PROGRAMA DE FORMACIÓN ESPECIALIZADA€¦ · • Pruebas diagnósticas de diabetes, realización de...

S. Analisis Clínicos Revisión Enero 2015 Página 1 de 29

GUÍA DOCENTE

PROGRAMA DE FORMACIÓN ESPECIALIZADA

ANALISIS CLINICOS

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INDICE 1. OBJETO Y ALCANCE 3 2. INTRODUCCIÓN 3 3. DATOS GENERALES 3 4. PROGRAMA DOCENTE: ITINERARIO FORMATIVO 5 5. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: 18 6. ACTIVIDAD/TÉCNICA 24 7. DOCUMENTOS ASOCIADOS 27 8. REGISTROS ASOCIADOS 27 9. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 27 10. REGISTRO DE APROBACIÓN DEL DOCUMENTO 28

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1. OBJETO Y ALCANCE

Establecer el itinerario formativo del residente en la especialidad de Análisis Clínicos en

nuestro hospital según los requisitos establecidos por la Comisión Nacional de la

Especialidad.

Los registros que evidencian el nivel de cumplimiento de los requisitos docentes

establecidos deben estar correctamente cumplimentados por los profesionales implicados

en el programa docente del Hospital.

2. INTRODUCCIÓN

Los residentes de la Especialidad de Análisis Clínicos están adscritos al Servicio de

Análisis Clínicos, el cual fue creado en el año 1964. La formación de residentes comenzó en

el año 1976.

Actualmente tiene una capacidad docente de 2 residentes por año, según la resolución

del Ministerio de Educación, Deporte y Cultura.

La formación del residente del servicio de Análisis Clínicos se fundamenta en la

actualidad en las directrices recogidas en la Orden SCO/3369/2006, 9 de Octubre, del BOE

nº 262 del 2 de noviembre de 2006, que aprueba y publica el plan formativo de la

especialidad de Análisis Clínicos y en el Real Decreto 183/2008 de 8 de Febrero del BOE nº

45 del 21 de Febrero de 2008, donde se determinan y clasifican las especialidades en

Ciencias de la Salud y en el que se desarrollan determinados aspectos del sistema de

formación sanitaria especializada.

3. DATOS GENERALES

Ubicación El Servicio de análisis Clínicos está ubicado en el nivel 5 del bloque central del Hospital

Universitario de Gran Canaria Doctor Negrín.

Recursos humanos Jefe de Servicio: Dra. Casimira Domínguez Cabrera FACULTATIVOS adjuntos y F.E.As.:

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Dr. José Ángel Aguilar Dra. Inmaculada Alarcón Dr. Antonio Losada Dra. Teresa Guada Dra. Mercedes Lorenzo Dra. Pino Afonso Dra. Ruth Martín Dra. Lucía Quintana Dra. Lidia Ruiz. Dra. Adys Martín Dra. Patricia Nogueira Responsable de la Unidad Central de Laboratorios (Preanalítica y postanalítica): Dr. Gregorio Muelas Tutora de residentes: Dra. Pino Afonso Medina Residentes: Taiomara Fernández García (FIR4)

Javier Touris Noriega (MIR4)

José Antonio Castellano del Toro (FIR2)

María Reyes Rodríguez Vega (MIR1)

Supervisora: 1 Enfermería: 4 Técnicos de Laboratorio (TEL): 29 Personal administrativo: 1

Organización del Servicio

El servicio está estructurado en diferentes secciones o áreas de conocimiento, por las que

el residente debe ir rotando durante los cuatro años de su formación, con el objetivo de

adquirir las habilidades y conocimientos necesarios que le capaciten para obtener su

titulación. Se distribuyen de la siguiente manera:

• Urgencias

• Automatización y Bioquímica

• Orinas y función renal

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• Unidad Central de Laboratorios

• Hormonas

• Fármacos y Drogas de Abuso

• Alergias

• Farmacogenética

• Marcadores Tumorales

• Proteínas

• Autoinmunidad

La formación se completará con rotaciones en otros Servicios del propio Hospital:

Inmunología, Hematología, Unidad de Investigación, Microbiología y Parasitología, y

Nefrología. Se realizarán también rotaciones por unidades específicas del Complejo

Hospitalario Universitario Materno-Insular: Genética, Citogenética y Fertilidad; y por el

Laboratorio de Toxicología de la Universidad de Las Palmas de Gran Canaria para la

formación en técnicas de HPLC y espectrometría de masas.

4. PROGRAMA DOCENTE: ITINERARIO FORMATIVO

A la formación especializada en Análisis Clínicos acceden postgraduados con diferentes

titulaciones académicas y diferente base de conocimientos, que requieren una estrategia

diferencial en su formación. Por consiguiente, el presente programa intenta alcanzar, como

resultado final, una formación homogénea de los residentes en formación, independiente de

su titulación académica inicial.

URGENCIAS DE LABORATORIO (1 mes y guardias durante toda la residencia).

Conocer y manejar todos los aspectos relacionados con las fases preanalítica, analítica

y postanalítica de la sección de urgencias. Entre los conocimientos y habilidades a adquirir

se encuentran los siguientes:

• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos

normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.

