Manual de Anatomia y Fisiologia

Laboratorio Modular de Anatomía y

Fisiología [Primer semestre]

[Imagen alusiva al manual correspondiente]

Autores: M.C. Ma. Antonieta Castelló Leyva, M.F. Priscila S. Rendón Vallejo,

Dr. Alfonso Leija Salas

Revisores:

Universidad Autónoma del Estado de Morelos

Facultad de Farmacia

Manual del Laboratorio Modular de … 2


CONTENIDO

Contenido ................................................................................................................................. 2

Introducción. ............................................................................................................................ 3

Organización del Laboratorio: ................................................................................................ 3

Reglas de Laboratorio ....................................................................................................... 3

Medidas de Seguridad ....................................................................................................... 4

Practica I. Posición anatomica y planos corporales ......................................................... 6

Objetivos: ........................................................................................................................... 6

Competencias: ................................................................................................................... 6

Introducción: ...................................................................................................................... 6

Actividades Preliminares: ................................................................................................. 8

Material y reactivos: .......................................................................................................... 9

Toxicologìa:...................................................................................................................... 31

Metodologia: ...................................................................................................................... 9

Resultados: ........................................................................................................................ 9

Discusion de resultados: ................................................................................................ 10

Conclusiones: .................................................................................................................. 10

Bibliografia: ...................................................................................................................... 10



INTRODUCCIÓN.

El objetivo del manual de prácticas del laboratorio modular 1 es que el estudiante de

farmacia, mediante una serie de prácticas de laboratorio basada en el modelo de

competencias de la UAEM, refuerce los conocimientos de anatomía y la fisiología,

relacionándolos con la práctica profesional y generando así información que facilite la

elaboración e integración de procesos de atención farmacéutica en relación al individuo

sano y de esta forma le permita detectar con más facilidad los estados patológicos.

ORGANIZACIÓN DEL LABORATORIO:

[Incluya en este apartado las recomendaciones de una correcta organización de dicho

laboratorio]

REGLAS DE LABORATORIO

1. El alumno deberá asistir puntual al laboratorio y permanecer en él durante toda la

clase.

2. La asistencia deberá de ser por lo menos del 80% de las sesiones.

3. Una vez iniciada la práctica, no se permitirá el acceso a los alumnos.

4. Antes de realizar una práctica, deberá leerse el manual para adquirir una idea clara

de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre anotados

cuidadosamente apenas se conozcan.

5. Durante las sesiones de laboratorio, quedará estrictamente prohibido jugar, comer,

beber o hacer uso equipos electrónicos tales como celulares, equipos de cómputo, I-

pads o tablets.

6. En caso de requerir ausentarse de clase, deberá solicitarse autorización al

responsable del laboratorio.



Después de cada sesión, el alumno deberá investigar, responder y entregar resultados,

discusión y conclusiones planteados al final de cada práctica

MEDIDAS DE SEGURIDAD

Durante todo el desarrollo de la práctica el alumno deberá portar bata de algodón

de manga larga, lentes de seguridad y guantes.

Todo aquel alumno que posea cabello largo deberá traerlo debidamente recogido

para evitar accidentes.

Los zapatos adecuados a emplear en todas las sesiones de laboratorio serán

aquellos de piel que cubran completamente el pie.

Antes de realizar una práctica, debe leerse detenidamente para adquirir una idea

clara de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre

anotados cuidadosamente apenas se conozcan.

El orden y la limpieza deben presidir todas las sesiones de laboratorio. En

consecuencia, al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente el

material y la mesa que se ha utilizado.

Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de

que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.

No devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos utilizados

sin consultar con el profesor.

No tocar con las manos y menos con la boca los productos químicos.

Los productos inflamables (gases, alcohol, éter, etc.) deben mantenerse alejados

de las llamas de los mecheros. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos

productos, se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan

mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al

apagar la llama.

Cuando se manejan productos corrosivos (ácidos, álcalis, etc.) deberá hacerse con

cuidado para evitar que salpiquen el cuerpo o los vestidos. Nunca se verterán



bruscamente en los tubos de ensayo, sino que se dejarán resbalar suavemente por

su pared.

Cuando se quiera diluir un ácido, nunca se debe echar agua sobre ellos; siempre al

contrario: ácido sobre agua.

No pipetear nunca con la boca. Se debe utilizar la bomba manual, una jeringuilla o

artilugio que se disponga en el laboratorio.

Al enrasar un líquido con una determinada división de escala graduada debe

evitarse el error de paralaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos

para que la visual al enrase sea horizontal.

Cuando se calientan a la llama tubos de ensayo que contienen líquidos debe

evitarse la ebullición violenta por el peligro que existe de producir salpicaduras. El

tubo de ensayo se acercará a la llama inclinado y procurando que ésta actúe sobre

la mitad superior del contenido y, cuando se observe que se inicia la ebullición

rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo

otra vez al producirse una nueva ebullición, realizando así un calentamiento

intermitente. En cualquier caso, se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o

hacia otra persona.



PRACTICA I. POSICIÓN ANATOMICA Y PLANOS CORPORALES

OBJETIVOS:

El alumno conocerá la terminología anatómica: posición anatómica, planos secantes y

términos relacionados con éstos.

COMPETENCIAS:

- El alumno comprende el significado de los planos anatómicos y su importancia en la

anatomía y la clínica

- Identifica los órganos y su situación dentro del plano corporal.

INTRODUCCIÓN:

Es indispensable que para la comprensión de la anatomía tengamos parámetros específicos

del cuerpo humano ya que con ellos se nos facilitará su estudio y nos permitirá hablar un

mismo idioma. Los parámetros más significativos son la posición anatómica que nos permite

ubicar al cuerpo humano en un espacio tridimensional al conocer las cavidades y sus

contenidos ya que dependiendo de la morfología de éstas, los órganos encuentran acomodo

para su funcionamiento adecuado.

El cuerpo humano está constituido por millones de células que son la unidad básica morfo-

funcional del cuerpo humano. La unión de células forman tejidos; los órganos son una

organización de distintos tejidos; y un sistema es un conjunto de órganos.

Se entiende por posición anatómica a la que considera a la persona erecta, de frente al

observador, con los miembros superiores pendientes a los lados del cuerpo, las palmas de

las manos hacia el frente, los pies ligeramente separados y con la vista al horizonte. Los

planos principales son: sagital, frontal o coronal y transverso.



http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html

ACTIVIDADES PRELIMINARES:

Revisa las siguientes páginas y videos

http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html

https://www.youtube.com/watch?v=D0ZqyH1hQm8

https://www.youtube.com/watch?v=Nxgby8DaHMY



MATERIAL Y REACTIVOS:

METODOLOGÍA:

1. En un modelo anatómico de torso humano y en otro de plastilina, plástico o esquema

de piezas anatómicas, trate de explicar los diferentes planos anatómicos.

2. En un segmento del organismo o en un órgano (puede utilizarse esquema o maqueta)

explique los siguientes términos: distal, proximal, medial, lateral, interno y externo.

3. Localizar en piezas anatómicas o en el esquema las distintas cavidades corporales

(craneal, torácica, abdominal, raquídea y pélvica).

RESULTADOS:

Definir los siguientes planos:

1. Sagital

2. Frontal o coronal

3. Transverso

4. Superior o cefálico34

5. Inferior o caudal

6. Anterior o ventral

7. Medial

8. Lateral

9. Posterior

Escriba el significado de los siguientes prefijos y términos anatómicos.

CANTIDAD MATERIAL CANTIDAD REACTIVOS

10

Tarjetas 12 x 5 cm.

Imagen o esquema del cuerpo humano.



• SUPRA • HIPO

• INFRA • HIPER

• EPI • PERI

• SUB • VISCERAL

• PRE • INTER

• POST • INTRA

• RETRO • PROXIMAL

• INTERNO • DISTAL

• EXTERNO • PARIETAL

MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS

[Introduzca las especificaciones para el tratamiento de los residuos generados por la

metodología realizada]

DISCUSIÓN DE RESULTADOS:

CONCLUSIONES:

BIBLIOGRAFÍA:

1. http://www.anatolandia.com/2013/10/planos-anatomicos.html

2. http://www.saludalia.com/atlas

3.http://www.intercambiosvirtuales.org/software/human-anatomy-atlas-v3-0-1-atlas-de-

anatomia-humana-completo



PRACTICA II. HISTOLOGIA Y TEJIDOS BASICOS

OBJETIVOS:

El alumno comprende el concepto de la histología.

Identifica los 4 tejidos básicos en el cuerpo y sus características.

COMPETENCIAS:

Reconoce los 4 tejidos básicos

Comprende la diferencia entre ellos y la importancia de cada uno

Identifica características morfológicas especiales de cada tejido

INTRODUCCIÓN:

Las células se agrupan de acuerdo a sus características formando tejidos. Un

tejido es un conjunto de células similares que suelen tener un origen embrionario

común y que funcionan en asociación para desarrollar actividades

especializadas. Los tejidos no sólo incluyen células, sino en algunos casos fibras

y sustancia o matriz extracelular. La matriz es secretada por las mismas células

y en algunos tejidos es casi nula, mientras que en otros es abundante y contiene

estructuras y moléculas importantes desde el punto de vista estructural y

funcional.

La histología es la ciencia que estudia los tejidos, su estructura, su desarrollo y

sus funciones.

Existen 4 tipos de tejidos básicos en el organismo:

1. Epitelial

2. Conectivo

3. Muscular

4. Nervioso



www.construyendoaprendemos.blogspot.com


Investiga los 4 tejidos básicos y su función y dibuja en tarjetas bibliográficas su apariencia al

microscopio.



1 caja 1 1 caja

Preparaciones histológicas de los 4 tejidos básicos del cuerpo (laminillas)

Microscopio

Colores



METODOLOGÍA:

1. Toma cuidadosamente las laminillas de los diversos tejidos que se te proporcionaron y

obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x.

2. Identifica las diferencias entre cada tejido.

RESULTADOS:

Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos.




Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece. Lee acerca

de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus características

morfológicas.

CONCLUSIONES:

En base a lo observado y lo que investigaste, plantea tus conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA:

1. Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª

edición. Madrid.

2. Ross M.H., Pawlina W. Histología. (2012). Editorial Panamericana. 6ta. Edición.



PRACTICA III A. TEJIDO EPITELIAL

OBJETIVOS:

Que el alumno reconozca al tejido epitelial de revestimiento y glandular y comprenda su

importancia.

COMPETENCIAS:

1. El alumno identifica al tejido epitelial.

2. Reconoce las diferencias entre tejido de revestimiento y glandular

3. Clasifica el tejido epitelial de revestimiento por el número de células que lo constituyen y

por la forma de las mismas

4. Reconoce la diferencia entre glándulas unicelulares y pluricelulares

INTRODUCCIÓN:

El tejido epitelial es uno de los 4 tejidos básicos del organismo. Este es una verdadera

cubierta en órganos y cuerpo (como la piel). Tapiza y protege las superficies internas o

externas de los organismos o estructuras derivadas del exodermo embrionario; es un tejido

de escasa sustancia intercelular y tiene las células muy agrupadas.

Generalmente formado por varias capas de células, en la lámina basal (colágeno y

proteínas asociadas: entactina, laminina y fibronectina) descansan células que se irán

diferenciado y migrando a la superficie para luego morir y descamarse (proliferación,

diferenciación y descamación) .Cubre las superficies del cuerpo y el interior de órganos

huecos. Las células están sobre una membrana basal y tejido conectivo. Por lo general no

están irrigados, por lo que se nutren por difusión desde los vasos del tejido conectivo

subyacente.



Se divide en dos grandes grupos

a) De revestimiento

Se distinguen y se clasifican de acuerdo con tres características principales:

* El número de las capas celulares en el epitelio (monoestratificado simple,

estratificado pseudoestratificado y de transición).

* La altura y forma de la capa superficial de las en el epitelio (plano, cúbico o

cilíndrico).

* La presencia de especializaciones de membrana (microvellosidades, ribete en

cepillo, chapa estriada, estereocilios; cilios o flagelos, etc)

b) Glandular

Se distingue y clasifica por:

a) Tipo de secreción

b) Forma de secretar

c) Lugar a donde vierte su secreción

d) Integridad glandular al secretar

e) Célula blanco de la secreción

www.efn.uncor.edu


Investiga sobre el tejido epitelial su función y clasificación.

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB1qFQoTCNOA76HGg8cCFYHUgAodT0oAhQ&url=http%3A%2F%2Fwww.efn.uncor.edu%2Fdepartamentos%2Fdivbioeco%2Fanatocom%2FBiologia%2FLos%2520Tejidos%2FEpitelial.htm&ei=jXW6VZOGNIGpgwTPlIGoCA&bvm=bv.99028883,d.cWw&psig=AFQjCNEqk4F5j2Ryl-15YorEDZNorjAHCA&ust=1438369545186987



Lee acerca de sus características


1 caja Preparaciones histológicas varias de tejido

epitelial de revestimiento y glandular

1 caja Colores

METODOLOGÍA:

1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido epitelial de revestimiento y glandular y

obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x.

2. Identifica las diferencias entre cada laminilla.

RESULTADOS:





Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si

revestimiento o glandular.

Identifica el número de capas que presenta el tejido epitelial de revestimiento y clasifícalo en

base a ello.

También observa la forma de las células y menciona si son cúbicas, cilíndricas o

columnares o planas.

Observa si no existen especialidades en la superficie celular como estereocilios,

microvellosidades etc.

Lee acerca de sus características y trata de relacionar las funciones del tejido con sus

características morfológicas.

CONCLUSIONES:


BIBLIOGRAFÍA:


edición. Madrid.


3. www.efn.uncor.edu

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB1qFQoTCNOA76HGg8cCFYHUgAodT0oAhQ&url=http%3A%2F%2Fwww.efn.uncor.edu%2Fdepartamentos%2Fdivbioeco%2Fanatocom%2FBiologia%2FLos%2520Tejidos%2FEpitelial.htm&ei=jXW6VZOGNIGpgwTPlIGoCA&bvm=bv.99028883,d.cWw&psig=AFQjCNEqk4F5j2Ryl-15YorEDZNorjAHCA&ust=1438369545186987



PRACTICA III B. TEJIDO CONECTIVO

OBJETIVOS:

Que el alumno reconozca al tejido conectivo no especializado y especializado investigue sus

características y comprenda su importancia.

COMPETENCIAS:

1. El alumno identifica al tejido conectivo no especializado y especializado

2. Reconoce las diferencias entre tejido conectivo

3. Clasifica el tejido conectivo en especializado (adiposo, óseo, cartilaginoso, sanguíneo) o

no especializado.

INTRODUCCIÓN:

El tejido conectivo o conjuntivo, forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Su

función principal es sostener y mantener unidos a otros tejidos (hueso, sangre y tejido

linfoide. Está formado por células (fibroblastos y células reticulares) y componentes

extracelulares como fibras (colágena, elastina y fibrilina) y sustancia fundamental (sustancia

gelatinosa formada por carbohidratos asociados a proteínas (glucosaminoglucanos) en las

que se encuentran las células y fibras).

Clasificación:

1. Tejido conectivo no especializado:

1.1 Tejido conectivo laxo: (es siempre irregular)

– Tejido conjuntivo mucoso o gelatinoso



– Tejido conjuntivo reticular

– Tejido mesenquimal

1.2 Tejido conectivo denso:

– Tejido conectivo denso regular

– Tejido conectivo denso irregular

2. Tejidos conectivos especializados:

– Tejido adiposo

– Tejido cartilaginoso

– Tejido óseo

– Tejido hematopoyético

www.conceptodefinicion.de

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB1qFQoTCIPM5d7Gg8cCFcqagAod5HwARg&url=http%3A%2F%2Fconceptodefinicion.de%2Ftejido-conectivo%2F&ei=DXa6VcORJsq1ggTk-YGwBA&bvm=bv.99028883,d.cWw&psig=AFQjCNFfoCVJA4YyTUNpzd9VmpsLouHTTQ&ust=1438369662148351




Investiga sobre el tejido conectivo su función y clasificación.

