MANUAL CON EJERCICIOS PARA NIVEL I Y

NIVEL II

Exámenes XXIX OAB editados para ser utilizados

como material de estudio y actualización

Edición: DICIEMBRE DE 2020

MINISTERIO DE EDUCACIÓN DE LA NACIÓN.

OLIMPÍADA ARGENTINA DE BIOLOGÍA (OAB)

LA COORDINACIÓN DE LA ACTIVIDAD ACADÉMICA DE LA XXVIII OAB ESTUVO A

CARGO DE:

COMITÉ ORGANIZADOR EJECUTIVO (COE)

ESP. GRACIELA RAFFAINI (UNRC)

DR. MATÍAS PELLEGRINO (UNRC)

DR. PABLO BRANDOLIN (UNRC)

DRA. ALBANA DI PALMA (UNRC)

LOS AUTORES DE LAS PROPUESTAS DE EXÁMENES PARA ESTA EDICIÓN

FUERON LOS MIEMBROS DEL COMITÉ ACADÉMICO

COMITÉ ACADÉMICO

DRA. ANA LAURA CORREA

LIC. ROSANA FERRI

LIC. JULIETA LUCERO

DRA. VERÓNICA MERINGER

DRA. IVANA SIMONE

Para el usuario

El presente manual para ejercitación contiene exámenes teóricos y prácticos de

ambos niveles implementados en el certamen intercolegial, trabajos prácticos realizados

por los profesores y situaciones problemáticas realizadas por Ex Olímpicos en el marco

del aislamiento Social, Preventivo y Obligatorio (ASPO) de la XXIX Olimpíada Argentina

de Biología (OAB) durante el año 2020. Los mismos pueden ser usados en el trabajo de

preparación de los alumnos interesados en participar en esta Olimpíada o en la disciplina

Biología.

Cuenta con cuatro secciones: Ejercicios propuestos para nivel I y Ejercicios

propuestos para nivel II, Trabajos Prácticos y Situaciones Problemáticas realizadas

por Ex Olímpicos.

Esperamos este material resulte útil para el trabajo de docentes y estudiantes.

Todas las sugerencias que pudieran surgir al trabajarlo y permitan mejorarlo pueden ser

remitidas a nuestra secretaría.

OLIMPÍADA ARGENTINA DE BIOLOGÍA

Secretaría - Comité Organizador Ejecutivo

OAB Agencia Postal Nº 3 - X5804ZAB - Río

Cuarto Tel/fax.0358-4676180

e-mail:infoab@exa.unrc.edu.ar

web:www.oab.org.ar

Nota: Los porcentajes equivalen a los puntos de los exámenes intercolegial y nacional. Por ej., el número total de preguntas de Biología Celular corresponderá a 20 y 30 puntos de un total de 100respectivamente.

1- Biología Celular (Nivel I: 20 % - Nivel II: 30 %)

*Atomos y Moléculas (inorgánicas y orgánicas). Niveles de organización biológica. Estructura e importancia del agua para los seres vivos (capilaridad, tensión superficial, etc.). Moléculas orgánicas, estructura y función de carbohidratos, lípidos, proteínas, ácidos nucleicos: RNA y DNA. Modelo de Watson y Crick. Enzimas: definición y ejemplos.

*Átomos y moléculas, (inorgánicas y orgánicas, tipos de enlaces y reacciones químicas). Niveles de organización biológica. Estructura e importancia del agua para los seres vivos (capilaridad, tensión superficial, etc.). Moléculas orgánicas, estructura y función de: carbohidratos, proteínas, lípidos, ácidos nucleicos (DNA- modelo de Watson y Crick- y RNA), otros componentes importantes: NAD+/NADH; NADP+/NADPH; ADP/ATP). Genes inducibles y reprimibles. Enzimas: definición y cinética. Regulación de la expresión génica en eucariotas y procariotas.

*Organización celular. Formas, tamaños y tipos celulares: células procariotas y eucariotas.

*Organización celular: Forma. Tamaño. Tipos celulares: Procariota y eucariota. Características y diferencias

*Estructura y función/es de: -Límites celulares: membrana y pared celular. Mecanismos de transporte pasivos y activos a través de las membranas. Permeabilidad de las membranas a diversas sustancias. Uniones y comunicacionesintercelulares. -Núcleo: membrana nuclear, nucleoplasma, nucléolo, cromatina, cromosoma,gen.

*Estructura y función de: -Límites celulares: membrana y pared celular. Mecanismos de transporte pasivos y activos a través de las membranas. Permeabilidad de las membranas a diversas sustancias. Uniones y comunicacionesintercelulares. -Núcleo: Membrana nuclear, nucleolo, nucleoplasma, cromatina, cromosomas, genes. Síntesis de ADN. Mutaciones. Síntesis de ARN o transcripción. Síntesis de proteínas o traducción. Regulación génica: concepto de operón. Enzimas inducibles yreprimibles.

-Citoplasma: citosol, mitocondrias, plástidos, peroxisomas, glioxisomas, retículo endoplasmático liso y rugoso, complejo de Golgi, lisosomas, ribosomas, vacuolas, vesículas, centríolos, citoesqueleto. Cilios, flagelos, pseudópodos.

-Citoplasma: Hialoplasma, citoesqueleto, mitocondrias, retículo endoplásmico liso y rugoso, ribosomas, aparato de Golgi, lisosomas, vacuolas, plástidos (cloroplastos, cromoplastos, leucoplastos). Cilios, flagelos ypseudópodos.

-Metabolismo celular: Células autótrofas y heterótrofas. Fotosíntesis y respiracióncelular.

-Metabolismo celular: Células autótrofas y heterótrofas. Flujo energético: Primera y segunda ley de la termodinámica. Fotosíntesis y respiración celular (ecuaciones generales y descripción de las fases de estos procesos).

-Ciclo celular. Interfase y división celular. Mitosis y meiosis: fases e importancia biológica. Concepto de haploidía y diploidía. Espermatogénesis y ovogénesis.

-Ciclo celular. Interfase y división celular. Mitosis y meiosis: fases e importancia biológica. Concepto de haploidía y diploidía. Espermatogénesis y ovogénesis.

CONTENIDOS TEÓRICOS PARA LA XXIX OAB

Genética: objeto de estudio. Aportes de Mendel (Leyes): Ejercicios de aplicación. Mutaciones: concepto y clasificación. *Biotecnología moderna: Concepto y nociones generales de su aplicación (clonación-organismos transgénicos-terapia génica) *Virus: estructura básica

Genética: Primera y segunda ley de Mendel. Modificaciones a las leyes de Mendel (alelos múltiples, codominancia, ausencia de dominancia, genes letales) Excepciones a la ley de Mendel (ligamiento y recombinación). Código genético y Proyecto Genoma Humano (historia, técnicas empleadas, resultados obtenidos). *Conceptos de Ingeniería Genética: Amplificación (clonación molecular) de ADN in vivo (células) e in vitro (PCR- Reacción en Cadena de la Polimerasa). Técnicas moleculares: hibridación (Southern, Northern, Western, hibridación en colonia o en calvas), electroforesis. *Virus.

Microscopía: Nociones básicas de microscopía

óptica y electrónica. Aportes históricos a la biología celular: Leeuwenhoek, Hooke, Virchow, Koch (postulados). Origen de la vida: diferentes explicaciones: generación espontánea, Pasteur, Redi, Oparín, Miller, Arrhenius.

Microscopía: tipos de microscopios y poder de

resolución. Aportes históricos a la biología celular: Leeuwenhoek, Hooke, Virchow, Koch (postulados). Origen de la vida: diferentes explicaciones: generación espontánea, Redi, Oparín, Miller, Arrhenius. Metabolismo microbiano. Pasteur y la refutación de la generación espontánea. Vacunas. Diagnóstico de enfermedades microbianas: Postulados de Kotch. Elementos genéticos móviles: plásmidos y conjugación/ transformación. Transposones (concepto). Resistencia a antibióticos en bacterias. Propiedades generales de los virus. Tipos de virus. Replicación viral. Ciclo lítico y lisogénico. Fagos: el fago lambda. Flia. retrovirus: Transcriptasa reversa y VIH. Técnica de diagnóstico por ELISA (enzima inmunoensayo). Ingeniería genética: Enzimas de restricción: origen y utilidad. Electroforesis para el estudio de DNA (en geles de agarosa) y proteínas (geles de poliacrilamida). Biotecnología: concepto y aplicaciones.

2- Biología de los organismos (Nivel I y II: 40%)

a) Características, clasificación taxonomía y sistemática de los organismos

Niveles de organización. Taxonomía: sistema de nomenclatura binomial. Taxón. Categoría y jerarquía taxonómica. Sistemática, filogenia: homología y analogía.

Niveles de organización. Conceptos de taxonomía, clasificación y sistemática filogenia: homología y analogía. Linneo y el desarrollo de las clasificaciones.

Concepto de especie y de biodiversidad. Concepto biológico y tipológico de especie y de biodiversidad.

Clasificación biológica. Características de los Reinos de acuerdo a: tipo celular, nº celular, forma de nutrición y de reproducción, rol ecológico. Dominios: Bacteria, Archaea y Eukarya. Procariotas: Reinos Eubacteria y Archaeobacteria. Semejanzas y diferencias. Grupos no clasificados: Líquenes y virus. Protistas: Características diferenciales de los principales grupos de protistas. Euglenophyta, Chrysophyta, Chlorophyta, Mastigophora, Sarcodina, Ciliophora.

Fungi: Características principales del reino. Relaciones simbióticas de los hongos. Plantae: Etapas principales en la evolución de las plantas verdes. Características de Briophyta, Pterophyta, Pinophyta y Magnoliophyta (Monocotiledóneas y Dicotiledóneas). Ciclos biológicos.

Animalia: (mesozoos y metazoos), características diagnósticas de los phyla; características del plan corporal: número de capas embrionarias, simetría, metamería, celoma, tubo digestivo, cefalización, ejemplos: Porifera, Cnidaria. Plathyelmithes, Nemathelmintes, Annelida, Mollusca, Arthropoda (con énfasis en insectos), Equinodermata, Chordata: características diferenciales de los grupos incluídos.

Dominios: Bacteria, Archaea y Eukarya. Reinos: Arquebacteria, Eubacteria, Protista (Características diferenciales de los principales grupos de protistas. Euglenophyta, Chrysophyta, Chlorophyta, Mastigophora, Sarcodina, Ciliophora. Ciclos vitales de protozoos asociados a zoonosis, formas de reproducción), Fungi, Plantae, Animalia. Grupos no clasificados: Líquenes y virus. Características diferenciales de los distintos grupos (tipo celular, nº celular, forma de nutrición y de reproducción, rol ecológico). Fungi: Características principales del reino. Relaciones simbióticas de los hongos. Características distintivas de Ascomicetes, Basidiomicetes, Zigomicetes. Plantae: Etapas principales en la evolución de las plantas verdes. Características de Briophyta, Pterophyta, Pinophyta y Magnoliophyta (Monocotiledóneas y Dicotiledóneas). Ciclos biológicos. Animalia: (mesozoos y metazoos), características diagnósticas de los phyla; características del plan corporal: número de capas embrionarias, simetría, metamería, celoma, tubo digestivo, cefalización, ejemplos: Porifera, Cnidaria. Plathyelmithes, Nemathelmintes, Annelida, Mollusca, Arthropoda (con énfasis en insectos), Equinodermata, Chordata: características diferenciales de los grupos incluídos. Características de protostomados, deuterostomados, enterocelomados y esquizocelomados. Ejemplos.

b) Anatomía y Fisiología de los vegetales

Estructura y función de tejidos embrionarios y adultos y sistemas de tejidos yórganos.

*Fotosíntesis. Transpiración. Intercambio gaseoso, hoja: estructura, función de estomas. *Transporte de agua, minerales y productos de fotosíntesis: raíz y tallo: estructura y disposición de los tejidos vasculares. *Reproducción asexual. Reproducción sexual (estructura de la flor, polinización y fecundación). Alternancia de generaciones. *Crecimiento y desarrollo: germinación.

Características morfofisiológicas y adaptaciones de tejidos y órganos. Procesos de reproducción asexual y sexual (estructura de la flor, polinización y fecundación). Alternancia de generaciones. Origen de la semilla dotación cromosómica de cada una de sus partes y tipos (endospermadas y exendospermadas). *Crecimiento y desarrollo: germinación. Crecimiento primario y secundario, transporte de distintas sustancias en las plantas. *Estructura y función del tejido meristemático (meristemas primarios y secundarios) y de los tejidos adultos, sistemas de tejidos y órganos vegetativos y reproductivos. *Potencial agua. Potencial de turgencia. Potencial osmótico. Potencial mátrico. Plasmólisis y turgencia. *Fotosíntesis. Principales mecanismos y fases de la misma. Estructura y función del cloroplasto. Transpiración. Estructura y función de estomas, Intercambio gaseoso. *Transporte de agua y minerales por xilema (absorción activa: teoría de la presión radical. absorción pasiva: teoría coheso-tenso-transpiratoria) y productos de fotosíntesis por floema. Flujo masal.

Respuestas de las plantas y regulación de crecimiento. Tropismos. Hormonas Vegetales. Adaptaciones y modificaciones especiales. Respuestas de las plantas a los estímulos.

Principales hormonas vegetales: auxinas, citocininas, giberelinas, etileno, ácido abscísico. Principales respuestas a los estímulos: fotoperiodicidad; movimiento de las plantas. Tropismos y respuestastáctiles.

c) Anatomía y Fisiología de los animales

Tejidos animales. Tejidos animales. Epitelial, conectivo, muscular ynervioso.

Tejidos animales. Epitelial, conectivo, muscular y nervioso. Tejidos conectivos especializados: sangre (células sanguíneas en mamíferos), cartílago y hueso.

Sostén y locomoción. Concepto de sostén. Esqueletos internos (endoesqueletos) y exoesqueletos. Sistema osteo-artro-muscular: clasificación de huesos, articulaciones y músculos. El esqueleto humano.

Sostén y locomoción. Concepto de sostén. Esqueletos internos (endoesqueletos) y exoesqueletos. Esqueletos hidrostáticos Sistema osteo-artro-muscular: clasificación de

huesos, articulaciones ymúsculos. Músculos: mecanismo de contracción muscular.

Nutrición: concepto. Anatomía y función de los órganos correspondientes a los sistemas: digestivo, circulatorio, excretor y respiratorio con énfasis en humanos. Adaptaciones a ambientes acuáticos y terrestres.

Nutrición: concepto. Anatomía y fisiología de cada uno de los órganos correspondientes a los sistemas: digestivo, circulatorio, excretor y respiratorio.

Se enfatizarán de cada sistema lo siguiente: Digestivo. Adaptaciones evolutivas del aparato digestivo de los vertebrados (dentarias, gástricas o intestinales,simbióticas) Excreción y osmorregulación. Adaptaciones a ambientes acuáticos y terrestres. Respiración. Branquias en animales acuáticos, sistema traqueal, sistema respiratorio en los mamíferos, pulmones. Circulatorio. Circulación en invertebrados. Sistemas cerrados y abiertos. Relación del sistema circulatorio con el linfático. Sistema cardiovascularen vertebrados.

Sistema Nervioso. Células del tejido nervioso: estructura de las neuronas. Neuronas implicadas en el arcoreflejo. Clasificación del sistema nervioso en vertebrados: Sistema nervioso central (encéfalo y médula). Sistema nervioso periférico. Sistema nervioso autónomo (simpático yparasimpático). Sistemas nerviosos en invertebrados: red nerviosa difusa, en escalera, ganglionar.

Sistema Nervioso. Células del tejido nervioso: Neuronas y principales células de sostén (glia). Potencial de acción y sinapsis química. Arco reflejo. Clasificación del sistema nervioso en vertebrados: Sistema nervioso central (encéfalo y médula). Sistema nervioso periférico. Sistema nervioso autónomo (simpático y parasimpático). Funciones de la médula y de los órganos que constituyen el encéfalo. Protección del sistema nervioso: meninges y líquidocefalorraquídeo. Desarrollo embrionario: regiones encefálicas embrionarias y regiones encefálicas en eladulto. Sistemas nerviosos en invertebrados: red difusa, en escalera, ganglionar.

Sistemas sensoriales. Clasificación de los receptores sensoriales de acuerdo a la energía que receptan: mecanorreceptores, fotorreceptores, Quimioreceptores.

Sistemas sensoriales. Características de: Mecanorreceptores (audición, equilibrio). Quimiorreceptores (gusto, olfato). Fotorreceptores (visión) Termorreceptores y receptores deldolor (nociceptores).

Sistema Endócrino. Concepto de hormona. Mecanismos de retroalimentación positiva y negativa. Glándulas endócrinas (ubicación anatómica, hormonas que producen y acción sobre órganos o tejidos diana): hipófisis, tiroides, paratiroides, páncreas, suprarrenales, testículos y ovarios.

Sistema Endócrino. Concepto de hormona. Concepto de hormona trópica. Naturaleza química de las hormonas. Mecanismos de acción hormonal. Ejehipotálamo-hipófisis. Glándulas endócrinas (ubicación anatómica, hormonas que producen y acción sobre órganos o tejidos diana): hipófisis (lóbulo anterior y posterior), tiroides, paratiroides páncreas, suprarrenales (control del estrés), testículos y ovarios. Hormonas antagonistas (control de la glucemia y control de la calcemia). Neurosecreción: Regulación hormonal del desarrollo de los insectos.

Reproducción y desarrollo. Reproducción asexual (fisión binaria, fisión múltiple, fragmentación). Reproducción sexual en animales. Sistema reproductor femenino y masculino en vertebrados con énfasis en humanos. Ciclo menstrual y hormonas implicadas. Anticoncepción: concepto. Enfermedades de transmisión sexual(ETS).Sida. Concepto de fecundación y desarrollo embrionario. Desarrollo en humanos: embrión, membranas extraembrionarias y placenta.

Reproducción y desarrollo. Reproducción asexual (fisión binaria, fisión múltiple, fragmentación). Partenogénesis. Reproducción sexual en animales. Anatomía y fisiología del sistema reproductor femenino y masculino con énfasis en humanos. Ciclo uterino (menstrual) y ciclo ovárico. Hormonas implicadas. Concepto de fecundación. Fecundación interna y externa. Formación del cigoto. Desarrollo embrionario: segmentación, gastrulación y organogénesis. Formación de tejidos embrionarios (Ectodermo, mesodermo, endodermo). Embriones diploblásticos ytripoblásticos. Huevo amniota (reptiles, aves y mamíferos). Desarrollo en humanos: embrión, membranas extraembrionarias y placenta.

Respuesta inmune. Órganos del sistema inmune.

