1
DENOMINACIÓN DEL PROYECTO:
“Desarrollo de un Centro de Investigación y Servicios en Nuez Pecán en la
Provincia de Entre Ríos”
RESULTADOS
AISLAMIENTOS
Los productores intervinientes en el proyecto fueron visitados (Figura 1), junto con
personal de la Estación Experimental INTA Concordia, y se recorrieron sus fincas
realizando un monitoreo de desórdenes sanitarios presentes, lo que permitió
revelar información con respecto a las enfermedades presentes, su incidencia y/o
severidad, las condiciones de cultivo, las variables ambientales, entre otros.
Figura 1. Visita a productores intervinientes en el proyecto.
Durante las visitas también se tomaron muestras para su procesamiento en el
Laboratorio.
2
Se tomaron muestras de tallo, hojas y frutos para describir los síntomas y signos e
identificar agentes responsables de los mismos y determinar enfermedades claves
provenientes del campo. El trabajo con estas muestras comenzó con la evaluación
de distintas técnicas de siembras y asilamientos para el diagnóstico de los
desórdenes desconocidos.
Para facilitar la expresión de microorganismos, distintas muestras fueron colocadas
en cámara húmeda (Figura 2). Esto consistió en colocar esas muestras en bandeja
plástica de 26,5 cm de largo, 18 cm de ancho y 5 cm de alto de dimensiones, se
incorporó en su interior una delgada capa de algodón y encima una toalla de papel
absorbente. Posteriormente se humidificó y se colocó la muestra en estudio, se
rotuló y el conjunto se incubó en condiciones óptimas de temperatura, humedad
relativa y fotoperiodo, según requerimiento, para que se desarrolle la enfermedad.
Figura 2. Acondicionamiento de muestras en cámaras húmedas.
3
A partir de las expresiones desarrolladas en las cámaras húmedas se realizó la
siembra medios de cultivo para dar inicio al proceso de aislamiento e identificación
(Figura 3).
Figura 3. Siembra de muestras en medios de cultivo.
Simultáneamente se realizó siembra directa de las muestras, obteniéndose
desarrollos como los señalados en la (Figura 4).
4
Figura 4.Siembra directa de las muestras.
5
Luego, se llevaron adelante numerosos repiques en tubos pico de flauta y
purificación de cultivos (Figura 5).
Figura 5. Repiques en tubos pico de flauta y purificación de cultivos.
Una vez aislado el microorganismo, se procedió con la purificación de los cultivos.
Para ello, se recurrió a la técnica de cultivo a partir de una única espora (cultivos
monospóricos).
6
A partir de una suspensión concentrada de microorganismos se realizaron una serie
de diluciones para obtener una menor concentración de esporas. Cada una de estas
diluciones se sembró en superficie en una placa con medio agar-agua. Transcurridas
las 24 horas de incubación se observaron las esporas al microscopio para luego ser
trasladadas a una placa con un medio de cultivo apto para el desarrollo de las
mismas.
Mediante observación macro y microscópica (Figura 6) y el empleo de claves
taxonómicas se fue realizando la identificación de microorganismos encontrados.
Figura 6. Lupa y microscopios utilizados para las observaciones macro y
microscópicas.
El trabajo minucioso y sistemático realizado permitió obtener cepas de aisladas de
nuez pecán cultivas en la provincia de Entre Ríos.
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SÍNTOMAS
Durante la visita al establecimiento y en la recorrida en campo, junto al productor se
tomaron muestras de fruto, tallo y hoja con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, insectos en hojas, como así también
se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades, entre otros.
Posteriormente, las muestras fueron acondicionadas para su estudio fitopatológico.
FINCA 1
En la visita se encontraron ramas secas, con hojas adheridas, afectando a las
distintas variedades. Este síntoma se asoció a daño por insectos en ramas
(“taladros”), que generaron galerías internas y provocó la muerte de ramas
terminales. No fue posible colectar ejemplares de larvas o adultos para su
identificación.
Material recolectado:
Variedad Material recolectado
Choctaw
Descripción de síntomas:
8
Variedad Choctaw: En hoja, se encontró necrosis con borde irregular, de hasta 3 cm
de largo y 1 cm de ancho. Además se observó clorosis marginal y pequeñas
puntuaciones negras.