Lee acerca de sus características tanto del especializado como en no especializado y

realiza un mapa conceptual.



conectivo no especializado y especializado

(cartílago, sangre, adiposo, conectivo laxo, etc)

1 caja Colores

METODOLOGÍA:

1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido conetivo no especializado y especializado

2. Obsérvalos detalladamente al microscopio con los aumentos de 10x y 40x


RESULTADOS:





Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si

especializado o no especializado y porque.

Observa la morfología de las células que lo componen y sus características.



CONCLUSIONES:


BIBLIOGRAFÍA:


edición. Madrid.

2. Ross M.H., Pawlina W. (2012). Histología. Editorial Panamericana. 6ta. Edición.



PRACTICA IV. TEJIDO SANGUINEO

OBJETIVOS:

1. El alumno conocerá los niveles de organización en biología

2. Reconocerá el significado e importancia de la citología como la rama de la medicina

encargada del estudio de las células.

3. Reconocerá el significado e importancia de la histología como la rama de la medicina

encargada del estudio de los tejidos, su agrupación y sus relaciones.

4. Reconocerá a la sangre como un tipo especializado de tejido conectivo.

5. Conocerá la morfología y fisiología de los componentes sanguíneos : células

(eritrocitos, leucocitos), restos celulares (plaquetas) y matriz líquida conocida como

plasma sanguíneo.

COMPETENCIAS:

Aprende los niveles de organización biológica presentes en los organismos

Investiga, analiza y distingue la diferencia entre citología e histología y reconoce los 4

tejidos básicos presentes en un organismo

Identifica a la sangre como parte del tejido conectivo y los elementos que la

conforman

Discute sus resultados y plantea conclusiones

INTRODUCCION:

Para estudiar los organismos pluricelulares, es indispensable comprender los niveles de

organización presentes en ellos. Así, el nivel más simple encontrado en un organismo es el

átomo, constituido por partículas subatómicas. Los átomos se unen formando moléculas,

entre las cuales podemos distinguir a los hidratos de carbono, los lípidos, las proteínas y los

ácidos nucléicos, conocidas como macromoléculas. Estas moléculas se agrupan en



orgánulos con funciones definidas en la célula, el siguiente nivel jerárquico de organización

de los seres vivos. Células con función y estructura similar se agrupan formando tejidos.

Cabe mencionar que existen cuatro tejidos que conforman a los seres vivos:

1. epitelial,

2. conectivo,

3. muscular

4. nervioso.

Los tejidos se agrupan formando órganos, y los órganos a su vez se agrupan realizando la

misma función conformando sistemas. Finalmente los sistemas se integran y relacionan

formando aparatos presentes en los organismos.

Dentro del tejido conectivo, entre otros, se agrupa al tejido sanguíneo. Se le llama

hematopoyesis al proceso de formación, desarrollo y maduración de la sangre (glóbulos

rojos, blancos, plaquetas y plasma) a partir de una célula madre pluripotencial no

diferenciada (Steam cell). El proceso consta de tres fases en base a sus sitios

hematopoyéticos:

• Fase mesoblástica: Fase inicial, en el Pedúnculo del tronco y el Saco vitelino, ocurre en la

2ª semana embrionaria.

• Fase hepática: En la 6ª semana de vida embrionaria, el hígado es sembrado por células

madres del saco vitelino.

• Fase mieloide: El bazo y la médula ósea fetal presentan células madres hepáticas

En el adulto, la médula ósea roja es el sitio de hematopoyesis:

Médula ósea roja, tejido esponjoso de los huesos planos, como el esternón, las vértebras,

la pelvis y las costillas: función hematopoyética (40% agua + 40% grasa + 20% proteínas).

Médula ósea amarilla, tejido adiposo de se los canales medulares de los huesos largos.

Es inactiva (15% agua + 80% grasa + 5% proteínas).



anatomiafisamuniversity.wordpress.com

La sangre está formada por células (eritrocitos y leucocitos), fragmentos celulares

(trombocitos o plaquetas) y plasma. Tiene un color rojo debido a la presencia de un

pigmento presente en los glóbulos rojos: la hemoglobina. Cuando la sangre no coagulada

se centrifuga, las células sedimentan en el fondo del tubo observándose tres estratos, uno

superior color ámbar llamado plasma, uno blanquecino, muy delgado constituido por

glóbulos bancos o los leucocitos y las plaquetas y uno inferior de color rojo oscuro formado

por eritrocitos o glóbulos rojos.

Los eritrocitos hematíes o glóbulos rojos al microscopio se observan como discos rojos

bicóncavos anucleados en mamíferos y con núcleo en reptiles, aves y algunos otros

vertebrados. Su principal función es el transporte de oxígeno y dióxido de carbono. En

solución hipotónica, los eritrocitos se hinchan volviéndose más redondeados hasta

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=https%3A%2F%2Fanatomiafisamuniversity.wordpress.com%2F&ei=tpSeVcOqPMPzsAWCm4LIBQ&psig=AFQjCNHPPGb_bX-qV_mLdL5_5b39S_UKxg&ust=1436542444663248



destruirse (hemólisis). En cambio en solución hipertónica, entonces pierden líquido y se

arrugan, dándole a la célula un aspecto de estrella.

Los glóbulos blancos o leucocitos son células nucleadas, esférica en el torrente sanguíneo

pero pueden modificarse al salir del vaso sanguíneo o en el portaobjetos. Su función

principal es la defensa del organismo contra agentes patógenos.

Por la forma del núcleo y la presencia o no de gránulos citoplasmáticos, los leucocitos se

pueden clasificar en:

a) polimorfos nucleares o granulocitos: Poseen diversidad morfológica en el núcelo, o

núcleos lobulados y gránulos citoplasmáticos que se tiñen selectivamente, lo que los

clasifica en neutrófilos, eosinófilos y basófilos.

b) mononucleares o agranulocitos, poseen núcleos redondos bien definidos y no

lobulados y no contienen granulaciones. Se clasifican en linfocitos y monocitos.

Las plaquetas o trombocitos son fracciones celulares de una célula localizada en la médula

ósea roja llamada megacariocito. Su principal función es la coagulación sanguínea.

http://raulcalasanz.wordpress.com


Vista y descarga las siguientes páginas y lee acerca del tejido sanguíneo y su origen

http://www.facmed.unam.mx/deptos/biocetis/PDF/Portal%20de%20Recursos%20en%20Line

a/Apuntes/Tejido-sanguineo.pdf




CANT. DESCRIPCION OBSERVACIONES

1 Colorantes para citología: Giemsa

10 Portaobjetos y cubreobjetos

6 Lancetas para obtención de sangre

1 Microscopio

1 Hueso largo de res o de cerdo (fémur o húmero) Partido por mitad y con epífisis y diáfisis

1 Resina para fijar

1 Paquete pequeño de algodón

1 Rollo de papel secante

1 Frasco de alcohol al 70%

TOXICOLOGÌA:

Investiga de los reactivos a utilizar la toxicidad de los mismos (si existe) y medidas de

primeros auxilios en caso de intoxicación (inhalación, digestión, contacto piel y ojos)

METODOLOGÍA:

Observación de tejido sanguíneo:

1. Lavar las manos con agua y jabón.

2. Limpiar y desinfectar muy bien con un algodón humedecido en alcohol, las yemas de

los dedos

3. Obtener una gota de sangre de la yema de alguno de los dedos ya desinfectados con

alcohol (se sugiere el dedo anular)

4. Colocarla en el portaobjetos la gota de sangre, extendiéndola rápidamente con

ayuda de otro portaobjetos en forma de frotis.

5. Dejarla secar la muestra de sangre para fijarla posteriormente en metanol durante 4

minutos.



6. Realizar tinción de Giemsa y colocar el cubreobjetos con la resina, sobre el frotis.

7. Observar al microscopio, describir e identificará células:

a) Eritrocitos de color rojo, sin núcleo (en el caso de mamíferos), pequeños y

homogéneos.

b) Leucocitos polimorfo nucleares, identificables por la presencia como su

nombre lo indica, de núcleos irregulares teñido de color azul, escaso

citoplasma y gránulos citoplásmicos (rojos en el caso de eosinófilos, rojos;

azules en el caso de basófilos e incoloros en el caso de neutrófilos.

c) Leucocitos monomorfonucleares o linfocitos con núcleo redondo azul y escaso

citoplasma eosinófilo.

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Observación de tejido hematopoyético (Médula ósea roja):

1. Tomar el hueso largo observando características presentes en él

2. Cuidadosamente evaluar consistencia y características del tejido presente en el interior

de las epífisis

3. Revisar características y consistencia del tejido presente en la diáfisis del hueso.

4. Notar diferencias, hacer dibujo y sacar conclusiones.



RESULTADOS:

DIBUJA Y COMPARA:

ERITROCITOS

LEUCOCITOS



PLAQUETAS

EPIFISIS:

DIAFISIS:



MANEJO ESPECÍFICO DE RESIDUOS GENERADOS:

[Introduzca las especificaciones para el tratamiento de los residuos generados por la

metodología realizada]


1. ¿Qué estudia la citología?

2. ¿Qué estudia la histología?

3. ¿Cuáles son los niveles de organización biológica?

4. ¿A qué tejido pertenece la sangre?

5. ¿Dónde se origina el tejido sanguíneo en un embrión y en un individuo adulto?

6. ¿Cuál es la función de cada uno de los elementos del tejido sanguíneo?

CONCLUSIONES:

En base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea

conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA:

1. Aranda F. A., León R. J.R., Morales B, J. Anatomía y Fisiología. “Manual de

prácticas de laboratorio” (2003). ENEO UNAM. p.21-26

2. Paniagua R, Nistal M, Sesma P, Álvarez-Uría M, Fraile B, Anadón R, Sáez F.

“Histología vegetal y animal” (2007). Mc Graw Hill Interamericana. Vol. 2. 4t.

Edición. Madrid. España. p.527-584

3. http://www.facmed.unam.mx/deptos/biocetis/PDF/Portal%20de%20Recursos%

20en%20Linea/Apuntes/Tejido-sanguineo.pdf

4. www.anatomiafisamuniversity.wordpress.com

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=https%3A%2F%2Fanatomiafisamuniversity.wordpress.com%2F&ei=tpSeVcOqPMPzsAWCm4LIBQ&psig=AFQjCNHPPGb_bX-qV_mLdL5_5b39S_UKxg&ust=1436542444663248



PRACTICA V A. TEJIDO MUSCULAR

OBJETIVOS:

Que el alumno reconozca al tejido muscular, revise las diferencias entre el músculo estriado

esquelético, liso o visceral y cardiaco y comprenda su importancia.

COMPETENCIAS:

1. El alumno identifica al tejido muscular

2. Reconoce las diferencias entre tejido muscular estriado esquelético, liso o visceral y

cardiaco

3. Clasifica al tejido muscular por la forma de las células, la presencia o no de estriaciones y

la localización de sus núcleos

4. Investiga el papel del músculo estriado esquelético, liso visceral y cardiaco, su papel en la

contracción muscular y su importancia

INTRODUCCIÓN:

El tejido muscular forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Está formado por

células alargadas con núcleos en la periferia (estriado) o en el centro (liso) pero formando

filamentos que se orientan paralelamente a la dirección del movimiento.

Se clasifica en:

a) Estriado voluntario o esquelético, aquel que mueve al cuerpo,

b) Liso involuntario o visceral el que se encuentra en órganos como estómago, intestino,

útero, etc

c) Estriado cardiaco



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Investiga sobre el tejido muscular su función y clasificación.

Lee acerca de sus características tanto del músculo liso o visceral, estriado o esquelético y

cardiaco así como su localización y función



muscular estriado o esquelético, liso o visceral y cardiaco

1 caja Colores

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB1qFQoTCKHNv7TQg8cCFQoXkgod19kFCA&url=http%3A%2F%2Fbiologia-test.blogspot.com%2F2014%2F07%2Ftejidos-animales-3.html&ei=MYC6VeHwEIquyATXs5dA&bvm=bv.99028883,d.cWw&psig=AFQjCNH05gA0wKi5ueh5UfX50kCGGVZisw&ust=1438372262647433



METODOLOGÍA:

1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido muscular estriado esquelético, liso o

visceral y cardiaco



RESULTADOS:

Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos con sus

diferencias.




Revisa acerca de los tejidos que observaste e identifica a qué grupo pertenece, si al

músculo estriado esquelético, liso involuntario y cardiaco y porque reciben estos nombres




CONCLUSIONES:


BIBLIOGRAFÍA:

1.Paniagua et (2007). ”Citología e Histología Vegetal y Animal”. Editorial Mc Graw Hill. 4ª

edición. Madrid.




PRACTICA V B. TEJIDO NERVIOSO

OBJETIVOS:

Que el alumno reconozca al tejido nervioso, revise como se clasifica y cuál es su

importancia.

COMPETENCIAS:

1. El alumno identifica al tejido nervioso

2. Investiga el papel del músculo tejido nervioso, su papel en la irritabilidad y su importancia.

INTRODUCCIÓN:

El tejido nervioso forma parte de los cuatro tejidos básicos del cuerpo. Constituido por

neuronas, transmite mensajes de todo el cuerpo.Las neuronas son la unidad anatómica y

fisiológica del tejido nervioso y son clasificadas en aferentes si viajan de forma centrípeta

desde las células sensoriales receptoras de estímulos nerviosos hacia el Sistema Nervioso

Central o Eferentes si van del Sistema Nervioso Central hacia los órganos efectores de la

respuesta, llámense glándulas o músculos. Así, pueden clasificarse también en neuronas

sensitivas, motoras e interneuronas o de asociación (las que conectan a las sensitivas con

las motoras).

El Sistema Nervioso se divide en:

I. Central.- Cerebro, cerebelo, bulbo raquídeo y medula espinal.

II. Periférico.- Nervios espinales y pares craneales.

Clasificación:

II. I Autónomo o vegetativo



II. II Somático o de la vida de relación

www.mapamental.es


1. Investiga sobre el tejido nervioso, su función y clasificación.

2. Lee acerca de sus características tanto del sistema nervioso central como del sistema

nervioso periférico, y de éste último, las características del autónomo y somático

3. Revisa a que se conoce como sistema nervioso simpático y parasimpático y sus

características y realiza con toda la información anterior un mapa conceptual

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=&url=http%3A%2F%2Fwww.mapamental.es%2Fmapa-mental-del-sistema-nervioso%2F&ei=EsPEVcqXBMyfgwSD-bqQAw&bvm=bv.99804247,d.eXY&psig=AFQjCNGROYsHgCVlsO-TLDSZ2iPiLrxZMA&ust=1439044754435260





nervioso

1 caja Colores

METODOLOGÍA:

1. Toma cuidadosamente las laminillas de tejido nervioso



RESULTADOS:

Dibuja cada una de las laminillas que observaste con los diversos aumentos con sus

diferencias.


Revisa los tejidos que observaste e identifica




CONCLUSIONES:




BIBLIOGRAFÍA:


edición. Madrid.




PRACTICA VI. COMPARACION MORFO-FISIOLOGICA DE APARATOS

DIGESTIVOS ANIMALES Y SUS ESTRUCTURAS

OBJETIVOS

El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con la alimentación en los

animales y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en los sistemas digestivos,

en organismos inferiores y superiores.

COMPETENCIAS

Observa el aparato digestivo de aves, peces y monogástricos

Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato digestivo y órganos

accesorios a él.

Observa y compara las diferencias entre tractos digestivos de diversas especies.

INTRODUCCION

El aparato digestivo, es un tubo largo, con glándulas asociadas, siendo su función la

transformación de moléculas complejas presentes en los alimentos en sustancias más

simples y fácilmente utilizables por el organismo.

