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GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS UVA DE MESA GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS UVA DE MESA Brevipalpus chilensis Lobesia botrana Chanchitos blancos
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GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESAGUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESA
Brevipalpus chilensisLobesia botrana Chanchitos blancos
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INTRODUCCIÓN 2
INSTRUCTIVO PARA LA UTILIZACIÓN DE ESTE MANUAL 3
FALSA ARAÑITA DE LA VID 4
POLILLA DEL RACIMO DE LA VID 10
CHANCHITOS BLANCOS 15
BIBLIOGRAFÍA 20
Índice
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El monitoreo de plagas en huertos es un componente esencial tanto del Manejo Integrado de Plagas como de las Buenas Prácticas Agrícolas, en cuyo caso permite al productor tomar sus decisiones de control avalado por la presencia concreta de las plagas cuantificadas en su huerto. Establecer un sistema de monitoreo, aumenta las probabilidades de éxito en el control de plagas, evitando aplicaciones innecesarias. Lo anterior, implica un ahorro y la protección de la fauna benéfica presente en el huerto que mantiene controladas otras plagas (Referencia: Ripa, Luppichini).
Esta guía de campo proporciona al productor y profesionales del sector agrícola una herramienta que les permitiría identificar, monitorear e interpretar en forma práctica las plagas presentes en su huerto de uva de mesa, en este caso Brevipalpus chilensis (Falsa arañita roja de la vid), Lobesia botrana (Polilla del racimo de la vid) y Pseudococcus (Chanchitos blancos). El monitoreo efectivo (efectuado en la época oportuna, examinando las estructuras de la planta que corresponda y analizando los registros) nos permitirá mejorar las formas de control utilizadas.
Brevipalpus chilensis corresponde a una plaga endémica, de connotación cuarentenaria en fruta de exportación y en cultivares destinados a la vinificación, causa un daño de importancia económica, principalmente en variedades tintas. Son ácaros fitófagos que se caracterizan por poseer un cuerpo pequeño muy aplanado, generalmente ovalado y de setas dorsales cortas. Esta plaga se distribuye en Chile, desde la región de Arica y Parinacota a la región de Los Ríos.
Lobesia botrana fue detectada oficialmente por primera vez en Chile en la zona de Linderos, región Metropolitana en abril del 2008 (Ripa & Luppichini, 2010). La plaga, originaria de Europa, ataca a los viñedos, su larva provoca un daño directo al alimentarse de los racimos, produciéndose una pudrición y deshidratación de las bayas. En Chile se encuentra distribuida desde la región de Atacama a la Región de la Araucanía (Fuente: SAG). Debido al grave daño fitosanitario que este insecto produce al sector agrícola, el SAG la declaró bajo control obligatorio mediante la Resolución N°4.287 de 2014 (Deroga Resolución N°6.853, de 2013).
La familia Pseudococcidae (Chanchitos blancos), corresponde a especies polífagas, plaga de cultivos agrícolas, ornamentales y forestales. Esta familia, constituye colonias sobre los frutos, hojas, madera, así como también en las raíces de numerosas plantas cultivadas y malezas. Es una de las plagas de mayor presencia en las plantaciones frutícolas, generando problemas cuarentenarios para algunos mercados (FDF, 2010). En Chile se distribuye entre las regiones de Arica y Parinacota y la región de La Araucanía (Ripa & Larral, 2008).
Introducción
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Instructivo para la utilización de este manual
La vid es hospedera de alrededor de medio centenar de artrópodos en Chile. Sin embargo, no todos los insectos y ácaros asociados a la planta representan plagas de importancia económica. En el presente manual se ha seleccionado a Lobesia botrana (Polilla del racimo de la vid), Brevipalpus chilensis (Falsa arañita roja de la vid), y Pseudococcus (Chanchitos blancos), por ser unos de los principales insectos y ácaros asociados al cultivo de uva de mesa, para cada uno de los cuales se ha elaborado una ficha que entrega información con respecto a la plaga, sus enemigos naturales y la forma de cómo ejecutar el monitoreo. Se incluyen imágenes para el apoyo en el reconocimiento de las plagas, el daño que generan y del monitoreo.
La estructura para cada ficha se explica en el siguiente diagrama:
Para cada plaga se ha desarrollado un capítulo denominado “CONOCIMIENTO DE LA PLAGA”.
Se da el nombre con que comúnmente se denomina a cada plaga y su nombre científico.
La descripción de los insectos o ácaros junto con las imágenes permite el reconocimiento de la plaga.
El daño que produce la plaga sobre el cultivo es brevemente descrito y se complementa con imágenes.
Brevemente se describe el ciclo y desarrollo de la plaga en la temporada.
Se nombran y describen los enemigos naturales que se incluirán para su monitoreo en campo.
Para cada plaga se ha elaborado un capítulo denominado “GUÍA DE MONITOREO Y CONTROL”.
Las especificaciones del objetivo a monitorear, los lugares o estructuras junto con el tamaño y la ubicación de las muestras son indispensables para implementar el monitoreo de plagas.
