¡En 7 Minutos o Menos! - University of ArizonaEn 7 minutos o menos y sólo 7 pasos, se pueden...
1
En 7 minutos o menos y sólo 7 pasos, se pueden determinar el tamaño y la estructura de la población de Bemisia tabaci en un campo de algodón. Con esta información, se pueden tomar decisiones para su control más precisas y apropiadas. Este sistema de muestreo requiere examinar 30 hojas y 30 discos de hojas para la presencia de adultos y ninfas grandes vivas. Las poblaciones de mosca blanca se estiman de la mejor manera en la quinta hoja a partir de la terminal (A). Las hojas del tallo principal se unen directamente al tallo a través de sus peciolos. La primera hoja del tallo en la terminal se define como aquella hoja totalmente desenrollada en la terminal y que tenga por lo menos una pulgada de diámetro. Los adultos se cuentan en esta quinta hoja (A, B); las ninfas grandes se cuentan en un área circular de una parte específica del envés de esta hoja (C, D). Pasos para un Muestreo Eficiente de Mosca Blanca 1. Familiarícese con la variedad, etapa de crecimiento del cultivo y la ubicación general de la quinta hoja del tallo principal en el campo 2. Adéntrese por lo menos 25 pasos al campo antes de seleccionar plantas al azar y separadas entre 5 y 10 pasos una de otra, teniendo cuidado de no proyectar sombra sobre las plantas que se vayan a muestrear. 3. Tomar la quinta hoja a partir de la terminal ya sea de la punta o del peciolo y voltearla; la hoja se considerará infestada con adultos si tiene 3 o más de estos (B). Considerar en el conteo todos los adultos que salgan volando de la hoja al girarla. 4. Separar esa hoja del tallo con todo y peciolo, si la unión entre peciolo y tallo está correosa y no se separa fácilmente, se ha escogido una planta que está muy arriba. Verificar que la hoja sea de la posición correcta (quinta a partir de la terminal). No hay problema si se cuentan adultos de la cuarta o sexta hoja, pero el conteo de ninfas debe ser de la quinta (C). 5. Utilizando una lupa de 8x, especialmente modificada (D), localizar el área circular de un diámetro de una moneda de 25 centavos americanos (“el disco”) ubicada entre las nervaduras central e izquierda. Examinar esta área buscando ninfas grandes vivas (instares 3 ó 4, E–F). Considerar el disco como infestado si existen una o más ninfas grandes y vivas. 6. Este muestreo de adultos y ninfas se debe realizar por lo menos es dos áreas diferentes del predio, 15 hojas y 15 discos de cada área (un total de 30 de cada una). 7. Las decisiones se tomarán basadas en el porcentaje de hojas y discos que están infestados con adultos y ninfas respectivamente. ¡En 7 Minutos o Menos! Peter C. Ellsworth, Lydia Brown, Gilberto Castro (University of Arizona) & Steven Naranjo (USDA-ARS) 7/2012 C D A B El área del “disco” forma una tangente con las nervaduras central e izquierda Ver publicaciones relacionadas en español en la página: http://cals.arizona.edu/apmc/Mexicali_cotton Un agradecimiento especial a Ari Mateos, Ramón Cinco, Pedro Andrade y Gilberto Castro por la asistencia de traducción. Información relacionada al Valle de Mexicali y San Luis del proyecto de control integrado de plagas (IPM) en algodón es con los lineamientos del programa frontera 2012 fundada por la Agencia de Protección al Ambiente de Estados Unidos y administrada por BECC E F Lupa para muestrear mosca blanca de 8x diámetro de 22 mm 4to instar tardío 3er instar 4to instar Una hoja “infestada” es aquella con 3 o más adultos Par apareándose Enés de la 5ta hoja nudo 1, primera hoja totalmente desenrollada Quinta hoja a partir de la terminal 3er instar Contar adultos en la 5ta hoja, desprender la hoja y contar ninfas en el área del “disco” (A).
Transcript of ¡En 7 Minutos o Menos! - University of ArizonaEn 7 minutos o menos y sólo 7 pasos, se pueden...
En 7 minutos o menos y sólo 7 pasos, se pueden determinar el tamaño y la estructura de la población de Bemisia tabaci en un campo de algodón. Con esta información, se pueden tomar decisiones para su control más precisas y apropiadas. Este sistema de muestreo requiere examinar 30 hojas y 30 discos de hojas para la presencia de adultos y ninfas grandes vivas.
Las poblaciones de mosca blanca se estiman de la mejor manera en la quinta hoja a partir de la terminal (A). Las hojas del tallo principal se unen directamente al tallo a través de sus peciolos. La primera hoja del tallo en la terminal se define como aquella hoja totalmente desenrollada en la terminal y que tenga por lo menos una pulgada de diámetro. Los adultos se cuentan en esta quinta hoja (A, B); las ninfas grandes se cuentan en un área circular de una parte específica del envés de esta hoja (C, D).
Pasos para un Muestreo Eficiente de Mosca Blanca
1. Familiarícese con la variedad, etapa de crecimiento del cultivo y la ubicación general de la quinta hoja del tallo principal en el campo
2. Adéntrese por lo menos 25 pasos al campo antes de seleccionar plantas al azar y separadas entre 5 y 10 pasos una de otra, teniendo cuidado de no proyectar sombra sobre las plantas que se vayan a muestrear.
