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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS CARRERA DE QUÍMICA Y FARMACIA Modalidad: Investigación “Evaluación de los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse Chongón provincia del Guayas durante los dos últimos trimestres del 2018” TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO PREVIO PARA OPTAR POR EL GRADO DE QUÍMICO Y FARMACÉUTICO AUTORES SERGIO DAVID MENDOZA CAICEDO JEHINSON JOAO RODRIGUEZ LINDAO TUTOR QF. Michael G. Rendón Morán Mgs. GUAYAQUIL – ECUADOR 2019
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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS QUÍMICAS
CARRERA DE QUÍMICA Y FARMACIA
Modalidad: Investigación
“Evaluación de los parámetros fisicoquímicos y
microbiológicos del embalse Chongón provincia del
Guayas durante los dos últimos trimestres del 2018”
TRABAJO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO PREVIO PARA
OPTAR POR EL GRADO DE QUÍMICO Y FARMACÉUTICO
AUTORES
SERGIO DAVID MENDOZA CAICEDO
JEHINSON JOAO RODRIGUEZ LINDAO
TUTOR
QF. Michael G. Rendón Morán Mgs.
GUAYAQUIL – ECUADOR
2019
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VI
VII
VIII
IX
X
XI
XII
DEDICATORIA
El presente trabajo investigativo lo dedicamos principalmente a
Dios, por ser el inspirador y darnos fuerza para continuar en este
proceso de obtener uno de los anhelos más deseados.
A nuestros padres, por su amor, trabajo y sacrificio en todos estos
anos, gracias a ustedes hemos logrado llegar hasta aquí y convertirnos
en lo que somos. Ha sido el orgullo y el privilegio de ser sus hijas, son
los mejores padres.
A nuestros hermanas (os) por estar siempre presentes,
acompanandonos y por el apoyo moral, que nos brindaron a lo largo de
esta etapa de nuestras vidas.
A todas las personas que nos han apoyado y han hecho que el trabajo
se realice con exito en especial a aquellos que nos abrieron las puertas
y compartieron sus conocimientos.
XIII
AGRADECIMIENTO
Quiero expresar mi gratitud a Dios, quien con su bendición llena siempre
mi vida y a toda mi familia por estar siempre presentes.
XIV
Índice general
Resumen .......................................................................................................... 23
Abstract ............................................................................................................ 24
Introducción ..................................................................................................... 25
CAPÍTULO I: ..................................................................................................... 27
1.1 Planteamiento del problema ........................................................................ 27
1.2 Formulación del problema............................................................................ 28
1.3 Hipótesis ...................................................................................................... 28
1.4 Justificación e importancia ........................................................................... 28
1.5 Objetivos ...................................................................................................... 29
1.5.1 Objetivo general ......................................................................... 29
1.5.2 Objetivos específicos ................................................................. 29
CAPÍTULO II: .................................................................................................... 30
2.1 Antecedentes ................................................................................ 30
2.2 Embalse ........................................................................................ 30
2.2.1 El embalse Chongón ..................................................................... 31
2.2.2 La eutrofización ............................................................................. 31
2.2.3 Calidad de agua en los embalses .................................................. 33
2.2.4 Características físicas de los embalses ......................................... 34
2.2.5 Características químicas de los embalses ..................................... 34
2.2.6 Características microbiológicas de los embalses ........................... 35
2.3 Parámetros de calidad de agua en un embalse ............................ 35
Temperatura ........................................................................................... 35
Potencial de hidrógeno (pH) ................................................................... 36
Conductividad ........................................................................................ 37
Turbidez ................................................................................................. 37
Sólidos suspendidos .............................................................................. 37
Oxígeno disuelto .................................................................................... 37
Demanda bioquímica de oxígeno (5 días) .............................................. 38
XV
Nitrógeno ................................................................................................ 39
Nitrito ...................................................................................................... 39
Nitratos ................................................................................................... 40
Amonio ................................................................................................... 40
Fosfato ................................................................................................... 40
Silicatos .................................................................................................. 41
Coliformes totales ................................................................................... 41
Coliformes fecales .................................................................................. 42
CAPÍTULO III .................................................................................................... 43
3.1 Metodología de la información ...................................................... 43
Etapa I. Trabajo de campo. .................................................................... 45
Etapa II. Ejecución del muestreo y análisis de laboratorio ...................... 45
Etapa III. Recopilación de información existente .................................... 46
3.2 Tipo de investigación .................................................................... 47
3.3 Diseño experimental de la Investigación ....................................... 47
3.4 Población y muestra ..................................................................... 47
3.5 Materiales y reactivos ................................................................... 48
3.5.1 Materiales de campo ..................................................................... 48
3.5.2 Materiales fungibles para laboratorio ............................................. 48
3.5.3 Reactivos....................................................................................... 48
3.5.4 Equipos ......................................................................................... 49
3.6 Procedimiento ............................................................................... 51
3.6.1 Oxígeno disuelto por método Iodométrico ..................................... 51
3.6.2 Demanda bioquímica de oxígeno DBO (5 días) por Método
Iodométrico ........................................................................................................ 51
3.6.3 Determinación de pH por método potenciometría .......................... 51
3.6.4 Determinación de la turbidez por método de turbidimetría ............. 52
3.6.5 Determinación de sólidos en suspensión ....................................... 52
XVI
3.6.6 Determinación de nitrato por método espectrofotometría uv/vis .... 52
3.6.7 Determinación de nitrito por método espectrofotometría uv/vis ...... 53
3.6.8 Determinación de silicato por método espectrofotometría uv/vis ... 53
3.6.9 Determinación de fosfato por método espectrofotometría uv/vis .... 53
3.6.7 Determinación de coliformes totales y fecales por método de NMP
(número más probable)...................................................................................... 54
Capitulo IV ........................................................................................................ 55
4.1 Interpretación de resultados .......................................................... 55
Temperatura ........................................................................................... 55
Potencial de hidrogeno pH ..................................................................... 55
Turbidez ................................................................................................. 56
Conductividad ........................................................................................ 57
Sólidos en suspensión ............................................................................ 58
Oxígeno disuelto .................................................................................... 58
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO 5 días)...................................... 59
Nitrito y nitrato ........................................................................................ 60
Fosfato ................................................................................................... 61
Silicato ................................................................................................... 62
Amonio ................................................................................................... 63
Coliformes totales ................................................................................... 64
Coliformes fecales .................................................................................. 65
Relación entre nitratos, fosfatos, Coliformes totales y el bombeo ........... 65
Comparación de resultados obtenidos con resultados de años anteriores
.......................................................................................................................... 67
Capítulo V ......................................................................................................... 70
5 Conclusiones y recomendaciones .................................................... 70
5.1 Conclusiones .................................................................................... 70
5.2 Recomendaciones ............................................................................ 72
XVII
Bibliografía ....................................................................................................... 74
Índice de tablas
TABLA 1 CLASIFICACIÓN DE LOS ESTADOS TRÓFICOS ..................................................................... 32
TABLA 2 CALENDARIO DE MUESTREO ............................................................................................. 43
TABLA 3 UBICACIÓN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO ..................................................................... 44
TABLA 4 PARÁMETROS FÍSICOS ....................................................................................................... 46
TABLA 5 PARÁMETROS QUÍMICOS .................................................................................................. 46
TABLA 6 PARÁMETROS MICROBIOLÓGICOS ................................................................................... 46
TABLA 7 RECOPILACIÓN DE INFORMACIÓN DE MUESTREO ........................................................... 47
TABLA 8 REACTIVOS UTILIZADOS .................................................................................................... 48
TABLA 9 EQUIPOS UTILIZADOS ........................................................................................................ 49
TABLA 10 COMPARACIÓN DE LOS DATOS OBTENIDOS CON DE LOS AÑOS ANTERIORES. .............. 67
XVIII
Índice de grafico
GRÁFICO 1 PUNTOS DE MUESTREO ............................................................................................... 44
GRÁFICO 2 VALORES DE TEMPERATURA DE LOS ÚLTIMOS 6 MESES DEL 2018. ............................ 55
GRÁFICO 3 VALORES DE PH DE LOS ÚLTIMOS 6 MESES. ................................................................ 55
GRÁFICO 4 VALORES DE TURBIDEZ ................................................................................................ 56
GRÁFICO 5 VALORES DE CONDUCTIVIDAD ..................................................................................... 57
GRÁFICO 6 VALORES DE SÓLIDOS EN SUSPENSIÓN ...................................................................... 58
GRÁFICO 7 VALORES DE OXÍGENO DISUELTO. ............................................................................... 58
GRÁFICO 8 VALORES DE LA DEMANDA BIOQUÍMICA DE OXÍGENO (DBO 5 DÍAS) ......................... 59
GRÁFICO 9 VALORES DE NITRITO ................................................................................................... 60
GRÁFICO 10 VALORES DE NITRATOS .............................................................................................. 61
GRÁFICO 11 VALORES DE FOSFATO ............................................................................................... 61
GRÁFICO 12 VALORES DE SILICATO ................................................................................................ 62
GRÁFICO 13 VALORES DE AMONIO ................................................................................................ 63
GRÁFICO 14 VALORES DE COLIFORME TOTALES ............................................................................ 64
GRÁFICO 15 VALORES DE COLIFORME FECALES............................................................................. 65
GRÁFICO 16 RELACIÓN ENTRE NITRATOS, FOSFATOS, COLIFORMES FECALES Y EL SISTEMA DE
BOMBEO ................................................................................................................................. 65
XIX
Índice de anexos
Anexos I tablas de datos obtenidos de cada uno de los parámetros físicos
químicos y microbiológicos ................................................................................ 62
Anexo II – Evidencias ...................................................................................... 920
XX
Glosario:
Actividades antropogénicas: Las actividades antropogénicas incluyen
industria, agricultura, minería, transporte, construcción, urbanización y
deforestación.
Antropogénico: El término antropogénico se refiere a los efectos,
procesos o materiales que son el resultado de actividades humanas a
diferencia de los que tienen causas naturales sin influencia humana.
Normalmente se usa para describir contaminaciones ambientales en forma
de desechos químicos o biológicos como consecuencia de las actividades
económicas.
Autodepuración aeróbica: es un proceso que tiene lugar en las aguas
naturales, y consiste en una serie de mecanismos de sedimentación de las
partículas presentes en ellas y de procesos químicos y biológicos que
producen la degradación de la materia orgánica existente para su
conversión en materia inorgánica, que servirá como nutriente a las algas,
haciendo aumentar su actividad fotosintética y enriqueciendo de oxígeno el
agua. Con ellos se elimina la materia extraña del agua y se restablece el
equilibrio natural.
Caudal: Cantidad de agua que lleva una corriente o que fluye de un
manantial o fuente.
Cuerpos de aguas: son las extensiones de agua que se encuentran por
la superficie terrestre o en el subsuelo (acuíferos, ríos subterráneos), tanto
en estado líquido como sólido (hielo), tanto naturales como artificiales
(embalses) y tanto de agua salada (océanos, mares)
como dulce (lagos, ríos, etc.).
XXI
Descarga efluentes: líquido que sale de una planta de tratamiento de
aguas residuales, o de un proceso de tratamiento.
