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Universidad Nacional José Faustino Sánchez Carrión Apoptosis Medicina Humana Ciclo I - 2009 I Página1 INTRODUCCIÓN La muerte celular comenzó a considerarse como un fenómeno fisiológico e importante dentro del proceso de desarrollo de los organismos poco después del descubrimiento, realizado sobre la mitad del siglo XIX, de que los organismos estaban compuestos por células. Las primeras observaciones de muerte celular fisiológica fueron realizadas en la metamorfosis de anfibios por Vogt en 1842 y posteriormente se realizaron estas mismas descripciones en otros tejidos en desarrollo, tanto de invertebrados como de vertebrados. El concepto de "muerte celular programada" fue acuñado por Lockshin y Williams en 1964 y describía la muerte de las células que ocurría en lugares y momentos determinados como eventos programados dentro del plan de desarrollo del organismo. Años después, en 1972, Kerr, Wyllie y Currie a partir de una recopilación de evidencias morfológicas, establecieron las diferencias entre dos tipos de muerte celular. La patológica que ocurre, por ejemplo, en el centro de una lesión aguda como trauma o isquemia, está caracterizada por la ruptura celular y recibe el nombre de necrosis celular, y la fisiológica, que ocurre durante el desarrollo o la hemostasis del organismo, que mantiene la integridad de la célula y a la que Kerr y sus colaboradores llamaron apoptosis. Según este grupo, la muerte por apoptosis respondía a un programa de muerte intracelular que podía ser activado o inhibido por una variedad de estímulos, tanto fisiológicos como patológicos. En 1982 tuvo lugar un descubrimiento que abrió las puertas al estudio profundo de las bases moleculares y genéticas del proceso de apoptosis. Horvitz publicó los estudios genéticos realizados sobre el nematodo caenorhabditis elegans en los que se describieron los genes encargados del control y la ejecución de la apoptosis en este organismo. Gracias a la homología existente entre estos genes en c. elegans y organismos superiores, la apoptosis en este nematodo ha sido tomada como referente del proceso en todos los sistemas y esto ha podido identificar una parte importante de la red de mecanismos que lo controlan.

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INTRODUCCIÓN

La muerte celular comenzó a considerarse como un fenómeno fisiológico e

importante dentro del proceso de desarrollo de los organismos poco después del

descubrimiento, realizado sobre la mitad del siglo XIX, de que los organismos estaban

compuestos por células. Las primeras observaciones de muerte celular fisiológica

fueron realizadas en la metamorfosis de anfibios por Vogt en 1842 y posteriormente

se realizaron estas mismas descripciones en otros tejidos en desarrollo, tanto de

invertebrados como de vertebrados.

El concepto de "muerte celular programada" fue acuñado por Lockshin y

Williams en 1964 y describía la muerte de las células que ocurría en lugares y

momentos determinados como eventos programados dentro del plan de desarrollo del

organismo. Años después, en 1972, Kerr, Wyllie y Currie a partir de una recopilación

de evidencias morfológicas, establecieron las diferencias entre dos tipos de muerte

celular. La patológica que ocurre, por ejemplo, en el centro de una lesión aguda como

trauma o isquemia, está caracterizada por la ruptura celular y recibe el nombre de

necrosis celular, y la fisiológica, que ocurre durante el desarrollo o la hemostasis del

organismo, que mantiene la integridad de la célula y a la que Kerr y sus colaboradores

llamaron apoptosis. Según este grupo, la muerte por apoptosis respondía a un

programa de muerte intracelular que podía ser activado o inhibido por una variedad

de estímulos, tanto fisiológicos como patológicos.

En 1982 tuvo lugar un descubrimiento que abrió las puertas al estudio profundo

de las bases moleculares y genéticas del proceso de apoptosis. Horvitz publicó los

estudios genéticos realizados sobre el nematodo caenorhabditis elegans en los que se

describieron los genes encargados del control y la ejecución de la apoptosis en este

organismo. Gracias a la homología existente entre estos genes en c. elegans y

organismos superiores, la apoptosis en este nematodo ha sido tomada como referente

del proceso en todos los sistemas y esto ha podido identificar una parte importante de

la red de mecanismos que lo controlan.

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DEFINICIÓN

Se considera a la apoptosis como un mecanismo fisiológico de muerte (inherente

al desarrollo celular), que se desencadena por diversas señales, las cuales pueden ser

fisiológicas, o por estimulaciones exógenas ambientales. Estas señales pueden actuar

sobre receptores de superficie y causar la activación en cascada de proteínas

citoplasmáticas; ello trae como resultado la activación de un programa genético que

conduce, generalmente, a la nucleólisis por la acción de las endonucleasas. Este

mecanismo de muerte celular interviene en importantes fenómenos fisiológicos como:

embriogénesis, mantenimiento de la homeostasia, renovación tisular y desarrollo y

funcionamiento del sistema inmunitario.

Los trastornos en la regulación de la apoptosis por diferentes vías, están

presentes en la etiopatogenia de diversas enfermedades autoinmunes,

neurodegenerativas, y también se sugiere que participen en el Síndrome de

Inmunodeficiencia Adquirida (SIDA).

Debido a que la apoptosis puede considerarse como un proceso de eliminación de

células defectuosas, la desregulación de los genes que codifican las proteínas

relacionadas con la apoptosis, puede ser la causa del desarrollo de diversos tumores.

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MODELO INICIAL: C.ELEGANS

Dentro del estudio del proceso de apoptosis que se ha venido realizando a lo

largo de los últimos años, resultó determinante la descripción de los genes implicados

en la maquinaria de apoptosis del nematodo caenorhabditis elegans. C. elegans

pertenece a un filo formado por:

"Gusanos de piel lisa, no segmentados, con un cuerpo alargado, cilíndrico y forma

afilada en el extremo. Incluye formas libres y parásitas, ambas acuáticas y terrestres"

Es un organismo de aproximadamente 1mm de longitud, vive en el suelo sobre materia

vegetal en descomposición, alimentándose de microorganismos. Su vida se prolonga a

lo largo de 2-3 semanas durante las cuales se reproduce. El estudio de este nematodo

fue iniciado en los años 60 por Sydney Brenner.

La ventaja que proporciona c. elegans como sistema experimental es que posee

959 células somáticas transparentes, que pueden ser estudiadas individualmente

mediante microscopía, y 17800 genes diferentes que forman su mapa genético

secuenciado íntegramente. Este organismo, a pesar de su simplicidad, desarrolla los

procesos que en organismos superiores son motivo de estudio: embriogénesis,

desarrollo, funcionamiento del sistema nervioso, comportamiento y envejecimiento. C.

elegans representa el compromiso perfecto entre la simplicidad en su tratamiento y la

complejidad de las funciones y los mecanismos que posee, regidas por genes que se

han conservado a lo largo de la evolución hasta los mamíferos.

La apoptosis juega un importante papel en el desarrollo embrionario de c.

elegans. A partir de los estudios que Horvitz inició en 1986, se estableció el número y

la localización de las células que morían por apoptosis durante el desarrollo y

mediante el análisis de mutantes se describieron los genes implicados en este

mecanismo. Estos genes se denominaron ced y se enumeraron desde el -1 al -10. Ced-

3. -4 y -9 regulan la fase ejecutora de la apoptosis y el resto está implicado en los

procesos de eliminación por fagocitosis de la célula apoptótica. Posteriormente se

describió el gen EGL-1 que participa también en la regulación de la MCP. El complejo

ejecutor formado por ced-3, -4 y -9 representa la imagen más simplificada del

programa apoptótico que se puede encontrar en células de mamíferos.

Cada una de las proteínas expresadas a partir de ellos son equivalentes a las que,

en organismos superiores, constituyen los pilares que soportan la red de señalización

de la apoptosis. CED-3 es una proteasa equivalente a las caspasas de mamíferos,

proteínas ejecutoras de la apoptosis que desmontan la maquinaria celular degradando

un grupo seleccionado de proteínas. CED-3 se activa por homodimerización y para

hacerlo posible, existe otra proteína CED-4 capaz de interaccionar con ella y también

consigo misma. La unión de CED-3 a CED-4 y la posterior homodimerización de esta,

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traería consigo la activación de CED-3. CED-4 tiene también su homologo en

mamíferos, Apaf-1, que se une a procaspasa-9 y facilita su activación. La tercera

proteína de esta maquinaria es CED-9, la pieza reguladora, que se une a CED-4 y la

inhabilita para mediar la activación de CED-3, al impedir su homodimerización.

Su interacción con una proteína pro-apoptótica como es EGL-1 en c. elegans, la

separa de CED-4 dejándola realizar su función activadora de la apoptosis. En mamífero,

esta proteína es equivalente a toda una familia con miembros tanto pro-apoptóticos

como anti-apoptóticos que regulan el proceso de muerte celular. Las moléculas

equivalentes entre los sistemas que se han mencionado anteriormente, presentan tal

homología de secuencias que muestran que este sistema se ha mantenido totalmente

conservado a lo largo de la evolución. Los componentes del sistema que parece que

han sido de adquisición más recientes son los receptores de muertes, ya que ningún

equivalente de ellos ha sido encontrado aún en c. elegans.

De esta forma, el estudio del nematodo c. elegans estableció las bases para la

caracterización, que hoy día aún es incompleta, de la compleja red de procesos que

culminan con la apoptosis celular y que a continuación se resumen.

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DIFERENCIAS ENTRE APOPTOSIS Y NECROSIS

Mientras la apoptosis está caracterizada por una activa participación de la propia

célula que está falleciendo, incluso hasta el punto de sintetizar de novo (en algunos

tipos celulares) los efectores de su muerte celular, la necrosis es un proceso pasivo,

catabólico y degenerativo. La necrosis también recibe otros nombres como muerte

accidental u oncosis. La necrosis generalmente representa una respuesta celular a una

lesión y puede ser inducida por una sobredosis de agentes citotóxicos, un choque de

pH, hipertermia, hipoxia, trauma directo, un choque ácido, etc. Un acontecimiento

temprano de la necrosis es la pérdida de control de la permeabilidad de la membrana

plasmática. Como consecuencia de ello se establece un flujo anormal de iones hacia el

interior celular que va acompañado de la entrada pasiva de agua.