Diferencia entre el mecanismo de defensa específico (Linfocitos T y B, anticuerpos) y el mecanismo de defensa inespecífico (barreras anatómicas, proceso inflamatorio).

Respuesta inmune. Órganos del sistema inmune.

Mecanismo de defensa específico (Linfocitos T y B), estructura de los anticuerpos: regiones conservadas y variables. Anticuerpos monoclonales. Mecanismo de defensa inespecífico (barreras anatómicas, proceso inflamatorio). Enfermedades autoinmunes: concepto y ejemplos.

3- Ecología, Etología y Evolución (Nivel I: 40% -Nivel II: 30 %)

Ecología: objeto deestudio. * Estructura diversidad y dinámica de las poblaciones y comunidades. *Población. Estructura: tamaño, densidad, distribución, sexo, edad. Dinámica: crecimiento, modelos exponencial y logístico. Natalidad, mortalidad, migración. Factores limitantes que regulan el tamaño poblacional: dependientes e independientes de la densidad. Capacidad de carga.

*Comunidad. Concepto. Interrelaciones inter e intraespecíficas en las comunidades. Hábitat y nicho ecológico. Principio de exclusión competitiva.

*Ecosistemas. Factores bióticos y abióticos (ambiente físico: agua y sus propiedades, suelo, temperatura, acidez, luz, nutrientes inorgánicos). Ciclo de la materia y flujo de la energía. Niveles

Ecología: Objeto de estudio. * Estructura y dinámica de la población ycomunidad.

* Población: Estructura: tamaño, densidad, distribución, sexo,edad. Dinámica: crecimiento, modelos exponencial y logístico. Natalidad, mortalidad, migración. Factores limitantes que regulan el tamaño poblacional: dependientes e independientes de la densidad. Capacidad de carga. Estrategias de crecimiento. Estructura de la población humana por sexo y edad. *Comunidad: Concepto. Interrelaciones en las comunidades: Competencia, depredación, Simbiosis: parasitismo, mutualismo y comensalismo. Sucesión. Capacidad de carga. Biodiversidad: abundancia relativa, variedadespecífica.

*Ecosistema: Componentes bióticos y abióticos (ambiente físico: agua y sus propiedades, suelo, temperatura, acidez, luz, nutrientes inorgánicos). Cadenas y redes alimenticias: Nivel trófico,

tróficos. Cadenas y redes alimentarias. Pirámides ecológicas: numéricas, de biomasa, de energía. Ciclos biogeoquímicos (C, H2O, N, P). Ecosistemas acuáticos: de agua dulce y marina. Ecosistemas terrestres. *Adaptaciones. *Sucesión ecológica: primaria y secundaria.

productores, consumidores y descomponedores. Flujo de energía: Pirámides de biomasa y energía. Ciclos biogeoquímicos. Hábitat y adaptación de los organismos al ambiente. Nicho ecológico. *Adaptaciones. *Sucesión ecológica: primaria y secundaria.

Etología: objeto de estudio. Comportamiento. Ciclos de comportamiento. Comportamiento innato. Patrones de acción fija Aprendizaje (impronta y habituación), características de cada tipo. Ecología del comportamiento: Comportamiento Social y altruismo. Territorialidad.

Etología. Objeto de estudio. Comportamiento. Ciclos de comportamiento. Comportamiento innato. Aprendizaje (impronta y habituación). Las bases genéticas del comportamiento. Patrones de acción fija. Aprendizaje, características de cada tipo. Tipos de comunicación. Ritmo circadiano. Ecología del comportamiento: Sociedades de insectos, sociedades de vertebrados. Comportamientos asociados a selección sexual, cambios del ambiente: Migración, selección de alimento. Altruismo. Territorialidad, agresión y dominancia.

Evolución. Ideas evolutivas en la modernidad: aportes desde la geología; Catastrofismo. Lamarck. Teoría de Darwin-Wallace: mecanismo de la selección natural. Pruebas de la evolución. Patrones de evolución. Teoría Sintética. Microevolución (concepto). Macroevolución. Mecanismos de especiación: alopátrica, simpátrica, parapátrica. Origen y evolución de los homínidos y el hombre.

Evolución: La evolución antes de Darwin-Wallace, aportes de otros naturalistas como Lamarck. Teoría de la selección natural. Tipos de selección natural. Evidencias y mecanismos de la evolución. Teoría Sintética. Especiación: Simpátrica, alopátrica, aislamiento genético. Evidencia del registro fósil (Ritmo de la evolución). Micro y macroevolución. Origen y evolución de los homínidos y el hombre. Genética de poblaciones: Ley de Hardy- Weinberg. Caracteres taxonómicos y reconstrucción filogenética. (homologías y analogías) Taxonomía evolutiva tradicional: taxonomía fenética. Sistemática filogenéticacladística.

Biogeografía: Historia de la vida sobre la Tierra (eras). La edad de la Tierra. Características de los biomas naturales actuales en Argentina. Parques nacionales**. Contaminación, impacto ambiental. Conservación y protección de la naturaleza. Concepto de Desarrollo sustentable.

Biogeografía: Historia de la vida sobre la Tierra (eras). La edad de la Tierra. Lyell y Cuvier. Características de los biomas naturales actuales en Argentina. Parques nacionales**. Contaminación, impacto ambiental. Conservación y protección de la naturaleza. Teoría de desarrollo sustentable.

**Para Parques Nacionales puede consultar: http://www.parquesnacionales.gob.ar

Bibliografía sugerida.

CURTIS, H. Y S. BARNES 2000. Biología. Ed. Médica Panamericana. 6ta. ed.

CURTIS, H., S. BARNES, A. SCHNEK Y G. FLORES. 2006. Invitación a la Biología.Ed. Médica Panamericana.

6ta.

PURVES, W; D. SADAVA; G. H. ORIANS Y H. CRAIG HELLER. 2003. Vida. La ciencia de la Biología. Ed.

Médica Panamericana. 6ta. ed.

RICKLEFF, R.E. 1998. Invitación a la Ecología. Ed. Médica Panamericana. 4ta. ed.

SOLOMON, E. P; L. R. BERG y D. W. MARTIN, 1999. Biología. Ed. Mc Graw Hill Interamericana 5ta. ed.

MADIGAN, M T., J. M. MARTINKO Y J. PARKER. 1996. BROCK. Biología de los Microorganismos. 8va.

ed. Prentice Hall.

HICKMAN, C., L. ROBERTS y A. PARSON. 2002. Principios integrales de Zoología.

Ed. Mc Graw Hill Interamericana 11ma. ed.

CONTENIDOS (DESTREZAS) PARA PRÁCTICOS XXIX OAB

NIVEL I

I- PROCEDIMIENTOS BIOLÓGICOS

*Análisis exomorfológico de animales y plantas.

*Disección de animales y flores para diagrama y fórmula floral.

*Cortes a “mano alzada” de tallos, hojas y raíces.

*Identificación de pigmentos vegetales mediante técnicas sencillas.

*Disección de animales pequeños acuáticos y terrestres.

*Observación de pequeños invertebrados con la lupa.

*Estimación de parámetros poblacionales.

*Estimación de la biomasa.

*Uso de claves dicotómicas.

*Identificación de organismos mediante el uso de claves dicotómicas.

II- PROCEDIMIENTOS FÍSICOS YQUÍMICOS

* Preparación de soluciones y diluciones a partir de la solución madre.

*Manejo de volúmenes pequeños.

*Pruebas estándares de monosacáridos, polisacáridos, lípidos, proteínas.

*Manejo de instrumental volumétrico (ej: pipetas, probetas, balones, vaso precipitado).

III- PROCEDIMIENTOS ESTADÍSTICOS

*Estimaciones de la media, rango, mínimo, máximo, moda, mediana, porcentaje.

*Diagramación e interpretación de gráficos.

Importante: Para orientarlos en el trabajo práctico de los alumnos se recomienda en entrenamiento en la

manipulación de:

*balanza (para masas pequeñas)

*aguja histológica y pinza (para organismos pequeños)

*bureta, pipeta u otro material (para enrasar precisamente)

*cronómetro (para estimación de tiempos)

*protocolo de trabajo (para identificar correctamente sus pasos)

*bisturí u hoja de afeitar (para cortes sencillos)

*portaobjeto y cubreobjeto (para montar correctamente una muestra a observar en microscopio)

*organismos pequeños (para observación directa y descripción de características)

*calculadoras no científicas (para cálculos sencillos)

*regla y lápiz (para elaboración de gráficas a escala en hojas lisas)

*gráficos (para interpretación de datosimportantes)

*colorantes varios (para reconocer virajes decolor)

*microscopio (para focalizar correctamente un preparado)

NIVEL II

I- PROCEDIMIENTOSBIOLÓGICOS

*Maceración y técnica de aplastamiento de tejidos para observación en microscopio.

*Teñido de células y preparación de extendidos para observación en microscopio.

*Análisis exomorfológicos de animales y plantas.

*Disección de plantas: flores (deducción de la fórmula floral), hojas, frutos y semillas.

*Corte a “mano alzada” de tallos, hojas y raíces.

*Teñidos (por ejemplo, lignina) y realización de preparados de tejidos de plantas.

*Identificación de pigmentos vegetales mediante técnicas sencillas.

*Experimentos sencillos de demostración de procesos fisiológicos en vegetales.

*Preparación y montaje de pequeños invertebrados para la observación de estructuras en la lupa.

*Técnicas de uso común en Fisiología Animal.

*Estimación de diversidad biológica: abundancia relativa, variedad específica, densidad poblacional.

*Estimación de la biomasa.

*Uso y construcción de claves dicotómicas.

*Identificación de las familias más comunes de plantas con flores.

*Identificación de órdenes de insectos.

*Identificación de fila y clases de otros organismos.

II- PROCEDIMIENTOS FÍSICOS YQUÍMICOS

*Técnicas de separación; cromatografía, filtrado, electroforesis.

*Pruebas estándares de monosacáridos, polisacáridos, lípidos, proteínas.

*Titulación.

* Preparación de soluciones y diluciones a partir de la solución madre.

*Manejo de instrumental volumétrico (ej: pipetas, probetas, balones, vaso precipitado, micropipetas).

III- PROCEDIMIENTOSESTADÍSTICOS

*Probabilidad y distribuciones de probabilidad (test de Student, Chi cuadrado).

*Estimaciones de la media, mediana, porcentaje, varianza, desviación estándar, error estándar.

*Diagramación e interpretación de gráficos.

IV- ASPECTOS METODOLÓGICOSGENERALES

*Observación y análisis de datos.

*Elaboración e interpretación de conclusiones sencillas.

*Interpretación del método científico a través de problemas sencillos.

*Interpretación de protocolos de trabajos prácticos.

*Extrapolación de datos de lenguaje matemático a lenguaje coloquial y viceversa.

Importante: Para orientarlos en el trabajo práctico de los alumnos se recomienda en entrenamiento en la

manipulación de:

*balanza (para masas pequeñas)

*aguja histológica y pinza (para organismos pequeños)

*bureta, pipeta u otro material (para enrasar)

*cronómetro o timer (para estimación de tiempos)

*protocolo de trabajo (para identificar correctamente sus pasos)

*bisturí u hoja de afeitar (para cortes sencillos)

*portaobjeto y cubreobjeto (para montar correctamente una muestra a observar en microscopio)

*organismos pequeños (para observación directa y descripción de características)

*calculadoras no científicas (para cálculos sencillos)

*regla y lápiz (para elaboración de gráficas a escala en hojas lisas)

*gráficos (para extracción de datos importantes)

*colorantes varios (para reconocer virajes)

*microscopios (para enfocar correctamente)

EJERCICIOS PARA NIVEL I

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 1 1- La fenilcetonuria es una enfermedad hereditaria causada por un alelo recesivo. Si un hombre y una mujer que son sanos, pero portadores, tienen un hijo. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). a) Existe una probabilidad del 100 % de que su hijo tenga la enfermedad. b) La probabilidad de que tenga la enfermedad es del 50%. c) Existe un 25 % de probabilidad de que tenga la enfermedad. d) Heredará la enfermedad solamente si es varón. e) Tiene más probabilidades de ser sano que de tener la enfermedad. 2- Observar la siguiente representación de una célula en división y responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) Es una célula en mitosis. c) Es una célula bacteriana. d) Su número somático es 2n= 6. a) Su número gamético es 2n = 4. e) Es una célula en meiosis I. 3- En la siguiente figura se muestra la cantidad de DNA medida en pares de bases (pb) de distintas especies. Analizar los datos y responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) Los procariotas poseen menor cantidad de DNA que los eucariotas. b) Los unicelulares poseen cantidades de DNA similares entre sí. c) Los heterótrofos poseen mayor cantidad de DNA que los autótrofos. d) Los unicelulares poseen menor cantidad de DNA que los pluricelulares. e) A mayor tamaño del organismo, más cantidad de DNA por célula. 4- Las siguientes imágenes hacen referencia al tropismo en plantas. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a)Un tropismo es una respuesta de crecimiento que implica la curvatura de una parte de la planta en el mismo sentido en el que actúa un estímulo. b) Un tropismo es una respuesta de crecimiento que implica la curvatura de una parte de la planta en el mismo sentido o en sentido contrario en el que actúa un estímulo. c) El fototropismo implica 4 pasos secuenciales: La percepción de la gravedad, la producción de señales en células sensoras de luz, la transducción de señales dentro de células sensoras y entre células sensoras y por último la respuesta. d) El fototropismo resulta del hecho de que, bajo la influencia de la luz, las giberelinas migran del lado iluminado al lado oscuro del ápice caulinar. Las células del lado oscuro, que contienen más giberelinas, se alargan más rápidamente que las del lado iluminado, haciendo que la planta se curve hacia la luz. e) En las cuatro imágenes podemos identificar únicamente ejemplos de tropismo positivo hacia el agua, la gravedad y la luz.

5- Las siguientes son imágenes de distintos tejidos animales, responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) El de revestimiento representa una cubierta para el cuerpo, este tipo de tejido se clasifica de acuerdo a la forma que tienen las células y sólo pueden formar una capa de células. b) El tejido epitelial de revestimiento, de acuerdo al número de capas, puede ser simple, pseudoestratificado y pluriestratificado. c) El tejido muscular liso se encuentra formado por células que son largas y cada una de ellas posee numerosos núcleos, el movimiento de este tejido es involuntario por ello lo encontramos en órganos como el estómago y el intestino. La imagen tres corresponde a otro tipo de tejido muscular que es el tejido muscular estriado. d) El tejido nervioso se encuentra conformado por neuronas, este tejido se especializa en la recepción, procesamiento y transmisión de la información. e) Los principales tipos de tejidos conectivos especializados son: el linfático, sanguíneo, óseo y cartilaginoso. 6- El siguiente experimento fue realizado por Charles Darwin y su hijo Francis. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

Al analizar los resultados se puede concluir que: a) La plántula presenta un fototropismo positivo. b) La plántula no crece. c) La cubierta opaca es la que inhibe la curvatura. d) Para que se curve, la luz tiene que incidir en el ápice. e) Al cubrir cualquier parte del coleptilo, no se curva.

7- Durante el almuerzo una persona ingiere una porción de ravioles de verdura con salsa y una porción de pollo. El alimento pasa desde la boca, a través de la faringe y del esófago hacia el estómago y el intestino delgado. Los materiales no digeridos circulan por el intestino grueso (colon ascendente, transverso y descendente), se almacenan brevemente en el recto y se eliminan a través del ano. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). a) La pasta corresponde al grupo de los hidratos de carbono y la carne representa proteínas. Se procesa inicialmente en la boca, luego se mueve a través del esófago hasta llegar al estómago. En el estómago los jugos gástricos comienzan la digestión de los alimentos, pero la mayor parte ocurre en la porción superior del intestino delgado, denominada yeyuno. Los alimentos que no son digeridos circulan por el intestino grueso, se almacenan en el recto y se eliminan a través del ano. b) La pasta corresponde al grupo de las proteínas, la mayor parte de la digestión de éstas ocurre en la porción media del intestino delgado, denominada íleon. Las proteínas se degradan a dipétidos o aminoácidos individuales. Los alimentos que no son digeridos circulan por el intestino grueso, se almacenan en el recto y se eliminan a través del ano. El intestino grueso contiene bacterias que viven en simbiosis y que son la fuente de ciertas vitaminas que el ser humano no puede sintetizar. c) La pasta corresponde al grupo de los hidratos de carbono, en la salsa encontramos verduras y la carne representa proteínas y lípidos. La mayor parte de la digestión ocurre en la porción superior del intestino delgado, denominada duodeno. Aunque existe una amilasa salival no actúa demasiado por el poco tiempo que permanece el alimento en la boca, es por ello que en el intestino se produce la degradación de almidón por estas enzimas. d)En el proceso de digestión, las células que se encuentran en el duodeno, estimulan al páncreas y al hígado para producir sustancias que ayudan durante este proceso. El páncreas exocrino secreta agua, enzimas, iones que actúan en el intestino delgado. También produce una gran cantidad de bicarbonato que actúan en el duodeno neutralizando la acidez proveniente del estómago. Por otra parte, el hígado produce la bilis, que se almacena en la vesícula biliar, esta sustancia participa en la digestión de los lípidos. e) Durante el proceso de digestión, aquellas células que se encuentran en el duodeno, estimulan al páncreas y al hígado a producir sustancias que ayudan durante este proceso. El páncreas endocrino secreta agua, iones y enzimas que actúan en el intestino delgado, como la amilasa. A su vez, también produce una gran cantidad de bicarbonato que actúan neutralizando la acidez proveniente del estómago. Por otra parte, el hígado produce la bilis, que se almacena en la vesícula biliar, esta sustancia participa en la digestión de los lípidos.

