DETERMINACIÓN DE LOS PATRONES DE TINCIÓN Y...

DETERMINACIÓN DE LOS PATRONES DE TINCIÓN Y EFECTO DE LA GIBERELINA SOBRE

LA GERMINACIÓN DE LAS SEMILLAS DE CAOBA (Swietenia macrophylla) y GUAYACÁN

AMARILLO (Handroanthus chrysanthus)

KATERINE ANDREA CÉSPEDES TORRES

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES

INGENIERÍA FORESTAL

BOGOTÁ D.C.

2018

DETERMINACIÓN DE LOS PATRONES DE TINCIÓN Y EFECTO DE LA GIBERELINA SOBRE

LA GERMINACIÓN DE LAS SEMILLAS DE CAOBA (Swietenia macrophylla) y GUAYACÁN

AMARILLO (Handroanthus chrysanthus)

KATERINE ANDREA CÉSPEDES TORRES

Director:

Biól. Favio López Botía. M.Sc.

TESIS PRESENTADA COMO REQUISITO PARA OPTAR AL TÍTULO DE INGENIERA

FORESTAL; MODALIDAD DE INVESTIGACIÓN - INNOVACIÓN

ENTIDAD COOPERANTE:

El Semillero

UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS

FACULTAD DE MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES

INGENIERÍA FORESTAL

BOGOTÁ D.C.

2018

I

TABLA DE CONTENIDO

RESUMEN........................................................................................................................... 1 ABSTRAC ........................................................................................................................... 2 I. INTRODUCCIÓN ....................................................................................................... 3 II. OBJETIVOS ............................................................................................................... 4

2.1 OBJETIVO GENERAL .......................................................................................... 4 2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS .................................................................................. 4

III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ......................................................................... 5 3.1 DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA .......................................................................... 5 3.2 JUSTIFICACIÓN .................................................................................................. 5 3.3 FORMULACIÓN DE HIPÓTESIS .......................................................................... 6

IV. ESTADO DEL ARTE ................................................................................................... 7 4.1 GENERALIDADES PARA LA ESPECIE FORESTAL: CAOBA (S. MACROPHYLLA) ......... 7

4.1.1 Clasificación taxonómica ..................................................................................... 7 4.1.2 Estado de amenaza: ........................................................................................ 7 4.1.3 Distribución geográfica ................................................................................... 7 4.1.4 Descripción del hábitat ................................................................................... 8 4.1.5 Gremio ecológico ............................................................................................ 9 4.1.6 Descripción ..................................................................................................... 9 4.1.7 Usos e importancia ........................................................................................ 10 4.1.8 Calidad física de las semillas ........................................................................... 10 4.1.9 Germinación ................................................................................................... 11 4.1.10 Tratamientos pregerminativos .................................................................. 12 4.1.11 Imbibición .................................................................................................. 13 4.1.12 Floración y fructificación ............................................................................ 13

4.2 GENERALIDADES PARA LA ESPECIE FORESTAL: GUAYACÁN AMARILLO (H.

CHRYSANTHUS) .................................................................................................................. 14 4.2.1 Clasificación taxonómica ................................................................................... 14 4.2.2 Estado de amenaza: ....................................................................................... 15 4.2.3 Distribución geográfica .................................................................................. 15 4.2.4 Descripción del hábitat .................................................................................. 15 4.2.5 Gremio ecológico ........................................................................................... 15 4.2.6 Descripción .................................................................................................... 15 4.2.7 Usos e importancia ........................................................................................ 16 4.2.8 Calidad física de las semillas ........................................................................... 17 4.2.9 Germinación .................................................................................................. 17 4.2.10 Tratamientos pregerminativos .................................................................. 17 4.2.11 Imbibición .................................................................................................. 17 4.2.12 Floración y fructificación ............................................................................ 17

4.3 GENERALIDADES DE LA SEMILLA ..................................................................... 18 4.3.1 Partes de la semilla ............................................................................................ 18

II

4.3.2 Viabilidad .......................................................................................................... 19 4.4 GERMINACIÓN ................................................................................................. 22

4.4.1 Proceso de germinación ................................................................................. 22 4.4.2 Factores que afectan la germinación.............................................................. 23 4.4.3 Expresión de resultados ................................................................................. 24

4.5 ÁCIDO GIBERÉLICO ...........................................................................................25 4.5.1 Naturaleza química ............................................................................................ 25 4.5.2 Actividad biológica ............................................................................................26 4.5.3 Mecanismo de acción ........................................................................................26 4.5.4 Efectos fisiológicos ........................................................................................... 27 4.5.5 Ensayos con Giberelina ......................................................................................28

V. MATERIALES Y MÉTODOS ..................................................................................... 29 5.1 ÁREA DE ESTUDIO ........................................................................................... 29 5.2 MATERIAL EXPERIMENTAL ............................................................................. 29 5.3 METODOLOGÍA ...................................................................................................... 29

5.3.1 Prueba de Imbibición ..................................................................................... 29 5.3.2 Pruebas de Calidad Física .............................................................................. 30 5.3.3 Viabilidad....................................................................................................... 37

VI. RESULTADOS Y ANÁLISIS ...................................................................................... 39 6.1 PRUEBA IMBIBICIÓN ....................................................................................... 39 6.2 PRUEBAS CALIDAD DE SEMILLAS .................................................................... 40

6.2.1. Pureza, Número de semillas, Contenido de humedad. .................................. 40 6.2.2 Germinación. ................................................................................................. 41

6.3 PRUEBAS DE VIABILIDAD. ................................................................................ 51 6.3.1 Prueba de corte. ............................................................................................ 51 6.3.2 Prueba de tetrazolio. ..................................................................................... 52

6.4. RELACIÓN PRUEBA DE GERMINACIÓN VS. PRUEBA DE VIABILIDAD. .................. 55 VII. DISCUSIÓN ............................................................................................................. 58

7.1 PRUEBA DE IMBIBICIÓN .................................................................................. 58 7.2 PRUEBAS DE CALIDAD DE SEMILLAS............................................................... 58

7.2.1 Pureza, numero de semillas, contenido de humedad. ................................... 58 7.2.2 Germinación ................................................................................................. 59

7.3 VIABILIDAD ....................................................................................................... 61 7.3.1 Prueba de corte ............................................................................................. 61 7.3.2 Prueba de tetrazolio ......................................................................................62

VIII. CONCLUSIONES ..................................................................................................... 64 IX. RECOMENDACIONES ............................................................................................. 66 X. BIBLIOGRAFÍA ....................................................................................................... 67 XI. ANEXOS .................................................................................................................. 73

III

ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1. Cuadro fenológico de la especie S. macrophylla. ............................................................... 14 Tabla 2. Efectos fisiológicos por la fitohormona Giberelina. ........................................................... 27 Tabla 3. Tratamientos pregerminativos utilizados para la prueba de germinación. ........................ 32 Tabla 4. Dosis empleada de agua y PROGIBB ® 10SP, para cada tratamiento. ................................. 32 Tabla 5. Modelo de ANAVA. ........................................................................................................... 35 Tabla 6. Formulas manejadas para el cálculo de las variables de germinación. ............................... 35 Tabla 7. Categorías de tinción de Tetrazolio. .................................................................................38 Tabla 8. Características físicas de las semillas de las dos especies en estudio. ................................ 41 Tabla 9. Efecto de los diferentes tratamientos sobre el Porcentaje de Germinacion (PG), Tiempo Medio de Germinacion (TMG), Energia germinativa (EG), Velocidad Media de Germinacion (VMG) y el Valor de Germinacion en semillas de Swietenia macrophylla. .................................................... 41 Tabla 10. Efecto de los diferentes tratamientos sobre el Porcentaje de Germinacion (PG), Tiempo Medio de Germinacion (TMG), Energia germinativa (EG), Velocidad Media de Germinacion (VMG) y el Valor de Germinacion en semillas de Handroanthus chrysanthus. ............................................ 46 Tabla 11. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba de corte de las semillas de Caoba (S. macrophylla). ............................................................................................................................... 51 Tabla 12. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba de corte de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus). ............................................................................................................. 52 Tabla 13. Patrones de tincion para la interpretacion de los resultados de la prueba de tetrazolio en semillas de Caoba (Swietenia macrophylla). .................................................................................. 52 Tabla 14. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba topografica de tetrazolio de las semillas de Caoba (S. macrophylla). ................................................................................................................ 53 Tabla 15. Patrones de tincion para la interpretacion de los resultados de la prueba de tetrazolio en semillas de Guayacán amarillo (Handroanthus chrysanthus) ......................................................... 54 Tabla 16. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba topografica de tetrazolio de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus). ............................................................................................. 55