Para realizar correctamente el monitoreo se describe la forma de cómo monitorear.
Además, se incluyen imágenes para
la ayuda en la identificación de la
plaga y sus enemigos naturales. El tamaño a escala real de la plaga
también ayuda para su reconocimiento.
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Conocimiento de la Plaga
Nombre común Nombre científico
Polilla del racimo de la vid Lobesia botrana
Hospederos
La literatura señala a la vid como hospedero primario. Otros hospederos importantes mencionados son: Kiwi, caqui, olivo, mora, guindo y ciruelo (Ripa & Luppichini, 2010). Además cerezo, duraznero, granado, groselleros, berries; entre otros, reportándose ataques puntuales y ocasionales en algunos de éstos (Fuente: USDA).
Descripción
Los huevos son lenticulares, de color amarillento a gris claro translúcido, depositados generalmente de forma aislada sobre tejido y frutos de la vid. Su diámetro varía entre 0,5 a 0,9 mm. Al final de su desarrollo se distingue la cápsula cefálica o cabeza negra de la larva.Las larvas (Figura 6) presentan 5 estados larvarios, con tamaños desde 1 mm hasta de 12 a 15 mm cuando está completamente desarrollada. Al emerger, es color blanco cremoso con la cabeza café oscuro a negro, y a medida que se va desarrollando la cabeza se torna café claro y el cuerpo verdoso amarillento, dependiendo del contenido intestinal. Tienen movimientos muy ágiles y posee peine anal.La pupa mide entre 4 a 9 mm de longitud y se encuentran escondidas debajo de la corteza, en pliegues de las hojas, en refugios de los racimos o en el suelo, generalmente envueltas por un capullo blanco sedoso.El tamaño del adulto dependerá de la calidad del sustrato de alimentación utilizado a lo largo del estado larvario. Posee un mosaico en las alas anteriores, este contrasta con el tinte grisáceo más o menos uniforme de las alas posteriores. Su tamaño en reposo es de 6-8 mm de longitud y su envergadura alar es de unos 10-13 mm (Figura 8).
Daño
Las larvas de primera generación se alimentan de los botones florales y los agrupa con hilos de seda, formando glomérulos.Las larvas de las siguientes generaciones se alimentan de las bayas (Figura 7), perforándolas e introduciéndose en ellas (Fuente: FDF). Este daño favorece el desarrollo de colonias de hongos como Botrytis, Aspergillus, Penicillium y Rhizopus (Ripa & Luppichini, 2010). Existe la posibilidad de encontrar estados pupales en el interior de la baya.
Ciclo y desarrollo en la temporada
Esta polilla presenta tres generaciones y eventulamente una cuarta parcial en la zona central de Chile. Inverna como pupa bajo el ritidomo de la vid, frecuentemente en la cara interior de los brazos y porción superior del tronco. La emergencia de los primeros adultos, de pupas invernantes, ocurre desde octubre a noviembre en la Región Metropolitana. El segundo vuelo se estima que se inicia a partir de la segunda quincena de diciembre, dando origen a la segunda generación. La tercera generación se inicia probablemente desde fines de enero y se extiende hasta marzo (Ripa & Luppichini, 2010).
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
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Estados de desarrollo Lobesia botrana
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas. El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance a provocar daño.Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se alimentan de más de un individuo.Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones de pesticidas (Gerding et al, 2014).
1 cm
2 cm
0 Adulto Huevos 1er 2º 3er 4º 5º Pupa estadío estadío estadío estadío estadío
Tamaño real:
Fuente: FDF
Huevoamarillo
Huevocabeza negra
Hue
vo (0
,6 -
0,8
mm
)
L1 (0
,9 -
1,5
mm
)
L2 (1
,9 -
3,0
mm
)
L3 (4
,5 -
5,0
mm
)
L4 (6
,0 -
7,0
mm
)
L5 (1
0,0
- 11,
0 m
m) Hembra Macho
Pupas(5-6 mm)
Adulto(6 mm)
Figura 6. Larva instar IV deLobesia botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var. Crimson Seedless por L. Botrana
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Estados de desarrollo Lobesia botrana
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas. El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance a provocar daño.Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se alimentan de más de un individuo.Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones de pesticidas (Gerding et al, 2014).
1 cm
2 cm
0 Adulto Huevos 1er 2º 3er 4º 5º Pupa estadío estadío estadío estadío estadío
Tamaño real:
Fuente: FDF
Huevoamarillo
Huevocabeza negra
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L2 (1
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0 m
m) Hembra Macho
Pupas(5-6 mm)
Adulto(6 mm)
Figura 6. Larva instar IV deLobesia botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var. Crimson Seedless por L. Botrana
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Figura 9. Parasitoide de pupas:Dibrachys
Figura 11. Parasitoide de huevos:Trichogramma nerudai.
Figura 10. Parasitoide de larvas: Goniozus legneri.
Figura 12. Predador:Chrysoperla sp.