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• Conocer y manejar utensilios básicos de laboratorio: microscopio óptico, cámaras de

recuento, métodos de tinción, pipetas, diluciones.

• Conocer el catálogo de pruebas que se realizan con carácter urgente. Valorar

aquellas determinaciones que no estando incluidas en el catálogo de urgencias

puedan tener indicación de realización urgente.

• Conocer los tubos y contenedores necesarios para la recogida de las diferentes

muestras biológicas. Conocimiento del manejo y priorización de muestras en el área

de recepción de muestras del laboratorio de urgencias.

• Conocer y preparar calibradores y controles. Concepto de control de calidad interno y

externo, y valoración de resultados obtenidos en calibraciones y controles.

• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del

catálogo de urgencias y manejar los autoanalizadores necesarios para su

realización.

• Valores de referencia de las determinaciones analíticas que se realizan en esta

sección.

• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de

laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.

• Conocer, realizar e interpretar el análisis microscópico y bioquímico de los distintos

líquidos biológicos: orina, líquido cefalorraquídeo, ascítico, pleural, pericárdico,

sinovial, colecciones quísticas, lavados peritoneales, drenajes, etc.

• Conocer, realizar e interpretar los análisis de orina: elementos anormales, sedimento,

bioquímica, test de embarazo y drogas de abuso (cocaína, cannabis, opiáceos,

benzodiacepinas y anfetaminas)

• Conocer, realizar e interpretar los parámetros bioquímicos sanguíneos, marcadores

cardíacos y hormonas realizados en el área de urgencias.

• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con la monitorización de drogas

terapéuticas: antiepilépticos, inmunosupresores, antibióticos, agentes cardíacos,

teofilina, litio.

• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con el estudio del equilibro ácido-

base y de los gases en sangre. Mecanismos de compensación (renales y

respiratorios). Pruebas analíticas para su estudio.

• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con el equilibrio hidroelectrolítico.

Principales iones. Métodos de determinación.

• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la

patología más prevalente que se recibe en la sección: cardiopatía isquémica,

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insuficiencia cardíaca, insuficiencia respiratoria, descompensaciones diabéticas,

trastornos hidro-electrolíticos, trastornos del equilibrio ácido-base, dolor abdominal,

sepsis, etc.

• Conocer y aplicar los protocolos de actuación del laboratorio en las muestras

custodiadas.

• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos

y de pánico.

• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.

• Resolver interconsultas relacionadas con pruebas de laboratorio de ayuda en el

diagnóstico de la patología urgente.

BIOQUÍMICA (4-5 meses)

Objetivos generales:



• Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores.

• Concepto de control de calidad interno y externo, y valoración de resultados

obtenidos en calibraciones y controles.


catálogo de bioquímica y manejar los autoanalizadores necesarios para su

realización. Estudio de interferencias metodológicas.

• Automatización. Evaluación, mantenimiento e incidencias. Criterios de selección de

autoanalizadores. Robotización.


sección.




patología más prevalente que se recibe en la sección.


y de pánico.


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Objetivos específicos:

• Comprender los principios y características de técnicas bioquímicas, incluyendo

fotometría, fotometría de llama, osmometría, electroquímica, enzimática, electroforesis,

radioinmunoanálisis (RIA), cromatografía, espectrometría de masa y métodos

inmunológicos.

• Conocer diferentes tipos de autoanalizadores y los principios de medida empleados

en estos sistemas, incluyendo espectrofotometría, electrodo ión-selectivo, métodos

electroquímicos, inmunológicos, que incluyan técnica de inmunoensayo enzimático de

micropartículas, inmunoensayo de fluorescencia polarizada, electroquimioluminiscencia,

ELISA, turbidimetría y nefelometría.

• Comprender y conocer la biología básica y métodos analíticos para determinación de

cambios cuantitativos y cualitativos de las proteínas en sangre y fluidos biológicos

(enzimas, biomarcadores, hormonas y citokinas), carbohidratos, lípidos y lipoproteínas,

y pequeñas moléculas clínicamente importantes (incluyendo metales, elementos traza y

vitaminas).

• Manejar los principios de la robótica de laboratorio y estrategias de automatización.

• Comprender los principios generales de calibración de técnicas y control de calidad.

• Comprender las causas de interferencias, tanto positivas como negativas, detectarlas

y manejarlas.

Valoración de la función pulmonar: gases sanguíneos y saturación de oxígeno

• Comprender los principios de presión parcial y ser capaces de describir el gradiente

alveolo-arterial de oxígenos y el anio gap.

• Conocer la patofisiología de la cetoacidosis y acidosis láctica.

• Comprender el significado de P50, contenido de oxígeno, capacidad de oxígeno,

saturación de oxígeno y distinguir entre saturación de pO2 y pCO2.

• Describir la curva de disociación hemoglobina-oxígeno y los factores que afectan la

curva y P50.

• Comprender los principios de la gasometría sanguínea, electrolitos y sistemas de

CO-oximetría.

Química ácido-base, electrolitos y desórdenes relevantes

• Definir la ecuación de Henderson-Hasselbach. Familiarizarse con los sistemas

buffer fisiológicos y el papel de la compensación renal y respiratoria. Identificar los

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desórdenes asociados (acidosis metabólica y respiratoria, alcalosis metabólica y respiratoria

y desórdenes mixtos).