IV

ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1. Distribución histórica de S. macrophylla. .......................................................................... 8 Figura 2. Morfología de la semilla de la especie forestal Caoba (S. macrophylla). ........................... 10 Figura 3. Descripción de la morfología de las semillas y el desarrollo del embrión de Swietenia macrophylla, antes de la germinación. Adaptado de los resultados de Alvarenga & Flores (1988). 12 Figura 4. Disposición de la media sombra. ..................................................................................... 13 Figura 5. Semillas de Handroanthus chrysanthus. .......................................................................... 16 Figura 6. Estructura interna y detalles de la estructura externa. .................................................... 18 Figura 7. Patrón de tinción después de la prueba con tetrazolio en semillas dicotiledóneas. .......... 21 Figura 8. Curva de absorción de agua en las diferentes fases de germinación. .............................. 22 Figura 9. Estructura química de GA3. ............................................................................................. 26 Figura 10. Modelo de activación de la germinación de semillas por las giberelinas. ........................ 28 Figura 11. Distribución de los tratamientos del diseño experimental para cada especie. ................. 33 Figura 12. a) Distribución de las semillas de Caoba (S. macrophylla) por unidad experimental. b) Distribución de las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) por unidad experimental. ....... 34 Figura 13. Representación de la codificación utilizada para cada bandeja de germinación ..............36 Figura 14. Semillas con exposicion de la radicula, primeros dias de germinacion. a) semillas de Handroanthus chrysanthus, b) semillas de Swietenia macrophylla. ............................................... 37 Figura 15. Modelo de regresión polinomica cúbica del peso ganado de la semilla de Caoba (S. macrophylla) con el paso de las horas. ......................................................................................... 40 Figura 16. Modelo de regresión logarítmica del peso ganado de la semilla de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) con el paso de las horas........................................................................................... 40 Figura 17. Efecto de los tratamientos sobre: A: Porcentaje de germinacion (PG), B: Tiempo Medio de Germinacion (TMG), C: Energia de Germinacion (EG), D: Velocidad Media de Germinacion y E: Valor de Germinacion (VG) en semillas de Swietenia macrophylla. ................................................ 43 Figura 18. Porcentaje de germinacion acumulada de las semillas de Swietenia macrophylla, sembradas durante 26 dias bajo los cuatro tratamiento. .............................................................. 44 Figura 19. Efecto de los diferentes tratamientos empleados en la Velocidad de Germinacion Diaria de las semillas de Caoba (S. macrophylla). ..................................................................................... 45 Figura 20. Efecto de los tratamientos sobre: A: Porcentaje de germinacion (PG), B: Tiempo medio de Germinacion (TMG), C: Energia de Germinacion (EG), D: Velocidad Media de Germinacion y E: Valor de Germinacion (VG) en semillas de Handroanthus chrysanthus. ......................................... 48 Figura 21. Porcentaje de germinacion acumulada de las semillas de Handroanthus chrysanthus, incubadas durante 36 dias bajo los cuatro tratamiento. ............................................................... 49 Figura 22. Efecto de los diferentes tratamientos empleados en la Velocidad de Germinacion Diaria (VGD) de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus)........................................................ 50 Figura 23. Ataque Damping-off a la plantula de Guayacan amarillo (H. chrysanthus). ................... 50 Figura 24. Representación grafica de la morfologia de las semillas de Caoba. ................................ 52 Figura 25. Representación grafica de la morfologia de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus). ................................................................................................................................ 53 Figura 26. Porcentajes de germinacion de las semillas de Caoba (S. macrophylla) para cada prueba realizada. ......................................................................................................................................56 Figura 27. Porcentajes de germinacion de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus) para cada prueba realizada. .................................................................................................................. 57

V

ÍNDICE DE ANEXOS

Anexo 1. Prueba de imbibicion semillas de Caoba. ......................................................................... 73 Anexo 2. Prueba de imbibicion semillas de Guayacan amarillo. ...................................................... 76 Anexo 3. Resultados y procesamiento de prueba de calidad fisica de semillas de Caoba ............... 77 Anexo 4. Resultados y procesamiento de prueba de calidad fisica de semillas de G. amarillo. ........78 Anexo 5. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de Caoba, T0. ................. 79 Anexo 6. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de Caoba, T1. ................. 80 Anexo 7. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de Caoba, T2................... 81 Anexo 8. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de Caoba, T3. ................. 82 Anexo 9. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de G. amarillo, T0. ..........83 Anexo 10. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de G. amarillo, T1. ........ 84 Anexo 11. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de G. amarillo, T2. ..........85 Anexo 12. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de G. amarillo, T3. ........ 86 Anexo 13. Registros prueba de corte de las semillas de Caoba. ......................................................87 Anexo 14. Registros prueba de corte de las semillas de Guayacán amarillo. .................................. 88 Anexo 15. Registros prueba de tetrazolio de las semillas de Caoba. .............................................. 89 Anexo 16. Registros prueba de tetrazolio de las semillas de Guayacán amarillo. ............................ 91 Anexo 17. Resultados del analisis de varianza para las diferentes variables analizadas para las semillas de Caoba (S. macrophylla). ..............................................................................................93 Anexo 18. Resultados del analisis de varianza para las diferentes variables analizadas para las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus). ...........................................................................93

“DETERMINACIÓN DE LOS PATRONES DE TINCIÓN Y EFECTO DE LA GIBERELINA SOBRE LA GERMINACIÓN DE LAS SEMILLAS DE CAOBA (Swietenia macrophylla) Y GUAYACÁN AMARILLO (Handroanthus chrysanthus)”

1

RESUMEN

El objetivo del estudio fue determinar la relación entre el porcentaje de germinación

obtenido por la inmersión de las semillas en diferentes concentraciones de AG3 y el

porcentaje de semillas viables según la prueba de tinción con tetrazolio, para las semillas

de las especies forestales Caoba (S. macrophylla) y Guayacán amarillo (H. chrysanthus).

El proyecto se desarrolló en el invernadero de la sede administrativa de la empresa “El

Semillero”, dentro del cual se pudo controlar las variables climáticas (Temperatura

promedio de 29 °C y Humedad Relativa del 100%). Se evaluó la germinación de las

especies bajo el efecto del Ácido Giberélico (AG3) en tres concentraciones; para esto, se

instalaron los ensayos con un Diseño Experimental Simple Completamente al Azar con

tres repeticiones, en donde el factor correspondió a la concentración de ácido giberélico:

H2O, 50, 100 y 300 ppm, utilizando 20 unidades experimentales para los ensayos de

Swietenia macrophylla y 40 unidades experimentales para Handroanthus chrysanthus. El

análisis de la germinación se realizó mediante las siguientes variables: Porcentaje de

Semillas Germinadas, Tiempo Medio de Germinación, Energía Germinativa y Velocidad

Media de Germinación.

Los resultados obtenidos para las dos especies no mostraron diferencias significativas

entre los tratamientos; no obstante, con la imbibición de las semillas de Caoba (S.

macrophylla) en AG3 a 300 ppm (T3), las semillas alcanzan su mayor porcentaje de

germinación; las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) al ser imbibidas en 100

ppm de AG3 (T2) logro la máxima germinación. La viabilidad de las semillas, medidas con

la prueba de corte y tinción con tetrazolio al 1%, presento una sobreestimación en un 17%

y 12% respectivamente, sobre el mejor tratamiento para las semillas de Caoba (S.

macrophylla); para las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) la prueba de corte

sobreestima en un 31.08% el porcentaje de germinación del mejor tratamiento y

subestima en un 8.17% la prueba de Tetrazolio.

Palabras clave: Ácido giberelico (AG3), Handroanthus chrysanthus, Germinación, Swietenia

macrophylla, Tetrazolio, Viabilidad.


2

ABSTRAC

The objective of the study was to determine the relationship between the percentage of germination obtained by the immersion of the seeds in different AG3 concentrations and the percentage of viable seeds according to the tetrazolium staining test, for the seeds of the forest species Caoba (S. macrophylla) and Guayacán amarillo (H. chrysanthus). The germination of the species under the effect of Gibberellic Acid (AG3) in three concentrations was evaluated; the trial was installed with an Experimental Design Simple Randomized with three repetitions, where the factor corresponded to the concentration of gibberellic acid: H2O, 50, 100 and 300 ppm, using 20 experimental units for the Swietenia macrophylla trials and 40 units experiments for Handroanthus chrysanthus. The germination analysis was carried out by means of the following variables: Germinated Seeds Percentage, Germination Average Time, Germinative Energy and Average Germination Speed. The results obtained for the two species did not show significant differences between the treatments; however, with the imbibition of the seeds of Caoba (S. macrophylla) in AG3 at 300 ppm (T3), the seeds reach their highest percentage of germination; the seeds of Guayacán amarillo (H. chrysanthus) its maximum germination to 100 ppm of AG3 (T2). The viability of the seeds, measured with the cut and stain test with 1% tetrazolium, presented an overestimation in 17% and 12% respectively, on the best treatment for the seeds of Caoba (S. macrophylla); for seeds of Guayacán amarillo (H. chrysanthus) the cut test overestimates in 31.08% the percentage of germination of the best treatment and underestimates in 8.17% the Tetrazolium test.

Key words: Gibberellic Acid, Handroanthus chrysanthus, Germination, Swietenia macrophylla, Tetrazolium, Viability


3

I. INTRODUCCIÓN

La importancia de estudiar las semillas radica en el uso que a estas se les da para realizar

manejos de poblaciones de plantas, reforestar, conservar el germoplasma vegetal, y

para recuperar especies valiosamente explotadas (Tolentino et al., n.d.). Por ende, una

semilla de calidad debe ser viable ante condiciones ambientales no ideales, por lo que su

establecimiento en campo tiene que dar paso a plantas vigorosas, lo que se traduce en

un cultivo de características deseadas (Lallana et al., 2011).

En la industria semillera se requiere de controles de calidad, por lo tanto, se hace

indispensable emplear metodologías que permitan realizar análisis rápidos para

determinar la calidad de las semillas y paralelamente conocer el potencial de

germinación que estas tengan. Las pruebas empleadas en este ensayo buscan

determinar la viabilidad con base en la tinción con Tetrazolio y la Germinación empleando

Giberelinas.