En los frutos verdes se observaron con síntomas “típicas de sarna”.
9
FINCA 2
Se tomaron muestras de frutos y hojas con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, insectos en hojas, como así también
se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades, entre otros.
Material recolectado:
Variedad Material recolectado
Success Frutos, algunos con síntomas de
sarna y costras en la superficie.
Shoshoni
Descripción de síntomas:
Variedad Succes: frutos con sarna, algunos vanos, con pudrición seca y coloración
negra de los embriones. Otros con costras en la superficie del fruto. Las mismas
presentaron aspectos de placas corchosas, lignificadas.
Variedad Shoshoni: Síntoma A. Las hojas presentan fumagina en el haz,
encontrándose presencia de pulgones en el envés.
Síntoma B: en folíolos se observó necrosis con borde irregular, de hasta 4 cm de
largo y 1 cm de ancho ubicadas en ambos lados de la nervadura central, esta no fue
afectada.
A B
10
FINCA 3
Durante la visita al establecimiento y en la recorrida en campo, junto al productor se
tomaron muestras de fruto, tallo y hoja con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, insectos en hojas, como así también
se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades, entre otros.
Material recolectado:
Varieda
d
Material recolectado
Harris
Súper
Descripción de síntomas:
Harris Súper:
Síntoma A: se observó clorosis en toda la hoja.
Síntoma B: en folíolos se observó necrosis con borde irregular, de hasta 5 cm de
largo y 0,7 cm de ancho ubicadas a lo largo y en ambos lados del limbo. La
nervadura central no fue afectada.
De los frutos y raquis se aislaron varios patógenos de origen fúngico. Se identificó
Colletotrichum sp., agente causal de antracnosis.
A B
11
FINCA 4
Durante la visita al establecimiento y en la recorrida en campo, junto al productor se
tomaron muestras de fruto, tallo y hoja con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, insectos en hojas, como así también
se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades, entre otros.
Material recolectado:
Variedad Material recolectado
Cheyenne
Descripción de síntomas:
Variedad Cheyenne: En hojas, se observó manchas necróticas con tamaño y forma
variable, borde irregular, de hasta 1,5 cm de largo y 0,5 de ancho ubicadas a lo largo
y en ambos lados del limbo. La nervadura central fue afectada.
De los frutos recolectados, se aislaron varios patógenos de origen fúngico. Se
identificó Colletotrichum sp., agente causal de antracnosis.
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FINCA 5
Durante la visita al establecimiento y en la recorrida en campo, junto al productor se
tomaron muestras de fruto, tallo y hoja con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, insectos en hojas, como así también
se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades, entre otros.
Material recolectado:
Variedad Hojas
Mohawk
Descripción de síntomas:
Variedad Mohawk:
Síntoma A: Se observó en hoja necrosis con borde irregular, de hasta 2,5 cm de
largo y 1cm de ancho ubicadas en ambos lados de la nervadura y en ambos lados del
limbo. La nervadura central no fue afectada.
Síntoma B: Por otro lado, en folíolos se observaron manchas con bordes oscuros
irregulares con centro plateado, en cuyo envés presenta tejido necrótico. Se aislaron
colonias con micelio de color gris oscuro, que no se pudo identificar.
A B
13
FINCA 6
Material recolectado:
Variedad Material recolectado
Choctaw Ramas con muerte regresiva y
necrosis interna.
Mahan
Mohawk
Descripción de síntomas:
Variedad Mahan:
Síntoma A: Las hojas presentan fumagina en el haz, encontrándose presencia de
pulgones en el envés.
Síntoma B: En hojas, se observó necrosis con borde irregular, de hasta 4 cm de largo
y 2 de ancho ubicadas a lo largo y en ambos lados del limbo. La nervadura central no
fue afectada.
A
B
AS
B
14
Se aislaron colonias con micelio de color blanco y otras con micelio de color gris
oscuro elevado, cuya identificación quedarán para posteriores estudios.
Variedad Mahawk:
Síntoma A y B: Se halló en hojas lesiones necróticas con bordes irregulares,
distribuidas por toda la hoja. La nervadura central no fue afectada.
15
FINCA 7
Material recolectado:
Variedad Material recolectado
Desirable
Starking Ramas con necrosis en la medula.
Descripción de síntomas:
Variedad Desirable: Se observó en la hoja manchas necróticas localizadas en las
puntas y los extremos. La nervadura central fue afectada.
Se aislaron colonias con micelio de color blanquesino y otras con micelio de color
gris elevado, no identificados. También se aislaron levaduras.
Variedad Succes: Se halló ramas con necrosis en la medula.
A partir de las siembras realizadas se aisló e identifico a Fusarium sp.
16
FINCA 8
Durante la visita al establecimiento y en la recorrida en campo, junto al productor se
tomaron muestras de fruto, tallo y hoja con síntomas de enfermedad. También se
fotografiaron in situ, sintomatología observada, daño por granizo, insectos en hojas,
como así también se registraron el manejo de los lotes con las distintas variedades,
entre otros.
Material recolectado:
Varieda
d
Material
recolectado
Succes
Pawnee
Starkin
g
17
Mahan
Mohaw
k
Descripción de síntomas:
Variedad Succes: en fruto se observó manchas necróticas, profundas con abundante
micelio blanco. El agente causal identificado fue Trichotecium sp.
En hojas, se observó necrosis con borde irregular, de hasta 2,5 cm de largo y 0,7 de
ancho ubicadas a lo largo y en ambos lados del limbo. La nervadura central no fue
afectada.
A partir de las siembras realizadas se aisló e identifico a Fusarium sp.
Variedad Pawnne: en la superficie del fruto se observó placas corchosas de color
marrón claro, con tejido quebradizo.
En hoja, se encontró necrosis con borde irregular, en un solo lado de la nervadura
de hasta 3 cm de largo y 0,8 cm de ancho. Se aislaron colonias con micelio de color
rosa y otras con micelio de color gris oscuro, no identificadas.
B A
A
18
Variedad Starking: En folíolos se observaron manchas necróticas pequeñas con
bordes definidos y color marrón oscuro, en cuyo envés presenta tejido necrótico. La
nervadura central también presentaba manchas necróticas.
Variedad Mahan y Variedad Mohawk: En folíolos se observaron manchas con
bordes definidos (Figura A) con centro plateado, en cuyo envés presenta tejido
necrótico. De las siembras se obtuvieron numerosas colonias de forma y aspectos
diferentes, que se ilustran a continuación.
En muestras con síntomas necróticos (Figura B), alargados en los márgenes y puntas,
con aspecto de quemado. Se aislaron colonias de Colletotrichum sp. agente causal
de antracnosis.
19
PATÓGENOS PRESENTES EN FRUTO DE NUEZ PECAN
Objetivo
Identificación de microorganismos patógenos asociados a la almendra y a la cáscara
de frutos de cuatro variedades de pecan: Mahan, Harris Súper, Kernodle y Pawnee,
cultivados en la provincia de Entre Ríos.
Materiales y Métodos
Desinfección de las muestras
Durante la campaña 2015, se recolectaron muestras de frutos de pecan de las
variedades Mahan, Harris Súper, Kernodle y Pawnee, con o sin síntomas de
enfermedad en sus embriones.
Los frutos seleccionados se enjuagaron con agua destilada y luego fueron
desinfectados superficialmente con una solución de etanol al 96 % por 10 minutos.
A continuación se flamearon las nueces y se procedió con la apertura aséptica de las
mismas (Larre, 2006). Luego de este tratamiento de desinfección se tomaron
muestras de tejido vegetal, asintomático y visiblemente enfermo y se sembraron en
medio de cultivo agar papa glucosado 2% (APG) (Britania) suplementado con ácido
láctico 25 % e incubados durante 10 días a 28°C en oscuridad (Figura 1). Además, los
frutos pelados y con cáscara se colocaron en cámaras húmedas, para favorecer el
desarrollo óptimo del agente causal, en condiciones controladas de humedad
relativa y temperatura.
20
Figura 1. Nuez de pecan: almendras asintomática (izquierda) y con síntomas visibles
(derecha).
Aislamiento
Para los aislamientos fúngicos, a partir de los frutos con presencia de mohos se
extrajeron muestras de micelio o estructuras de reproducción mediante raspado de
la superficie, las que fueron cultivadas en placas de Petri en medio APG 2%
suplementado con ácido láctico 25% durante 10 días a 28°C en estufa marca Raypa
(España).
Identificación
La etiología de todos los microorganismos patógenos asociados con enfermedades
de postcosecha fue determinada sobre los síntomas y sobre las características de los
signos tales como el tipo de estructuras de fructificación de origen asexual,
presencia o ausencia de micelio y morfología de los conidios mediante preparados
microscópicos y el empleo de claves taxonómicas (Teviotdale et al, 2002; Terabe et
al 2007; Larre 2006).
21
Resultados
A partir de los frutos con y sin cáscara, los patógenos identificados fueron
Aspergillus, Cladosporium, Epicoccum, Pestalotia, Colletotrichum, Penicillium,
Rhizopus, Trichothecium, y Fusarium aislados o en infecciones mixtas (Figura 2).
Figura 2. Microflora presente en fruto de nuez pecán con y sin cáscara.
La identificación del agente responsable y de los síntomas que induce en el fruto,
constituyen el paso inicial para caracterizar las enfermedades de postcosecha en
pecan. Desde el punto de vista práctico, el reconocimiento de los síntomas
asociados a un determinado agente causal, complementado con conocimientos
epidemiológicos, permitirán la toma de decisiones de control en forma rápida y
eficaz.
22
EFICACIA DE CONTROL DE FUNGICIDAS
Evaluación “in vitro” de fungicidas: Eficacia comparativa de fungicidas para el
control de Fusicladium sp., agente causal de sarna en pecán.
Objetivo
Evaluar la eficacia de fungicidas en el control de Fusicladium sp.
Metodología
Para la prueba “in vitro”, se utilizó un cultivo puro de Fusicladium sp. de 20 días de
edad, aislados y purificados previamente de muestras fruto de nuez pecan.
Los fungicidas seleccionados según literatura consultada y en función a entrevistas
realizadas a distintos productores y técnicos fueron:
Carbendazim
Tebuconazole
Amistar Top
Sphere Max.
Por cada fungicida utilizado se evaluaron las concentraciones: 0 (testigo), 0,1; 1; 10 y
100 ppm.
El diseño experimental se realizó con 5 repeticiones por tratamiento a excepción del
tratamiento testigo que tuvo 8 repeticiones. Las cajas de Petri fueron incubadas a
una temperatura 25°C ± 1 y fotoperiodo controlado.
23
Figura 1. Preparación del material.
Finalizado el periodo de incubación y cuando se visualizó que el micelio del hongo
en el tratamiento testigo alcanzó la mitad de la caja de Petri se midió el diámetro de
las colonias.
Para cuantificar el diámetro de las colonias se utilizó un calibre digital profesional
Black Jack modelo D056.
24
Figura 2. Placas con Fusicladium sp. con diferentes fungicidas y concentraciones.
Los diámetros de las colonias obtenidos para cada uno de los tratamientos fueron
los que se muestran en la tabla a continuación.
Los tratamientos resaltados en gris fueron los que tuvieron una mayor inhibición del
crecimiento micelial.
Fungicida Dosis Diámetro
(mm)
Carbendazim
0 46
0,1 34
1 47 10 44
100 44
Tebuconazole
0 46
0,1 44 1 36
10 23
100 12
Sphere
0 46
0,1 44 1 37
25
10 27 100 9
Amistar Top
0 46 0,1 39
1 34
10 26 100 12
26
Evaluación “in vitro” de fungicidas: Eficacia comparativa de fungicidas para el
control de Colletotrichum spp., agente causal de antracnosis en pecán.
Objetivo
Evaluar la eficacia de fungicidas en el control de Colletotrichum spp.
Metodología
Para la prueba “in vitro”, se utilizó un cultivo puro de Colletrotrichum spp. de 10
días de edad, aislados y purificados previamente de muestras de fruto y hoja de
nuez pecan.
Los fungicidas fueron seleccionados según literatura consultada y en función a
entrevista realizada a distintos productores y técnicos fueron:
Carbendazim,
Tebuconazole,
Amistar Top,
Boscalid,
Priaxor.
Se evaluaron por cada uno de ellos las concentraciones: 0,1; 1; 10 y 100 ppm.
A continuación se procedió a extraer discos con micelio de 0,6 cm. que fueron
colocados en el centro de las cajas de Petri de 9 cm sobre el medio de PDA para
realizar el ensayo con los productos químicos in vitro.
27
Figura 1. Preparación del material.
El diseño experimental se realizó con 5 repeticiones por tratamiento a excepción del
tratamiento testigo que tuvo 8 repeticiones. Las cajas de petri fueron incubadas a
una temperatura 25°C ± 1 y fotoperiodo controlado.
Finalizado el periodo de incubación y cuando se visualizó que el micelio del hongo
en el tratamiento testigo alcanzó el borde de las cajas de Petri se midió el diámetro
de las colonias.
Para cuantificar el diámetro de las colonias se utilizó un calibre digital profesional
Black Jack modelo D056.
28
Testigo 0,1 ppm 1 ppm 10 ppm 100 ppm
Figura 2. Placas con Colletotrichum sp. con diferentes fungicidas y concentraciones.
Los diámetros de las colonias obtenidos para cada uno de los tratamientos fueron
los que se muestran en la tabla a continuación.
Los tratamientos resaltados en gris fueron los que tuvieron una mayor inhibición del
crecimiento micelial.
Fungicida Dosis Diámetro
(mm)
Amistar
0 79
0,1 56 1 33
10 17 100 5
Boscalid
0 79
0,1 81 1 81
10 76
29
100 81
Carbendazim
0 79
0,1 42 1 Contaminado
10 Contaminado 100 Contaminado
Priaxor
0 79
0,1 71 1 51
10 32 100 25
Tebuconazole
0 79 0,1 77
1 54
10 17 100 16
30
Evaluación “in vitro” de fungicidas: Eficacia comparativa de fungicidas para el
control de Fusarium sp., agente causal de mancha foliar en pecán.
Objetivo
Evaluar la eficacia de fungicidas en el control de Fusarium sp.
Metodología
Para la prueba “in vitro”, se utilizó un cultivo puro de Fusarium sp. de 10 días de
edad, aislados y purificados previamente de muestras hoja de nuez pecan.
Los fungicidas fueron seleccionados según literatura consultada y en función a
entrevista realizada a distintos productores y técnicos fueron:
Carbendazim,
Tebuconazole,
Iprodione
Cercobin.
Cada uno de estos fungicidas se evaluaron las concentraciones: 0 (testigo); 0,1; 1; 10
y 100 ppm.
A continuación se procedió a extraer discos con micelio de 0,6 cm que fueron
colocados en el centro de las cajas de Petri sobre el medio de PDA para realizar el
ensayo con los productos químicos in vitro.
El diseño experimental se realizó con 5 repeticiones por tratamiento a excepción del
tratamiento testigo que tuvo 8 repeticiones. Las cajas de Petri fueron incubadas a
una temperatura 25°C ± 1 y fotoperiodo controlado.
31
Finalizado el periodo de incubación y cuando se visualizó que el micelio del hongo
en el tratamiento testigo alcanzó el borde de las cajas de Petri se midió el diámetro
de las colonias (Figura 1).
Para cuantificar el diámetro de las colonias se utilizó un calibre digital profesional
Black Jack modelo D056.
Figura 1. Placas con Fusariumum sp. con diferentes fungicidas y concentraciones.
Los diámetros de las colonias obtenidos para cada uno de los tratamientos fueron
los que se muestran en la tabla a continuación.
Los tratamientos resaltados en gris fueron los que tuvieron una mayor inhibición del
crecimiento micelial.
Fungicida Dosis Diámetro
(mm)
Carbendazim
0 83 0,1 62
1 11 10 6
32
100 6
Tebuconazole
0 83
0,1 47 1 57
10 6
100 8
Cercobin
0 88
0,1 80 1 70
10 67 100 43
Irpdine
0 88
0,1 54 1 75
10 40 100 37
33
DIAGNÓSTICO DE ESTADO NUTRICIONAL:
Al Laboratorio LAMAS fueron remitidas muestras de suelo y foliar para su análisis.
Cada una de las muestras fue tomada por el productor y/o su técnico asesor de la
finca. A cada productor se le proporcionó instructivo para toma de muestra y
envases rotulados.
Análisis de suelo.
Los ensayos realizados fueron:
Ensayos Profundidad de muestreo
0 - 30 cm 30 - 60 cm 60 - 100 cm
Carbono total y materia
orgánica. Nitrógeno, fósforo,
hierro y zinc.
X
pH y conductividad eléctrica X X X
Porcentaje de limo, arena y
arcilla; textura X X X
Bases intercambiables: Calcio,
Magnesio, sodio, potasio y
capacidad de intercambio
catiónico
X X X
Análisis foliar
Los ensayos realizados y la metodología empleada fueron:
34
Fósforo: Método colorimétrico.
Nitrógeno total: Kjeldahl.
Calcio, magnesio, potasio, hierro, cobre, zinc: Espectroscopia de absorción atómica
con llama / horno de grafito (Atomic Absorption Spectrophotometry Cookbook
Shimadzu Corporation, Standard Methods, 1999).
Cada uno de los ensayos se realizó por triplicado.
Resultados
Los resultados de las muestras fueron remitidos a los productores correspondientes.
Por razones de confidencialidad no se identifican a los productores.
35
Suelo
Ensayo
Muestra
1220 1221 1222
Identificación del laboratorio
0-30 30-60 60-100
pH 6,57 ± 0,02 6,29 ± 0,11 5,59 ± 0,06
Conductividad eléctrica (mS/cm)
0,29 ± 0,01 0,24 ± 0,01 0,41 ± 0,02
Fósforo extractable (mg/kg)
0,17 ± 0,02 - -
Nitrógeno total (g/100g)
0,21± 0,01 - -
Sodio (cmol(+)/kg) 0,24 ± 0,17 0,56 ± 0,04 0,48 ± 0,19
Potasio (cmol(+)/kg)
0,81 ± 0,15 0,58 ± 0,07 0,57 ± 0,13
Magnesio (cmol(+)/kg)
2,76 ± 0,22 4,72 ± 0,81 5,63 ± 0,01
Calcio (cmol(+)/kg) 12,83 ± 0,96 17,33 ± 2,50 32,06 ± 1,63
Carbono total (%) 2,19 ± 0,12 - -
Materia orgánica (%)
3,77 ± 0,21 - -
Hierro (mg/kg) 3573,81 ± 87,06 - -
Zinc (mg/kg) 4,75 ± 0,27 - -
Textura
Arena (%)
Limo (%)
Arcilla (%)
74
16
10
78
8
14
78
6
16
Franco arenoso Franco arenoso Franco arenoso
36
Ensayo
Muestra
1214 1215 1216
Identificación del laboratorio
0-30 30-60 60-100
pH 5,33 ± 0,04 7,58 ± 0,04 6,56 ± 0,08
Conductividad eléctrica (mS/cm)
0,37 ± 0,04 0,22 ± 0,02 0,34 ± 0,08
Fósforo extractable (mg/kg)
0,14 ± 0,01 - -
Nitrógeno total (g/100g)
0,18 ± 0,00 - -
Sodio (cmol(+)/kg) 0,03 ± 0,00 0,08 ± 0,00 0,35 ± 0,20
