La Tilapia Anteproyecto[1]

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La tilapia roja es un tetrahibrido es decir un cruce hibrido entre cuatro especies representativas del genero oreochromis o.mossambicus o. niloticus o hornorun o aurea .cada una de estas esoecies aporta al hidrido sus mejores característica resultando uno de los peces con mayor potencial para la acuicultura comercial en el mundo (paz 2004) Las hembras de Oreochromis incuban las larvas en su boca durante 10 días, tiempo en el que no consumen alimento. Finalizada esta etapa, requieren dos semanas para reacondicionarse antes de volver a desovar (13), esto conduce a que los intervalos entre los desoves sean muy largos y se disminuye la vida reproductiva de las hembras. Rev Col Cienc Pec Vol. 15: 1, 2002 Obtención de huevos para incubación artificial La obtención de huevos para incubación artificial requiere de cinco pasos principales: 1- Acondicionamiento y siembra de reproductores. 2- Adaptación e incubación de los huevos. 3- Absorción del saco vitelino en bandejas. 4- Adaptación de las larvas a las bandejas y acostumbramiento al alimento. 5- Reversión sexual Rev Col Cienc Pec Vol. 15: 1, 2002 Incubación de embriones Las hembras reproductoras empleadas en el proceso reproductivo son de peso y talla variable de acuerdo al centro de procedencia, en el caso del Centro de Acuicultura Tambo de Mora (FONDEPES) se empleaban hembras con peso entre 150 a 250 gr, de las que se obtenía entre 700 a 800 ovas embrionadas/cada 15 días y una sobrevivencia entre 80 a 95 % al pasar a la etapa de reversión. En el caso de las empresas privadas estas emplean hembras de 250 a 500 gr y obtienen 9.8 alevines/kg hembra/día En los estanques de reproducción se colocan de 3 a 2 hembras por macho, cuando se visualiza que las hembras fueron fertilizadas, al cabo de 5 a 10 días se retiran los embriones de la boca e inmediatamente son trasladados al laboratorio o Hatchery, donde son evaluados y seleccionados de acuerdo a su estado de vida (ovas, larvas, alevines); y son colocados en bandejas de incubación con un flujo continuo de agua 1 L-min-1 y a una temperatura de 25 a 28 ° C, las ovas y larvas permanecen en el laboratorio hasta que desaparezca el saco vitelino. Las incubadoras empleadas por lo general son bandejas rectangulares de 40 x 25 x 8 cm (Fig 3a); con perforaciones en los laterales superiores de 2 cm. de diámetro, protegidas con malla fina, para evitar la fuga de las larvas contenidas en ellas, siendo las bandejas de color transparente. Algunas empresas emplean incubadoras tipo tubulares con flujo continuo de agua Paul Martín Baltazar Guerrero; Segunda Jornada de Actualización en Tilapia, 11‐15 setiembre del 2009, Puerto Vallarta, México

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La tilapia roja es un tetrahibrido es decir un cruce hibrido entre cuatro especies representativas del genero oreochromis o.mossambicus o. niloticus o hornorun o aurea .cada una de estas esoecies aporta al hidrido sus mejores característica resultando uno de los peces con mayor potencial para la acuicultura comercial en el mundo (paz 2004)

Las hembras de Oreochromis incuban las larvas en su boca durante 10 días, tiempo en el que no consumen alimento. Finalizada esta etapa, requieren dos semanas para reacondicionarse antes de volver a desovar (13), esto conduce a que los intervalos entrelos desoves sean muy largos y se disminuye la vida reproductiva de las hembras.