3. Tomar la quinta hoja a partir de la terminal ya sea de la punta o del peciolo y voltearla; la hoja se considerará infestada con adultos si tiene 3 o más de estos (B). Considerar en el conteo todos los adultos que salgan volando de la hoja al girarla.
4. Separar esa hoja del tallo con todo y peciolo, si la unión entre peciolo y tallo está correosa y no se separa fácilmente, se ha escogido una planta que está muy arriba. Verificar que la hoja sea de la posición correcta (quinta a partir de la terminal). No hay problema si se cuentan adultos de la cuarta o sexta hoja, pero el conteo de ninfas debe ser de la quinta (C).
5. Utilizando una lupa de 8x, especialmente modificada (D), localizar el área circular de un diámetro de una moneda de 25 centavos americanos (“el disco”) ubicada entre las nervaduras central e izquierda. Examinar esta área buscando ninfas grandes vivas (instares 3 ó 4, E–F). Considerar el disco como infestado si existen una o más ninfas grandes y vivas.
6. Este muestreo de adultos y ninfas se debe realizar por lo menos es dos áreas diferentes del predio, 15 hojas y 15 discos de cada área (un total de 30 de cada una).
7. Las decisiones se tomarán basadas en el porcentaje de hojas y discos que están infestados con adultos y ninfas respectivamente.
¡En 7 Minutos o Menos! Peter C. Ellsworth, Lydia Brown, Gilberto Castro
(University of Arizona) & Steven Naranjo (USDA-ARS)
Figure 1. A, B, Araña cangrejo ; C, mosquita blanca atrapada en telaraña de Dictyna; D, Araña Dictyna; E, Araña saltona ; F, cadena alimentaria del algodón destaca el grupo mas importante de depredadores para controlar mosquita blanca y otras plagas. Líneas naranja representan depredadores de mosquita blanca; líneas negras muestran depredadores que inclusive se alimentan de otros depredadores.
7/2012!
Any products, services, or organizations that are mentioned, shown, or indirectly implied in this publication do not imply endorsement by the
University of Arizona or the USDA.
B
C
D
Saltahojas presas
Adultos de mosca blanca en una telaraña de Dictyna
A
B
El área del “disco” forma una tangente con las nervaduras central e
izquierda
Ver publicaciones relacionadas en español en la página: http://cals.arizona.edu/apmc/Mexicali_cotton Un agradecimiento especial a Ari Mateos, Ramón Cinco, Pedro Andrade y Gilberto Castro
por la asistencia de traducción.
Información relacionada al Valle de Mexicali y San Luis del proyecto de control integrado de plagas (IPM) en algodón es con los lineamientos del programa frontera 2012 fundada por
la Agencia de Protección al Ambiente de Estados Unidos y administrada por BECC
E F
Lupa para muestrear mosca
blanca de 8x
diámetro de 22 mm
4to instar tardío
3er instar
4to instar
Una hoja “infestada” es aquella con 3 o
más adultos Par
apareándose
Enés de la 5ta hoja
nudo 1, primera hoja totalmente desenrollada
Quinta hoja a partir de la terminal
3er instar
Contar adultos en la 5ta hoja,
desprender la hoja y contar ninfas en el área del “disco”
In 7 minutes or less and just 7 steps, you can determine the size and structure of Bemisia tabaci populations in a cotton field. With this information, more precise and appropriate control decisions can be made. The sampling system requires the examination of 30 leaves and 30 leaf disks for the presence of adults and live, large nymphs.
Whitefly populations are best estimated from the fifth main stem leaf below the terminal (A). Main stem leaves are attached directly to the main stem by their petioles. The first main stem leaf is defined as the first unfolded leaf in the terminal and is at least 1 inch in diameter or larger. Adults are counted from this leaf position (A, B); large nymphs are counted on a disk-sized area in a specific location on the underside of this leaf (C, D).
Steps to Efficient Sampling of Whiteflies 1. Familiarize yourself with the variety, crop growth stage &
general location of the fifth main stem leaf in your field (A).
2. Enter a field at least 25 paces & select plants at random and 5–10 steps apart, being careful to keep your shadow from passing over plants you wish to sample.
3. Turn the fifth leaf over slowly by its tip or petiole & count the leaf as infested with adults if it has 3 or more adults on it (B). Include in your counts any whiteflies that fly up from the leaf as you turn it over.
4. Detach the leaf by the petiole from the main stem. If it fails to yield easily and snap off, then you have selected a leaf that is too high on the plant. Re-check your leaf position to make sure you are sampling from the fifth leaf. It is o.k. to count adults from main stem leaves #4–6. However, your nymph counts must come from the fifth leaf (C).
5. Using a specially designed 8x loupe (D), locate your disk-sized area between the central main and left lateral veins of the leaf. Examine this area for the presence of live, large nymphs (instars 3 or 4, E–F). Count the leaf disk as infested if it has at least one live large nymph.
6. Adult and nymph sampling should be conducted in at least 2 different areas of a field, 15 leaves and 15 leaf disks from each area (for a total of 30).
7. Decisions are then based on the percentage of leaves that are infested with adults as well as the percentage of leaf disks infested with live, large nymphs.
(A).