8- Las hormonas son moléculas señalizadoras secretadas en una parte de un organismo, que son transportadas a otros órganos y tejidos, donde ejercen efectos específicos. Las principales glándulas endocrinas de los vertebrados incluyen la hipófisis, el hipotálamo, la tiroides, las paratiroides, la suprarrenal, el páncreas (también una glándula exocrina), la pineal y las gónadas (ovarios o testículos). Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). a) En la función de la nefrona participan hormonas, principalmente la antidiurética (ADH), la aldosterona y el factor natriurético atrial. La ADH es producida por la hipófisis, la aldosterona en la corteza suprarrenal y el factor natriurético atrial es liberado por las aurículas del corazón. La presencia de la hormona ADH determina la concentración de la orina. Cuando se excreta una orina más diluida se debe a la ausencia de ADH, ya que esta hormona actúa a nivel de las asas de Henle Cuando la pared de este conducto no es permeable no se elimina agua adicional b) Es posible que al no desayunar y pasar varias horas sin ingerir ningún alimento disminuya la concentración de glucosa en sangre, esto estimulará al páncreas a liberar glucagón. Esta hormona estimula la degradación de glucosa y la liberación de esta desde el hígado. c) El calcio en la sangre está mediada por dos hormonas: la PTH (paratiroidea) producida por la paratiroides y la calcitonina secretada por la tiroides. Cuando el nivel de calcio en la sangre es bajo, la glándula paratiroides secreta la paratohormona que va a estimular la liberación de calcio en la sangre y también va a estimular la absorción de calcio en las paredes intestinales y a nivel renal va a evitar su excreción. d) Existen dos sistemas principales de control en los animales que son por un lado el sistema nervioso y por otro el sistema endocrino. Ambos se regulan por medio de retroalimentación. El sistema nervioso proporciona una respuesta más rápida y el endócrino una respuesta más lenta pero prolongada e) Durante la actividad física el gasto cardíaco se puede modificar solamente mediante una acción del sistema nervioso, que involucra el retorno venoso. En este caso las hormonas no participan en su control. 9- El siguiente gráfico muestra la temperatura corporal (T°C) de tres pacientes (A, B y C) durante 6 horas. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) En el paciente C se observa que puede padecer de una infección. b) En el paciente B se observa que se encuentra termorregulado. c) En el paciente A se observa un grado de hipotermia. d) En el paciente A, los mecanismos de ganancia de calor son mayores comparados que con lo de la pérdida de calor. e) Los pacientes A y B presentan una temperatura corporal normal y en estos pacientes los mecanismos de ganancia de calor corporal son mayores que los comparados con los de la pérdida de calor.

10-Observar la siguiente red trófica e indicar si las afirmaciones son verdaderas

(V) o falsas (F).

a) El hornero ocupa el nivel de consumidor primario. b) La energía circula, por ejemplo, desde el cuis a la culebra. c) La energía de la perdiz puede volver a la cortadera. d) El zorro es un consumidor secundario. e) El chimango y el zorro ocuparían la punta de una pirámide trófica.

11-La teoría de Lamarck fue fuertemente criticada por la comunidad científica de su época, principalmente por Cuvier, quien, además de ser un científico de renombre, ocupó el cargo de Inspector General de Educación en Francia. Este y sus contemporáneos insistían en que las especies habían sido creadas de manera independiente y que no cambiaban, sino que permanecían inmutables. Para probarlo, hicieron varios experimentos. Uno de ellos consistió en amputar la cola a ratones, que, aún después de 20 generaciones de haber sido sometidos a tal cambio, producían descendencia con cola.Responder si las afirmaciones en base a lo que demuestra el experimento son verdaderas (V) o falsas (F). a) Algunas especies no evolucionan b) Las ideas de Cuvier eran ciertas c) Las características adquiridas no se heredan d) La cola de los ratones se regenera e) Todas las ideas de Lamarck eran erróneas 12) Dos plantas acuáticas (LemnapolyrrhizayLemnagibba) fueron cultivadas en el laboratorio, por separado y luego juntas. Observar el siguiente gráfico del crecimiento que tuvo cada población en ambos experimentos y responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) L. polyrrhizatiene mayor crecimiento en ambos cultivos b) L. gibba es más efectiva en la competencia c) Este experimento demuestra que los nichos ecológicos de estas especies son totalmente diferentes d) L. polyrrhiza logra excluir a L. gibba después de un mes e) Ambas especies duplican su producción cuando crecen solas

13- Las espinas de algunos cactus son hojas modificadas; en cambio, las espinas del moradillo (Schinusfasciculatus) se consideran, por su origen embrionario, ramas modificadas. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). Estas estructuras:

a) Son homólogas. b) Son análogas. c) Son una adaptación al clima árido. d) Se forman cuando disminuyen las precipitaciones. e) Son desarrolladas por las plantas cuando son comidas por un herbívoro. 14-Nikolaas Tinbergen estudió el comportamiento del pez espinoso (Gasterosteusaculeatus). Durante la época de reproducción el vientre de los machos de esta especie se torna de color rojo. Para su estudio, el etólogo, realizó modelos del pez de formas diferentes, pero todos con la superficie ventral pintada de rojo (a), y un modelo exacto del pez macho sin color (b)

Los primeros modelos (a) generaron reacciones intensas de agresividad en los machos y de atracción en las hembras. Mientras que el modelo b produjeron una reacción moderada a nula. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). Este estudio demostró que: a) La reproducción en los peces es un comportamiento aprendido. b) Las hembras reconocen la forma del macho. c) Los machos agreden a todos los peces en su territorio. d) Es el color el que desencadena el comportamiento de apareamiento en las hembras. e) Es una forma determinada la que despierta la agresividad en los machos.

15- En una marisma salada se realizó un experimento para determinar cuál es el nutriente limitante. Se dividió el terreno en cuatro grupos experimentales: en el primer grupo agregaron fósforo, en el segundo nitrógeno, en el tercero fósforo y nitrógeno, y en el cuarto grupo (grupo control), no se agregaron fertilizantes. Responder si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F). El siguiente gráfico muestra los resultados:

a) En el grupo que recibió sólo fósforo hubo un aumento notable de la producción de biomasa b) El grupo que recibió sólo nitrógeno superó en producción al grupo no fertilizado c) Tanto el agregado de nitrógeno como de fósforo no modifica la producción de biomasa d) El nitrógeno es el nutriente limitante e) El fósforo es el nutriente limitante

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 2

16- La formación de las células de la sangre se denomina hematopoyesis y se produce tempranamente en el embrión humano, en el hígado y en menor grado en el bazo. Después del nacimiento, todas las células sanguíneas (excepto los linfocitos) se sintetizan sólo en la médula ósea y se originan a partir de un tipo único de células. Teniendo en cuenta la enumeración de la siguiente imagen, identificar el orden correcto de los nombres de las células durante el proceso de diferenciación.

a) 1.Células hematopoyéticas 2. Células progenitoras linfoideas 3. Células progenitoras mieloideas 4. Megacariocitos 5. Eritrocitos 6. Linfocitos B.7. Linfocitos T 8. Plaquetas.9. Monocitos 10. Neutrófilos 11. Eosinófilos 12. Basófilos 13. Macrófagos. b) 1.Células progenitoras 2.Linfocitos B 3.Linfocitos T 4.Células progenitoras linfoideas 5.Células progenitoras mieloideas 6.Glóbulos Rojos 7.Plaquetas 8.Linfocitos 9. Basófilos 10.Eosinófilos 11.Neutrófilos12. Plaquetas13. Macrófagos. c) 1.Células progenitoras 2.Células progenitoras mieloideas3.Células progenitoras linfoideas 4.Eritrocitos 5.Histaminas 6.Linfocitos B 7.Linfocitos T 8.Macrófagos 9.Megacariocitos 10.Neutrófilos 11.Eosinófilos 12.Basófilos 13.Plaquetas. d) 1.Células madres 2.Glóbulos Rojos 3.Glóbulos blancos 4.Linfocitos B 5.Linfocitos T 6.Plaquetas 7.Plaquetas 8.Macrófagos 9.Megacariocitos 10.Neutrófilos 11.Eosinófilos 12.Basófilos 13. Histaminas. e) 1.Células totipotenciales 2.Células progenitoras mieloideas3.Células progenitoras linfoideas 4.Megacariocitos 5.Glóbulos rojos 6.Linfocitos B 7.Linfocitos T 8.Plaquetas 9.Monocitos 10.Eosinófilos11.Neutrófilos 12.Basófilos13. Macrófagos.

17- Una persona se corta el dedo con un metal, y a partir de allí se desencadena un proceso conocido como “respuesta inflamatoria”. Teniendo en cuenta la siguiente imagen, indicar si las afirmaciones son verdaderas (V) o falsas (F).

a) La histamina, está involucrada en el proceso inflamatorio aumentando el flujo de sangre en la zona de la herida, aumentando la permeabilidad de los capilares y atrayendo a los leucocitos que migran desde los capilares hacia la herida.

b) Las principales células involucradas en la respuesta inflamatoria son los llamados agranulocitos, estos son glóbulos blancos que se clasifican por sus propiedades de coloración como neutrófilos, eosinófilos y basófilos.

c) En la imagen, cercano a los vasos sanguíneos, podemos observar cómo se comienza a formar el coágulo, y esto indica que comienza el proceso de cicatrización.

d) Los eosinófilos son atraídos al sitio de la infección por compuestos químicos liberados por células bacterianas y por células hospedadoras, cuando llegan se transforman en macrófagos adquiriendo un aspecto de mayor tamaño y forma ameboide tal como se ve en la imagen.

e) La respuesta inflamatoria local está acompañada por una respuesta sistémica, que se caracteriza por la inducción de fiebre, aumento de la síntesis de hormonas esteroideas y la síntesis de proteínas hepáticas.

18- A continuación, se muestran tres secciones de Hemogramas, correspondientes a tres pacientes que presentan cicatrización lenta por deficiencias en la coagulación, infección e hipertensión con riesgo coronario.

Determinar qué patología de las enunciadas corresponde a cada paciente.

Marcar con una cruz según corresponda:

Paciente A Paciente B Paciente C

Problemas de cicatrización

Infección

Hipertensión

19- La sangre se puede clasificar en grupos de acuerdo con los antígenos presentes en la superficie de los glóbulos rojos (sistema AB0) y el antígeno D (factor Rh) presente en el plasma. Entrar en el siguiente link:https://www.youtube.com/watch?v=X9HRPdi_pKw Observar cómo se determinan los diferentes grupos sanguíneos. A partir de la técnica explicada en el video, analizar los resultados de 4 muestras de sangre tratadas y determinar a qué grupo pertenece cada una (tipo y factor). Resultados de las muestras:

Marcar para cada muestra (1, 2, 3 y 4) el grupo sanguíneo (A, B, AB,0) y el factor Rh (+ o -)

Muestra Tipo A Tipo B Tipo AB Tipo 0 Factor Rh + Factor Rh -

1

2

3

4

EJERCICIOS PARA NIVEL II

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 1

1- Para el diagnóstico de COVID-19, la técnica más utilizada es la q-RT-PCR (PCR: Cadena en cadena de la polimerasa; q: cuantitativa; RT: transcripción reversa). Para ello, muestras de RNA extraídas de hisopados nasofaríngeos, son sometidas a la amplificación de forma conjunta de 3 genes: Gen X (gen conservado de humanos); Genes Z y W (específicos de SARS-CoV-2). Mientras que la amplificación del gen X se utiliza para corroborar el correcto funcionamiento de la q-RT-PCR, los genes Z y W nos permiten concluir sin las muestras problemas son positivas (+) o negativas (-) para SARS-CoV-2. El análisis de los resultados se realiza comparando las curvas obtenidas para cada gen en cada paciente, con curvas estándares de control interno (control positivo y control negativo). A continuación, se muestran las curvas obtenidas para 5 pacientes (1-5) y para los respectivos controles internos (+) y (-).

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda:

a) Los pacientes 3 y 5 son negativos b) El paciente 1 tiene una mayor carga viral que el paciente 2 c) El paciente 4 es positivo d) El control (-) debería haber dado amplificación para el Gen X e) El paciente 5 debe ser re-hisopado

2-La mastitis bovina es una de las enfermedades que más impacto económico ocasiona en los tambos de Argentina. Tanto el tratamiento como la prevención se basan principalmente en el uso de antibióticos. Esta práctica ha llevado a la selección de cepas resistentes a estos antimicrobianos, con un impacto negativo en la salud animal y humana. En un estudio enfocado en el desarrollo de un producto veterinario que sea amigable con el medio ambiente y tendiente a disminuir el uso de antibióticos en animales, se inocularon cepas de Bacterias del Ácido Láctico (BAL; ej., bacterias del yogurt) en cuartos de ubres bovinas con el fin de estudiar si ocasionaban algún tipo de alteración a nivel histológico. En paralelo se utilizaron cuartos sin inocular (control negativo) y cuartos infectados con Staphylococcus aureus (principal patógeno de mastitis bovina; control positivo). A continuación, se muestran fotografías de cortes histológicos teñidos con Hematoxilina-Eosina correspondiente a cada uno de los tratamientos.

Figura A: Control negativo. B: Inoculado con BAL. C: Control positivo. Círculos indican vasos sanguíneos.

Las flechas indican el epitelio.

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) Un producto con BAL podría ser utilizado de modo local para la prevención o tratamiento de la mastitis bovina. b)Staphylococcus aureus para adherirse e invadir la ubre bovina, causa importantes daños a nivel del epitelio. c) En el cuarto inoculado con BAL y en el control negativo se observa un epitelio cúbico a cilíndrico bi-estratificado con vasos sanguíneos prácticamente vacíos. d) En el control positivo se evidencia escasa presencia celular y baja densidad de polimorfonucleares. e) La virulencia de Staphylococcus aureus se debe a la presencia de mureína en su pared. 3-La salinidad es uno de los factores ambientales que limitan de manera considerable la productividad de los cultivos. Según una estimación de la Organización de las Naciones Unidas de la Alimentación y la Agricultura (FAO), más del 6% del suelo a nivel mundial se ve afectado por la salinidad. Uno de los principales efectos que provoca el estrés salino en las plantas es la reducción de la tasa de crecimiento. Esto es debido principalmente a que reduce la capacidad de la planta para absorber el agua y por lo tanto conduce a un crecimiento más lento; y además puede ingresar en el flujo de agua de la planta (transpiración) y eventualmente dañar las células de las hojas que transpiran, reduciendo aún más el crecimiento. La siguiente Figura muestra el efecto de la salinidad sobre el crecimiento de tallos de dos tipos de plantas que difieren entre sí en la sensibilidad a la sal (adaptado de Munns 2005).

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) En la Fase 1 la salinidad causa reducción en el crecimiento de los tallos debido a un déficit hídrico en la planta, es decir un efecto osmótico. Este efecto es debido a que los iones de la sal retienen el agua en el suelo y no está disponible para la planta. b) En la Fase 2 la sal es absorbida por la planta y causa un efecto tóxico debido a la concentración de iones Na+ y Cl- que se acumulan en los tejidos. Esto provoca trastornos fisiológicos y efectos perjudiciales en el crecimiento de la planta. c) La adición de sal causa una respuesta inmediata, ya que se observa una reducción del crecimiento del tallo de las plantas a las pocas horas de su aplicación. d) La reducción del crecimiento en plantas sensibles y tolerantes es debido a la acumulación de iones en los tejidos de las hojas que inhiben la actividad de algunas enzimas, se acumulan en las paredes celulares y deshidratan a las células. e) Un bajo potencial hídrico del suelo permite que las plantas se adapten osmóticamente acumulando solutos tales como prolina y betaína que ayudan a mantener un gradiente potencial para la entrada de agua a la planta.

4-La capacidad de los microorganismos para generar resistencia a los antibióticos supera a la generación de drogas nuevas y eficientes. Por ello, es fundamental desarrollar nuevos agentes y tratamientos antibióticos para controlar las infecciones bacterianas. Una alternativa a este problema mundial es el uso de nanomateriales con propiedades antimicrobianas. Las nanopartículas de plata (AgNP) se han estudiado ampliamente debido a su efecto antimicrobiano en diferentes organismos. Se realizaron experimentos en cuatro cepas bacterianas, dos gramnegativas: Escherichia coli DH5α (no patógena) y Salmonellaenterica serovar Typhimurium ATCC SC14028 (S. typhimurium) (patógena); y dos grampositivas: Staphylococcus aureus (aislado clínico, patógeno) y Bacillus subtilis (no patógeno). A continuación, se muestra el efecto de los antibióticos solos y en combinación con AgNP sobre el crecimiento de estas bacterias. Los antibióticos utilizados fueron: cloranfenicol (Cm), kanamicina (Km), ampicilina (Amp), aztreonam (Azm) y biapenem (Bpm).

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) Los antibióticos kanamicina y cloranfenicol son los que causan un mayor efecto inhibitorio en el crecimiento de todos los microorganismos evaluados. b) En E. coli la combinación AgNPs-Cm causa un efecto aditivo sobre la inhibición del crecimiento microbiano. c) Las nanopartículas por sí solas causan inhibición significativa del crecimiento de todas las bacterias analizadas. d) El tratamiento con Azitromicina causa un efecto inhibitorio mayor en el crecimiento de las bacterias patógenas en comparación con las no patógenas. e) La mejor alternativa para el tratamiento de infecciones por S. aureus, es utilizar una combinación de AgNPs-Km, ya que presenta un efecto sinérgico.

5-La diabetes mellitus (DM) es un trastorno en el que la glucemia (concentración de azúcar o glucosa en sangre) es excesivamente alta porque el organismo no segrega suficiente insulina para satisfacer su propia demanda.Normalmente la glucosa es metabolizada por las células para producir energía en forma de ATP. La glucosa es obtenida a partir de los alimentos que se ingieren en la dieta, para posteriormente ser distribuida a través de la sangre a todas las células que conforman los órganos y los tejidos. En los mecanismos de regulación del metabolismo de la glucosa, participan dos hormonas secretadas por el páncreas: la insulina y el glucagón. A continuación, se muestra un esquema de la regulación del metabolismo de la glucosa a través de estas hormonas en dos situaciones fisiológicas diferentes: 1- Alimentación rica en hidratos de carbono, 2- Ayuno prolongado

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) Altos niveles de glucosa inducen la secreción de insulina por el páncreas, la cual es utilizada para internalizar glucosa en las células o ser nuevamente almacenada como glucógeno. b) La disminución de los niveles plasmáticos de glucosa inducidos por ayuno prolongado, activan la secreción de glucagón por el páncreas, metabolizando el glucógeno almacenado a moléculas de glucosa para que sea utilizada por el organismo. c) La principal función de la insulina es aumentar el nivel de glucosa en el plasma sanguíneo, a través de la activación de los receptores transportadores de glucosa. Este mecanismo es activado en estadío postprandial. d) La función principal del glucagón es la de estimular la glucogenólisis en el hígado para obtener glucosa cuando se presentan bajos niveles en plasma, tal como sucede en el ayuno prolongado e) Insulina y glucagón tienen un efecto sinérgico en el metabolismo de la glucosa. 6-La siguiente imagen muestra el mecanismo por el cual las membranas apicales de las células del intestino delgado o las membranas de células renales absorben la glucosa desde la luz del intestino o de los túbulos renales, aunque las concentraciones extracelulares sean bajas.

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) El mecanismo de entrada de glucosa a las células es por transporte activo. b) Gracias a la acción de la bomba Na+-K+ se expulsan iones Na+ a través de la membrana basal de la célula y de este modo se mantiene baja la concentración de Na+ intracelular. c) En la región apical de la membrana se encuentra una permeasa pasiva cotransportadora de Na+ y glucosa que funciona acoplada a la bomba de Na+-K+ lo que permite que la glucosa pueda ingresar en contra de un gradiente de concentración. d) Los monosacáridos galactosa y fructosa comparten el mismo transportador para ingresar a los enterocitos. e) La glucosa sale de las células intestinales al torrente sanguíneo mediante difusión facilitada, a favor de su gradiente de concentración.

7-Las fitasas son enzimas que mejoran la digestión del fósforo y se utilizan ampliamente como aditivos alimentarios en dietas animales. El fitato es la principal forma de almacenamiento de fósforo orgánico (P) en semillas de plantas y se lo ha considerado como un anti-nutriente debido a su efecto inhibidor sobre la biodisponibilidad de minerales dietéticos esenciales, especialmente hierro y zinc. Si bien la industria está interesada en la optimización y mejora de enzimas fitasas para incorporarlas en la alimentación animal, una de las principales restricciones es la baja tolerancia térmica de las fitasas caracterizadas hasta ahora. En los siguientes gráficos se muestra la actividad relativa de la fitasa en extractos de proteína cruda de dos cepas bacterianas, 9B (a) y 15C (b) a diferentes temperaturas (la actividad a la temperatura óptima se tomó como 100%); y la estabilidad de la actividad fitasa en extractos de proteína cruda de las cepas 9B (c) y 15C (d) después de la incubación durante 10, 20 y 30 min a temperaturas crecientes (la actividad fitasa original en condiciones estándar se tomó cómo 100%).

Responder verdadero (V) o falso (F) según corresponda: a) La temperatura óptima de las fitasas es de 60°C para ambas cepas b) La fitasa de la cepa 9B presenta menor energía de activación que la cepa 15C. c) La fitasa de la cepa 15C tiene una mayor capacidad para actuar a temperaturas más altas, comparadas con la cepa 9B. d) La actividad enzimática relativa de la fitasa de la cepa 15C mostró una mayor estabilidad térmica después de los tratamientos (10, 20 y 30 min) a temperaturas superiores a 70°C. e) A temperaturas menores a 50°C la actividad relativa fitasa de ambas cepas es menor al 50%.

8-Clasifique como verdaderas (V) o falsas (F) los siguientes enunciados referidos a la organela celular que se encuentra en la imagen.

a) La imagen fue obtenida con un microscopio cuyo límite de resolución es de 0,2 nm y permite observar la ultraestructura celular. b) La organela está formada por una serie de sacos aplanados con los extremos dilatados c) Los estrógenos son procesados en esta organela. d) Las vesículas emergen desde su cara o región Cis. e) La glicosilación de proteínas de la membrana plasmática ocurre en esta organela 9-La siguiente genealogía representa el modo de herencia del color de pelaje en gatos. Esta característica está determinada por una serie alélica de 6 alelos, siendo los más importantes: “C” que determina color uniforme, “Ca” color siamés y “c” albino. La jerarquía de dominancia es: C > Ca > c

Responder Verdadero (V) o Falso (F). a) El individuo III2 es de genotipo CaCa. b) Si se cruzan II1 y II6 hay una probabilidad de ½ de que una cría sea albina. c) Del cruzamiento entre Cac x Cac se espera que, de la progenie de color uniforme, ¼ sea homocigota. d) Si la serie alélica fuese C >c > Ca, los genotipos de II3 y II4 cambiarían. e) El individuo II2 tiene dos genotipos posibles con igual probabilidad. 10- El análisis filogenético de los Tetrápodos muestra la existencia de grupos monofiléticos, parafiléticos y polifiléticos.

Responder Verdadero (V) o Falso (F).

a) Un grupo parafilético no es un clado. b) El grupo Reptilia, que incluye los organismos actuales denominados reptiles, así como los sinápsidos extintos, es un grupo monofilético. c) El grupo Reptilia conjuntamente con las Aves, constituyen un grupo monofilético. d) Mamíferos y Aves forman un grupo parafilético. e) La clasificación monofilética se define por la ancestría común.

11- La siguiente Figura muestra dos comunidades vegetales, compuestas por cuatro especies diferentes (A, B, C y D).

Responder Verdadero (V) o Falso (F). a) La especie más abundante en ambas comunidades es B. b) La comunidad 1 es más diversa que la comunidad 2. c) La especie D es más abundante en la comunidad 2 que en la comunidad 1. d) La riqueza de especies es mayor en la comunidad 1 que en la comunidad 2. e) La composición porcentual de cada comunidad podría resumirse como, Comunidad 1: A: 25%, B: 25%, C: 25%, D: 25%; Comunidad 2: A: 5%, B: 80%, C: 5%, D: 10%.

12- El estudio del efecto de la riqueza y la equitatividad sobre la diversidad de comunidades de aves, en condiciones ambientales contrastantes, arrojó los resultados que se resumen en la Tabla debajo.

Responder Verdadero (V) o Falso (F).

a) La diversidad de aves fue significativamente mayor en ambientes sin disturbios en relación a ambientes quemados. b) La comunidad de aves de la Reserva Ñacuñán fue más diversa en años sin sequía que en años con sequía. c) La comunidad de aves de la Reserva Costanera Sur presentó una mayor riqueza específica durante la estación favorable que durante la estación desfavorable. d) La comunidad de aves de sitios quemados presentó una equitatividad significativamente mayor que la de ambientes sin disturbios. e) Las diferencias de equitatividad entre comunidades no fueron significativas al comparar entre sitios disturbados y no disturbados, ni entre estaciones de cría y no reproductiva.

13- En un experimento se utilizó la técnica de clonado in vivo para obtener muchas copias de un segmento de DNA bacteriano. Para ello, se cortaron tanto el ácido nucleico como el vector (Figura) con la misma enzima de restricción. Luego del ligamiento, se aislaron y seleccionaron los clones transformantes y recombinantes mediante la siembra en placas de Petri conteniendo medio de cultivo suplementado con Amp + X-Gal. El X-Gal es un compuesto sintético que al ser degradado por la enzima β-galactosidasa (gen lacZ), da como resultado final colonias de color azul. La ausencia de esta enzima da colonias de color blanco. Por lo tanto, en las placas crecerán sólo las colonias transformantes (resistentes a ampicilina, Ampr) y las colonias recombinantes se podrán diferenciar de las no recombinantes por el color.

Responder Verdadero (V) o Falso (F).

a) La enzima utilizada para cortar tanto el DNA bacteriano como el vector de clonado es la ScaI. b) Las bacterias utilizadas como células huésped deben ser sensibles a la ampicilina. c) Los vectores de clonado son introducidos a las células huéspedes mediante el proceso de conjugación bacteriana d) Aquellas bacterias que no hayan incorporado el vector serán sensibles a la ampicilina, pero capaces de sintetizar la enzima β-galactosidasa.

e) El vector es capaz de autorreplicarse debido a la presencia de un origen de replicación independiente de la maquinaria celular.

14- Según avanza el desarrollo del organismo, la expresión génica debe regularse, asegurando que el proceso se realice de manera ordenada en el embrión. Los genes que controlan el plan corporal general del embrión están entre los primeros que se expresan. En la mosca de la fruta, los genes homeóticos especifican la diferenciación de los segmentos corporales, asegurando que estructuras como patas, antenas y alas se desarrollen en el lugar correcto. Se conoce una secuencia de 180 nucleótidos de DNA, llamada homeobox, que codifica una estructura proteica que puede unirse al DNA y regular la transcripción. Un grupo particular de genes que contienen la secuencia homeobox, los genes Hox, se ubican en forma contigua en el cromosoma y son importantes en la determinación del destino morfológico final de los segmentos del cuerpo en varias especies animales. La siguiente figura muestra la homología en los genes homeobox entre insectos y mamíferos.

Responder Verdadero (V) o Falso (F).

a) Los genes homeobox se encuentran alineados, en el mismo orden que las estructuras corporales que controlan. b) En la mosca de la fruta y en el ratón, estos genes están ordenados formando un grupo de ligamiento. c) Los genes ubicados cerca de un extremo del grupo se expresan en la parte anterior del cuerpo, mientras que los del otro extremo lo hacen en la posterior. d) La similitud en los complejos homeobox en animales tan alejados filogenéticamente como nemátodos, anélidos, anfibios y mamíferos sugiere que estos grupos de genes aparecieron de manera independiente, como producto de una evolución convergente. e) Los genes homeobox constituyen una sinapomorfía del reino animal, cuya función pudo ser el establecimiento del eje anteroposterior de un metazoo primitivo.

15- Los modelos animales son una herramienta muy útil para la evaluación de los mecanismos de ciertas enfermedades en humanos, así como para las tecnologías de diagnóstico y tratamiento. Hernándiz et al. (2016) estudiaron los cambios cardíacos funcionales y estructurales, acontecidos como consecuencia de un infarto agudo por oclusión coronaria (isquemia) y su evolución a 5 semanas, en cerdos. Las Figuras 1 y 2 muestran algunos de los resultados obtenidos.

Figura 1.Cortes de tejido cardíaco teñidos mediante hematoxilina-eosina de Zona control, Zona peri-

isquémica y Zona isquémica. Barra de escala = 0.2 mm (40X).

Figura 2.Imágenes macroscópicas de una sección de corazón. A) Representa una sección de corazón que

ha sufrido una isquemia de 60 min seguida de 2 h de reperfusión (infarto agudo). B) Imagen de una sección de corazón a las 5 semanas del infarto (infarto crónico). Se muestran los puntos en que se ha medido el grosor de pared anterior; lateral, posterior y del tabique interventricular. En la gráfica de barras se muestra el valor promedio y desvío estándar de cada punto en todas las secciones en el modelo agudo y en el crónico y las diferencias estadísticamente significativas.

Responder Verdadero (V) o Falso (F).

a) El corazón del cerdo, como el del resto de los mamíferos, es tricameral, siendo la aurícula la que recibe la sangre y los ventrículos los que la expulsan del mismo. b) A partir del análisis histológico se puede apreciar la alteración estructural sufrida en el miocardio tras la isquemia.

c) A partir del análisis morfológico se pudo evidenciar un “remodelado cardíaco” en el infarto crónico, expresado en un aumento del grosor en la pared anterior del ventrículo izquierdo (VI) y un adelgazamiento de la pared posterior del mismo, estadísticamente diferente en comparación con el infarto agudo. d) La Figura 2 A y B se corresponden a un corte en sección longitudinal. e) El tejido muscular cardíaco es de tipo estriado e involuntario como el tejido muscular esquelético.

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 2

- Simulador: Rizzi, C., Monzón, F. y Miguel, H. (2019). Modelo NetLogo de Guanacos y Ovejas. Ministerio de Educación e Innovación del Gobierno de la Ciudad Autónoma de Buenos Aires. http://cienciascontic.github.io/simuladores/guanacos-y-ovejas.html - Ir a la página:https://cienciascontic.github.io/simuladores/sim-guanacos-y-ovejas.html Simulación 1: Las ovejas como únicos herbívoros en la estepa patagónica

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 5 años

16- ¿Cuánto vale la capacidad de carga K para las ovejas? Elegir la opción correcta a) Un valor entre 1000-1500 b) Un valor entre 2500-3000 c) Un valor entre 4500-5000

17- Variar el porcentaje inicial de gramíneas a valores extremos de 1% y 100%, observary seleccionar la cantidad promedio final de ovejas en la siguiente Tabla:

% de gramíneas

Cantidad promedio de ovejas

700-1000

1400 -1800

1900-2400

2500-3000

2600-2900

4000-4500

1%

100%

18- Teniendo en cuenta la tabla de la pregunta 2, indicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F): a) Se espera que al variar el parámetro porcentaje-gramínea, la cantidad de

ovejas varíe de manera proporcional b) El porcentaje inicial de gramíneas no influye en la cantidad de ovejas al cabo de

5 años. c) Para un mismo valor de porcentaje inicial de gramíneas, se espera siempre la

misma cantidad aproximada de ovejas, independientemente de la cantidad de años.

d) Las opciones a y c son correctas e) Ninguna de las opciones anteriores es correcta

19- Los parámetros que reflejarían las condiciones óptimas para las ovejas serían: (elegir la opción correcta) a) 0% gramíneas, 100% matas, vel-crecim-gramínea= 0, vel-crecim-matas= 1, ya

que las matas son 1,5 veces más nutritivas b) 100% gramíneas, 0% matas, vel-crecim-gramínea= 1, vel-crecim-matas= 0, ya

que las ovejas no consumen matas. c) 100% gramíneas, 20% matas, vel-crecim-gramínea= 0.5, vel-crecim-matas=

0.5, ya que las ovejas prefieren las gramíneas. d) 50% gramíneas, 50% matas, vel-crecim-gramínea= 0.5, vel-crecim-matas= 0.5,

ya que el ecosistema tendría una equitatividad mayor. e) 50% gramíneas, 50% matas, vel-crecim-gramínea= 1, vel-crecim-matas= 0.5,

ya que las matas tienen que estar presentes en el ecosistema.

20- Considerando las condiciones óptimas para el crecimiento de la población de ovejas (pregunta 4), indicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F):

a) La cantidad promedio esperada de ovejas al cabo de 1 año corresponde a un valor entre 200 y 250 individuos.

b) La cantidad promedio esperada de ovejas al cabo de 5 años será la multiplicación del valor anual por cinco.

c) A los 5 años se puede conocer la capacidad de carga de la población de ovejas.

d) Se podría probar si el valor de individuos a los 5 años refleja la capacidad de carga del ecosistema, aumentando la velocidad de modelización (tics) en la barra superior de la pantalla.

e) La K de ovejas está alrededor de 10K (10.000 individuos).

21- Si se hace una simulación a 10 años bajo las condiciones óptimas para el crecimiento de la población de ovejas se observa el siguiente gráfico.

Analizar e indicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F): a) La población de ovejas no crece exponencialmente a pesar de la ausencia de

guanacos, porque comienza a actuar la competencia intraespecífica b) Ocurre una interacción negativa entre los individuos de la población c) No hay competencia por el recurso gramíneas d) El crecimiento de las gramíneas es suficiente para mantener la curva de la

población de ovejas e) Existe competencia interespecífica Simulación 2: los guanacos como únicos herbívoros en la estepa patagónica El propósito es modelizar las mismas condiciones de la simulación anterior, variando el herbívoro presente.

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 5 años 22- ¿Cuántos individuos promedio se esperan? Elegir la opción correcta: a) Un valor entre 700-750 b) Un valor entre 1000-1500 c) Un valor entre 2500-3000

23- ¿Por qué se esperan menos guanacos que ovejas, manteniendo el resto de las variables iguales? Indicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F): a) Porque los guanacos comen 1,5 veces más b) Porque los guanacos gastan más energía que las ovejas cuando se mueven c) Porque los guanacos prefieren comer matas y éstas están aportando menos

energía que las gramíneas d) Porque los guanacos no comen gramíneas e) Porque las condiciones ambientales son óptimas para el desarrollo de los

guanacos 24- Para las condiciones seteadas, analizar eindicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F):

a) Los guanacos alcanzan su capacidad de carga. b) La capacidad de carga se alcanza en relación a la extinción de las gramíneas. c) Si se aumenta la cantidad inicial de guanacos se alcanzaría la capacidad de

carga antes d) Para poder hacer un análisis de la capacidad de carga se debería dejar correr

por más tiempo el simulador. e) La población de matas desaparece por completo al poco tiempo de comenzar la

simulación.

25- Si se modifican las condiciones de manera que, en ningún momento, haya matas en el ecosistema, indicar si las siguientes oraciones son verdaderas (V) o falsas (F): a) La cantidad de guanacos disminuirá bruscamente luego del primer año. b) Los guanacos habrán muerto de hambre al cabo de cinco años. c) Las curvas de guanacos y gramíneas se cruzan, en el valor donde la población

de guanacos alcanzó su capacidad de carga. d) Los guanacos se moverán más lento al final de la simulación que al comienzo e) Hasta los 5 años de la simulación se observa un crecimiento exponencial de la

población de guanacos.

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 1 año

26- Responder verdadero (V) o falso (F), según corresponda: a) Al cabo de un año se espera una población de guanacos entre 100 y 150

individuos. b) Al cabo de un año, la población de guanacos alcanza la capacidad de carga,

porque el % de cobertura de vegetación es menor al 0.5% c) Las matas iniciales cubren el 100% de las parcelas del ecosistema d) El valor de energía promedio de guanacos aumenta hasta un valor en que

comienza a disminuir e) El valor de energía promedio de guanacos final es mayor al valor inicial 27- La gramínea y las matas se pueden ajustar para que crezcan a diferentes ritmos y generen diferentes cantidades de energía. El modelo se puede utilizar para explorar las ventajas competitivas de estas variables.

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 1 año

Responder verdadero (V) o falso (F), según corresponda: a) La cantidad promedio de guanacos es un valor entre 145 y 150 individuos. b) Al aumentar la energía que proporcionan las gramíneas, aumenta

significativamente la cantidad promedio de guanacos. c) Al aumentar la energía que proporcionan las matas, aumenta significativamente

la cantidad promedio de guanacos. d) Al disminuir la velocidad de crecimiento de las matas, disminuye

significativamente la cantidad promedio de guanacos. e) Al disminuir la velocidad de crecimiento de las matas, disminuye

significativamente la cantidad promedio de guanacos. f) Al maximizar la energía que proporcionan gramíneas y matas, la cantidad

promedio de guanacos se duplica. g) Al maximizar la energía que proporcionan gramíneas y matas y duplicar el

tiempo de modelización, la cantidad promedio de guanacos aumenta significativamente (en más de un 30%).

Simulación 3: dos herbívoros en la estepa patagónica

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 1 año 28- Variar la cantidad inicial de individuos de cada especie y registrar la cantidad promedio final de cada una, en la siguiente Tabla:

Cantidad inicial Cantidad promedio de ovejas Cantidad promedio de guanacos

100-

200

200-

250

400-

450

500-

650

800-

850

145-

150

250-

300

320-

450

550-

600

620-

700

100 de cada una

200 de cada una

400 de cada una

Responder verdadero (V) o falso (F), según corresponda: a) Cualquiera sea el valor inicial de ambas especies, al cabo de 1 año, las curvas

poblacionales de ambas van en aumento. b) Las cantidades promedios de ovejas y guanacos al cabo de 1 año no dependen

de las cantidades iniciales de los mismos. c) Por más que se parta de distintas cantidades iniciales de ambas especies, la

cantidad promedio de ovejas es, al cabo de 1 año, superior a la de guanacos.

Setear los parámetros de la siguiente manera:

Tiempo de simulación 5 años

29- Luego de analizar las curvas resultantes, podría concluirse que: (elegir la opción correcta) a) La capacidad de carga de ovejas es un valor alrededor de los 1400 individuos,

mientras que la de guanacos es alrededor de 700. b) La curva poblacional de las ovejas decrece más rápidamente que la curva

poblacional de guanacos. c) Este ecosistema soporta de manera óptima casi el doble de la cantidad de

ovejas que de guanacos. d) Todas las anteriores son correctas. e) Ninguna de las anteriores es correcta. 30- Cuando se analiza el comportamiento de las poblaciones de herbívoros agregando predadores al ecosistema, se puede observar que: (elegir la opción correcta) a) Al agregar 1 predador, las curvas poblacionales de ambas especies, cambian

significativamente en comparación a cuando no había pumas. b) Al agregar 10 predadores, la curva poblacional de guanacos cambia

significativamente. c) Cuando la población de predadores representa un 10% de los herbívoros, las

curvas de ambas presas decrecen exponencialmente. Preguntas comparativas entre simulaciones. La finalidad de estas preguntas es poder tener una aproximación integral de El Ecosistema Patagónico. 31- Responder verdadero (V) o falso (F), según corresponda. a) Al analizar una especie de herbívoro por vez, se observa que la energía

proporcionada por las plantas o la velocidad de crecimiento de las mismas no presentan una ventaja significativa para la especie si el lapso de tiempo es muy corto, ya que la población está lejos de alcanzar su capacidad de carga.

b) Al analizar una especie de herbívoro por vez, se observa que, cualesquiera que sean los parámetros iniciales del modelo, siempre el valor K es el mismo.

c) Al analizar conjuntamente ambos herbívoros, se observa que la población de ovejas responde de manera directamente proporcional al porcentaje de cobertura por gramíneas.

Modelos teóricos Para finalizar, analizaremos algunos modelos teóricos generales.

La competencia interespecífica se produce cuando las especies compiten por un recurso escaso. El nicho ecológico es la utilización total que hace un organismo de los recursos bióticos y abióticos de su ambiente. El principio de exclusión competitiva establece que dos especies no pueden coexistir en la misma comunidad si sus nichos son idénticos.

Siendo α el coeficiente de competencia, K la capacidad de carga para la población y N el tamaño poblacional, la siguiente figura representa cuatro escenarios posibles de competencia interespecífica entre la especie 1 y la especie 2, con cuatro resultados diferentes (Modelo de Lotka-Volterra):

El valor K1/α12 representa el equivalente, en tamaño poblacional, de la especie 1 en términos de la

especie 2 y viceversa.

32- Completar la siguiente tabla con la letra de la gráfica que simboliza cada caso:

Escenario Resultado

La especie 1 es la competidora fuerte, por lo que excluirá a la especie 2.

Ambas especies son competidoras más fuertes sobre ellas mismas que sobre la otra, por lo que coexisten establemente.

La especie 2 es la competidora fuerte, por lo que excluirá a la especie 1.

Ambas especies son competidoras más fuertes sobre la otra que sobre ellas mismas, por lo que una puede excluir a la otra dependiendo de las abundancias iniciales.

33- Los siguientes gráficos muestran el comportamiento de 3 especies diferentes (A, B y C). En los gráficos de la sección I, se puede observar que cada población alcanza su máximo desarrollo. La sección II muestra el comportamiento de las poblaciones cuando dos especies se encuentran en un mismo ecosistema.

Analiza y tilda las afirmaciones correctas: a) La especie A es una competidora fuerte y la especie B una competidora débil. b) Entre la especie A y la B existe una competencia interespecífica. c) Entre las especies B y C existe una interacción positiva. d) Las especies A y C pueden coexistir en un mismo ecosistema. e) Cuando se juntan dos especies tienen el mismo comportamiento que si

estuviesen en ecosistemas separados.

TRABAJOS PRÁCTICOS

TRABAJO PRÁCTICO Nº 1:

Aislamiento e identificación de bacterias aerobias a partir de saliva de dragones de Komodo

Introducción La Microbiología es la ciencia encargada del estudio y análisis de los microorganismos. Dentro de ella, la Microbiología Clínica se encarga específicamente de establecer la etiología de una enfermedad infecciosa, identificando a un agente patógeno y en lo posible, proponer un tratamiento específico que anule los efectos nocivos de ese microorganismo. En el presente trabajo práctico se desarrollarán diferentes estrategias microbiológicas en relación al aislamiento e identificación de bacterias aerobias a partir de la saliva de dragones de Komodo (Varanus komodoensis). Estos reptiles endémicos de algunas islas de Indonesia central, son los lagartos de mayor tamaño del mundo, con una longitud media de dos a tres metros y un peso de unos 70 kg. Walter Auffenberg*(1891), herpetólogo de la Universidad de Florida, reseñó que el dragón de Komodo tenía patógenos sépticos en su saliva, puntualmente las bacterias: Escherichia coli,Staphylococcus spp., Providencia spp., Proteus mirabilis y P. morganii. Muchos de estos microorganismos son patógenos importantes en humanos y otros seres vivos, por lo que su estudio resultaría importante a la hora de determinar la peligrosidad de la mordida de este lagarto. Se sabe que la presencia de estos patógenos en la boca del Dragón de Komodo se debe a la particularidad que presenta este animal en el modo de alimentación. Debido a esto, ha sido objeto de muchos estudios que han permitido avances muy útiles para investigar los mecanismos de acción de ciertos patógenos y la búsqueda de tratamientos a enfermedades humanas.

Objetivos

- Aislar diferentes microorganismos a partir de la saliva de dragones de Komodo. - Identificar y determinar la predominancia de ciertas especies microbianas a través de pruebas bioquímicas - Evaluar la resistencia a antimicrobianos de los microorganismos previamente aislados. - Detectar la presencia de anticuerpos antibacterianos en la saliva de dragones de Komodo.

Desarrollo

Para resolver este práctico te sugerimos lo siguiente:

1) Lectura general del práctico. 2) Observar el material audiovisual disponible en el siguiente link: https://youtu.be/5LQPu2hAxGE 3) Contestar las respuestas.

¿Ya viste el video? Ahora a trabajar…

1-Los microorganismos contemplados en este práctico son células procariotas. Responder para cada una de las siguientes afirmaciones si son Verdaderas (V) o Falsas (F).

1. Su material genético (DNA) no está encerrado dentro de una membrana.

2. Carecen de orgánulos rodeados de membranas.

3. Su DNA no está asociado a proteínas de la clase de las histonas.

4. Sus paredes celulares contienen casi siempre una capa delgada de

peptidoglicano (mureína) unida a una membrana exterior por lipoproteínas.

5. Se dividen por fisión binaria.

6. Su tamaño celular oscila entre 0,2 y 2,0 µm de diámetro.

2- Responder para cada una de las siguientes afirmaciones, sobre las características de la pared celular de las bacterias grampositivas, si son Verdaderas (V) o Falsas (F).

I. Está compuesta por varias capas de peptidoglucano que conforman una estructura gruesa y rígida.

II. Está compuesta por una delgada capa de peptidoglucano y una membrana externa.

III. Contiene ácidos teitoicos compuestos principalmente por un alcohol y fosfato.

IV. El peptidoglucano que la constituye está unido a lipoproteínas de la membrana externa mediante enlaces covalentes.

V. Contiene ácidos teitoicos compuestos principalmente por un alcohol y calcio.

VI. Los ácidos teitoicos contribuyen al desarrollo celular al prevenir la ruptura de dicha pared y reducir el riesgo de lisis.

3- ¿Cuál es el orden secuencial necesario para identificar una cepa bacteriana? Escribir dentro de la tabla el orden correcto de la secuencia, utilizando cada casillero para un único número (I-VI). I. Obtención de un cultivo puro. II. Recolección de la muestra. III. Registro de los resultados. IV. Incubación de lasmuestras. V. Comparación de resultados experimentales y teóricos. VI. Resultados finales de las pruebas bioquímicas: identificación del microorganismo. VII. Realización del procedimiento para pruebas bioquímicas. VIII. Examen microscópico de frotis teñido por coloración Gram.

Orden de la secuencia

4- Identificar en la siguiente figura qué materiales fueron utilizados para la realización de este trabajo práctico y marcar con una cruz (X) en la tabla de abajo.

A B C D E F G H I J K

5- Según la metodología detallada en el video, la técnica utilizada para la detección de anticuerpos anti-Pasteurella en la saliva de dragones de Komodo fue (marcar la respuesta correcta): a) Inmunofluorescencia indirecta. b) ELISA indirecta. c) ELISA directa. d) Western blot. 6-Escherichia coli fue una de las especies bacterianas obtenidas a partir de la saliva del dragón. Indicar el conjunto de pruebas bioquímicas que fueron positivas para esta especie. a) Catalasa, oxidasa, indol, Voges Proskauer. b) Catalasa, indol. c) Oxidasa, indol, Voges Proskauer. d) Catalasa, oxidasa, indol. 7- A partir de los resultados obtenidos en la prueba bioquímica OF-glucosa y en el medio EMB para Escherichia coli, completar el siguiente cuadro, utilizando los códigos correspondientes (números) dados a continuación:

Características de la prueba Prueba OF-Glucosa

Nombre de la fuente de carbono presente en el medio

Metabolismo del azúcar

Característica de la colonia

Características del medio de cultivo Medio EMB

Nombre de la fuente de carbono presente en el medio

Crecimiento

Característica de la colonia

Códigos: 01. Oxida la glucosa. 02. Fermenta la glucosa. 03. Se observan colonias violetas con brillo metálico. 04. Se observan colonias violetas sin brillo metálico. 05. Lactosa. 06. Glucosa. 07. No se observan colonias aisladas. 08. Se observan colonias incoloras. 09. Crecimiento positivo. 10. Crecimiento negativo

8- La morfología típica observada en este aislamiento (Escherichia coli) corresponde a (marcar la opción correcta):

a) bacilos grampositivos. b) bacilos gramnegativos. c) cocos grampositivos. d) cocobacilos gramnegativos.

9- Indicar el conjunto de características que permitieron identificar al aislamiento bacteriano Staphylococcus capitis:

a) cocos grampositivos dispuestos en racimo, catalasa +, coagulasa +, β hemólisis +. b) cocos grampositivos dispuestos en cadenas largas, catalasa -, coagulasa -, β hemólisis +. c) bacilos grampositivos en racimo, catalasa +, coagulasa +, β hemólisis -. d) cocobacilos gramnegativos, catalasa +, coagulasa +, β hemólisis +.

10- Si quisieran repetir la segunda parte del trabajo práctico, ¿cuál sería la secuencia correcta de pasos a seguir? Escribir dentro de la tabla el orden correcto de la secuencia, utilizando cada casillero para un único número (I-V).

Pasos:

I. Extracción de un volumen de sangre por punción cardíaca. II. Aislamiento e identificación de bacteria patógena del ratón. III. Separación de los componentes de la sangre por centrifugación. IV. Inyección de un volumen de saliva de dragón de Komodo a un ratón de laboratorio. V. Sembrado de plasma sanguíneo en medio de cultivo.

Orden de la secuencia

11- Responder para cada una de las siguientes afirmaciones sobre los resultados obtenidos en la detección de anticuerpos anti-Pasteurella en la saliva de los dragones de Komodo, si son Verdaderas (V) o Falsas (F).

I. Sólo uno de los dragones presentó títulos positivos para Pasteurellamultocida.

II. Todos los dragones presentaron títulos positivos para Pasteurellamultocida.

III. El control utilizado es buffer PBS sin ninguna muestra de saliva. IV. Los resultados obtenidos en la muestra control indican especificidad de

unión antígeno-anticuerpo.

V. Los dragones N°1, N°2 y N°4 presentaron títulos positivos.

12- Como conclusión puede decirse que: Completar el párrafo con los códigos correspondientes(números) dados a continuación.

a) La saliva de los dragones de Komodo presenta distintos tipos de ______. b) Las más abundantes fueron ______ y ______. Estos microorganismos se caracterizaron por su resistencia a ciertos ______ y ambas pertenecieron al dominio de las ______ que son las más comunes en la flora microbiana propia del Reino Animal. c) Además de las especies mencionadas se identificaron alrededor de 60 especies más, entre éstas, ______es la más patógena. La resistencia a esta bacteria en el dragón se debe a la presencia de ______ en su saliva y sangre. Códigos de respuesta: 01. hongos (levaduras) 02. algas 03. bacterias 04. Staphylococcus aureus 05. Pasteurellamultocida 06. Escherichia coli 07. Staphylococcus capitis 08. Mycobacterium tuberculosis 09. Arqueobacterias 10. Eubacterias 11. enzimas 12. antígenos 13. compuestos antivirales 14. compuestos antimicrobianos 15. anticuerpos

ANEXO: PRUEBAS BIOQUÍMICAS

Prueba bioquímica Fundamento para su aplicación

Resultados posibles

Tinción de Gram Para detectar morfologías. * Gram positivas color violeta * Gram negativas color rosado

Prueba de la catalasa Para detectar la presencia o no de la enzima catalasa

* Presencia de enzima catalasa (positivo) formación de burbujas. * Ausencia de enzima catalasa (negativo) sin formación de burbujas.

Prueba de oxidasa Para identificar la presencia de la enzima citocromo C oxidasa

* Cuando se oxida (positivo) color púrpura o rosa fuerte * Cuando no se oxida (negativo) incoloro

Prueba OF-glucosa Para identificar el mecanismo por el cual las bacterias metabolizan la glucosa otros azúcares

* Bacterias capaces de oxidar y/o fermentar (positivo) color amarillo. * Bacterias que no son capaces de fermentar (negativo) color azul.

Prueba de Voges-Proskauer:

Para determinar una de las dos vías posibles de fermentación de la glucosa

* Positivo color rojo-fucsia. * Negativo no cambia de color.

Prueba del indol Para detectar las bacterias capaces de hidrolizar y desaminar el triptófano

* Positivo se forma un complejo rojo * Negativo permanece amarillo/ anaranjado

Prueba para hemólisis Para detectar la producción de beta hemolisina

* Positivo se visualiza un halo transparente alrededor de la colonia * Negativo sin halo transparente alrededor de la colonia

Prueba de crecimiento en medio EMB

Para diferenciar organismos capaces de utilizar la lactosa y/ o sacarosa de aquellos que son incapaces de hacerlo

* Cepas que utilizan la lactosa (positivo) azules o violáceas con un centro oscuro (algunas con brillo metálico) * Cepas no capaces de utilizarla (negativo) incoloras o no crecen

Prueba de coagulasa Para detectar producción de coagulasa

* Bacterias que producen coagulasa (positivo) se forma un coágulo * Bacterias que no producen coagulasa (negativo) no se modifica

Prueba de resistencia a compuestos antimicrobianos

Para evaluar la resistencia de las cepas bacterianas a compuestos antimicrobianos

* Sin resistencia se forman halos de inhibición del crecimiento alrededor de las colonias * Con resistencia a compuestos antimicrobianos, no se observan halos alrededor de las colonias

TRABAJO PRÁCTICO Nº 2:

Extracción y separación de pigmentos vegetales

Introducción

Los pigmentos vegetales son compuestos químicos responsables de los colores típicos de las plantas. Los pigmentos se caracterizan por absorber luz y presentar color por el reflejo de ciertos

espectros de luz. Obviamente, las flores y los frutos contienen muchas moléculas orgánicas que absorben luz. Las hojas, tallos, y raíces también contienen muchos pigmentos, que incluyen las antocianinas, flavonoides, flavinas, quinonas y citocromos. Sin embargo, ninguno de éstos debe ser considerado como un pigmento fotosintético. Los pigmentos fotosintéticos son los únicos que tienen la capacidad de absorber la energía de la luz solar y hacerla disponible para el aparato fotosintético. En las plantas terrestres hay dos clases de pigmentos fotosintéticos: las clorofilas y los carotenoides, y en cianobacterias y algas rojas también se encuentran las ficobilinas. La capacidad de las clorofilas y los carotenoides para absorber la luz del sol y utilizarla de manera efectiva está relacionada con su estructura molecular y su organización dentro de la célula.

En los cloroplastos de las hojas, las plantas utilizan la luz solar para transformar la materia inorgánica (dióxido de carbono, agua y sales minerales) en materia orgánica necesaria para alimentar al resto de la planta. Además de las clorofilas, otros pigmentos están presentes en los vegetales para colaborar en la captación de energía. Entre ellos destacaremos a los carotenos, xantofilas, antocianos, etc. Estos pigmentos absorben la energía solar como si se tratase de antenas o células fotovoltaicas que ponen en marcha el motor fotosintético. Algunos pigmentos importantes y sus características son: – Clorofilas: Se encuentran prácticamente en todas las plantas superiores, especialmente en los órganos que están más expuestos a la luz, como pueden ser las hojas. Se sitúan en los cloroplastos, concretamente en las membranas de los tilacoides. Hay varios tipos de clorofila: a, b, c, d y e. De estas, solo dos se encuentran en los cloroplastos de las plantas superiores: la clorofila a, de color verde azulado, y la clorofila b, de color verde amarillento. La más importante es la clorofila «a», pues está presente en plantas, algas y cianobacterias fotosintéticas. – Carotenoides:Los carotenoides son otro grupo importante de pigmentos fotosintéticos. Estos absorben luz violeta y azul verdosa y proporcionan los colores brillantes que presentan las frutas. Los carotenoides no pueden utilizar directamente la energía de la luz para la fotosíntesis, sino que deben transferir la energía absorbida a la clorofila. Por esta razón, se consideran pigmentos accesorios. Otro ejemplo de un pigmento accesorio muy visible es la fucoxantina, que le da el color marrón a las algas marinas y a las diatomeas. Los carotenoides se pueden clasificar en dos grupos: carotenos y xantofilas.

-Carotenos:Los carotenos son compuestos orgánicos ampliamente distribuidos como pigmentos en plantas y animales.En las plantas, los carotenos imparten colores amarillos, naranjas o rojos a las flores (caléndula), frutas (calabaza) y raíces (zanahoria). En animales son visibles en grasas (mantequilla), yemas de huevo, plumas (canario) y exoesqueleto (langosta).El caroteno más común es el β-caroteno, el cual es el precursor de la vitamina A y se considera muy importante para los animales. -Xantófilas:Las xantofilas son pigmentos amarillos cuya estructura molecular es similar a la de los carotenos, pero con la diferencia de que contienen átomos de oxígeno.

Todos estos pigmentos tienen propiedades físico-químicas diferentes como pueden ser, por ejemplo, su peso molecular o su solubilidad en disolventes orgánicos, como el alcohol etílico. Así, al hacer ascender por capilaridad a lo largo de un filtro una disolución que contenga estas moléculas se obtendrán líneas de diferentes colores, que corresponderán a los distintos pigmentos.

Existen diversas técnicas para extraer e identificar los pigmentos citados. Una de ellas es por el color:

PIGMENTO COLOR

Clorofila A Verde azulado

Clorofila B Verde amarillento oscuro

Carotenos Amarillo anaranjado

Xantófilas Amarillo

Antocianinos Rosado

Una técnica muy sencilla para separar pigmentos es la cromatografía.La cromatografía es un método físico en el que los componentes de una muestra sedistribuyen entre dos fases: fase estacionaria (adsorbente) y la fase móvil. Esta técnica permite separar sustancias presentes en una mezcla, aprovechando la mayor o menor afinidad por un disolvente que recorre una columna de resinas o papel. El arrastre que ejerce el disolvente (fase móvil) sobre los distintos compuestos hace que éstos se desplacen con distinta velocidad, separándose poco a poco.

Para cada soluto se puede determinar el frente de corrida(Rf) que corresponde a una medida de cuantose ha movido un componente relativo al frente del solvente.

Rf es constante para una sustancia en particular, su valor va a depender de las fases estacionaria y móvil y de otros factores experimentales. Este valor puede servir para caracterizar los componentes de una mezcla si las condiciones experimentales se controlan cuidadosamente.

En este trabajo práctico realizaremos la extracción y separación de pigmentos de diferentes vegetales (espina o acelga, zanahoria y remolacha). Llevaremos a cabo una cromatografía utilizando como fase estacionaria papel y/o tiza. Los pigmentos serán disueltos en alcohol etílico (solvente) y los pigmentos extraídos ascenderán por capilaridad en un material poroso (papel o tiza) de tal forma que los que tienen un mayor tamaño lo harán más despacio que aquellos que sean más pequeños. Objetivos

-Extraer y separar pigmentos de diferentes vegetales -Realizar de manera sencilla la técnica de cromatografía -Analizar y comparar resultados

Materiales:

- Hojas de vegetales (espinaca, acelga, perejil, etc) - Vegetales (zanahoria, remolacha, etc) - Alcohol etílico 96% - Mortero (o recipiente para poder triturar – aplastar los vegetales) - Placa de Petri, bandejita o tapa de algún frasco - Papel de filtro (filtro de café o servilletas de cocina) - Embudo o colador

- Papel secante, hoja canson, tiza

Procedimiento: 1- Colocar en el mortero (o recipiente para tal fin) el material vegetal del cual se van a extraer los pigmentos. En el caso de las hojas de espinaca o acelga, cortar en trozos pequeños y quitar las nervaduras; para las zanahorias y remolacha se debe rallar.

2- Agregar alcohol etílico 96% hasta cubrir las muestras. Evitar agregar demasiada cantidad de solvente para que no se diluyan los pigmentos (aproximadamente 20 ml). Se puede utilizar una jeringa o vasito medidor, dosificador de remedios, etc. para saber la cantidad que se agrega.

3- Machacar las hojas (o vegetales) hasta que el líquido adquiera una coloración intensa.

4- Con la ayuda del embudo o colador y/o el papel de filtro colar la preparación. Recolectar la muestra en la caja de Petri, bandejita o tapa de frasco.

5- Cortar un rectángulo de papel secante u hoja canson y doblara la mitad en forma de V. También se puede utilizar la tiza. Colocar el papel o tiza sobre el filtrado obtenido con cuidado de no tocar los bordes del recipiente. Dejar durante aproximadamente 30 minutos o hasta que el líquido haya ascendido lo suficiente y se vean los pigmentos separados.

6- Observar e identificar las bandas de pigmentos. Repetir los pasos 1 – 6 para cada uno de los vegetales. Resultados esperados:

7- Calcular los Rf para cada uno de los pigmentos que lograron separar.

Preguntas orientadoras para interpretar y discutir resultados: 1- ¿Qué pigmentos lograste separar e identificar en cada muestra vegetal? ¿Fueron los mismos para todos los vegetales utilizados?

2-¿Por qué es posible separar pigmentos vegetales utilizando alcohol? ¿Qué otros solventes se pueden usar?

3-¿Cuál es la función de los pigmentos en las plantas?, ¿podría una planta vivir sin pigmentos?

4-Las flores son estructuras pigmentadas ¿qué función tienen estos pigmentos?

5- ¿Por qué crees que los distintos pigmentos tienen distinta velocidad de ascenso por el papel de filtro?

6- ¿Cuál es el principal pigmento que contienen las remolachas?

7- ¿Todos los pigmentos vegetales son fotosintéticos?

ANEXO: Actividades sugeridas

Una vez realizada la cromatografía, se pueden utilizar los filtrados obtenidos para realizar las siguientes actividades y abordar de esta manera los contenidos básicos sobre soluciones, concentración y diluciones seriadas.

Actividad 1:

Piensa y luego responde:

1- ¿Los filtrados obtenidos son soluciones? ¿Por qué? Si es así, identifica el soluto y el solvente. 2- ¿Se podría conocer la concentración de los pigmentos vegetales? Si tu respuesta es afirmativa, explica como lo harías. Si tu respuesta es negativa fundamenta. 3- Al observar los filtrados, ¿Consideras que tienen la misma cantidad de pigmentos? ¿Tienen la misma concentración? 4- ¿Conoces que son las diluciones? ¿y las diluciones seriadas? Trabajo Práctico: Diluciones

Introducción: En el laboratorio muchas veces es necesario diluir las muestras o los reactivos para obtener concentraciones muy pequeñas o adecuadas para alguna técnica en particular. Realizar una dilución significa agregar solvente, sin afectar la cantidad de soluto, alterando el volumen de la solución y por lo tanto la concentración de la misma (que disminuirá). La concentración de una solución es la relación entre la cantidad de soluto y solución o solvente. Existen distintas formas de expresar la concentración: molaridad (M), normalidad (N), molalidad (M), porcentual (% p/p, % p/v, % v/v). La concentración de la solución diluida dependerá del factor de dilución empleado; es decir de la relación que hay entre las concentraciones diluida y concentrada, o del cociente entre el volumen de la solución concentrada y el volumen de la diluida. Por ejemplo, si necesitamos diluir una solución a la mitad de su concentración, tomamos un volumen de solución y le agregamos otro volumen igual de solvente (dilución ½). Si en cambio necesitamos hacer una solución 10 veces diluida (dilución 1/10), tomaremos un volumen de solución (Ej. 1 ml) y le agregaremos 9 veces ese volumen de solvente (9 ml). Cuando se necesita preparar soluciones con concentraciones muy bajas de un soluto o alguna solución muy diluida, es conveniente realizar varias diluciones, en vez de prepararla en un único paso, ya que la cantidad de soluto o elvolumen que se tendría que tomar de la solución serían tan pequeños que sería muy difícil de pesar o pipetear (a veces imposible). Es decir, que en estos casos se realizan diluciones seriadas (en serie), en donde se parte de una solución concentrada (madre o stock) y se realizan diluciones sucesivas a partir de esta utilizando (generalmente) el mismo factor de dilución como se observa en la figura.

Actividad:

Utilizando los filtrados obtenidos en la extracción de pigmentos vegetales realiza diferentes diluciones simples y seriadas empleando diferentes factores de dilución.

Materiales: - Tubos de ensayo (o vasitos transparentes) - Pipetas de 1, 2, 5 y 10 ml (o jeringa) Procedimiento:

Diluciones simples:

1-Luego de realizar la cromatografía, toma lo que quedó del filtrado obtenido en la extracción de pigmentos vegetales de remolacha(será la solución concentrada) y realiza las siguientes diluciones: 1/2, 1/5, 1/10, 1/20. 2- Realiza los cálculos necesarios y completa la siguiente tabla:

Dilución Volumen (ml) de solución

concentrada Volumen (ml) de solvente

(agua o alcohol)

1/2

1/4 1/10

1/20

3-Rotula cada tubo (o vasito) con la dilución que corresponda y luego realiza las diluciones correspondientes. 4- Observa la coloración de cada una de las diluciones y analiza los resultados. 5- Si la concentración de la solución inicial (concentrada) fuese 10% p/v. Calcula las concentraciones de los tubos con las diluciones 1/2, 1/4, 1/10 y 1/20.

Solución

concentrada Dilución

1/2 Dilución

1/4 Dilución

1/10 Dilución

1/20

Concentración (% p/v)

10% p/v

Diluciones seriadas: 1-Luego de realizar la cromatografía, toma lo que quedó del filtrado obtenido en la extracción de pigmentos vegetales de acelga (será la solución concentrada) y realiza cuatro diluciones seriadas 1/5. 2- Realiza los cálculos necesarios y completa la siguiente tabla:

Solución

concentrada Tubo 1 Tubo 2 Tubo 3 Tubo 4

Volumen de solvente (agua o alcohol)

Volumen de la solución a diluir

Factor de dilución de cada tubo

3- Rotula cada tubo (o vasito) del 1 al 4 y luego realiza las diluciones correspondientes. 4- Observa la coloración de cada una de las diluciones y analiza los resultados. 5- Si la concentración de la solución inicial (concentrada) fuese 10% p/v. Calcula las concentraciones de los tubos 1, 2, 3 y 4.

Solución

concentrada Tubo 1 Tubo 2 Tubo 3 Tubo 4

Concentración (% p/v)

10% p/v

Actividad 2: La siguiente actividad propone realizar una aproximación a espectrofotometría de absorción utilizando un Smart Phone (Kuntzleman y Jacobson, 2016.Journal of chemical education) Introducción:

La espectrofotometría es utilizada para identificar compuestos por su espectro de absorción y conocer la concentración de un material o sustancia, seguir el curso de reacciones químicas y enzimáticas así como determinar enzima y proteínas incluso ácidos nucleicos.

El experimento que se propone permite a los estudiantes realizar un análisis de la Ley de Beer con la cámara de un teléfono celular. El protocolo, configuración, recopilación de datos y análisis son rápidos y simples. Sin embargo, la realización de esta experiencia permite explorar cualitativa y cuantitativamente conceptos y ecuaciones involucradas en la espectrometría de absorción. En la espectrometría de absorción, la luz se dirige a través de una muestra y la fracción de luz que pasa a través de la misma es medida, como se muestra en la imagen.

La cantidad de luz absorbida, o absorbancia, A, se define como: A= -log (I/I0) Donde I es la intensidad de la luz transmitida a través de la muestra e I0es la intensidad de la luz transmitida a través de un blanco. Para estimar el color de luz que es absorbida por la especie química en solución, es útil utilizar una rueda de colores como se muestra en la figura. Esta aproximación se hace utilizando el color opuesto al color observado del compuesto. Por ejemplo, si una especie en particular aparece verde en solución, probablemente absorbe muy bien la luz roja. Como detector de luz se utiliza la aplicación del teléfono celular, Color Meter Free, la cual se puede descargar desde la Play Store. Para colocar la muestra a analizar se pueden utilizar cubetas, tubos de ensayo e incluso vasos de plástico trasparentes. Materiales:

- Muestras de pigmentos vegetales (diluciones obtenidas en la actividad 1) - Teléfono celular con la aplicación Color Meter Free. - Cubeta de espectrofotómetro (o vaso transparente) - Fondo rojo (hoja canson, cartulina, pantalla de computadora o celular) - Caja de cartón (opcional)

Procedimiento:

1- Tomar las diluciones seriadas del filtrado de remolacha (cada una en su tubo de ensayo o vasito transparente)

2- Cortar un rectángulo de cartulina roja para utilizar de fondo.

3- Armar el sistema como se muestra en la imagen. El fondo debe ser rojo, las diferentes muestras se deben colocar siempre a la misma distancia (distancia 2), se recomienda marcar el lugar en donde se colocará el tubo. La toma con el celular también debe estar siempre a la misma distancia de la muestra y respetar el ángulo de la captura de la imagen. Para ello se recomienda utilizar algún tipo de soporte (se puede hacer con cartón).

Opcional: Se puede tapar la muestra con una caja de cartón dejando una ranura para que la luz incida sobre la muestra. 4- Determinación de la absorbancia. 1°- Abrir el analizador de imágenes del celular (Color Meter Free)

2°- Tomar un tubo y colocar alcohol 96% para utilizarlo como blanco (I0) y registrar el valor R de la luz que pasa a través del blanco.

3°- Tomar el tubo 1 y realizar la determinación. Registrar el valor R de la luz que pasa a través de la muestra, este será el valor I.

4°- Calcular la absorbancia de la muestra utilizando la fórmula: A= -log (I/I0) *Por ejemplo: A= -log (190/225) A= 0,073

5°- Repetir para cada tubo. Registrar los valores de R y calcular la absorbancia. 5- Analizar los resultados. Comparar los valores de absorbancia con el color observado en cada una de las muestras. NOTA: En este caso no contamos una curva patrón para comparar y calcular concentraciones ya que estamos trabajando con extractos de pigmentos vegetales. La cuantificación de clorofila se realiza en un espectrofotómetro a longitudes de onda de 645 y 663 nm.

TRABAJO PRÁCTICO Nº 3:

Glúcidos

Parte 1: Comprobación experimental del proceso de fermentación alcohólica

Introducción

En los organismos aeróbicos, los productos de la glucólisis sirven al ciclo de

Krebs y a la cadena de transporte de electrones, lo cual permite obtener la mayor parte de la energía de la glucosa. En presencia de oxígeno (condiciones AERÓBICAS), el piruvato proveniente de la glucólisis ingresa a la mitocondria donde es completamente oxidado hasta CO2 y H2O.

Si el suministro de oxígeno es insuficiente (condiciones ANAERÓBICAS), pueden ocurrir otras vías. En animales, en el músculo en contracción, el piruvato se reduce a lactato (fermentación láctica). Mientras que en microorganismos tales como las levaduras, el piruvato se convierte en etanol y CO2 (fermentación alcohólica). La conversión de piruvato en etanol o lactato a partir de glucosa en condiciones anaeróbicas son ejemplos de FERMENTACIÓN.

La fermentación alcohólica es un proceso de tipo biológico el cual se lleva a cabo en ausencia de oxígeno. Este tipo de fermentación se debe a las actividades de ciertos microorganismos, como las levaduras, que se encargan de procesar azúcares, como la glucosa, la fructosa, etc. (hidratos de carbono), dando como resultado un alcohol como el etanol (alcohol etílico), CO2 (gas) y ATP (adenosín trifosfato), moléculas que son utilizadas por los propios microorganismos en sus metabolismos energéticos. Numerosos hongos, bacterias, algas y algunos protozoos, fermentan azúcares, transformándolos en etanol y CO2.

La principal finalidad de una fermentación alcohólica, es la producción de energía de tipo anaeróbica para microorganismos, en el caso de ver el proceso desde la perspectiva microbiana, pero si lo hacemos desde la perspectiva humana, el proceso es de tipo bioquímico, con la finalidad de producir etanol.

Las levaduras pueden utilizar como sustrato de la fermentación diversos azúcares. Éstos deben ser previamente convertidos en los intermediarios adecuados, por lo que los disacáridos y polisacáridos son hidrolizados para dar los monosacáridos que los constituyen. Por ejemplo, si la levadura es puesta en contacto con sacarosa, este disacárido será previamente hidrolizado por una enzima presente en la levadura, denominada invertasa o sacarasa. La reacción catalizada por esta enzima es: Invertasa o sacarasa

Sacarosa ---------------------------- > Glucosa + Fructosa

Los dos monosacáridos, glucosa y fructosa, pueden ser fermentados por las levaduras.

El metabolismo anaerobio de la glucosa, realizado por las levaduras

comprende en primer lugar, la descarboxilación irreversible del piruvato (proveniente de la glucólisis) a acetaldehído a través de la enzima piruvato descarboxilasa. El acetaldehído es posteriormente reducido por medio de la enzima alcohol deshidrogenasa, transformándose en etanol, que es uno de los productos finales de la fermentación alcohólica. Glucólisis:

Glucosa -------------------------------- > 2 Piruvato

Fermentación (ausencia de O2):

Piruvato descarboxilasa 2 Piruvato ----------------------------- > 2 Acetaldehído + 2 CO2

Alcohol deshidrogenasa

2 Acetaldehído ---------------------------------- > 2 Etanol NADH + H --------- > NAD+

Ecuación global del proceso Sustrato Productos Glucosa---------------------------------> 2 Etanol + 2 CO2

Objetivos -Estudiar el proceso de fermentación alcohólica, evaluando la formación de uno de sus productos. - Analizar el efecto del Fluoruro de sodio (FNa), inhibidor de dicho proceso fermentativo. - Analizar y comparar los resultados. Materiales

- 3 frascos o vasos transparentes preferentemente de igual tamaño - Levadura - Azúcar - Pasta dentífrica (que contenga alto contenido de Flúor) - Agua tibia - Papel film - Cuchara - Olla con agua tibia para colocar los frascos a baño María

Procedimientos 1) Rotular los frascos como:

A: AGUA + LEVADURA B: AGUA + LEVADURA + AZÚCAR C: AGUA + LEVADURA + AZÚCAR + FLUOR

Atención: de acuerdo a su frasco/vaso serán las proporciones que use a continuación.

2) Colocar igual cantidad de agua tibia en los frascos, aproximadamente 1/3 del frasco.

3) Colocar igual cantidad de levadura en cada frasco, aproximadamente unas 2 cucharadas colmadas.

4) Colocar 1 cucharada de azúcar en los frascos B y C. 5) Colocar en el frasco C pasta dentífrica, 1 cucharada aproximadamente. 6) Revolver hasta mezclar bien y tapar todos los frascos con papel film. 7) Colocar todos los frascos en una olla con agua tibia para acelerar el

proceso. 8) Observar los resultados al cabo de 15-30 minutos.

Video de práctico: TP de glúcidos. Parte 1. Fermentación: https://youtu.be/b1Flqx8COmg

Preguntas orientadoras a) En el frasco A, ¿por qué no observamos fermentación? b) ¿Por qué piensa que en el frasco A se observa algo de espuma? c) ¿Qué sucedió en el frasco C? d) En el caso donde observamos fermentación, la misma, ¿se produjo en

condiciones de aerobiosis o anaerobiosis?, ¿cuál el producto que observamos?, ¿qué otro producto se obtiene de este proceso, que no vemos a simple vista?

Parte 2: Metodología para la detección de almidón Introducción

El almidón es un polisacárido vegetal de reserva formado por dos componentes: la amilosa y la amilopectina (cadenas de repeticiones de moléculas de glucosa, unidas entre sí, formando en su conjunto una hélice). Constituye la manera que tienen las plantas para acumular moléculas de glucosa de rápida liberación ya que, cuando sus células necesitan energía, solo tienen que romper la cadena. Se encuentra presente en el citoplasma de las células vegetales de semillas (trigo, arroz, etc.), de frutos (manzana, bananas, etc.) y de determinados órganos de reserva como los tubérculos (papas, batatas).

Fundamento de la reacción del almidón con el Iodo: El Iodo forma un

complejo coloreado con el almidón (el Iodo es atrapado por la hélice de almidón y se colorea de azul oscuro/violeta). Este complejo es reversible, cuando calentamos la disolución de almidón con Iodo, las hélices “se desarman” y los átomos de Iodo las abandonan, por lo que el almidón recupera su color inicial

transparente-amarillento. Si dejamos enfriar la disolución, el color vuelve ya que el Iodo nuevamente estará atrapado en la hélice del almidón. Objetivos - Realizar una técnica sencilla de determinación de presencia de almidón en una muestra concentrada de almidón de maíz. - Analizar cualitativamente la presencia de almidón en diferentes alimentos. - Analizar y comparar los resultados. Materiales

- Iodo povidona (Pervinox medicinal) - Almidón de maíz (Maizena) - Frasco pequeño o vaso transparente - Agua - Cucharita - Manzana - Banana - Harina integral - Harina Blanca - Papa - Batata - Hielo - Microondas o agua caliente cerca del hervor

Procedimientos para el primer objetivo

1) Añadir en el frasco/vaso 1 punta de cuchara de almidón. 2) Adicionar un poco de agua y agitar hasta conseguir la completa disolución

delalmidón. 3) Añadir aproximadamente 4 gotas de povidona Iodada a la disolución

anterior y agitar ligeramente la mezcla. Observar la coloración. 4) Colocar el frasco/vaso en el microondas suave o en un recipiente con agua

caliente y calentar, hasta que se produzca una pérdida de color. Atención: no calentar en exceso, sino el almidón gelificará y ese proceso es irreversible.

5) Volver a enfriar el contenido del frasco vertiendo agua por el exterior o dejándolo en reposo en un recipiente con hielo.

6) Volver a repetir varias veces los pasos 4 y 5. Observar el resultado

Procedimientos para los objetivos 2 y 3

1) Cortar en rodajas la papa, la batata, la banana y la manzana.

2) Añadir unas gotas de povidona Iodada sobre las muestras. Si se le ocurren

otros alimentos para probar ¡mejor! (por ejemplo, comparar una fruta

madura y la misma inmadura o fiambre vs jamón crudo). Observar el color

resultante.

Video de práctico: TP de glúcidos. Parte 2. Detección de

Almidón:https://youtu.be/AIzYP7CAVAg

Preguntas orientadoras:

a) ¿Qué sucede cuando agregamos Iodo a una solución de almidón?, Si

colocamos mayor concentración de almidón, o menor, ¿cambiará el color

que toma el complejo almidón-Iodo?

b) ¿Qué está pasando con el complejo almidón-Iodo cuando calentamos y

enfriamos la solución?

c) ¿Qué alimento contiene mayor concentración de almidón?

d) ¿Por qué cree que las frutas tienen menos almidón que los tubérculos?

Si comparó frutas maduras vs verdes: En las frutas, la maduración está asociada con un aumento de la actividad respiratoria. La base bioquímica de la respiración es la oxidación de hidratos de carbono, y la producción de anhídrido carbónico, vapor de agua y energía. El almidón, se encontrará muy elevado en la fase de crecimiento y desarrollo del fruto, pero a medida que la fruta madura, el mismo irá disminuyendo, ya que mediante la acción de enzimas como la amilasa el almidón es degradado a azúcares más sencillos (glucosa) para obtener energía. Es por esto, que las frutas más maduras tienen un sabor menos ácido y más dulce (se incrementa la acumulación de azúcares simples que aumentan el pH). Si comparó fiambre vs jamón crudo: El fiambre suele tener aditivos, entre ellos el almidón que se utiliza para disminuir la cantidad de carne utilizada.

TRABAJO PRÁCTICO Nº 4:

Agua: su importancia para una adecuada funcionalidad de los tejidos de las plantas

Parte A: Potencial Agua

INTRODUCCIÓN

Podríamos comenzar este trabajo práctico planteándonos ¿Cuál es la función de los tejidos en las plantas? Los tejidos comprenden células asociadas estructural y funcionalmente distinguibles y pueden clasificarse y agruparse en tejidos simples y complejos. Los tejidos simples: parénquima, colénquima y esclerénquima están constituidos por un solo tipo de células o por células que cumplen la misma función; mientras que los tejidos complejos, epidermis, peridermis, xilema y floema, se encuentran constituidos por más de un tipo de células, las cuales cumplen distintas funciones.

Es importante la relación entre los tejidos y la funcionalidad de los mismos ya que su estudio de manera integral permite comprender adecuadamente los procesos biológicos que realiza una planta. Uno de los componentes más importantes que permiten evaluar esta relación morfo-fisiológica, lo constituye el agua ya que es el medio en el cual ocurren las reacciones bioquímicas, que afectan directa o indirectamente a la mayoría de los procesos fisiológicos. Permite la difusión y flujo masivo de solutos, por lo que es esencial para el transporte y distribución de nutrientes y metabolitos, determina la turgencia celular y constituye un excelente termorregulador.

Los movimientos del agua dentro de una planta pueden realizarse por procesos tanto pasivos como activos y dependen de las diferencias del valor de potencial agua entre los distintos compartimentos celulares. Dentro del proceso de difusión pasiva se genera un gradiente de potencial hídrico donde las moléculas de agua se encuentran en un movimiento continuo al azar. ¿A qué denominamos potencial agua o potencial hídrico (Ѱa)? El potencial agua es un concepto muy valioso para la Fisiología Vegetal que expresa la energía libre del agua, es decir la capacidad de realizar trabajo. El potencial agua (Ψa) depende fundamentalmente del potencial osmótico (Ψo) y del potencial de turgencia (Ψt). Para medir el Ψa de un tejido existen métodos directos e indirectos. Dentro de estos últimos encontramos el Método Gravimétrico, el cual se basa en el equilibrio que se alcanza cuando una célula o tejido se sumerge en una solución cuyo Ψo es igual al promedio del Ψa del tejido; momento en el cual no habrá variación en el volumen celular, ni en el peso inicial y final del tejido vegetal. En soluciones con Ψo inferior al Ψa del tejido, habrá disminución del volumen celular y pérdida de peso. En el caso de que el Ψo sea superior al Ψa del tejido habrá aumento del volumen celular y ganancia de peso. La solución en la cual no se determine ganancia ni pérdida de peso, se considera que tiene un Ψo igual al promedio de los Ψa de las células del tejido.

¿Cuáles son los componentes del Ѱa?

Ѱa = Ѱo + Ѱt + Ѱm + Ѱg

● Potencial gravitacional (Ѱg): depende de la altura respecto a un punto de referencia (nivel del suelo), densidad del agua y aceleración de la gravedad. Generalmente, este potencial se desprecia en tejidos vegetales. ● Potencial mátrico (Ѱm): surge como consecuencia del efecto de los microcapilares entre las microfibrillas de celulosa y la presencia de macromoléculas y coloides en el citoplasma en la retención de agua. En la célula vegetal posee valores negativos. Es importante en suelos donde ocurre como consecuencia de la presencia de arcillas y materia orgánica. ● Potencial de turgencia (Ѱt): se manifiesta cuando el agua entra en la célula, ya que el volumen vacuolar aumenta y se ejerce una presión sobre las paredes celulares.

● Potencial osmótico (Ѱo): está determinado por la concentración de

sustancias osmóticamente activas en la vacuola. En la célula vegetal posee valores negativos; siendo próximo a cero en células totalmente hidratadas. El Ѱo se considera 0 para el agua pura.

Trabajando a niveles celulares el Ѱa se suele simplificar de la siguiente manera:

Ѱa = Ѱo + Ѱt

En el presente Trabajo Práctico, se realizará una comparación cualitativa del Ψa bajo diferentes concentraciones de sacarosa (azúcar común o azúcar de mesa) mediante el método gravimétrico. Originalmente la determinación de dicho potencial involucra la utilización de diferentes materiales de laboratorio (sacabocados, bisturí, balanzas analíticas, termómetro, solución de manitol) y la realización de cálculos que requieren de mucha precisión. En este trabajo práctico y con el fin de simplificarlo, utilizaremos materiales que tenemos a disposición en casa.

OBJETIVOS

- Comparar el Ѱa en parénquima amiláceo de tubérculos de papa bajo diferentes concentraciones de sacarosa mediante el método gravimétrico.

- Analizar hacia dónde se moverá el agua bajo las diferentes condiciones, relacionando la morfología con la funcionalidad del tejido involucrado en el presente método.

MATERIALES

✔ Frascos de vidrio (5)

✔ Balanza

✔ Vaso medidor

✔ Marcador permanente

✔ Cuchillo

✔ Tubérculos de papa

✔ Cuchara

✔ Sacarosa (azúcar de mesa)

PROCEDIMIENTO

1) Rotular los frascos (1, 2, 3, 4, 5) y agregar 50 mL de agua en cada uno de ellos (cantidad necesaria para cubrir todos los cuadrados de tubérculos de papa). A partir del frasco N° 2 agregar los gramos de azúcar correspondiente y disolver completamente.

Tratamientos:

1. agua pura (sin sacarosa)

2. 2 g de Sacarosa

3. 4 g de Sacarosa

4. 6 g de Sacarosa

5. 8 g de Sacarosa 2) Realizar distintos cortes en el tubérculo, eliminando la peridermis (cáscara). Luego a partir de la región central obtener un prisma cuadrangular, cuyas caras de los extremos midan aproximadamente 1x1 cm cada uno. Los cortes deben ser lo más homogéneos posibles.

3) A partir de un prisma cuadrangular de tubérculo de papa de 1cm x 1cm, cortar transversalmente 10 láminas lo más delgadas y homogéneas posible. Obtener un total de 50 cuadrados de papa (10 para cada tratamiento).

4) Pesar de forma conjunta los 10 primeros cortes (tratando de manipular lo menos posible con las manos, utilizando una cuchara o algún elemento para llevarlos hasta la balanza), registrar su peso inicial y completar la tabla con dicho valor. Llevar los cortes al frasco y tapar para mantener la humedad. Realizar el mismo procedimiento para todos los tratamientos.

5) Una vez registrado el peso inicial de todos los tratamientos, conservar los

mismos a temperatura ambiente durante 4 horas

6) Transcurridas las 4 horas de incubación, retirar el material del frasco, secar suavemente las láminas de papa con una servilleta de papel y pesar nuevamente para obtener el peso final. El mismo debe anotarse en la tabla.

RESULTADOS

Los resultados deben colocarse en la siguiente Tabla:

Tratamiento Solución Peso inicial

(g) Peso final (g)

1 Agua pura

2 2 g/50 mL Sacarosa

3 4 g/50 mL Sacarosa

4 6 g/50 mL Sacarosa

5 8 g/50 mL Sacarosa

ACTIVIDADES

1 Previo a realizar la experiencia:

¿Cómo piensa que será la diferencia en el peso en cada caso respecto a los otros tratamientos? Formule las hipótesis que se probarán en este trabajo práctico.

- ¿Hacia dónde se moverá el agua en el tratamiento 1? ¿Por qué?

2 Luego de realizada la experiencia:

- Discutir los resultados obtenidos. ¿Se cumplieron las hipótesis? ¿Qué cree que ocurrió en cada caso?

- ¿Cómo fue el peso final respecto al inicial en cada tratamiento?

- ¿Qué potenciales afectaron al a?

- ¿Qué tejido está involucrado en la determinación del a?

- Identifique en la siguiente figura cuál es dicho tejido e indique sus características citológicas.

- ¿Se obtendrán los mismos resultados si en lugar de un tubérculo utilizáramos un rizoma? y ¿En el caso que fuera un estolón?

Parte B: Transpiración vegetal

INTRODUCCIÓN

Se denomina transpiración al proceso vital que implica la pérdida de vapor de agua a nivel de diferentes órganos vegetales, incluso a través de las raíces. Las hojas son los órganos que con más intensidad manifiestan este proceso, y eso es debido a la elevada relación superficie/volumen. La transpiración puede tener lugar en las hojas a través de los ESTOMAS (siempre y cuando estén abiertos) y de la CUTÍCULA (que se ubica sobre la epidermis de dichos órganos). En los tallos de estructura primaria ocurre por la cutícula, mientras que en los de estructura secundaria a través de lenticelas. En general, la transpiración de tipo cuticular y lenticelar es baja, del 1 al 10% del total de agua transpirada. No obstante, es de gran importancia en caso de estrés hídrico severo o de marchitez foliar, cuando la mayoría o totalidad de los estomas están cerrados. La transpiración es un proceso puramente físico y regido por las leyes generales de la difusión. Su intensidad o velocidad depende de los gradientes de presión de vapor de agua que se establezcan entre las cámaras subestomáticas y el medio en contacto con la superficie exterior del estoma y de la cutícula. La mayor eficiencia transpiratoria a nivel de los estomas ocurre en los perímetros ostiolares, debido a que en los mismos el gradiente de presión de vapor es mucho mayor que en el centro del ostíolo. El ritmo transpiratorio de una planta o una hoja varía día a día, hora a hora, y frecuentemente minuto a minuto. Estas variaciones se deben a la influencia de los factores ambientales sobre las condiciones fisiológicas del vegetal. Los factores ambientales más importantes que influyen sobre el ritmo transpiratorio son:

● Radiación solar: Un aumento de iluminación provoca la apertura de los

estomas y, por lo tanto, aumenta la transpiración. La luz y la concentración

intercelular de CO2 controlan la apertura estomática en relación con la demanda

fotosintética de CO2. La radiación fotosintéticamente activa (PAR) inicia la

fotosíntesis, disminuyendo el CO2 intercelular, y por lo tanto, estimula la apertura estomática.

● Humedad: expresada comúnmente como HR. Debemos tener en cuenta que a una misma HR le pueden corresponder distintas presiones de vapor según la temperatura reinante. Un aumento de HR produce una disminución de la transpiración porque disminuye el gradiente de presión de vapor entre la cámara subestomática y el exterior.

● Temperatura: En general los estomas tienden a abrirse a medida que aumenta la temperatura. Sin embargo, temperaturas superiores a 30-40°C favorecen el cierre estomático. Un aumento moderado de la temperatura de la hoja produce incremento en el gradiente de presión de difusión del vapor de agua, y por lo tanto un incremento de la transpiración. Por otra parte, temperaturas elevadas favorecen la permeabilidad de la cutícula al agua y, con ello, aumenta la transpiración cuticular.

● Disponibilidad hídrica del suelo: Es un factor limitante en el ritmo transpiratorio. Los factores del suelo que influyen en la absorción radical de agua también lo hacen indirectamente en el ritmo transpiratorio. Otros factores importantes que influyen en el ritmo transpiratorio son: velocidad del viento, concentración de CO2, área y exposición foliar, estructura de cada planta,

entre otros (Para visualizar mejor estos efectos ver Material suplementario). En el presente Trabajo Práctico, se realizará una comparación de la tasa transpiratoria a lo largo del tiempo bajo diferentes condiciones ambientales mediante el método potométrico. El potómetro es un aparato muy sencillo que sobrestima la tasa transpiratoria debido a la eliminación de la resistencia del sistema radical al flujo del agua. Originalmente consiste en una bureta graduada en cuya parte inferior se inserta un tubo de látex, al cual en el otro extremo se le coloca una rama con sus respectivas hojas. Con el fin de simplificarlo, en este trabajo utilizaremos materiales que tenemos a disposición en casa, reemplazando algunos de sus componentes.

OBJETIVO

- Comparar la tasa transpiratoria bajo diferentes condiciones ambientales mediante el Método Potométrico.

- Analizar y relacionar la morfología con la funcionalidad de las estructuras principales involucradas en el proceso transpiratorio.

MATERIALES

✔ 3 Botellas de vidrio transparente

✔ Vaso medidor

✔ Marcador permanente

✔ Balde

✔ Papel film

✔ Ventilador

✔ Bolsa de plástico negra (tamaño consorcio)

✔ Tijera de podar o tijera grande

✔ Ramas de alguna planta (Ej: Eucalyptus)

✔ Regla

PROCEDIMIENTO

1) Llenar ¾ partes del balde con agua (casi lleno).

2) Cortar una rama relativamente grande de la planta seleccionada y sumergirlas de inmediato en el balde lleno de agua, a fin de evitar la entrada de burbujas de aire dentro de los vasos xilemáticos, lo cual rompe la continuidad de la columna hídrica xilemática.

3) Rotular las botellas (A, B y C) y colocar en las mismas una cantidad de agua conocida, utilizando un vaso medidor. Marcar con el marcador hasta dónde llega el agua. Las tres botellas deben tener la misma cantidad de agua. Ej. 500 ml.

4) Por lo mencionado previamente (punto 2), se debe realizar un segundo corte de la rama DEBAJO DEL AGUA e introducirla inmediatamente dentro de la botella con agua. Luego tapar con papel film la boca de la botella.

5) Controlar que las ramas pertenecientes a los tres potómetros cuenten con el mismo número de hojas, en el caso de que no fuera así se deben eliminar las sobrantes. A continuación, se deben colocar los potómetros bajo las diferentes condiciones ambientales (radiación solar, viento y oscuridad) y registrar la hora al hacerlo. A esa hora denominaremos tiempo 0.

A. RADIACIÓN SOLAR

(preferentemente día

soleado y a la tarde)

B. VIENTO C. OSCURIDAD

6) Luego de 60, 120 y 180 minutos registrar el volumen de agua descendido en cada potómetro. Para ello hacer una línea usando un marcador en el lugar hasta el cual descendió el agua (ver imagen).

A

B

7) Una vez transcurridos los 180 minutos, utilizando el vaso medidor, determinar los ml de agua descendidos en cada tiempo. Para ello utilizaremos la siguiente fórmula:

𝑚𝑙 𝑑𝑒 𝑎𝑔𝑢𝑎 𝑑𝑒𝑠𝑐𝑒𝑛𝑑𝑖𝑑𝑜𝑠 = 𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑖𝑛𝑖𝑐𝑖𝑎𝑙 𝑚𝑙 − 𝑉𝑜𝑙𝑢𝑚𝑒𝑛 𝑓𝑖𝑛𝑎𝑙 𝑚𝑙 Puntualmente, para cada tiempo lo haremos de la siguiente manera:

✔ 180 min: volcaremos el agua restante a los 180 min y tomaremos esa

medición (volumen final).

✔ 120 y 60 min: Colocaremos en la botella la cantidad de agua que

indique la marca que hicimos a esos tiempos y la trasvasaremos al vaso medidor para obtener la medición correspondiente.

* Nota: En todos los casos el volumen inicial será 500 ml, teniendo en cuenta el ejemplo utilizado en el punto 3.

