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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TESIS DE GRADO
PRESENTADA AL HONORABLE CONSEJO DIRECTIVO COMO REQUISITO PREVIO A
LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA.
TEMA
“DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE
MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX”
AUTOR
ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA
DIRECTOR
Dr. ALFREDO MITE VIVAR
GUAYAQUIL-ECUADOR
2011
La responsabilidad por las ideas,
Investigaciones, resultados y conclusiones
Sustentadas en ésta tesis corresponden
Exclusivamente al autor.
ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA
Dr. Carlos Eduardo Cedeño Navarrete
RECTOR.
Dr. Mario Humberto Cobo Cedeño
DECANO.
Abg. Fidel Fausto Romero Bajaña
SECRETARIO.
Dr. Alfredo Mite Vivar.
DIRECTOR DE TESIS.
“DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE
MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX”
ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA
TESIS DE GRADO
PRESENTADA AL HONORABLE CONSEJO DIRECTIVO COMO REQUISITO PREVIO A
LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:
MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA.
Los Miembros del Tribunal de Sustentación designados por el Honorable Consejo Directivo
de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, le damos por Aprobada la presente
investigación.
Dr. Alfredo Mite Vivar
PRESIDENTE
Dr. Luis Placencio Triviño Dr. Oscar Macías Peña
EXAMINADOR PRINCIPAL EXAMINADOR PRINCIPAL
Dr. Mauro Loor Macías
EXAMINADOR SUPLENTE
DEDICATORIA
Este trabajo de investigación se lo dedico en primer lugar a dios; después a mi
hija y mi esposa por estar a mi lado y darme fuerza cada día.
Dedico este trabajo a las personas que amo y quiero en especial a mi madre; mis
hermanos y mi abuelita por ayudarme y guiarme en este camino que me ha tocado
recorrer y gracias a su ayuda y consejos siempre he seguido adelante.
A los queridos Profesores Universitarios que de un modo u otro me ayudaron a
seguir adelante en mi vida personal y profesional. Gracias.
AGRADECIMIENTO
Un sincero agradecimiento a mi director de tesis Dr. Alfredo Mite Vivar, por todo el
tiempo que me ha dado, por sus sugerencias e ideas, por su respaldo y amistad.
Agradezco al Dr. Julio Decker Cadena al Dr. Luis Placencio Triviño, por su invaluable
ayuda y asesoramiento, la cual fue de gran importancia para la realización de la tesis.
Un agradecimiento especial a la Dra. María de Lourdes Salazar
por su apoyo y comentarios para la realización de la tesis.
PENSAMIENTO
El humano es un ser altamente adaptable, se acostumbra a todo el
problema es cuando solo es a lo malo, siempre cuesta el doble el bien y
la recompensa llega tarde, somos tan impacientes que nunca la
esperamos. La vida está llena de oportunidades, solo tenemos que ser
observadores y tener la valentía para tomarlas, la perfección se alcanza
con el trabajo.
ÍNDICE
DEDICATORIA…………………….……………...……………………………….ⅰ
AGRADECIMIENTO……………….……………...………………………………ⅱ
PENSAMIENTO…………………….……………...…………………………..…..ⅲ
ÍNDICE………………………………….……………...…………………………...ⅳ
LISTA DE CUADROS…………………………………...…………………………ⅴ
LISTA DE FIGURAS…………………………………………………………….…ⅵ
LISTA DE ANEXOS.…………………………………………………………….…ⅶ
INTRODUCCIÓN……………………………………...………………………….…1
1. OBJETIVOS...... ………………………………...……………………...................4
II. REVISION DE LITERATURA……………………....………………………...…5
2.1 GENERALIDADES………………………………………………………..…….5
2.2 AGENTE ETIOLOGICO……………………………………………………….. 5
2.3 DISTRIBUCION GEOGRAFICA…………………….…………….. ……….... 6
2.4 TAXONOMIA………………………………………...……….…….. ………… 6
2.5 BREVE HISTORIA …………………………………………….………………. 6
2.6 MORFOLOGIA……………………………………………….………………… 8
2.7 CICLO DE LA EHRLICHIA CANIS …………………...……..…….. ……...... 8
2.8 VECTORES………………………………………..……...…………………. … 9
2.9 TRANSMICIÓN………………………………………………………………….9
2.10 FISIOPATOLOGIA……………………………………………..…….............10
2.11 SISTEMAS AFECTADOS ……………………………………………..……..11
2.12 PATOGENIA…………………………………………………………………..12
2.13 SIGNOS CLINICOS Y ANORMALIDADES DE LABORATORIO…….......13
2.14 LESIONES……………………... ………………..………………………..…. 15
2.15 ALTERACIONES BIO PATOLOGICAS………...…………………….. ……16
2.16 DIAGNOSTICO…………………………………………..…………...………21
2.17 DIAGNOSTICO DIFERENCIAL…………………...……………...………. ..25
2.18 TRATAMIENTO………………………………….………………………….. 25
2.19 PRONOSTICO Y PREVENCIÓN…………….....…………...……………. .. 27
2.20 SALUD PÚBLICA.…………………………..………………...…………… ..28
2.20 GENERALIDADES LYME…………………………………………………..29
2.21 ETIOLOGIA…………………………………………………………………..29
2.22 PATOGENIA………………………………………………………………….30
2.23 SIGNOSCLINICOS Y DIAGNOSTICO DIFERENCIAL……………………31
2.24 DIAGNOSTICO……………………………………………………………….31
2.25 TERAPEUTICA Y MEDICAMENTOS PREFERIDOS……………………...32
2.26 SALUD PUBLICA…………………………………………………………….32
2.27 GENERALIDADES DIROFILARIA INMITIS………………………………33
2.28 ETIOLOGIA…………………………………………………………………...34
2.29 CICLO EVOLUTIVO…………………………………………………………34
2.30 SINTOMAS……………………………………………………………………35
2.31 DIAGNOSTICO………………………………………………………………36
2.32 TERAPEUTICA……………………………………………………………….36
2.33 ZOONOSIS……………………………………………………………………41
2.34 GENERALIDADES ANAPLASMA………………………………………….42
2.35 HISTORIA RELEVANTE…………………………………………………….42
2.36 FISIOPATOLOGIA……………………………………………………………43
2.37 SIGNOS CLINICOS…………………………………………………………...43
2.38 DIAGNOSTICO DIFERENCIAL E IMPORTANCIA………………………..43
2.39 TRATAMIENTO………………………………………………………………44
III. HIPOTESIS……………………………………………...........………...……... 44
IV. MATERIALES Y MÉTODOS…………….…...……...………….…………… 45
4.1 CARACTERISTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.……………………………45
4.2. MATERIALES…………………………………………………………………45
4.2.1 DE CAMPO …………………………………..……………….………… .… 45
4.2.2 DE LABORATORIO……………………….………………..….………… ... 46
4.2.3 DE OFICINA…………………………….…………………...…..……….… 46
4.3 METODO DE TRABAJO ………………………..…………...…….………… 46
4.3.1 DE CAMPO …………………………………………………...……..….……46
4.3.2 DE LABORATORIO…………………………………….…………..………. 46
4.3.3 DE LA TECNICA UTILIZADA……….………...…..……………………….47
PROCEDIMIENTO……………………………………………………………47
1. MUESTREO ……………………………………………...………….….….47
2. LABORATORIO ……………………………………...……………..…… 47
4.3.4 DE LA DISTRIBUCIÓN DE LOS ANIMALES EN EL ESTUDIO…………50
4.3.5 DEL ANALISIS ESTADÍSTICO……………………….……………….……50
V. RESULTADOS y DISCUSIÓN.……...……………..……………...……...…....52
VI. CONCLUSIONES Y DISCUSIONES...………………………..……………....60
6.1. CONCLUSIONES……………………………………………………………...60
6.2. DISCUSIONES…………….…………………………………………………..61
VII. RECOMENDACIONES.….……………………...…………...…………….…63
VIII. RESUMEN…………………………………………………………………..III.
SUMMARY………………………...……………………………………………….65
IX. BIBLIOGRAFÍA….…………………...………………………….....................66
X. ANEXOS….………………...………...………………………………................70
11
LISTA DE CUADROS
CUADRO TÍTULO PÁGINA
# #
1 INCIDENCIA DE ENFERMEDAD HEMATICAS EN 52
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO.
2 INCIDENCIA DE ENFERMEDADEA HEMATICAS EN 53
CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO POR ZONA
3 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 54
CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO DEACUERDO
AL SEXO.
4 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 56
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO
Y PROCEDENCIA.
5 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 57
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO;
DIAGNÓSTICO Y ZONA.
6 INCIDECIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 58
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR EDAD;
DIAGNÓSTICO Y ZONA.
12
LISTA DE FIGURAS.
FIGURA TÍTULO PÁGINA
# #
1 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 52
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO.
2 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 54
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR ZONA.
3 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 55
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO DEACUERDO
AL SEXO.
4 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 56
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO
Y PROCEDENCIA.
5 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN 58
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO;
DIAGNOSTICO Y ZONAS.
6 INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HAMATICAS EN 59
CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR EDAD;
DIAGNOSTICO Y ZONAS.
13
LISTA DE ANEXOS.
ANEXO TÍTULO PÁGINA
# #
I EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE
PRUEBA No PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 70
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA LAS ZONAS.
II EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 71
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA EL SEXO.
III EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 72
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA Y
EL SEXO HEMBRA.
IV EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 73
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA Y
EL SEXO MACHO.
V EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 74
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y SEXO HEMBRA.
14
VI EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 75
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
DIAGNOSTICO ANAPLASMOSIS Y SEXO HEMBRA.
VII EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 76
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y ANAPLASMOSIS
SEXO HEMBRA.
VIII EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 77
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y SEXO MACHO.
IX VIII EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 78
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y ANAPLASMA SEXO MACHO.
X EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 79
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD 4-12 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA
15
XI EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 80
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA.
XII EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 81
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD MAS DE 60 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA.
XIII EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 82
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD DE 4 A 12 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA.
XIV EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 83
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA.
XV EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 84
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA Y
EHRLICHIA.
16
XVI EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA
PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA 85
PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA
EDAD MAS DE 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA
Y EHRLICHIA.
XVII ANALISIS DE SENSIVILIDAD METODO DE DIAGNOSTICO. 86
XVIII TABLA DE χ2 (chi cuadrado) 87
XIX FOTOS DEL PROCESO DE DIAGNOSTICO EN ENFER. 88
HEMATICAS CANINAS EN LA CIUDAD DE MILAGRO.
XX HOJAS DE REGISTRO. 95
17
INTRODUCCIÓN
En el país es cada vez más notorio el interés de los propietarios de las mascotas
por brindarles una mejor atención y cuidado. De ahí surge la importancia de los
profesionales en medicina veterinaria, quienes se encargan de asesorar en el control y
manejo para poder darles una mejor calidad de vida.
Sin embargo hasta el momento los trabajos de investigación sobre el sinnúmero
de enfermedades que aquejan a los cánidos son escasos, y los que hay no se dirigen
a áreas específicas como la enorme población de parásitos existentes en climas
húmedos tropicales como el nuestro, los cuales son el origen de múltiples
padecimientos que afectan el crecimiento y desarrollo normal de nuestras mascotas.
Esto representa una gran pérdida no solo económica sino sentimental, ya que
estos seres forman parte de nuestras vidas, están en constante contacto con nosotros y
si no tenemos el conocimiento pleno de qué enfermedades pueden atacarlos o a qué
riesgos están expuestos en nuestro entorno no sabremos cómo actuar para
protegerlos.
Este trabajo investigativo va dirigido a un área específica, que es parte de las
enfermedades causadas por parásitos chupadores externos como son: Las garrapatas
y los mosquitos, los mismos que son portadores y trasmisores de enfermedades como
Ehrlichia, Anaplasma y Lyme, enfermedades transmitidas por las garrapatas y
Dirofilariasis enfermedad cuyo vector es el mosco.
El riesgo de que nuestra mascota en su tiempo de vida pueda padecer de una o
varias de estas afecciones es alto. El conocimiento sería la única opción que nos
llevaría a hacer un buen plan de prevención y cuidado y así garantizar la salud y
bienestar de nuestros caninos.
Los vectores de estas enfermedades son muy comunes en nuestro medio, ahí
radica la importancia de realizar un buen diagnóstico y poder tener la seguridad en
18
base a exámenes y sintomatología de que nuestro paciente padece de una de estas
afecciones.
La Ehrlichiosis canina, también llamada ehrlichiosis monocítica canina (EMC),
pancitopenia tropical canina, tifus canino, fiebre hemorrágica y síndrome
hemorrágico idiopático, entre otras denominaciones, es una enfermedad ocasionada
por Ehrlichia canis, un microorganismo perteneciente a la tribu EHRLICHIAE,
situada entre las Rickettsieae y las Chlamydiales, parásito intracelular obligatorio de
las células mononucleares del perro y otros canidos.
La Ehrlichia es un microorganismo pleomórfico, cocoide, anaeróbico y gran (-),
del orden rickettsiales, no crece en medios bacteriológicos estándares. Intracelular
obligada tanto en el hospedador vertebrado como en el vector invertebrado. Presenta
tropismo por células sanguíneas (monocitos, granulocitos o plaquetas) de animales y
seres humanos. Trasmitidas por garrapatas, (León, A., 2008).
Anaplasma Phagocytophilum, ex Ehrlichia Phagocytophila, E. equi, y
ehrlichiosis granulocitica humana. Es una infección más leve que la causada por E.
canis, pero produce una variedad de signos clínicos durante la fase aguda, es menos
probable que alcance la cronicidad, en comparación de E. canis. Sin embargo la
reaparición de la infección puede ocurrir si el animal es posteriormente
inmunosuprimido en los meses siguientes a la presentación de la infección. (Fisher,
M. y John. 2007).
Enfermedad de Lyme, enfermedad bacteriana zoonótica común de los perros,
trasmitida por garrapatas, que causa artritis recurrente con claudicación y
ocasionalmente glomerulonefritis, enfermedad cardiaca y neurológica. (Bowman, D.
2007).
La Dirofilariasis, enfermedad causada por el gusano filaria Dirofilaria inmitis.
Las microfilarias se desarrollan en varias especies de mosquitos cuando estos se
alimentan de la sangre del perro, estas entran a través de las lesiones de la picadura,
19
luego migran al ventrículo derecho y arterias pulmonares, apareciendo en la
circulación de 6 a 7 meses después de la infección. (Vademécum veterinario.2002).
Este grupo de enfermedades de las cuales algunas tienen la capacidad de afectar
al humano, se encuentran en nuestro entorno nuestras mascotas y nosotros
convivimos con ellas a diario, un correcto diagnóstico en sus primeros estadios
puede ser la diferencia.
Con la presente investigación sobre la incidencia de enfermedades hemáticas
trataremos de solucionar las pérdidas de las mascotas que ocurren en milagro,
obteniendo el bienestar de sus propietarios.
20
I OBJETIVOS.
1.1. Objetivo General.
Determinar la incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la
ciudad de milagro.
1.2. Objetivos Específicos.
1.2.1. Graficar la zona de mayor incidencia de estas enfermedades.
1.2.2. Precisar la enfermedad hemática más frecuente.
1.2.3. Indicar de acuerdo a la edad quienes son más susceptibles.
21
II. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. GENERALIDADES.
Birchard y Sherdin, (1996), afirman que la Ehrliquiosis canina es una
enfermedad causada por rickettsias, relativamente común en perros, la cual
recientemente ha sido confirmada como zoonosis. Los sinónimos utilizados en
literatura para este trastorno incluyen enfermedad de los perros rastreadores,
pancitopenia canina tropical, fiebre hemorrágica canina y tifus canino. Su
distribución es mundial y logró prominencia en el medio y entre los veterinarios
durante la guerra de Vietnam, cuando una gran proporción de perros militares
contrajeron esta enfermedad. Debido a su naturaleza crónica e insidiosa, la
ehrliquiosis es prevalente durante todo el año más que solo los meses calurosos.
2.2. AGENTE ETIOLÓGICO.
Simon, (2007), señala que la Ehrlichia canis es un agente infeccioso de la
familia Rickettsiacae, pleomorfico intracelular obligado. Existe un gran número
de ehrlichia identificadas recientemente que provocan enfermedad en el perro y
en el humano, así como afecta a muchos animales domésticos. La enfermedad
clásica es una enfermedad con curso agudo a crónico que está provocada por una
infección a las células mononucleares.
Kirk, (1994), escribe que las Ehrliquiosis son enfermedades veterinarias y
humanas trasmitidas por las garrapatas y causadas por las bacterias del género
ehrlichia, familia rickettisiaceae. Los microorganismos son parásitos
intracelulares obligados gran negativos y pleomorfos. Dentro de sus huéspedes
mamíferos las bacterias muestran tropismos por leucocitos y se multiplican
dentro de endosomas, produciendo inclusiones citoplasmáticas llamadas
mórulas.
2.3. DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA.
22
Bermeo, (2003), comenta que la Ehrlichiosis se ha encontrado en Japón,
Malasia y Estados Unidos, siendo los agentes etiológicos para los países
asiáticos E. sennetsu y para los Estados Unidos E. chaffeensis.
En general los vectores para la Ehrliquiosis tanto humana como animal son las
garrapatas, de las cuales se han caracterizado cuatro distintos géneros que son:
Amblyomma, Dermacentor, Rhipicephalus e Ixodes. En México se han
descubierto hasta ahora humanos a E. chaffeensis y el perro a E. canis.
2.4. TAXONOMIA TRIBU EHRLICHIEAE.
Sánchez, (2001), publica:
ORDEN: Rickettsiales
FAMILIA: Rickettsiaceae
TRIBU: Ehrlichieae
GÉNERO: Ehrlichia Cowdria Neorickettsia
ESPECIE: E. canis C. ruminatum N. helminthoeca
E. chaffensis N. elokominica
E. equi
E. ewingii
E. granulocitica humana
E. phagocytophila
E. platys
E. risticii
E. sennetsu
2.5. BREVE HISTORIA.
Sánchez, (2001), menciona que la Ehrlichia fue identificada en 1935 en el
Instituto Pasteur de Argelia por Donatein y Lestoquard tras observar que algunos
23
perros infectados por garrapatas desarrollaban ocasionalmente un proceso febril
agudo que cursaba con anemia.
En las extensiones sanguíneas de los perros infectados observaron unos
pequeños microorganismos en el interior de monocitos, creyendo en un
momento que podría tratarse de una especie de Rickettsia, por lo que recibió el
nombre de Rickettsia Canis. Casi una década después, Moshkovskii sustituyo
ese nombre por el actual Ehrlichia Canis, como reconocimiento a Paul Ehrlich,
gran bacteriólogo alemán.
A partir de entonces se describieron casos de ehrlichiosis canina en distintos
países del centro y sur del África, en la India y en Estados Unidos, siendo
considerada como una enfermedad leve caracterizada por presentación de fiebre,
vómitos y secreción oculo-nasal.
En la década del sesenta se describió en perros militares británicos destacados en
Singapur y en perros americanos destacados en Vietnam, un proceso patológico
agudo que cursaba con manifestaciones hemorrágicas graves, pancitopenia y
emaciación, causando un gran número de bajas en estas poblaciones caninas.
Debido a dudas surgidas en torno a su etiología, este proceso recibió muchos
nombres tales como rickettsiosis canina, tifus canino, fiebre hemorrágica canina,
síndrome hemorrágico idiopático, enfermedad del perro de rastreo y
pancitopenia tropical canina, si bien el más aceptado fue este último. Años más
tarde, distintos trabajos señalaron a la E. canis como el agente causal de la
pancitopenia tropical canina, comprobándose que el poder patógeno de estos
microorganismos no era tan benigno como se pensaba, al menos en ciertas
poblaciones caninas.
Gómez, (2007), refiere que la Ehrlichia fue descrita por primera vez por
DONATEIN y LESTOQUARD en perros en ARGELIA en 1935. El primer
reporte en las ANTILLAS fue en 1957 en perros de la isla de ARUBA. USA Y
SUDAMERICA en 1962.
24
2.6. MORFOLOGÍA.
Bermeo,(2003), escribe que la Ehrlichia canis es un microorganismo
pleomórfico, cocoide y gran negativo que se observa en forma individual
(cuerpo elemental) o en racimo (mórulas), en el citoplasma de leucocitos
infectados, principalmente linfocitos y monocitos, cuando se emplean colorantes
tipo Romanowsky.
Cuando están aisladas se denominan cuerpos elementales y miden 0.4 micras de
diámetro, pero que tienden a agregarse, formando inclusiones inmaduras
denominadas ¨cuerpos iniciales¨ que miden de 0.4 a 2.5 micras de diámetro, para
luego formar una mórula, la cual se puede distinguir con mayor facilidad por su
mayor tamaño que varía entre 1 y 4 micras.
Morfológicamente las otras variedades son similares, sin embargo, E. platys
infecta específicamente a las plaquetas y E. equi principalmente neutrófilos y
eosinófilos. La E. canis es considerada agente causal de la ehrlichiosis humana.
Bermeo, (2003).
2.7. CICLO DE LA EHRLICHIA CANIS.
Angulo, (2005) acota que: DAVOUST (1993) Y GREGORY (1990) citados por
VIGNARD-ROSEZ (2002), sostienen que el ciclo de la EHRLICHA está
constituido por tres fases:
1. Penetración de los cuerpos elementales en los monocitos, en los cuales
permanecen en crecimiento por aproximadamente 2 días.
2. Multiplicación de Ehrlichia por un periodo de 3 a 5 días, con la formación de
los cuerpos iníciales.
3. Formación de las mórulas estando estas formadas por un conjunto de cuerpos
elementales envueltos por una membrana.
25
DAVOUST (1993); COUTO (1998) citados por VIGNARD-ROSEZ (2002)
señalan que en una misma célula podemos encontrar más de una mórula, esta
permanece en la célula hospedera entre 3 a 4 días para luego ser liberada por
lisis celular.
2.8. VECTORES.
Schaer, (2006), sostiene que la garrapata marrón del perro, Rhipicephalus
sanguineus, es el artrópodo vector de E. canis. Aunque las garrapatas vectores
no sirven de reservorio de la infección, son capaces de albergar organismos
infecciosos durante un año y pueden trasmitir la enfermedad a perros
susceptibles durante al menos 155 días después de la infección.
2.9. TRANSMISIÓN.
Sainz,(2010), menciona que en general, Ehrlichia sp. se transmite por la
picadura de garrapatas. En concreto, en el caso de E. canis existe un único
vector conocido: Rhipicephalus sanguineus. Esta garrapata al alimentarse de un
perro con ehrlichiosis, puede ingerir glóbulos blancos con ehrlichia en su
citoplasma. Este hecho es mucho más frecuente si la garrapata se fija a perros en
fase aguda de la enfermedad, ya que es en esta fase cuando se encuentra un
mayor número de leucocitos infectados en sangre. Hibter et. al,(1986).
La transmisión de E. canis en la garrapata es de tipo trans-estadial, es decir, de
larva a ninfa y de ninfa a adulto, sin que se haya podido demostrar hasta el
momento la existencia de transmisión trans-ovárica (de una generación de
garrapatas a la siguiente).
Brichard, (1986), escribe que al vector y reservorio es la garrapata café común
del perro (Rhipicephalus sanguíneus), que transmiten microorganismos por lo
menos durante cinco meses posinchamiento.
26
La ehrliquiosis así como otras enfermedades provocadas por Rickettsias, pueden
ser transmitidas en forma yatrogena por transfusiones con sangre contaminada.
El periodo de incubación es de siete a veintiún días.
El microorganismo se transmite a través de la mordida de las garrapatas, las
cuales ingieren el microorganismo de un huésped infectado.
2.10. FISIOPATOLOGÍA.
Schaer, (2006), escribe que normalmente, la ehrlichiosis monocítica canina se
caracteriza por una reducción de los elementos celulares sanguíneos. E. canis
provoca fases: aguda, sub clínica y crónica de la enfermedad. Durante la fase
aguda el organismo se multiplica en las células mono nucleares del hígado,
bazo y ganglios linfáticos. Las células infectadas se transportan a través de la
sangre a otros tejidos, especialmente a las meninges, pulmones y riñones,
donde se fijan al endotelio vascular produciendo vasculitis e infección del
tejido subendotelial. Durante esta fase aparece trombocitopenia debido al
consumo, secuestro y destrucción de las plaquetas. La anemia se desarrolla
progresivamente debido a la supresión de la eritropoyesis y a la destrucción
acelerada de eritrocitos.
Durante la fase sub clínica, la persistencia de la trombocitopenia, leucopenia y
anemia es variable. La enfermedad crónica ocurre en los perros incapaces de
desarrollar una respuesta inmune eficaz frente al microorganismo.
La página galgos publica que una vez la garrapata transmite la infección al
perro, el período de incubación puede variar de 8 a 20 días. Tras este, el animal
puede pasar por tres fases clínicas consecutivas.
En la primera fase (fase aguda) los animales demuestran pérdida de apetito,
apatía, pérdida de peso, aumento del tamaño de los ganglios (linfadenopatia),
aumento del tamaño del hígado y/o bazo, tendencia a hemorragia, signos
neurológicos (como temblores o síntomas derivados de la presencia de la
27
Ehrlichia en las meninges), diferentes grados de dolor más o menos
localizado, dificultad respiratoria (disnea). Esta fase aguda suele resolver en 1-
2 semanas aún sin tratamiento, cuando los síntomas son leves, incluso puede
pasar completamente desapercibida.
La segunda fase tiene lugar 6-9 meses después de la infección. En esta fase
únicamente se aprecia alteraciones en analítica (principalmente disminución
del número de plaquetas, y en el resto de células sanguíneas).
Si el sistema inmune es inefectivo, el animal entrará en la tercera fase (fase
crónica), desarrollándose antes o después una serie de signos clínicos que en
algún caso pueden comprometer gravemente la vida del paciente. Los
principales son los descritos en la fase aguda como hemorragias, distintos
grados de anemia, adelgazamiento, debilidad, alteraciones neurológicas,
infecciones bacterianas por la inmunodepresión que se produce.
2.11. SISTEMAS AFECTADOS.
Barr, (2007), acota que la afección multisistémica, tendencia hemorrágica por
trombocitopenia y vasculitis, linfadenopatia, esplenomegalia, sistema nervioso,
ojos (uveítis anterior), y pulmones rara vez afectados por la vasculitis.
2.12. PATOGENIA.
Beer, (1983), sostiene que la infección de los vertebrados ocurre cuando la
garrapata se alimenta de sangre y sus secreciones salivales contaminan el sitio
donde muerde.
Después de una incubación de ocho a veinte días, sobrevienen las tres etapas de
la enfermedad en las infecciones naturales y experimentales.
28
La fase aguda dura de dos a cuatro semanas. La replicación del
microorganismo ocurre dentro de mononucleares infectados, entonces el
microbio se disemina a órganos que contienen fagocitos mono nucleares. Estos
órganos blancos incluyen el bazo, hígado y ganglios linfáticos. La hiperplasia
linforreticular resultante puede agrandar el órgano. Las células enfermas en
apariencia, atacan la microbasculatura o migran a las superficies
subendoteliales de los órganos blancos y se produce vasculitis o inflamación.
La disminución de la vida de las plaquetas (no merma su producción), causa
trombocitopenia. La destrucción plaquetaria o la utilización origina vasculitis y
respuesta inflamatoria o respuestas inmunológicas o de coagulación del
huésped, que causan trombocitopenia. La disfunción plaquetaria ocurre de
forma directa por la infección o interferencia por hiperglobulinemia.
El número de leucocitos varía durante la fase aguda. Sin embargo el aumento
del secuestro por mecanismos inmunológicos o inflamatorios que utilizan
leucocitos circulantes puede disminuir el número. También llega a verse menor
producción de células rojas como resultado de la respuesta inflamatoria.
La fase subclínica de la ehrliquiosis se relaciona con la persistencia del
microbio y el aumento de la respuesta de anticuerpos. Esta refleja la ineficacia
del huésped para eliminar el microorganismo intracelular. Cabe persistan
hallazgos hematológicos similares a la fase aguda durante este estadio de la
enfermedad, aun sin signos clínicos.
Una respuesta inmune ineficaz del huésped origina la fase crónica. La gravedad
de la enfermedad se relaciona con la cepa del germen infectante, enfermedades
concomitantes, susceptibilidad de raza y edad del animal. La producción
alterada de la médula ósea de elementos sanguíneos es la principal
característica de ésta fase.
2.13. SIGNOS CLÍNICOS Y ANORMALIDADES DE LABORATORIO.
29
Rhea, (2004), menciona que los signos clínicos varían en las diferentes fases de
la enfermedad.
Fase aguda: Los signos clínicos y los datos del examen físico son
principalmente el resultado de la hiperplasia diseminada del SFM.
(linforreticular) y de anormalidades hematológicas. Por lo tanto en la
presentación clínica predominan signos como: pirexia, linfadenopatia
generalizada, esplenomegalia, hepatomegalia, disnea o intolerancia al ejercicio
debida a neumonitis signos neurológicos causados por meningoencefalitis, y
petequias y equimosis causados por trombocitopenia. Los títulos de anticuerpos
pueden ser negativos durante esta fase, ya que se requieren tres semanas para
que se desarrollen títulos significativos.
Las anormalidades hematológicas y bioquímicas incluyen: trombocitopenia
anemia leve a intensa, leucopenia o leucocitosis, citología de la médula ósea
hipercelular, hiperglobulinemia leve y elevaciones ligeras de la actividad de las
enzimas hepáticas.
Fase subclínica: Los pacientes están asintomáticos. Pueden identificarse
cambios hematológicos y bioquímicos leves.
Fase crónica: Los signos clínicos pueden ser leves o intensos, se desarrollan
entre 1 a 4 meses después de la inoculación del microorganismo, y reflejan las
anormalidades de la hiperplasia del SFM y hematológicas. Se puede observar
cualquiera de los siguientes signos: pérdida de peso, pirexia, sangrado
espontáneo, palidez debida a la anemia, linfadenopatia generalizada,
hepatosplenomegalia, uveítis anterior o posterior, o ambas, signos neurológicos
causados por meningoencefalomielitis y edema intermitente de los miembros.
Birchard y Sherding mencionan que las anormalidades hematológicas y
bioquímicas en general son pronunciadas e incluyen: monocitopenia,
bicitopenia o pancitopenia debido a la hipoplasia de la medula ósea;
30
plasmacitosis de la medula ósea o esplénica; linfocitosis en ocasiones
compuesta de grandes linfocitos granulares; hiperglobulinemia causada por
gammapatia policlonal (o menos a menudo monoclonal); hipoalbuminemia y
proteinuria.
PUNTO CLAVE: Los signos clínicos, datos físicos y anormalidades de
laboratorio en perros con ehrliquiosis crónica pueden semejarse al mieloma
múltiple o la leucemia linfocitica crónica.
Rhea, (2004), menciona que la existencia simultánea de otras enfermedades
transmitidas por garrapatas o protozoos puede alterar la presentación clínica.
Las manifestaciones clínicas varían en función de la fase de enfermedad y
puede ser más grave en el caso de las infecciones crónicas:
Fiebre, letargo, anorexia, pérdida de peso.
Linfadenomegalia, esplenomegalia.
Petequias, equimosis, epistaxis.
Cambios oculares: uveítis anterior, coriorretinitis, hemorragias retinianas.
Convulsiones, ataxia, síndrome vestibular, temblor intencional, hiperestesia
espinal.
Poliartritis, edema periférico, miositis.
La gravedad viene determinada por cierto número de factores como la edad,
raza (predisposición por pastor alemán) y estado inmunitario del hospedador
Shaw y Cols., (2001ª). Especie y cepa de Ehrlichia. Infección asociada con
otros patógenos transmitidos por garrapatas.
