UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD …...prueba o difusión de disco sobre el enterococcus...
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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
“EFECTO INHIBIDOR DEL HIDROXIDO DE CALCIO PURO CON ACEITE
ESENCIAL DE MANZANILLA “Matricaria Chamonilla” AL 100% EN
COMPARACIÓN CON HIDROXIDO DE CALCIO MAS
PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO E HIDROXIDO DE CALCIO
PURO, SOBRE CEPAS DE ENTEROCOCCUS FAECALIS. ESTUDIO IN VITRO”
Proyecto de Investigación presentado como requisito previo la obtención del título
de Odontólogo
Autor: Hidalgo Narváez Juan Pablo
Tutora: Dra. Hidalgo Araujo Paola Daniela
Quito. Julio - 2016
ii
DEDICATORIA
El presente trabajo está dedicado a Dios por ser mi luz, esperanza y fortaleza,
demostrándome cada día que su amor es inmensamente grande.
A mis padres Rufo y Elizabeth por su amor, comprensión, esfuerzo y apoyo
incondicional durante este largo camino, ustedes fueron el pilar fundamental que
me permitió alcanzar la meta.
A mis hermanos gracias por estar a mi lado y apoyarme desde siempre, espero
algún día recompensar todo lo que han hecho por mí.
A mis compañeros de aula y de carrera ya que juntos fuimos alcanzando la meta
que nos propusimos
Esta obra se las dedico con todo mi cariño
Juan Pablo
iii
AGRADECIMIENTO
A la Universidad Central del Ecuador, Facultad de Odontología a todos los
docentes y demás personas que aportaron de una u otra manera en nuestra
formación profesional.
A mi asesora de tesis la Dra. Daniela Hidalgo.
A los miembros del jurado examinador Dr. Roberto Romero, Dra. Gabriela Tapia y
Dra. Silvana Terán por su colaboración en la realización, revisión y evaluación de
este trabajo investigativo.
De manera especial al Bioq. Darwin Roldan por su supervisión en el proceso de
obtención del aceite esencial de Matricaria chamomilla “manzanilla”, a la Dra.
Fernanda Loaiza por su ayuda y guía en la realización del trabajo práctico de
laboratorio y a todas las personas que estuvieron inmersos en la realización de
este trabajo de investigación.
iv
DERECHOS DE AUTOR
Yo, HIDALGO NARVÀEZ JUAN PABLO, en calidad de autor del trabajo de
investigación EFECTO INHIBIDOR DEL HIDROXIDO DE CALCIO PURO CON
ACEITE ESENCIAL DE MANZANILLA “Matricaria Chamonilla” AL 100% EN
COMPARACIÓN CON HIDROXIDO DE CALCIO MAS
PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO E HIDROXIDO DE CALCIO
PURO, SOBRE CEPAS DE ENTEROCOCCUS FAECALIS. ESTUDIO IN VITRO.
Autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR a hacer uso del contenido
total o parcial que me pertenece, con fines estrictamente académicos y de
investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8. 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
También autorizo a la Universidad Central del Ecuador realizar la digitalización y
publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad
a lo dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior
CC. 1002806600
v
APROBACION DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
Yo, PAOLA DANIELA HIDALGO ARAUJO, en mi calidad de tutora del trabajo de
titulación. Modalidad Proyecto de Investigación. Elaborado por JUAN PABLO
HIDALGO NARVÁEZ: cuyo título es: EFECTO INHIBIDOR DEL HIDROXIDO DE
CALCIO PURO CON ACEITE ESENCIAL DE MANZANILLA “Matricaria
Chamonilla” AL 100% EN COMPARACIÓN CON HIDROXIDO DE CALCIO MAS
PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO E HIDROXIDO DE CALCIO
PURO, SOBRE CEPAS DE ENTEROCOCCUS FAECALIS. ESTUDIO IN VITRO”,
previo a la obtención de Grado de Odontólogo; considero que el mismo reúne los
requisitos y méritos necesario en el campo metodológico y epistemológico. Para
ser sometido a la evaluación por parte del tribunal examinador que se designe., por
lo que lo APRUEBO, a fin de que el trabajo sea habilitado para continuar con el
proceso de titulación determinado por la Universidad Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito a los 22 días del mes de Junio del 2016
DOCENTE – TUTORA
C.C:1717344566
vi
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El tribunal constituido por Dr. Roberto Romero, Dra. Gabriela Tapia, Dra. Silvana
Terán
Luego de receptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la obtención
del título de Odontólogo, presentado por el señor Juan Pablo Hidalgo Narváez.
Con el título
EFECTO INHIBIDOR DEL HIDROXIDO DE CALCIO PURO CON ACEITE
ESENCIAL DE MANZANILLA “Matricaria Chamonilla” AL 100% EN
COMPARACIÓN CON HIDROXIDO DE CALCIO MAS
PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO E HIDROXIDO DE CALCIO
PURO, SOBRE CEPAS DE ENTEROCOCCUS FAECALIS. ESTUDIO IN VITRO
Emite el siguiente veredicto APROBADO.
Fecha: 22 de Julio del 2016
Para constancia de lo actuado firman:
Nombre Apellido Calificación Firma
Presidente Dr. Roberto Romero 16 ptos
Vocal 1 Dra. Gabriela Tapia 20 ptos
Vocal 2 Dra. Silvana Terán 18 ptos
vii
CONTENIDOS
DEDICATORIA .................................................................................................... ii
AGRADECIMIENTO ........................................................................................... iii
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL………………………………iv
INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR ....................................................... v
CERTIFICACIÓN DEL TRIBUNAL ..................................................................... vi
CONTENIDOS .................................................................................................. vii
ÍNDICE DE FIGURAS ........................................................................................ x
ÍNDICE DE TABLAS .......................................................................................... ix
RESUMEN ......................................................................................................... xi
ABSTRACT ....................................................................................................... xii
INTRODUCCIÓN ............................................................................................... 1
CAPITULO I ....................................................................................................... 2
1. EL PROBLEMA ................................................................................... 2
1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ................................................. 2
1.2. OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN ................................................ 4
1.2.1. Objetivo General .................................................................................. 4
1.2.2. Objetivos específicos ........................................................................... 4
1.3. JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA .................................................... 5
1.4. HIPÓTESIS ......................................................................................... 5
CAPITULO II ...................................................................................................... 6
2. MARCO TEORICO .............................................................................. 6
2.1. Enterococcus Faecalis ........................................................................ 6
2.2. Hidróxido de calcio ............................................................................ 10
2.3. Matricaria chamomilla “Manzanilla” ................................................... 12
2.4. Paramonoclorofenol alcanforado ....................................................... 15
CAPITULO III ................................................................................................... 19
3. METODOLOGÍA ................................................................................ 19
3.1. Tipo de investigación ......................................................................... 19
3.2. Muestra de estudio ............................................................................ 19
3.2.1. Muestra.............................................................................................. 19
viii
3.3. Criterios de inclusión y exclusión ....................................................... 20
3.3.1. Criterios de inclusión ......................................................................... 20
3.3.2. Criterios de exclusión ........................................................................ 20
3.4. OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES ................................ 20
3.5. Instrumentos ...................................................................................... 21
3.6. PROCEDIMIENTO Y TECNICA ........................................................ 22
3.6.1. Obtención del aceite esencial de manzanilla “Matricaria Chamomilla” al
100% .......................................................................................................... 22
3.6.2. Preparación del hidróxido de calcio con las soluciones “aceite esencial
de manzanilla, paramonoclorofenol y solución salina” ..................................... 23
3.6.2.1. Microorganismo y reactivación de las cepas bacterianas .................. 26
3.6.3. Preparación de agar mueller hinton en cajas Petri ............................ 27
3.6.4. Siembra bacteriana en las cajas Petri ............................................... 28
3.6.5. 3.6.6 Grupo de control ....................................................................... 29
3.6.6. Prueba de difusión de disco .............................................................. 29
CAPITULO IV ................................................................................................... 31
4. RESULTADOS .................................................................................. 31
4.1. Análisis estadístico sin grupo de control ............................................ 31
4.1.1. Análisis de varianza sin grupo de control .......................................... 35
4.1.2. Prueba de Tukey sin grupo de control ............................................... 37
4.2. Análisis estadístico con grupo de control .......................................... 38
4.2.1. Análisis de varianza con grupo de control ......................................... 40
4.2.2. Prueba de Tukey análisis de varianza sin grupo de control .............. 42
CAPITULO V .................................................................................................... 44
5. DISCUSION ....................................................................................... 44
CAPITULO IV ................................................................................................... 47
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ..................................... 47
6.1. CONCLUSIONES .............................................................................. 47
6.2. RECOMENDACIONES ..................................................................... 48
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................................. 49
ANEXOS .......................................................................................................... 53
ix
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Operacionalización de variables .............................................................. 20
Tabla 2. Resultados de la medición de halos de inhibición ................................... 31
Tabla 3. Datos estadísticos hidróxido de calcio puro ............................................ 32
Tabla 4. Datos estadísticos hidróxido de calcio + manzanilla ............................... 33
Tabla 5. Datos estadísticos hidróxido de calcio + paramonoclorofenol ................. 33
Tabla 6. Análisis de varianza sin grupo de control ................................................ 36
Tabla 7. Diferencia promedios sin grupo control ................................................... 37
Tabla 8. Resultados de la medición de halos de inhibición aplicación
gentamicina ........................................................................................................... 38
Tabla 9. Comparación medidas halos inhibición ................................................... 39
Tabla 10. Datos estadísticos hidróxido de calcio puro .......................................... 39
Tabla 11. Análisis de varianza sin grupo de control .............................................. 41
Tabla 12. Diferencia promedios con grupo control ................................................ 42
x
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Pesaje en gramos Ca(OH)2 y colocación en cajas Petri por triplicado .. 23
Figura 3. Hidróxido de calcio, Paramonoclorofenol alcanforado, aceite esencial de
manzanilla ............................................................................................................. 24
Figura 4. Mezclas preparadas ............................................................................... 24
Figura 5. Discos de papel filtro de 6mm e impregnación de la sustancia en discos
de papel filtro ......................................................................................................... 25
Figura 7. Discos impregnados con Ca(OH)2 + paramonoclorofenol ..................... 25
Figura 8. Discos impregnados con Ca(OH)2 + suero salino ................................. 25
Figura 9. Discos impregnados con Ca(OH)2 + aceite esencial de manzanilla ...... 26
Figura 10. Cepas de enterococcus faecalis revitalizadas en agar ........................ 27
Figura 11. Rotulado de las 20 cajas Petri .............................................................. 28
Figura 13. Elución en solución salina 0.85% ........................................................ 28
Figura 14.Turbidez del 0,5 de la escala de McFarland .......................................... 29
Figura 15.Inoculación de las cepas de Enterococcus ........................................... 29
Figura 16. Discos de gentamicina y colocación de discos placas Petri ................. 30
Figura 18. Colocación de discos de cada sustancia utilizada en las cajas Petri ... 30
Figura 19. Comparación de resultados ................................................................. 34
Figura 20. Estabilidad de las muestras ................................................................. 35
Figura 21. Estabilidad de las muestras ................................................................. 40
xi
TEMA: EFECTO INHIBIDOR DEL HIDROXIDO DE CALCIO PURO CON ACEITE
ESENCIAL DE MANZANILLA “Matricaria Chamonilla” AL 100% EN
COMPARACIÓN CON HIDROXIDO DE CALCIO MAS
PARAMONOCLOROFENOL ALCANFORADO E HIDROXIDO DE CALCIO
PURO, SOBRE CEPAS DE ENTEROCOCCUS FAECALIS. ESTUDIO IN VITRO.
AUTOR: Juan Pablo Hidalgo Narváez
TUTORA: Dra. Paola Daniela Hidalgo Araujo
RESUMEN
El presente estudio se concentra en demostrar que sustancias son las más efectivas para inhibir cepas de enterococcus faecalis, entre estas sustancias se encuentran el hidróxido de calcio, extracto de manzanilla y paramonoclorofenol alcanforado. Para determinar la efectividad de las sustancia se utilizó el ensayo de prueba o difusión de disco sobre el enterococcus faecalis ATCC 29212; Los resultados determinaron que la mayor acción inhibidora fue la obtenida en el uso de hidróxido de calcio más paramonoclorofenol. Es importante mencionar, que existe una mínima variación entre los tres elementos investigados, llegando a determinar que no existe diferencia entre los promedios de las muestras, por lo que, sus efectos son estadísticamente similares. Para contrastar este resultado, se utilizó el efecto de la gentamicina el cual tiene un mayor efecto.
Palabras claves: HIDRÓXIDO DE CALCIO, EXTRACTO DE MANZANILLA, PARAMONOCLOROFENOL, ENTEROCOCCUS FAECALIS.
xii
TITLE: INHIBITORY EFFECT OF PURE CALCIUM HYDROXIDE WITH 100%
PURE CHAMOMILE (Matricaria chamonilla) OIL, COMPARED TO CALCIUM
HYDROXIDE WITH CAMPHORATED PARAMONOCHLOROPHENOL, AND
PURE CALCIUM HYDROXIDE, AGAINST Enterococcus faecalis STRAINS. IN
VITRO STUDY.
AUTHOR: Juan Pablo Hidalgo Narváez
TUTOR: Dr. Paola Daniela Hidalgo Araujo
ABSTRACT
This study focuses on testing which substances are most effective in inhibiting Enterococcus faecalis; these substances include calcium hydroxide, chamomile extract and camphorated paramonochlorophenol. In order to determine the effectiveness of said substances, this study used the disc diffusion test on Enterococcus faecalis ATCC 29212 strains. The results determined that the highest inhibitory effect was that of the combination of calcium hydroxide with paramonochlorophenol. However, it is important to mention that the variation between the three assessed substances was minimal, allowing us to conclude that there is no significant differences between sample averages; the effects of all three substances are statistically similar. To provide some contrast, this study considered gentamycin, a substance more effective than those assessed herein.
Keywords: CALCIUM HYDROXIDE/ CHAMOMILE EXTRACT/ PARAMONOCHLOROPHENOL/ Enterococcus faecalis.
1
INTRODUCCIÓN
La cavidad bucal alberga un sin número de microorganismos en un sistema de
complejidad considerable. Se pueden identificar entre 200 y 300 especies de
bacterias nativas de la cavidad bucal humana, las mismas que pueden crecer y
multiplicarse dependiendo de las condiciones de ambiente en donde viven. Entre
las bacterias más frecuentes que están asiladas en la cavidad bucal se encuentran
el enterococcusfaecalis, estos microorganismos se asocian en parejas y cadenas
cortas (Liebana, 2002)y si bien su hábitat es el intestino se han podido aislar como
microbiota normal en la mucosa oraly dorso de la lengua.(Padilla & Roncal, 2014)
El enterococcusfaecalis, es una bacteria muy resistente a los procedimientos de
desinfección del conducto, esta especie bacteriana es la segunda más común
“capaces de penetrar en los túbulos dentinarios,convirtiéndose así en inaccesible a
la acción de irrigantes y medicamentos intraconducto”(Padilla & Roncal, 2014)
Por otra parte el hidróxido de calcio es una sustancia empleada en la práctica diaria
odontológica como “medicamento intraconducto que ha demostrado efectos
antimicrobianos en los conductos radiculares, debido a su excelente acción
bactericida y bacteriostáticadebido a su disociación en iones calcio e hidroxilo, que
influyen en el metabolismo celular”(Tello, 2008)
De allí, que esta investigación tiene como objetivo principal comparar los efectos
antibacterianos del hidróxido de calcio puro más el aceite esencial de manzanilla
“matricaria chamomilla” al 100% en comparación con hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol alcanforado e hidróxido de calcio puro, sobre cepas de
enterococcusfaecalis, con el propósito de determinar la acción antibacteriana que
poseen estas sustancias y conocer que sustancia resulta en una mayor efectividad
contra la bacteria objeto del estudio.
2
CAPITULO I
1. EL PROBLEMA
1.1. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Uno de los tratamientos de mayor prevalencia en Odontología es el tratamiento del
conducto radicular y extirpación total de la pulpa dental (nervio, arteria y vena);
estos si no se tratan adecuadamente, pueden ocasionar perdida de la unidad
dentaria afectada, teniendo como consecuencia alteraciones: estéticas, digestivas,
entre otras.
Al ejecutar estos procesos odontológicos por parte del especialista existe el riesgo
de permanencia de bacterias como el enterococcusfaecalis, que está presente en
el sistema gastrointestinal del ser humano, en el caso de no tomar las debidas
precauciones en los procedimientos de limpieza e higiene. La característica de la
bacteria mencionada, es su alta resistencia a los mecanismos de desinfección, lo
que dificulta aún más su eliminación en los procedimientos odontológicos.
Al ingresar estos microorganismos en la pieza dental y/o cavidad bucal del paciente
se puede producir una infección que no permite el éxito en el tratamiento
odontológico, además motiva continuas visitas al especialista y reduce la
efectividad de los procedimientos de Endodoncia mencionados.
En el sentido de búsqueda de elementos que faciliten la asepsia en los consultorios
dentales, la medicina natural, a partir de las plantas y sus propiedades
antimicrobianas, últimamente ha recibido mucha atención de los científicos,
comprobándose las propiedades de sus componentes que van confirmando que
permiten combatir a los agentes patógenos.
Además, porque es importante conocer más sobre plantas medicinales como
métodos alternativos en el consultorio dental, pues con su ayuda, no se deberán
utilizar fármacos que a largo plazo se pueden volver perjudiciales para el
organismo.
3
A criterio de Farinango(2012) “actualmente la medicina natural es una de las
alternativas más empleadas en la población en general, el uso de las plantas
medicinales en la salud buco dental ha despertado el interés por sus distintas
ventajas”. Este aspecto del uso de la medicina natural en la Odontología establece
un mayor interés para la ejecución de la presente investigación.
4
1.2. OBJETIVOS DE LA INVESTIGACIÓN
1.2.1. Objetivo General
Determinar el efecto inhibidor del hidróxido de calcio puro con manzanilla al 100%
en comparación al hidróxido de calcio más paramonoclorofenol alcanforado y el
hidróxido de calcio puro sobre cepas de enterococcusfaecalis, en estudios in vitro
al cabo de un tiempo de determinación de exposición.
1.2.2. Objetivos específicos
Investigar la medida de los halos de inhibición formados por el hidróxido de
calcio puro con aceite esencial de manzanilla al 100% en el cultivo bacteriano
de enterococcusfaecalis.
Establecer la medida de los halos de inhibición formados por el hidróxido de
calcio más paramonoclorofenol alcanforado en el cultivo bacteriano de
enterococcusfaecalis.
Determinar la medida de los halos de inhibición formados por el hidróxido de
calcio puro en el cultivo bacteriano de enterococcusfaecalis.
Comparar estadísticamente las medidas de los halos de inhibición formados
por el hidróxido de calcio puro con aceite esencial de manzanilla al 100%,
hidróxido de calcio más paramonoclorofenol y el hidróxido de calcio puro en
las cepas de enterococcusfaecalis.
5
1.3. JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
La medicina natural aunque ha sido utilizada como tratamiento médico general
desde hace muchos años, es muy poco conocida como posible aporte al ámbito
odontológico. Al respecto, existen investigaciones para estudiar el comportamiento
de ciertos compuestos de origen vegetal sobre flora mixta salival y bacterias de
Streptococcusmutans, entre las que se pueden señalar las realizadas con aceite
esencial de Camelliasinensis "Te verde" y extracto etanólico de Propóleo.