8) A las ramas de cada tratamiento se le contarán nuevamente el Nº de hojas (a fin de descartar errores, en el caso de que alguna de las ramas hayan perdido hojas durante el ensayo), se las separarán del tallo y se conservarán para cada tratamiento solo las láminas de las mismas para luego determinar el área foliar.

(A) Potómetro casero. (B) Descenso de la columna de agua debido a la

transpiración de la rama a diferentes tiempos.

RESULTADOS

Los resultados deben colocarse en la siguiente Tabla:

Condición ml

transpirados

a los 60 min

ml

transpirados

a los 120 min

ml

transpirados

a los 180 min

N° de hojas

al final del

ensayo

A. Luz natural

B. Viento

C. Oscuridad

ACTIVIDADES

1. ¿Cómo piensa que será la tasa transpiratoria en cada caso respecto a

los otros tratamientos? Formule las hipótesis que se probarán en este

trabajo práctico.

2. Calcule para cada potómetro los ml de agua transpirada/cm2 de

superficie foliar a los 60, 120 y 180 min. Para ello determinaremos el

área, multiplicando el largo total por su ancho máximo de una hoja,

asumiendo una superficie rectangular (Montgomery, 1911).

Á𝐫𝐞𝐚 𝐝𝐞 𝐮𝐧𝐚 𝐡𝐨𝐣𝐚 = 𝐥𝐚𝐫𝐠𝐨 𝐦á𝐱𝐢𝐦𝐨 (𝐜𝐦)𝐱 𝐚𝐧𝐜𝐡𝐨 𝐦á𝐱𝐢𝐦𝐨 (𝐜𝐦)

PARA TENER EN CUENTA:

✔ Si todas las hojas son de igual tamaño: el valor del área se

multiplicará por el número total de hojas y se determinarán los ml de

agua transpirados para cada tiempo/ cm2 siguiendo la siguiente fórmula:

Á𝐫𝐞𝐚 𝐭𝐨𝐭𝐚𝐥 = á𝐫𝐞𝐚 𝐝𝐞 𝐮𝐧𝐚 𝐡𝐨𝐣𝐚 × 𝐍° 𝐭𝐨𝐭𝐚𝐥 𝐝𝐞 𝐡𝐨𝐣𝐚𝐬 𝐝𝐞 𝐥𝐚 𝐫𝐚𝐦𝐚

✔ Si las hojas son de distinto tamaño: se agruparán aquellas hojas

que sean de un tamaño parecido. A una de cada grupo se le determinará el área foliar y dicho valor será multiplicado por el número de hojas que correspondan a ese grupo. Se determinarán los ml de

agua transpirados para cada tiempo/ cm2 siguiendo las siguientes fórmulas:

Á𝐫𝐞𝐚 𝐩𝐚𝐫𝐜𝐢𝐚𝐥 𝟏 = á𝐫𝐞𝐚 𝐝𝐞 𝐮𝐧𝐚 𝐡𝐨𝐣𝐚 × 𝐍°𝐝𝐞 𝐡𝐨𝐣𝐚𝐬 𝐝𝐞 𝐭𝐚𝐦𝐚ñ𝐨 𝐩𝐚𝐫𝐞𝐜𝐢𝐝𝐨

Á𝐫𝐞𝐚 𝐩𝐚𝐫𝐜𝐢𝐚𝐥 𝟐 = á𝐫𝐞𝐚 𝐝𝐞 𝐮𝐧𝐚 𝐡𝐨𝐣𝐚 × 𝐍°𝐝𝐞 𝐡𝐨𝐣𝐚𝐬 𝐝𝐞 𝐭𝐚𝐦𝐚ñ𝐨 𝐩𝐚𝐫𝐞𝐜𝐢𝐝𝐨 Área total=Área parcial 1+ Área parcial 2

Luego para cada tratamiento se determinará los ml de agua

transpirados/cm2 siguiendo la siguiente ecuación:

Área total cm2 ml transpirados a los 60 min

1 cm2 X= ml

Área total cm2 ml transpirados a los 120 min

1 cm2 X= ml

Área total cm2 ml transpirados a los 180 min

1 cm2 X= ml

3. Grafique ml de agua transpirados/cm2 (ml de agua descendidos) vs tiempo.

5

4

3

2

1

0 0 60 120 180

Tiempo (min)

* Nota: En cada tratamiento (A, B y C) se deben unir los puntos

correspondientes a los ml de agua transpirados/cm2 para cada tiempo y posteriormente se debe trazar la mejor recta. Así quedarán graficadas 3 líneas rectas.

4. Discutir los resultados obtenidos. ¿Se cumplieron las hipótesis? ¿Qué cree que ocurrió en cada caso?

5. ¿Qué estructuras son las responsables de la mayor tasa transpiratoria?

6. ¿En qué tejido se encuentran ubicadas dichas estructuras? ¿Cuáles son las células que las conforman?

7. En la siguiente fotografía se visualiza la epidermis foliar en vista superficial, tal como la observaría bajo el microscopio óptico. A) Observe la figura A e identifique las estructuras mencionadas en los puntos anteriores. B) Teniendo en cuenta lo analizado, complete el esquema de la figura B indicando sus partes.

ml/c

m2

Situaciones problemáticas Ex Olímpicos

Problema 1 La Bahía de Samaná se ha convertido en una de las regiones del Caribe con mayor atracción turística para la observación de ballenas jorobadas (Hoyt 1999) debido a que miles de ballenas procedentes del Atlántico Norte migran desde sus áreas de alimentación, en las altas latitudes, para reproducirse en las cálidas aguas dominicanas durante los meses de enero a marzo, tres meses durante los cuales no sólo se aparean sino que dan luz y cuidan de sus crías (Mattila et al. 1989). Durante esta etapa en su ciclo de vida, la mayor congregación de ballenas jorobadas sucede principalmente en las aguas del Banco de la Plata y de la Navidad (Mattila et al. 1994; IUCN 2011). Al comienzo de la temporada se toma la decisión de que una de las mejores metodologías para llevar a cabo un estudio de población en un área de reproducción es a través de la individualización de las ballenas usando fotografías de la parte ventral de sus colas además de ambos perfiles de las dorsales. El siguiente paso es la foto-identificación y creación del catálogo de ballenas jorobadas en la Bahía de Samaná 2011.

Figura 3: Distribución espacial de madre y ballenato de manera semanal durante la temporada

2011.

Sobre la base de lo leído y analizado, coloca al lado de cada pregunta si es verdadero (V) o falso (F):

1. Las parejas de madre y ballenato incrementaron en número de a medida que la temporada fue avanzando. Esto muestra la probabilidad de que un mayor número de madres fueron fecundadas finalizando la temporada del año anterior.

2. A finales de Enero termina la llamada “temporada alta” donde ocurre la

mayor actividad por parte de las ballenas jorobadas.

3. Las parejas de madre y ballenato han sido avistadas más al interior de la bahía, demostrando el hecho de que necesitan estar más protegidas tanto de los posibles depredadores como del mal tiempo.

4. Madre y ballenato no han entrado tan al interior de la bahía como en

años anteriores, lo que podría indicar que esta pareja no se siente presionada por las embarcaciones.

Problema 2 La auxina es una fitohormona vegetal fundamental para el desarrollo y crecimiento de las plantas. Al estudiar la biosíntesis de esta hormona se presentan dos mecanismos principales, como se muestra en la Figura 1.

Figura 1: Modelos propuestos para la ruta de biosíntesis de la auxina (IAA).

A partir de esta información, un grupo de científicos propone estudiar si las familias de las triptófano aminotransferasas de Arabidopsis (TAA) y Yuca (YUC) actúan en la misma vía de biosíntesis de la auxina. Para ello se producen 3 plantas mutantes diferentes inducibles que sobreexpresan TAA y/o YUC:

TAA1ox (obtenidas a partir de plantas normales con TAA1 inducido por estradiol)

yuc1D (YUC1 regulado por un promotor del virus del mosaico)

TAA1ox-yuc1D (doble mutante)

pER8 (planta normal, control).

Las plantas se mantuvieron en un medio de agar Murashige-Skoog con estradiol, obteniéndose los resultados presentados en la Figura 2.

Figura 2: Fenotipos de las distintas variantes de Arabidopsis tratados en el medio con estradiol (A) plántulas de 10 días de pER8 (control), TAA1ox, yuc1D, y TAA1ox-yuc1D (doble mutante) y (B-E) aumento de la unión tallo-raíz. (B) plántulas de 10 días depER8, TAA1ox, YUC6ox, y TAA1oxYUC6ox y (G-J) aumento de la región apical de raíz (barras de escala-1 cm).

Sobre la base de lo leído y analizado, coloca al lado de cada pregunta si es verdadero (V) o falso (F):

1. Los resultados parecen indicar que el modelo A es más adecuado para describir la biosíntesis de la auxina.

2. Se esperaría que un mutante TAA1 KO (knock-out) presente una mayor cantidad de raíces adventicias con respecto a pER8.

3. Se esperaría que los mutantes TAA1ox-yuc1D y TAA1ox-YUC6ox presenten ritmos de elongación celular más elevados con respecto a yuc1D y YUC6ox, respectivamente.

4. La mutante yuc1D presenta un fenotipo que parecería indicar niveles más elevados de IAA con respecto al control.

Problema 3

Un estudio denominado “A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin” fue llevado a cabo en la ciudad de Wuhan durante el primer brote de Covid-19. Como parte de este estudio, se realizaron pruebas serológicas para evaluar un receptor mediante el cual, posiblemente, el virus pueda entrar a las células alveolares.

La imagen que se muestra a continuación, muestra los resultados de las pruebas serológicas:

1 Zhou, P., Yang, X., Wang, X. et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat

origin. Nature 579, 270–273 (2020). https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7

a. Resultados de la prueba de q-PCR (q: cuantitativa; PCR: reacción en

cadena de la polimerasa) diseñada por los investigadores para evaluar la

presencia de SARS-CoV-2 en los pacientes. BALF: fluido de lavado

bronquio-alveolar. OS: Hisopado oral. AS: Hisopado anal. WIV01-WIV07:

pacientes.

b. Resultados del ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas por densidad

óptica (ELISA OD) en uno de los pacientes para niveles de IgM e IgG.

c. Resultados de ELISA para varios pacientes.

Por otro lado, la siguiente imagen muestra el resultado de pruebas por inmunofluorescencia realizadas para probar el rol de ACE2, enzima conversora de angiotensina II, como posible receptor de entrada a las células alveolares:

En la imagen se puede apreciar la fluorescencia de 3 tipos de fluorocromos con afinidad por algún componente celular. Fluorocromos: Azul (DAPI): proteína nuclear. Verde (FITC): ACE2. Rojo(N-Cy3): proteína viral.

Muestras: h: humano. b: murciélago. s: cerdo. c: especie de felino. m: ratón. Untransfected: no expresa ACE2. Sobre la base de lo leído y analizado, coloca al lado de cada pregunta si es verdadero (V) o falso (F):

1) Para la elaboración de un test fiable es necesario seleccionar cebadores para PCR que solapen con regiones conservadas del genoma de los betacoronavirus.

2) Los niveles de IgM permanecen altos aún después de la recuperación del paciente.

3) Los niveles de IgG son mayores que los de IgM en relación con los grupos

control en la prueba realizada a varios pacientes.

4) El coronavirus del cual se extrajo la proteína para realizar la segunda prueba puede infectar a todos los mamíferos seleccionados.

5) El receptor ACE2 podrían estar involucrado en la entrada a las células

alveolares en humanos y murciélagos.

Problema 4

Efectos del entrenamiento intermitente de alta intensidad (HIIT) sobre el control glucémico, la capacidad aeróbica y la pérdida de grasa corporal en pacientes con

intolerancia a la glucosa y sobrepeso.

En un estudio realizado por un equipo multidisciplinario de investigadores de la Universidad de la Frontera, Chile (Mancilla R. et at, 2014), se determinó los efectos terapéuticos de un programa de entrenamiento intermitente de alta intensidad (HIIT, por sus siglas en inglés) sobre el control glucémico, la capacidad aeróbica y la grasa corporal en pacientes con intolerancia a la glucosa y sobrepeso u obesidad. La investigación incluyó a dieciocho pacientes, quienes fueron invitados a participar en un programa de entrenamiento compuesto de 36 sesiones realizada a lo largo de 12 semanas. A su vez, dentro de la población muestra, se realizó una división entre el grupo adherente (GA), conformado por diez pacientes que realizaron veintiséis o más sesiones, y el grupo no adherente (GNA), constituido por los ocho restantes que participaron de una media de trece sesiones. Los datos obtenidos al final de las 12 semanas de entrenamiento se muestran en los siguientes gráficos (figuras 1, 2 y 3), en los cuales se comparan los valores obtenidos para las diferentes variables antes de comenzar el programa y los obtenidos al finalizar la intervención terapéutica.

Figura 1. Cambios en la glucemia de ayuno (GL0) y en la glucemia post carga oral de 75 g de glucosa

(GL120) en GNA y GA. Los valores se muestran en promedio ± desviación estándar. Pre0: indica antes de la intervención. Post12: indica después de 12 semanas de intervención.*indica diferencias significativas (p <0,05) respecto a Pre0 dentro de cada grupo.**indica diferencias significativas (p < 0,05) entre grupos.

Figura 2.Cambios en el VO2máx en GNA y GA. Los valores se muestran en promedio ± desviación estándar.

Pre0: indica antes de la intervención. Post12: indica después de 12 semanas de intervención.*indica diferencias significativas (p <0,05) respecto a Pre0 dentro de cada grupo.**indica diferencias significativas (p <

0,05) entre grupos.

Figura 3.Cambios en la grasa corporal en GNA y GA. Los valores se muestran en promedio ± desviación

estándar. Pre0: indica antes de la intervención. Post12: indica después de 12 semanas de intervención.*indica diferencias significativas (p <0,05) respecto a Pre0 dentro de cada grupo.**indica diferencias significativas (p <

0,05) entre grupos.

Sobre la base de lo leído y analizado, coloca al lado de cada pregunta si es verdadero (V) o falso (F):

1) Tanto en el grupo GA como en el GNA se observaron mejoras significativas en la captación de glucosa plasmática, en la capacidad aeróbica y en la lipólisis luego de las 12 semanas de intervención.

2) El estímulo que ejerce el ejercicio intenso y de corta duración sobre la expresión de los transportadores GLUT- 4 muscular en la membrana sarcoplasmática fue uno de los factores que causó la disminución de la glucemia Post12 en el grupo GA.

3) El ejercicio físico induce la movilización de ácidos grasos desde el tejido adiposo hacia el tejido muscular esquelético para la producción de energía a través del metabolismo aeróbico.

4) Ningún paciente del grupo GNA logró normalizar su glucemia, mientras que todos los pacientes del grupo GA si lograron hacerlo.

RESPUESTAS CORRECTAS

DE EJERCICIOS PARA NIVEL I

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 1

1- a) b) c) d) e)

F F V F V

2- a) b) c) d) e)

F F V F V

3- a) b) c) d) e)

V F F V F

4- a) b) c) d) e)

F V F F F

5- a) b) c) d) e)

F V F V V

6- a) b) c) d) e)

V F F V F

7- a) b) c) d) e)

F F V F V

8- a) b) c) d) e)

F F V V F

9- a) b) c) d) e)

V V V F F

10- a) b) c) d) e)

F V F F V

11- a) b) c) d) e)

F F V F F

12- a) b) c) d) e)

F V F F F

13- a) b) c) d) e)

F V V F F

14- a) b) c) d) e)

F F F V F

15- a) b) c) d) e)

F V F V F

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 2

16- a) X b) c) d) e)

17- a) V b) F c) V d) F e) V

18-

Paciente A Paciente B Paciente C

Problemas de cicatrización X

Infección X

Hipertensión X

19- Muestra Tipo A Tipo B Tipo AB Tipo 0 Factor Rh + Factor Rh -

1 x x

2 x x

3 x x

4 x x

RESPUESTAS CORRECTAS

DE EJERCICIOS PARA NIVEL II

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 1

1- a) b) c) d) e)

F V V F V

2- a) b) c) d) e)

V V V F F

3- a) b) c) d) e)

V V F F V

4- a) b) c) d) e)

F V F F V

5- a) b) c) d) e)

V V F V F

6- a) b) c) d) e)

F V V F V

7- a) b) c) d) e)

F V V F F

8- a) b) c) d) e)

V V F F V

9- a) b) c) d) e)

F V F F V

10- a) b) c) d) e)

V F V F V

11- a) b) c) d) e)

F V F F V

12- a) b) c) d) e)

V F V F V

13- a) b) c) d) e)

F V F F V

14- a) b) c) d) e)

V F V F V

15- a) b) c) d) e)

F V F F F

SITUACIÓN PROBLEMÁTICA N° 2 16-

a) b) c)

17-

% de gramíneas Cantidad promedio de ovejas

700-1000

1400 -1800

1900-2400

2500-3000

2600-2900

4000-4500

1% x

100% x

22-

a) b) c)

23- a) b) c) d) e)

V V V F F

24- a) b) c) d) e)

F F V V V

25- a) b) c) d) e)

F F F F V

26- a) b) c) d) e)

V V F V F

27 a) b) c) d) e) f) g)

V F F F F F V

18- a) b) c) d) e)

F F F F V

19- a) b) c) d) e)

F V F F F

20- a) b) c) d) e)

V F F F V

21- a) b) c) d) e)

V V F F F

28- Cantidad inicial Cantidad promedio de ovejas Cantidad promedio de guanacos

100-

200

200-

250

400-

450

500-

650

800-

850

145-

150

250-

300

320-

450

550-

600

620-

700

100 de cada una x x

200 de cada una x x

400 de cada una x x

32-

Escenario Resultado

A La especie 1 es la competidora fuerte, por lo que excluirá a la especie 2.

D Ambas especies son competidoras más fuertes sobre ellas mismas que sobre la

otra, por lo que coexisten establemente.

B La especie 2 es la competidora fuerte, por lo que excluirá a la especie 1.

C

Ambas especies son competidoras más fuertes sobre la otra que sobre ellas

mismas, por lo que una puede excluir a la otra dependiendo de las abundancias

iniciales.

a) b) c)

V F V

29- a) b) c) d) e)

V V V V F

30- a) b) c)

F V F

31- a) b) c)

V F F

33- a) b) c) d) e)

V V F V F

SITUACIONES PROBLEMÁTICAS

EX OLÍMPICOS

PROBELMA 1

a) b) c) d)

V F V F

PROBLEMA 2

a) b) c) d) F F V V

PROBLEMA 3

a) b) c) d)

F F F V

PROBLEMA 4

a) b) c) d) F V V F