La entrada de agua provoca que tanto la célula como algunos de sus orgánulos

membranosos (mitocondria, retículo endoplásmico, etc) se hinchen y finalmente

estallen. Después la membrana plasmática se rompe y se liberan constituyentes

citoplásmicos, incluyendo enzimas proteolíticas (Majno G, Wyllie AH ). En la cromatina

nuclear aparecen áreas de condensación desigual y en núcleo sufre una lenta

disolución (cariolisis). La necrosis desencadena una reacción inflamatoria en el tejido

que a menudo produce formación de cicatriz. La degradación del DNA no es tan

excesiva durante la necrosis como en la apoptosis, y los productos de degradación son

de tamaño variable que forman bandas discretas en los geles de electroforesis.

APOPTOSIS NECROSIS

CAUSAS Falta factores de crecimiento

Influencia hormonal

Toxicidad suave

Anoxia

Daño físico o químico

MORFOLOGÍA Célula encogida Célula inflada

NÚCLEO Condensación

Segmentación

Fragmentación del ADN

Degradación del ADN

MEMBRANA CELULAR Protuberancias, cambios en

la distribución de la

fosfatidilserina

Lisa, lisis

MITOCONDRIA Cambios moleculares Inflamiento

EXPRESIÓN Expresión génica

Síntesis proteica

Activación de proteasas

------

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MORFOLOGÍA

La apoptosis se considera, morfológica y bioquímicamente, diferente a la muerte

celular por necrosis osmótica. En la necrosis, un grupo de células, ante estímulos

externos, pierden la integridad de membrana alterando la regulación de la

homeóstasis iónica celular y permitiendo un gran edema intracelular y la destrucción

de organelas; como consecuencia se provoca una intensa respuesta inflamatoria que

participará, igualmente, en la fagocitosis del detritus celular.

Los rasgos morfológicos de la apoptosis difieren de los de la necrosis

observándose mejor con microscopía electrónica. Inicialmente se produce la

constricción de la membrana, disminuyendo el tamaño celular y agrupando las

organelas, dándole al citoplasma un aspecto más denso. Los cambios nucleares son los

rasgos más característicos. La cromatina se condensa en la periferia, por debajo de la

membrana nuclear, en masas densas bien definidas.

Posteriormente el núcleo se fragmenta, formándose, al mismo tiempo, vesículas

citoplasmáticas y los denominados cuerpos de apoptosis. Estos cuerpos apoptóticos se

componen de citoplasma y 70 organelas muy agrupadas, pudiendo contener también

fragmentos nucleares, rodeados siempre de membrana. Los cuerpos de apoptosis

serán fagocitados por las células sanas adyacentes del parénquima o por macrófagos,

donde se degradaran con rapidez dentro de los lisosomas, gracias a su actividad

enzimática. Seguidamente las células adyacentes serían capaces de migrar o proliferar

reemplazando así el espacio ocupado por la célula apoptótica suprimida.

La apoptosis afecta a células aisladas o racimos celulares pequeños.

Histológicamente, con tinción de hematoxilina eosina, la célula apoptótica suele

reconocerse como una masa redondeada u oval de citoplasma, fuertemente

eosinófilo, con fragmentos de cromatina nuclear densa. La constricción celular y la

formación de cuerpos apoptóticos tienen un comienzo abrupto con una duración de

pocos minutos; sin embargo los cuerpos de apoptosis permanecen en el tejido

aproximadamente 2 horas hasta que sean fagocitados y degradados.

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CARACTERISTICAS

Una célula que va a sufrir apoptosis activa una cascada de eventos moleculares

que culminan en su total desintegración. Muchos de estos cambios son característicos

y parecen ser únicos a la apoptosis por lo que pueden ser utilizados para identificar

este modo de muerte celular.

Uno de los eventos más tempranos de la apoptosis es la deshidratación celular.

La pérdida del agua intracelular conlleva la condensación del citoplasma y cambios en

la forma y el tamaño celular: Las células que eran redondas originalmente aparecen

elongadas y, generalmente, más pequeñas. Otro cambio, quizá el más característico de

la apoptosis, es la condensación de la cromatina nuclear. La condensación comienza en

la periferia nuclear, y la cromatina condensada a menudo adquiere una forma cóncava

que se asemeja a una media luna.

El DNA en la cromatina condensada presenta hipercromasia y se marca

intensamente con sondas fluorescentes. La envuelta nuclear se desintegra, la laminilla

sufre degradación proteolítica y, por último, se produce la fragmentación nuclear.

Algunos fragmentos nucleares, que se tiñen uniformemente con sondas de DNA y que

parecen gotitas de DNA de diferentes tamaños, están dispersos en el citoplasma. Estos

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fragmentos nucleares junto con los constituyentes del citoplasma (incluyendo

orgánulos intactos), son empaquetados y envueltos por fragmentos de membrana

plasmática. Estas estructuras, denominadas cuerpos apoptóticos, son emitidas por las

células apoptóticas. Cuando la apoptosis sucede in vivo , los cuerpos apoptóticos son

fagocitados por las células vecinas como fibroblastos o células epiteliales (y no

necesariamente por macrófagos profesionales) sin desencadenar ninguna reacción

inflamatoria en el tejido.

La activación de endonucleasas que cortan preferencialmente en secciones

internucleosomales es otra característica específica de la apoptosis. Los productos de

la degradación del DNA son fragmentos nucleosomales u oligonucleosomales que

generan el característico patrón en escalera en electroforesis de geles de agarosa.

Como el DNA de las células apoptóticas está parcialmente degradado, la fracción de

bajo peso molecular puede ser extraída fácilmente.

Otra característica específica de la apoptosis es la preservación, al menos en la

fase inicial de la apoptosis, de la integridad estructural y de la mayoría de las funciones

de la membrana plasmática. También, los orgánulos celulares incluyendo la

mitocondria y los lisosomas, permanecen preservados durante la apoptosis, aunque el

potencial transmembrana de la mitocondria está enormemente decrementado. Otras

características de la apoptosis son la movilización del catión calcio (Ca 2+ ) intracelular

( McConkey DJ ), la activación de la transglutaminasa que une proteínas citoplás micas,

la pérdida de microtúbulos, pérdida de la asimetría de los fosfolípidos de la membrana

plasmática que permite la exposición de la fosfatidilserina en la cara externa de la

membrana plasmática, y otros cambios de la membrana plasmática que

precondicionan a los restos de las células apoptóticas a ser objetivos de las células

fagocíticas.

La duración de la apoptosis puede variar, pero generalmente es corta (3-6 horas),

incluso es más breve que la duración de la mitosis. De esta forma, bajo condiciones de

homeostasis, cuando la proporción de células muertas está equilibrada por la tasa de

proliferación celular, el índice mitótico puede exceder del índice apoptótico.

Más recientemente apareció el término anoikis que es la apoptosis inducida por

la pérdida de anclaje de la célula a la matriz extracelular o porque las interacciones

célula-matriz son insuficientes o inapropiadas. Este proceso parece relacionado con las

integrinas que son glucoproteínas integrales de la membrana plasmática que

intervienen en la adhesión con las células de la matriz extracelular, en su migración, en

la organización del citoesqueleto y en la transducción de señales. De hecho, Rytömaa

et al comprueban que la pérdida de anclaje de determinadas células epiteliales

provoca una fuerte activación de caspasa-8 y caspasa-3.

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FAMILIAS DE MOLÉCULAS IMPLICADAS EN EL PROCESO DE

APOPTOSIS

RECEPTORES DE MUERTE

Las moléculas relacionadas con el proceso de apoptosis que se han mantenido a

lo largo de la evolución, desde organismos como el c. elegans hasta los mamíferos,

llevan a cabo un programa de apoptosis iniciado por señales que provienen del interior

celular.

Estas señales responden a eventos que comprometen el buen funcionamiento de

la célula dentro del entorno donde está situada: pérdida de contacto con las células

que la rodean, estrés celular o señales contradictorias y simultáneas en cuanto a la

puesta en marcha o no, de su ciclo de división. Ante esta situación, en que la célula es

potencialmente peligrosa para el sistema donde se encuentra integrada, se pone en

marcha la maquinaria de apoptosis y es eliminada.

Este sistema señalizador no puede sostener el tipo de apoptosis llamado

"instructivo" en el cual a una célula que no ha sufrido ninguno de los daños

mencionados anteriormente, se le dirige activamente hacia la apoptosis ya que su

eliminación es necesaria para llevar a cabo determinado proceso fisiológico. Los

mamíferos han desarrollado mecanismos para llevar a cabo esta forma de apoptosis

que es especialmente importante dentro del sistema inmune.

En la apoptosis "instructiva" tienen un papel fundamental los llamados

receptores de muerte, situados en la superficie de la célula, y que reciben la señal de

ligandos de muerte específicos para cada uno de ellos. Los receptores pueden dar la

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señal directamente a las caspasas en pocos segundos disparando así el programa de

apoptosis.

Los receptores de muerte pertenecen a la superfamilia del receptor de TNF

(TNFR) cuyos miembros tienen en común un dominio extracelular rico en cisteína. Otro

rasgo común a todas estas moléculas señalizadoras de apoptosis es la presencia de una

secuencia situada en su dominio intracitoplasmático y que serviría para acoplar al

receptor con el resto de la maquinaría apoptótica.

Los receptores de muerte mejor caracterizados son los siguientes:

CD95 (APO-1/Fas)

Esta proteína fue identificada inicialmente mediante un Ac dirigido contra ella y

que define un Ag presente en la superficie de células como linfocitos humanos B y T

activados, algunas líneas tumorales de origen linfoide y otros tipos celulares como son

los hepatocitos. El Ac contra CD95 se une a las células que lo expresan provocándoles

apoptosis in vitro. Por otra parte, inyectando in vivo Ac anti-CD95 a ratones nu/nu con

xenotransplantes de tumores humanos, eliminaban estos por apoptosis de sus células.

El gen que codifica para la proteína CD95 en humano se encuentra en la

localización 10q23 (cromosoma 10) y consiste en una serie de 9 exones interrumpidos

por 8 intrones. El dominio extracelular de la proteína está formado por tres

subdominios ricos en cisteínas, codificados por los exones 2, 3 y 4, mientras que la

zona intracitoplasmática, incluida la región reguladora llamada "death domain"

(dominio de muerte), se encuentra en el exón 9.

El ligando fisiológico de CD95 se denomina CD95L y es una proteína perteneciente

a la familia del TNF (tumor necrosis factor). CD95 se expresa de forma bastante

general en los distintos tejidos. La proteína ha podido ser detectada en células

epiteliales, fibroblastos, osteoblastos y ciertos tipos de endoteliales, además en ratón,

el ARNm de la proteína se ha detectado abundantemente en timo, corazón hígado y

ovario.

Por otra parte, CD95L se expresa predominantemente en células T y NK

activadas, así como de forma constitutiva en los tejidos que gozan de "privilegio

inmune". Este patrón de expresión de ambas moléculas demuestra que deben tener

implicación en una serie importante de procesos fisiológicos relacionados con el

sistema inmune.

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Resulta importante a la hora de determinar el papel jugado por algunas

moléculas, estudiar el efecto que tiene su pérdida de función en ratones "knockout".

En el caso del par CD95/CD95L, existen ratones que portan las mutaciones

homocigóticas lpr (lymphoproliferation) o gld (general lymphoproliferation disease),

que se traducen por una pérdida de función de los genes CD95 y CD95L

respectivamente. Estos ratones presentan una serie de alteraciones como son

linfoadenopatías y esplenomegalia por acumulación de células de origen T CD4- CD8-,

niveles elevados de autoAc y desordenes de carácter autoinmune e inflamatorio.

En el caso de las moléculas CD95/CD95L, existe también un referente humano de

la pérdida de su función, ya que se ha descrito en una serie de niños una mutación con

carácter heterocigótico en el gen que codifica CD95. Esta mutación da lugar a un

fenotipo similar al de los ratones lpr y gld, incluyendo linfoadenopatías,

esplenomegalia, hipergammaglobulinemia y, de forma variable, una serie de

alteraciones autoinmunes. Estos datos, tanto en ratón como en humano, han

resultado de ayuda a la hora de establecer una serie de procesos fisiológicos en los

que la implicación de la apoptosis mediada por la pareja de moléculas CD95/CD95L

está perfectamente demostrada.

Estos procesos son:

Modulación negativa de la respuesta inmune mediante la muerte por apoptosis de las

células T activadas una vez realizada su función. De esta forma se evita su

acumulación. También parece estar implicada en la delección de clones autorreactivos

de linfocitos B.

Mecanismo efector de citotoxicidad por parte de linfocitos T y células NK. Se ha

demostrado un papel importante de la apoptosis vía CD95 en la citotoxicidad mediada

por células T y NK. Este mecanismo ocurre en unión al clásico, mediado por perforina

/granzima B.

Existen órganos, como el ojo o testículos; cuya estructura no podría soportar los

efectos de una respuesta inmune y su proceso inflamatorio asociado. Estos tejidos

están aislados a estos procesos y se conocen como "sitios de privilegio inmune". Se

pensaba que este "privilegio" se mantenía evitando la entrada de células activadas en

ellos. Recientemente, se ha propuesto otro mecanismo de conservación del privilegio

inmune. Las células activadas pueden entrar en estos tejidos pero, una vez allí, son

eliminadas por apoptosis vía CD95. Esto se confirmó con el hallazgo de una expresión

constitutiva de CD95L en el epitelio y endotelio de la cornea y el iris, en las células

ciliares del ojo, así como en las células de Sertoli en el testículo, y con la observación

de que, en ratones gld, se produce una inflamación masiva en la retina tras la infección

con virus de herpes simple a diferencia de los ratones wild-type que no presentan

apenas células inflamatorias.

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TNFR1

El receptor 1 de TNF es una proteína de aproximadamente 55 kDa y se expresa

en la mayoría de los tipos celulares. Esta proteína da nombre a la familia en que está

integrada, por tanto comparte con CD95 los tres subdominios ricos en cisteínas

situados en la zona extracelular. El ligando de TNFR1 es TNF, una citoquina producida

principalmente por macrófagos activados y células T en respuesta a infección.

A diferencia de la pareja formada por CD95/ CD95L, el par TNFR1/TNF es capaz de

trasmitir a la célula dos tipos de señales muy distintas entre sí:

Por una parte, la unión de TNF a su receptor TNFR1 activa a los factores de

transcripción NFkB y AP-1 dando lugar a la inducción de genes de carácter

proinflamatorio e inmunomodulador.

Por otra parte, esta unión puede dar lugar también a una señal de apoptosis. La

señalización de apoptosis por medio de TNFR1 es mucho más limitada que la

mediada por CD95. En el caso de TNFR1, la unión de su ligando solo señaliza

apoptosis en algunos tipos celulares y solo cuando la síntesis de proteínas ha

sido bloqueada.

De este hecho se deduce que debe existir en las células algún factor que bloquee

las señales de apoptosis derivadas de TNFR1. La expresión de este factor estará

probablemente controlada a través de NFkB y JNK/AP-1.

DR3

El receptor DR3 (death receptor 3) es muy parecido en cuanto a su secuencia, a

TNFR1. Cuando se une a su ligando Apo3L, da lugar también a una doble señal que

puede llevar a la activación de NFkB o a la muerte por apoptosis de la célula. Las

moléculas que median ambas vías de la señalización son también las mismas que en el

caso de TNFR. En el único aspecto en que existen diferencias entre ambas rutas de

señalización es la expresión, tanto de receptores como de ligandos. El mensajero de

Apo3L se encuentra expresado de forma constitutiva en muchos tejidos, mientras que

DR3 se encuentra presente principalmente en bazo, timo y sangre periférica y se

induce por la activación en linfocitos T. De forma inversa, es el receptor de TNF el que

se encuentra expresado de forma ubicua mientras que el ligando se expresa solo en

linfocitos y macrófagos activados. Esta diferencia sugiere distintas funciones biológicas

para ambas vías señalizadoras.

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DR4 y DR5

DR4 y DR5 son receptores de muerte cuyo ligando llamado TRAIL o Apo2L es el

que muestra más similitud con CD95L aunque, a diferencia de estas molécula, su ARN

mensajero se encuentra expresado de forma constitutiva en gran cantidad de tejidos y

la expresión se eleva en linfocitos T de sangre periférica cuando estos son estimulados.

La señal a través de Apo2L produce apoptosis en una gran variedad de líneas

tumorales. Se ha descrito también en una subpoblación de células T maduras, un

aumento de la apoptosis mediada por Apo2L al tratar estas con IL-2. Esto puede

sugerir un posible papel de estos receptores en la delección periférica de los linfocitos

T.

Otro posible papel de la apoptosis mediada por Apo2L es la eliminación de

células infectadas por virus. La señal de apoptosis mediada por estos receptores puede

ser regulada mediante una familia de receptores "decoy" (señuelos), DcRs, que

protegen a la célula de la apoptosis provocada por la unión de TRAIL. Uno de los

miembros de esta familia es DcR1 (TRID, TRAIL-R3 ó LIT), una proteína ligada a la

superficie celular por una unión glicosil fosfatidil-inositol (GFI), que se asemeja a la

porción extracelular de DR4 pero sin poseer ningún dominio intracitoplasmático. DcR1

es capaz de unirse a TRAIL y su transfección en células sensibles a esta vía de

señalización reduce notablemente la apoptosis mediada por esta señal. DcR2 (TRAIL-

R4 ó TRUNDD) es también un receptor homologo a DR4 y DR5 con el dominio

intracitoplasmático truncado. Se ha demostrado que la transfección con DcR2 inhibe la

apoptosis mediada por TRAIL de forma no activa, ya que la eliminación de su dominio

interno no influye en su actividad inhibidora.

Todos estos datos indican que, tanto DcR1 como DcR2 compiten con DR4 y DR5

por la unión de TRAIL, dificultando así que la señal de apoptosis sea transmitida a

través de estos receptores.

Secreción de microvesículas con marcaje

exclusivo de APO2L/TRAIL tras

estimulación de blastos T humanos a

través de CD59. Inmuno-microscopía

electrónica de transmisión, muestras

preparadas por ultracriomicrotomía (de

Monleón et al., J. Immunol. 167:6736,

2001)

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GENES REGULADORES DE LA APOPTOSIS

Las reglas fisiológicas de la señal apoptótica en los mamíferos son cruciales y

complejas.

El nemátodo Caenorhabditis Elegans ha sido un buen modelo para estudiar los

componentes de la muerte celular, ya que lleva a cabo una apoptosis programada

durante el desarrollo. Además muchos de los componentes de la maquinaria de la

apoptosis, están conservados en mamíferos.

En los estudios genéticos del C. Elegans se identificaron tres productos génicos

esenciales: CED-3 y CED-4 que favorecen la apoptosis, y CED-9 que la inhiben. CED-3

es una proteína específica de la cascada efectora de la apoptosis. CED-4 es homólogo

al Apaf-1, factor promotor de la apoptosis en mamíferos, que se uniría a CED-3 y

promueve su activación. Mientras que el CED-9, en condiciones normales, se uniría a

CED-4 y CED-3 formando un complejo, que mantiene al CED-3 inactivo. El estímulo

apoptótico produciría la disociación de dicho complejo, permitiendo la activación del

CED-3.

Estos tres productos génicos tienen homología de secuencia y función con

productos génicos en mamíferos así: las caspasas de las células de mamífero son

similares a CED-3; Apaf-1 es el único homólogo de CED-4 en mamíferos conocido; y

algunos productos de genes de la familia de bcl-2 se relacionan con CED-9.

Aunque los mecanismos bioquímicos y genes implicados en este proceso son en

gran parte desconocidos, se han identificado numerosos genes que codifican

productos que influyen en la susceptibilidad celular para entrar en la apoptosis. Entre

ellos podemos distinguir activadores e inhibidores de la muerte celular programada.

FAMILIA Bcl 2 – Bax

Bcl-2 fue el primer miembro encontrado en una familia creciente de genes

implicados en la regulación de la apoptosis que, a diferencia de otro oncogenes,

prolonga la supervivencia celular bloqueando específicamente la muerte celular por

apoptosis.

El gen bcl-2 (B-cell Lymphoma 2) se identificó hace más de una década, con el

análisis y descubrimiento de la translocación 14;18 (q32,q21), en el cromosoma 18.

Esta translocación es la aberración cromosómica más común en los linfoma no

Hodgkin, alcanzando el 70-80 % en los linfomas foliculares. En este caso la secuencia

de bcl-2 se yuxtapone al gen de la cadena pesada de la inmunoglobulina (Ig H), en la

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región 14q32. Sin embargo, la translocación no se traduce en una interrupción de la

región codificante del bcl-2, sino en el gen de la Ig H.

Consecuentemente, bajo el control del gen promotor de las inmunoglobulinas, se

produce la sobreexpresión, tanto del ARNm como del producto proteico, de bcl-2 en

estos linfomas y como consecuencia, una disminución de la muerte de los linfocitos B

afectados. Esta prolongación de la vida de las células B es un evento crítico en la

génesis del linfoma folicular.