Con el aceite esencial de la Matricaria chamomilla "manzanilla" ocurre algo similar,
sus múltiples beneficios médicos son bien conocidos se le han atribuido
propiedades antiinflamatorias y antisépticas pero su posible uso como ingrediente
de asepsia dental tiene limitadas referencias investigativas; esta circunstancia,
motiva la realización de la investigación y su aplicación en el medio odontológico.
Dada la escasez de investigaciones científicas en el área temática, fortalece el valor
del trabajo propuesto. De esta manera, la presente investigación podrá brindar una
alternativa de solución al problema planteado en las páginas iniciales de este
escrito.
1.4. HIPÓTESIS
El efecto inhibidor del hidróxido de calcio puro con manzanilla al 100% es mayor
que el hidróxido de calcio más paramonoclorofenol alcanforado y el hidróxido de
calcio puro sobre cepas de enterococcusfaecalis en estudios in vitro.
6
CAPITULO II
2. MARCO TEÓRICO
2.1. EnterococcusFaecalis
Portenier, Walitmo, & Haapasalo(2003) mencionan que hasta el año de 1980, los
enterococos no eran considerados un género bacteriano independiente, más bien
estaban incluidos dentro de los estreptococos a pesar de sus diferentes
características. Los enterococos pasaron a formar parte de otro género formal en
1984 después de realizar varios estudios de hibridación ADN-ADN o ADN-ARN
donde se demostró mayores diferencias en comparación con los estreptococos.
(González, 2015)
“El Enterococcusfaecalises considerado el microorganismo patógeno más
relacionado a las infecciones endodóncicas persistentes, ya que suele ser aislado
con frecuencia en la flora mixta. Eventualmente esta bacteria logra sobrevivir en los
conductos radiculares ya que tiene una capacidad de adaptarse y soportar
circunstancias ecológicas extremas debido a sus propiedades microbiológicas y su
habilidad de formar el biofilm” (Liebana, 2002)
Acosta (2005) delimita advirtiendo que los más comunes de Enterococcus son el
Faecalis y el Faecium y podría conceptualizarlos de la siguiente manera.
“Los enterococos, particularmente Enterococcusfaecalis y Enterococcusfaecium,
forman parte de la flora normal del tracto gastrointestinal tanto humano como animal
y del tracto genitourinario femenino humano. En la última década, estos organismos
han adquirido cada vez más importancia como patógenos nosocomiales, a pesar
de su baja virulencia”(Acosta, 2005, pág. 1).
Lo que está intentando afirmar Acosta con “patógenos nosocomiales” es que su
ambiente normal en áreas de hospitales es una de las causas de la transmisión de
enfermedades. Además este tipo de enterococos puede habitar en el área bucal
como lo menciona (Díaz, Salas, Fernández, & Martínez, 2007)
7
“Los enterococos pueden ser aislados de cavidad bucal y pueden actuar como
microorganismos patógenos en infecciones del tracto urinario y en casos de
endocarditis subaguda, además pueden originar infecciones intraabdominales,
pélvicas y en neonatales” (Díaz, Salas, Fernández, & Martínez, 2007)
Estudios realizados por Canalda(2006)han indicado que “una de las peculiaridades
de esta bacteria, es que tolera bien pH cercano a 12, se cree que esta capacidad
se debe a que puede sintetizar proteínas cuando se expone a condiciones adversas
de supervivencia, como pueden ser la irrigación con hipoclorito de sodio”(pág. 38)
Género Enterococcus
Taxonomía y clasificación del Género Enterococcus
El término enterococcus fue utilizado por primera vez en 1899 por Thiercelin, para
describir un nuevo diplococo gram positivo de origen intestinal, en el mismo año,
Mac Callun y Hasting publicaron un caso de endocarditis producida por
MicrococcusZimogenis (hoy sinónimo de Enterococcusfaecalis), posteriormente en
1906 la denominación de Streptococcusfaecalis sería utilizada por AndrewsHorder
para describir un caso de endocarditis producida por un coco gram positivo,
manteniéndose esta última hasta la década de los 80 que cambio a E. faecalis.
(Murray, 1990)
En 1937 Sherman clasificó los estreptococos en cuatro grupos: piogénicos,
viridans, lácticos y enterococos. El grupo enterococo está compuesto por
microorganismos que crecen a 10 y 45 ºC en NaCI al 6,5% sobreviven a 60 ºC
durante 30 minutos y son capaces de hidrolizar la esculina. Estas características
siguen hoy vigentes para la diferenciación de este grupo de cocos gram positivos.
En el esquema serológico de Lancefield, propuesto a comienzo de la década de los
30, el grupo D se correlacionó con los enterococos de la clasificación de Sherman
aunque no todos los estreptococos grupo D son enterococos. La separación en dos
géneros diferentes de los estreptococos grupo D no enterococos y enterecocos, no
tuvo lugar hasta comienzos de los 80 (Murray, 1990)
8
Kalima(2002), propuso en 1970 que S. feacalis y streptucoccusfaeciun fueran
transferidos a un nuevo grupo el género Enterococcus (Krogstad, R.C., &
Moeilering, 1986) ; esto no ocurre hasta 85, año en que aparece en la Lista de
nombres bacterianos aprobados del International Journal of
SystematicBacteriology. (Krogstad, R.C., & Moeilering, 1986)
Tras la publicación del trabajo deScheleifer& Kilpper-Batz(1984)en el que se
propone la nueva denominación de Enterococcusfaecalisy Enterococcusfaecium,
para S. faecalisy S. faecium, como consecuencia de los resultados obtenidos de
hibridaciones ADN-ADN y ADN-rARN entre cepas pertenecientes a estreptococos
grupo O enterococos, y no enterococos y Streptococcus. Posteriormente, también
se cambian las denominaciones de streptococcusavium,
Streptococcuscassellflavus, Streptococcusdurans, streptococcusgallinarum, y
Streptococcusmalodoratus. (Reguera, 1995)
En la novena edición del Bergey’s Manual of SystematicBacteriology, de la sección
12 (cocos gram positivos), se describen en el apartado Enterococos, incluidas en
el género Streptococcus, las cepas S. faecalis, S. faecium,avium,y S. gaflinarun. El
género Enterococcusestá constituido, hoy, por doce especies, las cuatro descritas
en el Bergey’s como Streptococcusenterococos, y las siguientes:
Enterococcusdurans, Enterococcuscasseliflavus,
Enterococcusmaloduratus,Enterococcushiree, Enterococcusmundtti,
Enterococcusrafflnosus, enterococcussoutarius, y Enterococcuspseudoavium
(Reguera, 1995)
Identificación y características microbiológicas del enterococcusfaecalis
“Enterococcusfaecalis es un coco Gram positivo, anaerobio facultativo, no presenta
movilidad, no esporulado, puede presentarse solo, en pares o en cadenas, el
tamaño de cada célula oscila entre 0,5 y 0,8 micrómetros; puede crecer a una
temperatura de 35°C; e incluso a temperaturas entre 10 y 45°C. Es una bacteria
tolerante al cloruro de sodio al 6.5% y a sales biliares, así también son especies
fermentativas que no producen gases. Ostenta pared celular constituida por
peptidoglucanos y ácido teicoico” (Liebana, 2002)
9
Reaccionan con el antisuero D de Lancefield, aunque algunos E. aviunson
reconocidas por el antisuero Q (158, 210). El determinante antigénico, grupo
específico, que responde al antisuero O de Lanceficíd es un ácido glicerol-teicoico
asociado con la membrana citoplásmica.(Reguera, 1995)(1
El contenido guanina-citosina (G+C) está comprendido entre el 37 y 45%. La
estructura del peptidoglicano es de tipo A (Lys-D-Asp), excepto E. faecalisque es
de tipo B (Lys-Ala 23) (210). Son inmóviles, excepto E. casseliflavus, E. gallenaruny
algunas cepas de E. faecalis (Reguera, 1995)
Factores de Patogenicidad
Para Arias (2009) la resistencia de esta bacteria no depende tanto de sus factores
de virulencia como de su capacidad para sobrevivir y persistir como patógeno en el
interior de los conductos radiculares, lo que consigue por diversos motivos a los
que menciona Arias pero en este caso se ha escogido los más fundamentales.
“Puede subsistir largas temporadas de escases de nutrientes y utilizar el suero
como fuente de alimento. A demás el suero procedente del hueso alveolar y del
ligamento periodontal le sirve de ayuda para unirse al colágeno tipo 1. Resiste a la
medicación intraconducto con hidróxido de calcio durante más de 10 días en el
interior de los túbulos” (Arias, 2009).
Con todo lo mencionado anteriormente se ha caracterizado las posibilidades de
sobrevivencia de la bacteria enterococos en situaciones adversas, esto crea la
necesidad de buscar un tratamiento adecuado en la lucha por desinfectar
ambientes contaminados por el mismo.
10
2.2. Hidróxido de calcio
“El hidróxido de calcio en un polvo blanco producto de la calcinación del
carbonocálcico” que en su nomenclatura equivaldría a la siguiente fórmula: CO3Ca
= CaO + CO2CaO + H2O = Ca (OH)2. (pág. 45).
“Introducido para su uso en Endodoncia por B. W. Herman en 1920, el hidróxido de
calcio es un polvo blanco alcalino, poco soluble en agua (1,7lg/ L). Sus propiedades,
que lo llevaron a ser ampliamente utilizados en endodoncia, se relacionan en gran
medida con su disociación en iones calcio o hidroxilo. Para usarlo como medicación
temporaria entre sesiones, el hidróxido de calcio se mezcla con un vehículo
preferentemente acuoso (agua estéril, solución fisiológica entre otros), para
deformar una suspensión con pH aproximado de 12,4”(Soares & Goldberg, 2002,
pág. 133)
Aunque se proponen otros vehículos para mezclarlos con el polvo la presencia de
agua es fundamental para que se produzca la disociación iónica antes dicha.