AdultoLarvas de L. botrana parasitadas
Pupas en capullo, Goniozus
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Guía de Monitoreo y Control
Técnica de detección empleada en laboratorio
Observación visual de la fruta: Verificar existencia de perforaciones en las bayas producto de la entrada de la larva.Observación bajo la lupa estereoscópica 40X de individuos: En larvas la identificación taxonómica debe ser realizada por personal especializado. En insectos adultos, la identificación se logra a través de observación visual de los detalles alares antes descritos.
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Monitoreo con trampas con feromonas
Monitoreo de racimos
Tipo delta de Pherocon EGVM
Sin sacarlos de la planta
Cambio de feromona mensual
Trampa
Racimos
1 trampa cada 2 ha.
Antes del estado botones
florales separados
Densidad
1ª generación
A más tardar a fines de agosto
Época
2ª y 3ª generación
A la altura de la vegetación de la
planta
Distribución homogénea en
el huerto con énfasis en orillas
Entre el techo de las plantas y la altura de los
racimos
Ubicación
Ubicación
Revisión cada 14 días
2 veces por semana
Frecuencia
Frecuencia
Mínimo 2 trampas por
huerto
Después de las primeras
capturas
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Conocimiento de la Plaga
Nombre común Nombre científico
Falsa arañita de la vid Brevipalpus chilensis
Hospederos
Vid, kiwi, chirimoyo, higuera, granado, limonero, mandarino, naranjo, pomelo, caqui, malezas, otras especies silvestres y ornamentales como ligustrina, sauce y especias nativas como palqui y Lobelia ap.
Descripción
Los huevos son ligeramente ovoidales, de color rojo brillante, lisos y pueden estar en grupos o separados.Las larvas son de color rojo brillante y tienen 3 pares de patas.Las ninfas (protoninfa y deutoninfa) tienen 4 pares de patas, son más grandes que las larvas y con morfología similar al adulto.La hembra adulta es un pequeño ácaro rojo de forma ovoidal muy aplanada dorsoventralmente, de longitud no superior a 0,5 mm. Por su parte media del lado dorsal se observa un ligero relieve transversal que a veces presenta una coloración más oscura. Este ácaro presenta baja movilidad, pues posee apéndices locomotores muy cortos (Olivares et al., 2014). El macho es de menor tamaño que la hembra y su cuerpo es más triangular (Figuras 3 y 4).
Daño
Esta especie de ácaro se puede encontrar en variedades como Riber, Cardinal, Crimson Seedless y otras. En algunos casos puede causar deshidratación y encarrujamiento de las bayas. La alimentación de este ácaro causa daño en brotes, hojas, pedicelos, raquis, yemas y bayas, en ataques intensos causa pardeamiento y necrosis en el tejido de las hojas (Ripa & Luppichini, 2010). La presencia misma del ácaro en racimos es causal de rechazo para la uva de exportación al mercado de USA.
Ciclo y desarrollo en la temporada
El ciclo de B. chilensis incluye los estados de huevo, larva, protoninfa, deutoninfa y adulto (Figura 5). En vid inverna como hembra adulta, bajo la corteza y yemas de la vid. Ovipone en primavera sobre brotes y hojas nuevas, de preferencia por su envés. Los primeros estadíos se ubican en las hojas, reproduciéndose y aumentando en densidad hacia el verano. Presenta 5 o más generaciones en la temporada y cuando comienza el receso de la planta, el ácaro se traslada a la madera, donde inverna.
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
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Ciclo biológico de Brevipalpus chilensis
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
- Cynodromus californicus- Cynodromus chilenensis- Phytoseiulus persimilis- Euseius fructicolus- Typhlodromus Pyri
Estos enemigos naturales son ácaros depredadores de B. chilensis (Figuras 1 y 2). Se reconocen por ser piriformes, su rápido desplazamiento en hojas, por presentar largas setas y una coloración translúcida brillante a rojizas cuando se han alimentado de ácaros o sus huevos. La liberación del ácaro fitoseido Typhlodromus pyri disminuye la densidad de B. chilensis en viñedos. Este fitoseido se alimenta de los estados juveniles de esta arañita, razón por la que se debe liberar en períodos de mayor abundancia de estos estados (Ripa & Luppichini, 2010).
Figura 1. Ácaro depredador
Longitud aproximada para adultos.
Figura 2. Cynodromus californicus
0,5 cm
0
Figura 3. Adultos deBrevipalpus chilensis
Figura 4. Huevos deBrevipalpus chilensis
Fuen
te: F
DF
HEMBRA
MACHO
Figura 5. Ciclo biológico de Brevipalpus chilensis
Larva
Ninfas
Huevos
Adultos Hembra adulta, vista en microscopio
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Malezas Hospederas Potenciales de Brevipalpus chilensis
Nº Nombre común Nombre científico Familia Ciclo de vida
1 Achicoria silvestre Cichorium intybus Asteraceae Anual o Bianual
2 Alfilerillo Erodium cicutarium Geraneaceae Anual
3 Ballica Lolium multiflorum Poaceae Anual
4 Bolsita del pastor Capsella bursa-pastoris Brassicaceae Anual o Bianual
5 Chufa Cyperus esculentus Cyperaceae Perenne
6 Correhuela Convolvulus arvensis Convolvulaceae Perenne
7 Falso té Bidens aurea Asteraceae Perenne
8 Galega Galega officinalis Fabaceae Perenne
9 Hiedra Hedera helix Araliaceae Perenne
10 Hierba del chancho Hypochoeris acaulis Asteraceae Perenne
11 Lechuguilla Lactuca serriola Asteraceae Anual o Bianual
12 Lengua de gato Galium aparine Rubiaceae Anual
13 Llantén menor Plantago Lanceolata Plantaginaceae Perenne
14 Maicillo Sorghum halepense Poaceae Perenne
15 Malva Malva nicaensis Malvaceae Perenne
16 Malvilla Anoda cristata Malvaceae Anual
17 Ñilhue Sonchus asper Asteraceae Anual o Bianual
18 Palqui Cestrum parqui Solanaceae Perenne
19 Pichoga Euphorbia helioscopia Euphorbiaceae Anual
20 Pila-Pila Modiola caroliniana Malvaceae Perenne
21 Rábano silvestre Paphanus raphanistrum Brassicaceae Anual o Bianual
22 Romaza Rumex crispus Polygonaceae Perenne
23 Senecio Senecio vulgaris Asteraceae Anual
24 Verbena Verbena bonariensis Verbenaceae Perenne
25 Verdolaga Portulaca oleracea Portulacaceae Anual
26 Vinagrillo Oxalis micrantha Oxalidaceae Anual
27 Yuyo Brassica rapa Brassicaceae Anual
28 Zanahoria silvestre Daucus carota Apiaceae Anual o Bianual
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Árboles y arbustos Hospederos Potenciales de Brevipalpus chilensisNº Nombre común Nombre científico Familia
1 Acacio Robinia pseudoacacia Papilionaceae
2 Acacio capensis Acacia capensis Fagaceae
3 Álamo negro Populus nigra Salicaceae
4 Álamo blanco Populus alba Salicaceae
5 Aromo Acacia dealbata Mimosaceae
6 Ceibo Erythrina umbrosa Kunth Fagaceae
7 Crateus Crataegus pyracantha Rosaceae
8 Encina Quercus ilex Fagaceae
9 Espino Acacia caven Fagaceae
10 Eucaliptus Eucalyptus spp. Myrtaceae
11 Maitén Maytenus boaria Celastráceae
12 Maqui Aristotelia chilensis Elaeocarpaceae
13 Membrillero Cydonia oblonga Rosaceae
14 Ombú Phytolacca dioica Phytolaccaceae
15 Palqui Cestrum parqui Solanaceae
16 Peumo Cryptocarya alba Lauraceae
17 Quillay Quillaja saponaria Rosaceae
18 Quintral Tristerix corymbosus Loranthaceae
19 Romerillo Baccharis linearis Asteraceae
20 Rosal Rosa spp. Rosaceae
21 Sauce Salix babylonica Salicaceae
22 Vid Vitis vinifera Vitaceae
23 Zarzamora Rubus ulmifolius Rosaceae
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Guía de Monitoreo y Control
Monitoreo en campo
Se realiza con el fin de estimar y registrar su abundancia y sus enemigos naturales en las diferentes estructuras y evaluar además el efecto de las medidas de manejo.
Monitoreo en laboratorio
El objetivo de este monitoreo son los huevos, ninfas y adultos vivos o muertos de cualquier estado del ácaro mediante el método de arrastre por lavado. Sólo para exportación de fruta a USA mediante procedimiento “Systems approach”.
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
Monitoreo en campo de B. chilensis en vid
Tronco, brazos y cargadores
Brotes
Hojas
Racimos
Invierno y prebrotación
Brotación-Primavera
Desde brotes de 10 cm. a término
de temporada
Desde cuaja a cosecha
30 plantas
30 brotes,1 por planta
90 hojas en30 plantas
30 racimos,1 por planta
Levantar ritodomo y examinar
Abrir el brote y examinar
Examinar, especialmente
el envés
Examinar raquisy bayas
Estructura Método ÉpocaUnidad de
muestreo por cuartel
Monitoreo en laboratorio de B. chilensis en vid
Racimos y hojas
Estructura
100 racimos y/u hojas obtenidas
al azar
Unidad de muestreo
Lavado por arrastre
Observación bajo lupa
estereoscópica
Método
Brotación a cosecha
Época
Número de ácaros
detectados en muestras de 100 hojas o racimos
Resultados cuantitativos
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Técnica de lavado por arrastre
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
Disponer los tamices uno sobre otro, colocando el tamiz de 20 mesh sobre el de mayor fineza (200 mesh).
Lavar la fruta con una ducha de agua
fría.Lavado de recipiente
contenedor de muestras luego de
análisis visual.
Retirar el tamiz superior una vez
lavado.
Inclinar el tamiz de 200 mesh y lavar
con agua a presión suave, haciendo
escurrir el material colectado hacia un extremo del
mismo.
Arrastrar con la ayuda de una
pizeta con agua el contenido hacia una placa petri.
Colocar sobre el tamiz de 20 mesh una cantidad de
fruta que permita su libre lavado.
Asperjar la fruta con una
solución de agua y detergente
(solución: 4ml en1 litro de agua).
Cuando el fruto lo requiera
(pubescentes) se empleará
adicionalmente un tamiz de 80
mesh, el que debe ubicarse entre los
tamices de 20 y 200 mesh.
Criterios para la decisión de control (*)
Tomar medidas de control si el número de ácaros detectados en el proceso de lavado es mayor a 3 individuos vivos por cada muestra de 100 hojas o racimos.* Referencias: FDF
Control Químico
La eficacia de los acaricidas está condicionada a la aplicación realizada en el huerto y al período fenológico de la planta y la plaga (Olivares et al, 2014).En orden creciente de efectividad se pueden mencionar: detergentes, coadyuvantes siliconados, aceites minerales del 1% al 1,5%, poseen un efecto prolongado de control durante 45 a 60 días post aplicación (Ripa & Larral, 2008).En viñas, el principal control de la falsa arañita roja de la vid se realiza sobre la población presente en invierno en prebrotación con aceite mineral al 2%, para evitar daño sobre los brotes. En uva de mesa las poblaciones del ácaro son muy escasas.
Imagen: FDF
Control químico: Plaguicidas para el control de Brevipalpus chilensis
Ingrediente activo Concentración Clasificación
Abamectina 1,9% p/p Acaricida-insecticida
Spirodiclofen 24% p/v Acaricida
Acrinatrina 7,5% p/v Acaricida-insecticida
Fenpropatrina 10% p/v Acaricida
Rotenona 50% p/p Acaricida-insecticida
Aceite parafínico 99,5% v/v Acaricida-insecticida-fungicida
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Conocimiento de la Plaga
Nombre común Nombre científico
Polilla del racimo de la vid Lobesia botrana
Hospederos
La literatura señala a la vid como hospedero primario. Otros hospederos importantes mencionados son: Kiwi, caqui, olivo, mora, guindo y ciruelo (Ripa & Luppichini, 2010). Además cerezo, duraznero, granado, groselleros, berries; entre otros, reportándose ataques puntuales y ocasionales en algunos de éstos (Fuente: USDA).
Descripción
Los huevos son lenticulares, de color amarillento a gris claro translúcido, depositados generalmente de forma aislada sobre tejido y frutos de la vid. Su diámetro varía entre 0,5 a 0,9 mm. Al final de su desarrollo se distingue la cápsula cefálica o cabeza negra de la larva.Las larvas (Figura 6) presentan 5 estados larvarios, con tamaños desde 1 mm hasta de 12 a 15 mm cuando está completamente desarrollada. Al emerger, es color blanco cremoso con la cabeza café oscuro a negro, y a medida que se va desarrollando la cabeza se torna café claro y el cuerpo verdoso amarillento, dependiendo del contenido intestinal. Tienen movimientos muy ágiles y posee peine anal.La pupa mide entre 4 a 9 mm de longitud y se encuentran escondidas debajo de la corteza, en pliegues de las hojas, en refugios de los racimos o en el suelo, generalmente envueltas por un capullo blanco sedoso.El tamaño del adulto dependerá de la calidad del sustrato de alimentación utilizado a lo largo del estado larvario. Posee un mosaico en las alas anteriores, este contrasta con el tinte grisáceo más o menos uniforme de las alas posteriores. Su tamaño en reposo es de 6-8 mm de longitud y su envergadura alar es de unos 10-13 mm (Figura 8).
Daño
Las larvas de primera generación se alimentan de los botones florales y los agrupa con hilos de seda, formando glomérulos.Las larvas de las siguientes generaciones se alimentan de las bayas (Figura 7), perforándolas e introduciéndose en ellas (Fuente: FDF). Este daño favorece el desarrollo de colonias de hongos como Botrytis, Aspergillus, Penicillium y Rhizopus (Ripa & Luppichini, 2010). Existe la posibilidad de encontrar estados pupales en el interior de la baya.
Ciclo y desarrollo en la temporada
Esta polilla presenta tres generaciones y eventulamente una cuarta parcial en la zona central de Chile. Inverna como pupa bajo el ritidomo de la vid, frecuentemente en la cara interior de los brazos y porción superior del tronco. La emergencia de los primeros adultos, de pupas invernantes, ocurre desde octubre a noviembre en la Región Metropolitana. El segundo vuelo se estima que se inicia a partir de la segunda quincena de diciembre, dando origen a la segunda generación. La tercera generación se inicia probablemente desde fines de enero y se extiende hasta marzo (Ripa & Luppichini, 2010).
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
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Estados de desarrollo Lobesia botrana
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas. El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance a provocar daño.Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se alimentan de más de un individuo.Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones de pesticidas (Gerding et al, 2014).
1 cm
2 cm
0 Adulto Huevos 1er 2º 3er 4º 5º Pupa estadío estadío estadío estadío estadío
Tamaño real:
Fuente: FDF
Huevoamarillo
Huevocabeza negra
Hue
vo (0
,6 -
0,8
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)
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,9 -
1,5
mm
)
L2 (1
,9 -
3,0
mm
)
L3 (4
,5 -
5,0
mm
)
L4 (6
,0 -
7,0
mm
)
L5 (1
0,0
- 11,
0 m
m) Hembra Macho
Pupas(5-6 mm)
Adulto(6 mm)
Figura 6. Larva instar IV deLobesia botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var. Crimson Seedless por L. Botrana
Figura 8. Estados de desarrollo de Lobesia botrana
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Figura 9. Parasitoide de pupas:Dibrachys
Figura 11. Parasitoide de huevos:Trichogramma nerudai.
Figura 10. Parasitoide de larvas: Goniozus legneri.
Figura 12. Predador:Chrysoperla sp.
AdultoLarvas de L. botrana parasitadas
Pupas en capullo, Goniozus
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Guía de Monitoreo y Control
Técnica de detección empleada
Observación visual de la fruta: Verificar existencia de perforaciones en las bayas producto de la entrada de la larva.Observación bajo la lupa estereoscópica 40X de individuos: En larvas la identificación taxonómica debe ser realizada por personal especializado. En insectos adultos, la identificación se logra a través de observación visual de los detalles alares antes descritos.
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Monitoreo con trampas con feromonas
Prospección de racimos
Tipo delta de Pherocon EGVM
Sin sacarlos de la planta
Cambio de feromona mensual
Trampa
Racimos
1 trampa cada 2 ha.
Antes del estado botones
florales separados
Densidad
1ª generación
A más tardar a fines de agosto
Época
2ª y 3ª generación
A la altura de la vegetación de la
planta
Distribución homogénea en
el huerto con énfasis en orillas
Entre el techo de las plantas y la altura de los
racimos
Ubicación
Ubicación
Revisión cada 14 días
2 veces por semana
Frecuencia
Frecuencia
Mínimo 2 trampas por
huerto
Después de las primeras
capturas
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Control Químico
Está dirigido al control de huevos y principalmente de los estados larvarios de cada una de las tres generaciones anuales, por lo cual se precisa de datos de monitoreo de adultos para conocer el comportamiento de cada ciclo de vuelo como también para realizar la aplicación en lo posible 2 a 3 días después del inicio del vuelo (González, 2014).Número de aplicaciones mínimas que se deben realizar para el control de L. botrana en vid:
*El número de aplicaciones dependerá del período de protección que otorgue cada producto, y se debe cubrir todo el período de riesgo de cada generación según lo que indique el SAG en sus avisos correspondientes.
Generaciones
Primera Segunda Tercera
Nº de Aplicaciones (*) 2 2 1 ó 2
Control químico: Listado de Plaguicidas autorizados por el SAG (*)
Nombre comercial Ingrediente activo Concentración Clasificación Período de Protecc. (días)
ADMIRAL 10 EC Piriproxifeno 10% p/v Larvicida 18
ALSYSTIN 480 SC Triflumuron 48 % p/v Larvicida 12 a 14
AMPLIGO 150 ZC Cloratranilliprol / lambda-cihalotrina 10% p/v / 5% p/v Ovicida-larvicida 15 a 25
AVAUNT 30 WG Indoxacarb 30% p/p Ovicida-larvicida 14
BELT 480 SC Flubendiamida 48% p/v Larvicida 20
BETK-03 WP Bacillus thuringiensis Cepa N1, N2 y N2 1,81 % p/p Larvicida 15
BIFENTRIN 10 EC AGROSPEC Bifentrina 10 % p/v Larvicida 7
BULL Y BULL CS Gamma cihalotrina 5,9% p/p Larvicida 16
BULLDOCK 125 SC Betaciflutrina 12,5% p/v Larvicida 12 - 17
CAPTURE 10 EC Bifentrina 10 % p/v Larvicida 15
CORAGEN Clorantraniliprole 20% p/v Ovicida-larvicida 21
DANITOL 10 EC Fenpropatrina 10% p/v Larvicida 10 a 15
DELEGATE Espinetoram 25% p/p Larvicida 16 a 18
DIPEL WG Bacillus thuringiensis 64 g/Kg Larvicida 7 a 13
ENTRUST Espinosad 80% p/p Larvicida 16 a 18
GREKO 90 SP Metomilo 90% p/p Ovicida-larvicida 15
HALMARK 75 EC Esfem valerato 75 g/l Larvicida 14
IMIDAN 70 WP Fosmet 70% p/p Larvicida 18
INTREPID SC Metoxifenozida 24% p/v Ovicida-larvicida 18 a 20
JAVELIN WG Bacillus thuringiensis sub especie kurstaki 85% p/p Larvicida 10
KARATE ZEON Lambdacihalotrina 5% p/v Ovicida-larvicida 15 a 25
KUIK 90 SP Metomilo 90% p/p Larvicida 17
LAMBDA CIHALOTRINA 5 EC AGROSPEC
Lambda cihalotrina 5% p/v Larvicida 7
LORSBAN 75 WG Clorpirifos 75% p/p Larvicida 18 a 20
MIMIC 2F Tebufenozida 24% p/v Ovicida-larvicida 17
POLARIS 40 WP Metidation 40% p/p Larvicida 14
PROCLAIM FORTE Benzoato de emamectina 5% p/p Ovicida-larvicida 20 a 25
PYRINEX 25 CS Clorpirifos 25 % p/v Larvicida 22
SUCCESS 48 Espinosad 44,2% p/p Larvicida 16 a 18
TALSTAR 10 EC Bifentrina 10 % p/v Larvicida 15
ZERO 5 EC Lambda cihalotrina 5% p/v Larvicida 18
Isonet L Acetato de (E,Z) - 7,9 - Dodecadenilo 67% p/p 150 a 180
Rak 2 plus Acetato de (E,Z) - 7,9 - Dodecadenilo 8,5% P/P
* Fuente SAG: Tabla modificada del Listado de Plaguicidas autorizados por SAG para el control de L. botrana, actualizado al 21 de noviembre de 2014.
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Conocimiento de la Plaga
Nombre común Nombre científico
Chanchito blanco de cola larga Pseudococcus longispinus
Chanchito blanco de los frutales Pseudococcus viburni
Hospederos
Chanchito blanco de cola larga: Vid, cítricos, palto, olivos y otros. Además caqui, mango, ornamentales y forestales.
Chanchito blanco de los frutales: Vid, paltos, cítricos, kiwi y otros. Además ciruelo, caqui, nectarino, peral y manzano (Fuente: FDF).
Descripción
Las hembras adultas tienen un cuerpo blando, forma oval, aplanado y miden aproximadamente 4 mm de largo. Están cubiertos por una cera blanquecina pulverulenta. Por sus bordes tienen proyecciones filamentosas de cera blanca, que alcanza su mayor longitud en la parte caudal. Por su parte ventral se observa un fino estilete que le permite extraer los nutrientes de la planta.Los huevos son depositados en grupos y son de color rosado anaranjado. P. longispinus no coloca huevos, se reproduce por crías vivas.Los machos son pequeños insectos alados, de apariencia frágil y provistos de dos apéndices caudales blancos. P. longispinus se caracteriza por poseer sus filamentos caudales más largos que P. viburni (Fuente: FDF).Las ninfas son de aspecto similar a la adulta, sin embargo, es común que no se observen los filamentos caudales prominentes, debido a una muda reciente (Ripa & Larral, 2008).
Daño
Debido a que las hembras se alimentan directamente del floema, ya sea la raíz o la parte aérea, producen un debilitamiento de la planta por succión de savia elaborada y pueden ser transmisores de virus. Afectan la calidad de racimos por la acumulación de mielecilla y la posterior presencia de fumagina. Además, la contaminación por la presencia misma del insecto en cualquiera de sus estados puede producir rechazos por mala calidad o razones cuarentenarias. Pueden afectar flores y frutos recién cuajados produciendo su aborto (Fuente: FDF) (Figuras 13 y 14).
Ciclo de desarrollo en la temporada
Por lo general presentan varias generaciones anuales superpuestas, lo que en general origina una población mixta de adultos y juveniles variable entre verano e invierno. Las poblaciones se mantienen protegidas bajo el ritidomo de la parra, en cortes de poda, anillados, en raíces de la parra y malezas hospederas. Las ninfas migratorias nacen a partir de agosto en la Región de Atacama y desde mediados de septiembre hacia el sur, distribuyéndose hacia los sarmientos para colonizar los brotes primaverales. Luego colonizan los racimos florales donde provocan los daños antes descritos. Su desarrollo continúa en el follaje, ramas y racimos. Los machos se originan a partir de ninfas de segundo estadío. Estas forman un capullo algodonoso alargado del cual emergerá un adulto (Fuente: FDF) (Figura 18).
Uva de Mesa. Chanchitos blancos
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Enemigos naturales a incluir en monitoreo
En Chile están descritos una serie de parasitoides y depredadores de chanchitos blancos.Para efectos del monitoreo se incluirá:Cryptolaemus montrouzieri: Los adultos y larvas son depredadores de chanchitos blancos. Las larvas se encuentran cubiertas de secreciones de cera blanca y son similares en cierta medida al mismo chanchito. El adulto corresponde a una chinita de 5 mm de largo por 3 de ancho. Es de color negro con cabeza y abdomen de color rojo-anaranjado (Figura 15).Chrysoperla spp.: Estos insectos se denominan crisopas. Son depredadores de chanchitos y se reconocen en su estado larval por sus mandíbulas curvadas y desarrolladas (Figura 16).Pseudaphicus spp.: Son pequeñas avispas cuya hembra parasita ninfas y adultos de chanchitos. El parasitismo se reconoce por la presencia de una “momia” por la acción de la larva del parásito en el interior del cuerpo del chanchito.Leucopis sp.: Las larvas de estos insectos depredan chanchitos. Son de color blanco, sin patas y llegan a medir alrededor de 2 mm. En estado adulto son pequeñas moscas de unos 2 mm de largo, de color gris con 2 franjas más oscuras en la parte superior del tórax (Fuente: FDF) (Fig. 17).
Figuras 13 y 14: Chanchitos blancos en uva de mesa
Figura 15. Larva deC. montrouzieri
Figura 16. Larva deChrysoperla sp. Figura 17. Larva de Leucopis sp.
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Ciclo biológico de Pseudococcus viburni
Hembra adulta
3er estadío
Macho adulto
MACHOS HEMBRAS
Prepupa - pupa
FOTO
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DF
Huevos 1er estadío (Crawler) 2º estadío
Figura 18. Ciclo biológico de Pseudococcus viburni.
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Guía de Monitoreo y Control
Detección mediante el uso de trampas de cartón corrugado
Permite detectar los estados móviles y oviposturas de la plaga.
Uva de Mesa. Chanchitos blancos
Trampas cartón corrugado
Bandas de cartón corrugado
Bandas de10 - 20 cm de
alto
Estructuras
Mínimo 1 trampa por árbol en
20 árboles por huerto
Instalar la parte corrugada hacia
dentro
Trampas
Ramas madres más de 3 años de edad o en
base de tronco de la parra
En focos de mayor
infestación cuartel
Ubicación
Determinar presencia de
huevos, ninfas y adultos en
trampas
Retirar individuos y volver a amarrarla
Metodología
Desde brotación a caída de hojas
Quincenalmente.Semanalmente 1 mes antes de cosecha y hasta
cosecha
Frecuencia
Detección mediante observación visual de la plaga
Este método permite detectar hasta un 3% de infestación en el campo.
Observación visual
20 árboles por huerto
Distribuciónal azar
5 muestras de cada estructura
Muestra
Hojas cercanas a frutos, corteza y
frutos
Estructura
Ninfas, adultos, masa de huevos
Para ninfas de 1er instar procesar
la muestra mediante técnica de
arrastre por lavado
Objetivo
Lupa de mano 10-20X,
pinceles, frascos de vidrio, cooler, bolsas de papel para traslado de
muestras.
Materiales
Durante todo el año
Frecuencia
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Uso de trampas con feromona sexual
Permite detectar el movimiento poblacional de la plaga y su curva se verá reflejada mediante las capturas de machos voladores, mostrando cuando la plaga presenta la mayor actividad.
Trampas con feromona sexual
Mínimo 3 trampas por huerto
1 vez por semana2 metros de altura
puesta a 30 cm al interior de la
planta
Distancia de 50 metros entre trampas en
huerto
Monitorear hasta abril-mayo
Remover el piso engomado y
contar bajo la lupa estereoscópica
40X
Trampas Ubicación Metodología Frecuencia
Control químico*Oportunidades de
controlComportamiento de la
plaga Ingrediente activo
Brotación a inicio de floración
Dispersión de ninfas migratorias
Buprofezin, Clorpirifos, Diazinon, Metomilo,
Profenofos, Dimetoato
Cuaja a previo cierre del racimo
Infestación y alimentación en racimos
Imidacloprid, Thiametoxam, Acetamiprid
Pre cosecha Alimentación y ovipostura en el racimo
Imidacloprid, Metomilo, Carbarilo
Post cosecha Alimentación y reproducción e invernación Clorpirifos, Profenofos
* Fuente INIA: Tabla modificada de INIA, 2010.
Malezas hospederas de Chanchitos blancos
Nº Nombre común Nombre científico
1. Achicoria Cichorium intybus
2. Cicuta Conium maculatum
3. Galega Galega officinalis
4. Hinojo Foeniculum vulgare
5. Malva Malva nicaeensis
6. Ñilhue Sonchus sp.
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•FDF. 2004. Guía de monitoreo de plagas: Uva de mesa.
•FDF. 2010. Guía de elementos básicos para el monitoreo y la detección de Chanchitos blancos para implementar MIP acorde a los requerimientos BPA.
•FDF. Plagas de importancia cuarentenaria. Detección y reconocimiento en laboratorio.
•GONZÁLEZ R. 2014. Biología y manejo fitosanitario de la Polilla Mediterránea, Lobesia botrana y de otras polillas de la vid en Chile (Lepidóptera: Tortricidae). Facultad de Ciencias Agronómicas, Universidad de Chile.
•INIA. 2010. Biología, manejo y control de chanchitos blancos. Boletín INIA Nº 204.
•RIPA R. & P. LARRAL. 2008. Manejo de plagas en paltos y cítricos. Instituto de Investigaciones Agropecuarias.
•RIPA R. & P. LUPPICHINI. 2010. Manejo de plagas de la vid. Instituto de Investigaciones Agropecuarias.
•SERVICIO AGRÍCOLA Y GANADERO. Ámbitos de acción. Lobesia botrana o polilla del racimo de la vid. Disponible en: http://www.sag.cl/ambitos-de-accion/lobesia-botrana-o-polilla-del-racimo-de-la-vid
•GERDING M., D. CASTRO, M. RODRÍGUEZ & P. CABEZAS. 2014. Enemigos naturales útiles en el manejo de Lobesia botrana. Revista Red Agrícola.
Bibliografía
GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESAGUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESA
