complicados por la no-unión de los incisivos inferiores). La mejor forma

de sujetarlos es cogiendo con una mano el pliegue cutáneo de la nuca

(coger el máximo de pliegue de piel, aunque los ojos sobresalgan mucho) e

inmovilizando las dos extremidades posteriores con la otra mano en el caso

de chinchillas y cobayas. Nunca deben sujetarse por la cola, excepto en

chinchillas (algunos roedores tienen la capacidad de realizar caudectomias

espontáneas para escapar), ni tampoco deben dejarse libres las extremida-

des posteriores (en cobaya y chinchilla), para evitar el pataleo brusco que

puede conducir a lesiones más o menos importantes.

Las cobayas no toleran muy bien los procedimientos clínicos rutinarios,

fácilmente pueden desarrollar shock cardíaco o respiratorio secundario

al estrés.

Podemos ayudarnos también de ciertos utensilios (pinzas fijas, tubos

de plástico, tubos de cartón o de malla, paños y toallas…) que permiti-

rán inmovilizarlos y explorarlos.

Para llevar a cabo una correcta exploración es preferible que un auxiliar

se encargue de la correcta sujeción del paciente. De esta forma, el vete-

rinario tiene las dos manos libres y puede llevar a cabo una exploración

detallada y sin riesgo para el animal.

La exploración física de los roedores es completamente igual a la reali-

zada en otros mamíferos domésticos, con la importancia añadida de la

exploración de la cavidad bucal para observar los dientes y asegurar un

correcto desgaste de ellos.

administración de fármacos por vía oral

La administración de comprimidos resulta muy complicada, por lo que

se recomienda el empleo de suspensiones orales. Los comprimidos

también pueden triturarse y mezclarse con purés de verdura que se

administran con facilidad con jeringuilla.

El sondaje gástrico resulta delicado en cobayas y chinchillas por el alar-

gamiento del paladar blando.

administración de fármacos por vía parenteral

Las inyecciones subcutáneas no revisten ninguna dificultad. Se reco-

mienda emplear la piel de la zona dorsal o del abdomen.

En cuanto a las inyecciones intramusculares, puede emplearse la mus-

culatura lumbar, sujetando muy bien al animal para evitar que dé un

salto al notar la aguja. Se recomienda aplicar las inyecciones en la

musculatura de la cara anterior de la pierna (cuádriceps).

Para la administración de fármacos por vía endovenosa, pueden em-

plearse cualquiera de las vías descritas para venipuntura. Cuando sea

preciso realizar una sueroterapia continuada, puede recurrirse a la ad-

ministración subcutánea, intraperitoneal o intraósea (en fémur proximal

o cresta ilíaca).

Sujeción correcta de una Ardilla listada por el pliegue de piel de la nuca.

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exóticos.�3

aspectos terapeuticos en roedores

Los roedores, al igual que los conejos, tienen

una mayor sensibilidad a ciertos productos

utilizados habitualmente en el tratamiento de

enfermedades:

Antibióticos: Son muy sensibles a los Beta-

lactámicos y derivados (Amoxicilina, Am-

picilina…). Aunque para tratamientos con-

cretos puede utilizarse la Penicilina G o la

ampicilina, es mejor, de entrada evitar su

utilización.

Los antibióticos descritos capaces de provo-

car enterotoxemia secundaria son las Penicili-

nas, Cefalosporinas, Clindamicina, Eritromici-

na, Lincomicina, Estreptomicina, Bacitracina,

Tetraciclinas y Tilosina.

Todos los antibióticos administrados oral-

mente son susceptibles de alterar el deli-

cado equilibrio bacteriano digestivo, por

ello, es mejor utilizar la vía parenteral a la

vía oral.

En cualquier caso, y siempre que se admi-

nistren antibióticos, se recomienda ofrecer

reconstituyentes de la fl ora digestiva (Lacto-

bacillus, Enterococcus) para evitar disbiosis

iatrogénicas y enterotoxemias. Como antibió-

ticos seguros pueden utilizar el Cloranfenicol,

la Gentamicina (siempre y cuando asegu-

remos un buen estado de perfusión renal, y

realizando pautas cortas), el Metronidazol, los

compuestos de sulfamidas + trimetoprím (de

primera indicación para problemas digestivos)

y la Enrofl oxacina o la Ciprofl oxacina (se trans-

forma en la anterior en el hígado, requiriendo

dosis mayores).

Antiparasitarios: El producto de elección es la

Ivermectina (oral, tópica, ótica o subcutánea).

El fenbendazol también se utiliza frecuente-

mente.

Analgésicos: Por el hecho de tratarse de ani-

males muy sensibles al estrés, el soporte anal-

gésico será vital para cualquier procedimiento

doloroso o que requiera minimizar el estrés

del animal. Se puede usar la Buprenorfi na, el

Fluxinil meglumine, Butorfanol, Meloxicam o

Carprofeno.

Bibliografía:

- Quesenberry K.E., Carpenter J.W. Ferrets, Rab-

bits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery.

Second Edition. Ed. Saunders.

- Harkness J.E. Essentials of Pet Rodents: A guide

for Practitioners. AAHA Press.

Las chinchillas sueltan gran cantidad de pelo

durante la exploración física. Se pueden suje-

tar por la base de la cola y la zona de la nuca.

Exploración de una chinchilla en la consulta. Extracción de sangre de la vena cava craneal

en un Perrito de las Praderas.

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