La enfermedad dividida en un principio en formas monociticas y granulociticas
se clasifican ahora en genogrupos:
Es difícil atribuir un grupo de manifestaciones clínicas a cualquier genogrupo o
a formas específicas monociticas/granulociticas.
Las infecciones naturales por E. Canis y E. Chaffeensis pueden provocar
enfermedad más grave (ehrlichiosis clásica) que E.ewingee.
31
Green, (1993), acota que las manifestaciones oculares en la ehrliquiosis canina
resultan de trombocitopenia por hemorragias o por una reacción inflamatoria;
las hemorragias varían de petequias a hemorragias masivas orbitales u
oculares. Los signos oculares adicionales son uveítis anterior bilateral,
glaucoma secundario, desprendimientos retinianos exudativos, cotiorretinitis y
papiledema.
2.14. LESIONES.
Merck, (2000), menciona que: durante la etapa aguda las lesiones generalmente
no son específicas, pero es común observar esplenomegalia y pulmones
decolorados. Histológicamente se evidencia una hiperplasia linforreticular y
manguitos peri vasculares linfociticos y plasmáticos. En los casos crónicos esta
lesión puede ir acompañada de hemorragias difusas y a un aumento de la
infiltración en los órganos de células mononucleares.
2.15. ALTERACIONES BIO PATOLÓGICAS: HEMATOLOGIA,
BIOQUÍMICA SANGUINEA Y URIANÁLISIS.
Sánchez, (2001), refiere que en la Ehrlichia de todos los hallazgos
hematológicos que podemos encontrar en la Ehrlichiosis canina, es la
trombocitopenia la más frecuente en perros con esta enfermedad, apareciendo
de los 15 a 20 días de postinfección y pudiendo persistir durante todas las fases
de la enfermedad.
En fases agudas, la trombocitopenia se debe a un descenso en la vida media de
las plaquetas, más que a una disminución en su producción. Diferentes
mecanismos inmunomediados e inflamatorios motivan el secuestro, consumo y
destrucción prematura de las plaquetas en el bazo, acortando su vida media.
Recientemente se han detectado anticuerpos antiplaquetarios en perros
infectados por E. canis. También se relaciona la trombocitopenia con el
32
consumo de plaquetas secundario a la vasculitis que se presenta en el curso de
la ehrlichiosis.
Junto a la existencia de trombocitopenia, también se pueden presentar
alteraciones en la funcionalidad plaquetaria, fundamentalmente en cuanto a su
agregación y migración en la sangre, la cual parece estar inhibida por una
sustancia sérica (denominada factor de inhibición de migración plaquetaria)
producida por los linfocitos B. Este factor parece ser capaz de impedir la
formación de pseudópodos en las plaquetas y de inducir cambios en su
superficie haciéndolas así más susceptibles a la destrucción por células del
sistema mononuclear fagocitario.
En nuestra experiencia alrededor del 80% de los casos con Ehrlichiosis
presentan trombocitopenia. El recuento plaquetario no siempre se relaciona con
la gravedad de las hemorragias descubriéndose, en ocasiones, importante
variaciones diarias en este parámetro analítico. En este sentido, hemos atendido
algunos perros con recuentos de plaquetas inferiores a 10.000/mm3 sin
hemorragias mientras que con otros recuentos normales pueden tener síntomas
de este tipo debido a alteraciones en la funcionalidad plaquetaria.
También la anemia es un hallazgo frecuente en el curso de la ehrlichiosis
canina; durante la fase aguda, será regenerativa debido al aumento de la
destrucción de los hematíes por mecanismos inmunológicos. Un elevado
número de perros con anemia regenerativa serán positivos al test de Coombs,
lo cual debe ser tenido en cuenta para no incurrir en errores diagnósticos. Estos
resultados sugieren la existencia de una unión inespecífica de
inmunoglobulinas a los eritrocitos o de un proceso autoinmune especifico por
la existencia de anticuerpos frente a la superficie eritrocitaria, lo cual podría
contribuir a la instauración de un cuadro hemolítico agudo en algunos perros
con ehrlichiosis.
Posteriormente, en fases crónicas la anemia será no regenerativa debido a la
destrucción continuada de eritrocitos, la perdida crónica de sangre y la
33
existencia de hipoplasia o aplacía medular. En casos de infección concurrente
con babesia canis o una hemorragia reciente, la anemia puede adquirir un cierto
carácter regenerativo.
El recuento leucocitario es uno de los parámetros más variables en la
ehrlichiosis canina, pudiendo presentarse tanto leucopenia como, menos
frecuentemente, leucocitosis.
También se han encontrado, en relación con la serie blanca, diferentes
alteraciones como neutropenia, linfocitosis y monocitosis. Además se ha
señalado la presencia en la fase crónica, de linfocitos con granulación azurofla
debido a la estimulación constante del sistema inmunitario, granulación que
lógicamente no se especifica de la ehrlichiosis y que podría confundirse con
inclusiones compatibles con ehrlichia.
En algunos casos se pueden ver en sangre circulante células anormales o
indiferenciadas, pudiendo confundirse con aquellas que aparecen en
alteraciones mieloproliferativas.
Llama la atención el hecho de que pese a que la ehrlichiosis históricamente
recibió el nombre de “pancitopenia tropical canina”, realmente el número de
casos con “pancitopenia” es bajo ( en torno al 15%), tratándose generalmente
de animales con pronóstico reservado, en fase crónica de la enfermedad con
hipoplasia o aplacía medular.
Los hallazgos en la médula ósea varían en función de la fase y la gravedad de
la infección, a excepción de la plasmacitosis que suele observarse con mucha
frecuencia. Durante la fase aguda y subclínica se produce una hipercelularidad
de las series megacariocítica y mieloide. Algunos autores describen la
existencia de hipoplasia eritroide en este periodo.
En la fase crónica la medula ósea es hipoplasica, afectando a todas las líneas
celulares y provocando, por tanto, la típica pancitopenia ya comentada. Sin
34
embargo, ocasionalmente se ha observado normocelularidad e hipercelularidad
medular con megacariocitosis y aumento en el número de mastocitos.
BIOQUÍMICA SANGUÍNEA.
En cuanto a la bioquímica sanguínea, debido al estudio antigénico, la
hiperproteinemia motivada por una hiperglobulinemia es un hallazgo muy
frecuente en perros con ehrlichiosis. De hecho aproximadamente el 75% de los
casos de nuestra serie cinca presentaban hiperproteinemia con
hiperglobulinemia. Los niveles séricos de globulinas aumentan
progresivamente en el curso de la enfermedad y adquieren unos valores
elevados de la primera a la tercera semana postinfección.
En la fase crónica, se detectan aumentos importantes de las gamma-globulinas
y descenso en la concentración de albúmina; la fracción betaglobulina también
puede presentar valores elevados. La hiperglobulinemia puede ser indicativa de
una respuesta inmunitaria humoral tan exacerbada como inefectiva.
El proteinograma es una técnica habitualmente empleada en el control post-
tratamiento de perros con ehrlichiosis. Durante la fase crónica el estudio
electroforético de las proteínas séricas suelen mostrar la existencia de una
gammapatia policlonal, con aumento de las fracciones alfa-2, beta y
gammaglobulinas. Con menos frecuencia se han detectado gammapatias con
aspecto monoclonal, por aumento de igG. En cualquier caso tras el tratamiento,
los niveles de globulinas se suelen normalizar entre los tres y nueve meses
post-tratamiento, aunque a veces es necesario esperar incluso hasta más de 18
meses.
La hipoalbuminemia se presenta durante la fase aguda y, normalmente,
desaparece en la subclínica, describiéndose también en las fases crónicas. Esta
hipoalbuminemia puede deberse a su empleo en procesos inflamatorios,
pérdida de peso, proteinuria, malnutrición, hepatopatía concurrente, perdida de
35
proteínas a nivel periférico debido a la existencia de edemas y compensación
debida a la hiperglobulinemia.
No obstante, la existencia de una relación inversamente proporcional entre la
cantidad de proteína perdida en la orina y la concentración sérica de albúmina,
en perros infectados experimentalmente, ha hecho que la proteinuria sea el
factor al que mayor importancia se le conceda en este sentido.
Los aumentos de creatina por encima de los valores fisiológicos de referencia
pueden tener un origen prerenal o renal. Así, se presentan casos de uremia
asociados a glomerulonefritis y a plasmocitosi intersticial renal, que suelen
tener peor pronóstico.
Los parámetros analíticos indicadores de la funcionalidad hepática suelen
presentar valores normales en perros con ehrlichiosis. Sin embargo, se han
descrito aumentos de la ALT (GPT) y de la fosfatasa alcalina,
fundamentalmente en la fase aguda; estos pueden también acompañarse de
hiperbilirrubinemia.
En estos casos con la instauración de una terapia asintomática apropiada junto
a la específica para ehrlichiosis, estos valores a veces disminuyen hasta niveles
fisiológicos, excepto en aquellos animales en los que como consecuencia de la
ehrlichiosis se ha producido una lesión hepática irreversible.
En el caso de presentarse problemas hemorrágicos, el tiempo de hemorragia y
el de retracción del coagulo pueden estar prolongados por la existencia de
trombocitopenia o de trombocitopatia.
Sin embargo el tiempo de protrombina, el tiempo de tromboplastina parcial
activada y los productos de degradación de fibrinógeno suelen ser normales,
excepto en el caso de que se haya instaurado un cuadro de coagulación
intravascular diseminada.
36
URIANALISIS.
Normalmente, no suele ser habitual realizar urianalisis en perros con
ehrlichiosis, salvo si nuestro paciente tiene hipoalbuminemia o insuficiencia
renal. Sin embargo es interesante saber que en un alto porcentaje de perros con
ehrlichiosis se puede encontrar proteinuria y hematuria, con o sin uremia,
relacionándose con la existencia de lesiones glomerulares inmunomediadas.
LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO Y LÍQUIDO SINOVIAL
El análisis de líquido cefalorraquídeo en perros con sintomatología neurológica
muestra elevados niveles de proteínas y pleocitosis mononuclear con gran
número de linfocitos y células plasmáticas.
El líquido sinovial, en casos con artritis, suele presentar una coloración
amarillenta con aumento de la concentración de proteínas y del recuento
celular, con predominancia de neutrófilos maduros (75%) y con algunos
macrófagos y linfocitos.
Aunque ocasionalmente, las típicas mórulas pueden visualizarse tanto en
líquido sinovial como en el cefalorraquídeo.
2.16. DIAGNÓSTICO.
Kirt, (1994), refiere que el diagnóstico de la ehrlichiosis debe iniciarse con la
sospecha, que se basa en signos clínicos consistentes en un paciente que estuvo
en una región endémica de garrapatas durante una a tres semanas antes de la
enfermedad. La forma más rápida de diagnosticar ehrliquiosis, es el hallazgo
de mórulas citoplasmáticas dentro de leucocitos circulantes infectados. Es
frecuente observar mórulas en la circulación durante la ehrliquiosis
granulocitica y por el contrario rara vez se identifica en la ehrliquiosis
monocítica.
37
Las pruebas serológicas son el estudio fundamental para el diagnóstico de
infecciones ehrliquiales, específicamente la inmuno fluorescencia indirecta,
aunque tiene varios inconvenientes. Primero, la identificación de una cero
conversión del cuádruplo (incremento) al antígeno apropiado (es decir una
especie específica de ehrlichia) es retrospectivo y por lo tanto un medio
deficiente para tomar decisiones terapéuticas en una enfermedad aguda.
Rhea, (2004), menciona que en la Ehrlichiosis se presentan las siguientes
anomalías:
ANOMALÍAS HEMATOLÓGICAS:
-Trombocitopenia, aunque en ocasiones la cifra de plaquetas es normal.
-Anemias variables: no regenerativas, regenerativas, inmunomediadas.
-Leucopenia, sobretodo neutropenia.
-Pancitopenia: habitualmente en la fase crónica.
-La linfocitosis es posible.
CAMBIOS DE LA BIOQUÍMICA SÉRICA:
-Hiperproteinemia: hiperglobulinemia mono o policlonal con
hipoalbuminemia.
-Aumento de la alanina transaminasa y de la fosfatasa alcalina.
-La azoemia es posible.
RESULTADO DE LOS ANALISIS DE ORINA:
-Proteinuria.
-Disminución de la densidad específica de la orina.
-En animales inmunodeprimidos es posible la aparición de infecciones
secundarias con bacteriurias.
POSIBLEMENTE PARÁMETROS DE COAGULACIÓN ANÓMALOS:
38
-Prolongación del tiempo de coagulación activado.
-Tiempo de hemorragia prolongado sobre todo a causa de la disfunción de las
plaquetas.
-En ocasiones se aprecian tiempos de protrombina y de tromboplastina parcial
prolongados.
ANÁLISIS DEL LÍQUIDO CEFALORAQUÍDEO (LCR):
-Aumento de proteínas, pleocitosis linfocítica.
CITOLOGÍA DE LA MÉDULA OSEA:
-Líneas celulares híper o hipoplásicas con infiltrados de células plasmáticas.
ARTROCENTESIS:
-Inflamación neutrofílica.
IDENTIFICACIÓN DEL MICROORGANISMO:
-Extensiones de sangre o médula ósea.
-Líquido articular, LCR (raro).
PRUEBAS INMUNOLÓGICAS:
PRUEBAS SEROLÓGICAS:
-La prueba indirecta de anticuerpos inmunofluorecentes (IFI) es la más
habitual.
-Los anticuerpos se detectan 2 – 7 días después de la infección, alcanzan un
pico entre 2 – 5 meses y pueden persistir durante largos periodos.
-Algunos perros asintomáticos en aéreas endémicas pueden presentar títulos
positivos.
-Hay una reacción cruzada serológica entre las diferentes especies de ehrlichia.
PRUEBA DE WESTERN INMUNOBLOT.
39
PRUEBAS DE PCR UTILIZANDO CEBADORES ESPECÍFICOS PARA
CADA ESPECIE.
En un artículo traducido por la Universidad de Argentina se menciona que la
mayoría de los caso de ehrlichiosis canina ocurre en áreas endémicas durante la
primavera y los meses de verano cuando la población de garrapatas es más
activa. El diagnóstico se basa en la anamnesis, presentación clínica y hallazgos
patológicos al examen clínico y se confirma con la prueba de laboratorio. El
diagnóstico se confirma con la visualización de las mórulas en los monocitos
circulantes, detección del aumento en suero contra E. canis, o la demostración
del ADN de E. canis mediante la reacción de la cadena de polimerasa (PCR).
Actualmente, la prueba de inmunofluorescencia indirecta de anticuerpos (IFA)
usando antígenos de E. canis es el test serológico más aceptable.
La prueba DOT-ELISA se ha desarrollado recientemente para usar en clínica.
Estas pruebas requieren un mínimo equipo y permitirán un diagnóstico
serológico de EMC ampliamente disponible. Promete ser una prueba clínica
auxiliar de diagnóstico de gran valor para esta enfermedad.
Cuando se determina el título de anticuerpos contra E. canis mediante la
prueba de inmunofluorescencia indirecta (IFA) en perros, es esencial que el
clínico tenga en cuenta las reacciones cruzadas que se pueden presentar y
pueden confundir el diagnóstico. En áreas endémicas a otras especies de
Ehrlichia las reacciones cruzadas entre E. canis, y E. ewingii, E. equi o E.
risticii deben tenerse en cuenta.
2.17. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL.
Beer, (1993), escribe que en la Ehrlichiosis se tendrán en cuenta las babesiosis
y leishmaniosis. También se excluirán las parasitaciones por vermes y las
enfermedades carenciales.
40
La forma cutánea de la rickettsiosis se parece a la forma exantemática del
moquillo del perro.
2.18. TRATAMIENTO.
Barr, (2007), dice que el paciente internado: estabilización médica inicial para
anemia y/o tendencia hemorrágica resultante de trombocitopenia (solución
electrolítica equilibrada o transfusión sanguínea si se la indica).