Potasio (cmol(+)/kg)
0,39 ± 0,00 0,42 ± 0,15 1,05 ± 0,12
Magnesio (cmol(+)/kg)
1,11 ± 0,03 1,59 ± 0,07 4,06 ± 0,20
Calcio (cmol(+)/kg) 5,72 ± 0,27 6,95 ± 1,04 15,59 ± 0,18
Carbono total (%) 2,32 ± 0,17 - -
Materia orgánica (%)
4,00 ± 0,30 - -
Hierro (mg/kg) 2802,04 ± 57,52 - -
Zinc (mg/kg) 3,23 ± 0,200 - -
Textura
Arena (%)
Limo (%)
Arcilla (%)
50
25
25
50
24
26
51
22
27
Franco arcillo
arenoso Franco arcillo
arenoso Franco arcillo
arenoso
37
Ensayo
Muestra
0081 0082 0083
Identificación del laboratorio
0-30 30-60 60-100
pH 5,70 ± 0,03 5,54 ± 0,10 5,03 ± 0,02
Conductividad eléctrica (mS/cm)
0,17 ± 0,05 0,10 ± 0,04 0,09 ± 0,01
Fósforo extractable (mg/kg)
0,35 ± 0,01 - -
Nitrógeno total (g/100g)
0,17 ± 0,01 - -
Sodio (cmol(+)/kg) 0,16 ± 0,05 0,21 ± 0,11 0,33 ± 0,01
Potasio (cmol(+)/kg)
0,99 ± 0,07 1,25 ± 0,04 0,97 ± 0,10
Magnesio (cmol(+)/kg)
1,27 ± 0,02 2,34 ± 0,02 3,33 ± 0,26
Calcio (cmol(+)/kg) 7,64 ± 0,13 10,05 ± 0,05 13,84 ± 2,44
CIC (cmol(+)/kg) 10,08 13,91 18,48
Carbono total (%) 2,36 ± 0,31 - -
Materia orgánica (%)
4,76 ± 0,54 - -
Hierro (mg/kg) 3772,39 ± 401,44 - -
Zinc (mg/kg) 17,12 ± 1,47 - -
Textura
Arena (%)
Limo (%)
Arcilla (%)
69
23
7
58
24
16
13
73
11
Arenoso franco Franco arenoso Franco limoso
38
Ensayo
Muestra
0101 0102 0103
Identificación del laboratorio
0-30 30-60 60-100
pH 5,37 ± 0,04 5,55 ± 0,05 6,22 ± 0,06
Conductividad eléctrica (mS/cm)
0,20 ± 0,01 0,11 ± 0,03 0,24 ± 0,08
Fósforo extractable (mg/kg)
0,21 ± 0,01 - -
Nitrógeno total (g/100g)
0,06 ± 0,00 - -
Sodio (cmol(+)/kg) 0,11 ± 0,00 0,01 ± 0,00 0,08 ± 0,02
Potasio (cmol(+)/kg)
0,21 ± 0,00 0,15 ± 0,00 0,10 ± 0,00
Magnesio (cmol(+)/kg)
0,20 ± 0,00 0,17 ± 0,00 0,26 ± 0,01
Calcio (cmol(+)/kg) 0,37 ± 0,03 0,72 ± 0,02 1,01 ± 0,19
CIC (cmol(+)/kg) 0,91 1,05 1,46
Carbono total (%) 1,40 ± 0,68 - -
Materia orgánica (%)
2,41 ± 1,18 - -
Hierro (mg/kg) 1206,52 ± 149,52 - -
Zinc (mg/kg) 5,43 ± 1,57 - -
Textura
Arena (%)
Limo (%)
Arcilla (%)
87
2
2
95
4
1
91
7
1
Arenoso/ Franco arenoso Arenoso Arenoso
39
Foliar
Ensayo Muestra
1213 0010 0008
Nitrógeno (%) 2,67 ± 0,02 0,0002 ± 0,00 0,0002 ± 0,00
Fósforo (%) 0,11 ± 0,00 0,06 ± 0,00 0,06 ± 0,00
Potasio (%) 0,32 ± 0,07 0,20 ± 0,07 0,48 ± 0,00
Calcio (%) 3,08 ± 0,94 2,01 ± 0,04 3,19 ± 0,13
Magnesio (%) 0,59 ± 0,03 0,21 ± 0,00 0,35 ± 0,06
Hierro (mg/kg) 99,14 ± 9,30 0,007 ± 0,00 0,01 ± 0,00
Cobre (mg/kg) 4,59 ± 0,42 0,0004 ± 0,00 0,0001 ± 0,00
Zinc (mg/kg) 67,21 ± 5,98 0,005 ± 0,00 0,01 ± 0,00
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