• Diagnóstico diferencial entre desórdenes electrolíticos comunes.

• Conocimiento de los métodos de determinación de iones.

• Comprender la definición de osmolalidad, moléculas en suero que contribuyen a

ella, y cálculo de anion gap osmolal y el principio del osmómetro. Comprender las fuentes de

error durante la estimación del gap osmolal (ej: hiperproteinemia, hiperlipidemia,

hipermagnesiemia). Conocer el diagnóstico diferencial de un inexplicable gap osmolal

aumentado, incluyendo ingestión de alcohol o glycol, cetosis alcohólica o cetoácidos

diabética, y osmoterapia (ej administración de manitol o glicerol), entre otros. Conocer los

principios de balance de fluidos.

• Valoración de los pacientes en situación de prediálisis. Conocimiento de las

pruebas para control y seguimiento de las mismas.

• Valoración de la Calidad de Diálisis: Conocimiento de las distintas pruebas

empleadas para valorar la calidad de la diálisis en pacientes sometidos a HD (KTV, test de

recirculación, aclaramiento residual) y a DP (estudio de la calidad de diálisis en cicladota y

cinética peritoneal).

• Valoración del paciente trasplantado renal. Conocimiento de las pruebas para

control y seguimiento del órgano trasplantado.

Biomarcadores cardíacos para la valoración de enfermedades coronarias

• Conocer la definición actual de infarto de miocardio, las diferentes herramientas

diagnósticas (ECG, test de laboratorio e imagen).

• Conocer los significados diagnósticos y pronósticos así como las limitaciones de los

biomarcadores de la enfermedad coronaria (troponinas I y T, CK, CK-MB, y mioglobina).

• Conocer la patofisiología y evaluación de fallo cardíaco congestivo (BNP y

fragmento N terminal de la prohormona BNP) y sus limitaciones técnicas y biológicas.

• Comprender la utilidad de los marcadores de inflamación en la evaluación de riesgo

cardíaco (ej homocisteína y PCR).

Evaluación del hígado y del tracto biliar

• Comprender la dinámica y mecanismos de liberación de enzimas por el hígado y la

utilidad clínica de las enzimas hepáticas (ej aspartatoaminotransferasam alanina

aminotransferasa, gammaglutamiltransferasa, fosfatasa alcalina y lactato deshidrogenasa).

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• Valoración bioquímica de la función hepática por analitos no enzimáticos como

albúmina, amonio, ácidos biliares, bilirrubina, BUN, colesterol, proteinas totales y

triglicéridos.

• Conocer el metabolismo de la bilirrubina, fracciones de la misma (conjugada, no

conjugada, directa vs indirecta) y aspectos de la bilirrubina neonatal.

Conocer las condiciones y defectos genéticos que afectan al metabolismo de la bilirrubina,

transporte y aclaramiento (ej enf. Gilbert y sdme de Dubin-Johnson).

Evaluación de las alteraciones de los hidratos de carbono:

• Pruebas diagnósticas de diabetes, realización de SOG (sobrecarga oral de glucosa

para el diagnóstico de diabetes gestacional, diabetes del adulto e intolerancia a la glucosa.

Evaluación de la función pancreática exocrina:

• Comprender los mecanismos de liberación de enzimas pancreáticas (amilasa y

lipasa) y su metabolismo.

Evaluación bioquímica de las anemias:

• Comprender el metabolismo del hierro, absorción, transporte y almacenamiento,

incluyendo conocimiento del manejo de parámetros como transferrina, ferritina, receptor

soluble de transferrina.

• Conocimiento de los índices de valoración IST y TIBC.

• Conocimiento del metabolismo del ácido fólico y vitamina B12.

Metabolismo lipídico:

• Estudio fisiopatológico de las alteraciones de los lípidos y las lipoproteínas

plasmáticas. Significado clínico. Dislipemias. Pruebas para su diagnóstico.

Metabolismo mineral.

• Desórdenes del metabolismo del cobre, las purinas y enfermedades relacionadas.

Otros oligoelementos. Pruebas para su diagnóstico.

• Comprensión y conocimiento del metabolismo mineral óseo y parámetros de

valoración: calcio, fósforo, osteocalcina, PINP (propéptido amino terminal), cross-lap

(telopéptido carboxiterminal).

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ORINAS, FUNCIÓN RENAL, ESTUDIOS EN HECES (3 meses)








catálogo de orinas y manejar los autoanalizadores necesarios para su realización.


sección.






y de pánico.



Estudios de urianálisis y sedimentos:

• Valoración del sedimento urinario y de las tiras reactivas para el urianálisis.

Elementos formes: hematíes, leucocitos, gérmenes, otras células, cilindros, cristales.

• Realización de test de embarazo, interpretación y valoración de posibles

interferentes.

Función Renal

• Conocer la base fisiológica de la función renal. Comprender las categorías básicas

de las enfermedades renales (ej, azoemia prerrenal, obstructiva, glomerulonefritis,

fallo renal agudo y crónico, síndrome urémico) y familiarizarse con las guías

prácticas de estas patologías.