(Soares & Goldberg, 2002)
“El hidróxido de calcio Ca(OH)2, representa un auxiliar precioso de la terapéutica
endodóntica se utiliza en diversas situaciones clínicas por su poder antiséptico y su
propiedad de estimular o crear condiciones favorables para la reparación hística”
(Soares & Goldberg, 2002)
Sus propiedades que lo llevaron a ser ampliamente utilizado en Endodoncia se
relacionan en gran medida con su disociación en iones calcio Hidroxilo.
Es el medicamento intraconducto más utilizado, indicado en el control y tratamiento
de las reabsorciones radiculares, perforaciones, tratamiento de fracturas
transversales, apicogénesis, tanto en dientes con o sin vitalidad y en piezas que
presenten o no lesión periapical(De Lima, 2009)
En el tratamiento de dientes con pulpa mortificada, la indicación para el uso de
hidróxido de calcio como medicación temporaria entre sesiones se funda en su
11
acción antiséptica reconocida, resultante de su pH elevado. “Al colocarse en el
interior del conducto radicular en contacto directo con las paredes dentinarias se
produce en presencia de agua la ionización del hidroxilo de calcio y por
consiguiente, la alcalinización del medio” (Soares & Goldberg, 2002)
“Al llegar al interior de los túbulos dentinarios, los iones hidroxilo modifican el pH de
la dentina, lo que provoca la destrucción de la membrana celular de las bacterias y
de sus estructuras proteicas. Las alteraciones del pH de la masa dentinaria torna
inadecuado el medio para la supervivencia de la mayoría de los microorganismo de
la flora endodontica. (Soares & Goldberg, 2002, pág. 134)
De acuerdo con lo que menciona Briones (2009) las propiedades del hidróxido de
calcio son las siguientes:
Induce la remineralización de la dentina.
Posee un pH altamente alcalino.
Potente bactericida.
Es antinflamatorio.
Produce envejecimiento pulpar por estimulación de las fibras colágenas.
Biocompatibilidad excelente con tejidos periapicales.
No es tóxico
Se ha demostrado que “el hidróxido de calcio actúa sobre las endotoxinas
bacterianas, hidroliza la porción lipídica del liposacárido bacteriano (LPS), presente
en la pared celular de las bacterias anaeróbicas gram negativas, y neutraliza su
acción estimulante sobre el proceso de reabsorción del tejido óseo” (Soares &
Goldberg, 2002, pág. 134)
Mecanismo de acción del hidróxido de calcio.
“El hidróxido de calcio tiene un alto poder bactericida y es tal vez la medicación más
empleada en Endodoncia como complemento de la preparación biomecánica. Su
acción antiséptica se debe fundamentalmente a su alto pH, que hace incompatible
12
el desarrollo bacteriano en su contacto. La acción del hidróxido de calcio como
medicamento intraconducto puede ser explicada por la difusión de iones hidroxilos
a través de la dentina, lo cual influye en el crecimiento y multiplicación bacteriana”
(Fereira, 2005)
“Es un medicamento utilizado como medicación intrarradicular, pudiendo ser
entresesiones o en períodos largos de tiempo; está indicado en el control y
tratamiento dereabsorciones radiculares, perforaciones, tratamientos de fracturas
transversales,apicogénesis e inducción de cierre apical, tanto en dientes vitales o
sin vitalidad”(Lima, 2003)
“El efecto de su pH altera el transporte de nutrientes y componentes orgánicos a
través de la membrana citoplasmática, inhibiendo las actividades enzimáticas que
son esenciales para la vida bacteriana, tales como metabolismo, crecimiento y
división celular, y ejerciendo una acción tóxica para la bacteria. También activa la
fosfatasa alcalina, que es una enzima hidrolítica íntimamente relacionada con el
proceso de mineralización del tejido”(Fereira, 2005)
Por estas razones, se cree que el hidróxido de calcio presenta dos propiedades
enzimáticas esenciales que son:
Inhibición de las enzimas bacterianas por su efecto antibacterial.
Activación de las enzimas tisulares, tal como la fosfatasa alcalina, la cual
favorece la restauración del tejido a través de la mineralización
2.3. Matricaria chamomilla “Manzanilla”
“La utilización de sustancias naturales en el tratamiento de diferentes
enfermedades, constituyen en la actualidad un desafío en la medicina y se ofrece
como alternativa, especialmente para aquellas que no existe un remedio adecuado”
(Domingo & López-Brea, 2003)
13
En la actualidad se ha llegado a un proceso de difusión de las propiedades de los
productos naturales o que se derivan de estos. Dentro de este contexto se ha
incluido a la esencia de manzanilla con el fin de investigar las propiedades
medicinales de dicha planta.
“Las plantas medicinales han sido utilizadas durante siglos como un método
curativo siendo los países más pobres los que particularmente han optado por esta
alternativa debida a ciertas razones entre las que se destacan su bajo costo, poca
toxicidad y la simplicidad para su elaboración”(Sanchez, Gonzàlez, & Lura, 2006,
pág. 89)
La manzanilla para Gispert, Cantillo, Rivero y Oramas(2008) “es considerada una
planta medicinal y su eficacia curativa se conoce desde la antigüedad” (pág. 35) y
su acción en el tratamiento de algunas bacterias mediante la fusión con otros
elementos.
Composición Química
“La parte principal de la planta de manzanilla son sus flores, ya que aquí se
encuentran los compuestos químicos que forman parte del aceite esencial entre los
que resalen el camazuleno, bisabolol y la apigenina, además de otros compuestos
como las cumarinas, flavonoides, antemidina, ácido antémico, matricina, taninos,
ácidos grasos, carotenos, ácido ascórbico y ácido salicílico” (Morón, Furones, &
Pineda, 1996)
Farmacología
“La manzanilla actúa principalmente como: Antinflamatorio, coleréticos, colagogos,
sedantes y relajantes además presenta propiedades antisépticas y anti infecciosas
que están relacionadas con el contenido de aceites esenciales como el camazuleno
y bisabolol, la presencia de flavonoides y matricina” (Pardo & Morales, 2006)
Además mencionan que tinturas de manzanilla presentan efectos sobre algunos
microorganismos que forman parte del biofilm y su efecto es similar al de la
14
clorhexidina. También indica que sus propiedades antiinflamatorias se deben al
mecanismo que impide la acción directa de la encima COX-2. (Gaete & Oliva, 1998)
Por otra parte Romero et al. (2009) menciona que el principal mecanismo de acción
de la manzanilla durante los procesos infecciosos es la ruptura de la membrana
celular la misma que puede ocurrir por tres razones: Aumento de la permeabilidad,
afectación de la estabilidad estructural y por consiguiente desestabilidad de la
bicapalipídica produciendo la lisis bacteriana. (Romero, Hernández, & Gil, 2009,
pág. 10)
Uso reportado
“Las hojas y las flores son ampliamente usadas para tratar una gran variedad de
males, tales como las infecciones gastrointestinales (diarrea, dispepsia, flatulencia,
gastralgia, gastritis, inflamación intestinal, parasitismo, indigestión, inapetencia),
inflamación urinaria, amigdalitis, cefalea, convulsiones, difteria, dismenorrea, gota,
histeria, insomnio, lumbago, ictericia e hidropesía, nerviosismo y reumatismo”
(Cruz, 2009, pág. 10)
La aplicación terapéutica endodóntica del aceite esencial de manzanilla podría
estar dirigida para una de las fases del procedimiento clínico, como irrigante durante
la sesión de trabajo endodóntico o como medicación intraconducto entre sesiones.
(Linares, 2012)
La manzanilla de forma tópica es utilizada en forma de compresas, cataplasmas y
emplastos para aliviar inflamaciones así como afecciones dermatomucosas, por vía
oral la manzanilla tiene la propiedad antinflamatoria, calmante, depurativa,
expectorante y estimulante.
15
Efectos adversos
“El manejo de las flores puede producir dermatitis de contacto y reacciones
alérgicas el uso excesivo de la infusión puede ser abortivo por ser un estimulante
uterino, de donde está contraindicado en embarazadas” (Cruz, 2009, pág. 8)
Descripción Botánica
“Planta herbácea anual de fuerte aroma, frondosa y rastrera que no sobrepasa los
50 cm. De altura. Su tallo ramificado, cilíndrico, estriado y velloso, es de color verde
blanquecino. Hojas alternas y segmentadas. Las flores, amarillas en el centro y
rodeadas de lígulas blancas, están dispuestas en cabezuelas solitarias al final del
péndulo”(Cárdenas, 2009, pág. 4)
Pueden realizarse descripciones detalladas, pero se ha considerado oportuno para
la investigación lo que se ha mencionado con el objetivo de no mencionar
elementos innecesarios.
Aceite Esencial de Manzanilla
Por otro lado el aceite esencial de manzanilla en un estudio realizado por Ríos
(2008) en el que demuestra las propiedades de dicho componente en el tratamiento
de algunas infecciones humanas afirma que:
“El aceite esencial de manzanilla es un ingrediente popular en tópicos de salud y
de belleza por sus efectos calmante y antiinflamatorio sobre la piel. Debido al amplio
uso del aceite esencial de manzanilla en el presente estudio se evaluó el potencial
citotóxico y contra Leishmania de este aceite…La actividad citotóxica se evaluó en
células promonocíticas humanas”(Ríos, 2008, págs. 203-204).
2.4. Paramonoclorofenol alcanforado
“El Paramonoclorofenol alcanforado es un antiséptico intraconducto muy utilizado.
Fue introducido en odontología por Walkhoff en 1891. Es un derivado del fenol,
16
sólido a temperatura ambiente. Se obtiene al triturar cristales de paraclorofenol con
alcanfor. La proporción aproximada es de dos partes de paraclorofenol por tres de
alcanfor. El resultado es un líquido oleoso, color ámbar, con un característico olor
penetrante”(Fereira, 2005, pág. 48)
El Paramonoclorofenol presenta doble acción antiséptica basada en la función
fenólica y en la presencia del ion cloro, liberado con lentitud durante el uso.El
alcanfor con el que se asocia además de servir como vehículo, disminuye la acción
irritante del derivado fenólico, de lo cual resulta un fármaco con bajo poder de
agresión a los tejidos vivos. Como características desfavorables se incluye su
acción básicamente por contacto y la neutralización de su efecto en presencia de
materia orgánica. (Soares & Goldberg, 2002)
El paramonoclorofenol forma parte de numerosas combinaciones de antiséptico
como el Cresophene, Clorotimonol, Cresanol y Neogrove. También es componente
de pastas antisépticas como las de Walkhoff y Maisto, así como de pastas alcalinas
como las de Frank, Holland o Leonardo, que lo combinan con el hidróxido de calcio;
estas pastas son de suma utilidad como medicación tópica de conductos con
lesiones periapicales crónicas por su efectividad frente a una flora mixta y
fundamentalmente anaeróbica” (Briones, 2010, pág. 48)
También se ha estudiado la combinación del paramonoclorofenol con el hidróxido
de calcio, demostrándose que paramonoclorofenol incrementa los efectos
antibacteriales del hidróxido. Esta combinación destruye bacterias en los túbulos
en un período de 1 hora excepto para el Enterococcusfaecalis, para el cual se
requiere un día. La combinación del paramonoclorofenol alcanforado e hidróxido
produce una sal pesada, paramonoclorofenolato de calcio, la cual en un ambiente
acuoso libera lentamente el paramonoclorofenol y el hidróxido de calcio”(Fereira,
2005)
Propiedades:
Bactericida Penetrante
Sinérgico o potenciador de la acción de otros fármacos
17
Poco irritante (biocompatible)
Alivia el dolor Bajo costo
Fecha de caducidad amplia (Briones, 2009)
Mecanismo de acción del Paramonoclorofenol alcanforado:
El paramonoclorofenol alcanforado es un halofenol cuya acción antiséptica se debe
fundamentalmente a la lenta liberación de cloro naciente. Es un efectivo bactericida
cuando se pone en contacto directo con las bacterias, pero no produce inhibición
del desarrollo bacteriano cuando los vapores son los únicos responsables de su
actividad.
El mecanismo de acción antiséptico se debe a la ruptura de la pared celular
bacteriana y precipitaciones de las proteínas celulares; consecuentemente,
también ocurre la inactivación del sistema de enzimas esenciales”(Farinango,
2012)
“El paramonoclorofenol alcanforado disminuye la capacidad de adherencia de los
macrófagos inflamatorios de una manera dosis dependiente; tomando en cuenta
que la adhesión es el primer paso en el proceso de fagocitosis de los macrófagos
y en la presentación del antígeno, el paraclorofenol y paramonoclorofenol
alcanforado, podrían inhibir la función del macrófago y modular reacciones
inflamatorias e inmunes en los tejidos periapicales que conllevan a los procesos
reparativos” (Briones, 2009)
Efectos del Paramonoclorofenol Alcanforado
Los principales efectos de este antiséptico son los siguientes
Solórzano (2011) estudió los efectos del paramonoclorofenol alcanforado sobre las
células del ligamento periodontal humano y encontraron que este medicamento
inhibe la viabilidad y la proliferación de las células del ligamento periodontal de una
manera dosis dependiente, razón por la cual se cree que podría causar daños en
18
el periodonto e impedir la cicatrización y regeneración periodontal. (Solórzano,
2011, pág. 56).
El paramonoclorofenol alcanforado tiene una importante acción sobre los
microorganismos aeróbios más resistente al tratamiento; es comparativamente
menos activo sobre anaeróbios”(Fereira, 2005)
Pueden mencionarse otros efectos de este componente, pero es importante
recalcar el uso en el tratamiento de la salud dental más concretamente en
Endodoncia.
“Debido a la baja dosis y frecuencia de exposición, su uso clínico es generalmente
seguro para los humanos. Sin embargo, en altas concentraciones son altamente
citotóxicos”(Briones, 2009, pág. 48)
19
CAPITULO III
3. METODOLOGÍA
3.1. Tipo de investigación
El diseño de la investigación corresponde a un diseño experimental, ya que, el
investigador genera una situación para tratar de explicar interrelación entre dos
variables (Hernandez Sampieri, 2010). En este caso, el efecto inhibidor del
hidróxido de calcio puro con aceite de manzanilla, el hidróxido de calcio con
paramonoclorofenol y el hidróxido de calcio puro sobre la bacteria
enterococcusfaecalis.
El método de investigación según análisis y alcance de los resultados será de tipo
experimental in vitro debido a que mediante la manipulación de una o varias
variables y en condiciones controladas se utilizarán medios de cultivo que servirán
para el desarrollo de las bacterias, manejadas directamente en el laboratorio.
3.2. Muestra de estudio
3.2.1. Muestra
Población: Cepa de Enterococcusfaecalis ATCC 29212 adquirida a través de
(MEDIBAC S.A.).
Para determinar la muestra, se aplica el tipo de muestreo no probabilístico, que
se define como “un procedimiento de selección donde la elección de unidad de
análisis no depende de la probabilidad de un cálculo, sino de la decisión del
investigador” (Gómez, 2012).
En la presente investigación las cepas de estudio son provistas por el Laboratorio
MEDIBAC S.A. a criterio del investigador.
20
Muestra.- bacterias propias de los tratamientos de Endodoncia.
3.3. Criterios de inclusión y exclusión
3.3.1. Criterios de inclusión
Cultivos de bacterias Enterococcusfaecalis provenientes de la cepa ATCC29212
que cumplan todos los requisitos de un medio ideal.
3.3.2. Criterios de exclusión
Cultivos que no cumplan los requerimientos normales como disponibilidad
denutrientes, consistencia adecuada del medio, condiciones adecuadas
dehumedad, luz ambiental, pH adecuado, temperatura, esterilidad.
3.4. OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES
Tabla 1. Operacionalización de variables
Variable Dimensiones Indicadores Escala
Independiente: Hidróxido de calcio
puro con aceite esencial de matricaria
chamomilla
Una concentración al 100%
Cuantitativa
100%
Independiente: Hidróxido de calcio
con paramonoclorofenol
mas alcanfor
Proporción estándar Cuantitativa
Razón de mezcla
entre los componentes
Independiente: Hidróxido de calcio
puro Una concentración Cuantitativa
Razón de mezcla
entre los componentes
21
Variable Dimensiones Indicadores Escala
Dependiente: Efecto inhibidor del hidróxido de calcio
puro con aceite esencial de matricaria
chamomilla “manzanilla” al 100%
Actividad antibacteriana al 100%
Cuantitativa
Milímetros
3.5. Instrumentos
Para el desarrollo de la presente investigación se utilizaron los siguientes
materiales, reactivos y equipos:
Estudio invitro:
Cepa de Enterococcusfaecalis ATCC 29212
Reactivos:
Suero salino
Manzanilla
Hidróxido de Calcio
Paramonoclorofenol alcanforado
Gentamicina
Agua destilada
Solución salina
Agar Mueller-Hinton
Materiales:
Cajas Petri de vidrio
Papel filtro
Tubos de vidrio
22
Espátula metálica
Puntas desechables para micropipeta
Frascos de vidrio
Palillos de madera
Pinzas metálicas
Hisopo de algodón
Asa metálica
Equipos
Balanza analítica
Cabina de flujo laminar
Micropipeta de 200µL
Autoclave
Incubadora
Mechero Bunsen
Regla milimetrada para medir halos
Calibrador Vernier
Bomba peristáltica Langer
3.6. PROCEDIMIENTO Y TECNICA
3.6.1. Obtención del aceite esencial de manzanilla “Matricaria Chamomilla”
al 100%
La obtención del aceite esencial de manzanilla se efectuó mediante el método por
arrastre de vapor, decantación y purificación en rota vapor con la ayuda del
Bioquímico Darwin Roldán de la Facultad de Bioquímica de la Universidad Central
del Ecuador. Con la aplicación de esta técnica generalmente se garantiza la
obtención del aceite esencial de manzanilla puro libre de impurezas.
Se colocó aproximadamente 150 gramos de flores secas (muestra vegetal) en un
balón de fondo plano durante un tiempo aproximado de 4 horas, esta muestra entró
23
en contacto con el vapor de agua como resultado del sobrecalentamiento de un litro
de agua en un recipiente aparte, los aceites esenciales son arrastrados por la
corriente de vapor de agua para ser condensados, recolectados y separados de la
parte acuosa, obteniendo una cantidad aproximada de 3 ml de aceite esencial al
100% por cada destilación.
3.6.2. Preparación del hidróxido de calcio con las soluciones “aceite esencial
de manzanilla, paramonoclorofenol y solución salina”
Mediante una balanza analítica se pesó 200mg de hidróxido de calcio 100% puro
por triplicado, utilizando como recipiente una caja Petri estéril. Se garantizó la
esterilidad del proceso durante la preparación de todas las concentraciones:
Figura 1. Pesaje en gramos Ca(OH)2 y colocación en cajas Petri por triplicado Fuente: Lab. Microbiología SAFEMLAB
La primera concentración de hidróxido de calcio fuemezclada con 300uL de suero
fisiológico estéril, la segunda con 300 uL de paramonoclorofenol y la tercera con
1mL de aceite esencial de manzanilla. El proceso se llevó a cabo en una cabina de
bioseguridad de clase II (Airstearm – ESCO).