Paciente ambulatorio: casos estables, monitorear con frecuencia HC y la
respuesta a la medicación.
Doxiciclina: se observa una mejoría rápida (dentro de las 72 horas del
comienzo del tratamiento) del recuento plaquetario en casos agudos.
Imidocarb dipropinato (imazol [Schering-Plough Animal Health, Union, NJ]):
eficaz contra Ehrlichia canis y babesiosis; alternativa razonable para la
doxiciclina; un pre tratamiento con atropina puede disminuir los efectos
adversos anti colinérgicos (salivación, secreción nasal serosa, diarrea).
Glucocorticoides (solo en perros; los gatos tratados con esteroides no eliminan
la infección cuando reciben doxiciclina): puede estar indicado cuando la
trombocitopenia amenaza la vida (que se cree es el resultado de mecanismos
inmunomediados); debido a que la trombocitopenia inmunomediada es un
diagnóstico diferencial principal, puede estar indicado hasta que este
disponibles los resultados de las pruebas serológicas, y no afectarán el
desenlace si el diagnóstico final es ehrlichiosis.
Esteroides androgénicos (oximetolona o nandrolona decanoato): para estimular
la producción de médula ósea en perros crónicamente afectados con médula
hipoplásica.
La tetraciclina (y derivados): no usar en perros menores de 6 meses de edad
(los dientes se amarillean permanentemente); no usar con insuficiencia renal
41
(intentar doxiciclina que puede ser excretada a través del sistema
gastrointestinal).
Enrofloxacina: no es eficaz contra E. canis.
Glucocorticoides: el uso prolongado a niveles inmunosupresores puede
interferir con la depuración y eliminación de E. canis después del uso de
tetraciclina.
FARMACOTERAPIA PARA EHRLICHIOSIS EN PERROS Y GATOS.
MEDICAMENTO ESPECIE DOSIS MG/K VIA INTERVALO(HORAS) DURACIÓN
(DIAS)
DOXICICLINA P,G 10 ORAL 24 28 DIAS
IMIDOCARB P,G 5 IM 1 VEZ* -
PREDNISONA P 1 ORAL 12 14ä
OXIMETOLONA P 2 ORAL 24 HASTA
RESPUESTA
NANDROLONA P 1,5 IM SEMANAL HASTA LA
RESPUESTA
* REPETIR DOS SEMANAS DESPUÉS; REALIZAR TRATAMIENTO PREVIO CON
ATROPINA.
Ä DISMINUIR GRADUALMENTE LA DOSISMIENTRAS MEJORA LA
TROMBOCITOPENIA; REALIZAR REDUCCIÓNES DEL 50% CADA 2 SEMANAS.
P; PERROS, G; GATOS
Green, (1993), recomienda el cloranfenicol para cachorros menores de cinco
meses a fin de evitar la coloración amarillenta de los dientes que brotan. El
cloranfenicol puede ser más eficaz que la tetraciclina para eliminar la infección
(15 a 20 mg por kilo p.v. por vía oral intravenosa o subcutánea cada 8 horas
por 14 días). Sin embargo por riesgos de salud pública relacionados con su uso
y por su interferencia directa con las síntesis del grupo hemo y de medula ósea,
42
su utilización en perros con anemia o pancitopenia debe evitarse cuando es
posible.
Se debe corregir la deshidratación con soluciones balanceadas con electrolitos;
también puede requerirse transfusiones sanguíneas en los animales con anemia
grave. Es factible utilizar sangre fresca o plasma rico en plaquetas por que estas
se inactivan con la refrigeración o congelación. La fenilefrina o epinefrina
intranasales ayudan a controlar la epistaxis grave en situaciones de emergencia.
La estimulación de la medula ósea con andrógenos tiene utilidad en los perros
con supresión de la producción de la medula ósea y pancitopenia. Se usa
oximetolona oral una vez al día o decanoato de nandrolona; cave administrar
intramuscular una vez a la semana.
2.19. PRONÓSTICO Y PREVENCIÓN.
Birchard, (1996), acota que el pronóstico de la Ehrlichiosis canina es reservado
aún con el tratamiento apropiado, a menos que la médula ósea se encuentre
muy hipoplasica. La respuesta clínica en las formas crónicas puede tardar de
tres a cuatro semanas. La forma crónica de la enfermedad parece ser un poco
más grave en perros Pastor alemán y Doberman pinscher.
El control de la garrapata constituye el punto principal para la prevención de la
ehrliquiosis. Pueden usarse dosis bajas de tetraciclina o doxiciclina en áreas
endémicas durante la temporada de garrapatas (tetraciclina, 3 mg/kg, PO, cada
24 horas; o doxiciclina, 1-2 mg/kg, PO, cada 24 horas).
Fisher, (2007), menciona que la ehrlichiosis se trasmite normalmente por
mordedura de garrapatas, por lo que la prevención se basa en la detención de la
fijación y la alimentación de las garrapatas. Los dueños que planifican un viaje
a un área endémica, deben estar advertidos de la importancia de un control
adecuado contra las garrapatas. Evitar las áreas de alto riesgo como bosques,
montes, prados o matorrales, incluido parques, en especial durante la época que
43
va desde la primavera hasta otoño en áreas templadas, cuando la actividad de la
garrapata es más alta.
Sin embargo las garrapatas se agarran y se alimentan en cualquier época del
año, en especial en la áreas tropicales y sub tropicales. La Rhipicephalus
Sanguineus se encuentra en áreas que los perros frecuentan como las perreras.
Usar un acaricida/repelente eficaz. Aplicar los productos antes de cualquier
exposición y volverlos a aplicar en forma regular siguiendo las instrucciones
del prospecto. Revisar al animal a diario y extraer las garrapatas encontradas
2.20. SALUD PÚBLICA.
Guanin, (2000), menciona que la Ehrlichia canis o especies muy relacionadas
se han identificado como causantes de enfermedad en humanos. La mayoría de
los reportes se refieren a casos del sur y regiones centrales de Estados Unidos y
se diagnosticaron con base en la evidencia serológica de la infección por
Ehrlichia canis. También se demostraron en otros casos inclusiones
citoplasmáticas en leucocitos. Los principales signos clínicos en humanos
incluyen: fiebre, dolor de cabeza, escalofríos, mialgia, dolor ocular y síntomas
gastro intestinales.
Barr, (2007), refiere que las evidencias serológicas indican que la E. canis (o
tal vez una especie relacionada) se presenta en los seres humanos (con una
mayoría de los casos en Estados Unidos del sur y centro del sur), es probable
que las personas no se infectan en forma directa a partir de los perros: se
considera necesaria la exposición a las garrapatas. Sin embargo quizás el
Rhipicephalus Sanguineus no sea el vector en la especie humana. Los
principales signos en el hombre comprenden fiebre, cefaleas, mialgias, dolor
ocular y disturbios oculares. El tratamiento con tetraciclina redunda en una
rápida recuperación.
44
2.20. GENERALIDADES ENFERMEDAD DE LYME (BORRELIA).
Enfermedad inflamatoria mediada por la inmunidad, trasmitida por las
garrapatas que ocurre en perros, gatos, caballos, vacas, animales salvajes y el
hombre. En EEUU es endémica a lo largo de la costa noreste y en Minnesota y
Wisconsin; se ha comunicado en 44 estados, también en Canadá, Europa y
Australia. Los veterinarios tienen que estar al tanto de la trasmisión potencial al
hombre por el manejo de las garrapatas, sangre, orina y liquido sinovial
infectado. Manual Merk, (2000).
2.21. ETIOLOGIA.
Green (1993) menciona que La borreliosis de Lyme es una enfermedad
multiorganica compleja. La espiroqueta Borrelia burgdorferi es el agente
causal. Como la mayoría de las espiroquetas, B. burgdorferi es pequeña
(0,2milimicras x 30 milimicras) y para su observación adecuada se necesita un
microscopio de campo oscuro y uno de fase.
Los vectores principales son diversas especies de garrapatas duras y la
prevalencia de la enfermedad se relaciona con la distribución de estas en el
mundo. Ixodes ricinus es el principal vector en Europa, mientras en EE.UU. I.
dammini en el noroeste y medio oeste, I. pacificus en el oeste y muy
probablemente I. scapularis en el suroeste. La I. dammini es una garrapata de
tres huéspedes con un ciclo de vida de dos a tres años. Las larvas y ninfas se
alimentan sobre todo de roedores y pequeños mamíferos, mientras las pulgas
adultas lo hacen de venados o grandes mamíferos.
A diferencia de muchas otras especies de pulgas, el estado de ninfa se activa en
el año antes que el de larva.
Este modelo inverso de actividad de temporada de las larvas y ninfas es para la
trasmisión anula efectiva, ya que la trasmisión trans-ovarica de este
45
fundamental patógeno es mínima: las larvas adquieren infecciones que habían
sido trasmitidas a un huésped que funciona como reservorio, cuando las ninfas
se alimentan a principio de temporada.
El estado de ninfa es considerado el principal agente trasmisor de espiroquetas
al ser humano y perro.
Otras especies de pulgas, moscas de ciervo, moscas de caballos, moscardones
mosquitos y pulgas también albergan B. burgdorferi. La amplia variedad de
huéspedes accidentales puede ser una de las razones para la amplia difusión
global del microorganismo.
2.22. PATOGENIA.
Es probable que Borrelia prolifere de manera local en la piel en el sitio de
inoculación durante toda la infección. A partir de este sitio migran y se replican
a la totalidad de los tejidos, comenzando muy cerca de la mordedura.
Enseguida pueden diseminarse en forma constante e infectar muchos tejidos,
incluso las articulaciones. No todos los animales que se infectan después de la
mordedura de una garrapata presentan la enfermedad clínica. Es posible que la
ocurrencia de complicaciones inmunitarias, como artritis, quizá se relacione
con inmunodeficiencia del huésped. Ortiz, (2003).
2.23. SIGNOS CLÍNICOS Y DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL.
Fisher y John (2007) aportan que la Claudicación, depresión, fiebre,
enfermedad renal, enfermedad cardiaca, enfermedad hepática.
Hay que diferenciarlo de otras enfermedades trasmitidas por garrapatas.
Una porción de la población de perros sanos es cero positiva, por lo que el
diagnostico se debe basar en los signos clínicos y en la serología.
46
2.24. DIAGNÓSTICO.
Hemograma completo y perfil bioquímica sérica: nada especial en perros con
artritis solamente.
Perros con glomerulonefritis con pérdidas de proteínas: por lo general se
producen uremias, proteinuria, hipercolesterolemia, hiperfosfatemia e
hipoalbuminemia.
Especímenes citológicos de articulaciones afectadas: las afecciones con
articulación aguda tendrán un aumento de volumen del líquido articular, el cual
con frecuencia será sanguinolento; en frotis, aumento marcado del recuento de
glóbulos blancos (principalmente neutrófilos).
Examen serológico ELISA: un título positivo indica una exposición previa o
vacunación.
Prueba diagnóstica Canine Snap 3 Dx (idexx laboratories, westbrook, Me.)
prueba realizada en el consultorio para anticuerpos con enfermedad de Lyme,
E. canis, y antígeno para gusanos cardiacos; mide anticuerpo contra proteína
C6 de B. burgdorferi; es una prueba conveniente y elimina las respuestas de
los anticuerpos a la vacuna para enfermedad de Lyme; sin embargo
recientemente se halló un 10% de reacciones falsas positivas en muestras de
campo.
PCR de especímenes de biopsia de piel: con frecuencia se aísla o demuestra B.
burgdorferi, lleva mucho tiempo y es costosa.
2.25. TERAPEÚTICA Y MEDICAMENTOS PREFERIDOS.
Vacunas: dos bacterinas comercialmente disponibles que consisten en B.
burgdorferi muertos en adyuvante; demostró que reduce la incidencia de la
enfermedad en perros cero positivos de 4,7% a alrededor del 1%; su valor
47
todavía se debate; la vacuna de una sola proteína (OspA) protege a los perros
frente a la infección y enfermedad.
Reposo en jaula mientras se produce la claudicación: usar analgésicos o ANIE.
Los medicamentos a elección son:
Doxiciclina dar 10 mg/kg por vía oral cada 12 horas por 4 semanas
Amoxicilina dar 20 mg/kg vía oral cada 8-12 horas por 4 semanas
Otros medicamentos eficaces: azitromicina, penicilina G y cloranfenicol.
Los antibióticos no eliminan la infección persistente: mejoran de manera
significativa los signos clínicos y la patología. Bowman, (2007)
2.26. SALUD PÚBLICA.
Aún no se ha determinado si el perro puede trasmitir la infección de forma
directa al humano.
La exposición de la gente y los perros en zonas endémicas al mismo entorno
infestado de pulgas probablemente es el medio más frecuente de infección en
seres humanos. Además se ha indicado la trasmisión de B. burgdorferi en la
orina de perros y esto puede plantear una amenaza para la salud pública.
Se han observado tres estados clínicos variables que abarcan manifestaciones
dermatológicas, cardiacas, neurológicas y artríticas en seres humanos.
Green (1993)
La característica lesión cutánea, el eritema crónico migratorio, aparece de unos
3 a 20 días después de la picadura de la garrapata. Esta lesión se inicia por una
macula o pápula roja que se va extendiendo. Los bordes están bien marcados,
la lesión central palidece y se forma un eritema circinado. Las lesiones
cutáneas pueden estar acompañadas durante varias semanas de malestar, fiebre,
cefalalgia, rigidez de nuca, mialgias, artralgias o linfoadenopatía. Transcurridas
unas semanas o meses, algunos pacientes manifiestan meningoencefalitis,
neuropatías, miocarditis, taquicardia atrioventricular. Los ataques de artritis de
48
las grandes articulaciones pueden ocurrir y repetirse durante varios años,
tomando a veces un curso crónico. El tratamiento con penicilina de estos
procesos ha dado muy buenos resultados. Acha; y Szyfres. (1986)
2.27. GENERALIDADES DE DIROFILARIA IMMITIS
La Dirofilaria immitis tiene una distribución mundial e infecta a una amplia
variedad de especies (perro, gato, hurón, lobo, zorro, león marino, caballo) la
distribución está influida por una población reservorio de animales
(habitualmente perros) en los que el ciclo vital se completa y se produce la
microfilariemia y por un mosquito vector en el que se desarrollan los estadios
precoces de larva. Los diferentes patrones alimentarios del mosquito influyen
en las áreas y especies animales infectadas. Para la trasmisión a los gatos, el
mosquito debe alimentarse primero de un perro y entonces después de una
adecuada exposición a un ambiente cálido alimentarse de un gato. Merck,
(2000).
2.28. ETIOLOGIA.
Es una enfermedad cardio pulmonar, complicada avece con alteraciones
hepáticas y renales que es causada por un parásito llamado Dirofilaria immitis.
Es un parásito hemático, blanquecino, redondeado, tubular, cuyos adultos se
localizan a nivel de la aurícula y ventrículo derecho del corazón, arteria
pulmonar y vena cava posterior de los perros, gatos y ocasionalmente el
hombre. Ayo, (2003).
Género Dirofilaria; abertura oral pequeña rodeada de 10 papilas cefálicas. La
cubierta corporal se compone de 4 capas de estructura distinta. El extremo
caudal del macho se adelgaza y enrolla varias veces. Espículas desiguales. No
hay gubernaculo ni aletas caudales. Vivíparos.
Hospedadores: perro, gato, carnívoros silvestres, hombre.
49
Localización: corazón derecho especialmente en el perro, arteria pulmonar,
raramente en otros vasos hemáticos y órganos, como la cavidad pleural, los
bronquios y el tejido conjuntivo intramuscular y subcutáneo. Existe en Europa
(Francia, Italia, España, Rumania) y Asia se ha comprobado en Alemania en
perros importados. Borchert. (1981).
2.29. CICLO EVOLUTIVO.
Las larvas puestas por las hembras pasan a la sangre del hospedador con una
periodicidad muy marcada en diferentes momentos del día. La larva 1 ingerida
por el hospedador intermediario al tiempo que realiza la succión de la sangre,
se desarrolla en los diversos órganos del mismo, principalmente en los tubos de
Malpighio en un plazo de 5 a 10 días, por lo general, y una vez infestante
migran hacia los órganos bucales del hospedador intermediario. Durante la
succión rompen la membrana Quitinosa de la Proboscis y llegan así al
hospedador definitivo, en el que alcanzan su ubicación definitiva a través de la
vía hemática o linfática. En este lugar se hacen sexualmente maduros al cabo
de 7 a 10 meses. Sus microfilarias pueden comprobarse en la sangre a las 28 a
40 semanas de la infestación. La periocidad de su aparición en la sangre
circulante se manifiesta porque en las horas de la madrugada (a las 6) el
número de micro filarias presentes es solo de 5 a 20 % de las existentes por la
tarde (a las 18 horas).
Los mosquitos por los que las filarias tienen tropismo positivo trasmiten la
infestación hasta en un 50% de los casos, teniendo influencia en ello la
temperatura .Borchert. (1981).
2.30. SÍNTOMAS.
Aquí se demuestra de acuerdo a los síntomas establecidos y hallazgos
realizados, las siguientes clases:
50
Clase 1: En la enfermedad sub-clínica asintomática se observa; pérdida de peso
agitación al ejercicio.
Clase 2: En la enfermedad moderada nos muestra; engrosamiento de la arteria
pulmonar, aumento de la densidad peri vascular, anemia, pérdida del estado
general, fatiga durante el ejercicio y tos.
Clase 3: En la enfermedad severa; la radiografía nos indica aumento del
tamaño de las arterias pulmonares, dilatación auricular y ventricular derecha,
fatiga constante, tos persistente, insuficiencia cardiaca, anemia grave,
proteinuria, pronóstico reservado.
Clase 4: Síndrome de vena cava: presenta gran cantidad de vermes que se han
desplazado hasta la vena cava, siendo su pronóstico muy grave.
Paucar, (2005).
2.31. DIAGNÓSTICO.
El diagnóstico de las filarias tiene lugar al realizar la necropsia de los perros
muertos de la enfermedad o sometidos a eutanasia.
En los animales vivos se demuestra la presencia de microfilarias en la sangre.
En los casos leves se recomienda mezclar unos centímetros cúbicos de sangre
venosa con 5 veces su volumen de ácido acético (al 2%) y centrifugar para
examinar microscópicamente el sedimento. También se ha comprobado la
filariosis canina empleado la angiocardiografia, como método diagnóstico.
Mediante el empleo de la técnica de la cámara lenta puede seguirse la marcha
del medio de contraste a través del corazón y los pulmones, comprobándose la
presencia de Dirofilaria immitis se presenta a veces simultáneamente con
Dirofilaria repens. Borchert. (1981).
51
2.32. TERAPEÚTICA.
Hospitalización: algunos pacientes pueden necesitar internación durante la
administración del adulticida.
Hospitalización: se recomienda para perros que experimentan complicaciones
tromboembolicas.
Restricción marcada de la actividad: requerida durante 4-6 semanas después de
la administración del adulticida.
Confinamiento en jaula: recomendado durante 3-4 semanas después de la
administración del adulticida para la enfermedad grave (clase 3).
Confinamiento en jaula durante 7 días: recomendado para perros que
experimentan complicaciones tromboembolicas pulmonares.
Enfermedad de clase 3: tratar la ICC hasta que este estable antes de administrar
el adulticida; utilizar diuréticos, reposo en jaula y restricción de sodio.
Estabilizar la insuficiencia pulmonar: con agentes antitromboticos (por ejemplo
aspirina o heparina) y dosis anti inflamatorias de corticoesteroides; monitorear
utilizando parámetros clínicos y radiográficos.
Perro con síndrome de vena cava: extracción quirúrgica de gusanos adultos del
lado derecho del corazón y de la Ap. A través de la vena yugular usando
fluoroscopia y fórceps cocodrilo flexibles y largos; altamente eficaz para tratar
una alta carga verminosa cuando la emplea un operador experimentado.
Determine la justificación del tratamiento adulticida en perros mayores: el
resultado puede ser peor que no tratar debido a que el beneficio del tratamiento
puede no notarse durante toda la vida del perro.
MEDICAMENTOS PREFERIDOS.
52
Melarsomina diclorhidrato (immiticide [ Merial, Iselin, Nj ]): baja toxicicidad
(hepatotoxicidad); buena eficacia (mayor que 90%) contra ambos sexos de
gusanos adultos; los efectos adversos incluyen tromboembolia pulmonar (por
lo general, de 7 a 30 días después de la terapia), anorexia (13% de incidencia),
reacción en el sitio de la inyección (miositis: 32% de la incidencia pero leve y
dura de 1 a 2 días), letargo o depresión (15% de incidencia); causas elevaciones
de enzimas hepáticas.
Infección Clase 1: se aplican dos inyecciones con 24 horas de diferencia entre
cada una en los músculos epaxiales (la primera de un lado la segunda del lado
opuesto, utilizando agujas calibres 22); aplicar presión sobre el sitio de
inyección mientras se retira la aguja y después de retirarla; controlar la prueba
de antígeno 6 meses después y, si da positiva, repetir el tratamiento.
Infecciones Clase 2 y 3 (después de estabilizar la ICC): usar un esquema de
dosis alternativo: se administra la primera inyección inicialmente (40% de
índice de muerte); 1 mes después se recomiendan dos inyecciones con 24 horas
de diferencia.
Esquema de dosis alternativo: disemina el efecto de muerte del adulticida y la
tromboembolia a lo largo de dos tratamientos.
Esquema de dosis alternativo: usados por muchos veterinarios para tratar
infecciones de clase 1.
Administración de microfilaricida: indicada para la mayoría de los perros con
microfilarias circulantes, 4-6 semanas después del adulticida:
Milbemicina (interceptor, Novartis, Greensboro, NC, 0,5 mg/kg) o ivermectina
(preparación múltiple, 50 micro gramos): administrada en la mañana, observar
al paciente por signos de anafilaxis microfilarial (shock, vómitos, diarrea,
colapso circulatorio) durante el día y dar alta en la noche.
Probabilidad de que se desarrolle shock: es mayor en perros con altas
microfilaremias.
53
Si se produce shock: administrar dosis elevada de glucocorticoides y dosis de
choque de líquidos IV; excelente pronóstico si se trata rápidamente.
Ivermectina: si se da como profilaxis (6 microgramos/kg, en forma mensual)
eventualmente eliminará la microfilaria después de 8 meses en la mayoría de
los perros.
Comenzar profilaxis microfilaricida mensual 4 semanas después: puede
producirse reinfección en los perros tratados.
Realizar una prueba de antígenos 4-6 meses después del tratamiento adulticida:
si da positivo, repetir tratamiento adulticida.
Algunos perros con infección adulta persistente: pueden no requerir
tratamiento; determinado por la edad, gravedad de la infección, el grado de
mejora desde el primer tratamiento, la fuerza del resultado positivo de la
prueba de antígenos, una enfermedad concomitante.
Heparina (75 U/kg, SC, cada 8 horas) o aspirina (5-7 mg/kg, vía oral, cada 24
horas) durante 1 a 3 semanas antes de la administración del adulticida, durante
la misma y por 3 semanas después: recomendación, controvertida para los
casos más graves de enfermedad clase 3; la terapia se combina con
confinamiento en jaula estricto y prolongado.
Heparina (75 U/kg, SC, cada 8 horas): se recomienda en perros con trombosis
pulmonar, trombocitopenia o hemoglobinuria.
PROFILAXIS DE PERROS NO INFECTADOS
Profilaxis de gusano cardiacos: debería proporcionarse a todos los perros en
riesgo.
54
Nuevos pacientes que comienzan la profilaxis por primera vez: se puede
indicar una prueba para detectar microfilaria porque algunos endectocidas
macrolidos (Milbemicina) pueden inducir al síndrome de shock de las 24 horas
de la primera dosis; se indica realizar la prueba de antígenos antes de comenzar
el tratamiento preventivo en tales casos para descartar posibles infecciones de
adultos (si es positiva, considerar opciones de tratamiento adulticida pero
comenzar la terapia profiláctica de inmediato mientras el paciente sea
microfilaremico negativo).
Ivermectina: preventivo mensual altamente eficaz; cuando la administración
mensual se continua durante 12 meses, la eficacia es retroactiva hasta 4 meses
después de la infección; cuando se la combina con pamoato de pirantel,
también controla la infección por anquilostomas y gusanos redondos; puede
suministrarse en forma segura a perros microfilaremicos, incluyendo los
sensibles a la ivermectina.
Milbemicina oxima: preventivo mensual altamente eficaz; también controla
anquilostomas, gusanos redondos y nematodos (trichuris); la dosis preventiva
es microfilaricida; pueden producirse reacciones agudas cuando se lo
suministra a perros microfilaremicos.
Moxidectina (Proheart tabletas [fort Dodge,IA]: preventivo mensual; puede
darse a perros microfilaremicos.
Moxidectina (Proheart6 inyectable [fort Dodge, IA]: eficaz profiláctico durante
al menos 6 meses después de la inyección; actualmente no está disponible en
los EE.UU.
Selamectina (Revolution [Pfizer, Exon, PA]): preventivo tópico mensual;
también controla pulgas, ácaros de las orejas, sarna sarcoptica y algunas
infestaciones de garrapatas.
Preventivos endectocidas macrocidas (Milbemicina oxina, ivermectina,
Selamectina y Moxidectina): proporcionan eficacia retroactiva del 100%
55
durante un mes y al menos del 75% durante dos meses; la ivermectina puede
proporcionar hasta 4 meses de protección si se la continúa hasta 12 meses a
partir de entonces.
Todos los medicamentos profilácticos: pueden administrarse en formas segura
a Collies y razas tipo Collie en las dosis preventivas apropiadas. Bowman.
(2007)
2.33. ZOONOSIS.
El reservorio principal de D. immitis es el perro y la trasmisión se realiza por
mosquitos; el hombre se infecta solo de modo accidental. Después de que una
persona es inoculada por mosquitos con larvas del tercer estadio, la mayoría de
ellas muere en el tejido conjuntivo subcutáneo. Sin embargo alguna puede
escaparse del tejido subcutáneo, sobretodo en infecciones repetidas, seguir su
desarrollo y migrar a los pulmones. En muchas especies de mosquitos la micro
filaria puede alcanzar el desarrollo de larva (de tercer estadio) infectante, pero
no todas ellas tienen la misma eficacia de vectores.
El hombre es un huésped accidental de las filarias zoonoticas con excepción de
B. malayi subperiodica.
La mayor parte de los infectados son asintomáticos y la lesión pulmonar se
descubre al practicarse un examen radiológico por diferentes motivos o por
lobectomías pulmonares realizadas al sospecharse de un tumor maligno. En los
casos sintomáticos se observa tos y dolor torácico durante un mes o más y, en
acciones hemoptisis, fiebre, malestar, escalofríos y mialgias. En el examen
radiográfico se observa una lesión nodular redonda y circunscrita (forma de
moneda) de 1 a 4 cm de diámetro. Rara vez se comprueba eosinofilia. Solo en
dos casos en los EE.UU. y uno en Brasil se ha encontrado el parásito en el
corazón (lado derecho), mientras que en casi todos los demás casos la
dirofilaria se aloja en el lóbulo del pulmón derecho, donde ocluía parcialmente
56
una arteria y formaba un trombo. En todos los casos pulmonares se encuentran
los parásitos muertos y casi siempre en estado de degeneración. Las
infecciones humanas son causadas por un solo parásito y de modo excepcional,
por dos. En el examen radiológico la lesión puede confundirse con neoplasma.
Acha; y Szyfres. (1986).
2.34. GENERALIDADES DE ANAPLASMA PHAGOCYPILUM
Anaplasma phagocytopilum ex Ehrlichia phagocytophila, E. equi y
Ehrlichiosis granulocitica humana.
2.35. HISTORIA RELEVANTE.
La ehrlichiosis granulocitica ha sido identificada en Europa, en particular
Suecia, y en los EE.UU. Animales de cualquier edad y sexo. En áreas
endémicas, la enfermedad puede observarse en los animales jóvenes, a medida
que son expuestos por primera vez a la mordedura de las garrapatas. El animal
habrá residido o habrá visitado áreas en las que la ehrlichiosis es endémica
durante la época del año en las que las garrapatas están activas (por lo general
desde la primavera hasta el otoño en climas templados). Una garrapata pudo
haber estado sobre el animal unos 10 a 15 días antes de la presentación de los
signos clínicos. Puede haber evidencia de un control inadecuado de las
garrapatas en el momento en que el perro o el gato hayan estado en un área
endémica. Puede haber evidencia de que el perro o el gato haya pasado un
tiempo en lugares como áreas boscosas, que es el habitad ideal para las
garrapatas. Fisher; y John. (2007).
2.36. FISIOPATOLOGIA.
Afecta principalmente a las plaquetas pero también pueden aparecer Poliartritis
y anemia normocítica normocrónica. Característicamente, aparece una ligera
trombocitopenia, alteraciones de la función plaquetaria y vasculitis. El
57
parénquima pulmonar se predispone a las hemorragias. Durante la fase crónica
de la enfermedad, las reacciones inmunológicas al microorganismo producen
alteraciones clínicas y de laboratorio. Schaer, (2006).
2.37. SIGNOS CLÍNICOS.
Fiebre mayor de 39°c, anorexia, depresión, letargo, esplenomegalia, puede
haber claudicación, diarrea, signos neurológicos en algunos animales.
2.38. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL E IMPORTANCIA.
Los signos clínicos pueden no ser específicos por lo que se sugiere realizar el
diagnóstico basándose en una combinación de signos clínicos, PCR o
positividad hematológica de A. phagocytophilum y niveles de anticuerpos.
Pueden ocurrir coinfecciones.
En general es una infección más leve que la causada por Ehrlichia canis, pero
produce una variedad de signos durante la fase aguda. Es menos probable que
alcance la cronicidad, en comparación con Ehrlichia canis.
Sin embargo, la reaparición de la infección puede ocurrir si el animal es
posteriormente inmuno suprimido en los meses siguientes a la presentación de
la infección. Fisher; y John. (2007).
2.39. TRATAMIENTO.
Es similar al de infección por E. canis. Se recomienda tratamiento paliativo.
Los esteroides anabolizantes y otros estimulantes de la médula ósea no suelen
ser eficaces, pero los corticoides en dosis antiinflamatoria o inmunosupresoras
pueden disminuir la destrucción de los hematíes y plaquetas. Otros
tratamientos paliativos incluyen la administración intravenosa de fluidos
poliiónicos y la transfusión de productos sanguíneos. Schaer, (2006)
58
III HIPÓTESIS.
Hi: Utilizando el KITS SNAP 4DX podremos diagnosticar enfermedades
hemáticas en caninos en la Ciudad de Milagro.
Ho: No utilizando el KITS SNAP 4DX no podremos diagnosticar
enfermedades hemáticas en caninos en la Ciudad de Milagro.
59
IV. MATERIALES Y MÉTODOS
4.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.
La siguiente investigación se realizó en el Cantón Milagro Provincia del
Guayas. Sus coordenadas son 2º 11´24´´ de latitud sur y 79º53´15´´ de longitud
oeste. Con un altura promedio de 13 metros sobre el nivel del mar; cuya zona
climática es tropical, tipo de suelo arcilloso, humedad atmosférica del 81%; con
una temperatura máxima de 34,6°c; media anual de 24,7°c; mínima absoluta de
18,6°c; con una evaporización de 99,5mm; y una nubosidad media de 7/8; con
una población aproximada de 160.000 habitantes.
4.2. MATERIALES.
4.2.1. DE CAMPO.
Hojas de trabajo
Canes
Bozal
Jeringas descartables de 3 cc
Tubo de 1 ml con EDTA
Povidin
Guantes desechables
Algodón
Tijeras
Torniquetes
Bolígrafos
Termo
4.2.2. DE LABORATORIO.
60
Hojas de laboratorio
Muestra de sangre
Tubos receptores de muestra con EDTA de 1 ml.
Dispositivos Snap para la prueba de anticuerpos de E. canis, Anaplasma,
Lyme, Dirofilaria Immitis.
Botellas de 8 ml del conjugado anti-HW/AP/LY/EC:HRPO.
Tubos de ensayo con tapa
Pipeta cuenta gotas
Soporte de reactivos
Cámara fotográfica
4.2.3. MATERIALES DE OFICINA
Computadora
Impresora
Plumas
Hojas de registros
Marcadores
4.3. METODOLOGÍA DE TRABAJO.
4.3.1. DE CAMPO.
La muestra fue tomada de la vena radial, con una jeringa de 3cc, se la
coloco en el tubo recolector de 1 ml que contiene EDTA (ácido
etilendiaminotetraacético), y se procedió a marcar y guardar en el termo.
4.3.2. DE LABORATORIO
Se utilizaron kits de diagnóstico rápido para la detección de antígenos de
E. canis, Lyme, Dirofilaria immitis y Anaplasma, a las muestras
obtenidas. Este kit SNAP 4DX CANINO es un inmune ensayo
61
cromatográfico para la detección del antígeno de la Dirofilaria immitis,
anticuerpos frente a Anaplasma phagocytophilum, anticuerpos frente a
Borrelia burgdorferi y anticuerpos frente a E. canis en suero, plasma o
sangre total canina.
4.3.3. DE LA TÉCNICA UTILIZADA.
PROCEDIMIENTO.
1. Muestreo
Se inmovilizó al paciente
Se le puso un bozal
Depile el área donde hice la punción, el brazo en la vena radial
Desinfecté el sitio escogido.
Le puse el torniquete a la altura de articulación radio cubito humeral.
Le tomé la muestra con una jeringa de 3cc.
La coloqué en el tubo recolector de 1 ml con EDTA y mezclé con
movimientos suaves.
Identifiqué la muestra.
Guardé la muestra en el termo para preservación y transporte.
Llené la hoja de trabajo con los datos del paciente.
2. Laboratorio.
Sangre entera: tome la muestra del tubo colector de 1 ml con anti
coagulante (EDTA).
Si las muestras no se prueban inmediatamente, deben ser refrigeradas
máximo por 3 días.
Si los componentes están almacenados refrigerados, esperamos a que
se equilibre a temperatura ambiente durante 30 minutos. NO
CALENTARLOS.
Se quita la envoltura del kit y se coloca sobre una superficie plana y
seca.
62
Se toma con la micro pipeta una muestra de sangre entera.
Con la micro pipeta se colocan 3 gotas de sangre en el tubo de ensayo
nuevo.
Dentro del tubo con las gotas de sangre se colocan 4 gotas del
conjugado sosteniendo la botella en posición vertical.
Tapar el tubo de ensayo y mezclarlo a fondo invirtiendo entre 3 y 5
veces.
Colocar el dispositivo sobre una superficie horizontal. Agregar todo el
contenido del tubo de ensayo en el pocillo de muestras, teniendo
cuidado de no verter el contenido fuera de dicho pocillo.
La muestra fluirá por la ventana de resultados, alcanzando el círculo
de activación en aproximadamente 30-60 segundos. Es posible que
quede algún resto de la muestra en el pocillo.
En cuanto aparezca el color en el círculo de activación, presionar el
activador con firmeza hasta que quede al ras con el cuerpo del
dispositivo.
Es posible que alguna muestra no fluya hacia el círculo de activación
dentro de los 60 segundos, y, por lo tanto el círculo no se coloreara.
En este caso, presionar el activador después de que la muestra haya
fluido por la ventana de resultados.
Leer los resultados del análisis cuando hayan pasado 8 minutos.
63
3. Interpretación de los resultados del análisis.
Resultados Positivos.
Cualquier desarrollo de color en los puntos de la muestra indica la
presencia del antígeno de la Dirofilaria canina, anticuerpo frente a A.
phagocytophilum, anticuerpo frente a B. burgdorferi o anticuerpo
frente a E. canis en la muestra
NOTA: Los datos iniciales de la investigación sugieren que el punto
del SNAP 4 Dx de Anaplasma phagocytophilum podría presentar
reacción cruzada con Anaplasma platys. En los estudios que
implicaban los perros infectados con Anaplasma platys, el SNAP 4
Dx era reactivo con el suero a partir del 10 fuera de 10 animales
infectados.
Resultados Negativos.
Solo se produce color en el punto de control positivo.
Resultados Inválidos.
FONDO: Es posible que se produzca color de fondo si se permite que
la muestra fluya sobrepasando el circulo de activación. Algo de color
de fondo es normal. Sin embargo, si el color de fondo dificulta el
resultado del análisis repítalo.
NO SE PRODUCE COLOR: Si el punto del control positivo no
produce color, repita el análisis.
[Tomado del instructivo del kit]
4.3.4. DE LA DISTRIBUCIÓN DE LOS ANIMALES EN EL ESTUDIO.
64
Para la siguiente investigación se tomó muestras de sangre de 100 perros;
para el muestreo se dividió al Cantón Milagro en 4 zonas: zona 1,
(Norte); zona 2, (Este); zona 3, (Oeste) y zona 4, (Sur). De cada zona se
tomaron muestras de sangre de 25 caninos, las mismas que fueron
manejadas con el mayor cuidado posible para garantizar su diagnóstico.
4.3.5. DEL ANÁLISIS ESTADÍSTICO.
En el presente trabajo de investigación se utilizó para evaluar los datos el
Método Porcentual para determinar en porcentaje cuántos caninos son
positivos o negativos a enfermedades hemáticas caninas, mediante la
fórmula matemática:
x 100
Los casos positivos fueron evaluados mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado, cuya fórmula matemática
es:
2 = (Fo – Fe)
2/Fe
En donde:
2 = Chi Cuadrado
Fo = Frecuencias observadas.
65
Fe = Frecuencias esperadas.
g.l. = grados de libertad.
El valor calculado de 2 se comparará con el valor tabulado de
2 con k – r
grados de libertad. La regla de decisión, entonces, es: rechazar Ho si 2
calculado es mayor o igual que el valor tabulado de 2 para el valor
seleccionado de α. (WAYNE, 2002).
Además se realizó el Análisis de sensibilidad del método de
diagnóstico utilizado, mediante la fórmula matemática:
Sensibilidad =
x 100
Resultados de la Prueba Resultados Verdaderos
Positivos (A)
Negativos (C)
Total (A + C)
66
V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
CUADRO Nº 1.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO.
Nº de Casos
Muestreados
Nº de Casos
Positivos
Incidencia
%
Nº de Casos
Negativos
Incidencia
%
100 57 57 43 43
En el cuadro nº 1 podemos observar que de los 100 casos muestreados el porcentaje
de incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro fue de
57 casos positivos lo que representó el 57 %, el análisis de sensibilidad de la prueba
de diagnóstico fue del 57 %, lo que demostró que si hay significancia estadística,
(p≤0.05).
FIGURA Nº 1.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO.
Márquez 2011 tesis
57
43
0
10
20
30
40
50
60
Po
rcen
taje
Diagnóstico
Positivos
Negativos
67
CUADRO Nº 2.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR ZONA.
Zonas Nº de Casos
Muestreados
Nº de Casos
Positivos
Incidencia
%
Nº de Casos
Negativos
Incidencia
%
Norte 25 16 16 9 9
Este 25 14 14 11 11
Oeste 25 12 12 13 13
Sur 25 15 15 10 10
TOTAL 100 57 57 43 43
En el cuadro nº 2, podemos observar que de los 25 casos muestreados en cada una de
las zonas, el mayor porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas en caninos
en la ciudad de Milagro fue en la zona Norte con 16 casos positivos lo que representó
el 16 %, seguido de la zona Sur con 15 casos positivos con el 15 %, la zona Este 14
casos positivos con el 14 % y la zona Oeste 12 casos positivos con el 12 % de
incidencia: el análisis estadístico mediante la Prueba No Paramétrica para una sola
muestra, Prueba de Chi Cuadrado para las zonas, determinó que no hay significancia
estadística entre las zonas, (p0.05). Ver anexo I.
68
FIGURA Nº 2.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR ZONA.
Márquez 2011 tesis
CUADRO Nº 3.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, DE ACUERDO AL SEXO.
Sexo Nº de Casos
Muestreados
Nº de Casos
Positivos
Incidencia
%
Hembras 57 30 30
Machos 43 27 27
TOTAL 100 57 57
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18%
de
Inci
de
nci
a
Zonas
Norte
Este
Oeste
Sur
69
En el cuadro nº 3, podemos observar que de los (57) casos muestreados 30 casos
fueron positivos a hembras lo que representó el 30 % y de los machos muestreados
(43) 27 casos fueron positivos lo que representó el 27% de incidencia de
enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro. El análisis estadístico
mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado
para el sexo, determinó que si hay significancia estadística para el sexo, (p≤0.05).
FIGURA Nº 3.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, DE ACUERDO AL SEXO.
Márquez 2011 tesis
0
5
10
15
20
25
30
35
% d
e In
cid
enci
a
Sexo
Hembra
Macho
70
CUADRO Nº 4.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO Y PROCEDENCIA.
Sexo Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Hembras 7 7 7 9 30
Machos 9 7 5 6 27
TOTAL 16 14 12 15 57
El cuadro nº 4 muestra los casos positivos de enfermedades hemáticas en caninos en
la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX,
obteniéndose un mayor porcentaje en las hembras (30 %) y el sector Norte (16 %),
la evaluación estadística del sexo y procedencia determinó que no hay significancia
estadística, (p0,05). Ver anexo III y IV.
FIGURA Nº 4.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO Y PROCEDENCIA.
Márquez 2011 tesis
7 7 7
99
7
5
6
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Norte Este Oeste Sur
Hembras
Machos
71
CUADRO Nº 5.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.
Sexo Diagnóstico
Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Hembras
Ehrlichia 2 2 3 5 12
Anaplasmosis 2 1 1 2 6
Inf. mixtas 3 4 3 2 12
Machos
Ehr 2 5 3 3 13
Anaplasmosis 3 0 0 0 3
Inf. mixtas 4 2 2 3 11
TOTAL 16 14 12 15 57
En el cuadro nº 5 observamos que el mayor porcentaje de enfermedades hemáticas en
caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX,
se obtuvo para el diagnóstico de Ehrlichia con 25 %, seguido de infecciones mixtas
con 23 % y para Anaplasma el 9 %, el análisis estadístico determinó que no hay
significancia estadística, (p0,05). Ver anexo V, VI, VII, VIII y IX.
72
FIGURA Nº 5.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.
Márquez 2011 tesis
CUADRO Nº 6.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR EDAD, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.
Categorías
Meses Diagnóstico
Zonas
Norte Este Oeste Sur
4-12-
Ehrlichia 0 1 0 2
Anaplasmosis 3 0 1 2
Infecciones
mixtas 0 1 1 0
12-60-
Ehrlichia 2 3 6 5
Anaplasmosis 2 1 0 0
Infecciones
mixtas 5 5 3 3
más 60
Ehrlichia 2 2 0 1
Anaplasmosis 0 0 0 0
Infecciones
mixtas 2 1 1 2
Total 16 14 12 15
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
Norte Este Oeste Sur
Erhlichia
Anaplasma
Inf. Mixtas
73
En el cuadro nº 6 observamos que el mayor porcentaje de enfermedades hemáticas en
caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX,
en lo que respecta a la edad tenemos que: el grupo que va de 12 a 60 meses
representa el 35%; seguido de los de 4 a 12 meses con el 11% y los que son de más
de 60 meses con el 11% estadística, (p0,05). Ver anexo X, XI, XII, XIII, XIV, XV
Y XVI
FIGURA Nº 6.
INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA
CIUDAD DE MILAGRO, POR EDAD, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.
Márquez 2011 tesis
3
2 2
4
9 9 9
8
4
3
1
3
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
norte sur este Oeste
CASOS POSITIVOS
4 a 12
12 a 60
más de 60
74
VI. CONCLUSIONES Y DISCUSIONES
6.1. CONCLUSIONES.
6.1.1. Del presente trabajo de investigación se concluye que la incidencia de
enfermedades hemáticas de caninos en la ciudad de Milagro fue de 57 %
diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, la sensibilidad de la
prueba fue del 57 %, porcentaje significativo. .
6.1.2. Respecto a la procedencia podemos observar que el mayor porcentaje de
incidencia de enfermedades hemáticas se obtuvo en el sector Norte con el
16 %, seguido del sector Sur con el 15 %, luego con el sector Este con el
14 % y el sector Oeste con el 12 %, la evaluación estadística determinó
que no hay significancia estadística, (p0,05).
6.1.3. En lo que respecta a las enfermedades hemáticas diagnosticadas nos
encontramos con la Ehrlichia canis con un 25%; Anaplasma
phagocytophilum con un 9%; y pacientes con infecciones mixtas con un
23%; las otras dos enfermedades Borrelia Burgdorferi y Dirofilaria
Immitis no se encontró ningún caso positivo.
6.1.4. Se determinó que las hembras tienen un mayor porcentaje de incidencia de
enfermedades hemáticas de 30 % diagnosticados mediante el uso del
Kits Snap 4 DX, frente a los machos 27 %. La evaluación hecha con
respecto al sexo determinó que si hay significancia estadística, (p≤0,05).
6.1.5. Los casos positivos en cuanto al sexo y la procedencia que fueron
evaluados mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra,
Prueba de Chi Cuadrado, demostraron que no hay significancia
estadística, (P0.05).
75
6.1.6. La evaluación estadística de los casos positivos de incidencia de
enfermedades hemáticas de acuerdo a la procedencia, diagnóstico y sexo,
tanto para las hembras como para los machos, determinaron que no hay
significancia estadística, (P0.05).
6.1.7. El grupo etéreo que presentó mayor porcentaje de incidencia de
enfermedades hemáticas fue el de (12 a 60) meses, lo que representó el
(35) %, seguido de los de (4 a 12) meses con el (11) %, igual que el de
los (+ de 60) meses con el (11) %,
6.1.8. La evaluación estadística de los casos positivos de la procedencia,
diagnóstico y las categorías de edades en meses, demostró que el
porcentaje obtenido en las categorías de 12 a 60 meses son
significativos, (P 0.05).
6.2. DISCUSIONES
La investigación de Bermeo (2003) se realizó en la parte norte de Guayaquil, con el
fin de ver la incidencia de la Ehrlichia canis, para lo cual tomó muestras de sangre
en distintos consultorios y también puerta a puerta, el universo que investigó fue 100
casos mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap 3 DX, dando como resultado
31 perros positivos representando el 31%.
En esta investigación mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap 4 DX en un
universo de 100 perros me dieron como positivo a Ehrlichia canis 25 canes esto
representa el 25%, en la ciudad de Milagro, sin embargo hay un porcentaje similar
detectado de canidos infectados en la parte norte de Guayaquil.
76
Ortiz (2003) en su investigación “Presencia de la enfermedad de Lyme en el sector
norte de la ciudad de Guayaquil”, mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap
3 DX en un total de 100 canes no encontró ningún caso positivo. Acota un caso de un
canino en la ciudad de Quito en el mes de junio del 2002, atendido por el Dr. Cristian
Sotomayor en la clínica veterinaria “All Pet” de su propiedad calles Portugal 617 y
Av. 6 de diciembre tel.: 022441286. De un Caniche gigante adulto importado del
estado de California EE.UU. Sin historial de garrapatas en buen estado de salud solo
llegó a consulta por una cojera, le practicaron la prueba Snap 3 DX dando como
resultado positivo a Lyme.
En esta investigación no se encontró ningún caso positivo a Lyme.
La investigación en milagro Paucar (2005). Para el diagnostico de Dirofilaria
Immitis; utilizó el método Buffy coat (prueba de tubo capilar) dándole un resultado
de 36 casos positivos de 600 muestreados que le representaron un 6%.
En esta investigación no se obtuvo ningún caso positivo a Dirofilaria. Los casos
encontrados positivos por Paucar son de la parte rural periférica de Milagro, en
cambio los caninos que se analizaron corresponden a la parte céntrica de Milagro.
Con lo que respecta a la Anaplasmosis canina no se encontró datos de ningún trabajo
sobre ese tema en caninos.
Se encontraron 9 de casos positivos de Anaplasmosis que representan el 9%; también
se encontró pacientes con infecciones mixtas representando el 23%; siendo el primer
trabajo de reporte sobre este tipo de afecciones.
77
VII. RECOMENDACIONES.
7.1. Que se continúe la investigación, abarcando las demás regiones del Ecuador,
ya que es un problema de salud pública.
7.2. En base a los resultados obtenidos de sensibilidad, es necesario utilizar la
técnica de diagnóstico empleadas en la presente investigación.
7.3. Se deben adoptar medidas de control, con el propósito de romper el ciclo
biológico del parásito, puesto que si existe la presencia de enfermedades
hemáticas canina en la ciudad de Milagro.
7.4 Hay que tener en cuenta a la hora de dar un diagnóstico y empezar un
tratamiento que el paciente, puede estar padeciendo de más de una
afección en ese momento.
7.5 Tomar precauciones a la hora de atender un paciente proveniente de la zona
norte, ya que fue en la que encontramos el mayor porcentaje de casos
positivos.
78
VIII. RESUMEN.
DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN
LA CIUDAD DE MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX.
La investigación se realizó con el objetivo de saber la prevalencia de los casos
positivos de enfermedades hemáticas en la ciudad de Milagro; para lo cual fue
dividida en 4 sectores: norte, sur, este y oeste.
La población a muestrear fue de 100 individuos, los mismos que se dividieron en
cuatro grupos de 25 cada uno.
La muestra de sangre fue extraída de la vena radial, la misma que se la colocó en
un tubo con EDTA de 1 ml, bien identificado y después puesto en un termo para
su conservación.
El diagnóstico se obtuvo mediante el uso del Kit Snap 4dx, que es una prueba de
reacción para 4 enfermedades: Ehrlichia; Lyme; Anaplasma y Dirofilaria.
En la hoja de información se tomaron en cuenta parámetros como: sector; sexo;
enfermedad presente y edad.
De los 100 caninos investigados 57 resultaron positivos; que representa el 57%.
Por sector el Norte nos dio el 16%; seguido del Sur con un 15%; el Este 14% y el
Oeste con el 12%, la evaluación estadística reveló que no hay significancia
estadística.
En cuanto al sexo; tenemos que las hembras representan el 30% en comparación
con los machos con un 27%.
Del 57% de casos positivos encontramos: Ehrlichia con el 25%; Anaplasma con el
9% y pacientes con infecciones mixtas representan el 23%.
Por edad; los que van de 12 a 60 meses tienen 35%; de 4 a 12 meses y los de más
de 60 meses con igual porcentaje 11%
79
VIII SUMMARY.
DIAGNOSIS OF DISEASES HEMATICAS IN CANINE CITY OF
MIRACLE THROUGH USE OF KITS SNAP 4DX.
The research was conducted with the objective of determining the number of positive
cases of hematological diseases in the city of miracle, for which it was divided into 4
sectors: north, south, east and west.
The sample population was 100 individuals, they were divided into four groups of 25
each.
The blood sample was drawn from the radial vein, the same as it is placed in a tube
with EDTA of 1 ml, well identified and then put into a thermos for conservation.
The diagnosis was obtained using the 4DX Snap Kit, which is a reaction test for 4
diseases: Ehrlichia, Lyme, Anaplasma and Dirofilaria.
In the information sheet were taken into account parameters such as sector, age, sex
and disease present.
Of the 100 dogs surveyed 57 were positive, which accounts for 57%.
For the North sector gave us 16%, followed by the South with 15%, the East with
14% and the West with 12% statistical evaluation revealed no statistical significance.
Regarding gender, we have that females make up 30% compared with 27% males.
57% of positive cases are: Ehrlichia with 25% to 9% Anaplasma and Mix infections
patients represent 23%.
By age: ranging from 12 to 60 months are 35%, from 4 to 12 months and the other 60
months with the same percentage 11%.
80
IX. BIBLIOGRAFÍA
1.- Acha, P. y B. Szyfrea. 1986. Zoonosis y Enfermedades trasmisibles comunes
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17.- Guerrero, R. 1986. Epidemiologia. Editorial Addison-Wesley
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ciudad de Guayaquil. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.
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Ciudad de Milagro. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia.
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http://www.mevepa.cl/modules.php?name=News&file=print&sid=201
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http://www.monografias.com/trabajos43/erlichiosis/erlichiosis2.shtml >
Fecha de Consulta: 12-feb-2010. 13:50.
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técnicas de las azucenas y de las malvas. Quito-Ecuador. Pg.36.
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salud. Cuarta edición. Editorial Limusa S.A. México. Pág. 576.
84
X. ANEXOS
ANEXO I. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para las zonas.
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 16 14,25 1,75 3,06 0,21
Este 14 14,25 -0,25 0,06 0,00
Oeste 12 14,25 -2,25 5,06 0,36
Sur 15 14,25 0,75 0,56 0,04
Suman 57 57 0 ***** 0,61
57/4=14.25
El resultado obtenido es 0,61
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior al
2 de la tabla. No hay
significancia estadística (P0.05).
85
ANEXO II. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para el sexo.
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Hembras 30 14,25 15,75 248,06 17,41
Machos 27 14,25 12,75 162,56 11,41
Suman 57 57 0 ***** 28,82
57/2=14,25
El resultado obtenido es 28,82
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 2 – 1 = 1
g.l. = 1
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,841; Por tanto se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es superior al
2 de la tabla. Hay
significancia estadística (P0.05).
86
ANEXO III. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia y el sexo (Hembras).
Casos
Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)
2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 7 7,5 -0,5 0,25 0,03
Este 7 7,5 -0,5 0,25 0,03
Oeste 7 7,5 -0,5 0,25 0,03
Sur 9 7,5 1,5 2,25 0,30
Suman 30 30 0 ***** 0,40
30/4 = 7,5
El resultado obtenido es 0,40
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto se no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a las hembras y zonas, (P0.05).
87
ANEXO IV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia y el sexo (Machos)
Casos
Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)
2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 9 6,75 2,25 5,06 0,75
Este 7 6,75 0,25 0,06 0,01
Oeste 5 6,75 -1,75 3,06 0,45
Sur 6 6,75 -0,75 0,56 0,08
Suman 27 27 0 ***** 1,30
27/4 = 6,75
El resultado obtenido es 1,30
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
88
ANEXO V. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, diagnóstico (Ehrlichia) y el sexo (Hembra)
Sexo Diagnóstico Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Hembras
Ehrlichia 2 2 3 5 12
Anaplasmosis 2 1 1 2 6
Ehr y Ana 3 4 3 2 12
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 2 3 -1 1,00 0,33
Este 2 3 -1 1,00 0,33
Oeste 3 3 0 0,00 0,00
Sur 5 3 2 4,00 1,33
Suman 12 12 0 ***** 2,00
12/4 = 3
El resultado obtenido es 2,00
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
89
ANEXO VI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, diagnóstico (Anaplasmosis) y el sexo (Hembra)
Sexo Diagnóstico Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Hembras
Ehrlichia 2 2 3 5 12
Anaplasmosis 2 1 1 2 6
Inf. mixtas 3 4 3 2 12
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 2 1,5 0,5 0,25 0,17
Este 1 1,5 -0,5 0,25 0,17
Oeste 1 1,5 -0,5 0,25 0,17
Sur 2 1,5 0,5 0,25 0,17
Suman 6 6 0 ***** 0,67
6/4 = 1,5
El resultado obtenido es 0,67
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
90
ANEXO VII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, diagnóstico (Infecciones mixtas) y el sexo (Hembra)
Sexo Diagnóstico Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Hembras
Ehrlichia 2 2 3 5 12
Anaplasmosis 2 1 1 2 6
Inf. mixtas 3 4 3 2 12
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 3 3 0 0,00 0,00
Este 4 3 1 1,00 0,33
Oeste 3 3 0 0,00 0,00
Sur 2 3 -1 1,00 0,33
Suman 12 12 0 ***** 0,67
12/4 = 3
El resultado obtenido es 0,67
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
91
ANEXO VIII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No
Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado
para la procedencia, diagnóstico (Ehrlichia) y el sexo (Macho)
Sexo Diagnóstico Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Machos
Ehr 2 5 3 3 13
Anaplasmosis 3 0 0 0 3
Inf. mixtas 4 2 2 3 11
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 2 3,25 -1,25 1,56 0,48
Este 5 3,25 1,75 3,06 0,94
Oeste 3 3,25 -0,25 0,06 0,02
Sur 3 3,25 -0,25 0,06 0,02
Suman 13 13 0 ***** 1,46
13/4 = 3,25
El resultado obtenido es 1,46
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
92
ANEXO IX. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, diagnóstico (Infecciones mixtas) y el sexo (Macho)
Sexo Diagnóstico Zona
TOTAL Norte Este Oeste Sur
Machos
Ehr 2 5 3 3 13
Anaplasmosis 3 0 0 0 3
Inf. mixtas 4 2 2 3 11
Casos Positivos Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 4 2,75 1,25 1,56 0,57
Este 2 2,75 -0,75 0,56 0,20
Oeste 2 2,75 -0,75 0,56 0,20
Sur 3 2,75 0,25 0,06 0,02
Suman 11 11 0 ***** 1,00
11/4 = 2,75
El resultado obtenido es 1,00
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).
93
ANEXO X. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, edad (4-12 meses) y diagnóstico (Ehrlichia).
Casos
Positivos
4-12 meses
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2 (Fo – Fe)
2/Fe
Norte 0 0 0 0 0
Este 2 1.5 0.5 0.25 0.17
Oeste 1 1.5 -0.5 0.25 0.17
Sur 0 0 0 0 0
Suman 3 3 0 ***** 0.34
3/2=1.5
El resultado obtenido es 0,34.
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 2 – 1 = 1
g.l. = 1
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,84; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla.
No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P0.05).
94
ANEXO XI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico (Ehrlichia).
Casos
Positivos
12-60
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 2 4 -2 4 1
Este 3 4 -1 1 0.25
Oeste 6 4 2 4 1
Sur 5 4 1 1 0.25
Suman 16 16 0 ***** 2.50
16/4=4
El resultado obtenido es 2.5
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por lo tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla.
No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
95
ANEXO XII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, edad (más de 60 meses) y diagnóstico (Ehrlichia).
Casos
Positivos
más de 60
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 2 1.67 0.33 0.11 0.06
Este 2 1.67 0.33 0.11 0.06
Oeste 0 0 0 0 0
Sur 1 1.67 -0.66 0.43 0.26
Suman 5 5 0 ***** 0.38
5/3 = 1.67
El resultado obtenido es 0,38
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 3 – 1 = 2
g.l. = 2
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 2 g.l. = 5,99; Por lo tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
96
ANEXO XIII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No
Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado
para la procedencia, edad (4 – 12 meses) y diagnóstico
(Anaplasmosis).
Casos
Positivos 4-
12 meses
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 3 2 1 1 0.5
Este 0 0 0 0 0
Oeste 1 2 -1 1 0.5
Sur 2 2 0 0 0
Suman 6 6 0 ***** 1.0
6/3 = 2
El resultado obtenido es 1
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 3 – 1 = 2
g.l. = 2
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 2 g.l. = 5,99; Por lo tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
97
ANEXO XIV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No
Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado
para la procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico
(Anaplasmosis).
Casos
Positivos
12-60
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 2 1.5 0.5 0.25 0.16
Este 1 1.5 -0.5 0.25 0.16
Oeste 0 0 0 0 0
Sur 0 0 0 0 0
Suman 3 3 0 ***** 0.33
3 / 2 = 1.5
El resultado obtenido es 0.33
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 2 – 1 = 1
g.l. = 1
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,84; Por lo tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla. No
hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
98
ANEXO XV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica
para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la
procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico (Infecciones
mixtas).
Casos
Positivos
12-60
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 5 4 1 1 0.25
Este 5 4 1 1 0.25
Oeste 3 4 -1 1 0.25
Sur 3 4 -1 1 0.25
Suman 16 16 0 ***** 1
16 / 4 = 4
El resultado obtenido es 1
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla.
No hay Significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
99
ANEXO XVI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No
Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado
para la procedencia, edad (más de 60 meses) y diagnóstico
(Infecciones mixtas).
Casos
Positivos
más de 60
Fo Fe (Fo – Fe) (Fo – Fe)2
(Fo –
Fe)2/Fe
Norte 2 1.5 0.5 0.25 0.16
Este 1 1.5 -0.5 0.25 0.16
Oeste 1 1.5 -0.5 0.25 0.16
Sur 2 1.5 0.5 0.25 0.16
Suman 6 6 0 ***** 0.64
6 / 4 = 1.5
El resultado obtenido es 0.64
Los g.l. = (r – 1)
g.l. = 4 – 1 = 3
g.l. = 3
Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la
hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el
2 de la tabla.
No hay Significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).
100
ANEXO XVII. Análisis de sensibilidad del método de diagnóstico.
Resultados de la Prueba Resultados Verdaderos
Positivos 57 (A)
Negativos 43 ©
Total 100 (A + C)
Sensibilidad =
x 100
Sensibilidad =
x 100
Sensibilidad = 57 %
El método de diagnóstico utilizado para determinar la incidencia de enfermedades
hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del
Kits Snap 4 DX, tiene una sensibilidad del 57 %, lo que nos demuestra que si es
confiable este método, ya que el 57 % es significativo según (Guerrero, 1986).
101
ANEXO XVIII. TABLA DE χ2 (chi cuadrado)
Grados de 20% 10% 5% 2% 1% 0,10%
Libertad.
1 1,64 2,71 3,84 5,41 6,64 10,83
2 3,22 4,6 5,99 7,82 9,21 13,82
3 4,64 6,25 7,82 9,84 11,34 16,27
4 5,99 7,78 9,49 11,67 13,28 18,46
5 7,29 9,24 11,07 13,39 15,09 20,52
6 8,56 10,64 12,59 15,03 16,81 22,46
7 9,8 12,02 14,07 16,62 18,48 24,32
8 11,03 13,36 15,51 18,17 20,09 26,12
9 12,24 14,68 16,92 19,68 21,67 27,88
10 13,44 15,99 18,31 21,16 23,21 29,59
11 14,63 17,28 19,68 22,62 24,72 31,26
12 15,81 18,55 21,03 24,05 26,22 32,91
13 16,98 19,81 22,36 25,47 27,69 34,53
14 18,15 21,06 23,68 26,87 29,14 36,12
15 19,31 22,31 25 28,26 30,58 37,7
16 20,46 23,54 26,3 29,63 32 39,25
17 21,62 24,77 27,59 31 33,41 40,79
18 22,76 25,99 28,87 32,35 34,8 42,31
19 23,9 27,2 30,14 33,69 36,19 43,82
20 25,04 28,41 31,41 35,02 37,57 45,32
21 26,17 29,62 32,67 36,34 38,93 46,8
22 27,3 30,81 33,92 37,66 40,29 48,27
23 28,43 32,01 35,17 38,97 41,64 49,73
24 29,55 33,2 36,42 40,27 42,98 51,18
25 30,68 34,38 37,65 41,57 44,31 52,62
26 31,8 35,56 38,88 42,86 45,64 54,05
27 32,91 36,74 40,11 44,14 46,96 55,48
28 34,03 37,92 41,34 45,42 48,28 56,89
29 35,14 39,09 42,56 46,69 49,59 58,3
30 36,25 40,26 43,77 47,96 50,89 59,7
102
ANEXO XIX. Fotos de todo el proceso de diagnóstico de enfermedades
hemáticas caninas en la Ciudad de Milagro.
Elementos que conforman el kit: tubo de ensayo con tapa; micropipeta; la
botella con el enjugado; el dispositivo y una muestra de sangre.
105
Obsérvese aquí las petequias ventrales, síntoma clásico de la Ehrlichiosis en
paciente Kenya
Resultado de la paciente kenya: Ehrlichia y Anaplasma
107
Extracción de la muestra de sangre paciente Lana.
Resultado de la paciente Lana: Ehrlichia y Anaplasma
108
Paciente: Osi en el momento de la toma de muestra.
Resultado del paciente Osi: Ehrlichia y Anaplasma
109
ANEXO XX. Hojas de Registro.
Nº DE CASO FECHA NOMBRE EDAD PROCEDENCIA SEXO SINTOMAS DIAGNÓSTICO
POSITIVO NEGATIVO
1 6-8-10 nena 48 mese Grupo 1 hembra
Presencia de
garrapatas,temperatura
alta, mucosas pálidas
negativo
2 7-8-10 frida 15 messes Grupo 1 hembra
Delgada antecedentes
de dirofilaria en el
habitad
negativo
3 9-8-10 Billy you 20 meses Grupo 2 macho
Presencia de
garrapatas-ganglios
inflamados-t40°c
negativo
4 14-8-10 flopy 96 meses Grupo 1 macho
Presencia de
garrapatas-delgado-
palido-40.5°c
ehrlichia
5 27-8-10 randu 96 meses Grupo 2 macho
Presencia de
garrapatas-caquextico-
palido-alitosis-41°c
ehrlichia
6 27-8-10 spaik 96 meses Grupo 1 macho
Presencia de
garrapatas-mucosas
pálidas-animo
intermitente
negativo
7 27-8-10 sarita 36 meses Grupo 1 hembra Presencia garrapatas-pálida-sin ánimo-40°c
negativo
8 27-8-10 truchini 10 meses Grupo 1 macho
Presencia de garrapatas-
caquéctico-mucosas amarillas-40.5°c
anaplasma
9 30-8-10 Fisher 36 meses Grupo 3 macho
Presencia de garrapatas-
inmovilidad tren posterior
Infecciones mixtas
10 31-8-10 hullk 48 meses Grupo 1 macho
Presencia de garrapatas-mucosas amarillas-petequias-
disnea-41°c
Infecciones mixtas
11 3-9-10 hueso 24 meses Grupo 1 macho Presencia de garrapatas-
caquextico-39.5°c negativo
12 4-9-10 simone 17 meses Grupo 3 hembra Presencia de garrapatas-
decaimiento-41°c ehrlichia
13 4-9-10 eros 84 meses Grupo 3 macho Garrapatas-mucosas
palidas-alitosis Infecciones
mixtas
14 6-9-10 killer 48 meses Grupo 4 macho
Problemas de piel-problemas de coagulación-
problemas de piel
Infecciones mixtas
15 6-9-10 nena 72 meses Grupo 4 hembra Mucosas pálidas-vientre ascítico-
caquéctica ehrlichia
16 6-9-10 koby 16 meses Grupo 3 macho Expuesto a
garrapatas-delgado-problemas de piel
ehrlichia
17 11-9-10 caramelo 72 meses Grupo 3 hembra
Presencia de garrapatas-palidez
mucosas-caquéctico-parto hace 2 meses-
39°c
negativo
110
18 13-9-10 nena 18 meses Grupo 2 hembra
Presencia de garrapatas-palidez mucosas-gestante-
38°c
Infecciones mixtas
19 14-9-10 Scott 60 meses Grupo 3 macho Dolor corporal al tacto-inapetente-
delgado negativo
20 15-9-10 cochi 48 meses Grupo 3 hembra Presencia garrapatas-
palidez mucosas-halitosis
negativo
21 16-9-20 osi 120 meses Grupo 1 macho
Presencia de garrapatas-palidez mucosas-anorexia-
caquéctico
Infecciones mixtas
22 16-9-10 bebe 48 meses Grupo 1 hembra Presencia de garrapatas-
decaimiento ehrlichia
23 16-9-10 lana 84 meses Grupo 1 hembra Presencia de
garrapata-gestante-palidez mucosas
Infecciones mixtas
24 22-9-10 noa 4 meses Grupo 2 hembra
Presencia de garrapatas-manchas
petequiales en los parpados
negativo
25 23-9-10 summer 60 meses Grupo 4 macho Garrapatas-
caquéctico-mucosas pálidas-con apetito
Infecciones mixtas
26 23-9-10 nikita 72 meses Grupo 4 hembra
Con garrapatas-caquectica-palidez mucosas-halitosis-
absceso en la mama
Infecciones mixtas
27 27-9-10 yaki 48 meses Grupo 4 hembra
Presencia de garrapatas-cojera-
inapetencia-ganglios inflamados-40°c
negativo
28 27-9-10 coqui 30 meses Grupo 1 hembra Presencia garrapatas-
petequias vientre-alopecias
anaplasma
29 5-10-10 Paco 8 meses Grupo 1 macho Presencia garrapatas-tics nerviosos- caspa-
halitosis anaplasma
30 6-10-10 osa 10 meses Grupo 3 hembra Presencia de
garrapatas-caquexia-40°c
anaplasma
31 7-10-10 Max 17 meses Grupo 4 macho Presencia garrapatas-inapetencia-ganglios inflamados-38.7°c
ehrlichia
32 9-10-10 copo 4 meses Grupo 2 macho
Antecedentes de garrapatas-
decaimiento-palidez mucosas-39°c
ehrlichia
33 9-10-10 kenya 28 meses Grupo 3 hembra
Presencia de garrapatas-petequias
en el vientre-problemas de piel-
delgada
ehrlichia
34 11-10-10 niña 24 meses Grupo 3 hembra Presencia de
garrapatas-alopecias-39.5°c
negativo
111
35 11-10-10 shugar 11 meses Grupo 3 hembra
Presencia de garrapatas-erupción cutánea-secreción vaginal-caquéctica-
39.5°c
Infecciones mixtas
36 11-16-10 niña 15 meses Grupo 2 hembra
Presencia de garrapatas-problemas
de piel-palidez mucosas-38.5 °c
anaplasma
37 13-10-10 Ronaldinho 72 meses Grupo 1 macho
Presencia de garrapatas-palidez
mucosas-heces oscuras-caquexia-
alitosis-38°c
ehrlichia
38 13-10-10 ranger 10 meses Grupo 1 macho Ganglios inflados-demódex canis-
decaimiento-39°c anaplasma
39 13-10-10 flopy 4 meses Grupo 3 hembra Palidez mucosas-
ganglios inflamados heces negras
negativo
40 14-10-10 bia 30 meses Grupo 3 hembra
Presencia de garrapatas-palidez
mucosas- alopecias-vientre distendido
ehrlichia
41 15-10-10 suko 5 meses Grupo 4 macho Presencia de
garrapatas-delgado-anorexia-40°c
negativo
42 15-10-10 cuki 16 meses Grupo 2 hembra
Presencia de garrapatas-delgada-
anoréxica-heces negras- mucosas
pálidas
ehrlichia
43 15-10-10 shada 5 meses Grupo 1 hembra
Presencia de garrapatas-palidez mucosas-anorexia-
ganglios inflamados
negativo
44 15-10-10 coco 12 meses Grupo 4 macho
Presencia de garrapatas-halitosis-
delgado-ganglios inflamados
negativo
45 16-10-10 caramelo 48 meses Grupo 2 hembra
Garrapatas-problemas de piel-otitis-ganglios inflamados-dermatitis
alérgica
Infecciones mixtas
46 16-10-10 CASANDRA 36 MESES GRUPO 4 HEMBRA
PRESENCIA DE GARRAPATAS-
PROBLEMAS DE PIEL-TVT-
NEGATIVO
47 18-10-10 nina 96 meses Grupo 3 hembra
Presencia de garrapatas-mucosas pálidas-inapetencia-
miasis
negativo
48 18-10-10 boomer 96 meses Grupo 3 macho Presencia de garrapata-
inapetencia negativo
49
19-10-10 janko 36 meses Grupo 4 macho
Heces negras-caquéctico-
inapetente-mucosas escarlatas 39°c
ehrlichia
112
50
20-10-10
nena
96 meses
Grupo 4
hembra
Garrapatas-obeso
negativo
51 21-10-10 cuky 7 meses Grupo 4 hembra Presencia de
garrapatas-caquexia-40°c
negativo
52 21-10-10 picles 9 meses Grupo 4 hembra Presencia garrapatas-
palidez mucosas-delgades-40°c
negativo
53 22-10-10 cuky 48 meses Grupo 1 hembra Presencia garrapatas-ganglios inflamados
anaplasma
54 22-10-10 chucho 36 meses Grupo 3 Macho Presencia de
garrapatas-sangre en la orina
ehrlichia
55 26-10-10 lupo 48 meses Grupo 3 macho Presencia de
garrapatas-erupciones en la piel
negativo
56 26-10-10 shadow 24 meses Grupo 1 macho Presencia de
garrapatas-anorexia-decaimiento
Infecciones mixtas
57 27-10-10 kenok 24 meses Grupo 1 macho
Antecedentes de garrapatas-heces negras-mucosas
palidas-40°c
Infecciones mixtas
58 28-10-10 pelusa 36 meses Grupo 1 hembra
Inapetencia-decaimiento-39°c-antecedentes de
garrapatas
negativo
59 29-10-10 Lucas 48 meses Grupo 2 macho
Presencia de garrapatas-palido-
acumulación de liquido en las
extremidades-heces negras-disnea-37°c
ehrlichia
60 3-11-10 gari 60 meses Grupo 2 macho Presencia garrapatas-
palidez mucosas-animo intermitente
Infecciones mixtas
61 3-11-10 mara 48 meses Grupo 4 hembra Presencia de garrapatas-
decaimiento-halitosis ehrlichia
62 3-11-10 arena 60 meses Grupo 4 hembra
Presencia de garrapatas-vientre ascítico-dando de
lactar-mucosas pálidas
ehrlichia
63 3-11-10 blanca 6 meses Grupo 4 hembra
Caquextica-anoréxico-problemas de piel-
presencia de garrapatas
negativo
64 3-11-10 blanco 5 meses Grupo 4 macho
Ascítico-presencia de garrapatas-palidez-
heces negras-ganglios inflamados
ehrlichia
65 5-11-10 chiquita 8 meses Grupo 4 hembra
Presencia garrapatas-39°c-ganglios agrandados-
problemas de piel
ehrlichia
66
6-11-10 grandota 6 meses Grupo 2 hembra
Presencia de garrapatas-uveítis-
decaimiento-ganglios inflamados-caquexia
negativo
113
67
6-11-10
princesa
24 meses
Grupo 2
hembra
Presencia garrapatas-decaimiento-40°c
negativo
68 8-11-10 cuka 60 meses Grupo 3 hembra Presencia garrapatas-
anemia-ganglios inflamados-38.7°c
Infecciones mixtas
69 8-11-10 pulgo 18 meses Grupo 3 macho Presencia garrapatas-
anemia-anorexia-40°c
negativo
70 9-11-10 mory 48 meses Grupo 4 hembra Presencia garrapatas-ganglios agrandados-
heces oscuras ehrlichia
71 13-11-10 preciosa 4 meses Grupo 2 hembra Garrapatas-diarrea-
tos-animo intermitente-39.5°c
negativo
72 13-11-10 susi 19 meses Grupo 2 hembra Presencia garrapatas-
decaimiento negativo
73 13-11-10 Lucas 120 meses Grupo 2 macho Presencia garrapatas-ganglios inflamados
negativo
74 13-11-10 keila 108 meses Grupo 2 hembra
Heces con sangre-halitosis-encías palidas-disnea-
garrapatas-38°c
Infecciones mixtas
75 13-11-10 kipi 48 meses Grupo 2 macho Garrapatas
abundantes-otitis-caquexia
negativo
76 15-11-10 toti 14 meses Grupo 3 hembra Presencia garrapatas-
decaida-ganglios inflamados-39°c
negativo
77 16-11-10 doshi 48 meses Grupo 3 hembra Presencia de
garrapatas uveítis negativo
78 18-11-10 guapa 4 meses Grupo 4 hembra
Presencia garrapatas-ojos azulados-ganglios
inflamados-hígado agrandado
Anaplasma
79 19-11-10 duda 60 meses Grupo 4 hembra
Garrapatas abundantes-sist
nervioso alterado-palides mucosas
Infecciones mixtas
80 19-11-10 muñeca 96 meses Grupo 4 hembra
Garrapatas-problemas depiel-alteracion nerviosa-pupilas
dilatadas-
Infecciones mixtas
81 20-11-10 bella 36 meses Grupo 4 hembra 37°c-heces negras-
ascitis-disnea- presencia garrapatas
negativo
82 26-11-10 chiquita 36 meses Grupo 2 hembra Parida-halitosis-
garrapatas-palidez mucosas
Infecciones mixtas
83 27-11-10 beyonce 15 meses Grupo 1 hembra
Garrapatas-palidez mucosas-petequias-miasis-heces negras-
41°c
ehrlichia
84
29-11-10 bengi 4 meses Grupo 3 macho
Presencia garrapatas-anorexia-ganglios
inflamados –caquéctico-mucosas
amarillas
negativo
114
85 30-11-10 estrellita 72 meses Grupo 2 hembra Garrapatas-heces
negras-ascitis-disnea-mucosas palidas-39°c
negativo
86 1-12-10 oso 4 meses Grupo 2
macho
Garrapatas-anoréxico-decaído-ganglios
inflamados
Negativo
87 1-12-10 coffe 24 meses Grupo 1 macho Presencia de garrapatas-inapetencia
negativo
88 3-12-10 loba 24 meses Grupo 3 hembra Inapetencia-vómitos esporádicos-halitosis
negativo
89 3-12-10 caramelo 72 meses Grupo 2 macho Presencia garrapatas-
problemas de piel-palidez mucosas
ehrlichia
90 3-12-10 Max 36 meses Grupo 2 macho
Presencia garrapata-problemas de piel-palidez mucosas-
heces fétidas
ehrlichia
91 7-12-10 pucca 24 meses Grupo 3 hembra
Caquextica-presencia garrapatas-
inapetencia-palidez mucosas-heces
oscuras
Infecciones mixtas
92 8-12-10 murdog 168 meses Grupo 4 macho
Presencia garrapatas-dificultad de
movimiento-tumor en la encía-problemas de
piel
negativo
93 11-12-10 oso 10 meses Grupo 4 macho Presencia garrapatas-
problemas de piel anaplasma
94 14-12-10 yanka 18 meses Grupo 2 hembra Problemas de piel-garrapatas-parida-
ganglios inflamados
Infecciones mixtas
95 14-12-10 rabito 11 meses Grupo 2 macho
Presencia garrapatas-ganglios inflamados-
inapetencia-decaimiento-vomito amarillo espumoso
Infecciones mixtas
96 14-12-10 tobi 33 meses Grupo 2 macho Garrapatas-41°c-caquexia-heces
oscuras-anorexia negativo
97 15-12-10 princesa 19 meses Grupo 1 hembra Presencia garrapatas-ganglios inflamados-
alitosis-39°c
Infecciones mixtas
98 22-12-10 lay di 96 meses Grupo 1 hembra
Garrapatas-mucosas pálidas-heces
amarillas-ganglios inflamados-hernia
inguinal
ehrlichia
99 4-1-11 spike 48 meses Grupo 3 macho
Presencia garrapatas-ganglios inflamados-
inapetencia-decaimiento-
ehrlichia
100 6-1-11 Morgan 4 meses Grupo 1 macho Presencia de garrapatas-
decaimiento-halitosis negativo
Infecciones mixtas = Ehrlichia y Anaplasma