La prueba de tinción con tetrazolio busca determinar la viabilidad de las semillas que

presentan algún grado de dormición o que presentan una velocidad de germinación muy

baja, esto se determina cuando la sal de tetrazolio logra penetrar al interior de la semilla

y hace que las células vivas se logren ver, gracias a la tinción que este genera (Pérez &

Pita, 2001). Por otro lado, las Giberelinas son un método hormonal que se emplea para

sacar del periodo de reposo a las semillas, esto se logra mediante la inmersión de las

semillas en ácido giberélico a diferentes concentraciones, permitiendo la liberación de

enzimas y posteriormente lograr que los nutrientes necesarios para el desarrollo del

embrión estén disponibles, lo que da paso a un aumento en la actividad celular para que

se dé la emergencia de este.

La metodología de este proyecto consta de tres partes. La primera, es la prueba de

imbibición, que busca determinar el tiempo en el que las semillas logran su mayor

ganancia en agua para rehidratarse y dar paso a la emergencia del embrión; la segunda

parte, son las pruebas que determinan la calidad física de las semillas (pureza, peso de

mil semillas, contenido de humedad, ensayo de germinación); la tercera parte, son las

pruebas de viabilidad (corte, y tinción con tetrazolio). Con la realización de estas pruebas

se busca aportar al paquete tecnológico de las especies Caoba (S. macrophylla) y

Guayacán amarillo (H. chrysanthus).


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II. OBJETIVOS

2.1 OBJETIVO GENERAL

Determinar la relación existente entre el porcentaje de germinación obtenido por la

inmersión de las semillas en diferentes concentraciones de AG3 y el porcentaje de

semillas viables según la prueba de tinción con Tetrazolio, para las semillas de las

especies forestales Caoba (S. macrophylla) y Guayacán amarillo (H. chrysanthus).

2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS

Desarrollar las curvas de imbibición de las semillas de cada especie, que permita

determinar tiempos requeridos para que las semillas alcancen la fase de

emergencia.

Evaluar el efecto del regulador hormonal AG3 a diferentes concentraciones en el

porcentaje de germinación.

Establecer los patrones de tinción de tetrazolio para las semillas de Caoba (S.

macrophylla) y Guayacán amarillo (H. chrysanthus).


5

III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA

3.1 DESCRIPCIÓN DEL PROBLEMA

La semilla es la estructura de reproducción sexual de las plantas, es decir son el punto de

partida para la producción, lo cual requiere que dichas semillas tengan la capacidad de

producir plántulas vigorosas que sean capaces de sobrevivir a los diferentes ambientes

en las cuales se establecen.

El control de calidad es un aspecto fundamental en la industria semillera, por lo cual se

requiere de metodologías para análisis rápido de la calidad de las semillas; poder

determinar el potencial de germinación de las semillas con agilidad permite al

comerciante y comprador obtener mayores ganancias, ya que el productor no tendrá

porcentajes de reposición de semillas y el comprador no deberá invertir mayores

tiempos en una posible resiembra de las semillas. Actualmente las investigaciones que

determinan la viabilidad de las semillas mediante la tinción con tetrazolio, se centran en

especies agrícolas, como soja, arroz, maní entre otros, dejando a un lado las especies

forestales.

El problema consiste en el desconocimiento de la actuación del Ácido Giberélico (AG3)

en el porcentaje de germinación de las semillas Caoba (S. macrophylla) y Guayacán

amarillo (H. chrysanthus), así mismo no se conocen porcentajes de viabilidad

determinados con la prueba de tinción con sal de tetrazolio, por lo que permite inferir

que no hay patrones de tinción determinados para estas especies.

3.2 JUSTIFICACIÓN

Se seleccionan las especies Handroanthus chrysanthus y Swietenia macrophylla, debido a:

tienen demanda comercial, no poseen paquete tecnológico completo, la estructura de

las semillas son diferentes, y por último no se conocen ensayos con Ácido Giberélico

(AG3) para estas especies. Así mismo, se resalta la especie Caoba (S. macrophylla) debido

a que está incluida en los apéndices CITES a causa de la extracción selectiva, por la calidad

de su madera, sufriendo así una sobreexplotación que no ha sido compensada.

El Ácido Giberélico (AG3) es un método hormonal empleado para estimular la

germinación de las semillas, debido a que incentiva la liberación de enzimas que ponen

a disposición nutrientes requeridos por el embrión para su desarrollo. Las ventajas de


6

emplear este método se traducen en la emergencia de las semillas en poco tiempo y

reducción de costos por establecimiento en vivero.

La prueba de tinción con tetrazolio es una herramienta útil que permite conocer la

viabilidad de los embriones y la capacidad que estos tienen para germinar. Lo anterior se

puede traducir en una ventaja para el productor de semillas, debido a que permite evitar

gastos innecesarios en procedimientos de secado, procesamiento, transporte, etc., de

semillas inviables.

3.3 FORMULACIÓN DE HIPÓTESIS

1. Para la prueba de germinación se tienen las siguientes hipótesis:

Hipótesis nula:

H0 = El porcentaje de germinación de las semillas de Caoba (S. macrophylla) es igual en cada uno de los tratamientos pregerminativos al emplear Ácido Giberélico (AG3).

H0 = El porcentaje de germinación de las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) es igual en cada uno de los tratamientos pregerminativos al emplear Ácido Giberélico (AG3).

H0 : T0 = T1 = T2 = T3

Hipótesis alterna:

Hi = El porcentaje de germinación de las semillas de Caoba (S. macrophylla) es diferente en cada uno de los tratamientos pregerminativos al emplear Ácido Giberélico (AG3).

Hi = El porcentaje de germinación de las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) es diferente en cada uno de los tratamientos pregerminativos al emplear Ácido Giberélico (AG3).

Hi: T0 ≠ T1 ≠ T2 ≠ T3


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IV. ESTADO DEL ARTE

4.1 GENERALIDADES PARA LA ESPECIE FORESTAL: CAOBA (S. macrophylla)

4.1.1 Clasificación taxonómica

Nombre Científico: Swietenia macrophylla

Reino: Plantae

División: Magnoliophyta

Clase: Magnoliopsida

Orden: Sapindales

Familia: MELIACEAE.

Nombres Vernáculos: Apamate, Mara, Palo Santo, Cedro Caoba, Caobo.

Sinónimos: Swietenia macrophylla var. marabaensis Ledoux & Lobato

4.1.2 Estado de amenaza:

En Peligro Crítico.

Caoba (S. macrophylla) es una de las especies con mayor presión comercial y sus

poblaciones han sido diezmadas rápidamente en todas sus áreas de distribución natural.

Esta situación motivó a que fuera incluida en el apéndice II de la Convención sobre

Comercio Internacional de Especies Amenazadas de Fauna y Flora (CITES) en el año 2002,

siendo categorizada a nivel mundial como vulnerable (VU A1cd+2cd) (World

Conservation Monitoring Centre, 1998) y a nivel nacional fue categorizada En Peligro

Crítico (CR A2cd) debido a la reducción de sus poblaciones naturales en más del 80%

(Cárdenas & Salinas, 2007).

4.1.3 Distribución geográfica

Se distribuye desde el sur de México hacia el sur hasta Colombia, Venezuela, Perú, Bolivia

y Brasil (Céspedes et al., 2003). En Colombia se encuentra reportada en los

departamentos de Antioquia, Bolívar, Córdoba, Guajira, Huila, Magdalena, Choco, Sucre

y Santander (SIB, 2009b); con 99 registros de los cuales tan solo 34 de ellos se

encuentran en cobertura boscosa (Cárdenas et al., 2015)

CR


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Figura 1. Distribución histórica de S. macrophylla.

Obtenido de Cárdenas et al. (2015)

4.1.4 Descripción del hábitat

El hábitat natural de esta especie es bosques tropicales y subtropicales secos, húmedos

y muy húmedos hasta 1500 m de altitud, con temperaturas mayores a 24°C y

precipitaciones entre 1500 y 3500 mm. La especie se encuentra en sitios planos con

pendientes moderadas hasta de 15%, suelos arcillosos o franco arenosos medianamente

fértiles, profundos y bien drenados con pH entre 6.9 y 7.7 (López & Cardenas, 2002;

Céspedes et al., 2003; CATIE, 1997; Cárdenas et al., 2015).


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4.1.5 Gremio ecológico

Caoba (S. macrophylla) es una especie heliófita durable (López & Cardenas, 2002).

4.1.6 Descripción

Esta especie es monoica, puede alcanzar entre los 15-45 m de altura, tiene fuste recto

cilíndrico, con raíces tablares. Corteza externa marrón con tintes grisáceos y con fisuras

superficiales, madera interna amarilla, albura rosada a rojiza. Ramas jóvenes delgadas,

con lenticelas pequeñas y abundantes. Hojas compuestas, alternas, paripinnadas de 15-

30 cm, raquis glabro, con 3 a 6 pares de foliolos, opuestos o subopuestos, cartáceos,

ovado lanceolados, ápice agudo o acuminado, base ligeramente redondeada, cordada y

asimétrica, haz verde claro y envés verde oscuro (López & Cárdenas, 2002; CATIE, 1997.).

Inflorescencias: usualmente axilares, muy ramificadas de 10-18 cm de largo, glabras,

formando fascículos o panículas de color blanco verdoso, con flores pequeñas de cinco

pétalos blancos amarillentos y diez estambres castaños diminutos. (López & Cárdenas,

2002; CATIE, 1997)

Frutos: capsulares erectos, alargado-ovoide a veces en forma de pera (López &

Cardenas, 2002) a elíptica (Alvarenga & Flores, 1988) , de 10-16 cm de largo y 6-8 cm de

diámetro, gris-café oscuro, valvas exteriores leñosas, interiores mucho más delgadas y

manchadas de café y blanco, semillas 7-10 cm de largo incluyendo el ala, de color café

oscura y lustrosa (López & Cardenas, 2002), leñosos, dehiscentes, pentacarpelar, con

carpelos cerrados. El promedio de semillas es de 60-57 por fruto y de 12-11 por lóculo

(Alvarenga & Flores, 1988; CATIE, 1997).

Semillas: anemócoras, diásporas aladas, localizadas en el extremo distal del fruto,

dispuestas verticalmente en los lóculos, en forma estratificada y se mantienen unidas a

la placenta por medio de un funículo largo y delgado, presentan un ala larga color pardo

claro, constituida por un tejido parenquimático, esponjoso, de origen tegumentario. El

hilo es de color pardo oscuro prominente, cubierto con tricomas. En un extremo del hilo

se encuentra incluido el micrópilo. El tegmen es delgado unido a los cotiledones. El

embrión presenta dos cotiledones grandes y carnosos. La plúmula y la radícula son

inconspicuas. El material de reserva es endosperma (Alvarenga & Flores, 1988).


10

Figura 2. Morfología de la semilla de la especie forestal Caoba (S. macrophylla).

er: región del embrión, hr: región hilar, mi: micrópilo, mr: región media, te: testa, tg: tegmen, vb: haz vascular.

Escala de barras= 3 mm. (Adaptado de Paiva et al., 2006)

4.1.7 Usos e importancia

Según Negreros et al. (2014), la especie forestal Caoba (S. macrophylla) es la especie

comercial más importante de América Latina, por sus diferentes usos: reforestación en

zonas degradadas, empleada en sistemas agroforestales y apicultura, su madera sirve

para elaborar artesanías, instrumentos musicales, construcciones rurales, curtiente,

implementos agrícolas, embarcaciones, partes de molinos, muebles de lujo, gabinetes

entre otros. El aceite extraído de sus semillas es utilizado para preparar cosméticos. El

fruto seco se emplea artesanalmente para formar arreglos florales. Tanto la corteza

como la semilla se usan medicinalmente para tratar diarrea, fiebre y dolor.

4.1.8 Calidad física de las semillas

Peso: Según el CATIE (1997) el número de semillas por kg, varía entre 1800 a 2500,

dato aproximado al que registra Cárdenas et al. (2015) de 1300 a 2000 semillas por

kg. Además, Rodríguez & Nieto (1999) registran que el peso de 1000 semillas es

de 771,64 gr y por kg son un total de 1283 semillas. Por otro lado, Negreros et al.

(2014) indican que el peso por semilla en promedio es de 0,66 gr, tomando como

referente 1500 semillas por kg.


11

Pureza: CATIE (1997) reporta que el porcentaje de pureza es del 95 al 99%, al igual

que los resultados de Samaniego et al. (1994) de 98,85%. En contraste, Rodriguez

& Nieto (1999) indican que el porcentaje de pureza es de 84,26%.

Contenido de humedad: El contenido de humedad varía entre el 9 y 12 % (CATIE,

1997). Por otro lado, Rodriguez & Nieto (1999) registran que el contenido de

humedad es de 59,19%, a pesar de que Samaniego et al. (1994) reporta que el

contenido de humedad es de 4,8%.

Viabilidad: En los estudios realizados por Alvarenga & Flores (1988) los índices de

viabilidad superan el 90%. Por otro lado, Cárdenas et al. (2015) indican que por

fruto se pueden encontrar alrededor de 40 a 60 semillas viables. Además de ello,

el Banco de Semillas Forestales, BSF & CATIE (1995) reportan que por kg se

encuentran 1450 semillas viables.

4.1.9 Germinación

La especie presenta una germinación hipogea con alta capacidad de germinación y

establecimiento de plántulas, incluso con capacidad de regeneración en potreros

(Gerhardt, 1996; citado por Alcala, 2011 ), sin embargo Grogan & Galvão (2006, citado por

Alcala, 2011) expresan que son necesarias condiciones micro ambientales propias de un

dosel cerrado para que la especie germine.

Gutiérrez et al. (2011) obtuvieron un porcentaje de germinación de 34%, representada por

98 semillas germinadas (de 300 semillas sembradas). Samaniego et al. (1994) reportan

que a nivel de laboratorio la germinación se inicia a los 8 días y finaliza a los 21 días. Por

otro lado, Negreros et al. (2014) indican que la especie requiere de 10-40 días para su

germinación con un porcentaje de germinación del 95%.


12

Figura 3. Descripción de la morfología de las semillas y el desarrollo del embrión de Swietenia macrophylla, antes de

la germinación. Adaptado de los resultados de Alvarenga & Flores (1988).

4.1.10 Tratamientos pregerminativos

De acuerdo con el CATIE (1997) y Cárdenas et al. (2015), esta especie no requiere de

tratamientos pregerminativos. Los anteriores autores indican que se puede sembrar en

camas germinadoras o directamente en bolsas, colocando en este caso de 1 a 2 semillas

por bolsa, en un lugar ligeramente sombreado y con buena humedad. La profundidad de

siembra recomendable es de 2 a 3 cm en el sustrato, ya sea acostada o vertical, con el

lado del ala hacia arriba.

En contraste con lo anteriormente mencionado, Samaniego et al. (1994) realizaron

diferentes tratamientos pregerminativos, los cuales consistían en 1. Testigo. 2.

Imbibición de la semilla en agua durante 24 horas. 3. Corte opuesto al embrión. 4.

Imbibición en ácido giberélico (10, 100 y 500 ppm). El tratamiento que les presento

mejores resultados en relación a la germinación fue la imbibición de la semilla por 24

horas (77%), y en segundo lugar la inmersión en giberelina a 100 ppm por 26 horas

(logrando una germinación del 72,73% de las semillas tratadas).


13

En cuanto a sus requerimientos climatológicos, Samaniego et al. (1994) expresan que la

temperatura para maximizar la germinación debe ser constante (30°C), en cuanto al pH

del sustrato, este debe ser neutro y por último se recomienda luz controlada (16 h luz y

8 h sin luz) para la germinación de las semillas.

La FAO et al. (2010) recomiendan quitar las alas de las semillas, protegiendo las semillas

con media sombra a dos metros de altura como se muestra en la siguiente figura:

Figura 4. Disposición de la media sombra.

Obtenido de FAO et al. (2010)

4.1.11 Imbibición

Según Paiva et al. (2006) el inicio de imbibición es rápido, el cual se presenta a los 30

minutos de sumergida la semilla, absorbiendo la semilla 30 mg/cm2. Por otro lado,

Alvarenga & Flores (1988) evaluaron la germinación de esta especie, determinando que

el tiempo requerido de imbibición es de 48 horas, tiempo al cual la semilla aumenta de

volumen y el micrópilo y el hilo se ensanchan.

4.1.12 Floración y fructificación

Según CATIE (1997) la floración de Caoba (S. macrophylla) comienza entre los 12 y 15 años

en los meses de noviembre a marzo. La fructificación se da en marzo y desde agosto

hasta diciembre, sin embargo Cárdenas et al. (2015) indican que el periodo de floración

es de abril a junio para la parte norte y central de Suramérica, y la época de producción


14

de semillas es variable respecto al área. Para el caso de Colombia, la fructificación se da

entre los meses de febrero a abril y de agosto a diciembre, la floración según Negreros

et al. (2014) ocurre en abril.

Tabla 1. Cuadro fenológico de la especie S. macrophylla.

Meses Ene Feb Mar Abr May Jun Jul Ago Sep Oct Nov Dic

Floración Fructificación

Fuente: Adaptado de CATIE, 1997

Para el caso del bioma Amazónico FAO et al. (2010) destacan que la temporada de

floración es en los meses de julio a noviembre y la temporada de fructificación donde la

semilla está madura es en los meses de mayo a agosto (Gullison et al., 1996).

4.2 GENERALIDADES PARA LA ESPECIE FORESTAL: GUAYACÁN AMARILLO (H.

chrysanthus)

4.2.1 Clasificación taxonómica

Nombre Científico: Handroanthus chrysanthus

Reino: Plantae

División: Magnoliophyta

Clase: Magnoliopsida

Orden: Sapindales

Familia: BIGNONIACEAE.

Nombres Vernáculos: Lapacho amarillo, guayacán, guayacán amarillo, tahuarí,

flor amarilla, puy, cañaguate, cañaguate, chicalá, polvillo,

roble amarillo, araguaney, guayacán polvillo, palo de arco,

abejón.

Sinónimos: Bignonia chrysantha Jacq., Tabebuia chrysantha (Jacq.)

G.Nicholson, Tabebuia rufescens J.R.Johnst., Tecoma

chrysantha (Jacq.) DC., Tecoma evenia Donn.Sm., Tecoma

palmeri Kraenzl.


15

4.2.2 Estado de amenaza:

No Evaluado

4.2.3 Distribución geográfica

Se distribuye en el trópico americano desde México, Venezuela, Ecuador, Colombia y

Perú (Escobar & Suarez, 2013). En Colombia se encuentra en los departamentos de

Amazonas, Bolívar, Cesar, Chocó, Córdoba, Guaviare, Magdalena y Tolima (SIB, 2009a).