24
Figura 2. Hidróxido de calcio, Paramonoclorofenol alcanforado, aceite esencial de manzanilla Fuente: Laboratorio de Microbiología SAFEMLAB
Se procedió a mezclar con el uso de un palillo estéril el hidróxido de calcio con cada
solvente hasta la formación de una crema pastosa. La mezcla de hidróxido de calcio
con el aceite esencial de manzanilla se dificultó por la volatilidad del compuestos
por ello se utilizó solo 1ml de aceite.
Figura 3. Mezclas preparadas
Una vez preparadas las mezclas, los discos de papel filtro de 6mm de diámetro
fueron impregnados por la sustanciacorrespondiente por separado. Estos discos
fueron utilizados en el ensayo de difusión descrito posteriormente.
25
Figura 4. Discos de papel filtro de 6mm e impregnación de la sustancia en discos de papel filtro
Figura 5. Discos impregnados con Ca(OH)2 + paramonoclorofenol
Figura 6. Discos impregnados con Ca(OH)2 + suero salino
26
Figura 7. Discos impregnados con Ca(OH)2 + aceite esencial de manzanilla
3.6.2.1. Microorganismo y reactivación de las cepas bacterianas
El estudio microbiológico se llevó a cabo en las instalaciones del laboratorio de
microbiología SAFEMLAB bajo la tutoría de la doctora microbióloga Fernanda
Loaiza y la técnica a utilizar se llama difusión de disco.
La cepa de Enterococcusfaecalis ATCC 29212 fue adquirida a través del proveedor
nacional (MEDIBAC S.A.). Su presentación en liofilizado facilitó su transporte y
almacenamiento hasta la revitalización. El set comercial cuenta con una ampolla de
hidratación constituida por un caldo nutritivo que una vez que se rompe hidrata al
microorganismo liofilizado en el fondo del recipiente. Con el aplicador del mismo
set se inocula el microorganismo hidratado sobre un medio de cultivo (agar
nutritivo). Luego de incubación a 37 grados centígrados por 18 a 24 horas se
observaron colonias pequeñas y medianas redondas blanquecinas
correspondientes al microorganismo mencionado.
27
Figura 8. Cepas de enterococcusfaecalis revitalizadas en agar
3.6.3. Preparación de agar muellerhinton en cajas Petri
Las pruebas de difusión de disco se realizaron en agar MuellerHinton de acuerdo a
la normativa internacional (CLSI o EUCAST). Se prepararon 20 cajas Petri de
90mm de diámetro con 25ml de medio de cultivo cada una, esto se hizo pesando
19 gramos de medio de cultivo deshidratado en 500ml de agua destilada. La mezcla
se homogenizó colocando la botella pyrex de vidrio sobre una plancha caliente con
agitación magnética durante 10 minutos. El medio de cultivo se esteriliza en
autoclave garantizando un tiempo de exposición de 15 minutos a 121 grados
centígrados.
Al salir del autoclave, el medio de cultivo se mezcla y se deja enfriar hasta 40 grados
centígrados para repartir 25mL de medio líquido en cada caja Petri utilizando una
bomba peristáltica (BT 100; Langer Instruments). Se deja enfriar completamente
hasta que el medio se vuelva sólido por la concentración de agar presente.
Las 20 cajas fueron almacenadas en temperatura de refrigeración y rotuladas del
uno al veinte hasta iniciar el procedimiento experimental
28
Figura 9.Rotulado de las 20 cajas Petri
3.6.4. Siembra bacteriana en las cajas Petri
Con el microorganismo de prueba que fue cultivado por 18-24horas se hace una
elución en solución salina 0.85% estéril hasta alcanzar una turbidezdel 0,5 de la
escala de McFarland (1-2 x 108 UFC/ml). Esta elución fue utilizada para la
inoculación homogénea sobre la superficie completa de las placas de MuellerHinton
utilizando hisopos estériles. Y frotando sobre el agar en todas las direcciones
Figura 10. Elución en solución salina 0.85%
29
Figura 11.Turbidezdel 0,5 de la escala de McFarland
Figura 12.Inoculación de las cepas deEnterococcus Faecalis(1-2 x 108 UFC/ml) en las placas Petri
3.6.5. 3.6.6 Grupo de control
Se utilizó como grupo de control la gentamicina y agua destilada estéril.
3.6.6. Prueba de difusión de disco
Utilizamos el ensayo de Kirby Bauer (difusión de disco) para evaluar el probable
efecto antimicrobiano de las sustancias en estudio, colocando un disco de papel
filtro impregnado con la mezcla de hidróxido de calcio correspondiente sobre la
superficie del agar con sus colonias bacterianas de enterococcusfaecalis. La pinza
30
con la que se coloca cada disco debe ser independiente para evitar el error por
contaminación cruzada.
Figura 13.Discos de gentamicinay colocación de discos placas Petri
Figura 14. Colocación de discos de cada sustancia utilizada en las cajas Petri
31
CAPITULO IV
4. RESULTADOS
Una vez cumplido el tiempo de incubación de 18 a 24 horas se midieron los halos
de inhibición del crecimiento microbiano alrededor de cada disco de prueba, como
se muestra en la tabla 2.Al finalizar el tiempo de incubación se observó una leve
precipitación del hidróxido de calcio hacia el fondo del agar pero los discos de papel
filtro con las sustancias experimentales permanecieron fijas dando lugar a la
formación de los halos de inhibición respectivos.
Posteriormente, se procedió a realizar la medición individual de los halos de
inhibición formados alrededor de cada disco que contenían las sustancias
experimentales mediante un calibrador vernier o regla pie de rey y una regla
milimetrada registrando las medidas en milímetros; de esta manera, se procedió a
realizar las lecturas y el llenado en la tabla de recolección de datos.
Con el fin de obtener un mejor resultado y para verificar la efectividad de los
elementos en estudio, se incorpora la acción de la gentamicina, como grupo de
control en la investigación.
4.1. Análisis estadístico sin grupo de control
Los resultados de medición son los siguientes:
Tabla 2. Resultados de la medición de halos de inhibición
Número muestra Hidróxido
calcio puro
Hidróxido calcio +
Manzanilla
Hidróxido calcio + paramonoclorofenol
1 8 8 6
2 6 6 9
3 6 7 6
4 7 8 8
5 7 8 6
6 8 8 8
7 8 8 7
8 6 8 6
32
Número muestra Hidróxido
calcio puro
Hidróxido calcio +
Manzanilla
Hidróxido calcio + paramonoclorofenol
9 6 7 9
10 6 8 7
11 6 7 7
12 7 6 7
13 8 5 8
14 6 6 6
15 6 5 8
16 7 7 7
17 8 6 6
18 8 8 7
19 6 6 9
20 8 5 8
Fuente:Laboratorio de Microbiología SAFEMLAB Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Los datos estadisticos calculados en base a las mediciones de la tabla anterior son
los siguientes:
Tabla 3. Datos estadísticos hidróxido de calcio puro
Estadistico Valor calculado Hidróxido calcio
puro
Media 6,90
Minimo 6,00
Máximo 8,00
Mediana 7,00
Desviación estandar 0,91
Margen de error al 5% 0,93
Intervalo
confianza para
media al 95%
Limite superior 7,299
Limite inferior 6,501
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
33
Tabla 4. Datos estadísticos hidróxido de calcio + manzanilla
Estadistico Valor calculado Hidróxido calcio +
manzanilla
Media 6,85
Minimo 5,00
Máximo 8,00
Mediana 7,00
Desviación estandar 1,14
Margen de error al 5% 0,98
Intervalo
confianza para
media al 95%
Limite superior 7,350
Limite inferior 6,350
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Tabla 5. Datos estadísticos hidróxido de calcio + paramonoclorofenol
Estadistico Valor calculado Hidróxido calcio +
paramonoclorofenol
Media 7,25
Minimo 6,00
Máximo 9,00
Mediana 7,00
Desviación estandar 1,07
Margen de error al 5% 1,09
Intervalo
confianza para
media al 95%
Limite superior 7,719
Limite inferior 6,781
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
34
La siguiente figura resume los resultados obtenidos en relación a los valores
máximo, mínimo y media:
Figura 15. Comparación de resultados
Elaboración: Juan Pablo Hidalgo
Como se muestra en la figura anterior, la medición del mayor halo de inhibición se
presenta en la muestra que corresponde al compuesto de hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol, el cual tiene un nivel máximo de 9 milímetros y el valor de la
media es 7,25 milímetros.
Esto demuestra que entre los tres componentes, el que tuvo mayor efectividad es
el compuesto de hidróxido de calcio más paramonoclorofenol. En el caso del
hidróxido de calcio puro y el hidróxido de calcio más manzanilla, tuvieron resultados
muy similares en la media y el valor máximo.
En cuanto a la estabilidad de los resultados de la medición del halo de inhibición, el
hidróxido de calcio es la más estable, ya que tiene un valor de desviación estándar
de 0,91; por el contrario, la muestra de hidróxido de calcio más manzanilla es la
que tiene un valor de desviación estándar de 1,14, lo que indica que tiene mayor
inestabilidad. Como lo muestra la siguiente figura:
6,9
6
8
6,8
5
5
8
7,2
5
6
9
M E D I A M Í N I M O M Á X I M O
Hidroxido calcio puro Hidroxido calcio + Manzanilla Hidroxido calcio + paramonoclorofenol
35
Figura 16. Estabilidad de las muestras
Elaboración: Juan Pablo Hidalgo
Los resultados obtenidos de la medida de los halos de inhibición son muy similares
entre los tres componentes, por lo que es necesario, aplicar el análisis de la
varianza y la Prueba Tukey.
4.1.1. Análisis de varianza sin grupo de control
Con el objeto de determinar si los resultados obtenidos son estadísticamente
similares, se aplica el análisis de varianza de las muestras medidas en los halos de
inhibición.
Aplicando el análisis de datos para varianzas de un solo factor del programa de
Excel, detallan los siguientes resultados:
0,9
1
1,1
4
1,0
7
H I D R O X I D O C A L C I O P U R O H I D R O X I D O C A L C I O P U R O + M A N Z A N I L L A
H I D R O X I D O C A L C I O P U R O + P A R A M O N O C L O R O F E N O L
36
Tabla 6. Análisis de varianza sin grupo de control
Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza
Hidróxido de calcio 20 138 6,9 0,83157895
Hidróxido de calcio + manzanilla
20 137 6,85 1,12611684
Hidróxido de calcio + paramonoclorofenol
20 145 7,25 1,18684211
ANÁLISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de los cuadrados
Valor F
Valor P
Valor crítico para F
Entre grupos 0,792253333 2 0,396126667 0,3779188 0,68699032 3,158842719
Dentro de los grupos
59,74622 57 1,048179298
Total 60,53847333 59
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Las hipótesis planteadas para el análisis de varianza es el siguiente:
Hipótesis nula: Los promedios de los diámetros de los halos de inhibición de las
bacterias al aplicar los componentes del estudio son estadísticamente similares.
Hipótesis alterna: Los promedios de los diámetros de los halos de inhibición de
las bacterias al aplicar los componentes del estudio no son estadísticamente
similares.
Con el 95% de confiabilidad se obtienen los siguientes resultados:
Valor de F: 0,3779188
Valor de P: 0,68699032
Valor crítico de F: 3,158842719
Nivel de significancia de 0,05
El valor de P es mayor al nivel de significancia, por lo tanto se acepta la hipótesis
nula, es decir, los promedios de los diámetros de los halos de inhibición de las
bacterias al aplicar los componentes del estudio son estadísticamente similares.
37
4.1.2. Prueba de Tukey sin grupo de control
La prueba de Tukey se emplea para conocer la diferencia estadísticamente
significativa (HSD) entre muestras, para establecer el cálculo se emplea el siguiente
procedimiento:
1. Determinar los grados de libertad, es igual al número de la muestra menos
uno; en este caso, 60 (tres elementos de veinte muestras cada uno) menos
uno, es igual a 59.
2. Obtener el valor de alfa de la prueba de Tukey, según la tabla de valores
críticos, para 59 grados de libertad y tres grupos, es igual a 3,4.
3. Calcular el cuadrado del error medio, es igual a la suma de cuadrados dentro
de los grupos, con valor de 59,746, según la tabla xx; dividido para los grados
de libertad, según la tabla xx, con valor de 57. El cuadrado del error medio
es igual a 1,048.
4. Calcular HSD, que es igual, al valor de alfa de la prueba Tukey multiplicado
por la raíz cuadrada de la división entre cuadrado error medio y el tamaño
de la muestra; esto es, HSD = 0,778.
5. Construir la siguiente tabla con la diferencia de los promedios de la muestra:
Hidróxido calcio puro = H. Media = 6,90
Hidróxido de calcio + manzanilla = HM. Media = 6,85
Hidróxido de calcio + paramonoclorofenol = HP. Media = 7,25
Tabla 7. Diferencia promedios sin grupo control
H HM HP
H X -0,05 0,35
HM -0,05 X 0,4
HP 0,35 0,4 X
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
38
La diferencia entre los promedios, establecidos en la tabla anterior, es menor al
valor de HSD de 0,778, por lo tanto, no existe diferencia entre los promedios de las
muestras. Con lo que, se confirma, que el efecto inhibidor entre el hidróxido de
calcio, hidróxido de calcio más manzanilla e hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol es similar en las bacterias de enterococcusfecaelis.
4.2. Análisis estadístico con grupo de control
Para establecer el grupo de control, se ha utilizado la gentamicina, que es un
antibiótico aminoglucosido, que se emplea para tratar infecciones bacterianas. Los
resultados en la medición de los halos de inhibición es el siguiente:
Tabla 8. Resultados de la medición de halos de inhibición aplicación gentamicina
Numero muestra Gentamicina
1 20
2 19
3 18
4 18
5 19
6 18
7 20
8 21
9 18
10 20
11 20
12 21
13 20
14 19
15 20
16 21
17 19
18 20
19 21
20 19
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Comparando los resultados anteriores con los componentes en estudio se
establece lo siguiente:
39
Tabla 9. Comparación medidas halos inhibición
Numero muestra Gentamicina Hidroxido
calcio puro
Hidroxido calcio +
Manzanilla
Hidroxido calcio + paramonoclorofenol
1 20 8 8 6
2 19 6 6 9
3 18 6 7 6
4 18 7 8 8
5 19 7 8 6
6 18 8 8 8
7 20 8 8 7
8 21 6 8 6
9 18 6 7 9
10 20 6 8 7
11 20 6 7 7
12 21 7 6 7
13 20 8 5 8
14 19 6 6 6
15 20 6 5 8
16 21 7 7 7
17 19 8 6 6
18 20 8 8 7
19 21 6 6 9
20 19 8 5 6
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Es notoria la diferencia entre las medidas obtenidas en los halos de inhibición con
gentamicina y los componentes en estudio, esto indica, que la gentamicina tiene
mayor efectividad en el tratamiento de infecciones con la bacteria de
enterococcusfecaelis, esto se va a comprobar con los siguientes análisis
estadísticos.
Tabla 10. Datos estadísticos hidróxido de calcio puro
Estadistico Valor calculado Hidróxido calcio
puro
Media 19,55
Minimo 18,00
Máximo 21,00
Mediana 20,00
Desviación estandar 1,05
Margen de error al 5% 0,93
40
Intervalo
confianza para
media al 95%
Limite superior 20,010
Limite inferior 19,090
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
En cuanto a la estabilidad de la muestra con gentamicina, esta es mucho más
estable que hidróxido de calcio y manzanilla e hidróxido de calcio y
paramonoclorofenol. Como lo muestra la siguiente figura:
Figura 17. Estabilidad de las muestras
Elaboración: Juan Pablo Hidalgo
4.2.1. Análisis de varianza con grupo de control
Con el objeto de determinar si los resultados obtenidos con el grupo de control son
estadísticamente similares, se aplica el análisis de varianza de las muestras
medidas en los halos de inhibición.
0,9
1
1,1
4
1,0
7
1,0
5
H I D R O X I D O C A L C I O P U R O
H I D R O X I D O C A L C I O P U R O + M A N Z A N I L L A
H I D R O X I D O C A L C I O P U R O +
P A R A M O N O C L O R O F E N O L
G E N T A M I C I N A
41
Tabla 11. Análisis de varianza sin grupo de control
Grupos Cuenta Suma Promedio Varianza
Hidróxido de calcio 20 138 6,90 0,033294737
Hidróxido de calcio + manzanilla
20 137 6,85 0,038394474
Hidróxido de calcio + paramonoclorofenol
20 145 7,25 0,03172
Gentamicina 20 391 19,55 0,8134050
ANÁLISIS DE VARIANZA
Origen de las variaciones
Suma de cuadrados
Grados de libertad
Promedio de los cuadrados
Valor F
Valor P
Valor crítico para F
Entre grupos 2721,65601 3 907,21867 3958,135 2,374E-83 2,72494932
Dentro de los grupos
17,41947 76 0,2292
Total 2739,07548 79
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
Las hipótesis planteadas para el análisis de varianza es el siguiente:
Hipótesis nula: Los promedios de los diámetros de los halos de inhibición de las
bacterias al aplicar los componentes del estudio y el grupo de control son
estadísticamente similares.
Hipótesis alterna: Los promedios de los diámetros de los halos de inhibición de
las bacterias al aplicar los componentes del estudio y el grupo de control no son
estadísticamente similares.
Con el 95% de confiabilidad se obtienen los siguientes resultados:
Valor de F: 3958,135
Valor de P: 0,00
Valor crítico de F: 2,725
Nivel de significancia de 0,05
42
El valor de P es menor al nivel de significancia, por lo tanto se rechaza la hipótesis
nula y se acepta la hipótesis alterna, es decir, los promedios de los diámetros de
los halos de inhibición de las bacterias al aplicar los componentes del estudio no
son estadísticamente similares.
4.2.2. Prueba de Tukey análisis de varianza sin grupo de control
Para establecer el cálculo se emplea el siguiente procedimiento:
1. Determinar los grados de libertad, es igual al número de la muestra menos
uno; en este caso, 79 (cuatro elementos de veinte muestras cada uno)
menos uno, es igual a 79.
2. Obtener el valor de alfa de la prueba de Tukey, según la tabla de valores
críticos, para 79 grados de libertad y cuatro grupos, es igual a 3,74.
3. Calcular el cuadrado del error medio, que es igual a la suma de cuadrados
dentro de los grupos, con valor de 17,41947, según la tabla xx; dividido para
los grados de libertad, según la tabla xx, con valor de 76. El cuadrado del
error medio es igual a 0,2292.
4. Calcular HSD, que es igual, al valor de alfa de la prueba Tukey multiplicado
por la raíz cuadrada de la división entre cuadrado error medio y el tamaño
de la muestra; esto es, HSD = 0,4004.
5. Construir la siguiente tabla con la diferencia de los promedios de la muestra:
Hidróxido calcio puro = H. Media = 6,90
Hidróxido de calcio + manzanilla = HM. Media = 6,85
Hidróxido de calcio + paramonoclorofenol = HP. Media = 7,25
Gentamicina = G. Media = 19,55
Tabla 12. Diferencia promedios con grupo control
H HM HP G
43
H X -0,05 0,35 12,65
HM -0,05 X 0,4 12,7
HP 0,35 0,4 X 12,3
G 12,65 12,7 12,3 X
Elaborado por: Juan Pablo Hidalgo
La diferencia entre los promedios, establecidos en la tabla anterior, es mayor al
valor de HSD de 0,4004, por lo tanto, si existe diferencia entre los promedios de las
muestras. Con lo que, se confirma, que el efecto inhibidor entre el hidróxido de
calcio, hidróxido de calcio más manzanilla e hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol es diferente al efecto inhibidor de la gentamicina en las
bacterias de enterococcusfecaelis.
44
CAPITULO V
5. DISCUSION
El presente trabajo de investigación buscó determinar si el hidróxido de calcio puro
con manzanilla al 100% en comparación al hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol alcanforado y el hidróxido de calcio puro ejercen un efecto
inhibidor sobre las cepas de enterococcusfaecalis, al cabo de un tiempo de
exposición de 24 horas, se pudo evidenciar que el grupo de control en este caso la
gentamicina tuvo la mayor actividad antimicrobiana, cuyosresultados fueron
tomados con la medición de los halos de inhibición presentes en loscultivos
bacterianos formados a las 24 horas de incubación los cuales
estadísticamentemostraron medias de 19,55mm para el grupo de control
(gentamicina), hidróxido de calcio puro 6,90mm; hidróxido de calcio más aceite
esencial de manzanilla al 100% 6,85mm y para el hidróxido de calcio más
paramonoclorofenol de 7,25mm.
Estos resultados permiten observar que los grupos de estudio presentaron un
comportamiento similar en cuanto al efecto inhibitorio de las diferentes
concentraciones preparadas sobre las cepas de enterococcusfaecalis, sin embargo
el compuesto de hidróxido de calcio más paramonoclorofenol alcanforado presenta
una mayor medición del halo inhibitorio si se compara con los compuestos de
hidróxido de calcio puro e hidróxido de calcio más aceite esencial de manzanilla.
Estudios realizados por otros investigadores similares al realizado en este estudio
dan cuenta del efecto antibacteriano de la manzanilla (matricaria chamomilla) frente
a los microorganismos patógenos, así Carpio (2008), en su estudio demostró que
el aceite de Manzanilla (Matricaria Chamomilla) tiene un alto efecto antimicrobiano
contra bacterias de la cavidad oral. De igual manera otra investigación realizada
por Lima (2003)determinó que existe actividad antibacteriana en cepas Gram
negativas del aceite esencial de Matricaria chamomilla al igual que Romero,
Hernández, & Marielsa(2008) demostraron el efecto antiséptico y antiinfeccioso de
la Matricaria recutita viene dado por la presencia de derivados terpénicos como:
45
matricina, camazuleno, a-bisabolol y los óxidos a y b del bisabololchamomilla sobre
el Streptococcusmutans.
Cosco (2010) en su trabajo de tesis determinó la existencia de un efecto inhibidor
del desarrollo bacteriano con el aceite de manzanilla sobre el streptococcusmutans,
además el estudio dio como resultado diferencias significativas con respecto al
tamaño del halo de inhibición en las distintas concentraciones utilizadas.
Estos estudios han demostrado que el aceite esencial de manzanilla muestra su
efecto antimicrobiano sobre las cepas de streptococcus de manera independiente
al porcentaje de concentración así como al tiempo de exposición, a diferencia del
resultado de esta investigación en la cual no se mostró un efecto antimicrobiano del
aceite de manzanilla junto con el hidróxido de calcio.
Mismo resultados que el efecto antimicrobiano del desarrollo bacteriano con el
aceite esencial de manzanilla se han demostrado con el estudio realizado por
Farinango(2012)“el cual confirmó la acción inhibitoria del paramonoclorofenol
alcanforado y gluconatoclorhexidina al 2% sobre las cepas de
enterococcusfaecalis, de igual manera determinó que existe un aumento del efecto
inhibidor al aumentar el tiempo de exposición en el caso de la concentración de
aceite esencial de manzanilla, a mayor concentración mayor poder inhibidor y
viceversa” (Farinango, 2012, pág. 53)
Aguirre (2015)concluyó en su trabajo de investigación que el
paramonoclorofenolfue efectivo sobre el enterococcusfaecaliscon un promedio en
mediciones de sus halos de 15 milímetros a 37ºc por 24 horas, mientras que a las
48 y 168 horas no se observó cambios aparentes.
Para comprobar la actividad antibacteriana del paramonoclorofenol alcanforado
Aguirre(2015)“lo compara con el propóleo al 5% y lo enfrenta a cuatro bacterias
frecuentes en necrosis pulpar, los resultados indican que las dos sustancias fueron
efectivas para eliminar el Enterococcusfaecalis”
Estos estudios difieren con los resultados obtenidos en esta investigación ya que
los halos inhibitorios del hidróxido de calcio junto con el parmonoclorofenol
46
alcanforado denotan una baja acción antimicrobiana dado que la media del halo de
inhibición de este compuesto es de 7,25 mm pero si se compara con los demás
compuestos con los que se realizó las pruebas de efecto antimicrobiano el hidróxido
de calcio + el paramonoclorofenol alcanforado presente la mayor medición del halo
inhibitorio sobre la cepa de estreptococcusfaecalis después del grupo de control
hablando de la gentamicina.
Por otra parte Delgado(2010)utilizó en su estudio el hidróxido de calcio y
clorhexidinasobre las cepas de Enterococcusfaecalisy comprobó que el hidróxido
de calcio muestra unamenor eficacia antibacteriana por lo que se evidenciaron
colonias de Enterococcusfaecalis viablesa los 14 días de iniciado el tratamiento,
demostrando la persistencia del microorganismo, de igual manera los estudios
realizados por Canalda(2006), Cohen&Hargreaves(2008), sugieren que el
Enterococcusfaecalis es una bacteria resistente al hidróxido de calcio ya que hasido
encontrada en los túbulos dentinarios, después del transcurso de una semana
eincluso mayor a 10 días.
De esta misma forma Tanriverdi (1997) coincide con el resultado de
estainvestigación en que períodos cortos de tiempo de aplicación de hidróxido de
calcio sonineficaces para una desinfección apropiada del sistema de conductos
radiculares.
Con estas investigaciones se corrobora los resultados del presente estudio en
donde se observa que no existe efecto antimicrobiano del hidróxido de calcioen los
cultivos de enterococcusfaecalis expuestos a 24 horas de exposición, ya que
presenta un halo de crecimiento de 6,90mm estadísticamente la media más inferior
que el resto de los compuestos utilizados en esta investigación, determinando
resistencia bacteriana a comparación con el grupo de control.
47
CAPITULO IV
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
6.1. CONCLUSIONES
El efecto inhibidor del hidróxido de calcio puro con manzanilla al 100%,
determino un efecto mínimo sobre las bacterias investigadas, ya que según
el estudio aplicado en las cepas de enterococcusfaecalis in vitro, presentaron
medidas no significativas en los halos de inhibición.
Confirmado la conclusión anterior, se determina que la medida de los halos
de inhibición formados por el hidróxido de calcio puro con aceite esencial de
manzanilla al 100% en el cultivo bacteriano de enterococcusfaecalis mostro
una medida mínima en milímetros por lo cual su efecto inhibitorio es mínimo
o nulo en comparación con el hidróxido de calcio masparamonoclorofenol e
hidróxido de calcio puro los cuales mostraron halos de inhibición más
significativos.
De esta manera se determina que, el mayor efecto de estos tres compuestos
lo tiene el hidróxido de calcio mas paramonoclorofenol, ya que, tiene la
mayor medida del halo de inhibición.
La ejecución del análisis de varianza y la prueba de Tukey, determinan que
estas muestras son estadísticamente similares, por lo que, el efecto de los
tres componentes en las bacterias de enterococcusfaecalis tienen efectos
similares.
Al establecer como grupo de control la aplicación del antibióticogentamicina,
se obtuvo mejores resultados en los halos de inhibición de la bacteria de
enterococcusfaecalis, ya que determinaron, valores mucho más altos en los
halos de inhibición.. Esto determina que es un tratamiento de mayor
efectividad para la bacteria mencionada.
48
6.2. RECOMENDACIONES
Ampliar la investigación empleando otros antibióticos para conocer su
efectividad sobre la bacteria de enterococcusfaecalis, de esta manera, se
puede verificar, cuál de los medicamentos mencionados surte el mayor
efecto inhibidor.
Otra opción importante, es ejecutar un estudio con diferenciación en los
tiempos de exposición de los elementos empleados, como son, hidróxido de
calcio, aceite de manzanilla y paramonoclorofenol. Los tiempos de
exposición, se pueden aumentar de 24 a 48 o 72 horas; así, se puede
determinar si existe mayor efectividad ante mayor tiempo de exposición y
existe mayor halo de inhibición en la bacteria investigada.
Incorporar en la investigación otro tipo de medicamentos, como el extracto
de propóleo, para verificar su efecto inhibidor en comparación con los
elementos empleados en el presente estudio, que son hidróxido de calcio,
extracto de manzanilla y paramonoclorofenol.
Adicional a las conclusiones que llega el presente estudio sobre el uso de
medicamentos para tratar infecciones bacterianas en tratamiento de
Endodoncia, es importante establecer que las medidas preventivas tienen
igual importancia; esto es la antisepsia, preparación de biomecánica y el uso
de elemento de irrigación en el momento del tratamiento de Endodoncia.
49
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ANEXOS
Discos impregnados con Ca(OH)2 + manzanilla Esterilización con calor de pinza
Colocacióndediscos en las placas Petri
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