Rev Col Cienc Pec Vol. 15: 1, 2002

Obtención de huevos para incubación artificialLa obtención de huevos para incubación artificial requiere de cinco pasos principales: 1- Acondicionamiento y siembra de reproductores. 2- Adaptación e incubación de los huevos. 3- Absorción del saco vitelino en bandejas. 4- Adaptación de las larvas a las bandejas y acostumbramiento al alimento. 5- Reversión sexual

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Incubación de embrionesLas hembras reproductoras empleadas en el proceso reproductivo son de peso y talla variable de acuerdo al centro de procedencia, en el caso del Centro de Acuicultura Tambo de Mora (FONDEPES) se empleaban hembras con peso entre 150 a 250 gr, de las que se obtenía entre 700 a 800 ovas embrionadas/cada 15 días y una sobrevivencia entre 80 a 95 % al pasar a la etapa de reversión. En el caso de las empresas privadas estas emplean hembras de 250 a 500 gr y obtienen 9.8 alevines/kg hembra/día En los estanques de reproducción se colocan de 3 a 2 hembras por macho, cuando se visualiza que las hembras fueron fertilizadas, al cabo de 5 a 10 días se retiran los embriones de la boca e inmediatamente son trasladados al laboratorio o Hatchery, donde son evaluados y seleccionados de acuerdo a su estado de vida (ovas, larvas, alevines); y son colocados en bandejas de incubación con un flujo continuo de agua 1 L-min-1 y a una temperatura de 25 a 28 ° C, las ovas y larvas permanecen en el laboratorio hasta que desaparezca el saco vitelino. Las incubadoras empleadas por lo general son bandejas rectangulares de 40 x 25 x 8 cm (Fig 3a); con perforaciones en los laterales superiores de 2 cm. de diámetro, protegidas con malla fina, para evitar la fuga de las larvas contenidas en ellas, siendo las bandejas de color transparente. Algunas empresas emplean incubadoras tipo tubulares con flujo continuo de agua Paul Martín Baltazar Guerrero; Segunda Jornada de Actualización en Tilapia, 11‐15 setiembre del 2009, Puerto Vallarta, México

IncubaciónUna vez revisadas las hembras, al día 5° o 7°, sus huevos fecundados son retirados de la cavidad oral y son divididos en lotes dependiendo del estadio de desarrollo (15). Los huevos se desinfectan con soluciones yodadas, formalina, verde de malaquita o acriflavina, para evitar infecciones bacterianas, principalmente Aeromona hydrophyla yPseudomona fluorescens, o de hongos como Saprolegnia sp., Fusarium sp. y Trichoderma sp., lo que puede disminuir los porcentajes de eclosión considerablemente Rev Col Cienc Pec Vol. 15: 1, 2002

Reproducción e Incubación

Después del desove e hidratación, los huevos deben ser colocados en incubadoras cilindro-cónica, con flujo abierto de agua. Los ovocitos muestran coloración que oscila entre el vino-tinto y el verde con diámetro medio variando entre 1.090 mm para B. orbignyanus (38) e 1.250 mm para B. insignis (1). La masa de huevos corresponde a aproximadamente 10% del peso vivo de la hembra en B. amazonicus (17). Después de la hidratación, el diámetro de los huevos puede variar entre 3.46 mm para B. orbignyanus (38) y 4.10 mm para el B. insignis (3). La eclosión de las larvas de B. orbignyanus ocurre 18 h después del desove (25°C) mostrando

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longitud total de la larva (CT) de 4.46 mm (38), la de B. insignis (CT: 5 a 6 mm) ocurre a las 14 h (26°C) (3) y la de B. amazonicus acontece a las 17 h (26°C) (17). Entre 30 e 40 horas después de la eclosión, las larvas presentan 50 % de la vesícula natatoria inflada y comienzan a mostrar un canibalismo acentuado (3, 30, 38)

. Rev Colom Cienc Pecua vol.19 no.2 Medellín Apr./June 2006

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5.2.2 Instalaciones de incubación

La mayor parte del trabajo de propagación se realiza en las instalaciones de incubación. El trabajo comienza con la llegada de reproductores maduros, para inducir el desove, y termina con la distribución de los pececillos para siembra. Durante la temporada de propagación, las piscifactorías comerciales suelen trabajar en jornada continua. En las Figuras 59 y 60 pueden verse en detalle varios tipos de unidades de incubación.