4.2.4 Descripción del hábitat

El hábitat de esta especie es bosque seco tropical y bosque húmedo tropical, entre 0 –

1500 msnm, con temperaturas entre 18 – 24 ° C y precipitaciones entre 1000 a 2000 mm

(Becerra & Silva, 2010), con una evapotranspiración promedio para el bosque seco

tropical de 920 mm y para el bosque húmedo de 1400 mm (Arevalo et al., 2000). Se

desarrolla en bosques primarios y secundarios, con suelos arenosos o franco arenosos,

profundos, fértiles, aluviales, con pH entre 5,5 y 6,5, de buen drenaje, aunque tolera

suelos poco drenados, con inundaciones temporales, las deficiencias de fosforo

desfavorece su desarrollo (Escobar & Suarez, 2013).

4.2.5 Gremio ecológico

El gremio ecológico de esta especie es heliófita durable (Escobar & Suarez, 2013).

4.2.6 Descripción

Árbol: caducifolio de gran porte, alcanzando 20 metros de altura y 60 cm de diámetro,

con fuste recto y con corteza de color grisáceo a marrón oscuro con grietas verticales

profundas, la raíz principal es pivotante y las secundarias semisuperficiales (Becerra &

Silva, 2010).

Hojas: digitado-compuestas, opuestas, sin estipula, con 5 foliolos de forma lanceolada a

elípticas, borde liso a ligeramente aserrado hacia el ápice el cual es cortamente

acuminado, la base es aguda a redondeada. Hoja membranácea hasta rígido-cartáceas

NE


16

de color verde oscuro con el envés densamente cubierto por pelos estrellados de color

canela. (Escobar & Suarez, 2013 & Gómez et al., 2013)

Inflorescencias: panículas terminales, con flores amarillas con líneas rojas por dentro de

los pétalos, cáliz en forma de campana y corola en forma de embudo. (Gómez et al., 2013)

Frutos: vainas delgadas de hasta 40 cm de longitud, los cuales maduran a los dos meses

después de la floración, con dehiscencia longitudinal (Gómez et al., 2013 & López et al.,

2006).

Semillas: aplanadas doblemente aladas asimétricas e irregulares y papiráceas blancas

(Escobar & Suarez, 2013).

Figura 5. Semillas de Handroanthus chrysanthus.

(A) aspecto general de las semillas: cara dorsal: (B) aspecto general de las semillas: cara ventral; (C) embrión

cubierto con envoltura coriácea, señalando la radícula.

4.2.7 Usos e importancia

Según el CATIE & OFI (2003) la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus) es

utilizada por su madera, debido a su peso, durabilidad, y resistencia al comején. De igual

manera se utiliza en sistemas silvopastoriles, para dar sombra a cultivos; como

ornamental, y para la producción de miel. Su corteza es empleada medicinalmente para

tratar el paludismo.


17

4.2.8 Calidad física de las semillas

Peso: CATIE (2000) reporta que por kilogramo hay de 40.000 a 55.000 semillas. Siendo

el peso de 1000 semillas de 21,9 gr.

Pureza: Según el CATIE (2000) la pureza de esta semilla es del 85 al 95%.

Contenido de humedad: Según el CATIE (1995) las semillas de Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) tienen un contenido de humedad del 7-9 %. Sin embargo, Rodríguez & Nieto

(1999) reportan que el contenido de humedad es del 26,8 %.

4.2.9 Germinación

De acuerdo con Escobar & Suarez (2013) las semillas tienen germinación errática,

iniciándose a los 15 días hasta los 6 meses. Por otro lado, el CATIE (1999) reporta que la

germinación es epigea y se da inicio de 7 a 15 días después de sembrada y finaliza a los 25

días, con un porcentaje de germinación del 60 a 80%.

4.2.10 Tratamientos pregerminativos

En concordancia con el CATIE (1999) y Trujillo (2007), el tratamiento pregerminativo que

se puede emplear para esta especie es la inmersión en agua a temperatura ambiente por

24 a 48 horas. De igual modo, Luzuriaga & Reyes (2014) determinan que con la inmersión

de las semillas por 24 horas, se obtiene un potencial germinativo del 29%.

4.2.11 Imbibición

La literatura no reporta curvas de imbibición para esta especie, sin embargo se

recomienda la imbibición de las semillas por 24 horas (Trujillo, 2007; Alvarado & Encalada,

2010).

4.2.12 Floración y fructificación

Según Justiniano et al. (2000), la floración de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) en

Bolivia, ocurre en los meses de julio a septiembre, la fructificación se da en los meses de

agosto a octubre. Para el caso de Colombia, la floración y fructificación se presenta

durante todo el año (CATIE, 1999).


18

4.3 GENERALIDADES DE LA SEMILLA

La semilla es el embrión de la planta que ha alcanzado la madurez y se encuentra en

estado de “vida latente”. Puede permanecer en este estado durante mucho tiempo, de

acuerdo a la especie. Cuando la semilla encuentra las condiciones ambientales

adecuadas, germinará.

4.3.1 Partes de la semilla

Figura 6. Estructura interna y detalles de la estructura externa.

(Centro Internacional de Agricultura Tropical, 1983)

Cubierta seminal:

También llamado epispermo, que deriva de la transformación del tegumento. Estructura

que cubre el eje embrionario y los cotiledones.

Hilo: cicatriz en la superficie de la testa, formada por la ruptura del funículo

que une el ovulo fertilizado al ovario.

Micrópilo: parecido a un poro pequeño, donde se había producido la entrada

del tubo polínico en el ovulo y es por donde se dirige la radícula en la

germinación.


19

Embrión:

Es una plántula diminuta dentro de las semillas, la cual se desarrolla por la unión entre el

gameto masculino y femenino durante la fecundación. Se diferencian tres partes dentro

del embrión:

Radícula: Parte que emerge en primer lugar, dando origen a la raíz primaria.

Plúmula: También llamado epicótilo, ubicado por encima del nudo cotiledonar

y da origen a la parte aérea de la planta.

Hipocotíleo: Región entre el nudo cotiledonar y la radícula.

Cotiledones: Sirven como reserva alimenticia y dan formación a las primeras

hojas. Según el número de cotiledones, se puede dividir la semilla en

monocotiledónea (un cotiledón) o dicotiledónea (dos cotiledones).

4.3.2 Viabilidad

La viabilidad de las semillas, hace referencia a su capacidad de germinar y de originar

plántulas normales en condiciones ambientales favorables (F. Pérez & Pita, 2001).

Para evaluar y determinar rápidamente la viabilidad de semillas de especies que

normalmente germinan con lentitud o muestran latencia cuando se le aplican los

métodos de germinación normales, se realizan los siguientes test:

Prueba de incisión o corte

El ensayo de corte trata de obtener una idea aproximada de la vitalidad de la semilla

mediante una inspección visual directa de las semillas, previamente cortadas

longitudinalmente dejando a la vista el embrión y principalmente su raicilla. Del aspecto

de ésta y de los cotiledones se desprenden las mayores o menores condiciones de vida

que reúne una semilla. De acuerdo a esto se pueden agrupar las semillas en tres grupos

(Prats, 1944):

Semillas de aspecto completamente sano.

Semillas de aspecto dudoso.

Semillas en mal estado o vanas.

La FAO (1991) da las siguientes indicaciones para la evaluación de la prueba de corte: Si

el endospermo tiene un color normal y el embrión está bien desarrollado, la semilla tiene


20

muchas posibilidades de germinar; las semillas no viables presentan el embrión lechoso,

poco firme, mohoso, podrido, consumido o con olor rancio ;y se puede distinguir las

semillas abortivas debido a que carecen de embrión. Con este ensayo no es posible

distinguir las semillas moribundas, recién muertas o recién dañadas debido a que siguen

teniendo el mismo aspecto que las semillas viables, por último, recomienda este ensayo

al término de un ensayo de germinación para determinar la viabilidad aparente de las

semillas que no han germinado.

Prueba de tetrazolio

Este ensayo es indicado para conocer la viabilidad de semillas que presentan dormición,

o tienen velocidad de germinación muy baja; el sustento para ensayo bioquímico, son los

procesos reductores que tienen lugar en las células vivas que se hacen visibles por la

reducción del indicador, conocido como sal de tetrazolio que se hace penetrar en el

interior de la semilla. Esta solución se interfiere en los tejidos de las semillas con los

procesos reductores de las células vivas y se apodera del hidrogeno liberado por

deshidrogenasas. Por hidrogenación del cloruro de 2, 3, 5 trifeniltetrazolio, se forman en

las células vivas Trifenil-Formasan la cual es una sustancia roja, estable y no difusible

(Ministerio de agricultura, 1984).

Criterios para la evaluación de semillas mediante el análisis de tetrazolio:

Con el ensayo se pueden distinguir las partes vivas de la semilla (las cuales se

colorean de rojo) y las partes muertas (no se colorean). Adicionalmente, se pueden

determinar semillas parcialmente coloreadas, observándose los tejidos con

necrosis en diversas partes de la semilla.

La viabilidad de la semilla depende de la localización y extensión de la necrosis en

el embrión y/o en el endospermo, mas no en la intensidad de la coloración. Los

resultados de la prueba de tinción se pueden comparar con una prueba de

germinación (Ministerio de agricultura, 1984).

Al realizar la prueba de tinción, el embrión no necesita estar completamente teñido

para ser capaz de germinar, por tal motivo existen diagramas de mapas de tinción

de varios tipos de semillas, los cuales permiten al analista la distinción entre

semillas viables y no viables (Figura 7); Rao et al. (2006) expresan que los tonos

rosados y rojos muy oscuros, indican que el tejido está muerto.


21

Figura 7. Patrón de tinción después de la prueba con tetrazolio en semillas dicotiledóneas.

Los números del 1 al 6 son semillas germinables; 7 al 15 son semillas no germinables.