Por otro lado, y accidentalmente, se observó que este gen, activado por la

traslocación 14;18, permitía la supervivencia de células hematopoyéticas citoquin-

dependientes, en estado quiescente, en ausencia de citoquina263. Este hallazgo se

verificó en otras líneas celulares en ratones transgénicos, estableciéndose que la

supervivencia y la proliferación celular estaban directamente relacionados con una

sobreexpresión de bcl-2.

Bcl-2

Es la proteína prototipo de esta familia. Pesa 26 KDa y posee los cuatro dominios

que la definen (BH1-BH4). Bcl-2 es una proteína integral de membrana y se encuentra

en la cara citoplasmática de la membrana externa de la mitocondria, el retículo

endoplásmico y la envuelta nuclear. Es en esas membranas, gracias a que puede

formar una estructura similar a un poro, donde se desarrolla una de sus posibles

funciones: modificar el flujo de moléculas o pequeñas proteínas a través de ellas,

interviniendo en la estabilidad de orgánulos como la mitocondria ante la existencia de

posibles daños.

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Su sobreexpresión puede evitar o al menos retrasar varias formas de muerte

celular programada como las inducidas por retirada de factores de crecimiento,

irradiación g, glucocorticoides y múltiples drogas quimioterápicas. En contraste,

parece no influir en otros mecanismos de apoptosis como, por ejemplo, la señalización

vía CD95 en la mayoría de los tipos celulares.

A la hora de establecer el papel fisiológico realizado por Bcl-2, debe estudiarse el

fenotipo que presenta el ratón knockout para el gen que lo codifica. El animal se

desarrolla normalmente pero termina mostrando una exagerada apoptosis de

linfocitos y melanocitos, así como lesiones neuronales e intestinales y una enfermedad

renal terminal. Esto lleva a pensar que Bcl-2 no tiene un papel muy importante, o al

menos tiene un papel redundante, en el desarrollo embrionario pero, ya después,

interviene en la regulación de la apoptosis en linfocitos, neuronas y el resto de células

y tejidos mencionados anteriormente.

Bcl-x

El gen bcl-x está colocado en una forma larga (L) y en una forma corta (S). La

proteína producida por la forma larga, Bcl-XL, tiene un 47% de hohmologia con el bcl-2

y una distribución celular semejante a este, lo que sugiere que ambas proteínas

funcionan de una manera similar. Por el contrario, el producto derivado de la forma

corta, Bcl-XS, antagoniza con la inhibición de la muerte celular programada por las dos

anteriores.

Bax

La primera proteína conocida asociada con bcl-2 in vivo fue bax ( bcl-2-associated

protein x), una proteína de 21 kD con la habilidad de suprimir la capacidad de bcl -2

para bloquear la apoptosis.

En algunos tejidos incluyendo mama, estómago, piel, ganglios linfáticos, colon e

intestino delgado, entre otros, los patrones de expresión de bax y bcl-2 están

regulados de forma paralela, lo que sugiere que existe un antagonismo activo entre

ambas proteínas. Por otro lado, también se ha visto que la expresión de bax se localiza,

especialmente, en áreas cuyas células tienen una alta tasa de apoptosis. Se han

propuesto varios mecanismos para explicar el papel regulador de sta interacción

proteína-proteína en el control de la apoptosis:

Bax podría funcionar como una molécula inductora de muerte celular, que es

neutralizada por bcl-2.

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Bcl-2 podría funcionar como un represor de muerte celular que es neutralizado,

por competencia, con una molécula inerte de bax.

Bcl-2 podría tener una función bioquímica totalmente expuesta a bax.

En otros tejidos se distribuye paradójicamente. Así, en algunas células de larga

vida como neuronas del sistema nervioso central, la expresión de bax es alta, mientras

que en células de corta vida tales como granulocitos y timocitos corticales su expresión

es nula o escasa, lo que sugiere que , o bien la vía bcl-2/bax no es responsable de la

regulación de la vida y la muerte en estas células, o bien que otros miembros de la

familia bcl-2, son expresados en estas células y contribuyen a la regulación de la

muerte celular.

Sin embargo, las neuronas están entre las células más sensibles para la inducción

de muerte celular por pérdida de factores de supervivencia (neurotrofinas), hipoxia,

hipoglucemia y una variedad de otros insultos. Por tanto, los altos niveles de bax

encontrados en varios tipos de neuronas del sistema nervioso central, además de

poder contribuir a su inherente estado de vulnerabilidad, sugieren que bax por sí sólo,

es insuficiente para poner en marcha la vía de la muerte celular en estas células, e

implica un antagonismo activo entre bax y presumiblemente otros miembros de la

familia de proteínas bcl-2 para mantener la supervivencia de esa células de larga vida.

Bak

La proteína Bak (Bcl-2 homologous antagonist/Killer) aumenta la tasa de

apoptosis inducida por deprivación de factores de crecimiento de fibroblastos,

neuronas y células linfoides murinas, lo que sugiere que funciona principalmente como

un promotor de apoptosis.

Bak se expresa ampliamente en epitelios complejos incluyendo nasofaringe,

esófagos, colón y vejiga, en los cuales tiene un papel pro-apoptótico.

Mcl-1

El gen Mcl-1 (Mieloid cell leukemia-1), descubierto en células de la leucemia

mieloblástica, funciona de manera similar a bcl-2 bloqueando la apoptosis en células

hematopoyéticas mas diferenciadas. Este gen codifica una proteína de 37 KD que tiene

una homología significativa con bcl-2, pero al contrario que esta su expresión es mayor

en las células más diferenciadas de epidermis, intestino, colón, próstata, nasofaringe y

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vía aérea superior. Esto sugiere que ambos desempeñan funciones diferentes en la

regulación in vivo de la apoptosis.

MECANISMOS DE ACCIÓN

Los miembros de la familia pro y anti-apoptótica pueden formar dímeros; si las

parejas son idénticas se denomina homodímeros, y si son diferentes heterodimeros.

Algunos de los miembros de la familia forman homodímeros (bcl-2, bax, bcl-xL y bcl-

xS), y otros, como el bcl-2, pueden formar heterodímeros con bax, bcl-x S, A1 y Bad. A

su vez bax puede heterodimerizar con bcl-2, bcl-xL, Mcl-1 y A1 y bcl-xL puede

heterodimerizar con bax, bad y bcl-xL. A pesar de que algunas células usan

preferentemente uno de los miembros de la familia como factor de supervivencia, la

mayoría de las células eucariotas presentan una tremenda redundancia en la expresión

de los miembros de la familia de bcl-2. Por ejemplo, cuando bax aparece como un

homodímero aumenta la sensibilidad de las células ante el estímulo apoptótico, sin

embargo, si forma heterodímeros con proteínas antiapoptóticas, actúa protegiendo a

la célula de la apoptosis.

Por otro lado bad puede formar heterodímeros con las moléculas

antiapoptóticas, permitiendo al bax aumentar su función proapoptótica. Se ha

establecido que los dominios BH1, BH2, y BH3 ejercen una fuerte influencia en la

formación de homo o heterodímeros. Para la actividad proapoptótica, la formación de

heterodímeros es esencial en el grupo de dominio BH3 que actúan a través de

ligandos, pero no para el grupo Mtd ya que esas tienen un impacto citotóxico

independiente dañando las organelas directamente. Incluso ante la presencia de

inhibidores de caspasas, las proteínas bax o bax-like conducen a la muerte celular, por

permeabilidad mitocondrial formando canales iónicos en su membrana.

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GEN c-myc

El gen c-myc es un elemento importante en el control de la proliferación celular.

La sobreexpresión de c-myc puede inducir bien proliferación o bien apoptosis, y la

decisión celular entre esas dos respuestas está determinada por otras señales tales

como la presencia de factores de crecimiento u otros estímulos de supervivencia como

el bcl-2. Por lo tanto, el efecto de cmyc, como el de p53, está en función del tipo

celular y de estímulos específicos y no es necesario para todas las formas de apoptosis.

GEN DE SUPRESOR TUMORAL p53

P53 es un regulador fundamental en el normal crecimiento y la homeostasis de

células y tejidos. El gen p53 fue identificado y descrito, por primera vez, en 1979, en las

células transformadas por el virus SV40, formando un complejo con el antígeno T, el

producto proteico de dicho virus. Dado que dicho antígeno es necesario para

mantener el fenotipo transformado, se sugirió que esta interacción era importante

para la transformación y por ello, inicialmente se pensó que pertenecía a los

oncogenes y actuaba como acelerador del ciclo celular. Diez años más tarde, se mostró

que todos los clones obtenidos eran formas mutantes de p53 y se planteó que este

fuera un gen supresor tumoral que regularía el ciclo celular.

Esta hipótesis se reforzó al evidenciarse que la expresión de clones de p53 sano

suprimía la transformación de células en cultivo activadas por oncogenes, el

crecimiento de células en cultivo y el potencial tumorogénico de células en animales.

Por ello, y por el hecho de la frecuente delección de la zona del gen en varios tumores,

se llegó a la conclusión de que p53 era efectivamente un gen supresor tumoral. No

obstante puede comportarse como un oncogén en algunas formas mutantes .

Los estímulos mitógenos hacía myc activan tanto el crecimiento celular como la apoptosis, pero esta última está regulada por la disponibilidad de los factores anti-apoptóticos como el bcl-2.

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EL GEN p53 Y SU PROTEÍNA

Se localiza en el brazo corto del cromosoma 17 (17 p13), esta constituido por 11

exones dentro de un dominio cromosómico de 20 kb. En condiciones normales actúa

como “guardián del genoma” previniendo la proliferación de células que presenten un

DNA dañado. Esta función es realizada por la proteína p53 normal (“wild type”) que

recibe ese nombre por ser una fosfoproteína nuclear de 53 Kda, constituida por 393

aminoácidos. Contiene tres dominios, con diferentes funciones.

La región N-terminal principalmente controla la transactivación transcripcional,

mientras que la región carboxi-terminal controla la oligomerización, modulando la

unión de los tetrámeros al DNA. La mutación a este nivel puede trasladar la

localización de la proteína del núcleo al citoplasma. Además, dentro de la región C-

terminal, existe otra zona adicional que regula el cambio de la forma latente a la forma

activa de la proteína, para la unión con secuencias específicas. Por último, el dominio

central es la región por la que se une la proteína como tetrámero, a la secuencias

dianas de los genes en el DNA. Esta zona está muy conservada entre las especies y, es

donde se encuentran la mayoría de las mutaciones en tumores humanos. Dichas

mutaciones interfieren con el plegamiento tridimensional de la proteína y por lo tanto,

con la interacción en el DNA, evitando así la activación transcripcional de los genes

“downstream”.