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• Conocer los métodos analíticos para la valoración de la función renal (creatinina,

urea, BUN, tasa de filtrado glomerular) y proteinuria. Conocer los conceptos de

aclaramiento de creatinina, cómo puede ser usado para estimar la tasa de filtrado

glomerular y los diversos métodos empleados para medirlo. Manejo renal de

electrolitos y metabolitos y la interpretación de la medida de los electrolitos en orina.

• Estudio de la función renal. Alteraciones tubulares y glomerulares. Pruebas de

estudio.

• El filtrado glomerular como índice de función renal. Aclaración de creatinina.

Ecuaciones para la estimación del filtrado glomerular (ecuación de Cockroft-Gault,

CKD-EPI y ecuación MDRD).

• Evaluación del cociente albuminuria/creatinina. Algoritmos de interpretación.

• Orina de 24 horas: sodio, potasio, calcio, fósforo, creatinina, proteínas, magnesio,

uratos, oxalato y citrato.

• Técnicas para el estudio de cálculos urinarios. Protocolos y guías de estudio de la

litiasis renal.

Estudios en heces:

• Sangre oculta en heces: métodos de determinación, valoración de interferentes,

interpretación de resultados.

• Estudios de grasa en heces: métodos de determinación, valoración de interferentes,

interpretación de resultados.

• Calprotectina: métodos de determinación, valoración de interferentes, interpretación

de resultados.

• Otras determinaciones: elastasa pancreática, ph fecal, etc.

UNIDAD CENTRAL DE LABORATORIOS (1 mes).

El objetivo en esta rotación es aprender todo lo relativo a la fase preanalítica y postanalítica

del Laboratorio clínico:

• extracción de muestras y seguridad del paciente.

• etiquetado y manejo preanalítico de los diferentes tipos de muestras.

• manejo del programa informático de laboratorio (SIL) y de la plataforma automática

que clasifica las muestras.

• Gestión de incidencias: conocer y manejar las incidencias y no conformidades

diarias sobre las peticiones y muestras recibidas.

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• Conocer la cartera de servicios del Laboratorio y aquellas muestras que se envían a

laboratorios externos y condiciones de preparación para el envío.

• Elaboración y edición de informes. Gestión de incidencias postanalíticas.

HORMONAS-ALERGIA-MONITORIZACIÓN FÁRMACOS Y DROGAS-

FARMACOGENÉTICA (4 meses)








catálogo de la sección y manejar los autoanalizadores necesarios para su

realización. Estudio de interferencias metodológicas.


sección.






y de pánico.


Objetivos específicos: Valoración de la función hormonal:

• Estudio de la función hipotalámica e hipofisiaria. Pruebas diagnósticas (basales y

funcionales).

• Estudio de la función tiroidea y paratiroidea. Pruebas simples y funcionales.

• Estudio de la funcionalidad de la corteza suprarrenal. Métodos de exploración.

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• Estudio de la función gonadal. Pruebas analíticas (basales y funcionales).

• Utilidad de los procedimientos de laboratorio como soporte para el estudio de la

fertilidad, esterilidad y los procedimientos de reproducción asistida.

Aportación del laboratorio de Análisis Clínicos a la monitorización de fármacos y

drogas de abuso.

• Antibióticos: vancomicina, tobramicina, gentamicina, amikacina.

• Antiepilépticos: valproato, fenitoína, carbamacepina.

• Agentes cardíacos: digoxina.

• Teofilina

• Litio.

• Valoración de monitorización de otros fármacos: amiodarona, clozapina, risperidona,

oxcarbacepina, levetiracetam, etc.

• Inmunosupresores: ciclosporina, tacrolimus, everolimus, sirolimus.

• Metotrexato.

• Drogas de abuso: pruebas de detección. Sustancias interferentes. Interpretación de

resultados.

Diagnóstico alérgológico: pruebas de laboratorio:

• Diagnóstico alergológico in Vitro: IgE total y específica, extractos alergénicos y

técnicas de laboratorio, RAST-inhibición.

• Enfermedades alérgicas. Anafilaxia.

• Monitorización de la respuesta inflamatoria. Marcadores de inflamación.

• Estudio molecular por componentes alergénicos: ISAC.

Farmacogenética:

• Adquisición de conocimientos sobre las diferentes técnicas que permiten determinar

y conocer la variabilidad individual en la eficacia y toxicidad de los fármacos, debido

a los cambios existentes en la secuencia de DNA de los genes que codifican

enzimas metabolizadoras, receptores y transportadores de los diferentes fármacos,

especialmente de aplicación en terapias antitumorales.

• Conocimientos básicos de genética. El consentimiento informado.

• Técnicas de extracción de DNA en tejido.

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• Técnicas de extracción de DNA en sangre total.

• Técnicas de extracción de DNA circulante.

• Detección de mutaciones o polimorfismos mediante análisis con enzimas de

restricción específicos de alelo y con sondas de hibridización marcadas con

fluorógenos empleando metodologías de PCR en tiempo real.

• Estudio de biomarcadores oncológicos: KRAS, EGFR, BRAF. Interpretación de

resultados.

• Estudios de polimorfismos UGT1A y DPyD. Interpretación de resultados.

• Estudio de polimorfismos del citocromo P450 y su aplicación en terapia

personalizada.

MARCADORES TUMORALES (2 meses)








catálogo de marcadores tunorales y manejar los autoanalizadores necesarios para

su realización.