Desnitrificación: es un proceso metabólico que usa el nitrato como
aceptor terminal de electrones en condiciones anaerobias (ausencia
de oxígeno) principalmente, conduciendo finalmente a nitrógeno
molecular (gas, N2).
Deposición ácida: Algunas de las moléculas que contaminan la atmósfera
son ácidos o se convierten en ácidos con el agua de lluvia. El resultado es
que en muchas zonas con grandes industrias se ha comprobado que la
lluvia es más ácida que lo normal y que también se depositan partículas
secas ácidas sobre la superficie, las plantas y los edificios. Esta lluvia
ácida ya no es el don beneficioso que revitalizaría tierras, ríos y lagos; sino
que, al contrario, trae la enfermedad y la decadencia para los seres vivos y
los ecosistemas.
Embalse: es la acumulación de agua producida por una construcción en
el lecho de un río o arroyo que cierra parcial o totalmente su cauce.
Enfermedades gastrointestinales: Se les llama enfermedad
gastrointestinal a todas aquellas enfermedades que dañan el sistema
digestivo. Entre las dolencias más comunes que los médicos deben tratar
se encuentran las enfermedades del estómago, el órgano que recibe,
almacena y digiere parcialmente la comida después que se le conoce
como bolo alimenticio en los primeros estadios de la digestión humana.
Eutrofización: se designa a eutrofización a el enriquecimiento
en nutrientes de un ecosistema acuático. El uso más extendido se refiere
específicamente al aporte más o menos masivo de nutrientes inorgánicos
N y P en un ecosistema acuático con la entrada de agua restringida, por
ejemplo, un lago. Eutrofizado es aquel ecosistema
XXII
o ambiente caracterizado por una abundancia anormalmente alta de
nutrientes (procedentes de actividades humanas), sobre todo N y P, de
forma que se produce una proliferación descontrolada de algas
fitoplanctónicas.
Hipoxia: es un fenómeno que se presenta en ambientes acuáticos cuando
la concentración de oxígeno disuelto en el agua (OD u O2 molecular
disuelto) disminuye hasta el punto que las condiciones son deprimentes
para los organismos acuáticos que habitan el sistema. El caso extremo es
la anoxia que significa ausencia total de oxígeno.
Muestreo: recolección de muestras de un volumen predeterminado con
aplicación de técnicas y preservación que corresponden al parámetro o
característica a determinarse en el laboratorio.
Nitrificación: es la oxidación biológica de amonio con oxígeno para
dar nitrito, seguida por la oxidación de esos nitritos a nitratos. La
nitrificación es una etapa importante en el ciclo del nitrógeno en los suelos.
La nitrificación también juega un importante rol en la retirada
del nitrógeno orgánico de aguas servidas, convencionalmente mediante
esa nitrificación bacteriana seguida de desnitrificación.
Plantas potabilizadoras: son aquellas que se encarga de recoger el agua
superficial de un río, lago o cualquier otro embalse para procesarla y
garantizar la calidad del agua apta para el consumo humano (potable) y tan
necesaria para la supervivencia del grueso de los seres vivos.
Putrefacción: Descomposición de una materia o una sustancia por la
acción de diversos factores y de determinados microorganismos.
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FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Resumen
La presente investigación tiene como finalidad realizar una
evaluación de los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse
Chongón provincia del Guayas durante los dos últimos trimestres del 2018,
con la finalidad de determinar si existe grado de eutrofización en el
embalse, para eso surge la necesidad de emplear un esquema de muestreo
para obtener muestras representativas, y determinar mediante los limites
permisible de cada uno de los parámetros, si el embalse se encuentra en
estado eutrofización y además realizar una comparación con datos
recopilados ya obtenidos en años anteriores por parte de SENAGUA y de
la Universidad Católica de Guayaquil, finalmente demostrando mediante el
análisis de sus parámetros fisicoquímicos y microbiológico que no existe un
deterioro en la calidad de agua ni proceso de eutrofización durante el 2018
y la comparaciones de los datos obtenidos con los de los años anteriores
no existe variación.
Palabras Claves: eutrofización, parámetros fisicoquímicos, microbiológicos,
limites permisibles, calidad de agua.
“Evaluación de los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse Chongón provincia del Guayas durante los dos
últimos trimestres del 2018”
Autores: Sergio Mendoza Caicedo
Jehinson Rodríguez Lindao Tutor:
QF. Michael G. Rendón Morán Mgs.
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FACULTAD: CIENCIAS QUÍMICAS CARRERA: QUÍMICA Y FARMACIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Abstract
The present investigation has as result the evaluation of the
physicochemical and microbiological parameters of the reservoir, the
province of Guayas, the last quarters of 2018, the degree of eutrophication
in the reservoir, so that the need arises a sampling scheme to obtain
representative samples, and determine through the permissible limits of
each of the parameters, if it is included in the eutrophication state and in
addition a comparison is made with the data collected and reported in
previous years by SENAGUA and the Catholic University of Guayaquil,
finally demonstrating through the analysis of the physicochemical and
microbiological parameters that there is no impediment in the water quality
or in the eutrophication process during 2018 and the comparisons of the
data with the previous years, there is no variation.
Key words: eutrophication, physicochemical parameters, microbiological,
permissible limits, water quality.
“Evaluación de los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse Chongón provincia del Guayas durante los dos
últimos trimestres del 2018”
Autores:
Sergio Mendoza Caicedo Jehinson Rodríguez Lindao
Tutor: QF. Michael G. Rendón Morán Mgs.
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Introducción
En la ciudad de Guayaquil entre el kilómetro 26 hasta el 51 en la vía
a la costa Santa Elena – Guayas, se encuentra ubicado la parroquia
Chongón que cuenta con un embalse que contiene objetivos positivos para
la comunidad, brindando un lugar de entretenimiento en el Parque
Recreacional “El Lago” y el club privado Yatch Club. Existen además
poblaciones cerca del embalse como Chongón, Casas Viejas, Bajo Verde,
San Pedro, Poza Honda y Aguas Negras que no afectan a la misma pero
que contienen personal que se dedica a la pesca dentro del embalse, en
donde funcionan como Cooperativa de pescadores artesanales.
En el embalse se puede visualizar el trabajo de dos instituciones
gubernamentales como: SENAGUA (Secretaria Nacional del Agua) que se
encarga del manejo y mantenimiento del agua del embalse, y el EPA
(Empresa Publica del Agua) que realiza el sistema de bombeo para
alimentar la capacidad de agua del embalse además de su principal
función, se encarga de abastecer el Agua a plantas potabilizadoras
(Secretaria Del Agua , 2017) (Empresa Publica del Agua, 2018).
El embalse, ofrece principalmente tres servicios: fuente de agua a la
población cercana, la pesca y como área Nacional de Recreación. En
cuanto al primer servicio, este se concentra principalmente en el suministro
de agua cruda a la Provincia de Santa Elena mediante la planta
potabilizadora Aguapen y al cantón Playas de la provincia del Guayas
mediante la planta potabilizadora Hidroplayas, y para el consumo agrícola
e industrial de la zona irrigada por el canal de riego.
El embalse es un ecosistema artificial creado hace menos de 30
años y la fauna acuática que ahora existe proviene de los ríos que lo
alimentan. Se pueden encontrar peces como la vieja azul y el bocachico,
este último muy apreciado para la alimentación. Otro de los grupos de fauna
que ha sido atraído por el embalse es el de las aves, en especial las
26
acuáticas y migratorias: se registran más de 70 especies, siendo las más
frecuentes los cormoranes, las garzas, los patos y los martines pescadores.
El propósito de esta investigación es realizar mediciones de los
parámetros fisicoquímicos y microbiológicos en el Embalse de Chongón, y
a partir de los resultados obtenidos desarrollar un esquema con sus
respectivos análisis comparativo de acuerdo a los parámetros de agua
existente en el embalse con los estudios realizados por Senagua en los
años 2008, 2012, 2013 y por la universidad Católica de Guayaquil en el año
2015.
27
CAPÍTULO I:
1.1 Planteamiento del problema
La OMS (Organización Mundial de la Salud, 2018), mediante la guía
de calidad del agua ha definido el consumo de agua como la fuente principal
para la preservación de la vida el uso que se le da va desde su consumo
por todo ser vivo y en la utilización habitual como uso doméstico e higiene
personal para eso el agua debe ser de buena calidad para que no presente
ningún tipo de daño al consumidor sea este de origen químico o
microbiológica perjudicando la salud humana.
Un estudio realizado por la Universidad Politécnica de Cartagena,
indica que el agua se puede contaminar por la presencia de agentes
químicos, físicos, biológicos o microbiológicos que puede afectar
directamente al consumidor de una forma negativa, la contaminación puede
ser de origen natural u ocasionada por el hombre en sus actividades
antropogénicas y uno de los factores que más influye si hay presencia o no
de contaminación son las condiciones fisicoquímicas del agua.
Por tal motivo es necesario evaluar la características fisicoquímicas
y microbiológicas del embalse Chongón, solo así se podrá verificar,
asegurar y garantizar si hay evidencia o no del deterioro de las condiciones
fisicoquímicas y microbiológicas de la calidad del Embalse Chongón
durante los últimos seis meses del 2018.
28
1.2 Formulación del problema
¿Hay evidencia del deterioro de la calidad de agua del Embalse
Chongón en función de sus parámetros fisicoquímicos y microbiológicos?
1.3 Hipótesis
Existe diferencia significativa entre los resultados obtenidos en el
presente estudio con los resultados históricos del embalse.
1.4 Justificación e importancia
El embalse es un ecosistema artificial creado hace menos de 30
años y la fauna acuática que ahora existe proviene de los ríos que lo
alimentan. Se pueden encontrar peces como la vieja azul o el bocachico,
son muy apreciado para la alimentación. Otro de los grupos de fauna que
ha sido atraído por el embalse es el de las aves, en especial las acuáticas
y migratorias: se registran más de 70 especies, siendo las más frecuentes
los cormoranes, las garzas, los patos y los martines pescadores.
El embalse ofrece servicio como el abastecimiento de agua a las
poblaciones cercana también por medio de sistema de bombeo distribuye
agua a la provincia de Santa Elena a cargo de Aguapen y al cantón playas
encargo de hidroplayas que son plantas potabilizadoras, también ofrece
servicio como un área de recreación.
Por los motivos mencionados anteriormente surge la idea de
establecer el siguiente proyecto de titulación “evaluación de los parámetros
fisicoquímicos y microbiológicos del embalse Chongón provincia del
Guayas durante los dos últimos trimestres del 2018”
29
1.5 Objetivos
1.5.1 Objetivo general
Evaluar los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse
Chongón, provincia del Guayas, durante los dos últimos trimestres del 2018
a partir de la comparación con los resultados existentes de los años 2008,
2012, 2013, 2015.
1.5.2 Objetivos específicos
• Elaborar un esquema de muestro que permita la obtención de
muestras representativas del Embalse Chongón.
• Determinar los parámetros fisicoquímicos durante los dos últimos
trimestres del 2018 del embalse Chongón.
• Determinar los parámetros microbiológicos durante los dos últimos
trimestres del 2018 del embalse Chongón.
• Evaluar los resultados obtenidos durante los dos últimos trimestres
del 2018 con los resultados existentes de años anteriores
30
CAPÍTULO II:
2.1 Antecedentes
El agua es uno del recurso más relevante para todo organismo vivo,
pero con el pasar del tiempo el agua se ha visto afectada ya sea de forma
natural u originada por las actividades humanas llegando a disminuir el
recurso del agua dulce en la naturaleza.
En la actualizad se construyen represas, embalses y lagos para
poder satisfacer varias necesidades como abastecer agua para el consumo
humano, para el riego de los cultivos o para la pesca artesanal.
Debido al servicio que puede brindar un embalse viene la
importancia de su estudio ya sean de sus propiedades fisicoquímicas,
biológicas y microbiológica
2.2 Embalse
Se denomina embalse a todo depósito de agua que es producto de
la formación o construcción de una presa en un río que a su vez cierra
mediana o totalmente su cauce.
Las principales funciones de un embalse son de almacenar agua en
los periodos húmedos y puedan ser utilizado en los periodos secos y así
también se regula el caudal de un río, en la producción de energía eléctrica,
como distribuidora de agua cruda para que puedan pasar por el proceso de
potabilización, ayudan a solubilizar agentes contaminantes, para prevenir
el aumento de los caudales, también sirve como un área de recreación
(Martinez, 2015)
31
2.2.1 El embalse Chongón
El Embalse Chongón está ubicado en la provincia del Guayas cerca
de la ciudad de Guayaquil, sobre el río Chongón que alrededor de sus
bordes mantiene una gran vegetación, la creación y alimentación de este
embalse se dio en el año de 1994 (Fundacion Natura, 2014) por medio de
la represa Daule peripa presenta una capacidad de 280.000.000 m3 y una
profundidad de 40 metros sirve de abastecimiento de agua cruda, como
área de recreación, como área de pesca artesanal este (Fundacion Natura,
2014), también es utilizada para el riego de los cultivos, pesca y el uso
recreativo.
Para la preservación del embalse se debe tener un manejo
apropiado, para eso se requiere un amplio conocimiento de su morfología,
de los procesos de interacción entre el suelo y el agua, las actividades
humanas desarrolladas alrededor del embalse, las características físicas,
químicas y biológicas del agua y sus interacciones que se producen entre
ellas y sus influencias en la calidad de agua (Aguilar, 2013).
Las propiedades físicas químicas merecen ser estudiada de forma
continua por su variabilidad en el espacio y tiempo, ya sea por afectaciones
climáticas o por la contaminación que pueda producir el hombre.
2.2.2 La eutrofización
La eutrofización en un lago o embalse, es cuando las
concentraciones de nutrientes son elevadas, esto viene a ser un proceso
evolutivo que se puede dar de forma natural con el transcurso de los años
por el envejecimiento de los embalses o ríos donde existe una mayor
acumulación de materia orgánica en los sedimentos de forma progresiva
proveniente de la putrefacción de animales y vegetales, que de la
acumulación puede transformar a un lago en un pantano hasta llegar a ser
pradera, este proceso es lento e irreversible, también puede ser provocado
32
por la actividades antropogénica que a diferencia de la forma natural esta
se manifiesta en el transcurso de pocas décadas y es un proceso que se
puede revertir identificando la causa que lo origina, que puede ser debido
al ingreso continuo de nutrientes, en particular del fosforo y nitrógeno, entre
los factores más importantes viene del uso agrícola del suelo, de las
descarga de agua residuales de las poblaciones que se encuentra
alrededor de un cuerpo de agua sea este embalse o río, la erosión, de la
deforestación e incendio forestales que le aportan grandes cantidades de
materiales en suspensión y concentraciones en forma creciente de nitratos
solubles y minerales poco solubles de fósforo. La eutrofización se puede
también definir como el aumento de la producción biológica en el agua,
debido a las altas concentraciones de nutrientes, este aumento de materia
orgánica disminuye la capacidad de autodepuración aeróbica del lago, se
disminuye las concentraciones de oxígeno disuelto en el agua y las masas
de algas se llegan a descomponer por putrefacción, dejando en condiciones
poco favorable el agua (Germán, 2016).
Según la revista española (Codex, 2016). La eutrofización en los
embalses se puede clasificar en oligotróficos, mesotróficos y eutróficos.
Tabla 1 Clasificación de los estados tróficos
33
Clases de Estado Trófico
Características
oligotróficos Cuerpos de agua limpios, de
baja productividad, en que no
ocurren interferencias indeseables
sobre los usos del agua, derivados
de la presencia de nutrientes
mesotróficos Cuerpos de agua con
productividad intermedia, con
posibles implicaciones sobre la
calidad del agua, pero en niveles
aceptables, en la mayoría de los
casos
eutróficos. Cuerpos de agua con alta
productividad en relación a las
condiciones naturales, con
reducción de la transparencia, en
general afectados por actividades
antrópicas, en los cuales ocurren
alteraciones indeseables en la
calidad del agua derivados del
aumento de la concentración de
nutrientes e interferencias en sus
múltiples usos.
(Codex, 2016)
2.2.3 Calidad de agua en los embalses
El criterio de calidad de agua va a depender de su uso, según la
norma de calidad ambiental y de descarga de efluente se clasifica en: Agua
destinada para el consumo humano previo a tratamiento de potabilización,
34
para la preservación de flora y fauna, agua de tipo subterránea, de uso
agrícola, para el uso pecuario, con fines creativos, de uso estético, utilizada
de transporte y de uso industrial.
Todo cuerpo de agua sea este superficial o subterránea puede que
su calidad de agua sea afectada por diversos factores sean esto de origen
natural o por la actividad humana. La metodología más utilizada para
determinar la calidad de agua es haciendo una comparación entre los
parámetros químico y físicos en la muestra de agua y junto con la norma
aplicable según el uso de agua, en este caso sería la norma de calidad de
agua para consumo humano con y sin tratamiento para poder asegurar una
distribución de agua en condiciones favorables para el consumo del ser
humano (Norma de Calidad Ambiental y de Descarga de Efluentes:
Recurso Agua, 2015)
2.2.4 Características físicas de los embalses
Son características que permiten dar la valoración del agua,
mediante observaciones que realiza el analista, referenciándose a los LMP
(limites máximo permisible), dependiendo de que cumpla con las
características correspondiente se decide si hay una aceptación o un
rechazo.
Existen características fundamentales del agua como el color, la
turbidez y la conductividad por que se utilizan como parámetro de la calidad
del agua. El agua es pura no incolora, es ligeramente conductora de
electricidad y en muchos casos tiene materiales en suspensión, coloidales
o muy finos, que provoca una dificultad del agua para transmitir la luz
(González, 2004).
2.2.5 Características químicas de los embalses
35
Existen fuentes de contaminación que determinan las características
químicas en el agua como: la actividad agrícola, las actividades industriales
y el mal uso de plaguicidas utilizados alrededor del embalse.
En la actividad Agrícola la mayor demanda es en el uso de los
fertilizantes, al momento de ser utilizados estos son arrastrados por
naturaleza a cuerpos de aguas afectando a nitritos y nitratos. El mal uso de
plaguicidas origina una contaminación toxica por sus componentes
químicos, afectando a quienes consumen el agua como: el ser humano y
los animales.
Las actividades industriales producen descargas directas e
indirectas en cuerpos de aguas en donde existen metales pesados, lo más
comunes pueden ser mercurio, cromo, plomo y arsénico (González, 2004).
2.2.6 Características microbiológicas de los embalses
Estas características se presentan cuando un microorganismo
(virus, hongo o bacteria) causan un deterioro a los demás organismos que
lo habitan por lo que están presentes en casi todas partes sin excepción al
agua superficial, este tipo de agua contienen pequeñas contaminaciones
de aguas negras, que no se pueden detectar por análisis físicos o químicos,
por este motivo es importante realizar análisis bacteriológicos para
determinar la presencia de microorganismos que afectan al cuerpo de agua
(Galvín, 2016).
2.3 Parámetros de calidad de agua en un embalse
Temperatura
36
La temperatura incide en los procesos fisicoquímicos y biológicos del
agua, un aumento de la temperatura incrementa el número de reacciones
químicas y la evaporación de sustancia y disminuyen las concentraciones
de ciertos gases como el O2, CO2, N2, CH4 y otros, cuando el agua está en
temperaturas más calientes aumenta la tasa de respiración de los
organismos vivo del agua de lo cual incrementa el consumo de oxígeno
disuelto (Prats, 2015).
Potencial de hidrógeno (pH)
El pH es un indicador muy importante que nos permite expresar la
condición ácida o alcalina de una solución a través de la actividad de iones
H+ que está representada en términos de logaritmo negativo, se representa
con una escala que va de 0 a 14 dependiendo de la intensidad.
El pH en las aguas se puede determinar por la mezcla de solutos o
a la composición de los terrenos atravesados, si el pH es alcalino nos
muestra que se encuentra en área de suelos calizos y si el pH es ácido nos
muestra que se encuentra en área con suelos silíceos. La concentración de
CO2 es un factor muy importante que influye en el pH de las aguas debido
a que se encuentra en función principalmente de la salinidad y de la
temperatura (Labaut, 2013).
Existen factores que afectan el pH de las aguas como lo es la
deposición ácida inducida por la contaminación atmosférica, eutrofización
originada por descargas que contienen abundantes nutrientes, y otros
ejemplos que afectan el pH como la actividad bacteriana, turbidez, el
proceso de fotosíntesis que se origina de forma natural y por el consumo
de oxígeno que por los organismos vivos y el pH disminuyen cuando se
cumple la fotosíntesis activa en el fitoplancton, también por la demanda de
material orgánico y la descomposición de detritos causando un elevado
consumo de oxígeno disuelto y la producción de CO2 (Ureta, 2002).
37
Conductividad
La conductividad es un índice que mide la capacidad del agua para
facilitar la electricidad, cuando hay más cantidades de iones, mayor es la
conductividad y aquello nos muestra que el agua está cargada de iones de
origen de ácidos, bases o sales que también puede estar disociadas en
iones (Solís & Castro, 2017).
Turbidez
La turbidez es una medida que determina el grado de transparencia
que pierde el agua por la presencia de partículas en suspensión que se
presentan generalmente en aguas superficiales. Cuanto mayor sea la
cantidad de sólidos en suspensión, mayor será el grado de turbidez,
generalmente son muy difíciles de filtrar (Arguello, 2015).
Sólidos suspendidos
Son partículas erosionadas del suelo que son arrastradas al agua
junto con otros materiales en suspensión estas se expresan en términos de
masa total, la turbidez que provocan dificulta la vida de algunas especies y
los sedimentos que se acumulan destruyen sitios de alimentación o desove
de los peces (Cabrera, 2017).
Los sólidos suspendidos aumentan el área de crecimiento de hongos
y bacterias por lo que podría incrementar el potencial de enfermedades en
el sistema acuático, así mismo estas partículas absorben varias sustancias
químicas como el fosfato por lo que la fertilización puede ser menos efectiva
en aguas turbias esto se debe a que los nutrientes no están libres para
incorporarse a la textura de las plantas (Ureta, 2002).