En el humano adulto, el tubo digestivo mide unos once metros de la boca al ano. En la boca

empieza propiamente la digestión. Los dientes trituran los alimentos y las secreciones de las

glándulas salivales los humedecen e inician su descomposición química. Luego, el bolo

alimenticio atraviesa la faringe, sigue por el esófago y llega al estómago, bolsa muscular de

litro y medio de capacidad, en condiciones normales, cuya mucosa secreta el potente jugo

gástrico, rico en ácido clorhídrico y enzimas. Aquí, el alimento es mezclado hasta

convertirse en una papilla llamada quimo.



A la salida del estómago, el tubo digestivo se prolonga con el intestino delgado, de unos

cinco metros de largo, aunque muy replegado sobre sí mismo. Su primera porción o

duodeno recibe las secreciones de las glándulas intestinales, del páncreas y de la vesícula

biliar. El jugo entérico o intestinal es rico en enzimas. El páncreas presenta dos tipos de

secreciones, una rica en bicarbonatos y otra rica en enzimas que actúan sobre los

principales nutrimentos presentes en los alimentos. La secreción de la vesícula biliar no

contienen enzimas sino sales biliares cuya función es saponificar y emulsificar las grasas

presentes en los alimentos. Es en el duodeno donde se realiza la absorción de la mayor

cantidad de nutrimentos.

El tubo digestivo continúa por el intestino grueso, de algo más de metro y medio de

longitud. Su porción final es el recto, que termina en el ano, por donde se evacuan al

exterior los restos indigeribles de los alimentos.

es.slideshare.net

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB1qFQoTCJDg1faal8cCFQvQgAodvqcMEg&url=http%3A%2F%2Fes.slideshare.net%2Fmartabiogeo%2Funidad-4-aparatos-digestivo-y-respiratorio-43437809&ei=d8TEVdDIEouggwS-z7KQAQ&bvm=bv.99804247,d.eXY&psig=AFQjCNGi1DEOpTFi5m5kBBw_nuklOuEZjQ&ust=1439045031422483



ACTIVIDADES PRELIMINARES

Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato digestivo de:

Humano

Conejo

Ave

Pez

MATERIAL Y REACTIVOS

CANT DESCRIPCION OBSERVACIONES

1 Tabla de disección

1 Estuche de disección

1 Guates

1 Papel secante

1 Paquete gasa

1 Paquete algodón

1 Tracto digestivo completo de conejo * (con órganos accesorios: hígado, vesícula

biliar, páncreas)

1 Tracto digestivo completo de ave * (con órganos accesorios: hígado, vesícula

biliar, páncreas)

*Escoger por equipo un tracto digestivo completo para realizar la práctica y comparar

con los aparatos digestivos de los demás equipos.

TOXICOLOGÌA





METODOLOGÍA

1. Disecar el tracto digestivo de cada especie e identificar cada una de sus partes.

2. Identifican cada especie, glándulas accesorias (Hígado, páncreas y vesícula biliar)

3. Compararlos con las láminas e ilustraciones que obtuviste en la actividad preliminar a

la práctica

4. Hacer esquemas del tracto digestivo de cada ejemplar

5. Hacer un cuadro comparativo con los ejemplares observados

6. Investigar la función de cada parte del tracto digestivo incluyendo órganos y glándulas

accesorias

RESULTADOS

Realizar dibujos de todas las observaciones

EJEMPLAR: ORGANO U

ESTRUCTURA:

FUNCION: ESQUEMA:




DISCUSIÓN DE RESULTADOS

1. Describa brevemente el aparato circulatorio humano. Mencione las similitudes y

diferencias con el aparato circulatorio de las diferentes especies: ave, pez y

monogástrico (conejo).

2. Explica cómo cambia la capacidad digestiva de los mamíferos en relación a la edad o

a una enfermedad específica.

3. ¿Puede la forma y número de dientes ayudar a explicar los hábitos alimenticios en los

vertebrados?, explica y menciona dos ejemplos.



CONCLUSIONES

Con base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea

conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA

1. Byrd-Bredbenner C, Moe G, Beshegetoor D, Berning J. “Perspectives in

Nutrition” (2010). Ninth edition. Mc Graw Hill. Nueva York.

2. http://digestive.niddk.nih.gov/spanish/pubs/yrdd/

3. http://www.juntadeandalucia.es/averroes/~29701428/salud/digesti.htm



PRACTICA VII. RESPIRACIÓN EN VERTEBRADOS E INVERTEBRADOS

TERRESTRES Y ACÚATICOS

OBJETIVOS:

Observar la anatomía y función de diferentes órganos respiratorios (branquias,

tráqueas y pulmones)

Evaluar la función del sistema respiratorio en fases diferentes tales como reposo y

actividad física.

COMPETENCIAS:

Observa el aparato respiratorio en diferentes fases de reposo o actividad física.

Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato respiratorio y

órganos accesorios a él.

INTRODUCCIÓN:

El sistema respiratorio está formado por un conjunto de órganos que tiene como principal

función llevar el oxígeno atmosférico hacia las células del organismo y eliminar del cuerpo el

dióxido de carbono producido por el metabolismo celular. Los órganos que componen el

sistema respiratorio son cavidades nasales, la faringe, la laringe, la tráquea, los bronquios,

los bronquiolos y los dos pulmones. Los pulmones son los órganos centrales del sistema

respiratorio donde se realiza el intercambio gaseoso. El resto de las estructuras, llamadas

vías aéreas o respiratorias, actúan como conductos para que pueda circular el aire inspirado

y espirado hacia y desde los pulmones, respectivamente. Aunque la cavidad bucal permite

la entrada de aire a las vías respiratorias no forma parte el sistema respiratorio.

La parte interna de las vías respiratorias está cubierta por:

- Una capa de tejido epitelial, cuyas células muy unidas entre sí protegen de lesiones e

infecciones.



- Una mucosa respiratoria, responsable de mantener las vías bien húmedas y una

temperatura adecuada.

La superficie de la mucosa respiratoria posee dos tipos de células:

- Células mucosas: elaboran y segregan moco hacia la entrada de las vías respiratorias.

- Células ciliadas: poseen cilios en constante movimiento con el fin de desalojar el moco y

las partículas extrañas que se fijan en la mucosa respiratoria.

Seguramente nunca te has puesto a pensar: "Debo respirar". Lo haces sin darte cuenta, ya

que es algo que se ejecuta en forma mecánica, incorporando oxígeno cuando inspiras (o

inhalas) y expeliendo anhídrido carbónico cuando espiras (o exhalas). Para mantenerse

activas, las células del organismo necesitan oxígeno. El sistema respiratorio realiza esta

función mediante la respiración, que es un proceso involuntario, controlado por los centros

respiratorios ubicados en el tronco cerebral. Lo accionan ciertos órganos y estructuras como

las vías respiratorias o aéreas (cavidad nasal, faringe, laringe, tráquea y bronquios) y los

pulmones. Luego de que el aire llega a los pulmones, el suministro de oxígeno es

transportado por la sangre, para distribuirlo a todos los tejidos del cuerpo. Paralelamente,

este sistema se encarga de expulsar el dióxido de carbono hacia el exterior del organismo.

El sistema respiratorio está formado principalmente por dos grandes secciones:

Las vías respiratorias

El aparato pulmonar

El sistema respiratorio es el encargado, en el organismo humano, de la respiración. Ahora

bien, ¿qué se entiende por respiración? La podemos definir como el conjunto de

mecanismos por los cuales las células toman oxígeno (O2) y eliminan el dióxido de carbono

(CO2) que producen. Por lo tanto la respiración es un proceso complejo que puede dividirse

en cinco sucesos funcionales importantes:

1) Ventilación alveolar, que es el intercambio de aire entre la atmósfera y los alvéolos

pulmonares, y viceversa;



2) Hematosis o intercambio de gases entre los alvéolos pulmonares y la sangre del capilar

pulmonar;

3)Transporte de gases, que se realiza a través de la sangre;

4)Difusión de gases entre la sangre y las células a nivel tisular; y

5)Respiración real, que es la utilización de O2 y producción de CO2 por parte de las células.


El alumno realizará la elaboración personal de un diagrama que represente la secuencia de

operaciones experimentales a partir del guión de la práctica a elaborar.

El alumno investigará los usos y manejos de materiales y reactivos que se utilizarán en la

práctica, así como la toxicidad de los reactivos empleados.



3 Peceras

1 Bisturí o navaja

1

Tabla de unicel de 15 x 15

cm.

Alfileres

1 Reloj con segundero

1 Regla de 30 cm.



TOXICOLOGÌA:



METODOLOGÍA:

RESPIRACIÓN EN PECES (REPOSO Y ACTIVIDAD)

1. Registrar el peso y tamaño de los peces.

2. Introducir tres peces de diferente tamaño en una pecera o vaso con agua de la

pecera.

3. Contar el número de respiraciones (movimientos operculares) por minuto de cada pez

en reposo.

4. Someter a los peces al movimiento durante uno o dos minutos, posteriormente

cuente el número de respiraciones durante cinco minutos anotando la frecuencia

respiratoria por cada minuto.

5. Observar cuidadosamente como se efectúan los movimientos respiratorios, con la

finalidad de ventilar las branquias.

6. Registrar sus datos.

1

3

3

Balanza

Peces vivos (diferentes

tamaños)

Mamíferos (Homo sapiens)

de diferentes tallas y sexos



RESPIRACIÓN EN MAMÍFEROS (REPOSO Y ACTIVIDAD)

1. Se necesitan tres voluntarios de tu equipo, de sexo y tallas diferentes.

2. Otro compañero, registrará el número de respiraciones y palpitaciones a un voluntario

en condiciones de reposo, se hará lo mismo para cada voluntario.

3. Cada voluntario se sujetará a ejercicios intensos durante cinco minutos (carrera,

lagartijas, subir escaleras, abdominales, etc.).

4. Terminados los cinco minutos, se registrará nuevamente el número de respiraciones

y palpitaciones de cada voluntario después del ejercicio, hasta alcanzar las

condiciones que se tenían en reposo, con la finalidad de establecer el tiempo de

recuperación

5. Registre sus datos.

RESULTADOS:

TABLAS DE RESULTADOS

REPOSO

PEZ PESO TAMAÑO RESPIRACIONES

INICIALES

RESPIRACIONES

FINALES

VOLUNTARIO PESO TALLA RESPIRACIONES PALPITACIONES



ACTIVIDAD


Los desechos biológico-infecciosos se almacenaran de la siguiente manera y de acuerdo al

reglamento interno del almacén de desechos.


De acuerdo a los datos obtenidos, discute cuales son los parámetros que se modifican al

estar en reposo o realizando alguna actividad física.

Indica si las actividades físicas planteadas modifican la respiración del individuo y que tipo

de ejercicios modifican en mayor proporción el proceso de respiración.

VOLUNTARIO PESO TALLA RESPIRACIONES PALPITACIONES



CONCLUSIONES:


conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA:

1. Enciclopedia de salud y seguridad en el trabajo, El cuerpo humano, Capitulo X

Aparato Respiratorio Directores del capítulo: Alois David y Gregory R. Wagner



PRACTICA VIII A. COMPARACION MORFO-FISIOLOGICA DE APARATOS

GENI-TO-URINARIOS DE DIVERSOS ANIMALES Y SUS ESTRUCTURAS

OBJETIVOS

El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con el aparato genito-urinario

en animales y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en organismos inferiores

y superiores.

COMPETENCIAS

Observa e identifica el aparato genito-urinario de aves, peces y monogástricos

Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato genito-urinario y

órganos accesorios a él (vesículas seminales, próstata, etc)

Observa y compara las diferencias entre tractos genito-urinarios de diversas

especies.

INTRODUCCION

Revisa la introducción de la práctica VIIIB.


Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato genito-urinario

de:

Humano

Conejo

Ave

Pez




CANT DESCRIPCION OBSERVACIONES

1 Canal de conejo

1 Canal de ave

1 Canal de pez



1 Guantes

1 Papel secante

1 Paquete gasa

1 Paquete algodón

TOXICOLOGÌA



METODOLOGÍA

RESULTADOS



1. Describa brevemente el aparato genito-urinario en humanos.



2.¿Cuál es el origen embriológico del aparato renal?

3. Origen embriológico del aparato reproductor (genitales y órganos accesorios)

4. ¿Qué factores alimenticios o de la edad pueden afectar la excreción renal?

CONCLUSIONES


conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA



PRACTICA VIII B. APARATO URINARIO

OBJETIVOS:

6. El alumno revisará las partes del aparato urinario y su función

7. Identificará los cambios tanto en volumen como en composición y características

físicas y químicas de la orina

8. Analizará efectos de diferencias fisiológicas sobre la función renal

COMPETENCIAS:

Investiga y comprende las partes que componen al aparato urinario y su función

Analiza las características de la orina y sus variaciones en composición y volumen

bajo diversas situaciones

INTRODUCCION:

Se conoce como aparato urinario al conjunto de órganos que producen la orina. Está

formado por:

Riñones (2)

Uréteres (2)

Vejiga (1)

Uretra (1)

Algunas de las principales fas funciones del aparato urinario son:

Balance hídrico y electrolítico del cuerpo.

Fabricación y excreción de orina.

Control de la presión arterial mediante el sistema renina angiotensina (no confundir

con la enzima digestiva renina o quimiosina).



Producción de eritropoyetina

Activación, junto con el hígado, de la vitamina D (para fijación de calcio en huesos)

La unidad anatómica y fisiológica del riñón es la nefrona y está formada por:

1. Glomérulo y capsula de Bowman (constituyen el corpúsculo de Malpighi)

2. Túbulos renales:

a) contorneados proximales

b) Asa de Henle

c) Túbulos contorneados distales

3. Túbulos colectores



La formación de orina tiene tres pasos:

a) Filtración: La arteria renal aferente filtra iones, glucosa, a.a, urea, creatinina y otras

sustancias disueltas en la sangre hacia la cápsula del Bowman en el glomérulo.

El líquido filtrado hacia la cápsula contiene tanto sustancias de desecho como moléculas

aún útiles al organismo.

www.aula2005.com

http://www.aula2005.com/



b) Reabsorción: Al llegar a los túbulos contorneados proximales, son reabsorbidas

sustancias aún útiles para el organismo (glucosa, aminoácidos, sales y agua) y regresadas

nuevamente a la sangre.

El 80% de la reabsorción del agua ocurre en el túbulo contorneado proximal mediante

osmosis y 20% en el túbulo contorneado distal y el túbulo colector. Así, la orina se

concentra.

c) Filtración: Sustancias de desecho desde los capilares renales a todo lo largo del túbulo

renal son filtradas para eliminarse.

www.icarito.cl



www.zonagratuita.com

La orina es un líquido amarillo claro, transparente, formada por 96% de agua y un 4% de

sólido (urea, creatinina, NaCl, N2, P, cloruros, amonio, ácido úrico, etc). Esta es conducida

por los uréteres hacia la vejiga donde es almacenada para posteriormente contraerse de

forma involuntaria por medio de nervios parasimpáticos y excretar la orina al exterior por la

uretra. Aproximadamente se eliminan 1.5 litros de orina/día.


Vista y descarga las siguientes páginas y lee acerca del aparato urinario

www.youtube.com/watch?v=1VqHdRLbjPk

www.youtube.com/watch?v=gyxu38fVtgk

http://www.educarchile.cl/ech/pro/app/detalle?id=136113




CANT. DESCRIPCION OBSERVACIONES

200 mL Solución de NaCl al 0.9%

200 mL Solución de NaCl al 1.8%

300 mL Solución bicarbonato de sodio al 0.4%

400 mL Café negro

1L Jugo de arandano

1L Agua de Jamaica concentrada

1L Agua purificada

500L Agua destilada

8 Esparragos verdes cocidos

8 Frascos nuevos y limpios para colectar muestras de orina

15 Vasos desechables para tomar agua

Tiras reactivas para detectar múltiples metabolitos en orina

1 Paquete pequeño de algodón

1 Rollo de papel secante

1 Paquete plastilina de colores

TOXICOLOGÌA:



METODOLOGÍA:

1. Llegar al laboratorio COMPLETAMENTE EN AYUNAS y recolectar la orina en un frasco

limpio hasta vaciar completamente la vejiga. Este será denominado tiempo cero.

