HIDATIDOSIS

Doris Armijo

AGENTE CAUSAL

Larvas de cestodos tisulares: Echinococcus spp. Echinococcus granulosus (3 a 6mm)  quística E. multilocularis (1.2 a 3.7mm) alveolar E. vogeli (hasta 5.6mm) poliquística E. oligarthrus (hasta 2.9mm)

Forma infectante: huevos Forma diagnóstica: hidátide Hábitat: Hígado > Pulmones > Otros

EspecieHospedero definitivo habitual

Hospedero intermediario

habitual

E. granulosus Perro Ganado

E. multilocularis Zorro Roedor

E. vogeli Perro de monte Roedores

E. oligarthrus Felino silvestre Roedor

ADULTO: Echinococcus spp. Escólex

4 ventosas Corona de ganchos

Cuello Regeneración

3 – 4 Proglótidas Inmadura con esbozo del aparato

genital. Madura con ambos aparatos

masculino y femenino. Grávida (más grande) que sólo

contiene el útero lleno de huevos. No tienen tubo digestivo, su

nutrición la realizan a través de su tegumento.

PROTOESCÓLEX EN HIDÁTIDE

ECHINOCOCCUS MULTILOCULARIS

Constitución de Quiste Hidatídico Adventicia o periquística Cutícula Membrana proligera Líquido hidatídico

Trasparente como agua de roca, densidad = 1007 a 1012, pH = 7.4 98 % de agua. NaCl, Glucosa, Ac. Urico, vestigios de albumina y

lipidos. Este fluido es antigenico.

Elementos figurados: MACROSCÓPICOS: Vesiculas hijas MICROSCÓPICOS:

Vesiculas proligeras Protoescolices (400-500mil/ml en quistes fértiles)

Arenilla hidatídica: conjunto de corpúsculos que se ven a simple vista que tienden a depositarse en la parte más declive del líquido hidatídico. Cápsulas proligeras Escolex (traduce fertilidad de quiste) Descamación de la pared de la membrana germinativa, ganchos, etc.

Cuadro Clínico

Síndrome Hepático Dolor abdominal Masa en hipocondrio

derecho Obstrucción de vías

biliares Síndrome Pulmonar

de Condensación Dolor torácico Tos Hemoptisis

Ruptura de quiste Fiebre Urticaria Eosinofilia Shock anafiláctico Diseminación

Órganos afectados Tamaño de quistes Número de quistes Ubicación Contactos con órganos vecinos Complicaciones

Complicaciones Hidatidosis Pulmonar Múltiple

(Diseminación Bronco - Hematógena)

Hidatidosis Sistémica o de Órganos. Empiema Hidatídico

- Perforación Pleural Absceso Pulmonar (Sobreinfección) 

DIAGNÓSTICO

IMÁGENES + PRUEBAS SEROLÓGICAS POSITIVAS

BIOPSIA*

DIAGNÓSTICO Cuadro clínico sugerente Examen Directo:

Observación de escólex Ganchos en esputo Vómica Punción Ultrasonografía: clasificación de Gharbi Radiografía simple

Examen Indirecto: Búsqueda de Ac. en suero sanguíneo

Pruebas de tamiz: HAI, ELISA, partículas de látex — Poseen alta sensibilidad y baja especificidad

Pruebas de elección: IEF, DD5 (doble difusión de arco 5) y Western Blot

Búsqueda de antígeno en líquido de punción

Clasificación de Gharbi Tipo I: colecciones uniloculares de contenido líquido

puro de bordes bien definidos. Tipo II: colecciones en las cuales se observa

despegamiento de membranas que flotan en la cavidad quística.

Tipo III: colecciones multiseptadas o quistes multiloculares.

Tipo IV: masas heterogéneas complejas. Tipo V: quiste calcificado.

QUISTE HIDATIDICO: Tipos

III

I II

IV V

LABORATORIO Leucocitosis Eosinofilia Aumento de las transaminasas y fosfatasas alcalinas Hipergammaglobulinemia (muy alta en formas poliquísticas)

Inmunología Reacción de hipersensibilidad

Prueba de Casoni Reacciones serológicas

Inmunoelectroforesis ELISA Hemaglutinación indirecta Inmunofluorescencia indirecta Prueba de látex Inmunoblot con antígenos purificados

La DD5 aparece como la prueba más especifica, mientras que ELISA-IgG e Inmunofluorescencia son más sensibles.

Antígeno

Se ha detectado mediante inmunoblots tres patrones antigénicos diferentes: Ovino, Bovino, Humano, equino y suino, siendo los perfiles ovino y humano casi idénticos.

En el líquido hidatídico existe también histamina, aglutinógeno con actividad anafiláctica y un ingrediente citotóxico termoestable de bajo peso molecular que podrá penetrar a través de la pared del quiste e interferir localmente a la acción de las células inmunocompetentes, facilitando la supervivencia del parásito.

También hay anticuerpos inespecíficos, inmunoglobulinas especificas (IgG2a e IgG2b), una poliexamina y tres poliaminas (putresinas, espermidina y ornitina descarboxilasa).

Los protocoescolex metabolizan los carbohidratos hasta formar acido láctico y acético y producen pequeñas cantidades de pirúvico y succínico.

Antígeno del liquido hidatídico de carnero por estudios de cromatografía e inmunoelectroforesis presenta dos componentes antigénicos principales: Antígeno 5 ó A

Lipoproteína termolábil Antígeno B

Lipoproteína de mayor estabilidad al calor.

ELISA: enzyme-linked inmunoabsorbent assay

Anticuerpos

ELISA: enzyme-linked inmunoabsorbent assay

De captura

• S/E = 81/89• Primera aproximación diagnóstica y screening• Normaliza al 2º año

IgG

• S/E = 62,5/96• En primoinfección, recidiva y reinfección.• Normaliza de 3 a 7 mIgE

HAI: Hemaglutinación indirecta

Anticuerpos dirigidos contra las hemaglutininas del microorganismo (inhibición de la hemaglutinación). Su sensibilidad y especificidad son menores al ELISA.

Inmunofluorescencia indirecta 15-25% de las hidatidosis humanas son

seronegativas. Quistes de localización hepática suelen presentar

serología positiva en más del 80% de los casos. Quistes pulmonares hasta un 50% de los casos. Uso restringido a laboratorios especializados.

AL: Aglutinación de Látex Fishman (1960) y Kagan (1968) Impregnando de partículas de látex sensibilizadas con

líquido hidatídico (magnifican o amplían la reacción antígeno anticuerpo que ocurre cuando ellas se mezclan)

Reactivos de diagnóstico rápido, altamente sensibles, específicos y prácticos.

Reacción: las partículas de látex de poliestireno se unen al antígeno y

este al fragmento cristalizable (Fc) de moléculas de IgG, estos anticuerpos multivalentes se acoplan a múltiples antígenos adheridos a partículas de látex, se produce un entramado que da como resultado una aglutinación ó agrupamiento visible de las micro esferas semejante a una leche cortada.

Se hace uso de buffers a fin de estabilizar el sistemas látex- antigeno.

La prueba de efectúa utilizando una pipeta pasteur o micro pipeta se deposita una cantidad 0,02 mL del suero sobre una placa de vidrio y con otra pipeta se deposita 0,02 ml del reactivo de látex sensibilizado al lado del suero y se mezclan ambas con un palillo o mondadientes mediante movimiento circular.

El suero y el antígeno deben estar aproximadamente ala temperatura ambiente.

Se balancea continuamente a mano durante 30 segundos y se lee a simple vista sobre fondo oscuro.

La continua agitación es muy importante para obtener resultados fiables.

Positivo: grumos de partículas látex Negativo: uniformemente turbio o en suspensión.

IEF: Inmunoelectroforesis arco 5 (IEF) De los doce antígenos, el más específico es el

denominado antígeno 5

DD5: Doble difusión arco 5 Tiene limitaciones en su sensibilidad (57%) Especificidad es muy buena (100%) Demanda un tiempo prolongado para obtener resultados Detección de anticuerpos contra el antígeno 5. Al comparar el antígeno producido con un antígeno de

referencia frente a un suero anti líquido hidatídico de referencia se verifica la formación del arco 5 bien definido, su morfología y ubicación es imagen en espejo de la morfología y ubicación del arco 5 resultante de la interacción del anti suero patrón y el antigeno de referencia que es de particular importancia por su especificidad para Echinococcus granulosus.

 La desaparición del arco 5 se verifica aproximadamente 12 meses después de la cirugía

 La detección del arco 5 confirma inmunológicamente la enfermedad, la ausencia de este arco no descarta la posibilidad de hidatidosis.

Western Blot Sensibilidad de 80% Especificidad de 100% Resulta costoso, poco práctico y demanda

mucho tiempo. En 1991 se identificó como principales bandas

12,16, 20 y la de 38 kD que es una de las principales subunidades del antígeno 5.

No todos los pacientes producen anticuerpos contra estas bandas.

Presencia de bandas de 38 kD y 116 kD en el antígeno proveniente de los quistes fértiles.

INMUNOBLOT

Intradermoreacción de Casoni

Estimar el grado de hipersensibilidad a los antígenos de Echinococcus granulosus, la cual estaría mediada por IgE; por el contrario, las pruebas serológicas están asociadas con inmunoglobulinas de las clases G y M

Procedimiento: Inyectar intradérmicamente 0.1 ml de líquido

hidatídico. Si se produce una pápula roja edematosa con pseudópodos en los 15-20 min después de la inyección, la prueba es positiva

Contraída la infección permanece positiva de por vida.

Tiene una positividad que va de 40 al 90%; esta disparidad se debe fundamentalmente a la falta de estandarización del antígeno.

La especificidad es satisfactoria pero puede presentarse falsos positivos con helmintiasis. 

Prueba de Weinberg (Fijación del complemento)

El complemento posee la capacidad de unirse a los complejos antígeno anticuerpo.— Si el suero posee anticuerpos específicos, se fija el complemento y no puede unirse a la hemolisina para lisar los eritrocitos.

En todos los casos, la negatividad de una prueba serológica no puede descartar la presencia de un quiste hidatídico, tanto en portadores sanos como pacientes sintomáticos.

CONCLUSIONS Identification of scolices and hooklets in cyst fluid and on

histologic examination. Serologic tests indicate current or previous infection. Titers can persist for years after surgical removal. Precipitation assays (e.g., immunoelectrophoresis,

immunoblotting, double diffusion are more specific. EIA is method of choice. EIA, but not IHA, can differentiate E.

granulosus from E. multilocularis in test for antigen on cyst fluid.

Laboratory findings due to cystic lesion of liver in 65% of cases; cysts are widely scattered in 10%; multiple in 20% to 40% of cases.

Eosinophils are increased in 33% of cases; rises dramatically if cyst leaks.

Stool examination is not helpful.

I• Menor de 3cm• ELISA• Control

ecográfico c/6meses

• 3 a 7.5cm• Albendazol

• Mayor de 7.5cm• Punción y/o

cirugía

II• 1 a 7.5cm

• Albendazol

• Mayor de 7.5cm• Punción

y/o cirugía

III• Menor de

3cm• Control

c/3meses• 3 a 7.5cm• Albendaz

ol• Mayor de

7.5cm• Punción

y/o cirugía

IV• Evaluar• DX.

Diferencial• Eco, TAC,

RMN

V• Evalu

ar• Eco,

TAC, RMN

Terapéutica > Seguimiento

Cirugía: no es 100% efectiva