Para almacenar los reproductores maduros antes de la hipofisación son necesarios dos estanques pequeños, de 200–450 m2 cada uno (10 × 20 m ó 15 × 30 m) y 1,0–1,5 m de profundidad. Bastan esos dos estanques para conservar (separados por sexos) todos los peces (25–50 aproximadamente) que se requieren para una semana. Estos estanques se conocen con el nombre de estanques de entrada o de almacenamiento.

Para conservar los reproductores ya inyectados son necesarios tanques o pilones de ladrillo u hormigón a los que llegue continuamente agua filtrada, limpia y bien oxigenada. Son los llamados tanques o pilones de espera. El fondo de estos tanques debe estar en ligera pendiente, con un desagüe en la parte más profunda para poder vaciarlos completamente cuando sea necesario. Para regular el nivel del agua se utiliza un tubo abatible de 5 cm de diámetro (Figura 59). Para mantener ese tubo en la posición adecuada e impedir que se incline y deje salir el

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agua de la cubeta se utiliza una cadena con un pasador. A veces, especialmente si el desove de los animales inyectados ha de hacerse artificialmente, es muy útil disponer de una zanja de 20–25 cm de profundidad y 50 cm de anchura a lo largo del eje longitudinal del tanque, ya que de esa manera los reproductores pueden sacarse fácilmente para proceder al desove artificial. Cuando se utiliza la técnica de desove inducido, pueden emplearse tanques de espera de fondo llano. Las mejores dimensiones para estos tanques son 2,5 × 1,5 × 1,0 m para 4–6 reproductores y 4 × 2 × 1 m para 8–10 reproductores de 3–6 kg cada uno. En el caso de reproductores especialmente grandes (por ejemplo, Colossoma spp.), de 12–20 kg cada uno, es preferible disponer de tanques mayores (7,5 × 2,5 × 1,0 m). No es aconsejable amontonar demasiados peces en un tanque, especialmente si se quiere trabajar con el sistema de desove inducido. De todas maneras, la densidad óptima ha de determinarse experimentalmente con cada especie. Es importante que los reproductores dispongan de suficiente oxígeno. Se calcula que un reproductor de talla normal (3–6 kg) requiere 4 1 de agua/min.

Muchos de los peces que desovan en los ríos (carpa plateada, carpa herbívora, carpa de cabeza grande, rohu, mrigal, coporo, etc.) pueden estar muy nerviosos y agitados. Es conveniente, pues, colocarlos en tanques poco profundos (25–30 cm de profundidad) durante el tratamiento, para impedir que puedan saltar fuera. Por la misma razón conviene cubrir con una red la parte superior del tanque. Es necesario además poner en la superficie de la cubierta una pantalla flotante de dimensiones adecuadas y de color oscuro, para que los peces inyectados puedan esconderse debajo. Con peces que no se ponen nerviosos durante la reproducción inducida, el nivel del agua de los tanques de espera puede elevarse a 60–70 cm.

La manipulación de los reproductores en el estanque de espera es mucho más fácil si se instala un hapa dentro del tanque. Para que el fondo del hapa se mantenga tirante y no moleste a los peces, se coloca alrededor de él un armazón de varillas de hierro. Conviene que la longitud y anchura del hapa sean 5–10 cm menores que las del tanque.

Los reproductores deben permanecer en el tanque de espera unas 36–48 h, es decir: 24 h después de la inyección preparatoria, 9–10 h después de la inyección decisiva, y el tiempo necesario, después del desove, para recoger los huevos fertilizados. Por tanto, son suficientes 4–6 tanques de espera si se prevé que las operaciones de desove inducido y desove artificial a mano se realizarán a razón de cuatro días por semana. Ha de reservarse siempre un día para las operaciones de limpieza y manutención.