Oxígeno disuelto
38
El oxígeno disuelto es un gas que se encuentra de forma disuelta en
un cuerpo de agua, esta se da por medio de aireación o por el proceso de
fotosíntesis, su concentración va a depender de la temperatura, de las
presiones parciales y de la cantidad de solidos disueltos en el cuerpo de
agua, que son indispensables para la vida de los organismos acuáticos en
los procesos que se benefician como la respiración, oxidación, reducción,
solubilidad de minerales y descomposición de materia orgánica, estos
organismos acuáticos utilizan aquellos procesos metabólicos con el fin de
obtener energía necesaria para su desarrollo y reproducción (Moya, 2016).
La concentración de oxígeno depende de la elaboración y consumo
de oxígeno en el día, esta elaboración de oxígeno se da mediante la
producción del proceso de fotosíntesis, mientras que el consumo se origina
mediante la respiración o descomposición de sustancias orgánicas, en el
caso que exista mayor consumo de oxígeno y poca producción, la
concentración de oxígeno no sería sostenible para la vida de organismos
acuáticos y rompería la cadena trófica de ese cuerpo de agua, teniendo
como nombre hipoxia (Moya, 2016).
La concentración del oxígeno puede variar según la temperatura y
salinidad, en el agua dulce la concentración puede estar entre 15 mg/L a
una temperatura de o ºC y de 8 mg/L a una temperatura de 25 ºC, también
se puede expresar en porcentaje, los niveles por debajo del 80% puede
provocar la poca aceptación por los consumidores por su olor y sabor
(Espol, 2017).
La concentración de oxígeno disuelto en los embalses puede variar
dependiendo del incremento de la producción bilógica y del resultado de la
entrada de nutrientes y materia orgánica, así también va a depender de la
ubicación geográfica del embalse y sus condiciones meteorológicas.
Demanda bioquímica de oxígeno (5 días)
39
(DBO) demanda bioquímica de oxígeno, determina las
concentraciones de oxígeno que ha sido consumido por los organismos y
microrganismo en la oxidación química de la materia orgánica que están
presente en una muestra de agua durante 5 días como indica la técnica a
una temperatura de 20 ºC.
La importancia de determinar la demanda bioquímica de oxígeno es
que nos ayuda a determinar el estado de un cuerpo de agua si en ella está
presente materia orgánica y de cuánto oxígeno necesita el agua para poder
eliminar esa materia orgánica, entre mayor sea la concentración de DBO,
mayor va a ser la concentración de materia orgánica degradable, para
cuerpos de aguas superficiales, es asociado a los procesos de respiración
microbiana (EPA, 2014). La concentración de DBO en un ecosistema no
contaminado sus valores está por debajo de 3 mg O2/L (MVOTMA, 2015).
Nitrógeno
El nitrógeno es fundamental para los organismos vivos, que
convierte al nitrógeno inorgánico en orgánico. En el agua se lo puede
encontrar en sus estados de oxidación de -3 y +5 entre ellas están el
amonio NH4+, el nitrógeno molecular N2 en su estado gaseoso, el monóxido
de di nitrógeno N2O, nitrato NO3- y el nitrito NO2.
Los procesos no biológicos que intervienen en la transformación del
nitrógeno son la volatilización, adsorción, absorción y sedimentación en
cuando los procesos biológicos se dan gracias a los microorganismos que
se ayudan de la fijación de N2 en amonio así mismo en la asimilación de
nitrito y amonio en forma inorgánica y la conversión reducida en nitrato, y
la desnitrificación que convierte el nitrato en nitrógeno molecular o gaseoso
(Chapman, 2016).
Nitrito
40
El nitrito es inestable en agua con concentraciones de oxígeno
elevado y es una especie receptora de electrones que se caracteriza en los
procesos de nitrificación y desnitrificación. Sus niveles de concentración en
agua dulce son muy bajas 0.001 mg/L y en algunos de los casos hasta 1
mg/L, el nitrito se lo considera como un indicador de contaminación del
agua por residuos y las concentraciones elevadas indican afectaciones en
la calidad microbiana (Rodríguez, 2017).
Nitratos
La forma más habitual de encontrar el nitrógeno disuelto en el agua
dulce es en su ion nitrato es un nutriente fundamental para las plantas de
agua, y esto se de los residuos de animales y plantas, de los drenajes de
tierra de los cultivos (Rodríguez, 2017).
La concentración de nitrato en el agua va a depender de la cantidad
de materia orgánica en descomposición sus valores están por arriba de 0.1
mg/l de N-(NO3), estos nos indica que hay contaminación ya sea por
desechos industriales, albañales y lixiviados de áreas de cultivos
(Chapman, 2016).
Amonio
El amonio se lo puede encontrar en las lluvias que se origina de la
volatilización del agua iniciando de la superficie de la tierra, los cuerpos de
agua que no presenta contaminación su concentración de amonio están
por debajo de 0.1 mg/L y en las aguas superficiales pueden llegar a 2 a 3
mg/L y cuando las concentraciones son elevadas son indicadores de
contaminación orgánica (Rodríguez, 2017).
Fosfato
41
Los fosfatos son elementos vitales porque ayudan a transmitir la
información genética, son el medio de energía para las células. Se las
pueden encontrar en las heces de las aves marinas, también en las rocas
fosfatadas, en los depósitos de animales que están en su estado fósil y
estos puedes ser liberados por erosión o lixiviación y son depositados en
forma de sedimentos superficiales o profundos en los ecosistemas marinos
(Ureta, 2013).
El fósforo es un compuesto que ayuda a la eutrofización, provocando
la producción de algas y de organismos macrotíficos, estos de aquí se van
reproduciendo y muriendo dejando en el medio gran cantidad de materia
orgánica en putrefacción que se consume el oxígeno disuelto llegando a
provocar una hipoxia en el ecosistema acuático (Padau, 2014).
Silicatos
Las concentraciones de silicatos en agua naturales están en un
rango de 1 a 30 mg/L y en los embalses y lagos las concentraciones van a
depender de la carga microbiana de silíceos (Diatomeas), estos
microorganismo consumen el sílice y la devuelven al medio cuando se
produce su descomposición de sus cadáveres, también se ha comprobado
el aumento de las concentraciones de silicatos en los embalses en las
entradas de agua que son corrientes turbias y cargadas de silicatos y de
aluminios tanto en forma suspendida o medianamente disueltos
(Rodríguez, 2017).
El uso del agua con altas concentraciones de silicatos pueden
afectar a los elementos metálicos de la caldera provocando abrasiones,
grietas y roturas; por el contrario el agua con altos contenido de silicatos no
presenta afectaciones al ser humano tiene una relación positiva del
consumo con contenido que van desde 15 a 20 mg/L.
Coliformes totales
42
La presencia de coliformes totales muestra el grado de
contaminación que proviene de residuos humanos, animales o deterioro del
suelo separadamente, o por la combinación de las mismas. La
contaminación de las aguas superficiales por coliformes totales se estima
por vertidos domésticos, corrientes urbanas, áreas de recreación que se
encuentran alrededor, goteos de aguas de aves.
Los Coliformes totales se caracterizan por la capacidad de fermentar
la lactosa a 35°C con un tiempo aproximado de 48 horas. El método de
número más probables es uno de los métodos más antiguos y todavía
utilizados por lo que determina microorganismos aerobios y anaerobios en
lodos, sedimentos marinos y suelos contaminados, por esta razón este
método es aplicable para determinación de coliformes totales en aguas
superficiales (Rodríguez, 2017).
Coliformes fecales
Los coliformes fecales se originan de las heces humana y animal.
Por tal razón ha sido utilizado como indicador para determinar la calidad de
agua ya que nos permite demostrar si el medio ha venido o está sufriendo
de contaminación fecal ya sea por descargas de aguas residuales,
operaciones agrícolas o contaminación directa de los seres humanos o
animales.
Estudios epidemiológicos revelan que concentraciones elevadas de
Coliformes fecales en cuerpo de agua producen enfermedades
gastrointestinales en el ser humano (Rodríguez, 2017).
43
CAPÍTULO III
3.1 Metodología.
El presente trabajo, corresponde a la Evaluación de los parámetros
fisicoquímico y microbiológico del embalse Chongón de capacidad
280.000.000 m3, en el cual se escogieron 5 puntos de muestreos: la primera
se encuentra frente a la torre (E1), Salida del Embalse (E2), frente a la
entrada del embalse (E3), en el islote (E4) y en el centro del embalse (E5).
El estudio se realizó en los dos últimos trimestres (Julio – Diciembre), dentro
de los cuales se realizaron 12 monitoreos, transcurriendo un tiempo de
monitoreos de 15 días obteniendo 2 muestreos por cada mes, para la
realización del muestreo se utilizaron embarcaciones de remo que
contaban con las condiciones adecuadas para desarrollar el trabajo de
campo.
Tabla 2 Calendario de muestreo
N° Fecha de
Muestreo
Parámetros
Físicos Químicos Microbiológicos
1 14-jul-18 X x -
2 28-jul-18 X x -
3 11-ago-18 X X X
4 25-ago-18 X X X
5 8-sep-18 X X X
6 22-sep-18 X X X
7 6-oct-18 X X X
8 20-oct-18 X X X
9 6-nov-18 X X X
10 24-nov-18 X X X
44
Ubicación de puntos de muestreos
Tabla 3 Ubicación de los puntos de muestreo
Estaciones
de muestreo
Coordenadas Descripción
Latitud Longitud
E1 02°12'51.2''
80°07'46.7''
Frente a la torre
E2 02°13'15.9''S
80°06'46.8''O
Salida del Embalse
E3 02°12'30.6'' 80°07'32.7''
Frente a Entrada del
Embalse
E4 02°12'50.0''
80°07'09.3''
En el islote
E5 02°13'15.9''
80°06'46.8''
Centro del embalse
Gráfico 1 puntos de muestreo (fuente Google maps, autores)
La metodología aplicada en el presente trabajo de investigación se
lleva a cabo en 3 etapas:
11 1-dic-18 X X X
12 15-dic-18 X X X
45
Etapa I. Trabajo de campo.
El presente trabajo de investigación se llevó en el embalse Chongón
en la provincia del Guayas en km 26 vía Guayaquil - Salinas, para la
obtención de las muestras de aguas superficiales en 12 estaciones
seleccionadas de acuerdo a criterios de investigación, se realizó el
muestreo escogiendo 4 tipos de envases destinados a diferentes análisis.
Las botellas Winkler o DBO de 300 ml para determinar oxígeno disuelto;
las botellas Winkler oscuras de 300 ml para determinar la demanda
bioquímica de oxígeno por 5 días (DBO5); botellas plásticas oscuras 1L
para el análisis de solidos suspendidos, turbidez, nutrientes orgánicos:
nitrito, nitrato, fosfato, silicato y amonio; las botellas plásticas PVC de 200ml
para medir el pH y la conductividad; y por último se utilizaron envases
estériles para el análisis microbiológico: coliformes totales y coliformes
fecales.