Es una fosfoproteína constituida por 393 aminoácidos distribuidos en 11 exones, el primero no codificante. El dominio central hidrofóbico es el que se une como tetrámero al DNA dañado. La región N-terminal

principalmente controla la transactivación transcripcional, mientras que la región carboxi-terminal controla la oligomerización, modulando la unión de los tetrámeros al DNA.

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ACTIVACIÓN Y FUNCIÓN

La proteína p53 intracelular se determina, principalmente, por la cantidad de

proteína que se degrada, más que por el exceso de formación de la misma. La

degradación es un proceso proteolítico ATP-dependiente, mediado por ubiquitina, y la

proteína MDM-2 (Murine doublé minute) que estimula el proceso de unión entre esta

y el extremo carboxi-terminal de la p53.

El oncogen MDM2, codifica una proteína de 90 kD que forma un complejo estable

con p53, inhibiendo su unión secuencia-específica al ADN. Por ello, la sobreexpresión

de MDM2 inhibe la capacidad de p53 para estimular la expresión de determinados

genes dianas importantes en su función como supresor tumoral.

Estudios recientes, han confirmado la existencia de, al menos, tres mecanismos

independientes que activen a la proteína p53.

La primera vía se produce por daño en el DNA, como el causado por radiación

ionizante. Este daño es captado por las proteínas reguladoras (de “checkpoint”)

que retrasan el progreso del ciclo celular, hasta que el daño no es reparado.

Estas enzimas protein-quinasas están representadas por la ATM (por

encontrarse mutada en la ataxia telangiectasia), la cual es estimulada por

roturas en la doble cadena, ChK1, ChK2 y la proteín-quinasa DNA-dependiente

y ejercen su función fosforilando la p53 a los sitios amino-terminal que están

cerca de los sitios de unión de las proteínas MDM-2, permitiendo la

estabilización de la p53.

La segunda vía se lleva a cabo por señales de crecimiento aberrantes, como las

producidas por la expresión de oncogenes como Ras o Myc, en ausencia de

daño de DNA. Estos oncogenes estimulan la transcripción del gen p14ARF, o la

estabilización de la proteína p14ARF, que, a su vez, se une a la MDM-2

inhibiendo su función.

La última ruta es inducida por múltiples fármacos quimioterápicos, luz

ultravioleta e inhibidores de la protein-quinasa, y se caracteriza por estar

involucrada la proteína ATR (Proteína relacionada con ataxia-telangiectasia) y

caseín-quinasa II.

Las tres vías actúan inhibiendo la degradación de la proteína p53, es decir

estabilizándola a altas concentraciones, aumentando su actividad transcripcional

dramáticamente. Esto hace que la p53 ejerza su función en los sitios de unión en el

DNA dañado, como un tetrámero, que estimula la expresión de los genes adyacentes,

con el fin de reparar el daño genómico

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MECANISMO DE ACCIÓN Se han identificado múltiples genes que son controlados directamente por la p53, y

han sido clasificados en cuatro categorías.

Mediante estímulos enzimáticos se modifica los niveles de MDM 2 activo y, en consecuencia, aumentan los

niveles de la proteína p53 activada.

Muchos de estos genes están involucrados en la prevención del desarrollo de tumores, como los inhibidores de la progresión del ciclo celular, o del desarrollo de nuevos vasos sanguíneos, así como los que favorecen la apoptosis.

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a) Genes involucrados en la inhibición del ciclo celular: La proteína p53 se une a

secuencias específicas del DNA inhibiendo la transcripción de genes

reguladores del ciclo celular. Estos ejercen un control negativo paralizando el

ciclo celular en G1 y bloqueando la entrada en fase S, que es donde se sintetiza

el DNA. Uno de estos genes el p21 (WAF 1/ CIP1), codifica un potente inhibidor

de quinasas dependientes de ciclina (CDKs), que junto con otras proteínas

ciclinas responsable de la inactivación de la proteína Rb durante las fases G1 y

G2 del ciclo celular. Otra proteína involucrada en el control del ciclo es GADD45

(growth arrest DNA damage) la cual también se une al PCNA.

Por otro lado, en células epiteliales p53 estimula la expresión de la proteína 14-

3-3, la cual secuestra la ciclina B1- complejo CDK1 fuera del núcleo y por lo

tanto, mantiene el bloqueo en la fase G2. Se ha visto que la inhibición de esta

proteína hace que las células humanas epiteliales crezcan indefinidamente en

cultivo; esta inmortalidad puede ser la llave para diferenciar células tumorales

de las normales. Con esta interrupción del ciclo, se permite a los mecanismos

reparadores celulares actuar antes de la replicación de ADN.

b) Apoptosis: La proteína p53 no es necesaria para todas las formas de apoptosis,

pero ejerce un efecto crucial en la inducción de la apoptosis que se produce en

respuesta al daño de ADN. Si el daño es extenso e irreparable, entonces, la p53

activa los mecanismos de apoptosis, como mecanismo de defensa, para

proteger la propagación y proliferación de células que han sufrido la mutación.

La transcripción del gen bax es activada directamente por sitios de unión de la

p53 en la región de regulación. Recientemente, se ha descubierto que los genes

NOXA y P53AIP1 también son activados directamente por la p53, y que al igual

que bax , expresan sus proteínas a nivel mitocondrial teniendo una acción

inductora de la apoptosis. Otros mediadores de la apoptosis inducida por p53

incluyen proteínas similares a los receptores de apoptosis, TNF y Fas como

recientemente, se ha descubierto la PIDD. La p53 puede, también, actuar

directamente sobre la mitocondria produciendo un exceso de tóxicos con

potencial redox, sin inducir la translocación de bax.

c) Estabilidad genómica: La inactivación de los genes de reparación produce

inestabilidad genómica. La proteína p53 desempeña un papel clave para

compensar dicho efecto regulando la expresión de genes implicados en los

mecanismos de reparación y recombinación. P53 controla también la inducción

de genes como el de la ribonucleótido reductasa (RNR), implicada en las

respuestas celulares a daño en el DNA. RNR cataliza la síntesis de

desoxiribonucleótidos trifosfato (dNTPs) requeridos para el metabolismo del

DNA. El enzima es citosólica, produciendo dNTPs que penetran en el núcleo

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para la síntesis de DNA. Recientemente se ha identificado el gen p53R2,

mutado en una serie de tumores de colón, que regula una subunidad de la RNR.

Tanaka y Cols. han demostrado que las células que no producen p53R2 son más

sensibles a la muerte por agentes que dañan el DNA.

d) Inhibición de la angiogénesis: La p53 normal estimula la expresión de genes

que previenen la formación de nuevos vasos, que es un paso crítico y precoz en

el desarrollo de los tumores primarios. Se ha visto que la pérdida de función de

p53 resulta en una disminución de la expresión de trombospondina (la cual es

una poderosa inhibidora de angiogénesis)

MUTACIÓN

El gen p53 parece tener una función pivote en la carcinogénesis humana, ya que

se encuentra mutado en más del 50 % de los tumores. La inactivación de p53 puede

ocurrir a través de varios mecanismos, incluido la pérdida de alelos, delecciones,

inserciones o mutaciones puntuales, la mayoría de las cuales, responden a una

sustitución de una base en la secuencia codificante de p53 que, cambia un aminoácido

en el dominio central produciendo un cambio conformacional y de estabilización de la

proteína translocada. Aunque la presencia de un alelo aberrante puede ser suficiente

para comprometer la función de supresor tumoral, la pérdida de dicha función ocurre

normalmente por la pérdida completa de uno de los alelos del gen, resultado de una

delección cromosómica, en combinación con una mutación puntual sin sentido del

otro alelo. El polimorfismo más frecuentemente encontrado en las neoplasias

humanas se localiza en el codón 72 y resulta de una sustitución entre la prolina y la

arginina.

Sin embargo, los tumores pueden tener diferentes patrones de cambios de bases

en el DNA dependiendo si los cambios genómicos ocurren espontáneamente, o bien

por carcinógenos exógenos. Por ejemplo, en los tumores de piel, los rayos ultravioletas

producen la sustitución de bases CC por TT. En tumores sólidos, los cambios de DNA

son espontáneos en su mayoría, observándose mutaciones de C a T en los nucleótidos

5-meCpG, asociando hidrólisis de grupos amino en 5-metil citosina produciendo

timidina. Esto produce un cambio en el código genético por sustitución de citosina:

guanina a Timina: Adenina. El resultado de esa mutación es la síntesis de una proteína

con cambios en su conformación, una vida media más prolongada y una función

alterada en el crecimiento celular.

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Asimismo, la inactivación del gen puede producirse porque la proteína transcrita

es silenciada por formaciones complejas, bien por interacción con productos víricos,

como el antígeno T SV40, la proteína adenovirus E1b o la proteína E6 del HPV de alto

riesgo, o por interacción con otras proteínas celulares como MDM2 (murine double

minute 2). De cualquier modo la inactivación de p53 conduce a una reducción en los

niveles de p21/WAF 1, a la fosforilación del producto genético del retinoblastoma (rb)

y a la progresión de G1 a la fase S del ciclo celular.

MIEMBROS DE LA SUBFAMILIA BH3

Esta subfamilia está compuesta solo por miembros proapoptóticos que, excepto

por el dominio BH3, no muestran homología con Bcl-2. Para ejercer su actividad, estas

proteínas pueden formar heterodímeros con miembros antiapoptóticos de la familia.

Para ello, el dominio BH3 de los miembros de este grupo puede introducirse en el

hueco hidrofóbico formado por la asociación de las regiones BH1, BH2 y BH3 de los

miembros antiapoptóticos. Un ejemplo de la acción de esta familia de proteína es la

ejercen dos de sus miembros Bid y Bik sobre la mitocondria, donde inducen la

liberación de citocromo c y posterior apoptosis.

PROTEINAS DE LA FAMILIA DE LAS CASPASAS

Dentro de la maquinaria que lleva a cabo el programa de apoptosis, los

miembros ejecutores son una serie de proteasas englobadas bajo el nombre de

caspasas. Este sistema ejecutor se ha mantenido a lo largo de la evolución y, tras su

descripción en c. elegans, se encontró el equivalente en mamíferos gracias a la

homología que presentaban ambas moléculas. Esta primera proteasa encontrada en

mamífero se denominó ICE (interleukin-1b-converting enzime) o caspasa-1 (cisteína-

aspartasa-1) y es precisamente uno de los pocos miembros de la familia al que no se le

ha podido hallar relación directa con el proceso de apoptosis, sino más bien con el de

la inflamación.

La familia de las caspasas en humanos está formada hasta el momento por 11

miembros descritos, y todos ellos tienen en común que se encuentran en forma de

zimógeno o proenzima con una estructura bien definida:

a) El dominio N-terminal es muy variable tanto en su secuencia como en su

longitud y tiene funciones de regulación y activación

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b) La región catalítica está formada por dos dominios, uno grande ("20 KDa) y otro

pequeño ("10 KDa), que darán lugar a las dos subunidades del enzima una vez

activada.

Las caspasas se dividen en dos grupos según la longitud de su región reguladora

N-terminal o prodominio.

Las caspasas con prodominio largo como son la -1,-2, -4, -5, -8, y -10 parecen

estar involucradas en funciones de regulación de la activación de la cascada.

Ejemplos bien conocidos de este grupo son las procaspasas -8 y -10 que

contienen en sus largos prodominios repeticiones de una secuencia de

interacción proteína-proteína llamada dominio efector de muerte o DED

(death effector domain) y las procaspasas -1, -2, -4, -5 y -9, que contienen

dominios de reclutamiento de caspasas o CARDs (caspase recruitment

domains). La presencia en su estructura de estas secuencias unido a su

localización cercana a la membrana plasmática hacen posible su reclutamiento

hacia el complejo formado en torno a receptores de superficie señalizadores de

apoptosis como CD95 y TNF, activándose allí y dando lugar al comienzo de la

cascada de proteólisis. Por esta situación dentro del proceso se las conoce

como caspasas iniciadoras.

El otro grupo está compuesto por las caspasas con prodominio corto como son

las caspasas -3, -6 y -7. Estas parecen estar situadas "downstream" en la

cadena y se ha demostrado in vitro que son activadas por alguna de las

caspasas iniciadoras. Los estudios realizados sugieren que estas caspasas

llamadas efectoras son las que actúan al final de la cascada sobre los

componentes celulares, proteolizándolos.

Debido a la gran importancia que tienen las caspasas en la apoptosis, es razonable

comprender como las caspasas son activadas. Las caspasas son sintetizadas como

zimógenos enzimáticamente inertes que deben ser cortados proteolíticamente para

ser activos. En todos los casos estudiados, la enzima madura es un heterotetrámero

que contiene dos p20/p10 heterodímeros y dos centros activos. Existen tres

mecanismos generales de activación de caspasas:

A) Activación por otra caspasa: Como su nombre indica, las caspasas son proteasas

que cortan después de un residuo de ácido aspártico. Un punto de corte de Asp separa

el prodominio de p20 y uno o dos separan p20 de p10. Esto sugiere la posibilidad de

activación autocatalítica. Efectivamente, un modo simple de activar una procaspasa es

exponerla a otra previamente activada. Esta estrategia de activación denominada

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cascada de caspasas es muy utilizada por las células para la activación de las tres

caspasas que tienen un prodominio corto: caspasa-3, -6 y -7. Estas tres caspasas se

denominan caspasas efectoras y son más abundantes y activas que sus primas con un

prodominio más largo.

La cascada de caspasas es un método útil para amplificar e integrar las señales

proapoptóticass, pero no pueden explicar cómo se activó la primera caspasa. Existen al

menos dos aproximaciones que explican dicha activación.

B) Activación inducida por proximidad: La caspasa-8 es la caspasa iniciadora clave en

la vía de los receptores de muerte. Después de la unión del ligando, los receptores de

muerte como CD95 (Apo-1/Fas) se agregan y forman un complejo de señalización de

membrana. Estos complejos reclutan, a través de sus proteínas adaptadoras, varias

moléculas de procaspasa-8 con lo que se aumenta la concentración local de zimógeno.

En estas condiciones, la baja e intrínseca actividad proteasa de la procaspasa -8 es

suficiente para permitir que varias moléculas de proenzima se corten mutuamente y se

activen unas a otras.

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C) Asociación con una subunidad reguladora: El mecanismo de activación más

complejo es el utilizado por la caspasa-9. Al contrario que en otras caspasas, el

procesamiento proteolítico de la procaspasa-9 tiene un efecto mínimo en su

activación. El requerimiento clave para la activación de la caspasa-9 es su asociación

con un cofactor de proteínas, Apaf-1. También es necesario el citocromo c liberado por

la mitocondria. El citocromo c y Apaf-1 se asocian en un proceso ATP dependiente. La

oligomerización de Apaf-1 recluta procaspasas-9 formando el apoptosoma . La

activación de la caspasa-9 es debida a un cambio conformacional, no a proteolisis.

En resumen, las caspasas efectoras se activan proteolíticamente por otras

caspasas mientras que las caspasas iniciadoras son activadas por interacciones

reguladas proteína-proteína.

Cada caspasa con prodominio largo contiene en su prodominio un módulo de

interacción proteína-proteína que permite la unión y asociación con sus reguladores.

Las caspasas -8 y -10 contienen un dominio efector de muerte (death-effector domain,

DED ) mientras que las caspasas -2 y -9 contienen un dominio de reclutamiento y

activación de caspasas (caspase activation and recruitment domain, CARD ). Estos dos

dominios comparten tienen secuencias distintas, pero se pliegan en una disposición

espacial similar que consiste en seis hélices a antiparalelas (Hofmann K, 1999). El

mismo plegamiento lo encontramos en el dominio de muerte (death domain, DD ),

una tercera proteína de interacción presente en varios reguladores iniciales de la

apoptosis como CD95 y la molécula adaptadora FADD. Parece que DD, DED y CARD

derivan de un dominio ancestral común.

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SUSTRATOS DE CASPASAS

La activación de las caspasas no resulta en la degradación indiscriminada de

proteínas celulares. Por el contrario, las caspasas cortan selectivamente un conjunto

restricto de proteínas, normalmente en una o varias posiciones de la secuencia

primaria (siempre después de un residuo de Asp). En la mayoría de los casos, el corte

mediado por las caspasas resulta en la inactivación de la proteína, pero las caspasas

pueden también activar proteínas, bien directamente mediante el corte de un dominio

de regulación negativa o bien indirectamente mediante degradación de una subunidad

inhibidora.

La caspasa más prevalente en la célula es la caspasa-3 que es la última

responsable de la mayoría de los efectos apoptóticos junto con la caspasa-6 y -7. Por

ejemplo, la fragmentación del DNA de peso molecular alto y bajo es debida a la acción

de la caspasa-3 sobre un complejo DNasa activado por caspasa (CAD), una nucleasa, y

iCAD, su inhibidor (Enari M, 1998; Liu X, 1997). En células no apoptóticas, CAD aparece

formando un complejo inactivo con iCAD. Durante la apoptosis, la caspasa-3 degrada el

inhibidor, permitiendo a la nucleasa degradar la cromatina. La formación de pequeñas

vesículas en la membrana plasmática y su plegamiento es debido al corte y activación

de la gelsolina (Kothakota, 1997), de la kinasa-2 activada por p21 (Lee N, 1997) y sobre

todo a través de la degradación de la fodrina (Martin SJ, 1995) que disocia la

membrana plasmática del citoesqueleto. La externalización de la fosfatidilserina

(phosphatidylserine, PS) en los estadios iniciales de la apoptosis es dependiente de

caspasas aunque el mecanismo preciso no ha sido todavía elucidado (Martin SJ, 1996).

Además de los sustratos descritos existen cerca de otros 100 y posiblemente

haya más (Earnshaw WC, 1999; Nicholson DW, 1999). ¿Por qué hay tantos sustratos?.

Quizá la apoptosis es mucho más compleja de los que nosotros actualmente creemos.

También es posible que alguno de estos sustratos descritos no sea relevante, sino

simplemente un espectador inocente cogido en el acto.

INHIBIDORES DE CASPASAS

Las células también contienen inhibidores naturales de las caspasas. Estas

proteínas inhibidoras de la apoptosis (inhibitors of apoptosis proteins, IAPs ) fueron

primero identificadas en baculovirus y después se encontraron en células humanas.

Existen al menos cinco diferentes en mamíferos: XIAP (X-linked inhibitor of apoptosis),

c-IAP1, c-IAP2, IAP neuronal y survivina. Todos ellos poseen una actividad

antiapoptótica in vitro (Roy N, 1997; Deveraux QL, 1997, 1998; Ambrosini G, 1997). El

espectro de estímulos apoptóticos que son bloqueados por las IAPs de mamíferos es

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amplio e incluye ligandos y transductores de la familia de receptores del factor de

necrosis tumoral (tumor necrosis factor, TNF), miembros proapoptóticos de la familia

de Bcl-2, el Citocromo c y agentes quimioterapeuticos (Deveraux QL, 1999). XIAP tiene

una amplia y enorme capacidad antiapoptótica. XIAP, c-IAP1 y c-IAP2 son inhibidores

directos de caspasas. Todos ellos se unen e inhiben a las caspasas -3 y -7 activas y

también a la procaspasa-9, pero no a las caspasas-1, -6, -8 ni -10.

La unión y la inhibición de las caspasas por las IAPs es mediada por los dominios

repetidos IAP de baculovirus (baculovirus IAP repeat, BIR) presentes dentro de las IAPs.

BIR es un motivo conservado de unos 70 aminoácidos que está repetido en tándem y

que está presente en las IAPs de todos los mamíferos. Otra región dentro de las IAPs es

el dominio RING, que actúa como una ligasa de ubiquitina promoviendo la degradación

de la propia IAP (Yang Y, 2000) y, presumiblemente, cualquier caspasa unida ella. Cerca

del dominio RING, tanto en c-IAP1 como en c-IAP2, existe un dominio CARD que

sugiere que estas IAPs podrían regular directa o indirectamente el procesamiento de

las caspasas a través de interacciones por el dominio CARD. De esta manera, las IAPs

frenan la apoptosis uniéndose, inhibiendo y quizá degradando caspasas.

VIAS DE INDUCCIÓN DE APOPTOSIS

VÍA INTRÍNSECA O MITOCONDRIAL

La mitocondria no es sólo la productora de energía de la célula, es también un

arsenal. La mitocondria secuestra un potente cóctel de proteínas proapoptóticas. La

más prominente entre ellas es el citocromo c, el humilde transportador de electrones.

Varios trabajos han revelado que el citocromo c es todo lo contrario a inocuo y que

además de su implicación en la fosforilación oxidativa mitocondrial, es uno de los

componentes requeridos para la activación de la caspasa-9 en el citosol.