A lo largo de la hilera de tanques de espera, por el lado donde están colocadas las tuberías de desagüe, hay que construir una zanja de 10–25 cm de profundidad y 60–70 cm de anchura para recoger el agua de los tanques y colocar los colectores de huevos.

En las zonas tropicales y subtropicales, es mejor que los tanques estén bajo techo o al menos total o parcialmente sombreados. Es conveniente disponer en las proximidades de un laboratorio (6 × 3 m) o una zona cubierta, especialmente para el desove artificial, la preparación de inyecciones, el tratamiento de los huevos y el semen, etc. El laboratorio debe tener agua, mesas, armarios, estanterías, etc. También es necesario un pequeño almacén.

Los huevos fertilizados obtenidos por desove inducido o por desove artificial han de incubarse, y las larvas han de criarse en las instalaciones de incubación hasta la fase de alevines que empiecen a comer.

Para incubar los huevos no adherentes de peces de aguas templadas se emplean de ordinario incubadoras en forma de embudo. Para huevos más pesados, con poco espacio perivitelino, se utilizan embudos o recipientes más cónicos, que necesariamente tienen menor diámetro (16–20 cm) y volumen. A la hora de decidir sobre el número de incubadoras necesario es preciso tener presente que sólo el 25–30 por ciento del volumen total de la incubadora puede utilizarse para contener huevos. Eso quiere decir que en una vasija Zoug de 7 l o en un embudo de plástico de la misma capacidad sólo pueden colocarse 1,5–2,2 1 de huevos dilatados. Para los huevos flotantes o semiflotantes es mejor que la parte cónica de la incubadora sea más roma. Los tipos de incubadora en forma de embudo descritos en este manual son en general adecuados para la mayoría de los

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huevos que se encuentran en los trabajos de propagación. Las incubadoras grandes o muy grandes (100–200 1) tienen de ordinario el inconveniente de que se llenan con huevos de hembras diferentes, con distintos índices de fertilización. De todas maneras, en los trabajos de propagación en gran escala se utilizan incubadoras de ese tipo. Las incubadoras en forma de embudo fabricadas con materiales duros, como cristal, fibra de cristal o metal, pueden instalarse fácilmente utilizando abrazaderas de metal.

En los huevos de peces de regiones tropicales y subtropicales que desovan en los ríos, la eclosión se produce a las 18–30 h. El tiempo necesario, pues, para poder volver a usar la incubadora, teniendo en cuenta el que hace falta para la limpieza y para dejar que se seque, es de unas 48 h, o sea aproximadamente igual que en el caso de los tanques de espera.

En los recipientes de cría de larvas, el tiempo necesario para poder volver a utilizarlas es de unos 5 días. Pero el número de larvas que pueden mantenerse en esos recipientes es aproximadamente doble del número de huevos que pueden colocarse en una incubadora de dimensiones análogas.

Los grifos por los que llega el agua a la incubadora y a los recipientes de cría de larvas están colocados en la tubería de traida de agua a intervalos de 25 cm, en el caso de las vasijas Zoug y los embudos cónicos, y a 60 cm en los demás casos. La conexión entre el grifo y la cubeta puede ser directa o mediante un tubo flexible de goma o plástico. En cualquier caso, debe sujetarse bien, para evitar desconexiones accidentales que serían fatales para los huevos o las larvas.

Cuando se utilizan incubadoras sumergidas hechas con materiales no rígidos, es preciso construir tanques o pilones gemelos rectangulares, y la tubería del agua, que lleva grifos a ambos lados, va colocada sobre la pared divisoria. La distancia entre los grifos ha de ser de 60 cm. Es conveniente y necesario que los grifos arrojen la misma cantidad de agua cuando está abierto uno solo que cuando están todos abiertos; para ello, la tubería en la que están colocados los grifos ha de ser de sección grande: por ejemplo, 5 cm si hay 20 grifos y 7,5 cm si son más de 20 (Figura 60).