• Valores de referencia de las determinaciones que se realizan en esta sección.






y de pánico.



• Bioquímica del cáncer. Clasificación de los marcadores tumorales y su utilidad

clínica.

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• Guías de práctica clínica y protocolos de laboratorio para el uso de los marcadores

tumorales.

• Requerimientos preanalíticos, analíticos y postanalíticos de particular relevancia en

marcadores tumorales.

• Causa potencial de error en los resultados de marcadores tumorales. Interferencias.

• Utilización racional de los marcadores tumorales.

• Estudio específico por localizaciones:

1. Cáncer de mama

2. Cáncer ginecológico

3. Cáncer hepatobiliar

4. Cáncer colorrectal y ano

5. Otros cánceres digestivos: estómago, páncreas

6. Cáncer de próstata

7. Tumores neuroendocrinos

8. Tumores germinales

9. Cáncer de pulmón

10. Cáncer de cabeza y cuello

11. Cáncer de tiroides

12. Melanoma

13. Tumor Primario oculto

PROTEÍNAS e INMUNIDAD HUMORAL (3 meses)


.- Realizar las diferentes técnicas y manejar correctamente los equipos y

analizadores utilizados en la sección de proteínas, así como conocer el tipo de muestra

idónea y las condiciones de obtención de la misma.

.- Aprender a interpretar los datos generados tras la realización de las diferentes

pruebas, poniéndolos en el contexto clínico y siendo capaces de contribuir eficazmente con

esta interpretación al asesoramiento en el diagnóstico clínico, así como en las decisiones

terapéuticas.

.- Realizar cuando sea necesario la puesta a punto de técnicas o aparataje nuevos,

siempre bajo la supervisión del tutor y/o facultativo especialista. Colaborar en la realización

de procedimientos normalizados de trabajo para una correcta estandarización de las

técnicas.

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.- Participar activamente en los programas de calidad interno y externos propios de la

sección de proteínas.


• Métodos fundamentados en reacciónes antígeno-anticuerpo en sistemas

automatizados:

Inmunonefelometría, inmunoturbidimetría

• Métodos fundamentados en reacciones antígeno-anticuerpo en técnicas manuales:

Inmunodifusión radial.

• Métodos fundamentados en la reacción antígeno-anticuerpo en sistemas

semiautomáticos

: Inmunofijación

• Métodos de separación electroforética: electroforesis en gel de agarosa,

electroforésis capilar.

• Automatización. Robotización.

• Conocimiento en Electroforesis de proteínas:

- Estructura de las proteínas y electroforesis.

- Técnicas de electroforesis de proteínas.

- Técnicas de Inmunofijación, Inmunosustracción, Inmunotipado.

- Aproximación a la interpretación de patrones electroforéticos en suero.

- Condiciones asociadas con las Gammapatías Monoclonales: linfomas, mielomas,

gammapatías monoclonales, crioglobulinas, etc.

- Estudio de orina en la proteinuria.

- Estudio del LCR: aproximación a la interpretación de patrones en LCR.

- Estrategia del laboratorio para el estudio de gammapatías Monoclonales.

• Conocimientos de Inmunología

- Conceptos básicos de Inmunología: el sistema inmunitario en condiciones de salud.

Componentes del sistema inmunitario. El tejido linfoide. Células implicadas en la respuesta

inmune, proliferación celular y maduración, interacción celular, componentes moleculares de

la respuesta inmune.

- Inmunidad Innata. Fagocitos, citocinas y respuesta inflamatoria. El complemento y

sistemas intermediarios en la respuesta inmune.

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- Estructura molecular de los anticuerpos, interacción antígeno- anticuerpos.Superfamilia de

las inmunoglobulinas, distribución y funciones de sus isotipos,diversidad.

- Sistema inmunitario adaptativo, características. Respuesta inmunitaria Humoral.

- Respuesta inmunitaria adquirida y frente a la infección.

- Inmunopatología I: Inmunodeficiencias congénitas de linfocitos T y B. Abordaje por el

laboratorio del estudio de inmunodeficiencias.

El complemento en la enfermedad: deficiencia hereditaria y adquirida.

• Conocimiento de los Trastornos del metabolismo intermediario: aminoacidopatías,

acidurias orgánicas y enfermedades mitocondriales. Enfermedades lisosomales y

peroxisomales. Diagnóstico bioquímico.

• Conocimientos de las Enfermedades crónicas relacionadas con la nutrición y la

dieta. Estudio del laboratorio de los trastornos de la conducta alimentaria y, de la evaluación

pre y postoperatoria de la cirugía bariátrica. Valoración del laboratorio del soporte

nutricional, vitaminas hidrosolubles y liposolubles.

AUTOINMUNIDAD (3 meses) La formación en Autoinmunidad para los residentes del Servicio de Análisis Clínicos tiene

por objetivos fundamentales facilitar la adquisición de conocimientos, habilidades y actitudes

que le capaciten para realizar eficazmente el diagnóstico y seguimiento de las

enfermedades de base inmunológica y asegurar su autoformación continuada y desarrollar

investigación clínica y/o básica.


• Adquisición de conocimientos teóricos y prácticos para realizar las técnicas

diagnósticas.