2. Ingerir el total de la solución o el alimento que corresponda a cada voluntario del equipo

en un tiempo no mayor a diez minutos.



3. Recolectar muestras de orina cada 30 minutos e identificarlas como tiempo uno (30 min

después de ingerida la solución), tiempo dos (60 min) y tiempo tres (90 min).

4. A cada muestra se le determinará volumen, color y apariencia.

5. Posteriormente se sumergirá la tira reactiva (una por muestra obtenida), se sacudirá el

exceso de orina y una vez seca se procederá a leer el resultado para determinar

concentración y componentes presentes en cada muestra (proteínas totales, bilirrubina,

urobilinógeno, NO2, NH4, glucosa, etc)

Mientras esperas los tiempos de colección de orina, realiza con tus compañeros de

equipo con plastilina una maqueta del aparato urinario y la nefrona.

Grupo Solución o alimento a ingerir al llegar al laboratorio posterior a la toma de muestra inicial

A Ingerir agua destilada a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo:50 kg=500 mL agua)

B Ingerir solución de NaCl al 0.9% equivalente al 0.25% del peso corporal (Ejemplo: 50 kg=125 mL)

C Ingerir solución de NaCl al 1.8% equivalente al 0.25% del peso corporal (Ejemplo: 50 kg=125 mL)

D Ingerir solución de bicarbonato de sodio al 0.4% equivalente al 0.6% del peso corporal (Ejem 50kg=300 mL)

E Ingerir agua de jamaica a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo 50kg=500 mL)

F Ingerir agua potable 10 mL por kg de peso corporal

G Ingerir tres esparragos con 10 mL de agua por kg de peso corporal

H Ingerir jugo de arándano a razón del 1% del peso corporal (Ejemplo 50Kg=500 mL)

I Ingerir 500 mL de café negro

J No ingerir líquido alguno (grupo control)



RESULTADOS: LLENAR TABLA PARA T0, T1, T2 Y T3

TO:

Grupo Vol Color Olor Aspecto Urobil Bilirru Gluco Ceton Prot NO2 celulas pH

A

B

C

D

E

F

G

H

I

J

T1:


A

B

C

D

E

F

G

H

I

J



T2:


A

B

C

D

E

F

G

H

I

J

T3:


A

B

C

D

E

F

G

H

I

J




Investiga y describe en este apartado, donde y como desecharás los materiales utilizados

en la práctica de hoy.


Compara los resultados obtenidos con cada uno de los grupos experimentales. Observa que

diferencias hubo en la cantidad, apariencia y características físicas y químicas de las

muestras de orina en los 4 tiempos (t0, t1, t2 y t3). Analiza y comenta con tus compañeros.

CONCLUSIONES:

En base a la observación y discusión de tus resultados, investiga y plantea tus conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA:



2. Paniagua R, Nistal M, Sesma P, Álvarez-Uría M, Fraile B, Anadón R, Sáez F.

“Histología vegetal y animal” (2007). Mc Graw Hill Interamericana. Vol. 2. 4t.

Edición. Madrid. España. p.527-584

3. www.aula2005.com

4. www.icarito.cl



PRACTICA IX A. IDENTIFICACION DEL APARATO CIRCULATORIO DE LA

RATA Y SUS ESTRUCTURAS

OBJETIVOS

El alumno identificará las principales estructuras relacionadas con el aparato circulatorio

animal y comprenderá la relación ESTRUCTURA-FUNCIÓN en organismos inferiores y

superiores.

COMPETENCIAS

Observa el aparato circulatorio de la rata

Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el aparato circulatorio y sus

funciones

INTRODUCCION

El aparato circulatorio

.

http://www.texasheart.org/HIC/Anatomy_Esp/images/fig1_crosslg_sp.jpg




Busca, revisa e investiga diferencias y función de cada porción del aparato digestivo de:

Humano

Rata


CANTIDAD DESCRIPCION OBSERVACIONES

1 Frasco grande (que quepa una rata)



1 carrete Hilo grueso

1 par Guates

1 frasco para anestesia

200 ml éter etílico

1 Papel secante

1 paquete gasa

1 paquete algodón

1 Rata Servirá también para la práctica IX B

TOXICOLOGÌA



METODOLOGÍA



1. Anestesiar a la rata colocando una gasa o algodón impregnado en éter dentro del frasco

2. Hacer una incisión a lo largo de la parte media ventral de la pared abdominal y observar

in situ aparato circulatorio del animal.

3. Disecar el aparato circulatorio e identificar cada una de sus partes.

4. Compararlos con las láminas e ilustraciones que obtuviste en la actividad preliminar a la

práctica

5. Hacer esquema del aparato circulatorio de cada ejemplar

6. Investigar la función de cada parte del aparato circulatorio y su origen embriológico

NO DESCARTAR AL ANIMAL PUES SE CONTINUARA CON LA PRACTICA IX B

RESULTADOS

Realizar dibujos de todas las observaciones

ORGANO U

ESTRUCTURA:

FUNCION: ESQUEMA:




Menciona en cómo se deben desechar los residuos animales utilizados durante la práctica.

Igualmente menciona donde deben desecharse material como: guantes, algodón y gasa

utilizados.


Describa brevemente el aparato circulatorio humano.

CONCLUSIONES


conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA

1. Alberts B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P. (2007) “Molecular

Biology of the cell” 5th edition. Garland Science. New York.





PRACTICA IX B. SISTEMA CARDIOVASCULAR Y MICROCIRCULACIÓN

(IDENTIFICACION DE FACTORES QUE AFECTAN LA ACTIVIDAD DEL

APARATO CIRCULATORIO)

OBJETIVOS:

1. El alumno analizará algunos factores que alteran la circulación capilar y observará

las características del flujo capilar en la aorta aislada de rata.

2. Por otro lado, el alumno observará el efecto farmacológico de la adrenalina e

histamina sobre la circulación capilar.

3. Adicionalmente, el alumno aplicará sus conocimientos para identificar los distintos

planos de orientación del corazón.

COMPETENCIAS:

INTRODUCCION:

El sistema cardiovascular humano está conformado por el corazón, los vasos sanguíneos y

el suministro de sangre. Estos actúan como un sistema para suministrar el vital oxígeno,

nutrientes y hormonas a los tejidos y eliminar el dióxido de carbono y productos de

desechos metabólicos. Este sistema también juega un papel central en la estabilización de

los niveles de temperatura y el pH del cuerpo, así como mantener la homeostasis.

La fuerza que necesita la sangre para circular se la entrega un motor que está ubicado casi

en el centro del pecho: el corazón, que es una bomba que funciona sin parar un solo

segundo. Estos elementos, junto a otros que apoyan la labor sanguínea, conforman el

Sistema o Aparato circulatorio. El sistema o aparato circulatorio es el encargado de

transportar, llevándolas en la sangre, las sustancias nutritivas y el oxígeno por todo el



cuerpo, para que, finalmente, estas sustancias lleguen a las células. También tiene la misión

de transportar ciertas sustancias de desecho desde las células hasta los pulmones o

riñones, para luego ser eliminadas del cuerpo. El

sistema o aparato circulatorio está formado, entonces, por la sangre, el corazón y los vasos

sanguíneos.


El estudiante deberá leer y estudiar previamente el sistema circulatorio y sus funciones.

Adicionalmente deberá tener conocimientos sobre las funciones de la adrenalina e

histamina.


Tabla de disección Rata hembra o macho (la misma de la

práctica IX A)

Estuche de disección Glutaraldehído al 2%

Hilo grueso Cajas Petri

Guantes Corcho

Eter etílico Jeringas de 10 ml

Portaobjetos Micropipeta con puntas de un ml

Cubreobjetos Solución de Noradrenalina 1x10-3M

Frasco grande para anestesia Solución de Histamina 1x10-3M

Algodón Regla graduada en mm.

Gasa Vernier

Toallas de papel

TOXICOLOGÌA:



METODOLOGÍA:

Obtención de la aorta torácica

7. Anestesie a la rata por la técnica acostumbrada.

8. Coloque a la rata en posición para realizar una incisión de la parte media ventral de la

pared abdominal, procurando fijar las asas intestinales con alfileres en el anillo de

corcho sin producir mucha tensión.

9. Saque la aorta a través de la incisión.

10. Coloque la aorta de rata en una caja de Petri con solución Ringer Krebs y corte un

pequeño anillo de 3-5 mm, el cuál colocará sobre la platina del microscopio.

11. Seleccione objetivo de 10, 25, o 40 enfocando de tal manera que se visualice

fácilmente la circulación, venas, arterias, capilares, etc., del mesenterio. (La solución

Ringer Krebs debe cambiarse cada 10 minutos, para evitar calentamiento y

resequedad de la aorta).

Efecto de Adrenalina:

1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, de preferencia elegir un

fragmento de la aorta obtenida anteriormente, mida su diámetro y grosor de paredes.

2. Agregue 1 ml de Adrenalina a la solución Krebs y observe los cambios.

3. De varios lavados con la solución Ringer Krebs a la aorta de rata con la idea de

retirar la adrenalina y observe los cambios.

Efecto de Histamina:

1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su diámetro y grosor

de paredes.

2. Posteriormente agregue 1 ml de Histamina al recipiente con la arteria o arteriola y la

solución de krebs, y observe los cambios.



3. De varios lavados a la aorta con solución krebs con la idea de retirar la Histamina.

4. Comente los cambios observados.

Efecto de temperatura

1. Escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su diámetro y

grosor de paredes.

2. Agregue solución Ringer Krebs frío 0º C y observe los cambios.

3. De varios lavados con la solución Ringer krebs a la aorta a temperatura ambiente.

4. Por otro lado, escoja una arteria o arteriola y una vena dentro del campo, mida su

diámetro y grosor de paredes.

5. Agregue solución Ringer Krebs caliente 40º C, y observe los cambios.

Disección de corazón

1. Por otro lado, se realizará la disección del corazón del animal utilizando a la rata en la

misma posición para realizar una incisión de la parte media ventral de la pared

abdominal.

2. Posteriormente se deberá obtener el corazón disectandolo cuidadosamente,

procurando dejar las arterias y venas que irrigan este importante órgano.

Adicionalmente se deberá quitar con ayuda de los dedos las acumulaciones de grasa

que recubren el corazón, lavándolo después bajo el grifo.

3. A continuación, se orientará el corazón, para lo cual, obsérvese que tiene una cara

más plana (cara posterior) y otra más convexa (cara anterior) y acabada en punta en

el extremo inferior. Colocar el corazón sobre la bandeja de disección, descansando

sobre la cara posterior.

4. Identificar externamente las partes del corazón, así como los vasos que entran y

salen de este órgano.

A) Cara anterior B) Cara posterior



5. Con las tijeras gruesas se dará un corte siguiendo la línea A de la figura 1,

iniciándose en la arteria pulmonar. Se descubrirá el ventrículo derecho: observar las

válvulas sigmoideas o semilunares en la base de la arteria y la válvula tricúspide, que

comunica este ventrículo con la aurícula derecha.

6. Adicionalmente se debe realizar otro corte siguiendo la línea B de la figura 1,

iniciándose en la arteria aorta. Se descubrirá el ventrículo izquierdo: observar las

válvulas sigmoideas en la base de la aorta los orificios de salida de las arterias

coronarias y la válvula bicúspide o mitral.

7. Comparar el diferente grosor de la pared de ambos ventrículos y dar una explicación

sobre esta diferencia.

8. Finalmente realizar un corte en ángulo siguiendo la línea C de la figura 2. Se abrirá la

aurícula derecha: observar la pared interna de la aurícula y, si es posible, la entrada

de la vena coronaria (recubierta de una pequeña válvula) y la fosa oval, que consiste

en un residuo de la comunicación entre ambas aurículas durante la vida fetal del

animal.

RESULTADOS:

Adrenalina

ESTRUCTURA

(Imagen)

Medidas arterias y

venas inicial

Medidas arterias y

venas final



Histamina

ESTRUCTURA

(Imagen)

Medidas arterias y

venas inicial

Medidas arterias y

venas final

Efecto de la Temperatura

ESTRUCTURA

(Imagen)

Medidas arterias y

venas inicial

Medidas arterias y

venas final

Descripción e imagen de las posiciones del corazón.




El alumno depositará los residuos peligroso biológico infecciosos generados de acuerdo a

las normas establecidas en el laboratorio.


CUESTIONARIO:

4. Describa brevemente el aparato circulatorio humano. Mencione las similitudes y

diferencias con el aparato circulatorio de una rata.

5. ¿Cuál es el mecanismo de acción de la histamina y adrenalina?

6. Describa los tipos de vasos sanguíneos que componen el aparato circulatorio.

7. Enumere algunos fármacos utilizados en las patologías del sistema circulatorio y su

mecanismo de acción.

8. ¿Qué son y qué función tienen los repliegues membranosos que se observan en la

base de la arteria aorta?

9. ¿Cuál de las dos cavidades ventriculares es más grande y por qué?

CONCLUSIONES:

Con base a las observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea

conclusiones con referencia a las funciones normales del corazón y el sistema circulatorio.

BIBLIOGRAFÍA:



1. Capítulo 2. Anatomía del corazón Dra. Paloma Aragoncillo Ballesteros Médico

especialista en Anatomía Patológica. Servicio de Anatomía Patológica II del Hospital

Clínico San Carlos, Madrid. 2007.

2. La circulación en el organismo humano BIOLOGÍA III Prof.: Emiliana de Rosas 3º.

Pag.7. 2013



PRACTICA X. COORDINACIÓN Y CONTROL DEL SISTEMA NERVIOSO.

LA MEMORIA Y FISIOLOGÍA SENSORIAL

OBJETIVOS:

El alumno evaluará la influencia y participación de los procesos relacionados con la

memoria y la fisiología sensorial.

COMPETENCIAS:

Investiga las funciones del sistema nervioso en los diversos procesos relacionados

con la memoria.

Investiga, analiza y distingue las partes que conforman el sistema nervioso y órganos

accesorios a él.

INTRODUCCIÓN:

La función primordial del sistema nervioso es la de captar y procesar rápidamente las

señales ejerciendo control y coordinación sobre los demás órganos para lograr una

adecuada, oportuna y eficaz interacción con el medio ambiente cambiante. Esta rapidez de

respuestas que proporciona la presencia del sistema nervioso diferencia a la mayoría de los

animales de otros seres pluricelulares de respuesta motil lenta que no lo poseen como

los vegetales, hongos, mohos o algas. Las neuronas son células especializadas, cuya

función es coordinar las acciones de los animales por medio de señales químicas y

eléctricas enviadas de un extremo al otro del organismo. Para su estudio desde el punto

de vista anatómico el sistema nervioso se ha dividido en central y periférico, sin embargo

para profundizar su conocimiento desde el punto de vista funcional suele dividirse

en somático y autónomo.

http://es.wikipedia.org/wiki/Pluricelular

http://es.wikipedia.org/wiki/Motilidad

http://es.wikipedia.org/wiki/Vegetal

http://es.wikipedia.org/wiki/Hongo

http://es.wikipedia.org/wiki/Moho_mucilaginoso

http://es.wikipedia.org/wiki/Algas

http://es.wikipedia.org/wiki/Neurona

http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A9lula

http://es.wikipedia.org/wiki/Animal

http://es.wikipedia.org/wiki/Sistema_nervioso_central

http://es.wikipedia.org/wiki/Sistema_nervioso_perif%C3%A9rico

http://es.wikipedia.org/wiki/Sistema_nervioso_som%C3%A1tico

http://es.wikipedia.org/wiki/Sistema_nervioso_aut%C3%B3nomo



Las partes anatómicas de las neuronas se dividen en cuerpo celular neuronal o

soma, axones o cilindroejes y las dendritas.

La memoria se puede definir de forma sencilla, como la capacidad de recordar cosas. Para

que una experiencia, o información adquirida por el aprendizaje, constituya memoria, ha de

producirse algún cambio en el encéfalo. Esta modificación puedes ser de tipo bioquímico o

estructural, más o menos permanente, y da lugar a un archivo o huella de memoria que se

denomina engrama. El engrama se refuerza cada vez que se utiliza, y esta repetición forma

parte del proceso que se conoce como consolidación de la memoria.

Según el tiempo que permanece en el encéfalo la información que le llega, podemos

clasificar la memoria en memoria sensorial o inmediata, memoria a corto plazo y memoria a

largo plazo.

La MEMORIA SENSORIAL corresponde al tiempo en que las sensaciones son procesadas

en las áreas de asociación. Es de corta duración, mantiene la información escasos

segundos y o bien alcanza el siguiente nivel de memoria o se pierde sustituida por nueva

información entrante. La retención momentánea de un número de teléfono o una pequeña

lista de nombres (de 6 a 9) son ejemplos de este tipo de memoria.

En la MEMORIA A CORTO PLAZO o MEMORIA RECIENTE, la información o las

experiencias recién aprendidas se almacenan durante un corto y variable periodo de tiempo

(segundos, minutos, a veces más tiempo). La cantidad de información almacenada es

limitada y si no se vuelca en la memoria a largo plazo se olvida rápidamente, así el recuerdo

de una cita, o de una lista de compra son ejemplos de este tipo de memoria. Normalmente,

http://es.wikipedia.org/wiki/Ax%C3%B3n

http://es.wikipedia.org/wiki/Dendrita

http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Neurona.svg



una vez utilizada, si no tiene un significado especial se olvida. Existe una memoria

especial, denominada MEMORIA DE TRABAJO, relacionada con el razonamiento y con

diversas actividades cognitivas y en cuyo establecimiento participan los ganglios de la base.

Es la que se utiliza por ejemplo para recordar la localización de diferentes herramientas en

un campo de trabajo. Su situación debe recordarse mientras se está desarrollando una tarea

determinada y la memoria desaparece cuando aquélla finaliza.

La MEMORIA A LARGO PLAZO, también denominada MEMORIA REMOTA, se

caracteriza por su gran capacidad y larga duración, ya que en ella se almacena información

o experiencias durante un tiempo, que puede variar desde minutos a meses, o incluso toda

la vida. La conversión de la memoria a corto plazo en memoria a largo plazo, necesita un

proceso de consolidación, que se facilita por la repetición y, sobre todo, por la creación de

un estado emocional que se asocie a la nueva información o experiencia. La capacidad de

retención es grande y la velocidad de acceso a los datos es rápida.


El alumno realizará la elaboración personal de un diagrama que represente la secuencia de

operaciones experimentales a partir del guión de la práctica a elaborar.

El alumno investigará los usos y manejos de materiales y reactivos que se utilizarán en la

práctica, así como la toxicidad de los reactivos empleados.



1

Lista de palabras

proporcionada por el

profesor

2 juegos de diagramas o



TOXICOLOGÌA:



METODOLOGÍA:

FENÓMENO DE AGRUPAMIENTO

fotografías

2 juegos de 20 tarjetas de

diagrama con nombre

1 Lápiz

1 Regla en milímetros

1 Compás de doble punta

1 Vaso de agua a 4°, 25° y

45°C

1 Aguja grande

5 Monedas

4

Tarjetas blancas de 10 a 15

cm



1.- Lea la lista de 30 palabras por su profesor solamente una vez.

2.- En su cuaderno de trabajo anote tantas palabras como usted recuerde, use el

orden que usted desee.

3.- Cuando usted no pueda recordar ninguna otra palabra, cuente las palabras

recordadas y compare con sus demás compañeros.

CODIFICACIÓN VERBAL VERSUS VISUAL

Este procedimiento será realizado en equipo de 2 estudiantes.

1. Pida a su compañero que se siente confortablemente con su cuaderno de trabajo.

2. Obtenga un juego de 20 diagramas y muestre a su compañero las ilustraciones una a

una y solamente una vez.

3. Después de que hayas mostrado a tu compañero las ilustraciones pida a su

compañero que escriba los nombres de todas las estructuras que pueda recordar.

4. Consiga el juego de 20 cartas conteniendo términos individuales de estructuras

anatómicas. Muestre las tarjetas una a una y solamente una vez.

5. Cuando usted haya mostrado todas las cartas a su compañero, pida que escriba

todos los nombres que pueda recordar.

6. Ahora cambie de lugar con su compañero.

RECEPTORES DE CALOR Y FRÍO DE LA PIEL

Este procedimiento será realizado en equipos de 2 estudiantes.

1. Trace un rectángulo de 4 x 14 mm, dividido en cuadros de 2 mm, en el antebrazo de

su compañero con un marcador lavable y permita que se seque.



2. Coloque una aguja metálica en cada uno de los vasos con agua y deje la aguja por 5

minutos antes de su uso.

3. Toque un cuadro con una aguja de uno de los vasos y toque el mismo cuadro con

una aguja de otro vaso, una a un tiempo. Pida a su compañero que identifique cada

uno de los estímulos como frío, temperatura ambiente o caliente. Anote si cada una

de las respuestas es correcta.

4. Mantenga la temperatura de las agujas en el vaso que le corresponda.

5. Repita el paso 3 sobre cada uno de los cuadros restantes y varía el orden de las

agujas.

6. Cambia de lugar con tu compañero y repite los pasos 1 a 5.

DISCRIMINACIÓN DE ESTIMULOS

Este procedimiento se realiza por equipos de 2 estudiantes.

1. Pida a su compañero que se siente con los ojos cerrados y que coloque un brazo

sobre la mesa de trabajo.

2. Ajuste el compás de manera que las puntas queden separadas por 3 cm. ¿Su

compañero puede sentir 1 o 2 puntos?

3. Mueva las puntas del compás tan cerca como sea posible y presione otra vez sobre

el brazo. Pregunte a su compañero si siente uno o los 2 extremos. Mueva ahora las

puntas lo suficientemente lejos para ser detectado como 2 puntos. Este es el umbral

de los 2 puntos. Mida la distancia entre los 2 puntos del compás en milímetros y

anótela.

4. Determine el umbral de 2 puntos para la punta del dedo índice y el pulgar, la palma

derecha e izquierda, el dorso de ambas manos, y el dorso del cuello. Registre sus

hallazgos.



5. Cambie ahora de lugar con su compañero.

DETECCIÓN DE PRESIÓN


1. Coloque la palma de la mano sobre una superficie plana.

2. Observe los finos pelos en el dorso de la mano.

3. Pida a su compañero que mueva un pelo en varias direcciones con una aguja

¿Puede sentir el movimiento?

4. Repita este procedimiento con un vello en el antebrazo.

5. Pida a su compañero que golpee varias veces un vello ¿Puede sentir alguna

sensación?

6. Describa las sensaciones en su cuaderno y cambie de lugar con su compañero.

DEMOSTRACIÓN DE LA LOCALIZACIÓN DE CIEGO


1. Coloque las 5 monedas en línea recta separadas por 8 a 10 mm.

2. Mire las monedas y concentre su atención sobre la moneda de la mitad.

3. Cierre su ojo derecho y detenga una tarjeta sobre este. ¿Cuántas monedas puede

ver? Anota tus observaciones.

4. Repite el paso 3 con tu ojo izquierdo y cambia de lugar con tu compañero.

REFLEJO DE LA LUZ Y ACOMODACIÓN




1. Toma una regla que contenga divisiones en mm, coloquelá sobre el ojo de tu

compañero y determina el diámetro de la pupila.

2. Con la regla en la misma posición ilumina el ojo con una lámpara y mide rápidamente

el diámetro de la pupila.

3. Retira la fuente de luz y registre sus hallazgos.

4. Repita nuevamente el paso1.

5. Con la regla en la misma posición pida a su compañero que mida un objeto situado al

otro extremo del laboratorio y luego otro objeto por encima del hombro. Mida el

diámetro de la pupila.

6. Cambie de lugar con su compañero.

ILUSIÓN ÓPTICA

Este procedimiento se realiza de forma individual.

1. Examine los 3 cuadros que le proporcionará su profesor.

2. Determine visualmente cuál de los cuadros es más pequeño y cual es más grande.

3. Mida cada cuadro con una regla y anote sus mediciones.

4. Examine el segundo diagrama proporcionado y determine si las líneas son de igual

longitud anotando sus observaciones.

5. Mida las líneas con una regla.

6. Diseñe un diagrama de ilusión óptica de su propia invención.



RESULTADOS:


FENÓMENO DE AGRUPAMIENTO

PALABRAS RECORDADAS

CODIFICACIÓN VERBAL VERSUS VISUAL

FIGURAS RECORDADAS

RECEPTORES DE CALOR Y FRÍO DE LA PIEL

DISCRIMINACIÓN DE ESTIMULOS

TEMPERATURA RESPUESTA

CORRECTA

UMBRAL

DEDO INDICE

UMBRAL

DEDO

PULGAR

UMBRAL

PALMA



DEMOSTRACIÓN DE LA LOCALIZACIÓN DE CIEGO

REFLEJO DE LA LUZ Y ACOMODACIÓN

DERECHA

UMBRAL

PALMA

IZQUIERDA

UMBRAL

DORSO

MANO

DERECHA

UMBRAL

DORSO

MANO

IZQUIERDA

UMBRAL

PALMA

DERECHA

UMBRAL

DORSO

CUELLO

MONEDAS

OJO

DERECHO

MONEDAS

OJO

IZQUIERDO



ILUSIÓN ÓPTICA

ACTIVIDAD


Los desechos biológico-infecciosos se almacenaran de la siguiente manera y de acuerdo al

reglamento interno del almacén de desechos.

DIAMETRO

DE PUPILA 1

DIAMETRO

DE PUPILA 2

TRIANGULO

1

TRIANGULO

2

TRIANGULO

3




Observa tus datos y discute los parámetros evaluados.

Compara con tus compañeros los datos obtenidos y discute los motivos por los cuales

pueden estar modificados.

CONCLUSIONES:


conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA:

1. Fisiología Humana, Sistema Nervioso (2011), María José Noriega Borge,

Departamento de Fisiología y Farmacología.



PRACTICA XI. IDENTIFICACIÓN DE ESTADIOS DEL DESARROLLO

EMBRIONARIO EN UN POLLO CRIOLLO

OBJETIVOS:

Conocer la embriología del pollo durante los principales estadios del embrión posterior a la

fecundación.

COMPETENCIAS:

El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase teórica para

aplicarla a la parte práctica de la materia.

El estudiante analizará, evaluará y sistematizará información de artículos de arbitraje

nacional e internacional para conocer las diversas etapas de desarrollo en la embriogénesis

en las aves

El estudiante expresará y planteará procedimientos o alternativas que den solución a

problemas de validación de métodos analíticos

INTRODUCCIÓN:

La reproducción es uno de los milagros de la vida que va ligado a la evolución de las

especies, debido al continuo desplazamiento de los antecesores con nueva vida, la cual da

a los animales una razón para responder y adecuarse a las modificaciones del ambiente así

como el planeta lo ha hecho por años (Hickman et al., 2001). Todos los animales que nacen

de un huevo fecundado, atraviesan por varias fases de desarrollo embrionario, que difieren

según la especie, aunque el orden cronológico es el mismo: primero la fase de partición

(división del zigoto en dos células, cuatro células, ocho células, etc.), fase de la mórula,

seguida de la fase de blástula, continuando con el movimiento de las capas celulares hasta

formar las capas germinales, a la cual se denomina gástrula y por último la neurulación



(Alfonso, 1968). El desarrollo embrionario de las aves comienza en el oviducto, posterior a

la fecundación, donde se originan las primeras segmentaciones celulares en el momento de

la formación del huevo (Sauveur, 1992). Durante su desarrollo fuera del útero de la madre,

el embrión se alimenta del material nutritivo almacenado dentro del huevo, a diferencia de

los mamíferos que se alimentan por aporte sanguíneo proveniente de la madre (North,

1986). Realizándose la mayor parte del desarrollo embrionario del huevo fuera del útero y

cubierto por una cascara porosa de carbonato de calcio (Mehner1, 1969), dentro de la

cascara del huevo, se empieza a desarrollar tres membranas (los anexos embrionarios)

(Sauveur, 1992;

Interiano y Urla, 2010). De la mayoría de las aves, el pollo ha sido un eficiente modelo

biológico para los estudios en el campo de la embriología (Mehner, 1969; Sequera et al.,

2003), pero como sólo son estudios relacionados con la biología celular y no enfocados en

el desarrollo embrionario.



Figura 1. P1) Muestra el ovario de una gallina con huevos aún sin fecundar. P2)

Muestra un huevo con 4-5 horas aproximadamente de fecundación. P3) Huevo dentro

del útero en etapa de segmentación temprana.



Figura 2. Desarrollo embrionario a partir de la incubación. H3) Inicio de la

organogénesis a las 48 horas de incubación. H4) La elipse representa el embrión

dentro de los anexos embrionarios a los 3 días de la incubación. H5) Muestra el

desarrollo embrionario a los 4 días de incubación. H6) Desarrollo del embrión a los 5

días de incubación. H7) Formación del embrión a los 7 días de incubación. H9)

Embrión a los 10 días de incubación. H11) Desarrollo embrionario a los 17 días de

incubación. H12) Embrión a los 20 días de incubación, las flechas indican la

invaginación del vitelo hacia la cavidad abdominal. e: Embrión; ca: Cámara de aire; c:

Corion; Oc: Ojo compuesto; Vo: Vesícula ótica; p: pico; Sc: Sistema circulatorio; cr:

Cerebro; al: Ala; pr: Pierna; V: Vitelo; Am: Amnios; pt: Pata; Cl: Cloaca; Ec: Esbozo de

la Cresta; Sm: Somitas; cv: Columna vertebral; pr: Parpado; Cb: Cabeza; gr: Garra.


Investigar en Internet en páginas acreditadas y científicas:

-Fases de desarrollo embrionario

-Diferencias entre fase de partición (división del zigoto en dos células, cuatro células, ocho

células, etc.), fase de la mórula, seguida de la fase de blástula, continuando con el

movimiento de las capas celulares hasta formar las capas germinales, a la cual se denomina

gástrula y por último la neurulación

-Hacer una diagrama con secuencia de las fases de partición

-Hacer un resumen del tema personal no por equipo y entregarlo.


-Incubadora o estufa

-Huevos 15

- Un gallinero de 5 x 3m se construirá un nido con una caja de 60 x 40cm y con una altura

de 40cm.

-Cajas Petri



-Vasos de vidrio

-Charola de disección

-Guantes de latex

-Microscopio

TOXICOLOGÌA:

No aplica

METODOLOGÍA:

El presente trabajo se realizará en 3 partes: incubación, laboratorio y escritorio.

Incubación:

En un gallinero de 5 x 3m se construirá un nido con una caja de 60 x 40cm y con una altura

de 40cm, se le introducira pasto seco (cama) a manera de llenar las ¾ partes del nido, en

esta se depositaron 12 huevos, los cuales seran empollados por una gallina criolla durante

21 días (tabla 2), y 3 huevos de una segunda gallina criolla a las 30 horas postfecundación

(tabla 1).

Periodo de segmentación de los huevos postfecundación.

Huevos Nomenclatura (Nomclta) Periodo de segmentación

1 P1 Residen fecundado (0 hrs)

2 P2 4-5 hrs.

3 P3 18-25 hrs.

Tabla 2. Periodo de desarrollo embrionario durante la incubación.

Huevos Nomenclatura (Nomclta) Periodo de incubación

4 H1 12 hrs

5 H2 24 hrs

6 H3 48 hrs



7 H4 3 días

8 H5 4 días

9 H6 5 días

10 H7 7 días

11 H8 8 días

12 H9 10 días

13 H10 13 días

14 H11 17 días

15 H12 20 días

Laboratorio:

Se abrirán 12 huevos fertilizados durante diferentes periodos de incubación (tabla 2), para

observar el desarrollo embrionario del pollo, haciendo énfasis en la organogénesis. Al

romper el cascaron, el embrión de los huevos del H1-H6 fueron depositados en una caja

petri, por otra parte los embriones de los huevos H7-H12 se vaciaran en un recipiente hondo

y transparente con agua; ambos para observar y tomarle fotos al desarrollo externo, también

se medirá la longitud del embrión con una regla graduada de 30 cm. Únicamente a los

embriones de los huevos H7-H12 se trasladaran a una charola de disección, con la ayuda

de un estuche de disección SharpVet y guantes de látex se separaran los anexos

embrionarios del embrión. Se hará un corte en la zona ventral del embrión y se extraerán

todos los órganos visibles, los cuales seran observados con un microscopio estereoscópico.

Los huevos P1-P3 fueron extraídos de la segunda gallina antes del ciclo de postura.

Escritorio:

Con la ayuda de las fotos tomadas por cada embrión y el modelo de etapas de desarrollo

de Hamburger y Hamilton (1951), se identificaron las estructuras formadas y estadios

embrionarios en las que se encontraban los embriones.

RESULTADOS:




Resultados Periodo de segmentación de los huevos postfecundación.

Huevos (Nomclta) P. de

segmentación Fotografía Observación

1 P1 R fecun. (0 hrs)

2 P2 4-5 hrs.

3 P3 18-25 hrs.

Resultados Tabla 2. Periodo de desarrollo embrionario durante la incubación.

Huevos Nomenclatura

(Nomclta)

P de

incubación Fotografía Observación

4 H1 12 hrs

5 H2 24 hrs

6 H3 48 hrs

7 H4 3 días

8 H5 4 días

9 H6 5 días

10 H7 7 días

11 H8 8 días

12 H9 10 días

13 H10 13 días

14 H11 17 días

15 H12 20 días


Desechar el material en los botes de basura convencional de materia orgánica.




-Con la ayuda de las fotos tomadas por cada embrión y el modelo de etapas de desarrollo

de Hamburger y Hamilton (1951), se identificaran las estructuras formadas y estadios

embrionarios en las que se encontraban los embriones

-El maestro del Laboratorio y los alumnos discutirán los resultados obtenidos,

-Mencionar las observaciones e identificar las fases de desarrollo en la embriogénesis.

-Discutir los posibles errores o mejorar la práctica.

-Discutir conclusiones.

CONCLUSIONES:

Los alumnos serán capaces de hacer un resumen de sus resultados y observaciones y será

entregado a su carpeta de prácticas, en el mismo día o entregar antes de la próxima

practica

BIBLIOGRAFÍA:

-El alumno incluirá y completara esta bibliografía con las paginas o libros consultados para

realizar esta practica

Alfonso H. E. 1968. Blastogenesis (idea general del desarrollo embrionario).

Compendio y atlas de embriología. Ed. Atika S. A. Madrid, España. 1ra ed. Pp. 25-36.

Hamburger V. y Hamilton H. L. 1951. A series of normal stages in the development of

the chick embryo. Developmental dynamics 195. 88:(1). Pp 231-272. PDF.

Hickman Jr., C. P., Roberts L. S y Larson A. 2001. The reproductive process.

Integrated principles of zoology. Ed. MacGraw Hill. New York, USA. 11th ed. Pp 135-

155.

Interiano C. A: y Urla X. J.C. 2010. Desarrollo embrionario del pollo. Pp 4. PDF.

Mehner A. 1969. Fundamentos de la producción. La gallina. Ed. Acribia. Zaragoza,

España. Pp 107-170.



Mehner1 A. 1969. Particularidades anatomicas y fisiológicas de la gallina. La gallina.

Ed. Acribia. Zaragoza, España. Pp 34-105.

North M. O., 1986. Desarrollo del embrión de pollo. Manual de producción avícola.

Ed. El manual moderno, S.A. de C.V. DF, México. 2da ed. Pp 45-53.

Sauveur B., Reviers M. 1992. Desarrollo embrionario.

Reproducción de las aves. Ed. Mundi-Prensa. Madrid, España. Pp 295-314.

Sequera, D., Ercolino J. M. y Álvarez M. 2003. Embrión de pollo: un modelo con

cardiovideograma para el estudio de la toxicidad experimental inducida

por Tfevatia peruviana. 37 pp.



PRACTICA XXII A. CHOQUE INSULINICO EN PECES

OBJETIVOS:

Conocer cómo se puede realizar el equilibrio (insulina-glucosa) en los organismos

COMPETENCIAS:

El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase

teórica para aplicarla a la parte práctica de la materia.

Correlacionara el funcionamiento de la insulina como una hormona y sus funciones.

El estudiante expresará y planteará procedimientos o alternativas que den solución a

problemas de validación de en enfermedades de diabetes.

INTRODUCCIÓN:

La glucemia constante. La glucemia va a estar actuando como un regulador de la glucosa

en la sangre, y si no se mantiene constante se correría el riesgo de hiperglucemia

(incremento de glucosa) e hipoglucemia (niveles bajos de glucosa en la sangre). Regula el

nivel de glucagon e insulina en la sangre.

Mucha insulina: funcionamiento del glucagon en la hipoglucemia el glucagon comienza a

producir glucosa para que pueda entrar a las células y tenga una mejor absorción.

Mucho glucagon: se libera insulina a partir del páncreas así también suprime la secreción de

glucagón. El glucagón estimula la secreción de insulina y SS y, cada una de ellas, es capaz

de suprimir su propia secreción (acción autocrina). Libera la glucosa almacenada para elevar

los niveles de azúcar en la sangre

Diabetes mellitus?

Es un conjunto de trastornos metabólicos, que afecta a diferentes órganos y tejidos, dura

toda la vida y se caracteriza por un aumento de los niveles de glucosa en la sangre:

hiperglucemia. La causan varios trastornos, siendo el principal la baja producción de la

hormona insulina, secretada por las células β de los Islotes de



Langerhans del páncreas endocrino, o por su inadecuado uso por parte del cuerpo.

• La insulina baja la glucemia por dos mecanismos. Explica cuáles son: La insulina

transporta la glucosa al interior de la célula

• Estimula al almacenamiento de glucosa en el hígado en forma de glucógeno

La hiperglucemia se produce cuando la glucosa en la sangre, se encuentra por encima de lo

normal.

Prueba de tolerancia a la glucosa. La prueba más común de tolerancia a la glucosa es la

prueba de tolerancia a la glucosa oral (TGO). Usted no puede comer ni beber nada después

de la media noche antes del examen. Para el examen, a usted se le solicita que tome un

líquido que contiene una cierta cantidad de glucosa. Se le toman muestras de sangre antes

de hacer esto y de nuevo cada 30 a 60 minutos después de beber la solución. El examen

demora hasta 3 horas.

La prueba de tolerancia a la glucosa intravenosa (PTGIV) rara vez se utiliza. En esta prueba,

se inyecta la glucosa en una vena durante tres minutos. Los niveles de insulina en la sangre

se miden antes de la inyección y de nuevo en los minutos uno y tres después de ésta,

aunque el tiempo puede variar.


El alumno investigara y contestara al siguiente cuestionario.

1.- ¿Por qué es tan importante mantener la glucemia constante?

2.- ¿Cómo se regula el nivel de glucagon e insulina en la sangre?

3.- ¿Cuál es el funcionamiento del glucagon en la hipoglucemia?

4.- ¿Qué es la diabetes mellitus?

5.- La insulina baja la glucemia por dos mecanismos. Explica cuáles son:

6.- Explica que es la hiperglucemia

7.- Explica en qué consiste la prueba de tolerancia a la glucosa




TOXICOLOGÌA:

No aplica

METODOLOGÍA:

Preparar las soluciones de 250 ml de agua en los vasos de precipitado, adicionar la glucosa

y la insulina en los vasos marcados referidos en la tabla siguiente.

Colocar un pez en cada vaso y observar movilidad y tiempos de actividad de los peces en

las diferentes condiciones. Anotar las observaciones en una tabla similar a la de abajo.

pez Agua solución de

glucosa 10% (250

ml de agua)

insulina 25 unidades/250 ml

de agua (hiperinsulinismo)


[5]

vasos de precipitado de 500 ml.

[1. 5 Ml] [agua destilada]

25 Gr. Glucosa 100 U Insulina

5 Peces comerciales



A, B - +

C, D

E (control)

agua

+ -

El pez del lado derecho (observando de frente) se distingue un movimiento más acelerado en el agua ya que es el que contiene la insulina.



RESULTADOS:


HACER UNA TABLA INCLUYENDO FOTOGRAFIAS O VIDEO Y TIEMPOS DE LOS

COMPORTAMIENTO, EN CADA CONDICION

pez Observaciones y

foto o video

Agua

Observaciones y

foto o video

solución de

glucosa 10% (250

ml de agua)

Observaciones y

foto o video

insulina 25 unidades/250 ml

de agua (hiperinsulinismo)

A, B - +

C, D

E (control)

agua

+ -




Desechar en la tarja, no es toxico


El profesor con los alumnos discutirán sobre el comportamiento de los peces en cada

condición tratando de relacionarlo con los siguientes puntos

Regulación del nivel de glucagón e insulina en la sangre

funcionamiento del glucagón en la hipoglucemia

Definir diabetes mellitus

¿Porque la insulina baja la glucemia?

Explicar la hiperglucemia



El alumno elaborara un resumen del resultado y discusión que entregara en su próxima

práctica para su evaluación.

CONCLUSIONES:

Se debe de observar con mucha claridad el descenso de glucosa en el organismo ya que al

aumentar la insulina comienza a haber una mejor absorción de la glucosa. Su

comportamiento tan acelerado se deberá a que el pez libero adrenalina (choque insulinico),

al pasarlo a la solución de glucosa su comportamiento fue más tranquilo debido al equilibrio

de glucosa en la sangre.

Así que es muy importante el conocer cómo se puede realizar este equilibrio

(insulinaglucosa) en el organismo, en México se han dado muchos casos de diabetes que es

una aplicación medica de esta práctica.

BIBLIOGRAFÍA:

-Universidad Veracruzana Facultad de Química Farmacéutica Bióloga Química Orgánica.

Tema del Trabajo: Practicas de Laboratorio Morfofisiología Catedrático: Dra. Luz Irene

Pascual Mathey Alumnos: Fredy Tornero Conde, Betzabelt García Muñoz, Amalia Gpe.

Rodríguez Gómez, Sthephane Pastrana Cruz, Huitzilli Y. Córdoba Gómez. Miguel A. Castillo

Ortega.

- http://umm.edu/health/medical/spanishency/articles/prueba-de-

tolerancia-a-la-glucosa

http://www.dmedicina.com/enfermedades/digestivas/diabetes.html

Organización Mundial de la Salud

http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs312/es/

http://umm.edu/health/medical/spanishency/articles/prueba-de-tolerancia-a-la-glucosa

http://umm.edu/health/medical/spanishency/articles/prueba-de-tolerancia-a-la-glucosa

http://www.dmedicina.com/enfermedades/digestivas/diabetes.html

http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs312/es/



PRACTICA XII B. DETERMINACION DE HORMONAL: GONADOTROPINA

CORIONICA HUMANA EN ORINA

OBJETIVOS

El alumno analizará el proceso de la fecundación para perpetuar las especies

Observará y comprenderá las etapas subsecuentes a la fecundación

El alumno entenderá la importancia de cada etapa en el desarrollo embrionario de un

organismo

Observa el proceso desde la fecundación hasta el nacimiento de un ser humano

COMPETENCIAS

- Analiza y comprende el proceso de fecundación

- Identifica las etapas del desarrollo embrionario posteriores a la fecundación y hasta el

nacimiento

INTRODUCCION

La fecundación es el fenómeno que ocurre tras la unión de un espermatozoide con un óvulo

y la consecuente fusión de los núcleos de ambas células (haploides) para dar origen a un

embrión (diploide) con información genética del padre y la madre. Solo un espermatozoide

fecundará al óvulo. Un espermatozoide del macho se fusionará con los receptores de la

superficie del ovocito secundario de la hembra (ovulo), atravesará la zona pelúcida y

desencadenará la ruptura de los gránulos corticales y los mismos gránulos conducirán a una

serie de cambios en la zona pelúcida que impedirán la entrada de otros espermatozoides

(mecanismo preventivo de la polispermia).

En humanos, éste suceso ocurre en las trompas de Falopio de la hembra para luego

descender hasta el útero donde comenzará la fase de implantación del embrión. El



endometrio uterino se engrosa preparándose para la implantación del embrión por su capa

trofoblastica. Doce días luego de la fecundación el trofoblasto ya ha formado las dos capas

del corion.

El corion segrega la Gonadotropina coriónica humana (HCG) que prolonga la vida del

cuerpo lúteo hasta que placenta comienza a segregar estrógenos y progesterona. Las

estructuras del embrión y de la madre interaccionan para formar la placenta, la "interfase

alimentaria" entre la madre y los sistemas del embrión. El cordón umbilical se extiende

desde la placenta al embrión y transporta alimentos hacia él y desechos desde él.

taverabiologia.blogspot.com

Después de la fecundación, la segmentación es la primera etapa del desarrollo de TODOS

los organismos multicelulares. Por mitosis, (una sola célula) se vuelve un embrión

multicelular. La primera división origina dos células (la línea divisoria se conoce como

"primer surco" por su aspecto externo), la segunda división es perpendicular a la primera

(cuatro células) y la tercera corta el plano ecuatorial. El espermatozoide fecunda el óvulo y

https://www.google.com.mx/url?sa=i&rct=j&q=&esrc=s&source=images&cd=&cad=rja&uact=8&ved=0CAYQjB0&url=http%3A%2F%2Ftaverabiologia.blogspot.com%2F2012%2F05%2Fel-embarazo-placentacion-y-gestacion.html&ei=tMeKVcvfCcXAsAXm7oCQCA&bvm=bv.96339352,d.aWw&psig=AFQjCNHRZ91bAP90q3JU7G4rZ4RY0RdaAQ&ust=1435244790147795



forma el cigoto que durante las 24 horas posteriores a la fecundación comienza a dividirse

en un proceso conocido como blastogénesis dando lugar a la mórula que se implantará en

el útero materno (donde comenzará a alimentarse).

El proceso de segmentación da origen a una "pelota" de células que por su aspecto se

denomina mórula. En su interior se origina una cavidad llena de líquido: el blastocele,

tomando entonces el nombre de blástula o blastocisto (en mamíferos). Es el proceso que

va desde la primera división celular hasta el final de la gastrulación, desde el día 1 al 28 en

humanos, incluye:

1. Implantación del blastocisto maduro en la pared del útero y establecimiento de la

circulación materno-embrionaria/fetal

2. Embriogénesis (masa indiferenciada pluripotencial de células), en las que solo un

número de células formará el embrión definitivo

3. Gastrulación comprende una serie de migraciones celulares a posiciones en las cuales

formarán tres capas celulares.

• Ectodermo forma la capa externa.

• Endodermo forma la capa interna.

• Mesodermo forma la capa media.

La blastulación y la gastrulación establecen el eje principal del cuerpo.

La formación de los órganos mediante la división celular acompañada de procesos de

migración y agregación.

El mesodermo forma la notocorda (que originará las vértebras).

En los cordados a partir del ectodermo se forma el tubo neural que dará origen al sistema

nervioso.


Revisa videos en la red acerca de procesos de fecundación y desarrollo embrionario




CANTIDAD DESCRIPCION OBSERVACIONES

1 Video de la fecundación y las etapas embrionarias

1 Modelo anatómico de las etapas embrionarias

Laminillas con muestras de espermatozoides y óvulos

1 proyector

1 Laptop

METODOLOGÍA

1. Observar el video proyectado por el profesor referente a fecundación y desarrollo

embrionario y tomar nota de los eventos más importantes

2. Revisar e identificar las etapas del desarrollo embrionario en el modelo anatómico.

3. Revisar al microscopio con objetivos 10x y 40x las laminillas correspondientes a

espermatozoides y ovulos. Revisar las estructuras presentes en cada uno y dibujarlos

RESULTADOS

Realizar dibujos y mapas conceptuales de los conceptos más importantes aprendidos


1. ¿Qué es la gametogénesis y donde se lleva a cabo?

2. Explica detalladamente la espermatogenesis mencionando sus 4 fases y que ocurre en

cada una

3. Función de las células de Sertolli

4. Explica detalladamente la ovogénesis mencionando sus 4 fases y que ocurre en cada

una

5. ¿En qué etapa se detiene la ovogénesis al nacer la hembra?



6. ¿Cuando continúa la meiosis en la hembra?

7. ¿En qué etapa se realiza la ovulación y cuando termina el desarrollo?

8. ¿Donde se realiza la fecundación del óvulo?

9. ¿En qué etapa se implanta el embrión en el útero?

10. Haz un esquema de placentación del humano

11. ¿A que se refiere el mecanismo preventivo de la poliespermia?

12. ¿Cómo se forma el corion y que secreta?

13. ¿Qué es la mórula?

14. ¿Qué es la blástula y el blastocele?

15. ¿Qué es la blastulación y que etapas comprende?

16. ¿Qué es la etapa de gastrulación y cual es su importancia?

17. ¿Qué tejidos formará el ectodermo?

18. ¿Qué tejidos formará el mesodermo?

19. ¿ Qué tejidos formará el endodermo?

20. ¿En qué consiste la etapa de organogénesis?

21. ¿Qué se forma en la etapa de neurulación y a que originará la notocorda?

22. ¿Qué es la inducción en embriología?

CONCLUSIONES

En base a tus observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea

conclusiones.

BIBLIOGRAFÍA



PRACTICA XIII. VISITA ANFITEATRO

OBJETIVOS:

El alumno identificará las generalidades de forma y estructura de todos los sistemas

orgánicos de un ser humano, generando hábitos de estudio, observación y análisis para

poder describir y localizar en el cadáver la anatomía macroscópica de estructuras y órganos

incluyendo sus implicaciones funcionales de las mismas.

Adicionalmente el alumno conocerá el reglamento y las diferentes áreas del anfiteatro.

COMPETENCIAS:

INTRODUCCION:

El anfiteatro anatómico es un complejo arquitectónico, que puede ser utilizado como centro

de estudio y enseñanza de la anatomía macroscópica y microscópica, así como del

desarrollo humano. Históricamente, fue una creación romana que tenía la finalidad de

ofrecer al pueblo sus grandes espectáculos de sangre y violencia, se caracterizaba por ser

una construcción circular ascendente en forma de embudo en la cuál la periferia era el

espacio de mayor diámetro al centro, que era el escenario donde se desarrollaban las

matanzas de seres humanos; con este tipo de construcción el público tenía una amplia

visión de lo que se realizaba en el escenario desde cualquier lugar en que se estuviese

ubicado y así los anfiteatros anatómicos se diseñaron para disecar y enseñar la anatomía

mediante demostraciones públicas de cuerpos humanos y animales.

El anfiteatro es el espacio que permite al alumno adquirir habilidades propias, ampliando,

profundizando, consolidando, y finalmente comprobar los fundamentos teóricos de la

materia de Anatomía y Fisiología, observando y/o realizando disecciones de regiones



anatómicas en cadáveres con propósitos educativos, para así relacionarlo con la práctica

clínica a la que podrá enfrentarse posteriormente.


El estudiante deberá leer y estudiar previamente el reglamento del laboratorio de anatomía y

disección (anfiteatro). Adicionalmente, el alumno deberá revisar profundamente la

terminología médica utilizada por los profesionales de la salud, para así poder identificar lo

revisado en el anfiteatro.


- Guantes quirúrgicos

- Cubrebocas

- Bata blanca

- Estuche de disección

TOXICOLOGÌA:

Todos los restos y sus fluidos corporales deberán ser considerados como potencialmente

infectantes, por lo cual se deben tomar las precauciones necesarias para prevenir que

ocurran accidentes

NORMAS GENERALES

1. Maneje todo material como potencialmente infectante.

2. Un accidente por pequeño que sea debe comunicarse al docente responsable de la

práctica de laboratorio o en su defecto a la Dirección General de Laboratorios.

3. No use joyas durante la realización de procedimientos en su área de trabajo.

4. Lávese cuidadosamente las manos antes y después de cada procedimiento, con estricto

rigor si se tiene contacto con material patógeno.



5. Los desechos corto punzantes deberán manejarse con estricta precaución, dispóngalos o

deséchelos en los contenedores especializados para dichos desechos.

6. Realice limpieza y desinfección a las superficies, elementos y equipos de trabajo al final

de cada procedimiento y al finalizar la jornada de trabajo.

7. No está permitido comer, beber, fumar, manipular lentes de contacto, maquillarse o

almacenar alimentos para uso humano en aéreas de trabajo.

METODOLOGÍA:

1.-Los alumnos junto con el catedrático y/o responsable del anfiteatro, realizarán un

recorrido por las diferentes áreas del anfiteatro. El responsable explicará el funcionamiento

de cada área, además del funcionamiento de las mesas de disección.

2.- Por otro lado, el catedrático explicará la función de cada uno de los instrumentos de

disección y el responsable de la manipulación de los cadaverés realizara una pequeña

demostración en los mismos.

3.- Posteriormente el alumno deberá identificar y describirá verbalmente las estructuras

óseas, musculares, órganos y sistemas revisados previamente en el laboratorio de anatomía

y fisiología.

4.- Finalmente, el alumno debe correlacionar las estructuras anatómicas estudiadas, con la

función normal, la valoración clínica y sus implicaciones al lesionarse.

RESULTADOS:

1.- Descripción breve y gráfica del anfiteatro anatómico.

2.- Listado de los instrumentos de disección indicando sus respectivas funciones.

3.- Describe brevemente 5 órganos, músculos, estructuras óseas y sistemas observados en

el cuerpo humano.



ESTRUCTURA

(Imagen)

DESCRIPCIÓN FUNCIÓN

ESTRUCTURA

(Imagen)


ESTRUCTURA

(Imagen)


ESTRUCTURA

(Imagen)





El alumno depositará los residuos peligroso biológico infecciosos generados de acuerdo a

las normas establecidas según el reglamento interno del anfiteatro.


CUESTIONARIO:

1.- ¿Cómo está conformado el esqueleto humano?

2.- ¿Cómo se dividen los músculos del cuerpo humano de acuerdo a su función? 3.- ¿Cómo

está constituido el corazón y cuáles son sus principales funciones? 4.- Enlista los

principales órganos intra abdominales.

CONCLUSIONES:

Con base a las observaciones, comenta con los integrantes de tu equipo y plantea

conclusiones con referencia a las funciones normales de los órganos y su valoración clínica.

BIBLIOGRAFÍA:

3. Laboratorio de Anatomía humana: El anfiteatro. Facultad de medicina Hipolito

Unanue. Disponible en: http://www.unfv.edu.pe/facultades/fmhu/index.php/cm-

laboratorios.



4. Manual de prácticas de disección. Universidad autónoma “Benito Juárez” de Oaxaca,

Facultad de medicina y cirugía. Departamento de anatomía y disección. Dr. Moisés

Becerril Méndez, Jefe del laboratorio de anatomía y disección.

5. Reglamento del anfiteatro. Facultad de Medicina, Xalapa, Ver. Área: Departamento

de Morfología. Realizó: Biol. Mercedes Acosta Avilés. 17 de Mayo del 2011.



PRACTICA XIV. HEMOSTASIA PRIMARIA

OBJETIVOS:

Analizar los resultados obtenidos en las pruebas de coagulación en

presencia de anticoagulantes en una muestra de sangre.

COMPETENCIAS:

El estudiante hará uso de los conocimientos e información adquirida en su clase teórica para entender las enzimas y factores que intervienen en la cascada de la coagulación.

El estudiante analizará, evaluará y sistematizará información de artículos de arbitraje

nacional e internacional para conocer las diversas y nuevos conocimientos en farmacología

en relación al control de la coagulación, en pacientes con estas patologías.

INTRODUCCION

Coagulación

Académica, y clínicamente hablando, la hemostasia consta de tres partes:

1) Hemostasia primaria 2) Fase plasmática de la coagulación 3) Fase fibrinolítica



Hemostasia primaria se divide en:

1) Integridad vascular (la fase vascular):

Factores que afectan el endotelio vascular: Traumáticos, daño, infecciones,

medicamentos, etc.

2) Número y función plaquetaria.

En una lesión del endotelio o fase vascular, primero entran en juego los mecanismos locales de vasoconstricción y los mecanismos del endotelio que hacen que lleguen plaquetas al sitio de la lesión.

Plaquetas: En un daño vascular también participan plaquetas que en su superficie tienen glicoproteínas que tienen receptores en el endotelio: Producen entonces lo que se conoce como ADHESIVIDAD PLAQUETARIA.

Las plaquetas también tienen sustancias como por ejemplo ADP, que al liberarse atrae

más plaquetas al sitio de la lesión y les permite interaccionar con otras.

Entonces se forma el TAPON PLAQUETARIO PRIMARIO, cuya formación depende de

los siguientes factores:

1) Número adecuado de plaquetas 2) Plaquetas íntegras con GP necesarias en su superficie, para la adhesividad y

agregabiliidad 3) Plaquetas con sucficientes sustancias: ADP 4) Exposición al colágeno

Las plaquetas derivan de la médula ósea, sus precursores son los megacariocitos (8 a 10 por campo) que liberan las plaquetas a la sangre periférica en un número normal de 150-350 mil plaquetas.

La vida media promedio normal es de 8-10 días.

Si hay < 20 mil plaquetas hay riesgo de presentar sangrado espontáneo. Si hay > 100 mil plaquetas, la hemostasis es normal en cuanto al número de plaquetas y

entonces depende de su funcionamiento. Si hay < 100 mil plaquetas, y el paciente tiene trauma o cirugía, no tiene el número

suficiente para resolver la hemorragia pero sin embargo no sangra espontáneamente.

Causa de la disminución en el número de plaquetas:



1) Disminución o falta en la producción en la médula ósea, o incapacidad de producir plaquetas a. Aplasia medular: Anemia aplásica b. Mieloptisis: Infiltración medular neoplásica por hongos, VIH, etc. c. Reemplazo de la médula ósea. d. Mielofibrosis: Fibrosis de la médula ósea.

2) Por trastornos de maduración que producen una trombocitopenia a. Anemia megaloblástica b. Trombopoyesis ineficaz c. Síndrome mielodisplásico con hematopoyesis ineficaz

3) Aumento de la destrucción de plaquetas a. Por causas inmunológicas

Mediada por anticuerpos: Púrpura trombocitopénica inmune (PPI) asociada a infección viral, neoplasia, medicamentos, enfermedades autoinmunes (LES, etc).

b. Por causas no inmunológicas

Hiperesplenismo (secuestro esplénico, que es muy diferente a esplenomegalia) que se caracteriza por un aumento en la función del bazo captando elementos de la sangre periférica. Este puede ocurrir en patologías como: 1. Esferocitosis hereditaria 2. Metaplasia mieloide agnogénica aguda 3. Cirrosis hepática 4. Leucemia de células vellosas 5. Crisis de anemia falciforme: Paciente falcémico doble heterocigoto en niños 6. Síndrome de Felty: Donde hay hiperesplenismo asociado a artritis reumatoide.

Coagulación Intravascular diseminada

Inducida por fármacos1

Metabolismo de las plaquetas con relación al ácido araquidónico (AAQ):

La principal enzima es la ciclooxigenasa (COX), que determina la formación de

tromboxano (que produce agregabilidad plaquetaria y vasoconstricción).

La inhibición de la COX lleva a la producción de prostaciclinas (que causan

vasodilatación y desagregación plaquetaria) Importancia: Manipulación de este metabolito

con fármacos.

Prueba para valorar la hemostasia primaria:

1 Extra de los apuntes



1) Tiempo de sangría: Con el método físico coloca un esfigmomanómetro al paciente a una presión constante. Se realiza la incisión en el antebrazo y se mide el tiempo. El valor normal oscila entre 5 y 10 minutos. Si tiene menos de 100,000 plaquetas aumenta el tiempo de sangría.

2) Adhesividad plaquetaria 3) Agregabilidad plaquetaria: Si se tiene un plasma rico en plaquetas y se coloca frente

a una fuente de luz, ésta refracta. Entonces al colocar sustancias agregantes de plaquetas (ADP, colágeno, adrenalina y un AB llamado ristocetina), las plaquetas se unen unas a otras, y la liberación de sustancias de sus gránulos trae más plaquetas. Entonces cambia la refracción de la luz, lo cual se puede graficar en curvas características para cada sustancia. La pendiente es donde hay mayor agregación y todas terminan en un plano.

La prueba de agregabilidad nos permite

hacer el diagnostico:

Al agregar plasma normal y hacer la

prueba de agregabilidad plaquetaria;

Síndrome de Bernard-Soulier: La curva de ristocetina es plana (anormal), por que a pesar de ser AB agrega las plaquetas siempre y cuando haya presencia del factor de Von Willebrand, y estos pacientes no tienen los receptores de este factor. El ADP, colágeno y adrenalina van a ser normal.

Tromboastenia de Glazman: Si sale la curva de ristocetina normal, y ADP, colágeno, adrenalina planos.

Enfermedad de Von Willebrand: La curva de ristocetina sale plana (anormal) pero se corrige al agregar plasma normal. La de ADP, colágeno y adrenalina van a ser normales. También tiene TP aumentado por deficiencia de factor VIII. Nota: La curva de agregabilidad es igual a la de Síndrome de Bernard-Soulier, pero el diagnóstico se hace además por la disminución del factor VIII y la presencia de macroplaquetas en sangre periférica.

Alteraciones de la fase vascular



Causas del daño al endotelio

1. Vasculitis a. Leucoplástica b. Púrpura de Henoch-Scholein: Caracterizada por púrpura en las extremidades, nefritis,

sangrado por mucosas en pacientes pediátricos después de un cuadro faríngeo con un número de plaquetas normal, pero con lesiones a los vasos sanguíneos (vasculitis).

c. LES d. Reacción alérgica a medicamentos: AINES

2. Deficiencia de vitamina C (Escorbuto) causa disminución del soporte al endotelio. 3. Trastornos en el endotelio. El Síndrome de hiperelasticidad de Erhles Danlos produce

hemorragia. 4. Síndrome de Rendow-Osler-Weber que se asocia con trastornos en el endotelio como

telangectasias con fragilidad y se rompe en el pulmón, TGI, Piel y mucosas. 5. Trastornos de causa infecciosa:

a. Bacterianas: Meningococcemia (produce lesión hemorrágica EC) b. Virales: Dengue hemorrágico c. Por endocarditis infecciosa productora de émbolos sépticos que dañan al endotelio

vascular.

Agregabilidad

El GP IIb-IIIa es el receptor del fibrinógeno que le permite interaccionar con otras

plaquetas. Su deficiencia produce TROMBASTENIA DE GLANZMAN. Es congénita. La

disminución de las GP receptoras de fibrinógenos lo que produce es una disminución de la

agregabilidad plaquetaria que conlleva a equimosis, hematomas o traumas pequeños. En la

mujer cuando se desarrolla lleva a hipermenorrea o aumento de la menstruación. En las

pruebas de laboratorio hay disminución del número de plaquetas (ligera) mayor de 100000,

y tiempo de sangría aumentado.

GP 1b es el receptor del factor de vW. Su deficiencia produce el síndrome de Bernard

Soulier, donde hay una disminución de plaquetas pero con macroplaquetas en sangre

periférica. El tiempo de sangría está aumentado.

El factor plasmástico de la coagulación es el factor de vW:

Es imporante para la interacción y agregación plaquetaria Funciones:

o Agregar plaquetas o Transportar el factor VIII



Su deficiencia produce enfermedad de vW: Entonces tiene deficiencia de la

función plaquetaria y trastornos de la fase plasmática y una disminución del

factor VIII. Entonces puede producir en ambos sexos manifestaciones clínicas

de hemorragias (altera la fase plasmática y la primaria) como equimosis,

sangrado incontrolable en extracción dentaria, etc. EL tiempo de sangría está

aumentado. En la historia clínica tenemos: cordón umbilical, fácilmente se

hacen moretones por traumas, caída de los primeros dientes con mucha

sangre, etc.

La fase plasmática es activada con las plaquetas por el factor de vW; así las

plaquetas también participan en la fase plasmática de la coagulación.

En conjunto la agregación depende de; GP IIIb-IIa, GP 1b y F vW.

Tratamiento:

Bernard Soulier y Trombastenia de Glazman: Reemplazar con concentración de plaquetas.

Enf. de vW varía de acuerdo al tipo o Tipo I: Deficiencia de F vW pero el poco que hay funciona Se caracteriza

por aumento del tiempo de sangría y TP, más una curva plana de agregación plaquetaria con ristocetina.

o Tipo II Deficiencia de F vW pero el que existe es disfuncional, por lo que hay hipoagregabilidad plaquetaria y entonces hay aumento del tiempo de sangría y TP, agregabilidad con ristocetina normal o un poco aumentada.

o Tipo III: Ausencia total de F vW. Se comporta como una hemofilia, hay aumento del tiempo de sangría y el TP. La curva de agregabilidad plaquetaria con ristocetina es plana, hay disminución del factor VIII Hay menos de 1% de factor VIII lo que produce muchas hemorragias.

Se usa vasopresina (desmopresina) que libera f vW del endotelio vascular.

Tipo I + hemorragia que no es severa (como en extracción de dientes o en menstruación)

dar desmopresina



Tipo II NO DAR desmopresina porque produce trombocitopenia con predisposición a

hemorragias.

Tipo III Se le da factor VIII (crioprecipitado).

En todas las anteriores, si es hemorragia excesiva se tiene que dar factor VIII rico en f

vW, que se obtiene del plasma fresco congelado que contiene IX, X, f VW, fibrinógeno (no

es recomendable dar si no es tratado al calor y con solvente detergente como ocurre en el

interior, si no más bien usar el producido mediante fase industrial del plasma en donde se

prepara el compoennte plasmático y se separa por el VIH+.

Enfermedad de vW Hallazgos de laboratorio:

1) Tiempo de sangría elevado. 2) FC VIII 3) F vW disminuido 4) Agregabilidad disminuido 5) Adhesividad disminuida 6) Número de plaquetas normal 7) TPR anormal 8) TT anormal 9) TP normal 10) Ristocetina anormal que corrige al echar plasma normal.

Disfunción plaquetaria por medicamentos:

Aspirina (ASA): Inhibe COX durante toda la vida media de la plqueta. Se puede dar en profilaxis de trombosis venosa profunda, tromboembolismo. No usa en pacientes con riesgo de IAM o ECV.

Versantin: Tipridanol, inhibe el AMPc. Diclopidina, ticlin: Actúa en el peróxido de las plaquetas, es inhibidor de la función

plaquetaria. Medicamentos que inhiben las GP: Clopidogrel y Plabix. AINES: Naproxeno, voltaren, motrin.

Disfunción (inhibición de la función plaquetaria) por alteraciones no hematológicas:



IRC (Debido a toxinas circulantes) Mieloma múltiple porque las proteínas se pegan a la superficie de las plaquetas En síndromes mieloproliferativos:

- Trombocitosis primaria - LMC - Policitemia Vera - Metaplasma mieloide

Púrpura Trombocitopénica Inmune o Idiomática (PTI):

Es importante la historia clínica si es:

1- Pacientes Pediátricos: o Generalmente la trombocitopenia inmunológica es autolimitada y no requiere

tratamiento. o Generalmente hay pródromo de infección faríngea viral: ↓ plaquetas y hay

petequias en las extremidades. Su curso es mayor y se cree que es producida por cualquier virus como rubéola, varicela, VEB.

2- Adolescentes y adulto joven: o Mujer: La causa de trombocitosis es por enf. autoinmune: LES ( Historia de

eritema facial, caída del cabello, artralgias) o Hombre o mujer sexualmente activo con factores de riesgo: VIH +

3- Adulto mayor: Preguntar por medicamentos o AINES o Sulfas: Productoras de anemia hemolítica por deficiencia de G6PDH y anemia

megaloblástica por ser antimetabolito o Sales de Oro: Pacientes con artritis reumatoide. o Uso de antiarrítmicos: Quinidina, procainamida en px de mayor edad.

4- Tercera edad o La PTI se produce por trastornos linfoproliferativos, clásicamente es LLC,

hipogamaglobulinemia, AHAI. La médula ósea es hipercelular con ↑ de megacariocitos con superficie lisa (con poca producción de plaquetas).

o Linfoma de bajo grado de malignidad



o Hepatitis viral

Causas de PTI

Aguda Crónica

2aria a infecciones virales (niños) LES

2aria a fármacos: Heparina, sales de

oro

Síndrome de Evans: PTI con anemia

hemolítica

Neonatal HIV

Hijo de madre con PTI LLC

Post-transfusional Hepatopatías crónicas

Transplante de m.o.

Hipertiroidismo

Diagnóstico general:

- Trombocitopenia de moderada a severa - Sólo una línea celular afectada: Plaquetas - GB y Hb normal - En la M.O. hay hiperplasia megacariocítica sin producción suficiente de plaquetas ya

que no se liberan

Tratamiento inicial:

- Esteroides de 1-2mg/Kg de prednisona 4-6 sem: 1/3 responde bien al tx único con esteroides (↑ plaquetas)



- Algunos se tratan con dosis elevadas de metilprednisolona - Si tiene recaída o necesita esteroides constantemente

Tx fase 2º: Esplenectomía si ha tenido recaída con los esteroides (hay aumento de

plaquetas o se produce trombocitopenia) De los cuales 1/3 responden bien.

Al 1/3 que no responde a fase inicial y 2º, se le da Tx inmunosupresor: Vincristina,

Vinblastina, Gammaglobulina humana (reduce púrpura trombocitopénica neonatal) Danazol

(andrógeno que también se usa en Anemia aplásica) Azatriopina, Ciclofosfamida

PTI es una enfermedad grave: hemorragia en sitio notable

Tx en embarazada: Gammaglobulina humana hiperinmune que disminuye sangrado, no hay

efecto colateral de los esteroides y disminuye la púrpura neonatal.

Púrpura Vascular:

1- Daño al endotelio vascular o Infecciones de bacterias productoras de endotoxinas: émbolos sépticos o Complejos inmunes circulantes: LES o Accidentes y mordeduras de ofidios

2- Daño a la estructura de soporte de la microcirculación o Escorbuto o Amiloidosis o Trastornos del tejido conectivo hereditario o Excesote corticoides o La más típica de todas las púrpuras es la púrpura senil: lesión por daño en

endotelio vascular por la edad en miembros inferiores 3- Vasculitis leucocitoclásica

o Enfermedad reumática o Disproteinemia o Enfermedad mediada por complejos inmunes: Púrpura de Henoch-Schonlein,

caracterizada por ser en pacientes pediátricos después de un cuadro infeccioso faríngeo, produce nefritis por vasculitis y el Tx es la disminución de los complejos inmunes con esteroides

4- Daño a la microcirculación por émbolos sépticos 5- Púrpura autoeritrocítica



El Tx es igual: corticoides, esplenectomía o inmunosupresión.

Trombocitopenia de causa no inmunológica: Em embarazo-preeclampsia, síndrome de Hell

- Por aumento de la destrucción de plaquetas ( por HT + aumento de enzimas hepáticas)

- CID por consumo de plaquetas - Por Púrpura Trombocitopénica Trombótica: Aumento en el consumo de plaquetas

Laboratorios:

La prueba de torniquete: ya no se usa porque depende de demasiados factores (fase plaquetaria, fase plasmática, fibrinolítica)

Adhesividad plaquetaria: generalmente no se usa porque depende de demasiados factores

Las más útiles y específicas son: o Recuento plaquetario: por el método de Coulter (en los labs automáticos) puede ser

una pseudotrombocitopenia cuando se usa EDTA en el tubo (plaquetas agregadas) por lo que hay que ver el frotis de sangre periférica y correlacionar con el volumen medio de plaquetas.

o Tiempo de sangría o Retracción del coágulo que depende de varios factores:

Nº de plaquetas Fx plaquetaria Fase plasmática Fase fibrinolítica

8 a 10 plaquetas por campo es lo normal

Correlación de VMP y RDW

RDW 20 + VCM 60: Déficit de Fe

RDW 14 + VCM 65: Talasemia



VMP ↑ y trombocitopenia, lo más probable es que sea por aumento de la destrucción porque

se envían plaquetas jóvenes o macroplaquetas a sangre periférica.

VMP ↓ y trombocitopenia, lo más probable es que sea por la falta de producción: Anemia

aplásica y trombocitopenia secundaria a quimioterapia

VMP ↑ y pseudotrombocitopenia: Anemia megaloblástica, Síndrome mieloproliferativo,

Enfemedad de Bernard-Soulier.

VMP ↑:

1- Anemia megaloblástica 2- Trombocitopenia 3- Síndrome Mieloproliferativo 4- Enfermedad de Bernard-Soulier

Caso clínico:

Mujer de 32 años, dos abortos, dolor torácico, disnea, sensación de pesadez en el miembro

inferior. Signo de Homans en miembro inferior derecho, ruidos respiratorios normales,

equimosis y no es diabética.

Signos vitales: Fc: 130/min Fr: 28cpm afebril

Laboratorio:

Hb 11g/dl

Plt 90000 (trombocitopenia)

WBC N

TP 15/normal 14

TPT 50/normal 30

Posibles diagnósticos:

- Tromboembolismo Pulmonar - PTI - Déficit de algunos inhibidores fisiológicos - Déficit de un factor de la coagulación - Anticuerpos antifosfolípidos: 1º



2º a LES

Dx:

- Abortos recurrentes - Embolismo pulmonar - TPT pronlongados - Ac antifosfolípidos 1º(Trombocitopenia) - Ac antifosfolípidos 2º a LES

Tx:

- Fraxiheparina no se monitoriza - Heparina IV y si se monitoriza con TPT: 5000-1000/h por 7-10 días - Cumarin, monitorizar con INR con 2.5-3(TP) - Corticoides para Ac. Antifosfolípidos 2º a LES - Aspirina para: Ac antifosfolípidos 1º(trombocitopenia) - Si se quiere embarazar debe pasar 3-6 meses con warfarina (teratogénica), se le

quita la warfarina y se mantiene con aspirina. Dar heparina subcutánea durante todo el embarazo y si el paro es por cesárea quitar aspirina 7 días antes.

-

CITA Dr. Aparicio Díaz

INVESTIGACIÓN:

-El estudiante, investigará y leerá sobre el tema de la enzimas y factores en la cascada de coagulación. Su regulación y componentes. -El estudiante será capaz de conocer e investigar el tema de anticoagulantes -Estudiará los compuestos químicos, que actúan como anticoagulantes Heparina, Citrato de Sodio.




MATERIAL BIOLOGICO

Sangre de un voluntario

INSTRUMENTAL Y/O EQUIPO

Jeringas de 10 ml.

Tubos de ensayo

Gradilla

Papel parafilm

Micropipetas.

REACTIVOS Y/O FÁRMACOS

Solución Heparina al 1%

Solución de Citrato de Sodio al 3.8%

Solución Cloruro de Sodio al 0.9%

Solución de Cloruro de Calcio al 5%

TOXICOLOGÌA:

El material no es altamente toxico. El cuidado del uso de la sangre se debe de hacer con

guantes.



METODOLOGÍA:

PROCEDIMIENTO

1. Determinación del tiempo de coagulación

1.1.Con una jeringa desechable obtener 10 ml de sangre venosa

de un voluntario.

1.2.Colocar directamente en dos tubos de ensayo chicos sin

anticoagulante, 2 ml de sangre en cada uno y taparlos

herméticamente con papel parafilm.

1.3.Uno de los tubos se deja en la gradilla y cada minuto

inclinarlo suavemente a 45 grados para ver si se formó el

coagulo.

1.4.El otro tubo debe mantenerse tibio (es decir agarrado de la

mano y con el puño cerrado) y cada 15 segundos invertir el

tubo totalmente hasta observar la formación del coagulo.

1.5.Para esta prueba, el tiempo de ambas muestras debe

tomarse desde el momento en que comienza a fluir la sangre

al interior de la jeringa durante el proceso de extracción.

2. Estudio de anticoagulantes in Vitro

2.1.Marcar tres tubos de ensayo del 1 al 3 y colocarlos en una

gradilla.

2.2.A cada tubo añadirle lo siguiente:

Tubo número 1 añadir 0.2 ml de solución salina al 0.9%

Tubo número 2 añadir 0.2 ml de solución de Citrato de Sodio al

3.8%



Tubo número 3 añadir 0.2 ml de solución de Heparina al 1%

2.3.Posteriormente añadir a cada uno de los tres tubos

marcados previamente, 0.8 ml de sangre, se tapan con el

papel parafilm y se mezcla cada tubo por rotación.

2.4.Dejarlos reposar por 15 minutos y al cabo de ese tiempo

observar y anotar lo ocurrido.

2.5.Añadir 0.2 ml de cloruro de Calcio al 5% a los tubos 2 y 3.

2.6.Mezclar los tubos por rotación suave, sellarlos y dejar

reposar otros 15 minutos.

2.7.Observar y anotar al cabo de ese tiempo lo ocurrido.

RESULTADOS:


TABLA 1 TIEMPOS DE COAGULACION EN TEMPERATURA AMBIENTE A Y

TEMPERATURA A LA DEL CUERPO HUMANO. B

TUBO TEMPERATURA TIEMPOS COAGULACION

A

B

TUBO TEMPERATURA TIEMPO COAGULACION

A

B



C

CÁLCULOS

[Introduzca los cálculos requeridos que el alumno debe realizar para el cumplimiento de

objetivos y competencias establecidos]


El manejo de los residuos, serán colocados en bolsas apropiadas para ello y serán

depositado en el lugar de deshechos por el o la encargada.


El profesor con los alumnos podrán discutir ampliamente, sobre los factores que participan

en la coagulación y el papel de algunos compuestos como anticoagulantes.

Discutirán los resultados obtenidos así como los tiempos de coagulación de cada tubo con

las características que presenten en función de los tiempos y el grado de coagulación de la

sangre.

CONCLUSIONES:

Los alumnos serán capaces de resumir brevemente las conclusiones generales

Los alumnos serán capaces de hacer un resumen de los resultados y de las

conclusiones del experimento y entregarlo antes de la otra practica.

BIBLIOGRAFÍA:

1. Hall J.E. Guyton y Hall. (2011) Tratado de Fisiología Médica.

12ª ed. España:

Editorial Elsevier;

2. Kim Barret (2013). Fisiología Médica de Ganong 24ª ed. Mc

Graw Hill.



3. Bertram G. Katzung et al. (2013).Farmacología básica y

clínica. 12ª ed. Editorial Mc Graw Hill;

4.

https://www.google.com.mx/webhp?sourceid=chrome-instant&ion=1&espv=2&ie=UTF-

8#q=hemostasia+primaria+pruebas+de+laboratorio

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