Cada uno de los tanques gemelos tiene 6–8 m de longitud, 70 cm de anchura y 1,0–1,1 m de profundidad y en uno de los extremos hay un tubo abatible para regular el nivel del agua. Dos tanques gemelos de las dimensiones indicadas son suficientes para una piscifactoría de dimensiones medias. Para la propagación de carpas comunes es preciso disponer de unos 40–60 grifos para vasijas Zoug.

Como los huevos y las larvas de muchos peces son sensibles a la exposición directa a la luz del sol, conviene que los tanques gemelos tengan sombra.

Los tanques para el acondicionamiento de los alevines o jaramugos antes de envasarlos para el transporte son fáciles de construir. El acondicionamiento dura en general 24 h. Los tanques miden de ordinario 1,2 × 1,2 × 1,0 m y se necesitan en general 4 ó 5 tanques. Para manipular los peces con facilidad suele colocarse en el tanque un hapa o “caja de paño de red”, hecho con malla de 2 mm y de 1,0 × 1,0 ×1,0 m. En un tanque de esas dimensiones pueden acondicionarse unos 50 000 jaramugos y puede utilizarse también para el tratamiento antiparasitario.

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Figura 59 Disposición general de las instalaciones de incubación en

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una piscifactoría de aguas templadas

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Figura 60 Disposición general de los tanques gemelos y los tanques de espera en una piscifactoría

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MATERIALES Y EQUIPOS:

Incubadoras rectangulares:

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Se emplean incubadoras rectangulares con capacidad de incubación de 1 millón de huevecillos, para incubar los huevos de las tilapias, es preciso construir tanques o pilones gemelos rectangulares, y la tubería del agua, que lleva grifos a ambos lados, va colocada sobre la pared divisoria. La distancia entre los grifos ha de ser de 60 cm. Es conveniente y necesario que los grifos arrojen la misma cantidad de agua cuando está abierto uno solo que cuando están todos abiertos; para ello, la tubería en la que están colocados los grifos ha de ser de sección grande: por ejemplo, 5 cm si hay 20 grifos y 7,5 cm si son más de 20.

Cada uno de los tanques gemelos tiene 6–8 m de longitud, 70 cm de anchura y 1,0–1,1 m de profundidad y en uno de los extremos hay un tubo abatible para regular el nivel del agua. Dos tanques gemelos de las dimensiones indicadas son suficientes para una piscifactoría de dimensiones medias. Para la propagación de carpas comunes es preciso disponer de unos 40–60 grifos para vasijas Zoug.

Como los huevos y las larvas de muchos peces son sensibles a la exposición directa a la luz del sol, conviene que los tanques gemelos tengan sombra.

INCUBADORA DE FLUJO ASCENDENTE

Incubadora  de  flujo ascendente, fácil de utilizar e instalar en  la  sala  de  incubación.  Capacidad  de incubación 60,000 huevecillos de tilapia.

 

 

INCUBADORA DE FLUJO ASCENDENTE

INCUBADORAS DE DIAMETRO  6” = 30,000 HUEVOSINCUBADORAS DE DIAMETRO  9” = 60,000 HUEVOSINCUBADORAS DE DIAMETRO 12” = 80,000 HUEVOS

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Población y muestra:

La población depende los huevecillos que produzcan las hembras de tilapia.

La muestra es el 0.1%

Muestreo:

Con una cuchara extraigo el 0.1% de mestra de lo huvos de distintas partes de la poblacion y observo en que condiciones se encuentra esa muestra.

Procedimiento:

Primero espero el tiempo de reproducción de los reproductores, luego aplicando el conocimiento adquirido de la investigación sacamos los huevos de la boca de la tilapia y luego realizamos el mantenimiento de los huevos en la incubadora.

Cronograma de actividades: