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UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA AGRÓNOMA RESPUESTA DE TRES VARIEDADES DE NABO (Brassica rapa L.) FUKU KOMACHI, TOKYO CROSS Y JUST RIGHT A LA INFESTACIÓN DE Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera, Aphididae) EN CONDICIONES DE CAMPO. Tesis para optar el título de: INGENIERO AGRÓNOMO EMPETOCLES ARQUIMEDES EUSEBIO SALAS TRUJILLO - PERÚ 2014

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i

UNIVERSIDAD PRIVADA ANTENOR ORREGO

FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS

ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍA AGRÓNOMA

RESPUESTA DE TRES VARIEDADES DE NABO (Brassica

rapa L.) FUKU KOMACHI, TOKYO CROSS Y JUST RIGHT A LA

INFESTACIÓN DE Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera,

Aphididae) EN CONDICIONES DE CAMPO.

Tesis para optar el título de:

INGENIERO AGRÓNOMO

EMPETOCLES ARQUIMEDES EUSEBIO SALAS

TRUJILLO - PERÚ

2014

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ii

La presente tesis ha sido revisada y aprobada por el siguiente Jurado:

Dr. Martín Delgado Junchaya

PRESIDENTE

M. Sc. José Holguín Del Río

SECRETARIO

Ing. Cesar Morales Skrabonja

VOCAL

Dr. Juan Carlos Cabrera La Rosa

ASESOR

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iii

DEDICATORIA

Dedico este proyecto de tesis a Dios y a mis

padres. A Dios porque ha estado conmigo a

cada paso que doy, cuidándome y dándome

fortaleza para continuar, a mis padres,

quienes a lo largo de mi vida han velado por

mi bienestar y educación siendo mi apoyo en

todo momento. Los amo con mi vida.

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AGRADECIMIENTO

El presente trabajo de tesis primeramente me gustaría agradecerte a ti

Dios por bendecirme para llegar hasta donde he llegado, porque hiciste

realidad este sueño anhelado.

También me gustaría agradecer a mis profesores durante toda mi

carrera profesional porque todos han aportado con un granito de arena a mi

formación, y en especial al Dr. Juan Carlos Cabrera La Rosa, por su rectitud

en su profesión como docente, por sus consejos, que ayudan a formarte

como persona e investigador.

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v

ÍNDICE DEDICATORIA ....................................................................................................................... iii

AGRADECIMIENTO ............................................................................................................... iv

INDICE DE CUADROS ........................................................................................................... vii

INDICE DE FIGURAS .............................................................................................................. ix

RESUMEN ........................................................................................................................... xii

ABSTRACT .......................................................................................................................... xiii

I. INTRODUCCION ....................................................................................................... 1

II. REVISIÓN DE LITERATURA .................................................................................. 3

2.1. CULTIVO DE NABO Brassica napa L. ............................................................. 3

2.1.1 Origen ......................................................................................................... 3

2.1.2 Taxonomía ................................................................................................. 4

2.1.3 Descripción botánica ............................................................................... 4

2.1.4 Variedades ................................................................................................. 5

2.1.5 Etapas fenológicas .................................................................................. 6

2.1.6 Propiedades .............................................................................................. 7

2.1.7 Manejo del cultivo .................................................................................... 7

2.1.8 Importancia económica ......................................................................... 10

2.2. Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera, Aphididae) ........................................ 11

2.2.1 Biología y Morfología ............................................................................ 12

2.2.2 Ciclo biológico ........................................................................................ 12

2.2.3 Comportamiento ..................................................................................... 13

2.2.4 Enemigos naturales ............................................................................... 13

2.3. MANEJO DE LA PLAGA ................................................................................. 14

2.3.1 Tipos de manejo ..................................................................................... 14

III. MATERIALES Y METODOS .............................................................................. 19

3.1. LUGAR DE EJECUCIÓN ................................................................................ 19

3.2. MATERIALES ................................................................................................... 19

3.2.1 Biológicos ................................................................................................ 19

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vi

3.2.2 Insumos .................................................................................................... 20

3.2.3 Productos químicos ............................................................................... 20

3.2.4 Materiales y Equipos de campo .......................................................... 20

3.2.5 Materiales y Equipos de laboratorio ................................................... 21

3.2.6 Equipo de escritorio: ............................................................................. 21

3.3. PROCEDIMIENTO ........................................................................................... 21

3.3.1 Manejo del cultivo .................................................................................. 21

3.4. METODOLOGÍA Y DISEÑO ESTADÍSTICO ................................................. 30

3.4.1 Diseño estadístico.................................................................................. 30

3.4.2 Características del experimento.......................................................... 31

3.4.3 Metodología ............................................................................................. 32

3.4.4 Análisis de datos .................................................................................... 33

IV. RESULTADOS Y DISCUSION........................................................................... 34

4.1 PORCENTAJE DE GERMINACIÓN .............................................................. 34

4.2 AREA FOLIAR ................................................................................................. 36

4.3 GRADO DE INFESTACIÓN DEL PULGÓN Macrosiphon euphorbiae.

(Hemíptera, Aphididae)............................................................................................. 39

4.4 RENDIMIENTO ................................................................................................ 43

V. CONCLUSIONES .................................................................................................... 45

VI. RECOMENDACIONES ....................................................................................... 46

VII. BIBLIOGRAFIA ................................................................................................... 47

VIII. ANEXOS .................................................................................................................. 52

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vii

ÍNDICE DE CUADROS Pg.

Cuadro 1: Composición nutritiva de las Hortalizas

7

Cuadro 2: Clasificación de los plaguicidas de acuerdo a su toxicidad. 16

Cuadro 3: Prueba de porcentaje de germinación de las variedades Fuku komachi,Tokio Cross y Just Right.

62

Cuadro 4: Análisis de varianza dela variable porcentaje de germinación a los 4 días después de la siembra.

63

Cuadro 5: Análisis de varianza dela variable porcentaje de germinación a los 13 días después de la siembra.

63

Cuadro 6: Análisis de comprobación T3 VS T1. 64

Cuadro 7: Análisis de comprobación T3 VS T2

64

Cuadro 8: Análisis de comprobación T1 VS T2 65

Cuadro 9: Evaluación de grado de infestación según la escala antes y después de la aplicación con Perfekthion.

66

Cuadro 10: Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de Macrosiphon euphorbiae, a los 22 días después de la siembra.

67

Cuadro 11: Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de Macrosiphon euphorbiae, a los 25 días después de la siembra.

67

Cuadro 12: Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de Macrosiphon euphorbiae, a los 28 días después de la siembra.

68

Cuadro 13: Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de Macrosiphon euphorbiae, a los 31 días después de la siembra.

68

Cuadro 14: Evaluación de área foliar de Brassica rapa L. 69

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viii

Cuadro 15: Análisis de varianza del área filiar de las variedades Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 18 días después de la siembra.

70

Cuadro 16: Análisis de varianza del área filiar de las variedades Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 35 días después de la siembra.

70

Cuadro 17: Rendimiento de raíces de buen calibre kg/m2. 71

Cuadro 18: Análisis de varianza del rendimiento de las variedades

Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 37 días

después de la siembra.

71

Cuadro 19: Pesos de raíces de mala calidad (descarte) kg/m2. 72

Cuadro 20: Análisis de varianza del rendimiento de las variedades

Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 37 días

después de la siembra.

72

Cuadro 21: Porcentajes de raíces buenas y malas de la cosecha. 73

Cuadro 22: Costos de producción de Brassica rapa L. 74

Cuadro 23: Relación de nutrición con plaga y enfermedades.

75

Cuadro 24: Resumen del efecto de los niveles de N y K en la severidad

de las enfermedades causadas por patógenos.

76

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ix

ÍNDICE DE FIGURAS Pg.

Figura 1:

Terreno experimental (A) Antes de desmalezado y limpieza de

rastrojo. (B) Culminación de desmalezado y limpieza de

rastrojo. Campus UPAO II, 2013.

22

Figura 2: Riego de machaco. Campus UPAO II, 2013. 22

Figura 3: Siembra de semilla de nabo. Campus UPAO II, 2013. 23

Figura 4: Primer riego. Campus UPAO II, 2013. 24

Figura 5:

Marcación de borde. Campus UPAO II, 2013.

25

Figura 6: Aplicación de cebo toxico a cuello de planta. Campus UPAO

II, 2013.

25

Figura 7: Primera fertilización. Campus UPAO II, 2013. 27

Figura 8: Fertilizado a chorro continuo entre hileras. Campus UPAO II,

2013.

27

Figura 9: Población de pulgones Macrosiphon euphorbiae en el envés

de la hoja. Campus UPAO II, 2013.

27

Figura 10: Pulgones Macrosiphon euphorbiae en la hoja de nabo

Brassica rapa L. Campus UPAO II, 2013.

28

Figura 11: Cosecha de nabo. Campus UPAO II, 2013. 29

Figura 12: Separación de raíz y follaje. Campus UPAO II, 2013. 29

Figura 13: Porcentaje de germinación de las tres variedades de nabo de

la primera fecha de evaluación.

34

Figura 14: Promedio del porcentage de germinación de las las tres

variedades de nabo desde las 4 hasta los 13 dias despues de

la siembra.

35

Figura 15: Area foliar de las tres variedades de nabo. 36

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x

Figura 16: Promedio de area foliar por variedades. Trujillo,la libertad,

2013.

37

Figura 17: Compracion fenotipica de las variedades estudiadas,dias

antes de la coseca.

38

Figura 18: Grados de infestacion del pulgon Macrosiphon euphorbiae en

las tres variedades de nabo.

39

Figura 19: Grados de infestacion de Macrosiphon euphorbiae en las tres

variedades de nabo.

40

Figura 20: Grados de infestacion de Macrosiphon euphorbiae. 41

Figura 21: Grados de infestacion de Macrosiphon euphorbiae. 42

Figura 22: Pesos de raices de buen calibre de Brassica rapa L. en kg/m2

buena calidad. Trujillo, noviembre 2013.

42

Figura 23: Peso de raices Brassica rapa L. de mala calidad. Trujillo,

noviembre 2013.

44

Figura 24: Secado del terreno después del riego de machaco. 52

Figura 25: Nivelación del terreno en la zona afectada por empozamiento. 52

Figura 26: Incorporación de gallinaza en el terreno. 53

Figura 27: Aclarado y mejoramiento de surco Right. 53

Figura 28: Semilla de Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right. 54

Figura 29 Germinación a 3 días después de la siembra. 54

Figura 30 Señalización y division de la parsela. 55

Figura 31 Daño de gusano de tierra. 55

Figura 32: Insumos para la elaboración de cebo toxico. 56

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xi

Figura 33: Elaboración del cebo toxico para la aplicación a cuello planta

de Brassica rapa L.

56

Figura 34: Aplicación de cebo toxico a cuello planta. 57

Figura 35: Riegos y desmalezado de las parcelas de Brassica rapa L. 57

Figura 36: Altura de planta a los 18 días después de la siembra. 58

Figura 37: Incremento del área foliar después de la fertilización. 58

Figura 38: Analizando raíces para el inicio de la cosecha. 59

Figura 39: Desarrollo de las raices de brassica rapa L. 59

Figura 40: Diferenciacion de las variedades Fuku Komachi, Tokyo Cross

y Just Right.

60

Figura 41: Cosecha de brassica rapa L.,separacion de hojas y raices. 60

Figura 42: Instrumento para medir el área foliar. 61

Figura 43: Gráfico de los porcentajes de germinación en distintas fechas

de evaluación.

61

Figura 44: Gráfico de los grados de infestación de Macrosiphon

euphorbiae en diferentes fechas de monitoreo.

66

Figura 45: Incremento del área foliar de las tres variedades en diferentes

fechas de evaluación.

69

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xii

RESUMEN

La instalación y ejecución de la presente tesis se realizó en las parcelas

experimentales del Campus UPAO II, ubicado en Barraza, Laredo; Trujillo, La

Libertad, Perú. Con un área de 343 m2 divididas en bloques. La finalidad del

trabajo fue la evaluar la respuesta de tres variedades de nabo (Brassica rapa

L.) Fuku Komachi, Tokyo Cross y Just Right a la infestación de Macrosiphon

euphorbiae (Hemíptera, Aphididae) en condiciones de campo. Los

parámetros en estudio fueron: porcentaje de germinación, área foliar, grado

de infestación de pulgones por planta y rendimiento. Se realizó una prueba t-

student y ANVA para comparar estos parámetros entre las variedades.

Los resultados indicaron que después de los 4 días de la siembra, alcanzo

hasta un 81.4 %, lo cual se encuentra dentro del rango estimado. Por otro

lado el grado de infestación del pulgón alcanzo un nivel 3.0, indicando > a 11

pulgones por planta. Después del control químico se obtuvo un nivel medio.

Se obtuvo un rendimiento hasta 25796 kg/ha.

Se concluye, que las tres variedades de nabo: Fuku komachi, Just Right y

Tokyo Cross presentan una respuesta similar de susceptibilidad frente a la

infestación de Macrosiphon euphorbiae.

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xiii

ABSTRACT

Installation and implementation of this thesis was performed in the

experimental plots UPAO Campus II, located in Barraza, Laredo; Trujillo, La

Libertad, Peru with an area of 343 m2 divided into blocks. The purpose of this

study was to evaluate the response of the three varieties of turnip (Brassica

rapa L.) Fuku Komachi, Tokyo Just Right Cross and the infestation

Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera, Aphididae) under field conditions. The

parameters studied were: germination percentage, leaf area, degree of

infestation of aphids per plant and yield. Student t-test and ANOVA was used

to compare these parameters among varieties.

The results indicated that after 4 days after sowing, reach up to 81.4%, which

is within the estimated range. On the other hand the degree of infestation of

aphids reached a level 3.0, indicating> 11 aphids per plant. After an average

level chemical control was obtained. Performance was obtained up to 25796

kg / ha.

We conclude that the three turnip varieties: Fuku komachi, Just Right and

Tokyo Cross euphorbiae have a similar response against infestation

Macrosiphon susceptible.

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1

I. INTRODUCCIÓN

El cultivo de hortalizas en el Perú generalmente está en manos de los

pequeños agricultores, que obtienen baja productividad y afrontan costos

altos debido principalmente a la limitada disponibilidad de semilla de calidad

y problemas fitosanitarios (plagas y enfermedades). Las principales zonas de

producción de hortalizas se encuentran en los departamentos de

Lambayeque, La Libertad, Cajamarca, Ancash, Pasco, Lima, Junín, Ica,

Apurímac, Cusco, Arequipa y Tacna (Cañedo y col., 2011).

Según Cañedo y col, (2011), las hortalizas más cultivadas a nivel nacional

pertenecen a los siguientes grupos: Amaranthaceas o chenopodiaceas

(acelga, beterraga, espinaca); Apiaceas o umbelíferas (apio, perejil,

zanahoria); Asparagales o alliacea (cebolla, ajo, puerro); Asteráceas o

compuestas (lechuga, alcachofa); Brassicaeas o crucíferas (col, coliflor,

brócoli, nabo, repollo); Liliáceas (espárragos); Solanaceas (ajís, berenjena,

pimiento, tomate).

El nabo es una hortaliza de escaso aporte calórico porque posee abundante

cantidad de agua y un bajo contenido de hidratos de carbono pero es buena

fuente de fibra. Respecto al contenido vitamínico, aporta una apreciable

cantidad de vitamina C y de folatos y cantidades discretas de vitaminas del

grupo B (B6, B3, B1 y B2). Carece de provitamina A y de vitamina E,

abundantes en otras verduras y hortalizas (EroskiConsumer. Hortalizas y

Verduras, s/f).

Durante la fase de crecimiento es necesario verificar con frecuencia la

presencia de plagas en las hojas (mosca blanca, pulgones, plagas

específicas de las crucíferas, entre otros), para poder combatirlas

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2

rápidamente con insecticidas sistémicos o de contacto, según sea el caso

(IICA, 1989.)

La producción de hortalizas se ha caracterizado por la complejidad de sus

problemas fitosanitarios y el uso intensivo de plaguicidas para tratar de

controlarlos. Las plagas generalmente varían de acuerdo al tipo de hortaliza,

zona de producción y clima. Las plagas predominantes gusano de tierra

(Feltia sp. y Agrotis sp.) son pulgones (áfidos), moscas minadoras, moscas

blancas, gusanos noctuidos, ácaros, trips, babosas, entre otras. Los

principales problemas para las hortalizas en el valle del Mantaro lo

constituyen las enfermedades fungosas, sin embargo las poblaciones de

insectos, en algunos casos, juegan un rol muy importante (Cañedo y col,

2011).

En el presente trabajo se evaluó la respuesta de tres variedades de nabo

(Brassica rapa L.): Tokyo Cross, Fuku komachi y Just Right a las

infestaciones del pulgón Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera, Aphididae)

bajo condiciones de campo.

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3

II. REVISIÓN DE LITERATURA

2.1. CULTIVO DE NABO Brassica napa L.

2.1.1 Origen

Se cree que el origen del nabo se sitúa en dos emplazamientos

diferentes, uno en el área mediterránea y otro en una zona que

abarca territorios de Afganistán y Pakistán. También existen

referencias de esta planta en China, Grecia y Roma. En la

Edad Media era frecuente encontrarla en las huertas de los

monasterios. Su presencia en el continente americano es

reciente ya que fue introducida por los emigrantes procedentes

de Europa. En la actualidad se produce en las regiones

templadas y frías de todo el mundo (Gisport, 1990).

Brassica rapa L. se expendio de forma natural desde el

mediterráneo occidental hasta Asia central y probablemente

haya sido la primera Brassica domesticada. Se proponen dos

líneas distintas de evolución: Europa Constituiría el centro

primario de origen para las formas oleíferas y nabos (subs.

Oleifera y rapa.respectivamente). mientras que las formas

orientales se diferencian como hortalizas de hoja en el sur de

china. Las formas oleaginosas de la india pudieron originarse a

partir de formas oleiferas europeas. Brassica rapa L. se cultiva

por su hipocotilo (nabo horticola). Aunque existen tambien

variedades utilizadas por sus hojas como las nabizas, los

grelos, la col china y tambien por su semilla para la obtencion

de aceites (nabina) (Vilar, 2006).

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4

2.1.2 Taxonomía

La clasificación taxonómica aceptada para la planta del nabo es

descrita por el ICBN (2000) y Ordás (2001).

Reino: Plantae

División: Magnoliophyta

Clase: Magnoliopsida

Orden: Brassicales

Familia: Brasicaceae

Género: Brassica

Especie: rapa

Variedad: rapa

Nombre binomial: Brassica rapa L.

2.1.3 Descripción botánica

El nabo es una hortaliza bianual, de raíz carnosa de forma

esférica, fusiforme o aplastada, según la variedad (Tamaro,

1968). El tallo es robusto y con una altura que puede

sobrepasar el metro y medio (Díaz, 1974).

Las hojas, que se asemejan a las de la mostaza, son de color

verde claro. Las de la base y de la parte superior son distintas;

las primeras, lobuladas o con forma de lira y provistas de

peciolo; las superiores, lanceoladas y con borde dentado (Díaz,

1974).

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Las flores se sitúan a la misma altura en los racimos, tienen de

1.5 a 2.0 cm de diámetro, son de color amarillo y tienen un cáliz

de cuatro sépalos, cuatro pétalos opuestos dos a dos

(característica de la familia) y seis estambres (Tamaro, 1968;

Díaz, 1974).

Los frutos, de forma alargada, están formados por una especie

de vainas casi cilíndricas, de 5 a 10 cm de longitud, con pico de

1 a 2 cm, un pedicelo de 1 a 3 cm y hasta veinte semillas por

lóculo. Las semillas presentan forma globosa, tienen de 2.0 a

2.5 mm de diámetro, son ligeramente angulosas, y reticuladas

o recubiertas de alvéolos, de un color que varía del castaño-

rojizo al negruzco (Gisport, 1990), siendo su capacidad

germinativa media de cuatro años (Maroto, 1995; Marín, 2004).

2.1.4 Variedades

Según Heimler y col. citados por Arias (2009) indican que el

género Brassica pertenece a la familia Brassicaceae que

incluye más de 350 géneros y 3500 especies silvestres y

cultivadas, distribuidas por todo el mundo debido a su

capacidad de adaptación a un amplio rango de condiciones

climáticas.

Según Vilar, 2006 citado por Arias (2009) la importancia

económica se centra de manera casi exclusiva en seis

especies, tres de ellas diploides, Brassica oleracea L., Brassica

rapa L., y Brassica nigra L. y tres anfidiploides derivadas de las

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6

primeras, Brassica juncea L., Brassica carinata L., y Brassica

napus L.

2.1.5 Etapas fenológicas

Estados Descripción

Estadio principal 0. Germinación

Estadio principal 1. Desarrollo de las hojas (tallo principal)

Estadio principal 2. Formación de brotes laterales

Estadio principal 3. Crecimiento longitudinal del tallo principal

Estadio principal 5. Aparición del órgano floral (tallo principal)

Estadio principal 6. Floración (tallo principal)

Estadio principal 7. Formación del fruto

Estadio principal 8. Maduración de frutos y semillas

Estadio principal 9. Senescencia

(Enz, et al; 1998)

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2.1.6 Propiedades

Cuadro 1: Composición nutritiva de las Hortalizas

Fuente: Collazos y col (1993).

2.1.7 Manejo del cultivo

2.1.7.1 Clima

El nabo es un producto de estación fresca, cultivo de

clima templado, en el Perú se recomiendo sembrar en

otoño, invierno y primavera. Las temperaturas bajas

inferiores a 10 °C pueden dar origen a la emisión

COMPOSICIÓN NUTRITIVA DE LAS HORTALIZAS

(en 100 g de materia comestible)

hortaliza – nabo

Energía cal

16

Agua g

94.7

Proteína g

0.6

Grasa g

0.2

Carbohidrato g

3.6

Fibra g

0.6

Ceniza g

0.9

Calcio mg

34

Fosforo mg

34

Hierro mg

0.1

Retinol mcg

0

Tiamina mg

0.01

Riboflavina mg

0.04

Niacina mg

0.23

Ácido ascórbico

reduc. mg 49.2

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8

prematura de tallos florales. Las raíces cosechadas en

verano se dan huecas y fibrosas (Giaconi y Escaff,

2004).

2.1.7.2 Suelo

Todas las localizaciones son buenas para el nabo,

salvo las áreas muy sombreadas; las mejores raíces se

cosechan en las tierras con alto contenido de materia

orgánica, conservando sin embargo un cierto frescor. El

aporte de una importante cantidad de materia orgánica

en el suelo favorece el rápido crecimiento de raíces y,

en consecuencia, su calidad. En las tierras ligeras,

arenosas y secas, los nabos son demasiado fibrosos,

adquiriendo un fuerte sabor (Noguera, 2004).

En la preparación de suelo para el cultivo de nabo se ha

determinado que mediante el paso de un sub-solador y

un arado rotativo se obtiene mejor rendimiento de 75.53

t/ha de raíces de mayor longitud y diámetro (IICA-

PROCIANDINO, 1996).

2.1.7.3 Siembra

El nabo es de siembra directa, en surcos espaciados

entre 30 y 40 cm o bien en bandas de 2 o más hileras.

El nabo es de rápido desarrollo, tomando bajo

condiciones ideales de 40 a 60 días (Casseres, 1980).

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9

2.1.7.4 Fertilización

Las hortalizas necesitan de gran cantidad de nutrientes

debido a su rápido desarrollo y a corto periodo

vegetativo. Por esto, para la explotación intensiva, en

horticultura se requieren aplicaciones abundantes y

frecuentes.

Los fertilizantes que se deben usar y las cantidades

necesarias dependen de la reserva y disponibilidad de

nutrientes en el suelo y también de la clase de hortaliza

que se va a cultivar. Se recomienda confeccionar el

programa de fertilización con base en los resultados de

un análisis de suelo (Van haeff y Berlijn, 2006)

2.1.7.5 Cosecha

El momento de cosecha de los nabos es variado porque

se pueden plantar en la primavera, al final del verano o

en el otoño. Cuando se plantan al final del otoño,

generalmente se los cultiva por sus hojas. El tiempo

apropiado de cosecharlos depende también del tipo de

nabo que se cultive y si ya tienen el tamaño correcto

(Mcgee, 2013).

El tamaño apropiado para cosechar es entre 5 y 8 cm

de diámetro, variando con el cultivar y los mercados

(Casseres, 1980).

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10

2.1.7.6 Producción

Según la Oficina de Estudios Económicos y

Estadísticos (MINAG 2010), la producción de nabo a

nivel nacional fue de 13998 t. y la región La Libertad

tuvo una producción de 349 t.

La siembra de nabo tuvo una superficie a nivel nacional

de 862 ha y en la región La Libertad fue de 15 ha.

(MINAG 2010).

2.1.8 Importancia económica

En la actualidad, el nabo se cultiva tanto por sus raíces como

por sus hoja (Gisport, 1990). La raíz cuando es tierna, se

aprovecha para hacer el caldo, pero el destino más común es la

alimentación del ganado (Benavente, 1995).

Como alimento destinado al consumo humano se aprovechan,

fundamentalmente, las hojas y los tallos, recogidos en

sucesivos momentos del desarrollo de la planta y que reciben

diferentes denominaciones:

- Nabizas: primeras hojas de la planta, muy tiernas.

- Cimons: hojas ya crecidas en las que se incluye parte del

tallo.

- Grelos: los tallos floríferos tiernos, justo antes de que se vean

los capullos de las flores (Díaz, 1974).

Cuando el nabo finaliza su ciclo, sigue produciendo hojas pero

estas ya no se usan para el consumo humano sino que se

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cortan incluyendo la flor y se destinan al consumo animal,

reservando la semilla para la próxima siembra (Parrilla, 1991).

2.2. Macrosiphon euphorbiae (Hemíptera, Aphididae)

Este pulgón establece con los cítricos relaciones análogas a la que

mantienen con ellos las especies procedentes, siendo observable a

veces al principio del periodo primaveral sobre brotes tiernos de

naranjo, mandarino, etc.

Es una especie muy polífaga (entre las plantas cultivadas más

atacadas se encuentran las solanáceas: patata, tomate, etc.),

reconocible sobre los cítricos por sus dimensiones medio-grandes

(longitud 2.6-4.0 mm) y de color verde del cuerpo, revestido de una

ligera pulverulencia cérea en las formas inmaduras.

Semejantes a los dos pulgones procedentes, tanto en el aspecto como

en las manifestaciones epidemiológicas en los cítricos son

Aulacorthum solani (Kaltenbach) y A. (Neomyzus) circumflexum

(Buckton) (Barbagallo, y col, 1998)

Macrosiphon euphorbiae tiene una amplio rango de hospederos entre

ellos: rábano (Raphanus sativus L.), yuyo (Brassica campestris L.),

malva (Malva nicaensis All.) y nicandra (Nicandra physalodes L.),

teniendo una infestación moderada de 1 a 5 áfidos/planta en Brassica

campestris (Quiroz y col, 2005).

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2.2.1 Biología y Morfología

Macrosiphon euphorbiae se reproduce muy rápidamente,

principalmente debido a que son partenogenéticos (las

hembras se reproducen sin necesidad de cruzarse con un

macho); este hecho determina que presenten varias

generaciones en un año, lo cual les facilita el desarrollo de

resistencia a insecticidas comunes. Normalmente los pulgones

se ubican en grupos sobre hojas y brotes nuevos, succionando

savia con un aparato bucal en forma de estilete. Como ocurre

en otro grupo de insectos que se alimentan de savia, los áfidos

también excretan mielecilla que expelen al ambiente (Syngenta,

s/f)

2.2.2 Ciclo biológico

Todos son polimórficos, es decir tienen formas aladas y

ápteras. Presentan además heterogamia o reproducción cíclica,

en la cual se alternan generaciones partenogenéticas con

reproducción sexual. Esto mayormente se produce en las

zonas con estaciones marcadas como la región Holártica,

donde hay machos, y donde los individuos invernan en estado

de huevo en las épocas de climas inapropiados para la

reproducción; en la región Neotropical sólo presentan

reproducción partenogenética. Esta reproducción (donde no

hay cópula ni hay machos) es de suma importancia; las

hembras paren directamente ninfas, que cuando llegan a adulto

pueden presentar alas o no. La migración se realiza a través de

las formas aladas que empiezan a desarrollarse cuando las

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condiciones de la planta hospedante no son favorables, o bien

cuando la colonia tiene un exceso de individuos ápteros, que

son los responsables de la dispersión y colonización de las

nuevas plantas, así como de la transmisión de las

enfermedades virales (Vergara y Galeano, 1994).

2.2.3 Comportamiento

Casi todas las partes de la planta pueden ser atacadas por los

áfidos, pero son más frecuentes los ataques en los brotes,

tallos u hojas tiernas (Valencia y col. 1975).

2.2.4 Enemigos naturales

Macrosiphon euphorbiae tiene numerosos enemigos naturales

tanto depredadores como parasitoides: Coccinella

septempuntata, Hippodamia variegata, Adalia bipunctata,

(Coccinellidae) Metasyrphus corllae, Episyrphus balteatus,

Scaeva sp., Syrphus sp., (Syrphidae) Aphidoletes aphidimyza

(Cecidomyiidae); Chrysopa sp., Chrysoperla sp., Hemerobius

sp. (Chrysopidae y Hemerosidae); y diferentes especies de

míridos. Como parasitoides: Los géneros Aphidius, Lysiphlebus,

Praon, Aphelinus, Trioxis, etc., que en muchas ocasiones

pueden mantener la plaga por debajo de los niveles de daño, si

no son afectados por los tratamientos fitosanitarios. En caso de

necesitar la aplicación de algún plaguicida, elegir aquellos que

sean compatibles con la fauna auxiliar (Bello y col, 2003).

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14

2.3. MANEJO DE LA PLAGA

2.3.1 Tipos de manejo

2.3.1.1 Control biológico

Según Romero y col. (2003) las poblaciones bajas de

áfidos se consideran reservorios o fuentes de

alimento de muchos controladores biológicos: por

ende, no se debe pretender eliminar totalmente la

población de estos individuos.

2.3.1.2 Control microbiológico

Se pueden efectuar mediante la utilización de hongos

Entomopatogenos como Lecanicillium lecanii,

Metarhizium anisopliae y Beauveria bassiana, los

que comercialmente se encuentran disponibles

(Romero y col. 2003).

2.3.1.3 Control físico y cultural

Las poblaciones se incrementan en épocas de

sequía y altas temperaturas. La disposición de riego

por aspersión es una buena manera de bajar las

poblaciones. El manejo adecuado de las malezas y el

incremento de barreras rompe-vientos ayuda a

controlar las poblaciones plaga de áfidos en cultivos

(Romero y col. 2003).

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2.3.1.4 Control químico

Los plaguicidas son sustancias que se utilizan para

matar o controlar las poblaciones de plagas. Estas

sustancias, de acuerdo al grupo de animales o

plantas que controlan, pueden ser: insecticidas

(contra insectos), acaricidas (contra ácaros),

rodenticidas (contra ratas), nematicidas (contra

nematodos), molusquicidas (contra caracoles),

herbicidas (contra malezas), fungicidas (contra

enfermedades fungosas), entre otros.

Mayormente estas sustancias son de composición

química sintética y son tóxicos. Si bien su uso ha

resultado muy beneficioso en muchos casos, también

ha resultado perjudicial debido principalmente a su

toxicidad contra el hombre y animales, daños al

ambiente, empobrecimiento de suelos, contaminación

de aguas subterráneas y superficiales, resistencia de

insectos a los insecticidas, emergencia de nuevas

plagas, etc. Por esos motivos, en el momento de

elegir el plaguicida adecuado hay que tener en

consideración todos estos aspectos y no solo el nivel

de efectividad y rapidez de su acción sino los daños

colaterales que puedan llegar a ocasionar.

De acuerdo a la composición química que poseen se

clasifican en organoclorados, organofosforados,

carbamatos, piretroides, neonicotinoides e

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insecticidas biológicos, los cuales hacen uso de

microorganismos entomopatógenos.

En la etiqueta del producto se encuentra información

que se debe de tomar en cuenta como el ingrediente

activo, el nombre comercial, clasificación toxicológica

de acuerdo con la Organización Mundial de la Salud

(OMS), etc.

La clasificación toxicológica de los plaguicidas

químicos de acuerdo con la OMS es una clasificación

de acuerdo con normas internacionales y el grado de

peligrosidad que trae su aplicación. Hay distintos

símbolos y colores que distinguen a cada categoría

(Cañedo y col., 2011).

Cuadro 2: Clasificación de los plaguicidas de acuerdo a su

toxicidad.

Clasificación de la OMS según los riesgos

Color Leyenda

Clase Ia Extremadamente peligroso

Peligroso Rojo Muy toxico

Clase Ib Muy peligroso Muy toxico

Rojo Toxico

Clase II Moderadamente peligroso

Nocivo Amarillo Nocivo

Clase III Ligeramente peligroso

Cuidado Azul Cuidado

Clase Ib No ofrece peligro Cuidado Verde cuidado

Fuente: (Cañedo y col., 2011).

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2.3.1.5 Características de los insecticidas

NOMBRE COMERCIAL: Perfekthion®

INGREDIENTE ACTIVO: Dimetoato

GRUPO QUIMICO: Órgano-fosforados

CONCENTRACION Y FORMULACION: 500 g/L

MODO DE ACCION: Sistémico y de contacto.

Es un insecticida acaricida organofosforado de

persistente acción sistémica. Actúa contra

insectos picadores chupadores en diversos

cultivos como cítricos, algodón, frijol y otras

hortalizas.

Es absorbido y translocado con la savia,

protegiendo los brotes que se desarrollan hasta

15 días después de la aplicación (DEAQ, 2014).

NOMBRE COMERCIAL: Ciclon

INGREDIENTE ACTIVO: Dimetoato

MODO DE ACCIÓN: Sistémico

Insecticida sistémico para el control de adultos de

Mosca minadora en apio, papa, arveja, melón,

etc., y control de Pulgones en algodón, queresa

en mandarina, trips en espárragos (DEAQ, 2014).

NOMBRE COMERCIAL: ANATOATO 40 EC

INGREDIENTE ACTIVO: Dimetoato

GRUPO QUÍMICO: Organofosforado

MODO DE ACCIÓN: De contacto

FORMULACIÓN: 400 g/L

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Es un insecticida sistémico que controla insectos

picadores chupadores, raspadores y

masticadores en algodón, hortalizas, cítricos,

cebolla, frutales y otros cultivos. Su residualidad

es de 10 a 14 días.

ANATOATO 40 EC ingresa al insecto por

contacto e ingestión (DEAQ, 2014).

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III. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1. LUGAR DE EJECUCIÓN

La instalación y ejecución de la presente tesis se realizó en las

parcelas experimentales del Campus UPAO II, ubicado en

Barraza, Laredo; 107 msnm, 8° 08´ 07” latitud sur y 78° 54´17”

longitud oeste. En la ciudad de Trujillo, La Libertad, Perú.

Estos suelos son franco arcillosos, caracterizados por ausencia de

lluvias durante casi todo el año (Google Earth, 2013).

FECHA DE INICIO: 28 de septiembre del 2013

FECHA DE TERMINACIÓN DE LA FASE

EXPERIMENTAL: 24 de noviembre del 2013

3.2. MATERIALES

3.2.1 Biológicos

Semillas de Nabo (Brassica rapa L.) de la variedad Tokyo

Cross. Desde la siembra, se cosechan en 35-60 días,

dependiendo del tamaño deseado. Las raíces tienen una

forma perfecta de globo, con una textura de piel y carne

muy suave un color blanco. Pueden cosecharse desde

los 6 cm hasta los 15 cm de longitud

(http://naturnoa.com/rabanos-remolachas-y-nabos/109-

nabo-f1-tokyo-cross.html).

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Semillas de Nabo (Brassica rapa L.) de la variedad Fuku

komachi, su periodo vegetativo es de 40-45 días. Las

raíces llegan 5 cm de diámetro, es de color blanco y tiene

una forma semi-globosa (Takii Seed – Vegetable Catalog

175 th Aniversary Issue, 2010).

Semillas de Nabo (Brassica rap L.) de la variedad Just

Right, esta variedad tiene 70 días de ciclo vegetativo,

presenta un diámetro de 12-15 (cm), es de

color blanco y una forma semi-globosa, su época de

Siembra es entre verano – otoño (Takii Seed – Vegetable

Catalog 175 th Aniversary Issue, 2010).

3.2.2 Insumos

Polvillo de arroz

Agua destilada

Azúcar rubia

Gallinaza (abono)

Urea

3.2.3 Productos químicos

Insecticidas: Benzoato de emamectina, dimetoato

3.2.4 Materiales y Equipos de campo

Balanza (capacidad de 30kg)

Cordel.

Picotas.

Palanas.

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Estacas de madera

Libreta de notas

Lapiceros

Material fotográfico.

3.2.5 Materiales y Equipos de laboratorio

Estereoscopio

Microscopio

Pincel N° 00

Lupa 20X

Etiquetas

3.2.6 Equipo de escritorio:

Computadora

Impresora.

3.3. PROCEDIMIENTO

3.3.1 Manejo del cultivo

Preparación del terreno: Se inició con la limpieza de

terreno (recojo de maleza y eliminación de residuos) para

proceder al riego de machaco (Figura 1).

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Figura 1 Terreno experimental (A) Antes de desmalezado y

limpieza de rastrojo. (B) Culminación de

desmalezado y limpieza de rastrojo. Campus

UPAO II, 2013.

Posteriormente se realizó el riego de machaco, donde se

pudo notar la mala nivelación del terreno, para lo cual se

niveló depositando tierra agrícola mediante el uso de

carretilla (Figura 2).

Figura 2. Riego de machaco. Campus UPAO II, 2013.

A B

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Días después se empezó a mullir y arar el terreno, se

realizó con palana y la formación de surcos con la ayuda

del caballo con un distanciamiento de 0.5 metros.

Siembra: Se realizó la siembra directa a campo definitivo,

haciendo un hoyo al costado del lomo de surco. Se sembró

a doble hilera, colocando 2 semillas por golpe. Fecha de

siembra: 15 de octubre del 2013 (Figura 3).

Figura 3. Siembra de semilla de nabo. Campus UPAO II,

2013.

A los cuatros días después de la siembra se hizo un conteo

de semilla germinada por metro lineal para evaluar el

porcentaje de germinación.

Riegos: se hizo el primer riego a los 7 días después de

realizada la siembra, cuando las plantas estaban entre la

apertura de los cotiledones y la primera hoja verdadera. Los

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demás riegos se hicieron de una a dos veces por semana

según requerimiento del cultivo (Figura 4).

Figura 4. Primer riego. Campus UPAO II, 2013.

Labores: Se marcaron los bordes de cada variedad y la

colocación de carteles con su respectivo nombre, para una

mejor identificación (Figura 5).

También se aplicó cebo tóxico a la segunda semana

después de la siembra para evitar el daño de gusanos de

tierra (Figura 6). También se desahijó y se desmalezó.

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Figura 5. Marcación de borde. Campus UPAO II, 2013.

Figura 6. Aplicación de cebo toxico a cuello de planta.

Campus UPAO II, 2013.

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Fertilización: Fue fertilizado dos veces 12 días después de

la siembra y a los 20 días después de la siembra, utilizando

15 kilos de urea. (Figura 7), (Figura 8)

- La fertilización utilizada equivalente a

una hectárea es de 435 kg de urea.

Solo se utilizó urea ya que el terreno contaba con fosforo y

potasio por residuos del cultivo anterior (brócoli).

- Se dice que el exceso de N puede influir en las

manifestaciones de plagas y enfermedades. (Anexo

23), (anexo 24).

Figura 7. Primera fertilización. Campus UPAO II, 2013.

HA.

N P K

200 0 0

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Figura 8. Fertilizado a chorro continuo entre hileras.

Campus UPAO II, 2013.

Aplicación de Perfekthion: la aplicación fue 25 días

después de la siembra con Perfekthion (dimetoato) (Figura 9).

Figura 9. Población de pulgones Macrosiphon euphorbiae

en el envés de la hoja. Campus UPAO II, 2013.

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Figura 10. Pulgones Macrosiphon euphorbiae en la hoja de

nabo Brassica rapa L. Campus UPAO II, 2013.

Cosecha: la cosecha se inició a los 20 días después de la

siembra y termino a los 25 días después de la siembra.

Para esto se cosecho preferente mente los 5 surcos del

centro de cada variedad, para obtener datos más reales. La

cosecha se procedió con el corte de las hojas con el uso de

una cuchilla. Luego los nabos fueron pesados (Figura 11)

(Figura 12).

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Figura 11. Cosecha de nabo. Campus UPAO II, 2013.

Figura 12. Separación de raíz y follaje. Campus UPAO II,

2013.

Finalmente la cosecha fue almacenada en jabas plásticas

para ser comercializados.

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3.4. METODOLOGÍA Y DISEÑO ESTADÍSTICO

3.4.1 Diseño estadístico

Sin diseño estadístico.

Para el análisis de datos se realizó la prueba de

comparación t-Student para determinar la respuesta de las

tres variedades a infestaciones naturales del pulgón

Macrosiphon euphorbiae

Croquis del experimento:

------ 3.5 m----

V1 V2 V3

Fuku komachi-Tokyo Cross-Just Right

--------------------13.5 m-----------------------

18 m

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3.4.2 Características del experimento

Parcela

Largo de la parcela : 18m

Ancho de la parcela : 4.5m

Área de la parcela : 81m2

Número de la parcela : 3

Numero de surcos de la parcela : 9

Distancia entre surcos : 0.50m

Numero de hileras por surco : 2

Distancia entre plantas

Plantas por golpe

:

:

0.2m

2

Número de plantas por parcela : 1620

Área experimental :

Área neta experimental por variedad : 81 m2

Área total experimental : 343m2

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32

3.4.3 Metodología

3.4.3.1 Porcentaje de germinación

El porcentaje de germinación de cada una de las

variedades del cultivo de nabo se realizó a los 4, 7,

10 y a los 13 días después de la germinación, se

omitió evaluar los dos primeros surcos y los dos

últimos para evitar efecto de borde. Se evaluó el 4to

y 6to surco de cada uno de los tratamientos, donde

la unidad muestral fue 2 metros de cada surco

escogidos al azar, obteniendo así el número de

plantas germinadas de ambos surcos.

3.4.3.2 Área foliar

La medición del área foliar del cultivo de Brassica

rapa L se realizó dos veces por semana, con la

ayuda de un censor de cobertura, dividida en

cuadriculas. Esta metodología fue al azar, consistió

en medir el área foliar teniendo en cuenta no

evaluar los bordes para lo cual se omitieron 2 m de

cada surco para evitar errores de borde.

3.4.3.3 Rendimiento del cultivo de acuerdo a la variedad

El rendimiento fue medido en kilogramos de raíz por

planta de cada una de las variedades del cultivo de

nabo.

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3.4.3.4 Grado de infestación de pulgones/planta

Se evaluaron 15 plantas al azar en tres puntos con

6 metros cada uno.

En cada planta, se revisó el haz y el envés de las

hojas para determinar el grado de infestación de

pulgones.

Se utilizó una escala modificada de grados:

1: sin pulgones

2: 1-10 pulgones/planta

3: >10 pulgones/planta

3.4.3.5 Identificación del pulgón

Se colectaron 25 muestras al azar de las colonias

presentes en el campo. Los individuos adultos y/o

alados fueron conservado en AGA (10 Alcohol, 1

Glicerina, 1 Ácido acético) posteriormente las

muestras fueron examinados en portaobjetos y

montados en Bálsamo de Canadá para ser

identificados utilizando un microscopio compuesto.

3.4.4 Análisis de datos

Se realizó una prueba t-Student para comparar estos

parámetros entre las tres variedades de nabo.

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34

IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

4.1 PORCENTAJE DE GERMINACIÓN

En la figura 13 se presentan los distintos porcentajes de

germinación de las variedades Fuku Komachi, Tokio Cross y Just

Right. Estos datos fueron obtenidos en la primera fecha de

evaluación (4 días después de la siembra).

Figura 13. Porcentaje de germinación de las tres variedades de

nabo de la primera fecha de evaluación.

Cabe resaltar que a los 3 días después de la siembra la variedad

Just Right fue la primera en germinar.

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35

En la figura 14 se presenta el promedio del porcentaje de

germinación de las variedades Fuku Komachi, Tokyo Cross y Just

Right. Estos datos corresponden a los promedios de las distintas

fechas de evaluación.

Figura 14. Promedio del porcentage de germinación de las las tres

variedades de nabo desde las 4 hasta los 13 dias despues

de la siembra.

En la Figura 14 se puede observar que el porcentaje de

germinación de las tres variedades de nabo dio como resultado lo

siguiente : Just Right 81.4% es una de las variedades con mayor

porcentaje de germinación, Fuku komachi 72.4% junto y Tokio

Cross 74.4 % Presentando diferencias estadisticas significativa

entre las tres variedades (probabilidad = 0.017) La variedad Just

Rigth presenta un mayor porcentaje de germinación que las otras

variedades (Pt=0.05 y Pt=0.01) respectivamente, mientras que las

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36

variedades Fuku komachi y Tokio Cross no presentan diferencias

entre si (Pt = 0.16)

Estos porcentajes de germinación obtenidos son similares a los

estudios realizados de otros autores como Harrinton y Minges (1954),

Lorenz y Maynard (1980), Ellis et al (1985), Giaconi y Escaff (1998).

Ellos muestran que el porcentaje de germinacion de las diferentes

variedades de nabo oscilan entre 80 y 85%.

Las variedades Just Right tuvo una germiancion más rápida y es

posible que bajo los condiciones del experimento se haya adaptado

mejor.

4.2 AREA FOLIAR

En la Figura 15 se presenta el área foliar de las variedades Fuku

Komachi, Tokio Cross y Just Right. Estos datos fueron obtenidos a

los 18 días despues de la siembra.

Figura15. Area foliar de las tres variedades de nabo.

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37

En la Figura 15 se observa que los promedios del área foliar varían

entre las variedades de nabo estudiadas, (p=0.3x10-6) indicando

que la variedad de mayor cobertura foliar es la variedad Just Right

535 cm2 y Tokio Cross 264 cm2. Y Fuku Komachi 100 cm2 como la

variedad de menor área foliar.

En la Figura 16 se presenta el promedio de area foliar por

variedades a los 35 dias despues de lasiembra. Se hace saber que

la variedad Just Right 1225 cm2 fue una de las primeras en cubrir

el area de muestreo, sobrepasando el ancho de surco. Seguido de

esta variedad fue de Tokio Cross 1225 y de la variedad Fuku

komachi 1150 cm2.

Figura 16. Promedio de area foliar por variedades. Trujillo,la

libertad, 2013.

En la Figura 16 se observar que hubieron diferencias estadísticas

significativas entre las tres variedades (p=0.005).

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38

Estos resultados son similares a los registrados por Cargenelutti y

col, (2012) quien determina el área foliar mediante fotos digitales

en el cultivo nabo forrajero.

La variedad Just Right presenta un mayor crecimiento en el area

foliar que las otras variedades, indicando que es uno de las mas

precoces entre las estudiadas.

Figura 17. Comparación fenotípica de las variedades estudiadas, días antes

de la cosecha.

En la Figura 17 se puede observar que las tres variedades

presentan caracteristicas diferentes con respecto a los bulbos

(tañamo y forma del bulbo) y tambien en el area foliar hay una

diferencia significativa de la altura de estas.

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39

4.3 GRADO DE INFESTACIÓN DEL PULGÓN Macrosiphon

euphorbiae. (Hemíptera, Aphididae)

En la Figura 18 se presentan los diferentes niveles de infestación de

Macrosiphon euphorbiae en las variedades Fuku Komachi, Tokio

Cross y Just Right, bajo condiciones de campo, 22 días después de

la siembra y 3 días antes de la aplicación, el nivel de infestación es

bajo.

Figura 18. Grados de infestacion del pulgon Macrosiphon euphorbiae

en las tres variedades de nabo.

En la Figura 18 se puede observar que no hubieran diferencias

estadisticas siginificativas entre las tres variedades a la infestacion

del pulgon (p=0.59).

0.0

0.3

0.6

0.9

1.2

1.5

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

VARIEDADES

Dañ

o d

e p

ulg

on

es (

grad

o)

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40

En la Figura 19 se presentan los diferentes niveles de infestación de

Macrosiphon euphorbiae en las variedades Fuku Komachi, Tokio

Cross y Just Right, bajo condiciones de campo, 25 días después de

la siembra y 1 día antes de la aplicación (Perfekthion 20ml/mochila)

pudiéndose notar un nivel alto de infestación.

Figura 19. Grados de infestacion de Macrosiphon euphorbiae en

las tres variedades de nabo.

En la Figura 19 se puede observar la el alto grado de infestación de

Macrosiphon euphorbiae entre las variedades, Fuku komachi, Just

Right y Tokyo Cross; los tratamientos no presentan diferencias

significativas (probabilidad=0.125).

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41

En la Figura 20 se presenta el los distintos niveles de infestacion de

Macrosiphon euphorbiae en Brassica rapa L. 28 días después de la

siembra y 3 día después de la aplicación reduciendo a un nivel bajo

de infestación.

Figura 20. Grados de infestacion de Macrosiphon euphorbiae.

En la Figura 20 se puede observar la homogeneidad del grado de

infestación de Macrosiphon euphorbiae en niveles bajos entre las

variedades, Fuku komachi, Just Right y Tokyo Cross; los

tratamientos no presentan diferencias significativas (probabilidad =

0.729).

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42

En la Figura 21 se presenta los distintos niveles de infestacion de

Macrosiphon euphorbiae en Brassica rapa L., a los 31 días después

de la siembra y 6 día después de la aplicación.

Figura 21. Grados de infestacion de Macrosiphon

euphorbiae.

En la figura 21 se puede observar la similitud del grado de

infestación de Macrosiphon euphorbiae en las variedades, Fuku

komachi, Just Right y Tokyo Cross, y que su población es

intermedio pero muy cercano a la cosecha; los tratamientos no

presentan diferencias significativas (probabilidad=0.578).

Estos resultados de la investigación son similares a los resultados

obtenidos por otros autores como Quiroz y col, (2005). Teniendo

una infestación moderada de 1 a 5 áfidos/planta en Brassica

campestris, según escala en estudio.

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43

4.4 RENDIMIENTO

En la figura 22 se presenta las diferencias de kilogramos/m2, de

cada variedad en raíces de buena calidad.

Figura 22. Pesos de raices de buen calibre de Brassica rapa L. en

kg/m2 buena calidad. Trujillo, noviembre 2013.

En la Figura 22 se presenta que la variedad Fuku Komachi y Tokio

Cross tuvo un rendimiento alto y superior a Just Right y a otras

variedades. Comparado con los rendimientos promedios en

plantaciones comerciales que es alrededor de 15 - 18 ton/ha

(MINAG 2010).

Los días de cosecha en las tres variedades fueron 37 – 40 días

después de la siembra (cuadro 15 del anexo)

La forma globosa de las raíces de Fuku Komachi y Tokio Cross

facilitó la labor de cosecha comparado con Just Right.(figura 17)

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44

En la figura 23 se presentan los pesos de raíces de mala calidad,

debido a daños de plagas y porcentaje de descarte de cada

variedad.

Figura 23. Peso de raices Brassica rapa L. de mala calidad.

Trujillo, noviembre 2013.

En la Figura 23 se puede observar los pesos de raíces de mala

Calidad de las tres variedades, siendo la variedad Tokio Cross con

mayor porcentaje de raíces dañadas.

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45

V. CONCLUSIONES

En base a los resultados obtenidos en el presente trabajo, se concluye lo

siguiente:

1. Las tres variedades de nabo: Fuku komachi, Just Right y Tokyo Cross

presentaron de susceptibilidad similar frente a la infestación de

Macrosiphon euphorbiae.

2. La variedad Just Right presentó un mayor porcentaje de germinación y

una mayor área foliar en comparación con las variedades Just Right y

Tokyo Cross.

3. Los rendimientos de las tres variedades de nabo: Fuku komachi, Just

Right y Tokyo Cross fueron similares en kg/m2.

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46

VI. RECOMENDACIONES

1. Determinar el distanciamiento óptimo entre surcos y plantas para un

mayor manejo agronómico.

2. Estudiar la implementación a gran escala de la variedad Just Right para la

alimentación de ganado, ya que presenta un crecimiento inicial rápido de

alto rendimiento y altamente digestible.

3. Las variedades Fuku komachi y Tokyo Cross son una alternativa de

siembra al agricultor, como una rotación de cultivo.

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47

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52

VIII. ANEXOS

Figura 24. Secado del terreno después del riego de machaco.

Figura 25. Nivelación del terreno en la zona afectada por empozamiento.

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53

Figura 26. Incorporación de gallinaza en el terreno.

Figura 27. Aclarado y mejoramiento de surco.

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54

Figura 28. Semillas de Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right.

Figura 29. Germinación a 3 días después de la siembra.

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55

Figura 30. Señalización y division de la parsela.

Figura 31. Daño de gusano de tierra.

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56

Figura 32. Insumos para la elaboración de cebo toxico.

Figura 33. Elaboración del cebo toxico para la aplicación a cuello planta de

Brassica rapa L.

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57

Figura 34. Aplicación de cebo toxico a cuello planta.

Figura 35. Riegos y desmalezado de las parcelas de Brassica rapa L.

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58

Figura 36. Altura de planta a los 18 días después de la siembra.

Figura 37. Incremento del área foliar después de la fertilización.

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59

Figura 38. Analizando raíces para el inicio de la cosecha.

Figura 39. Desarrollo de las raices de brassica rapa L.

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60

Figura 40. Diferenciacion de las variedades Fuku Komachi, Tokyo Cross y

Just Right.

Figura 41. Cosecha de brassica rapa L.,separacion de hojas y raices.

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61

Figura 42. Instrumento para medir el área foliar.

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62

GERMINACIÓN

Cuadro 3. Promedios de porcentaje de germinación de las variedades Fuku

komachi, Tokyo Cross y Just Right.

% DE

GERMINACIÓN

FUKU

KOMACHI

TOKYO

CROSS

JUST

RIGHT

fechas

4DDS 72.9 81.3 77.9

7DDS 76.3 72.9 81.7

10DDS 69.7 74.0 85.0

13DDS 70.6 69.5 81.1

72.4 74.4 81.4

DESVST 2.9 4.9 2.9

Figura 43. Gráfico de los porcentajes de germinación en distintas fechas de

evaluación.

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63

Cuadro 4. Análisis de varianza dela variable porcentaje de germinación a los

4 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 218.75 72.9166667 141.145833 Columna 2 3 243.75 81.25 4.6875 Columna 3 3 233.75 77.9166667 64.5833333

ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de

las variaciones

Suma de cuadrados

Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 105.555556 2 52.7777778 0.75247525 0.51098748 5.14325285

Dentro de los grupos 420.833333 6 70.1388889

Total 526.388889 8

Cuadro 5. Análisis de varianza dela variable porcentaje de germinación a los

13 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN

Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza Columna 1 4 289.507576 72.3768939 8.49247685 Columna 2 4 297.689394 74.4223485 24.2886966 Columna 3 4 325.719697 81.4299242 8.41021484

ANÁLISIS DE VARIANZA

Origen de las

variaciones Suma de

cuadrados Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 180.329813 2 90.1649066 6.56677842 0.01743255 4.25649473

Dentro de los grupos 123.574165 9 13.7304628

Total 303.903978 11

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64

Cuadro 6. Análisis de comprobación T3 VS T1

Prueba t para medias de dos muestras emparejadas

Variable 3 Variable 1

Media 74.4223485 81.4299242

Varianza 24.2886966 8.41021484

Observaciones 4 4

Coeficiente de correlación de Pearson -0.57142304 Diferencia hipotética de las medias 1 Grados de libertad 3 Estadístico t -2.2871101 P(T<=t) una cola 0.05311909 Valor crítico de t (una cola) 2.35336343 P(T<=t) dos colas 0.10623817 Valor crítico de t (dos colas) 3.18244631

Cuadro 7. Análisis de comprobación T3 VS T2

Prueba t para medias de dos muestras emparejadas

Variable 3 Variable 2

Media 72.3768939 81.4299242

Varianza 8.49247685 8.41021484

Observaciones 4 4

Coeficiente de correlación de Pearson -0.39592733 Diferencia hipotética de las medias 1 Grados de libertad 3 Estadístico t -4.13921873 P(T<=t) una cola 0.01279992 Valor crítico de t (una cola) 2.35336343 P(T<=t) dos colas 0.02559984 Valor crítico de t (dos colas) 3.18244631

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65

Cuadro 8. Análisis de comprobación T1 VS T2

Prueba t para medias de dos muestras emparejadas

Variable 1 Variable 2

Media 72.3768939 74.4223485

Varianza 8.49247685 24.2886966

Observaciones 4 4

Coeficiente de correlación de Pearson 0.17402043 Diferencia hipotética de las medias 1 Grados de libertad 3 Estadístico t -1.15556927 P(T<=t) una cola 0.16576773 Valor crítico de t (una cola) 2.35336343 P(T<=t) dos colas 0.33153547 Valor crítico de t (dos colas) 3.18244631

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66

INFESTACIÓN DE Macrosiphon euphorbiae

Cuadro 9. Evaluación de grado de infestación según la escala antes y

después de la aplicación con Perfekthion.

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

22 DDS

(6/11/2013)

1.4

1.3

1.4

25 DDS

(09/11/2013)

3.0

3.0 2.9

28 DDS

(12/11/2013)

1.1

1.1

1.1

31 DDS

(15/11/2013)

2.7

2.5

2.6

2.1 2.0 2.0

DESVST

0.9

0.9

0.9

Figura 44. Gráfico de los grados de infestación de Macrosiphon euphorbiae en diferentes fechas de monitoreo.

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67

Cuadro 10. Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de

Macrosiphon euphorbiae, a los 22 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 4.2 1.4 0.04 Columna 2 3 3.8 1.26666667 0.01333333 Columna 3 3 4.2 1.4 0.04

ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de las

variaciones Suma de

cuadrados Grados de

libertad Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 0.03555556 2 0.01777778 0.57142857 0.592704 5.14325285 Dentro de los

grupos 0.18666667 6 0.03111111

Total 0.22222222 8

Cuadro 11. Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de

Macrosiphon euphorbiae, a los 25 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 9 3 0 Columna 2 3 9 3 0 Columna 3 3 8.7 2.9 0.01

ANÁLISIS DE VARIANZA

Origen de las variaciones

Suma de cuadrados

Grados de

libertad Promedio de los cuadrados F Probabilidad

Valor crítico para F

Entre grupos 0.02 2 0.01 3 0.125 5.14325285 Dentro de los

grupos 0.02 6 0.00333333

Total 0.04 8

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68

Cuadro 12. Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de

Macrosiphon euphorbiae, a los 28 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 3.4 1.13333333 0.01333333 Columna 2 3 3.2 1.06666667 0.01333333 Columna 3 3 3.2 1.06666667 0.01333333

ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de

las variaciones

Suma de cuadrados

Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 0.00888889 2 0.00444444 0.33333333 0.729 5.14325285

Dentro de los grupos 0.08 6 0.01333333

Total 0.08888889 8

Cuadro 13. Análisis de varianza de la variable porcentaje de infestación de

Macrosiphon euphorbiae, a los 31 días después de la siembra

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 8 2.66666667 0.01333333 Columna 2 3 7.6 2.53333333 0.01333333 Columna 3 3 7.8 2.6 0.04

ANÁLISIS DE

VARIANZA Origen de

las variaciones

Suma de cuadrados

Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 0.02666667 2 0.01333333 0.6 0.5787037 5.14325285

Dentro de los grupos 0.13333333 6 0.02222222

Total 0.16 8

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69

AREA FOLIAR

Cuadro 14. Evaluación de área foliar de Brassica rapa L.

AREA FOLIAR(cm2)

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

18 DDS 100 264 535

22 DDS 421 572 742

25 DDS 575 875 1,107

28 DDS 777 1,020 1,215

32 DDS 1,033 1,155 1,225

35 DDS 1,150 1,225 1,225

676 852 1,008

DESVST 392 370 297

Figura 45. Incremento del área foliar de las tres variedades en diferentes

fechas de evaluación.

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70

Cuadro 15. Análisis de varianza del área filiar de las variedades Fuku Komachi,

Tokio Cross y Just Right, a los 18 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 299.5 99.8333333 470.583333 Columna 2 3 791.5 263.833333 95.0833333 Columna 3 3 1604.5 534.833333 508.083333

ANÁLISIS DE VARIANZA

Origen de las

variaciones Suma de

cuadrados

Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 289562 2 144781 404.510361 3.99E-07 5.14325285

Dentro de los grupos 2147.5 6 357.916667

Total 291709.5 8

Cuadro 16. Análisis de varianza del área filiar de las variedades Fuku

Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 35 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 3451 1150.33333 1282.33333 Columna 2 3 3675 1225 0 Columna 3 3 3675 1225 0

ANÁLISIS DE VARIANZA Origen de

las variaciones

Suma de cuadrados

Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 11150.2222 2 5575.11111 13.0428906 0.00653907 5.14325285

Dentro de los grupos 2564.66667 6 427.444444

Total 13714.8889 8

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71

COSECHA

Cuadro 17. Rendimiento de raíces de buen calibre kg/m2.

37- 40 DDS 21/11/2013 PESO kg/m2 FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

T1 T2 T3

I 2.94 2.31 1.98

II 2.02 2.30 1.64

III 2.78 3.31 1.62

2.58 2.64 1.75

DESVST 0.49248506 0.58128041 0.20336134

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

45 m2 116.086 118.821 78.577 kg

10000 m2 25796.889 26404.667 17461.556 kg

Cuadro 18. Análisis de varianza del rendimiento de las vari

edades Fuku Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 37 días

después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN

Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza Columna 1 3 7.73906667 2.57968889 0.24254153 Columna 2 3 7.9214 2.64046667 0.33788692 Columna 3 3 5.23846667 1.74615556 0.04135583

ANÁLISIS DE VARIANZA

Origen de las

variaciones Suma de

cuadrados Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 1.49826412 2 0.74913206 3.61443066 0.093301013 5.14325285

Dentro de los grupos 1.24356857 6 0.20726143

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72

Total 2.74183269 8 Cuadro 19. Pesos de raíces de mala calidad (descarte) kg/m2.

37-40 DDS 21/11/2013

PESO kg/m2

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

I 0.43 0.85 0.46

II 0.53 0.91 0.86

III 0.25 0.57 0.64

0.401 0.774 0.656

DESVST 0.14480041 0.18074242 0.20186677

FUKU KOMACHI TOKYO CROSS JUST RIGHT

45 m2 18.066 34.811 29.502 kg

10000 m2 4014.667 7735.778 6556.000 kg

Cuadro 20. Análisis de varianza del rendimiento de las variedades Fuku

Komachi, Tokio Cross y Just Right, a los 37 días después de la siembra.

Análisis de varianza de un factor

RESUMEN

Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza

Columna 1 3 1.2044 0.40146667 0.02096716

Columna 2 3 2.32073333 0.77357778 0.03266782

Columna 3 3 1.9668 0.6556 0.04075019

ANÁLISIS DE VARIANZA

Origen de las

variaciones Suma de

cuadrados Grados de

libertad

Promedio de los

cuadrados F Probabilidad Valor crítico

para F

Entre grupos 0.21696919 2 0.10848459 3.44814511 0.10070693 5.14325285

Dentro de los grupos 0.18877035 6 0.03146172

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73

Total 0.40573954 8

Cuadro 21. Porcentajes de raíces buenas y malas de la cosecha.

Porcentaje de cosecha

FUKU

KOMACHI

TOKYO

CROSS JUST RIGHT

% raíces bueno 86.5 77.3 72.7

% raíces malo 13.5 22.7 27.3

% de cosecha total 100 100 100

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74

Cuadro 22. Costos de producción de Brassica rapa L.

COSTOS DE PRODUCCION DE NABO

INFORMACION GENERAL

CULTIVO : Nabo

PERIODO VEGETATIVO : 40 días

EXTENSION : 342 m2

RENDIMIENTO Kg. : 795

costos variables

labor UNIDAD CANT. COSTO UNIT. COSTO s/

Aradura Jornal 1 30 30.00

Surcado Jornal 1 25 25.00

limpieza de terreno Jornal 0.5 30 15.00

nivelación Jornal 0,5 30 15.00

Jornales Jornal 2 30 60.00

Cosecha Jornal 2 30 60.00

insumos

Semilla 5.00

Fertilizante 25.00

Insecticida 6.00

Otros 15.00

costo total 256.00

rendimiento kg 795.00

precio de venta S/ 1.00

Valor bruto de la producción 795.00

Costo total 256.00

Utilidad bruta 539.00

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75

ESTADO NUTRICIONAL DE LAS PLANTAS Y SU RELACION CON PLAGAS Y ENFERMEDADES

El efecto de la nutrición mineral de

las plantas se analiza como:

Nitrógeno

- Aumento de productividad

- Calidad del producto postcosecha

- Resistencia de las plantas al ataque de

plagas y enfermedades

- La nutrición mineral puede aumentar ó

disminuir la resistencia al ataque de

plagas y enfermedades debido a:

* Cambios en la anatomía (células

epidérmicas más gruesas y mayor grado

de lignificación y/o silificación.

Formación de barreras mecánicas.

* Mediante cambios en las propiedades

fisiológicas y bioquímicas (producción

de sustancias repelentes ó inhibidoras) es

decir síntesis de toxinas (Fitoalexinas)

(Marschner 1986)

Altas concentraciones de nitrógeno

reduce la producción de compuestos

fenólicos (fungistáticos) y de lignina de

las hojas disminuyendo la resistencia de

los patógenos obligados, pero no a los

patógenos facultativos. Las aplicaciones

altas de nitrógeno aumentan las

concentraciones de aminoácidos y de

amidas en el apoplasto y en la superficie

foliar, los que aparentemente tienen

mayor influencia que los azucares en la

germinación y desarrollo de las conidias

favoreciendo el desarrollo de

enfermedades fungosas (Marschner,

1986).

Cuadro 23. Relación de nutrición con plaga y enfermedades.

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76

(Marschner, 1986)

Cuadro 24. Resumen del efecto de los niveles de N y K en la severidad de

las enfermedades causadas por patógenos.