• Adquisición de conocimientos teóricos sobre los principios básicos de la patología de

base inmunológica.

• Aplicación de los conocimientos adquiridos para la interpretación de los resultados

obtenidos en el laboratorio dentro de un contexto clínico, contribuyendo al

diagnóstico clínico.


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• Realizar las técnicas de laboratorio que permiten el estudio de patologías de base

inmunológica: métodos de precipitación (Inmunodifusión doble,

contrainmunoelectroforesis), inmunotransferencia o inmunoblot, aglutinación, fijación

de complemento, inmunofluorescencia, inmunoensayos, electroforesis, citometría de

flujo para Inmunofenotipado celular.

• Manejar correctamente los distintos aparatos utilizados en el área de Inmunología.

• Interpretar correctamente los resultados obtenidos de las diferentes pruebas

inmunológicas dentro del contexto clínico de la enfermedad.

• Asesorar al clínico sobre las pruebas que han de realizarse ante una determinada

sospecha clínica, así como el tipo de muestra necesaria y las condiciones de

obtención.

• Participar en los programas de control de calidad internos y externos para las

distintas las determinaciones inmunológicas.

• Redactar protocolos de trabajo para una correcta estandarización de las técnicas.

• Implantación de nuevas técnicas en el laboratorio.

• Manejar correctamente la bibliografía sobre Inmunología clínica

• Inmunopatología II: Respuestas inmunitarias inapropiadas. Equilibrio TH1/TH2.

Fisiopatología y fundamentos efectores de la respuesta alérgica. Tipos de reacciones

de hipersensibilidad. Respuesta inflamatoria. Morfología de las reacciones alérgicas.

• Inmunopatología III: Tolerancia y autoinmunidad. Autoanticuerpos y su relevancia

clínica. Autoanticuerpos en enfermedades autoinmunes sistémicas (LES, Artritis

reumatoide, Sjögren, vasculitis, síndrome antifosfólipido, EMTC…). Autoanticuerpos

específicos de órgano (enfermedades de la piel, hepáticas, renales, endocrinas,

sistema nervioso, hematológicas…).

• Aportaciones del laboratorio en las enfermedades autoinmunes. Estudio diagnóstico

inicial. Algoritmos diagnósticos.

• Inmunidad antitumoral. Respuesta inmunitaria frente a los tumores. Antígenos tumor-

específicos.

• Estudio de poblaciones linfocitarias. Citometría de flujo.

Rotaciones Externas al Servicio de Análisis Clínicos a realizar en el propio

hospital:

SERVICIO DE NEFROLOGÍA (1 mes)

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• Introducción a la diálisis peritoneal. Estudios de calidad de diálisis.

• Introducción a la hemodiálisis. Estudios de KTV, test de recirculación, etc.

• Conocimientos de trasplante renal para conocer manejo de inmunosupresores.

MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA (5meses)

• Agentes infecciosos. Flora saprofita habitual

• Epidemiología de las enfermedades infecciosas

• Sistemas de aislamiento, cultivo e identificación en Microbiología

• Bacterias: urocultivos y coprocultivos

• Cultivos generales: microorganismos G(+) y G(-) de interés clínico

• Técnicas para el estudio de la sensibilidad a los quimioterápicos.

• Parásitos

• Micobacterias y hongos.

• Virus: DNA, RNA

• Serología infecciosa: protocolos y automatización.

HEMATOLOGÍA Y HEMOTERAPIA (5 meses)

• Estructura y función de la médula ósea y del tejido linfoide.

• Frotis sangre periférica

• Serie roja:

1. Estudio diferencial de las causas de anemia

2. Desórdenes del metabolismo del hierro

3. Desórdenes del eritrocito: poliglobulias, hemoglobinopatías y talasemias

Serie blanca:

1. Leucocitos: morfología-citoquímica

2. Estudio de neutropenias

3. Leucemias: diagnóstico

4. Síndrome mieloproliferativo

5. Linfomas: Hodgkin y no Hodgkin

6. Mieloma múltiple y gammapatías monoclonales

• Coagulación:

1. Bioquímica y factores de coagulación

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2. Mecanismo de la coagulación, fibrinolisis y trombosis

3. Control del laboratorio de la terapia anticoagulante y antitrombótica

4. Hemoterapia: grupos de sangre e inmunohematología

• Conceptos para la práctica de la transfusión: sensibilización, aglutinación y prueba de

la antiglobulina. Pruebas cruzadas. Derivados del plasma.

• Aspectos clínicos de la terapéutica transfusional: principios de la terapéutica

sustitutiva con hemoderivados. Reacciones transfusionales. Hemólisis

inmune.Transfusión de plaquetas y granulocitos.

UNIDAD DE INVESTIGACIÓN (1 mes)

• Introducción al método científico

• Metodología de la investigación

• Bases de datos bibliográficas

• Diseño de experimentos científicos

• Desarrollo de proyecto de investigación

SERVICIO DE INMUNOLOGÍA (1 mes)

• Sistema de histocompatibilidad. Técnicas de estudio de HLA.

• Estudio de inmunodeficiencias.

• Citometría de flujo.

Rotaciones Externas al Sº de Análisis Clínicos a realizar en diferentes centros:

COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR: unidad de

GENÉTICA y BIOLOGÍA MOLECULAR (3 meses): 1. Genética Humana: Bases moleculares de la Genética; Dogma central de la Biología

Molecular; Alteraciones genéticas; Mutaciones y su traducción clínica; Tecnología

molecular para estudios genéticos.

2. Citogenética Humana: Anomalías cromosómicas estructurales y numéricas;

Diagnóstico prenatal.

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3. Técnicas de estudio de cariotipos.

4. Extracción de ácidos nucleicos.

5. Cuantificación de ADN y ARN

6. Amplificación génica (PCR)

7. Manejo de enzimas de restricción

8. Técnicas de hibridación

9. Transferencias a membranas

10. PCR a tiempo real

11. Secuenciación

12. Cultivo celular

13. Consejo genético

COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR:

Unidad de Fertilidad (2 meses)

• Utilidad de los procedimientos de laboratorio como soporte para el estudio de la

fertilidad, esterilidad y los procedimientos de reproducción asistida: seminogramas,

capacitación espermática y estudio hormonal.

• Técnicas de reproducción asistida: inseminación artificial, FIV, ICSI.

COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR:

Sº Análisis Clínicos (1 mes)

• RIA (radioinmunoensayos).

• Valores de normalidad en determinaciones bioquímicas en neonatos y prematuros

• Pruebas funcionales en niños.

• Estudios en heces de 72 horas.

• Diagnóstico prenatal: marcadores de riesgo.

• Estudio del embarazo y función fetal. Madurez pulmonar: estudio del líquido

amniótico.

LABORATORIO DE TOXICOLOGÍA DEL DEPARTAMENTO DE CIENCIAS

CLÍNICAS DE LA UNIVERSIDAD DE LAS PALMAS DE GRAN CANARIA (1 mes)

• Técnicas cromatográficas de alta resolución:

1. cromatografía líquida (HPLC) y de gases (GC)

2. espectrometría de masas (HPLC-MS y GC-MS)

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Rotación externa a elegir por el residente : Se definirán según las inquietudes formativas y profesionales de cada residente.

METODOLOGÍA DOCENTE

Dado el carácter multidisciplinar de la especialidad y que la formación final debe ser

idéntica, los distintos titulados incidirán en mayor medida en aquellos aspectos formativos

que sean más deficitarios de forma que los biólogos, bioquímicos, farmacéuticos y químicos

adquieran una mayor formación en aspectos clínicos y de la organización sanitaria y los

médicos en ciencias básicas y técnicas analíticas.

La metodología docente durante este período se basa, fundamentalmente, en la

autoformación. La formación se adquiere con el trabajo diario que el postgraduado

desarrolla en cada una de las actividades asistenciales, colaborando con otros profesionales

del servicio, de los que va aprendiendo sistemas de trabajo, habilidades o destrezas y

actitudes.

1) AUTOAPRENDIZAJE

• Estudio cotidiano a iniciativa del propio residente.

• Aprendizaje dirigido: lecturas o visualizaciones recomendadas (CD-ROOM, videos,

páginas Web); encargo de tareas: aprendizaje basado en la resolución de problemas,

discusión de casos y problemas prácticos; participación en la elaboración de protocolos

consensuados o guías diagnósticas.

• Preparación de sesiones: clínicas, bibliográficas. Durante la rotación, el residente

deberá presentar, al menos, una sesión clínica y una sesión bibliográfica supervisada por un

facultativo.

2) APRENDIZAJE DE CAMPO • Observación directa (el residente ve lo que hace el tutor).

• Intervenciones autorizadas (el residente realiza sus actividades ante la presencia

del tutor).

• Intervención directa: el residente realizará sin la presencia del tutor (aunque

supervisado por él/ella) las actividades propias de la sección por donde rota, a partir de la

4ª-8ª semana de rotación.

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3) CLASES TEÓRICAS • Clase unidireccional clásica, semanal.

• Sesión de casos clínicos, diaria/semanal.

Actividades científicas e Investigación

Sería aconsejable que durante su período de formación, el residente se inicie en la

investigación. Reconocemos que la faceta es complicada en un hospital como el Dr. Negrín

con una elevada carga asistencial. Aún así es importante que comience con la elaboración y

presentación de pósters y comunicaciones en Congresos de la especialidad.

Posteriormente debería realizar los cursos de doctorado y conectar con una línea de

investigación que le permitiera la publicación de trabajos y de una posible tesis doctoral, sin

menoscabo de su formación en la especialidad.

El residente durante su período de formación, además de adquirir los conocimientos

del programa relativos a la “Metodología de la Investigación”, deberá colaborar en un

proyecto de investigación evaluado por el responsable del mismo, teniendo en cuenta el

tiempo que el residente le dedique. El informe de evaluación constará en el expediente del

residente.

Niveles de Responsabilidad

Protocolo de Supervisión progresiva de la actividad de los Residentes de Análisis Clínicos en guardias de Análisis Clínicos

Este protocolo se ha hecho de acuerdo al Real Decreto 183/2008 y al Protocolo general del Servicio de Urgencias del Hospital Universitario de Gran Canaria Dr. Negrín.