No se conoce exactamente cómo el citocromo c atraviesa la membrana externa,

pero está claro que la familia de Bcl-2 está íntimamente implicada en la regulación de

este proceso. El nombre de la familia se debe al primer miembro, que fue aislado como

un gen implicado en el linfoma de células B (de ahí el nombre bcl, B-cell lymphoma)

que es homólogo del represor de la apoptosis ced-9 de C. elegans . Esta familia consta

de 19 miembros que se ha clasificado en tres grupos basándose en similitudes

estructurales y funcionales. Cada miembro posee al menos uno de los cuatro motivos

conservados denominados dominios de homología con Bcl-2 (Bcl-2 homology

domains, BH ): BH1-BH4. Los miembros del grupo I, como Bcl-2 y Bcl-X L , poseen

actividad antiapoptótica y se caracterizan por tener los cuatro dominios BH (BH1-BH4).

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Además poseen una cola hidrofóbica en el C-terminal que localiza la proteína en

la membrana externa de la mitocondria. El grupo II consta de miembros de la familia

de Bcl-2 con actividad proapoptótica, como por ejemplo Bax y Bak. Tienen estructura

similar a las del grupo I pero carecen del dominio BH4. Estudios de estructura y función

sugieren que la actividad anti y proapoptótica está determinada por una región

relativamente larga que incluye dos hélices a que participan en la inserción a la

membrana. Los miembros del grupo III también tienen actividad proapoptótica. Todos

ellos se caracterizan por la presencia de un único dominio BH3, además pueden o no

tener región transmembrana. Los miembros más caracterís ticos son Bid, Bad, Bim, Bik.

La función clave de los miembros de la familia de Bcl-2 es regular la liberación de

factores proapoptóticos, en particular el citocromo c, desde el compartimento

intermembranal de la mitocondria hasta el citosol. ¿Cómo controlan los miembros de

la familia de Bcl-2 la muerte celular? Parece ser que se pasan la mayoría del tiempo

simplemente intentando bloquear el siguiente movimiento del otro. Algunos

miembros de la familia pueden homodimerizar pero, lo que es más importante,

pueden formarse heterodímeros de miembros pro y antiapoptóticos .

En una primera aproximación, la heterodimerización puede simplemente resultar

en una neutralización mutua de las proteínas pro y antiapoptóticas unidas. Por tanto,

el problema consiste sólo en comparar los niveles totales de miembros pro y

antiapoptóticos de la familia: células con más proteínas pro muerte son más sensibles

a la apoptosis; células con exceso de miembros de la familia protectora serán

normalmente resistentes.

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Recientemente se ha identificado un inhibidor de las IAPs de mamíferos,

denominado Smac (second mitochondria-derived activator of caspases) o DIABLO (

direct IAP-binding protein with low pI ). Smac/DIABLO se une a los miembros de la

familia de las IAPs y neutraliza su actividad antiapoptótica. Curiosamente,

Smac/DIABLO es una proteína mitocondrial normal pero su liberación al citosol celular

induce apoptosis, presumiblemente siguiendo la misma ruta de salida que el citocromo

c. Por tanto, si una célula está comprometida a sufrir apoptosis y libera el contenido

mitocondrial al citosol, entonces Smac/DIABLO secuestra las proteínas IAPs y se

asegura que estas proteínas no intenten parar el programa en curso.

La vía mitocondrial se ejecuta en respuesta a intromisiones externas y a daño en

el DNA. Las distintas vías de respuesta convergen en la mitocondria, a menudo a través

de la activación de miembros proapoptóticos de la familia de Bcl-2. Excepto Bcl-2, que

está la mayoría del tiempo anclado a membranas intracelulares, algunos miembros de

los grupos II y III, incluyendo Bax, Bad, Bim y Bid, pueden localizarse tanto en el citosol

como en orgánulos. La forma citosólica de estas proteínas es un reservorio inactivo

pero preparado para la batalla. Las señales proapoptóticas redirigen estas proteínas a

la mitocondria donde tendrá lugar la lucha por el destino de la célula. La activación de

miembros proapoptóticos puede producirse a través de proteolisis, defosforilación y

probablemente otros mecanismos.

Los miembros pro y antiapoptóticos de la familia de Bcl-2 se encuentran en la

superficie de la mitocondria donde regulan la salida del citocromo c por un mecanismo

todavía debatido. Si los miembros proapoptóticos ganan, una gran cantidad de

moléculas son liberadas desde la mitocondria. La principal de estas moléculas liberadas

es el citocromo c, que se asocia con Apaf-1 y después con la procaspasa-9 (y

posiblemente otras proteínas) para formar el apoptosoma. Las proteínas de choque

térmico (heat-shock proteins, HSP) actúan en múltiples pasos regulando la apoptosis.

El apoptosoma hidroliza la procaspasa-3 a caspasa-3 que se encarga de ejecutar la

apoptosis generando distintos subprogramas cuya suma resultará en el

desmantelamiento ordenado y en la muerte de la célula.

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VIA EXTRINSECA O DE LOS RECEPTORES DE MUERTE

Los receptores de muerte de la familia del receptor de TNF (TNFR) incluyen

TNFR1, Fas (CD95), DR3/WSL y los receptores del ligando inductor de apoptosis

relacionado con el TNF (TNF-related apoptosis-inducing ligand, TRAIL)/Apo-2L (TRAIL-

R1/DR4, TRAIL-R2/DR5). Los miembros de esta familia están caracterizados por

presentar de dos a cinco copias de un dominio extracelular rico en cisteína. Los

receptores de muerte también poseen un dominio intracelular en el C-terminal del

receptor denominado dominio de muerte (death domain, DD ). Cuando un ligando se

une a estos receptores se puede producir la muerte por apoptosis de la célula que los

posee.

El miembro de los receptores de muerte más estudiado y relevante en

Inmunología es el CD95 o Fas. La oligomerización, más probablemente la trimerización,

del CD95 tras la unión de su ligando, FasL, es requerida para la transducción de la señal

apoptótica. Un complejo de proteínas se asocia con el CD95 activado. Este complejo

de señalización inductor de muerte (death-inducing signalling complex, DISC ) se

forma en el segundo de los receptores trimerizados. Primero, el adaptador FADD (Fas-

associated death domain) o Mort1 se une a través de su dominio de muerte al dominio

de muerte del CD95. FADD también presenta el denominado dominio efector de

muerte (death-effector domain, DED ), y, de nuevo por interacciones homólogas,

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recluta en el DISC la procaspasa-8 (o FLICE) que contiene un DED. Después, la

procaspasa-8 es activada proteolíticamente y la caspasa-8 activa es liberada del DISC al

citoplasma formando un heterotetrámero de dos subunidades pequeñas y dos grandes

(Muzio M, 1996). La caspasa-8 activa rompe varias proteínas de la célula incluyendo la

procaspasa-3, que resulta en su activación y en la finalización de la muerte celular.

La inhibición de esta ruta es realizada por proteínas que contienen dos DED y que

se unen al complejo CD95-FADD. Esto inhibe el reclutamiento y la activación de la

caspasa-8, antiguamente conocida como FLICE, de ahí el nombre de proteínas

inhibidoras de FLICE (FLICE-inhibitory proteins, FLIP ) (Thome M, 1997; Hu S, 1997;

Bertin J, 1997; Yeh WC,2000).

La vía de los receptores de muerte y la vía mitocondrial convergen a nivel de la

activación de la caspasa-3. El solapamiento y la integración de las dos vías se debe a

Bid, un miembro proapoptótico de la familia de Bcl-2. La caspasa-8 media la ruptura de

Bid incrementando enormemente su actividad proapoptótica que resulta en su

translocación a la mitocondria donde promueve la liberación del citocromo c. Hay que

tener en cuenta que en la mayoría de las condiciones, este solapamiento es mínimo, y

las dos vías operan de manera independiente (Gross A, 1999; Yin XM, 1999).

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Mediante esta ruta de inducción de apoptosis se activa la caspasa-8 que activa otras

caspasas que darán, en última instancia, el fenotipo apoptótico que nosotros

detectamos mediante diferentes metodologías.

INTERRELACION ENTRE LAS VIAS

La vía de los receptores de muerte y la vía mitocondrial convergen a nivel de la

activación de la caspasa-3. El solapamiento y la integración de las dos vías se debe a

Bid, un miembro proapoptótico de la familia de Bcl-2. La caspasa-8 media la ruptura de

Bid incrementando enormemente su actividad proapoptótica que resulta en su

translocación a la mitocondria donde promueve la liberación del citocromo c. Hay que

tener en cuenta que en la mayoría de las condiciones, este solapamiento es mínimo, y

las dos vías operan de manera independiente (Gross A, 1999; Yin XM, 1999).

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FUNCIONES DE LA APOPTOSIS

ELIMINACIÓN DE TEJIDOS DAÑADOS O INFECTADOS

La apoptosis puede ocurrir, por ejemplo, cuando una célula se halla dañada y no

tiene posibilidades de ser reparada, o cuando ha sido infectada por un virus. La

"decisión" de iniciar la apoptosis puede provenir de la célula misma, del tejido

circundante o de una reacción proveniente del sistema inmune. Cuando la capacidad

de una célula para realizar la apoptosis se encuentra dañada (por ejemplo, debido a

una mutación), o si el inicio de la apoptosis ha sido bloqueado (por un virus), la célula

dañada puede continuar dividiéndose sin mayor restricción, resultando en un tumor

que puede ser de carácter canceroso. Por ejemplo, como parte del "secuestro" del

sistema genético de la célula llevado a cabo por los virus del papiloma humano (VPH),

un gen denominado E6 se expresa originando un producto que degrada la proteína

p53, vital para la ruta apoptótica.

También condiciones de stress como la falta de alimentos, así como el daño del

ADN provocado por tóxicos o radiación, pueden inducir a la célula a comenzar un

proceso apoptótico. Una ejemplo sería la apoptosis mediada por la enzima nuclear,

poli-ADP-ribosa polimerasa-1 (PARP-1), crucial en el mantenimiento de la integridad

genómica. Un activación masiva de dicha enzima puede vaciar la célula de nucleótidos

ricos en energía, provocando una cadena de transducción de señales del núcleo a la

mitocondria que iniciaría la apoptosis.

célula maligna (cáncer de mama)

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DESARROLLO EMBRIONARIO

Durante el desarrollo embrionario la apoptosis regula el crecimiento celular y

tisular, desde la desaparición de las membranas interdigitales para el desarrollo

normal de los dedos hasta la apoptosis en el ojo para la correcta formación del

cristalino y los párpados pasando por multitud de procesos en estudio.

En los animales que pasan por distintos estadíos la apoptosis que regula el

desarrollo controla además el paso de un estadio de crecimiento al siguiente (larva,

ninfa, juvenil, adulto, etc.). En el caso de las ranas la apoptosis controla, durante la

metamorfosis, la desaparición de la aleta caudal de los renacuajos.

ESCULTURA DE DISTINTAS ESTRUCTURAS

El ejemplo más claro de esto es la eliminación de las membranas interdigitales

para la formación de los dedos en vertebrados superiores. Otro proceso de

formación de estructuras en que está involucrada la apoptosis es en el vaciado de

cuerpos sólidos para crear una luz. Por ejemplo, la formación de la cavidad

preamniotica en el embrión de ratón por la muerte de células ectodermales de su

interior (526, Coucovanis 1995).

ELIMINACIÓN DE ESTRUCTURAS

En el proceso de desarrollo a veces se forman estructuras que después es

necesario suprimir. La razón es que pueden ser restos vestigiales de alguna

estructura necesaria para una especie ancestral pero a la que la evolución ha hecho

perder la utilidad. También pueden ser formaciones requeridas para determinados

estadios del desarrollo y que después ya no son de utilidad. Por último, también

pueden ser estructuras necesarias para un sexo pero no para el otro. Ejemplos de

este objetivo de la apoptosis durante el desarrollo son los tubos pronefríticos,

necesarios en peces y larvas anfibias pero que han dejado de serlo en mamíferos y

por eso son eliminados. También los ductos de Müllerian, que forman el útero y los

oviductos en hembras de mamíferos pero que en machos son eliminados por

apoptosis.

HOMEOSTASIS

En un organismo adulto, la cantidad de células que componen un órgano o tejido

debe permanecer constante, dentro de ciertos límites. Las células de la sangre y de

piel, por ejemplo, son constantemente renovadas por sus respectivas células

progenitoras. Por lo tanto, esta proliferación de nuevas células tiene que ser

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compensada por la muerte de otras células. A este proceso se le conoce como

homeostasis, aunque algunos autores e investigadores han sugerido homeocinesis

como un término más preciso y elocuente.

La homeostasis se logra cuando la relación entre la mitosis y la muerte celular se

encuentra en equilibrio. Si este equilibrio se rompe, pueden ocurrir dos cosas:

Las células se dividen más rápido de lo que mueren, desarrollando un tumor.

Las células se dividen más lentamente de lo que mueren, produciéndose un

grave trastorno de pérdida celular.

Ambos estados pueden ser fatales o potencialmente dañinos.

REGULACIÓN DEL SISTEMA INMUNITARIO

SELECCIÓN NEGATIVA EN TIMO

Este proceso que se lleva a cabo en el timo como etapa final de la maduración

de los linfocitos T, tiene como objeto la eliminación, por apoptosis, de los clones de

timocitos que hayan generado un receptor del linfocito T hacia el antígeno (TCR, de

T cell receptor) con especificidad hacia un Ag propio. De esta forma se hace posible

la autotolerancia en los organismos, es decir, la incapacidad de responder a un Ag

propio y por lo tanto, de desencadenar procesos autoinmunes. En el timo tiene

lugar la adquisición de tolerancia central hacia todos los Ag que puedan ser

presentados por sus células, fundamentalmente proteínas ubicuas de membrana y

suero.

Se diferencia de la tolerancia periférica adquirida en otras etapas de la

ontogenia hacia Ag propio que solo pueden ser presentados en los tejidos

periféricos. La selección de los clones T autorreactivos se lleva a cabo en la etapa de

doble positividad de los timocitos (CD4+, CD8+). Estos se unen con alta afinidad al

MHC que contiene péptidos propios y que es presentado por células presentadoras

de Ag (APC) del timo. Esta unión de alta afinidad dispara en el timocito el programa

de muerte por apoptosis. Se conoce poco acerca de los mecanismos moleculares

que dirigen este proceso, pero parece ser muy importante en él, la presencia de las

dos moléculas CD4 y CD8. Este proceso de selección negativa, junto al de

eliminación de timocitos con reagrupamientos incorrectos en su TCR, parece ser

responsable de la muerte del 95% de linfocitos T durante los procesos de

maduración en timo

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PATOLOGIAS VINCULADAS CON LA APOPTOSIS

La apoptosis es una función biológica de gran relevancia en la patogenia de varias

enfermedades estudiadas hasta el momento. Podemos destacar el cáncer,

malformaciones, trastornos metabólicos, neuropatías, lesiones miocárdicas y

trastornos del sistema inmunitario.

ENFERMEDADES ASOCIADAS A INHIBICIÓN DE APOPTOSIS

1. Cáncer: linfoma no Hodgkin folicular (Bcl-2 +), carcinoma (p53 +), tumores

hormono-dependientes

2. Enfermedades autoinmunitarias: lupus eritematoso sistémico,

glomerulonefritis autoinmunitaria

3. Infecciones virales: Herpes virus, Poxvirus, Adenovirus

ENFERMEDADES ASOCIADAS A AUMENTO DE APOPTOSIS

1. Sida

2. Enfermedades neurodegenerativas: enfermedad de Alzheimer, enfermedad de

Parkinson, esclerosis lateral amiotrófica, retinitis pigmentosa, degeneración

cerebelosa

3. Síndromes mielodisplásicos (MDS): anemia aplástica

4. Daño isquémico: infarto de miocardio, apoplejía, daño por reperfusión, daño

hepático por alcoholismo.

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LA APOPTOSIS EN EL SISTEMA CARDIOVASCULAR

En el sistema cardiovascular la apoptosis puede ser parte del proceso de

renovación, pero por defecto de mitosis o exceso de muerte celular, puede cons tituir

un proceso patológico.

En el ventrículo derecho ocurre una remodelación fisiológica después del

nacimiento cuando ya éste ventrículo no tiene que cumplir con la función

hemodinámica intrauterina. Una cantidad importante de células de ese ventrículo

mueren de manera programada después del nacimiento. Esto suele durar apenas unos

días, pero en ciertas condiciones se prolonga indefinidamente y ocurre la denominada

miocardiopatía de Uhl, caracterizada por una dilatación extrema del ventrículo

derecho con la consecutiva insuficiencia ventricular derecha.

Otra enfermedad relacionada con la enfermedad de Uhl, en la que también se ha

demostrado apoptosis, es la displasia arritmogénica del ventrículo derecho, en la que

la infiltración fibrótica que sustituye al miocito apoptótico, crea el sustrato para

arritmias potencialmente letales.

Otra entidad en donde se ha demostrado muerte celular programada es la

miocardiopatía dilatada, principalmente en su forma idiopática. En ella se ha

demostrado que aproximadamente el 0,2 por ciento de las células tenían

características apoptóticas. Esta cantidad aparenta ser poco influyente en la función

del corazón, pero si se toma en cuenta que la muerte celular ocurre en cuestión de

horas y si se trata de un proceso ininterrumpido sin replicación celular compensadora,

alrededor del 50 por ciento de la masa ventricular se perdería en un año.

La apoptosis parece también jugar un papel importante en la formación

anatómica de los nodos sinusal y auriculoventricular. En efecto, una buena cantidad de

pequeñas células P redondas u ovoides presentes en el nodo sinusal en el nacimiento

va desapareciendo poco a poco por un proceso exclusivamente apoptótico, sin que

medie el menor signo inflamatorio. Algo semejante ocurre en el nodo

auriculoventricular. Las conexiones auriculoventriculares son eliminadas en la

remodelación posnatal. La persistencia de algunas de estas conexiones podría ser el

origen de algunos fascículos accesorios como aquellos que se encuentran en el

síndrome de Wolf Parkinson White y en el bloqueo auriculoventricular acompañado de

arritmias ventriculares. James ha demostrado muerte celular exagerada sin

inflamación previa en el nodo sinusal de pacientes con síndrome de QT largo que

tienen síncope y arritmias potencialmente letales.

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En la remodelación que ocurre en el tejido aparentemente sano después de un

infarto del miocardio hay una reexpresión del programa fetal genético, con disfunción

progresiva. Esta situación puede ser causada por la muerte programada de tejido

viable y de hecho, se ha demostrado que en el tejido sano contiguo a la necrosis

posinfarto hay células apoptóticas.

Se han dado evidencias en tejido aislado, así como en modelos experimentales,

que puede ocurrir apoptosis en respuesta a la isquemia-reperfusión, al infarto del

miocardio, a la estimulación eléctrica rápida del miocardio, al estiramiento mecánico y

a la sobrecarga debida a la constricción aórtica. También se ha visto que

constantemente ocurre apoptosis miocárdica en órganos diana de ratas hipertensas.

Un buen número de factores presentes en el corazón insuficiente, por ejemplo: las

citoquinas inflamatorias, las especies de oxígeno reactivo, el óxido nítrico, la hipoxia, la

reperfusión, los factores de crecimiento, y el estiramiento del tejido, estimulan la

apoptosis en una variedad de células, entre ellas, las del miocardio.

Una situación interesante y novedosa en donde se ha invocado la apoptosis es el

llamado precondicionamiento isquémico que es aquella condición en la que un

síndrome isquémico agudo protege de episodios de isquemia subsiguientes. Se ha

demostrado en el corazón de rata in vivo sometido a episodios de isquemia transitoria,

que las células apoptóticas disminuyen en relación con aquellos animales donde no se

ha provocado precondicionamiento.

El endotelio vascular, donde se originan una serie de hormonas paracrinas

moduladoras de la vasoconstricción o vasodilatación producida por el músculo liso,

está renovándose constantemente por apoptosis y replicación. En ocasiones, como en

la hipertensión arterial, hay exceso de apoptosis endotelial que a su vez favorece la

migración y el crecimiento del músculo liso arterial, lo que a su vez remodela el vaso y

favorece la formación de ateromas. En la hipertensión pulmonar se ha visto que una

enzima denominada Tenascina-C causa crecimiento de la capa muscular media y

remodelación del vaso. Este proceso se acompaña de muerte celular programada.

Todos estos hallazgos motivan cuestionamientos tales como: ¿Los

procedimientos de detección son suficientemente sensibles y específicos? ¿la

apoptosis es un fenómeno primario o secundario? ¿Cuál es el estímulo que inicia el

proceso apoptótico en el corazón? ¿Acaso desde el nacimiento las células llevan un

código genético que al ser estimulado por un factor interno o externo inicia un proces o

de auto aniquilamiento o suicidio?

En este final del siglo y en el umbral de próximo estas preguntas probablemente sean

contestadas y surjan nuevos cuestionamientos. También es probable que la apoptosis

pueda impedirse o al menos controlarse mediante terapia génica.

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