En general se continuó con el protocolo estandarizado por el Instituto
Nacional de Pesca con respecto a la toma y enumeración de muestras que
se basa en el Standard Methods 21st Edition for the examination of wáter
& wastewater (2005).
El análisis de las muestras se realizó de manera inmediata (in situ)
a excepción de los nutrientes orgánicos que se las analizaba una vez al
mes, estas muestras eran preservadas en congelación para el posterior
análisis.
Etapa II. Ejecución del muestreo y análisis de laboratorio
Los análisis fisicoquímicos y microbiológicos de las muestras de
aguas superficiales del embalse Chongón fueron realizados en el
laboratorio del Instituto Nacional de Pesca (INP), en el cual se cumplió con
los protocolos de muestreo de la institución, con sus respectiva
preservación y periodo de vigencia de las muestras recolectadas, El
46
muestreo se desarrolló el 14 de Julio del 2018 desde las 10 am hasta las
12:30 a.m, en cinco estaciones, definidos como frente a la torre (E1), Salida
del Embalse (E2), frente a la entrada del embalse (E3), en el islote (E4) y
en el centro del embalse (E5).
Tabla 4 Parámetros físicos Tabla 5 Parámetros químicos
Tabla 6 Parámetros microbiológicos
Etapa III. Recopilación de información existente
Mediante oficio S/N, dirigido a la Secretaria Nacional del Agua
(SENAGUA), se solicitó información existente correspondiente a los últimos
8 años de monitoreos de los análisis de calidad de agua realizado en el
embalse Chongón.
Parámetros Métodos
Temperatura Potenciométrico
Potencial de
hidrogeno
(pH)
Potenciométrico
conductividad Conductimetría
turbidez Turbidimetría
Sólidos en
suspensión Filtración
Parámetros Métodos
Coliformes Totales
Números más probable (NMP)
Coliformes Fecales
Números más probable (NMP)
Parámetros Métodos
Oxígeno
Disuelto Iodométrico
Demanda
bioquímica de
oxigeno (5 días)
Iodométrico
Nitritos Espectrofotometría
Nitratos Espectrofotometría
47
Por lo cual se obtuvo información de monitoreos de los años: 2012,
2013, 2015 realizado por UCSG y 2018 por parte de los autores del actual
documento, con los datos obtenidos se podrá realizar un análisis
comparativo del Embalse Chongón.
Tabla 7 Recopilación de información de muestreo
COORDENADAS UTM 2008 2012 2013 2015 2018
N° Puntos de Muestreos
Este Norte Fuente Fuente Fuente Fuente Fuente
P1 Entrada del embalse
02°12'30.6''
80°07'32.7''
Senagua Senagua Senagua
UCSG UG
P2 La torre 02°13'49.6''
80°07'27.8''
--- UG
P3 Centro del lago
02°13'15.9''
80°06'46.8''
UCSG UG
3.2 Tipo de investigación
• Tipo de investigación: explicativa
3.3 Diseño de la Investigación
Experimental, longitudinal, cuantitativa
Técnica de recolección de la información
Análisis de contenido.
3.4 Población y muestra
La selección de los puntos de Muestreos en el embalse Chongón fue
comprendido en los 280.000.000 m3 de capacidad que tiene el lago, el
muestreo se realizó de manera superficial del embalse Chongón durante
48
los dos últimos trimestres (Julio a diciembre) en época seca. Seleccionando
en 5 estaciones de acuerdos a los criterios de investigación, los cuales
están comprendidos de la siguiente manera:
• E1: Las muestras fueron tomadas frente a la torre.
• E2: Las muestras fueron tomadas en la salida del embalse.
• E3: Las muestras fueron tomadas frente a la entrada del
embalse.
• E4: Las muestras fueron tomadas en el islote.
• E5: Las muestras fueron tomadas en el centro del embalse.
3.5 Materiales y reactivos
3.5.1 Materiales de campo
1 hielera, 2 chalecos salvavidas, embarcación, 5 botellas winkler, 5
botellas para DBO, 5 botellas oscuras 1 litro, 5 envases estériles para
microbiología, reactivo sulfato, reactivo ioduro alcalino, pipetas plásticas,
guantes descartables,
3.5.2 Materiales fungibles para laboratorio
Pipetas de 10 ml, matraz aforado de 200 ml, beacker de 1000 ml,
fiolas de 50 ml, cubeta de vidrio, probeta de 50 ml, puntas para micropipeta,
micropipeta de 1000 μl, matraz aforado de 1000 ml, botellas plásticas
estériles, filtros estériles, embudos de rosca, pinzas estériles, papel
aluminio,
3.5.3 Reactivos
Tabla 8 Reactivos utilizados
49
3.5.4 Equipos
Tabla 9 Equipos utilizados
Reactivos Formula Concentración
Sulfato de manganeso 100ml SO4Mn 0.15M
Ioduro Alcalino 100ml IK 70% KOH – 15% IK
Tiosulfato de sodio 500ml S2O3NA2 0.025 M
Almidón 50ml (C6H10O5)n 1%
Sulfanilamida 50ml (C6H8N3O3S) 1%
Naftil 50ml C₁₂H₁₆Cl₂N₂ -
Molibdato de Amonio 300ml MoO4(NH4)2 3%
Ácido Sulfúrico 200ml H₂SO₄ -
Ácido Ascórbico 300ml C6H8O6 -
Tartrato de Antimonio y Potasio 100ml (C4O6)SbK 0.14%
Molibdato de amonio MoO4(NH4)2 4%
Caldo lauril sulfato de sodio 600g N/A N/A
Caldo bilis Verde brillante 600g N/A N/A
Caldo EC 600g N/A N/A
50
Equipos Descripción
Espectrofotómetro Para las lecturas de absorbancias respectivas de nutrientes
Autoclave Esterilización de materiales y medios de cultivo
Bureta digital Para titulación con Tiosulfato de Sodio
Potenciómetro Lecturas de pH
Conductímetro Lecturas de Conductividad
Balanza analítica Se utilizó para pesar reactivos y filtros
Incubadora Para DBO a una T° de 20°C
Bomba de presión Se utilizó para la filtración de membrana
Destilador de Agua Se utilizó para obtener Agua Destilada
Turbidímetro Lecturas de turbidez
Columna de Cu y Cd Para la reacción de nitritos y nitratos
Desecador Se utilizó para secar los filtros
Incubadora 35°C Permite el desarrollo de bacterias (Coliformes totales)
Incubadora 45°C Permite el desarrollo de bacterias (Coliformes Fecales)
51
3.6 Procedimiento
3.6.1 Oxígeno disuelto por método Iodométrico
Las muestras de agua superficial para el análisis de oxígeno disuelto
fueron recolectadas por botellas DBO (300 ml) y fijadas con 1ml de Sulfato
Manganoso (S𝑂4𝑀𝑛) más 1ml de Ioduro Alcalino (IK), luego fueron
llevadas al laboratorio Instituto Nacional de Pesca (INP) para ser
analizadas.
En el laboratorio se agregó 1ml ácido sulfúrico (S𝑂4𝐻2), para
disolver el precipitado color marrón hasta quedar una solución de color
anaranjado, luego se procedió a realizar la titulación de Iodo libre con una
solución de Tiosulfato de Sodio (𝑆2𝑂3𝑁𝑎2) 0,025 M, hasta llegar a una
coloración amarillo pajizo, se procedió a agregar el almidón con el fin de
dar una coloración azulado intenso, mediante la valoración gota a gota se
desapareció el color azul como indicador de punto final de la titulación
(Salinas, 2017).
3.6.2 Demanda bioquímica de oxígeno DBO (5 días) por Método
Iodométrico
Las muestras de agua superficial para el análisis de DBO fueron
recolectadas en botellas winkler oscuras de 300 ml con el objetivo de
protegerlo de la luz solar, luego se procedió a la incubación de 5 días a una
temperatura 20°C para el crecimiento de microorganismo que oxidan la
materia orgánica, luego del tiempo transcurrido se procedió a desarrollar el
mismo procedimiento de oxígeno disuelto.
3.6.3 Determinación de pH por método potenciometría
Las Muestras para medir el pH, fueron recolectadas en botellas
plásticas PVC (policloruro de vinilo) de 200 ml y se le agregó 3 gotas de
52
cloruro de mercurio para conservar la muestra, se procedió a la calibración
del potenciómetro Hach HQ14D con los buffers de pH 4, pH 7 y pH 10, y
luego se procedió a la lectura de las muestras, los valores son registrados
en la base de datos.
3.6.4 Determinación de la turbidez por método de turbidimetría
Las muestras de agua superficial fueron recolectadas en botellas
plásticas de 200 ml. Se procedió a realizar la calibración del turbidímetro
con sus estándares, Luego fueron colocadas las muestras en el equipo
para proceder con la lectura, obteniendo datos en unidades NTU y las
mismas fueron registradas en la base de datos.
3.6.5 Determinación de sólidos en suspensión
Para sólidos en suspensión se pesaron filtros vacíos en balanza
analítica, se registran los primeros valores de los filtros vacíos, luego en el
equipo de filtración son colocados los filtros donde se escogió 100 ml de la
muestra para filtrar, luego los filtros son llevados a la estufa a 100°C por 1
hora, después son colocados por 30 minutos en el desecador y por último
son pesados para obtener por diferencia el peso de materia orgánica.
3.6.6 Determinación de nitrato por método espectrofotometría
uv/vis
Las muestras son recolectadas en botellas oscuras de 1 Lt y
consérvalas en congelación para conservar la muestra, luego son filtradas
en un volumen de 100 ml y se le agrega cloruro de amonio concentrado
(ClNH4 Conc), después la muestra (50 ml) pasa por una columna reductora
de cobre y cadmio, luego que la muestra pasó por la columna se midió 25ml
de muestra y se agregó sulfanilamida (𝐶6𝐻8𝑁2𝑂2S) y naftiletilendiamina
dihidrocloruro (ClNH4 Conc), se dejó en reposo aproximadamente 15 a 30
53
minutos, para luego ser leídas en el espectrofotómetro a una longitud de
onda de 543 nm y con la formula se procedió a hacer los cálculos.
3.6.7 Determinación de nitrito por método espectrofotometría
uv/vis
Las muestras son recolectadas en botellas oscuras de 1 litro y
mantenerlas en congelación para conservar la muestra, luego son filtradas
en un volumen de 100 ml, se toma 50 ml de muestra, luego se agrega 1 ml
de la solución de sulfanilamida se espera de 2 a 8 minutos para que
reaccione para después agregar 1 ml de diclorhidrato de naftil
etilendiamina, se mezcla bien se espera 10 minutos para luego ser leídas
en el espectrofotómetro a una longitud de onda de 543 nm y con la formula
se procedió a hacer los cálculos.
3.6.8 Determinación de silicato por método espectrofotometría
uv/vis
Para la determinación de silicato en agua se hace reaccionar el ácido
orto silícico con en molibdato en un medio ácido para la formación de un
complejo de color azul heteropoliácido, tomando 25 ml de muestra y
agregarlo en 5 ml de solución de molibdato en una probeta se mezcla y se
deja reposar 10 minutos y luego se agrega el agente reductor dejando
reposar de 2 a 3 horas para poder ser leídas en el espectrofotómetro uv/vis
a 810 nm.
3.6.9 Determinación de fosfato por método espectrofotometría
uv/vis
La determinación de este ión, se basa en la reacción del fosfato con
molibdato en medio ácido, para formar ácido 12-molibdofosfòrico y la
posterior reducción de éste a un complejo fosfomolibdato de color azul
intenso, cuya absorbancia es medida fotométricamente a 885 nm, se mide
54
25 ml de la muestra, luego se agrega 2,5 de la mezcla de reactivo para
fosfato se espera 10 minuto para poder ser leídas en el espectrofotómetro
uv/vis.
3.6.7 Determinación de coliformes totales y fecales por método
de NMP (número más probable)
Se recolectaron las muestras en envases estériles, luego se realizó
la dilución de la muestra 1/1000, 1/100 y 1/10, después se siembra en el
caldo lauril sulfato de sodio y se dejó en incubación por 24 - 48 horas a una
temperatura de 37°C, luego del tiempo transcurrido se siembra para
Coliformes totales y Coliformes Fecales. El caldo Bilis verde brillante se
utilizó para el método de numero mas probable para Coliformes totales, con
un reposo en la incubadora de 48 h y a una temperatura de 37°C. El Caldo
EC se utilizó para el método de numero mas probable para Coliformes
fecales, dejando en baño maría a una temperatura de 44,5 °C por 24 h,
después se procedió a sacar los resultados con la tabla de NMP (número
más probable).
55
Capitulo IV
4.1 Interpretación de resultados
Temperatura
Gráfico 2 Valores de temperatura de los últimos 6 meses del 2018.
En el grafico 1 se encuentran los promedios de temperatura de los
últimos 6 meses del 2018, donde podemos observar que la máxima
temperatura registrada en los meses de octubre y diciembre, y en los
meses de julio, agosto, septiembre y noviembre se mantiene en un
promedio de 25 °C y en ninguno de estos meses sobrepasa la temperatura
máxima permisible de 29 °C.
Potencial de hidrogeno pH
Gráfico 3 Valores de pH de los últimos 6 meses.
Julio AgostoSeptiemb
reOctubre
Noviembre
Diciembre
pH 6,932 7,493 7,193 7,260 7,088 7,239
LMP 9 9 9 9 9 9
02468
10
Potencial de hidrogeno pH
pH
LMP
Julio AgostoSeptiembre
Octubre
Noviembre
Diciembre
Temperatra 25,3 25,5 25,7 26,2 25,9 26,5
LMP 29 29 29 29 29 29
23
24
25
26
27
28
29
30
Temperatura
Temperatra
LMP
56
En el grafico 3 se observa en los resultados obtenidos que ninguno
valor se encuentra por encima del límite permisible, este parámetro nos
indica en qué estado está el agua sea este neutro cuando su valor de pH
nos da 7, acido cuando su valor es menor a 7 y básico cuando su valor es
mayor a 7, siendo su máximo permisible de 9 y su mínimo de 6 en este
cuerpo de agua, en el caso que fuera bajo significaría un peligro para la
vida acuática.
Turbidez
Gráfico 4 Valores de turbidez
En el gráfico 4 podemos observar los resultados obtenido durante
los meses de septiembre hasta diciembre de Turbidez en el embalse
Chongón, donde nos indica que todos sus valores están por debajo del
límite máximo permisible
Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
NTU 8,544 5,827 8,486 6,767
LMP 100 100 100 100
8,544 5,827 8,486 6,767
100 100 100 100
0
20
40
60
80
100
120
Turbidez
NTU
LMP
57
Conductividad
Gráfico 5 Valores de conductividad
En el gráfico de la conductividad se aprecia que en el mes noviembre
existe una pequeña ascendencia en los valores de conductividad, estos
valores registrados de conductividad nos demuestran la cantidad de iones
que posee el embalse, es decir el embalse posee poca cantidad de
electrolitos debido a que el agua es dulce, por tal razón, presenta dichos
valores.
La conductividad es directamente proporcional a la concentración de
solidos disueltos, es decir, cuanto mayor sea dicha concentración, mayor
será la conductividad, por ejemplo, el agua de mar (agua salada) registraría
valores elevados de conductividad.
0,0000000
0,0005000
0,0010000
0,0015000
0,0020000
0,0025000
0,0030000
0,0035000
0,0040000
0,0045000
0,0050000
conductividad
conductividad
58
Sólidos en suspensión
Gráfico 6 Valores de sólidos en suspensión
En el gráfico de sólidos en suspensión se observan valores cercanos
a los 20 mg/l que se encuentran por debajo del límite permisible de 100
mg/l.
Este parámetro junto a la turbidez dificulta la vida de algunas
especies marinas por lo que se acumulan y destruyen sitios de
alimentación. El aumento excesivo de sólidos en suspensión aumenta el
área de crecimiento de hongos y bacterias ocasionando a corto plazo,
enfermedades en el sistema acuático.
Oxígeno disuelto
Gráfico 7 Valores de oxígeno disuelto.
Septiembre
Octubre Noviembre Diciembre
Solidos 16 20 19 22
LMP 100 100 100 100
16 20 19 22
100 100 100 100
020406080
100120
Solidos en suspension
Solidos
LMP
Julio
Agosto
Septie
mbre
Octubre
Noviembre
Diciembre
Oxígeno disuelto 5,811 5,109 6,217 5,734 4,960 4,567
LMP 6 6 6 6 6 6
Oxígeno disuelto ; 4,567
01234567
Ox
ige
no
D
isu
elt
o
Oxígeno disuelto
LMP
59
En los resultados obtenidos del Grafico 7, se observa que en el mes
de septiembre se registró el valor máximo de oxígeno disuelto pasando por
encima del límite permisible (6 mg/l).
Un adecuado nivel de oxígeno disuelto es fundamental para toda la
vida acuática y para una buena calidad de agua. Además, se puede
observar que en el mes de diciembre el valor de oxígeno disuelto es muy
bajo (4,567 mg/l) debido que en este mes hubo la presencia de gran
cantidad del jacinto de agua (lechugines) en el embalse, esto hace que el
oxígeno disminuya más por lo que la vida acuática se verá afectada en
corto plazo.
Demanda bioquímica de oxígeno (DBO 5 días)
Gráfico 8 Valores de la Demanda bioquímica de oxígeno (DBO 5 días)
En los resultados obtenidos del grafico 7, se puede observar los
valores muy altos que se registraron en este parámetro durante todos los
meses de muestreo, pasando por el limite permisible (2 mg/l), esto nos
indica la cantidad de oxígeno que es consumida por los microorganismos
AgostoSeptiembr
eOctubre
Noviembre
Diciembre
DBO 2,280 2,025 2,789 2,633 2,816
LMP 2 2 2 2 2
2,2802,025
2,7892,633
2,816
2 2 2 2 2
0,000
0,500
1,000
1,500
2,000
2,500
3,000
DBO 5 Dias
DBO
LMP
60
que se encuentran en el agua. El DBO en 5 días en calidad del agua es
considerado como un bioindicador.
Nitrito y nitrato
En los gráficos 9 y 10 podemos observar los resultados obtenidos
durante los meses de julio hasta diciembre de nitrato y nitritos, encontrado
la máxima en el mes de noviembre y la mínima en el mes de octubre para
los valores de nitrato.
Los valores de nitrato y nitrito están por debajo del límite máximo
permisible (nitratos 10 mg/l y nitritos 1 mg/l) y la forma natural de darse
estos compuestos en el agua a los pequeños cultivos que se puedan
encontrar alrededor del embalse donde se utilizan componente de abono o
sustancias fertilizantes nitrogenada o por la presencia natural de nitrato a
través del siglo del nitrógeno los estándares de calidad ambiental del agua
indica que concentraciones elevadas de nitrato y nitrito son unas de las
causas de eutrofización del agua.
Nitrito
Gráfico 9 Valores de nitrito
61
Nitrato
Gráfico 10 Valores de nitratos
Fosfato
Gráfico 11 Valores de fosfato
En el gráfico de fosfatos se puede apreciar que los valores son muy
bajos registrando en el mes de septiembre y noviembre un pequeño
crecimiento, pero aceptable para el valor mínimo de 0.53 mg/l. Una de las
62
principales posibilidades de que los fosfatos entren al cuerpo de agua es
por medio de la lluvia, ya que arrastran cantidades de fosfatos que se
encuentran en suelos agrícolas.
Cantidades excesivas de fosfatos en los cuerpos de aguas,
estimulara el crecimiento excesivo de plantas acuáticas y el aumento de la
población de peces, llevando a consumir grandes cantidades de oxígeno y
además ayudan que no puedan entrar los rayos del sol al agua ya que esto
aporta de manera negativa la vida acuática produciéndose el proceso de
eutrofización.
Silicato
Gráfico 12 Valores de Silicato
En el grafico 12 se observan los valores de silicatos que sus
concentraciones en los meses de julio agosto y septiembre son mínimas a
diferencia de los últimos 3 meses del año 2018 que están en un promedio
de 4,46 mg/l, se ha comprobado el aumento de las concentraciones de
silicatos en los embalses están relacionadas a la entrada de agua que son
63
corrientes turbias y cargadas de silicatos y de aluminios en forma
suspendida o medianamente disueltos.
Se observan que las concentraciones de silicatos en agua naturales
están en un rango de 1 a 30 mg/L a diferencia de los embalses y lagos su
concentración va a depender de la carga microbiana de silíceos
(Diatomeas), estos microorganismos consumen el sílice y la devuelven al
medio cuando se produce su descomposición de sus cadáveres,
El uso del agua con altas concentraciones de silicatos puede afectar
a los elementos metálicos de la caldera provocando abrasiones, grietas y
roturas por el contrario el agua con altos contenido de silicatos no presenta
afectaciones al ser humano tiene una relación positiva del consumo con
contenido que van desde 15 a 20 mg/L.
Amonio
Gráfico 13 Valores de amonio
En el gráfico de amonio se puede apreciar que en los meses de
agosto y septiembre se registraron valores crecientes (0.089 mg/l y 0.102
mg/l) pero que no son dañinos para el cuerpo de agua. Este parámetro está
relacionado a la cantidad de total de nitrógeno que existe en el agua y
64
grandes cantidades de Amoniaco son por causas de sustancias fertilizantes
o componente de abono nitrogenada.
Coliformes totales
Gráfico 14 Valores de coliforme totales
En el grafico 14 se puede apreciar que en el mes de septiembre este
parámetro se encuentra por encima del límite permisible (100 NMP/10ml) y
en el mes de octubre, noviembre y diciembre se registraron valores
aceptados. La principal fuente de contaminación por coliformes totales es
debido a que el embalse Chongón alimenta su capacidad de cuerpo de
agua por medio de bombeos que se realizan desde el río Daule y a través
de corrientes urbanas arrastra todo tipo de contaminación que se dan en el
canal como vertidos domésticos de agua residuales, fosas sépticas, goteos
de aguas de aves y granjas de animales.
Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
C.Totales 268,6 67,63 98 29,4
LMP 100 100 100 100
050
100150200250300
Coliformes Totales
C.Totales
LMP
65
0,1980,6
1,452
0,247
1,976
0,7410,401
0,453
0,664
0,351
0,578
0,558
0 0
268,6
67,6398
29,4
0
50
100
150
200
250
300
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
Sistema de BombeoRelación entre Nitratos / Fosfatos/ C. Totales
Nitratos 0 Fosfatos 0 Sistema de Bombeo C.Totales
Coliformes fecales
Gráfico 15 Valores de Coliforme fecales
En el grafico 15 se puede apreciar que no hubo contaminación de
coliformes fecales en los puntos y meses de muestreo, es decir no hubo
presencia de heces de origen humano, ni de origen animal, debido a que el
embalse es un lago totalmente protegido, ya que sirve de abastecimiento
de agua para la provincia de Santa Elena (Aguapen) y el cantón Villamil
Playas (Hidroplayas)
Relación entre nitratos, fosfatos, Coliformes totales y el sistema
de bombeo
Gráfico 16 Relación entre nitratos, fosfatos, coliformes fecales y el sistema de bombeo
66
En el grafico 16 se puede apreciar como en el mes de septiembre y
noviembre hubo mayor actividad de bombeo y se observa en las líneas, la
incidencia de corrientes urbanas al arrastrar nitratos, fosfatos y coliformes
totales en pequeñas cantidades, que no ocasionan eutrofización, ni peligro
para el embalse porque estos parámetros se encuentran por debajo de los
limites permisibles. Además, en el grafico se puede interpretar el suceso
que presenta el sistema de bombeo que inicia desde el río Daule, pasa por
el canal Daule, hasta alimentar la capacidad de agua del embalse Chongón.
Se observa en las líneas, la incidencia de corrientes urbanas al
arrastrar nitratos, fosfatos y coliformes totales que además son disueltos
por la mayor cantidad de agua que se bombea en el embalse, por tal razón,
estos parámetros se encuentran en pequeñas cantidades, por ejemplo: en
el mes de septiembre los parámetros se manifestaron de la siguiente
manera: nitratos 1,452 µM, fosfato 0,664 µM y coliformes totales 268,6
NMP/100ml; y en el mes de noviembre se registraron así: nitratos 1,976
µM, fosfato 0,578 µM y coliformes totales 98 NMP/100ml, estos parámetros
se mostraron casi similares al mes de septiembre con una gran diferencia
en coliformes totales. Cabe destacar que estos parámetros se encuentran
en pequeñas cantidades, que no ocasionan eutrofización, ni peligro para el
embalse porque se encuentran por debajo de los límites permisibles.
67
Comparación de resultados obtenidos con resultados de años anteriores
Tabla 10 Comparación de los datos obtenidos con de los años anteriores.
No.
Parámetros
Unidad
Ubicación/Sitios de control
LIM. PERM. TULSMA
Año 2008 SENAGUA Año 2012 SENAGUA Año 2013 SENAGUA Año 2015 UCSG
Año 2018 UG
E1 E2 E3 E1 E2 E3 E1 E2 E3 E1 E2 E1 E2 E3 Entrada del embalse
Frente a la torre
Centro del embalse
Entrada del embalse
Frente a la torre
Centro del embalse
Entrada del embalse
Frente a la torre
Centro del embalse
Entrada del embalse
Frente a la torre
Entrada del
embalse
Frente a la torre
Centro del
embalse
1 Oxigeno Disuelto
mg/l 4.41 5.1 4.93 4.8 >9 8.2 5.7 5.72 5,19
5,58
5,05
No menor al 80% del oxígeno de saturación y no mayor a 6 mg/l
2 Demanda química de oxigeno
mg/l 0.12 0.17 0.18 1 4 3 <7 4 2.31 2.61 2.54 2.0 mg/l
3 Nitrato mg/l 0.26 0.013 0.09 N/D N/D N/D <0.42 <0.42 0.025 0.040 0.028 10.0 mg/l
4 Nitrito mg/l 0.12 0.07 0.11 N/D N/D N/D 0.036 0.016 0.039 0.023 0.042 1.0 mg/l
5 fosfato mg/l 0.18 0.12 0.045 0.056 0.049
6 Potencial de hidrogeno
7.5 7.87 7.82 8.55 7.69 7.5 7.4 8.7 8.1 6.9 7.94 7.10 7.35 7.25
6-9 mg/l
7 temperatura °C 30.4 26.8 29.3 28.4 27.5 25.7 25.7 26.3 Condición natural de 0 -3 °
8 Turbidez UTN 10 16 24 10 5 4 9.85 4.75 8.83 7.53 5.75 100 NTU
9 Coliformes totales
NMP/100ml 1600 1900 2000 79 1400 2800 4600 1500 40 369 1785 43 93 1100 1000 NMP/100ml
10 Coliformes fecales
NMP/100ml 0 1801 0 1.75 1.75 1.75 230 46 750 <1.0 10 -3 -3 -3 200 NMP/100ml
68
En la tabla 10 podemos observar la comparación de los datos
recopilados de los años 2008, 2012, 2013 por parte de SENAGUA, 2015
por parte la universidad católica Santiago de Guayaquil y los datos del 2018
de la universidad Estatal de Guayaquil en 3 estaciones de monitoreo que
son P1 entrada al embalse, P2 frente a la torre, P3 frente al embalse, para
la evaluación de la variabilidad de los parámetros físicos, químicos y
microbiológicos del embalse Chongón
Las concentraciones de oxigeno disuelto obtenido que se puede
apreciar en la tabla 10 están por debajo del limite permisible que es de 6
mg/l tantos como los de los años anteriores y los obtenidos en el 2018, la
concentración de oxígeno disuelto presente en el cuerpo de agua es
adecuado para la buena calidad de agua, el oxígeno es fundamental para
toda forma de vida y la cantidad de oxigeno que necesite un organismo va
a depender de la especie y la temperatura del agua.
La Demanda Bioquímica es un bioindicador de calidad de agua de
oxígeno, en el grafico se registraron valores por encima de los límites
permisibles (2mg/l) en los años 2013, 2015 y 2018, nos demuestra que en
años anteriores la cantidad de oxigeno ha sido consumida en
descomposición de la materia orgánica del agua.
Los nutrientes (nitrato, nitrito y fosfato) se encuentran de manera
normal, no sobrepasan los límites permisibles, evitando una eutrofización
por parte de estos parámetros debido a que el fosfato y nitrógeno en los
cuerpos de aguas, estimulan el crecimiento excesivo de algas y plantas
acuática, por lo tanto, aumentaría la población de peces, llevando a
consumir grandes cantidades de oxígeno y además impedirían el paso de
los rayos del sol. A este fenómeno se lo denomina eutrofización.
Los resultados que se observan del potencial del hidrogeno, en los
estudios realizados en los años anteriores y en el actual, ninguno se
encuentra por encima del límite permisible. El pH nos muestra las
69
condiciones del agua si se encuentra en estado ácida o alcalina y esto va
a depender de la concentración de CO2, al disminuir el pH afecta
directamente la calidad de agua y a su vez a la vida acuática como al
hombre por el aumento de los niveles de aluminio (Estándares de Calidad
Ambiental de Agua, 2015.).
En los años de estudios de SENAGUA (2008, 2012, 2013) con
respecto a los coliformes totales, nos demuestra la contaminación que se
desarrolló en esa época, por no tener conocimientos de cuidados del
embalse, obteniendo datos por encima de los límites permisibles, por otro
lado, en el año 2015 (frente de la torre) y 2018 (centro de la torre) se
observa valores por encima debido a la actividad de bombeo que se realiza
a partir del río Daule, existe en la actualidad un mayor cuidado debido a
que tiene como función abastecer agua a la provincia de Santa Elena y al
cantón Villamil Playas. En Coliformes Fecales en la actualidad se
registraron valores que demuestran que no ha venido sufriendo
contaminación por heces de ser humano o animal debido al cuidado que se
tiene diariamente.
70
Capítulo V
5 Conclusiones y recomendaciones
5.1 Conclusiones
Para el cumplimiento de este trabajo de investigación se elaboró un
esquema de muestro que nos permitió obtener muestras representativas
realizando la recolección de muestra de agua desde el mes de julio hasta
diciembre, dos veces por mes en cinco puntos o estaciones estratégicas
del embalse Chongón y preservando la muestra en congelación para su
posterior análisis en el laboratorio de oceanografía química del INP
(Instituto Nacional de Pesca).
Se demostró en este estudio que los parámetros físicos están
directamente relacionados y se observa como la vida acuática mantiene su
condición de vida debido a que los sólidos en suspensión tienen la
concentración baja ayudando a evitar algún tipo de crecimiento de hongos
y bacterias; la conductividad es muy baja por ser agua dulce; y la turbidez
en concentraciones baja no aumenta el área de las impurezas que
destruyen sitios de alimentación y facilita la entrada de luz solar, todos
estos parámetros nos indica que no existe algún tipo de anomalías y se
puede llevar en debido orden el proceso de la cadena trófica.
Se ha determinado los parámetros microbiológicos de coliformes
totales y coliformes fecales en el embalse, obteniendo que en los meses de
septiembre y noviembre la concentración coliformes totales están por
encima de los limites permisible siendo estos microorganismos
contaminantes que produce un riesgo a la salud del ecosistema acuático y
a sus consumidores, pudiendo afectar las actividades pesqueras que se
dan en el embalse, a diferencia de los coliformes fecales durante el periodo
de estudio de seis meses no se presentó concentraciones que pueda
afectar de manera negativa el embalses, siendo un punto favorable a las
71
restricciones de actividades que puedan contaminar el agua para la
preservación y el cuidado del área esparcimiento que se encuentra
alrededor del embalse.
Se ha realizado un análisis comparativo de los estudios realizados
por SENAGUA 2008, 2012, 2013, UCSG 2015 y UG 2018 de los
parámetros fisicoquímicos y microbiológicos del embalse Chongón,
obteniendo como resultado que la demanda bioquímica de Oxigeno se
encuentra por encima del límite permisible y los coliformes totales subieron
en el centro del embalse debido al sistema de bombeo que inicia desde el
río Daule, mientras que el resto de los parámetros se mantuvo la tendencia,
todo es esto debido al cuidado que le dan al embalse Chongón para
abastecer agua a plantas potabilizadoras.
72
5.2 Recomendaciones
Lo principal que se debe hacer para poder prevenir que el agua se
vea afectada en su calidad, es de crear conciencia acerca del cuidado
ambiental e intervenir en todos los casos que afecte de manera negativa al
embalse y en su área de recreación.
Realizar campañas de concientización a los moradores que viven
alrededor del río Daule y cerca del canal Daule, sobre la importancia que
se debe tener en el cuidado de este ecosistema con el fin de preservar la
calidad del agua.
Por parte de las empresas que están a cargo del embalse Chongón,
en la continuación con el mantenimiento desde el canal de alimentación del
embalse hasta los canales de abastecimiento de agua cruda al cantón
Playas y a la provincia de Santa Elena así mismo en el embalse en el
manteamiento de recolección de los lechuguines con el fin de evitar la
decadencia de la calidad de agua así poder evitar el aumento en las
concentraciones de oxígeno disuelto y de nutrientes que son indicadores
de un estado de eutrofización.
Realizar estudios periódicamente de la calidad de agua evaluando
sus parámetros físicos, químicos y microbiológicos a partir desde el río
Daule, en el canal Daule y en el embalse Chongón, con el fin de observar
el comportamiento de la corriente que se realiza por medio de bombeo y
tomar las acciones correspondientes de acuerdo a los resultados.
Realizar un estudio del grado de eutrofización del agua en las salidas
del embalse Chongón con el fin de observar la calidad que se entrega a
través de abastecimiento a la provincia de Santa Elena (Aguapen) y el
cantón Villamil Playas (Hidroplayas).
73
Realizar un estudio incluyendo otros parámetros físicos o químicos
como, por ejemplo: metales pesados con el fin de realizar un índice de
calidad de agua para verificar si hay contaminación por metales pesados.
74
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https://www.upct.es/~minaeees/analisis_aguas.pdf
Anexos I tablas de datos obtenidos de cada uno de los parámetros físicos químicos y microbiológicos
Parámetro: Temperatura
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 °C 26 25 27 25 25 25 26 26 26 25 26 26
E2 °C 25 25 25 25 27 25 26 26 27 25 26 26
E3 °C 25 25 25 25 26 25 26 26 27 25 27 26
E4 °C 25 25 25 26 25 26 27 26 28 24 27 27
E5 °C 25 27 26 26 26 27 27 26 28 24 27 27
Parámetro: Nitrito
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NO2 µM 0,04 0,02 0,04 0,04 0,09 0,04 0,09 0,20 -0,06 0,14 -0,06 0,01
E2 NO2 µM 0,02 0,00 0,07 0,29 0,04 0,02 0,05 0,11 0,14 0,09 -0,06 0,01
E3 NO2 µM 0,02 0,04 0,02 0,13 0,02 0,02 0,57 0,06 0,11 0,11 -0,09 0,01
E4 NO2 µM 0,02 0,02 0,07 0,02 0,04 0,02 0,16 0,14 0,14 0,06 -0,03 0,01
E5 NO2 µM 0,00 0,04 0,02 0,29 0,02 0 0,41 0,11 0,14 0,11 -0,06 0,01
Parámetro: Nitrato
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NO3 µM 0,12 0,09 0,07 1,34 2,89 2,17 0,66 -0,30 0,15 -0,59 0,25 0,94
E2 NO3 µM 0,12 0,11 0,11 2,65 2,05 0,37 0,2 -0,31 11,97 -0,40 0,28 0,35
E3 NO3 µM 0,12 0,1 0,09 0,4 1,21 0,32 2,14 -0,42 0,26 -0,41 0,58 0,45
E4 NO3 µM 0,05 0,96 -0,01 0,54 4,17 0,15 -0,15 -0,27 -0,43 -0,12 0,65 0,87
E5 NO3 µM 0,05 0,26 -0,02 0,47 0,89 0,3 1,12 -0,20 -0,39 -0,09 2,46 0,58
Parámetro: Fosfato
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 PO4 µM 0,43 0,38 0,26 0,52 1,98 0,48 0,14 0,58 0,62 0,58 0,61 0,52
E2 PO4 µM 0,38 0,34 0,26 0,89 0,52 0,44 0,14 0,58 0,62 0,62 0,52 0,31
E3 PO4 µM 0,43 0,38 0,26 0,56 0,56 0,48 0,19 0,49 0,58 0,58 0,70 0,52
E4 PO4 µM 0,48 0,38 0,32 0,48 0,65 0,48 0,14 0,44 0,67 0,22 0,61 0,48
E5 PO4 µM 0,43 0,38 0,37 0,61 0,61 0,44 0,19 0,62 0,62 0,67 0,83 0,48
Parámetro: Silicato
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 SiO4 µM 83,8 75,82 57,94 49,76 25,85 47,97 60,93 55,79 42,64 21,32 46,15 63,17
E2 SiO4 µM 66,86 69,98 46,41 13,17 35,45 59,67 59,55 39,43 38,90 56,17 57,96 47,21
E3 SiO4 µM 66,94 68,83 47,96 20,57 54,8 45,12 63,31 16,89 45,09 55,56 47,21 39,97
E4 SiO4 µM 70,23 59,46 56,91 29,02 42,6 42,44 57,86 18,42 57,85 50,06 71,06 38,83
E5 SiO4 µM 44,16 51,23 50,45 48,05 44,15 40,08 66,23 36,22 27,74 68,17 52,50 52,50
Parámetro: Oxígeno Disuelto
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 OD ml/l 6,1 5,64 6,17 3,61 6,71 5,41 5,82 6,58 5,82 5,82 5,28 4,01
E2 OD ml/l 5,93 5,79 6,15 3,59 6,42 6,25 5,06 5,63 5,06 5,06 5,06 4,2
E3 OD ml/l 6,11 5,68 6,46 3,81 6,12 6,66 3,78 6,91 3,78 3,78 4,40 4,81
E4 OD ml/l 6,05 5,65 6,54 4,53 6,23 6,93 5,68 6,86 5,68 5,68 5,03 4,96
E5 OD ml/l 5,46 5,7 6,27 3,96 5,86 5,58 4,47 6,56 4,47 4,47 4,03 3,89
Parámetro: Amonio
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NH4 µM 3,46 2,37 6,35 4,35 3,35 2,35 4,74 1,64 2,32 -0,74 1,21 2,18
E2 NH4 µM 3,38 -0,17 5,86 17,3 7,75 2,2 3,54 0,45 4,08 -0,74 0,61 0,42
E3 NH4 µM 0,42 -0,34 0,35 7 24,65 1,55 1,03 0,34 0,96 4,25 0,42 0,85
E4 NH4 µM -0,34 0,17 -0,02 5,45 6,25 1,5 0,4 0,91 2,04 0,79 1,15 2,24
E5 NH4 µM -0,34 -0,59 -0,06 3,1 2,75 4,55 0,23 0,79 2,04 0,28 5,09 0,12
Parámetro: DBO 5 dias
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 DBO ml/l 1,91 3,76 0,45 2,78 4,01 2,78 3,21 2,97 1,6
E2 DBO ml/l 2,57 3,7 0,53 1,81 3,68 1,81 3,09 3,13 2,6
E3 DBO ml/l 2,26 3,25 0,38 1,16 3,64 1,16 3,79 3,10 2,01
E4 DBO ml/l 2,71 3,61 0,44 1,53 3,75 1,53 3,97 3,20 3,3
E5 DBO ml/l 1,95 3,65 0,48 1,68 3,85 1,68 3,31 2,60 3,65
Parámetro: Turbidez
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NTU 8 8,49 3,27 8,13 6,8 9,54 8,83 4,80
E2 NTU 8 7,69 2,91 9,9 8,8 9,49 8,17 8,59
E3 NTU 11 8,35 2,03 8,18 8,63 5,62 7,53 4,47
E4 NTU 9 7,16 3,67 7,38 8,05 7,51 7,27 6,67
E5 NTU 9 8,75 4,19 8,61 13,53 6,89 5,75 5,59
Parámetro: Solidos en suspensión
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 20 10 30 30 30 30 20 10
E2 20 20 20 20 20 30 30 20
E3 10 20 20 20 10 20 40 20
E4 20 10 10 20 10 10 10 30
E5 10 20 10 20 20 10 20 20
Parámetro: Coliformes Totales
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NMP/100ml 43 12 21 21 34 11 15
E2 NMP/100ml 93 9,3 290 460 15 34 43
E3 NMP/100ml 64 15 240 150 43 44 39
E4 NMP/100ml 1100 23 36 150 64 36 15
E5 NMP/100ml 43 15 15 20 23 14 43
Parámetro: Coliformes Fecales
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 NMP/100ml -3 -3 -3 -3 -3 -3 -3
E2 NMP/100ml -3 -3 -3 -3 -3 -3 -3
E3 NMP/100ml -3 -3 -3 -3 -3 -3 -3
E4 NMP/100ml -3 -3 -3 -3 -3 -3 -3
E5 NMP/100ml -3 -3 -3 -3 -3 -3 -3
Parámetro: Conductividad
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 µS/cm 0,007735 0,004356 0,004180 0,004340 0,003884 0,004237 0,003771 0,003780 0,003966 0,005423 0,003451 0,00434
E2 µS/cm 0,004968 0,004478 0,004105 0,004618 0,003915 0,004258 0,003928 0,003779 0,004180 0,005666 0,003465 0,00382
E3 µS/cm 0,005030 0,00447 0,004106 0,004851 0,003878 0,004516 0,003820 0,003972 0,004268 0,006545 0,003495 0,004312
E4 µS/cm 0,004981 0,04368 0,004277 0,004731 0,003778 0,004165 0,003644 0,003922 0,003810 0,006042 0,005676 0,003468
E5 µS/cm 0,004592 0,00437 0,004032 0,005533 0,003778 0,003760 0,003726 0,003649 0,003798 0,003675 0,004620 0,00357
Parámetro: pH
Estaciones Unidades
Meses de Muestreos
Julio Agosto Septiembre Octubre Noviembre Diciembre
14/7/2018 28/7/2018 11/8/2018 25/8/2018 8/9/2018 22/9/2018 6/10/2018 20/10/2018 6/11/2018 24/11/2018 1/12/2018 15/12/2018
E1 pH 6,960 7,140 7,380 7,512 7,559 7,201 7,465 7,670 7,236 6,932 7,600 7,640
E2 pH 6,840 6,900 7,500 7,554 7,383 6,945 7,004 7,635 7,016 7,002 7,385 6,940
E3 pH 6,840 6,900 7,550 7,654 7,469 6,901 6,123 7,463 7,01 7,203 7,408 6,694
E4 pH 6,880 6,900 7,620 7,051 7,330 6,751 7,161 7,345 7,142 7,063 7,592 6,848
E5 pH 7,000 6,960 7,510 7,601 7,051 7,338 7,001 7,729 7,068 7,208 7,950 6,693
Anexo II – Evidencias
IMAGEN I: PARQUE EL LAGO IMAGEN II: MUESTREO
EMBALSE CHONGÓN EMBALSE CHONGÓN
IMAGEN III: MEDIO DE TRANSPORTE IMAGEN IV: RECOLECION DE MUESTRAS
EMBALSE CHONGÓN INSTITUTO NACIONAL DE PESCA
IMAGEN V: PRUEBAS MICROBIOLOGICAS IMAGEN VI; AGAR COLIFORMES INSTITUTO NACIONAL DE PESCA INSTITUTO NACIONAL DE PESCA
IMAGEN VII: MUESTRAS MICROBIOLOGICAS IMAGEN VIII: ANALISIS INSTITUTO NACIONAL DE PESCA INSTITUTO NACIONAL DE PESCA
IMAGEN IX: RECOLECCIÓN DE DATOS SENAGUA