Actividad/Técnica R1 R2 R3 R4

Procesamiento muestras biológicas (plasma, suero, orina, LCR, etc.) y conocer material de recogida adecuado.

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Conocer protocolo de detección de muestras contaminadas.

Conocer y manejar criterios de adecuación de solicitudes de pruebas analíticas en base a la orientación clínica

Realización e interpretación del examen microscópico de los diferentes líquidos biológicos : recuento y diferenciación celular

Realización e interpretación de los parámetros bioquímicos de los diferentes líquidos biológicos (pH, proteínas, glucosa, LDH…)

Realización e interpretación del examen microscópico y del estudio bioquímico de la orina

Realización e interpretación del estudio del equilibrio ácido-base e hidroelectrolítico. Métodos de determinación.

Conocer y manejar programa informático de gestión de Análisis Clínicos

Conocer y manejar analizadores utilizados en la determinación de parámetros bioquímicos e interpretación de los mismos.

Conocer programa de gestión de la calidad: manejo y valoración de los controles de calidad.

Conocer y manejar criterios de validación deresultados normales y /o críticos

Información verbal y por escrito de resultados críticos y/o clínicamente relevantes

Realización e interpretación de drogas de abuso y monitorización de drogas terapéuticas. Muestras custodiadas

Conocer y manejar analizadores de inmunoensayos y nefelométricos e interpretación de los diferentes parámetros (Cortisol, βHCG, IgA, etc.)

Verlo hacer Hacerlo con ayuda Hacerlo sin ayuda pero supervisado Hacerlo de manera independiente, sin necesidad de supervisión

Guardias médicas

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Los residentes de Análisis Clínicos hacen 6 guardias de 24 horas de presencia física

siempre tutelados por un adjunto responsable de presencia física.

Evaluación del residente

Las directrices para la formación y evaluación de los residentes son las recomendadas por

la Comisión Nacional de la Especialidad.

La evaluación de los residentes se realiza al final de cada rotación por el facultativo

responsable de cada una de las secciones. En la evaluación anual, se calcula la media.

Después de cada rotación se rellena una ficha de evaluación por el responsable de esa

rotación y por el jefe de servicio, y se enviará a la Comisión de Docencia al finalizar la

misma.

La escala de los aspectos a valorar son: 0=Insuficiente; 1=Suficiente; 2=Destacado;

3=Excelente.

A.- Conocimientos y habilidades

• Nivel de conocimientos teóricos adquiridos

• Nivel de habilidades adquiridas

• Habilidades en el enfoque diagnóstico o de los problemas

• Capacidad para tomar decisiones

• Utilización racional de los recursos

B.- Actitudes

• Motivación

• Dedicación

• Iniciativa

• Puntualidad/asistencia

• Nivel de responsabilidad

• Relaciones paciente/familia

• Relaciones con el equipo de trabajo

En otra ficha de evaluación se refleja la nota final del Residente, y es la recopilación

de la media de todas las fichas. En caso de ser favorable, el Residente pasa de año o

finaliza su período de Formación, según corresponda.

El residente deberá elaborar una memoria anual obligatoria según un modelo

estándar proporcionado por la Comisión de Docencia del Hospital, que será por el Tutor, por

el Jefe de Servicio y por el Presidente de la Comisión de Docencia. Al finalizar su periodo de

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residencia, se entregará al residente una encuadernación de todas sus memorias anuales

para su Currículum Vitae.

La evaluación del médico residente es un proceso continuo en el que se tienen en

cuenta diversos aspectos: 1) la actitud del residente hacía el enfermo (comunicación y trato

de los pacientes, relaciones con los familiares); 2) actitud del residente con relación al resto

de médicos y resto del personal (enfermeras, auxiliares, celadores, administrativos); interés

del residente por el aprendizaje; 4) nivel de conocimientos asimilados y puesta en práctica

de las habilidades aprendidas. Es importante para la evaluación final cumplimentar

debidamente el libro del residente.

Los encargados de realizar las evaluaciones son los tutores de cada especialidad. Se

evaluará al residente en cada una de las diferentes rotaciones externas y una vez en el

servicio la evaluación será anual, por el tutor de Análisis Clínicos, en acuerdo con el Jefe de

Servicio y el Presidente de la Comisión de Docencia del hospital.

5. DOCUMENTOS ASOCIADOS

- Planes individuales de Formación

- Modelo de Evaluación

6. REGISTROS ASOCIADOS

- Planificación de Sesiones

- Rotaciones Internas

- Rotaciones Externas

- Registros de asistencia sesiones, cursos, talleres….

7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

1. Orden SCO/3369/2006, 9 de Octubre, del BOE nº 262 del 2 de noviembre de 2006, que aprueba y publica el plan formativo de la especialidad de Análisis Clínicos.

2. Real Decreto 183/2008 de 8 de Febrero del BOE nº 45 del 21 de Febrero de 2008,

donde se determinan y clasifican las especialidades en Ciencias de la Salud y en el que se desarrollan determinados aspectos del sistema de formación sanitaria especializada.

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8. REGISTRO DE APROBACIÓN DEL DOCUMENTO

RESPONSABLE Elaborado Revisado Aprobado

Subdirección de Docencia

Jefe de estudios Formación Especializada

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Jefe del Servicio / Unidad

Tutor/res Docentes

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