Obtenido de Rao et al. (2006)

Análisis de semillas de especies dicotiledóneas

Semillas viables (Moreno, 1984):

Estructuras del embrión bien desarrollado, intacto y con una

coloración rojo normal.

Los embriones de semillas viables pueden presentar el siguiente tipo

de daño:

Pequeñas áreas necróticas en los cotiledones, excepto en el

área de unión del eje embrionario y los cotiledones.

Pequeñas áreas necróticas en la parte distal de la ridícula.

Semillas no viables (Moreno, 1984):

Embrión completamente sin colorear.

Un poco más de la punta de la radícula sin teñir.

Más de la mitad del cotiledón sin teñir.

Áreas necróticas profundas en la unión del cotiledón y el eje

embrionario, o sobre la ridícula.

Radícula fracturada

Semilla inmadura o con desarrollo deficiente


22

Cálculo y registro de los resultados.

En cada repetición de la prueba se cuentan las semillas viables. El resultado final, es el

porcentaje de las semillas viables de los resultados de las cuatro repeticiones.

4.4 GERMINACIÓN

CATIE (1996) define la germinación, como la reanudación del crecimiento de los

embriones que son activados al estar expuestos a condiciones favorables, los cuales

permiten convertir la semilla en una plántula autosuficiente. En adición, la FAO (1991)

determina que la germinación se expresa como el porcentaje de semillas puras que

produce plántulas normales o como el número de semillas que germinan por unidad de

peso de la muestra.

4.4.1 Proceso de germinación

Figura 8. Curva de absorción de agua en las diferentes fases de germinación.

Obtenido de Herrera, Alizaga, Guevara, & Jimenez (2006)


23

Fase I _ Imbibición:

Consiste en la absorción del agua necesaria para la rehidratación de proteínas y

organelos celulares, así como para el transporte y para que ocurran las reacciones

hidrolíticas. En esta fase se da el hinchamiento de la semilla causando la ruptura

de la testa.

Fase II _ Germinación:

En esta fase se produce la activación del metabolismo, donde ocurre la síntesis de

ácidos nucleicos y proteínas; también se incrementan las actividades enzimáticas

y se degradan las reservas iniciales.

Fase III _ Crecimiento:

En esta fase se da el crecimiento y división celular que provoca la emergencia de

la radícula y posteriormente la plúmula. En esta fase se vuelve a aumentar la

absorción de agua (Figura 8).

4.4.2 Factores que afectan la germinación

Factores endógenos

Semillas con cubierta dura: muchas semillas tienen la testa dura o

impermeable, lo que impide la imbibición del agua para iniciar la

germinación. Típico de las leguminosas.

Inhibidores químicos.

Embriones inmaduros.

Factores Ambientales

Según Gliessman (2002) los factores ambientales que afectan la germinación de

la semilla son:

Profundidad de la semilla: según la profundidad del suelo las condiciones

cambian, debido a esto, cada semilla tiene recomendaciones de

profundidad según las condiciones mejores para la germinación.


24

Luz: algunas semillas requieren de luz para germinar y otras son inhibidas

por la luz.

Precipitación: factor determinante, ya que influye en la humedad del suelo

y su efecto directo en la semilla.

Temperatura: cada especie tiene temperaturas óptimas para la

germinación ligeramente diferentes.

Factores bióticos, viento, fuego.

Cobertura del suelo: la materia orgánica sobre la superficie del suelo incide

en la germinación de la semilla al alterar el movimiento del agua, la

temperatura del suelo, la disponibilidad de luz.

4.4.3 Expresión de resultados

El análisis de los resultados de los ensayos de germinación se puede mostrar de

diferentes maneras:

Porcentaje de germinación:

Este término determina el porcentaje real de todas las semillas de la muestra que han

germinado durante la prueba y desarrolla plántulas normales debido a condiciones

ambientales óptimas para su crecimiento.

Tiempo medio de germinación

Es el tiempo promedio requerido por las semillas para que el porcentaje de germinación

final se genere.

Energía germinativa

Este término representa el porcentaje de semilla de la muestra que ha germinado

durante la prueba hasta el momento en que la cantidad de semilla que germina por día

llega a su máximo.

Velocidad media de germinación

Este término busca determinar el número de semillas germinadas por día.


25

Valor de germinación:

Según la FAO (1991), este término tiene por finalidad combinar en una sola cifra una

expresión de la germinación total al término del período de ensayo y una expresión de

la energía o velocidad de germinación. La germinación total se expresa en forma de

germinación diaria media (GDM) (final), que se calcula como el porcentaje acumulado de

semillas germinadas al final del ensayo dividido por el número de días que transcurren

desde la siembra hasta el término del ensayo. La velocidad de germinación se expresa

en forma de valor máximo (VM), que es la germinación diaria media máxima (porcentaje

acumulado de germinación de semilla llena dividido por el número de días transcurridos

desde la fecha de siembra) que se alcanza en cualquier momento del período del ensayo.

4.5 ÁCIDO GIBERÉLICO

La fitohormona: giberelina, comprende el grupo más numeroso de hormonas vegetales

conocidos en la actualidad. Conociéndose más de 40 giberelinas aisladas, variando en

estructura y actividad, siendo la más destacada AG3 (ácido giberélico) obtenido del

hongo Giberella fujikuroi (Lluna, 2006), el cual cuando se presenta un ataque en sí del

hongo, produce un crecimiento excesivo de los tallos y los brotes.

Las giberelinas por lo tanto, actúan como reguladores endógenos del crecimiento y el

desarrollo en los vegetales superiores. Los efectos más evidentes se observan en la

estimulación del crecimiento del tallo, la inducción del desarrollo del fruto y la

germinación de las semillas (Azcón-Bieto & Talón, 2013). Generalmente, se encuentran

mayores niveles de giberelinas en las partes reproductivas respeto a las partes

vegetativas, y en partes jóvenes en relación con las maduras. De esta manera se

encuentran con facilidad en ápices de tallos y raíces, en hojas jóvenes, partes florales,

semillas inmaduras y embriones en germinación (Cruz et al., 2006).

4.5.1 Naturaleza química

Las giberelinas son compuestos que contienen un esqueleto gibane y propiedades

biológicas apropiadas, aunque también se refiere que todas las giberelinas contienen el

esqueleto del enantiomero de giberelano (ent-giberelano) con fórmula química es

C19H22O6, este esqueleto tiene la ventaja de utilizar un sistema de numeración que

corresponde al de otro diterpenos cíclicos, categoría a la que pertenecen todas las


26

giberelinas. Aunque en las plantas se encuentran muchas clases de giberelinas naturales,

el ácido giberélico (AG3) es el más empleado para aplicaciones exógenas en vista de que

es producido en cultivos de hongos encontrándose disponible comercialmente. El ácido

giberélico tiene 8 átomos asimétricos de carbono, presentando 256 isómeros (Weaver,

1976).

Figura 9. Estructura química de GA3.

Obtenido de Azcón-Bieto & Talón (2013)

4.5.2 Actividad biológica

Las giberelinas biológicamente activas, actúan como reguladores esenciales del

desarrollo de las plantas, modulando diferentes respuestas del crecimiento como la

germinación de semillas, el crecimiento del tallo, la partenocarpia, la expansión foliar, la

elongación de la raíz, la floración y la liberación de enzimas hidrolíticas en algunos tejidos

(Cruz et al., 2006).

4.5.3 Mecanismo de acción

Según Weaver (1976) las giberelinas pueden terminar con el reposo de las semillas de

muchas especies, debido a que las giberelinas pueden provocar cambios a nivel genético

que estimulan a su vez la síntesis enzimática en las células. La acción de la giberelina tiene

relación con la síntesis del mensajero RNA, dirigida por el DNA, en el núcleo. Weaver

refiere que se cree que las giberelinas modifican el RNA producido en los núcleos, y así


27

puede este ejercer su control sobre la expansión celular, así como otras actividades de

crecimiento y desarrollo vegetal.

4.5.4 Efectos fisiológicos

Las giberelinas pueden generar alargamiento de plantas intactas, observándose en el

crecimiento del vástago, o a menudo los tallos se vuelven largos y delgados, con pocas

ramas. Así mismo, las giberelinas estimulan la división celular afectando tanto a las hojas

como a los tallos (Lluna, 2006). En la siguiente tabla se relacionan los aspectos

fisiológicos correspondientes con las Giberelinas:

Tabla 2. Efectos fisiológicos por la fitohormona Giberelina.

Efecto Fisiológico Efecto

Respuestas trópicas. Si

Crecimiento de secciones de coleóptilos de avena. A veces

Aumento del tamaño celular en cultivo de tejidos. Si, en algunos casos

Control de la diferenciación en cultivo de tejidos. Si

Estimula el enraizamiento en estaquillas. No

Inhibe el desarrollo radicular. No

Estimula la división del cambium. Si

Abscisión de hojas y frutos. No directamente

Activa el crecimiento de frutos. Si

Afecta al crecimiento del tallo. Si, lo activa

Interrumpe el reposo de las yemas vegetativas. Si

Favorece la germinación en algunas semillas. Si

Favorece la síntesis de α-amilasa en granos de cereal. Si

Mantenimiento de la dominancia apical. Si

Inhibe la degradación de proteínas y clorofilas en la senescencia. Si

Aumenta la respiración del fruto durante la maduración. No

Fuente: Adaptado de Pérez, F y Martínez-Laborde, J.B. (1994) citado por Lluna (2006)

Relativo a lo mencionado, las giberelinas estimulan el proceso de germinación de las

semillas, a causa de que, en algunas especies suplen los requerimientos de luz o frio que

precisan las semillas para germinar. Así mismo lo refiere el modelo de Khan (Bidwell,

1993), el cual dice que la giberelina es necesaria para la germinación y su ausencia da por

resultado un inevitable letargo, este presente o no un inhibidor. La Figura 10, muestra


28

como la giberelina junto con las bajas temperaturas, la estimulación por la luz roja

mediada por el fitocromo conduce a un incremento de la biosíntesis de AGs activas. Estos

estímulos inhiben la expresión de AG 2-oxidasas y estimulan los transcritos de AG3-

oxidasas, induciendo así el crecimiento del embrión.

Figura 10. Modelo de activación de la germinación de semillas por las giberelinas.

Obtenido de Azcón-Bieto & Talón (2013)

4.5.5 Ensayos con Giberelina

Los tratamientos con AG3 pueden superar el letargo fisiológico de semillas, se usa el AG3

a una concentración de 500 ppm generalmente, aunque la gama de usos va de 200 a

10.000 ppm; para las concentraciones superiores a 800 ppm se recomienda la adición de

una solución amortiguadora (Arevalo Proaño, 1998).

Por otro lado, Zabaleta et. al (2010; citado por Escobar & Suarez, 2013) refieren que las

aplicaciones en muy bajas concentraciones pueden resultar en buenos resultados,

mientras que concentraciones muy altas pueden dar el efecto negativos.


29

V.MATERIALES Y MÉTODOS

5.1 ÁREA DE ESTUDIO

El análisis de la calidad física de las semillas se llevó acabo en el laboratorio de silvicultura

y de fisiología de la Universidad Francisco José de Caldas - sede vivero (Facultad de Medio

Ambiente y Recursos Naturales). Las pruebas de germinación y viabilidad se realizaron

en el invernadero tradicional de la sede administrativa de la empresa El Semillero S.A.S,

bajo las siguientes condiciones climáticas: Temperatura promedio 29ºC y Humedad

Relativa del 100%.

5.2 MATERIAL EXPERIMENTAL

Se utilizaron semillas de las especies forestales Caoba (S. macrophylla) y Guayacán

amarillo (H. chrysanthus), Acido giberélico (PROGIBB ® 10SP), Sal de Tetrazolio y Turba;

suministradas por la empresa El Semillero S.A.S.

5.3 METODOLOGÍA

5.3.1 Prueba de Imbibición

Para realizar la prueba de imbibición se utilizaron los siguientes materiales:

Vasos de precipitado

Toallas absorbentes

Agua destilada

Balanza analítica

Se utilizaron dos muestras de 3,5 g para las semillas de Caoba (S. macrophylla) y 0,5 g

para las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus); para esta última especie se les

retiro las alas con el fin de no tener alteración en el peso. Posteriormente se depositaron

en un recipiente y se cubrieron con agua. Los datos fueron tomados cada hora hasta

tener un peso constante. Con los datos obtenidos se realizó la curva de imbibición de las

semillas: Cantidad de agua imbibida (%) vs. tiempo (t), en la cual:


30

Donde Pf: Peso Final

Po: Peso Inicial.

5.3.2 Pruebas de Calidad Física

Pureza

Para realizar esta prueba se utilizaron los siguientes materiales:

Cajas Petri

Balanza analítica

Pinzas

Se utilizaron dos muestras (con impurezas) de 50 g de semillas de Caoba (S. macrophylla)

y 5 g de semillas de Guayacán Amarillo (H. chrysanthus). Se dividió la muestra en semilla

pura y materia inerte y se realizaron los registros del peso de cada componente. El

porcentaje de pureza se calculó así:

Peso de mil Semillas

Para esta prueba se utilizaron los siguientes materiales:

Cajas Petri

Balanza analítica

Pinzas

Se procedió separando 8 réplicas de 100 semillas cada una, registrando su peso. Se

analizaron los datos hallando su coeficiente de variación la cual tenía que ser menor a 4.

Con los datos se calculó la varianza (S2), la desviación típica (S) y el coeficiente de

variación (CV) y de igual modo la media (��):

𝐶𝑎𝑛𝑡𝑖𝑑𝑎𝑑 𝑑𝑒 𝑎𝑔𝑢𝑎 𝑖𝑚𝑏𝑖𝑏𝑖𝑑𝑎 (%) =(𝑃𝑓 − 𝑃𝑜) ∗ 100

𝑃𝑜

% 𝑃𝑢𝑟𝑒𝑧𝑎 = 𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑑𝑒 𝑙𝑎 𝑠𝑒𝑚𝑖𝑙𝑙𝑎 𝑝𝑢𝑟𝑎

𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑖𝑛𝑖𝑐𝑖𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑙𝑎 𝑚𝑢𝑒𝑠𝑡𝑟𝑎


31

Dónde:

X = peso en gramos en cada repetición

n = número de repeticiones

Σ = suma de las repeticiones

Contenido de Humedad

Los materiales utilizados para llevar a cabo la prueba fueron los siguientes:

Estufa

Cajas petri.

Para esta prueba se tomaron dos muestras de 5 gr de semillas por cada especie. Seguido

a esto, se extendieron sobre las cajas petri, y se llevaron a la estufa a una temperatura

de 103 ± 2 ºC durante un periodo de 17 horas. Pasado este tiempo se registró el nuevo

peso de las semillas.

La determinación del cálculo del contenido de humedad se dio mediante la siguiente

formula:

Ensayo de Germinación

Tratamientos pregerminativos:

Para evaluar el efecto del tratamiento con AG3 sobre la germinación, las semillas fueron

sometidas a los siguientes tratamientos:

𝑆2 =𝑛(∑ 𝑥2) − (∑ 𝑥2)

𝑛(𝑛 − 1)

𝐶𝑉 = 𝑆

��× 100

𝐶𝐻(%) =𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑜𝑟𝑖𝑔𝑖𝑛𝑎𝑙 − 𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑡𝑟𝑎𝑠 𝑠𝑒𝑐𝑎𝑑𝑜 𝑒𝑛 𝑒𝑠𝑡𝑢𝑓𝑎

𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑜𝑟𝑖𝑔𝑖𝑛𝑎𝑙× 100


32

Tabla 3. Tratamientos pregerminativos utilizados para la prueba de germinación.

ESPECIE TRATAMIENTO

Caoba

(Swietenia macrophylla)

T0 = Testigo. Semilla imbibida en agua por 64 horas

T1 = Semillas imbibida en solución de ácido

giberélico a 50 ppm por 64 horas





Guayacán amarillo

(Handroanthus chrysanthus)

T0 = Testigo. Semilla imbibida en agua por 12 horas







Acondicionamiento semillas:

Se tomaron 240 semillas de Caoba (S. macrophylla) y 480 semillas de Guayacán Amarillo

(H. chrysanthus), agregando la dilución de agua y PROGIBB ® 10SP (giberelina, en la dosis

necesaria para cada tratamiento, ver Tabla 4), la cual cubría el total de las semillas. Las

semillas fueron sumergidas según el tiempo indicado por las curvas de imbibición, en

donde las semillas ganaban el doble de su peso inicial.

Tabla 4. Dosis empleada de agua y PROGIBB ® 10SP, para cada tratamiento.

ESPECIE TRATAMIENTO

0

TRATAMIENTO

1 (50 ppm)

TRATAMIENTO

2 (100 ppm)

TRATAMIENTO

3 (300 ppm)

Caoba

(Swietenia

macrophylla)

0 g /300 ml 0,15 g / 300 ml 0,3 g / 300 ml 0,9 g / 300 ml

Guayacán

amarillo

(Handroanthus

chrysanthus)

0 g / 150 ml 0,075 g / 150 ml 0,15 g / 150 ml 0,45 g / 150 ml


33

Diseño experimental

Los tratamientos fueron dispuestos en un Diseño Experimental Simple Completamente

al Azar, en donde el factor correspondió a la concentración de ácido giberélico (0, 50,

100 y 300 ppm) para un total de 4 tratamientos, con tres repeticiones, correspondiendo

a 12 unidades experimentales (Figura 11). El montaje de la prueba de germinación se

realizó en bandejas de germinación con tapa (dimensiones: 6 cm de alto x 17 cm de ancho

x 15 cm de largo), con turba humedecida. En cada unidad experimental se utilizaron 20

semillas para la especie Caoba (S. macrophylla) y 40 semillas para Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) como se observa en la Figura 12.

Figura 11. Distribución de los tratamientos del diseño experimental para cada especie.


34

Figura 12. a) Distribución de las semillas de Caoba (S. macrophylla) por unidad experimental. b) Distribución de las

semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) por unidad experimental.

Análisis de varianza

El modelo lineal utilizado para interpretar el experimento en un Diseño Experimental

Simple Completamente al Azar está dado por la siguiente relación:

𝛾𝑖𝑗 = 𝜇𝑖𝑗 + 𝜏𝑖 + 𝜀𝑖𝑗

Donde:

𝛾𝑖𝑗 = Variables respuestas asociada al i-ésimo tratamiento en la j-ésima posición.

𝜇𝑖𝑗 = Efecto de la media.

𝜏𝑖 = Efecto del i-ésimo tratamiento.

𝜀𝑖𝑗= Efecto del error experimental por aleatoriedad de la unidad ij.

La secuencia lógica de cálculo del análisis de varianza comprende el cálculo de los grados

de libertad, suma de cuadrados, cuadrados medios como se muestra en la siguiente

tabla:


35

Tabla 5. Modelo de ANAVA.

FUENTES DE

VARIACIÓN

GRADOS DE

LIBERTAD

SUMA DE

CUADRADOS

CUADRADO

S MEDIOS F CALCULADA

Tratamiento t – 1 ∑ 𝑥𝑖

2

𝑟− ∁

𝑆𝐶𝜏

𝑔𝑙 𝜏

𝐶𝑀𝜏

𝐶𝑀 𝜀

Error experimental t (r – 1) 𝑆𝐶𝑇 − 𝑆𝐶𝜏 𝑆𝐶𝜀

𝑔𝑙 𝜀 ⋯

Total tr – 1 [∑(𝑥𝑖𝑗)2)] − ∁ ⋯ ⋯

Donde C=(∑ 𝑋𝑖𝑗)

𝑡𝑟

Variables

Con los datos del muestreo se calculó el Porcentaje de Germinación (PG), Tiempo Medio

de Germinación (TMG), Energía Germinativa (EG), Velocidad Media de Germinación

(VMG) y el Valor de Germinación (las ecuaciones de cálculo se presentan en la Tabla 6).

Tabla 6. Formulas manejadas para el cálculo de las variables de germinación.

VARIABLES ECUACIÓN

Porcentaje de germinación (%)

(Balaguera, Álvarez, & Cárdenas,

2010)

𝑃𝐺 = (𝑁

𝑁𝑆) × 100

Tiempo Medio de Germinación

(Días) (Balaguera et al., 2010) 𝑇𝑀𝐺 =

∑ 𝑁𝑖𝑇𝑖

∑ 𝑁𝑖

Energía germinativa (FAO, 1991)

% de germinación hasta el día de periodo

de energía cuando la germinación fue

máxima.

Velocidad Media de Germinación

(Semillas germinadas/día)

(Balaguera et al., 2010)

𝑉𝑀𝐺 = ∑𝑁𝑖

𝑇𝑖

Valor de Germinación (%) (FAO,

1991) VG = (∑

𝑉𝐺𝐷

𝑛) ×

𝑃𝐺

10


36

Donde:

N = número de semillas germinadas;

Ns = número de semillas sembradas;

Ni = número de semillas germinadas en el i-ésimo día;

Ti = tiempo en días, para la germinación en el i-ésimo día;

A1, A2,…, Ax = número de semillas germinadas en el día 1, en el día 2 y en el día x.

T1, T2,…, Tx = número de días entre la siembre y el día 1 de germinación, entre el día 2 y

entre el día x.

VGD = Velocidad de germinación diaria, que se obtiene dividiendo el porcentaje de

germinación acumulado por el número de días transcurridos desde la siembra

n = Número de recuentos diarios, empezando a contar a partir de la fecha de la primera

germinación

Labores culturales

Rotulación: Cada bandeja fue rotulada con el nombre de la especie, tratamiento,

repetición, fecha de siembra y posteriormente se agregó la fecha de germinación

(Figura 13).

Riego: el riego fue realizado conforme al requerimiento del sustrato, para evitar

la producción de hongos por humedad excesiva. Para esto se utilizó un

pulverizador de compresión previa.

Toma de datos: Se realizaron observaciones diarias durante 36 días,

registrándose la germinación cuando había presencia de la radícula.

Figura 13. Representación de la codificación utilizada para cada bandeja de germinación

Especie:

Fecha de siembra:

Fecha de germinación:

Tratamiento:

# Repetición:

# Semillas:


37

Figura 14. Semillas con exposicion de la radicula, primeros dias de germinacion. a) semillas de Handroanthus

chrysanthus, b) semillas de Swietenia macrophylla.

5.3.3 Viabilidad.

Prueba de Corte.

Los materiales requeridos para esta prueba fueron:

Cuchilla

Estereoscopio

Pinzas

La prueba de corte se realizó a 25 semillas con 4 repeticiones por especie, las semillas se

cortaron longitudinalmente, de forma que apareciera visible el embrión y principalmente

la radícula. Seguido a esto se clasifico cada semilla en los siguientes grupos:

Semillas de aspecto completamente sano.

Semillas de aspecto dudoso.

Semillas en mal estado o vanas.

Prueba de Tetrazolio.

Para la realización de prueba de viabilidad con Tetrazolio se utilizaron los siguientes

elementos:

Estufa de control.

Estereoscopio.

Vasos de precipitado.

Cajas Petri.


38

Pinzas.

Erlenmeyer.

Equipo de disección.

Toallas de papel.

Reactivo (Cloruro o bromuro del 2, 3,5 trifenil tetrazolio) → 10 g. de sal de

tetrazolio.

Agua destilada (1 litro).

Para esta prueba se realizaron tres réplicas de 20 semillas cada una y se siguió la

consecutiva metodología:

1. Las semillas fueron dispuestas en remojo durante 20 horas.

2. Se separó la testa de las semillas para la entrada de la solución al embrión de las

semillas. Además de esto, las semillas de Caoba (S. macrophylla) fueron

diseccionadas longitudinalmente exponiendo el embrión.

3. Se preparó la solución de sal de Tetrazolio al 1%.

4. Se sumergieron las semillas en la solución de Tetrazolio al 1 %, y fueron colocadas

en la estufa durante 5 horas a una temperatura de 30°C.

5. Posteriormente se lavaron las semillas con agua destilada y se realizó la

evaluación de los embriones de cada una de las semillas en un estereoscopio,

clasificando las semillas en las categorías de tinción propuestas por Pérez &

Argüello (1997);por último, se realizó los patrones de tinción de estas categorías.

Tabla 7. Categorías de tinción de Tetrazolio.

GRUPO DESCRIPCIÓN DE LA CATEGORÍA

Semillas viables

vigorosas

Embrión totalmente teñido

Áreas irregulares y superficiales sin teñir a nivel del cotiledón

Extremo de la radícula rojo intenso

Semillas viables poco

vigorosas

Extremo de la radícula sin teñir o rojo cereza (hasta 2 mm)

Más del 50% del cotiledón sin teñir

Área del cotiledón blanca o rojo cereza circundante al eje

Semillas no viables

Eje embrionario blanco o rojo cereza. Cotiledón teñido

Eje embrionario blanco o rojo cereza, áreas del cotiledón sin teñir

Eje embrionario blanco, área central del cotiledón sin teñir

Embrión totalmente blanco, marrón o blanco amarillento.

Fuente: Pérez & Argüello (1997)


39

VI.RESULTADOS Y ANÁLISIS

6.1 PRUEBA IMBIBICIÓN

Se realizaron las pruebas de imbibición de las semillas para determinar los tiempos

requeridos para que las semillas alcancen la fase II de emergencia. Con los datos

registrados se realizó un análisis de regresión para establecer el mejor modelo según la

especie.

El inicio de la imbibición para las semillas de Caoba (S. macrophylla) y Guayacán amarillo

(H. chrysanthus) fue rápido, detectándose que en una hora las semillas de las dos

especies habían ganado más del 50% de su peso inicial; al final del periodo de imbibición

la semilla para rehidratarse necesito de 2 a 3 veces su peso inicial (ver Anexos 1 y 2).

El modelo que se adecuo a los datos, de las dos especies fue el modelo logarítmico con

coeficientes de determinación 96,17% (Figura 15) para la especie Caoba (S. macrophylla),

y de 94,09% (¡Error! No se encuentra el origen de la referencia.Figura 16) para la especie

Guayacán amarillo (H. chrysanthus). Se determinó que el punto final de la fase I

(imbibición) de la germinacion de las semillas se presenta cuando las semillas habían

ganado el doble de su peso inicial. De modo que, la duración de la fase I para las semillas

de Caoba (S. macrophylla) es de 64 horas y para las semillas de Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) es de 12 horas de imbibición. Las semillas de Caoba (S. macrophylla) iniciaron

con un peso de 3,5 gr, logrando alcanzar un peso final de 11,24 gr; por otro lado, las

semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus), iniciaron con 0,50 gr y su medida final fue

de 1,81 gr.


40

Figura 15. Modelo de regresión polinomica cúbica del peso ganado de la semilla de Caoba (S. macrophylla) con el

paso de las horas.

Figura 16. Modelo de regresión logarítmica del peso ganado de la semilla de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) con

el paso de las horas.

6.2 PRUEBAS CALIDAD DE SEMILLAS

6.2.1. Pureza, Número de semillas, Contenido de humedad.

En la Tabla 8 se observa que las dos especies presentan un alto porcentaje de pureza, en

donde las impurezas para Caoba (S. macrophylla), fueron casi nulas debido a que la

y = 37,227ln(x) + 24,337R² = 0,9617

0,00

60,00

120,00

180,00

240,00

0 12 24 36 48 60 72 84 96 108 120 132 144 156

Can

tid

ad d

e a

gu

a im

bib

ida

(%)

Tiempo (h)

y = 47,65ln(x) + 78,508R² = 0,9409

0,00

50,00

100,00

150,00

200,00

250,00

300,00

350,00

0 6 12 18 24 30 36 42 48 54 60 66 72 78

Can

tid

ad d

e A

gu

a Im

bib

ida

(%)

Tiempo (h)


41

semilla ya se encuentra des-alada, y en el caso de las semillas de Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) las impurezas fueron alas y ramas (8,2%). El peso promedio en gramos de

mil semillas para la especie Caoba (S. macrophylla) es de 400 gr (indicando que el número

de semillas puras por kg es de 2499), para las semillas de Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) el peso de mil semillas es de 14,4 gr (el número de semillas puras por kg es

de 69.389). El contenido de humedad para las semillas de Caoba (S. macrophylla), fue del

5,44 %, y para las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) fue de 6,9 % (ver Anexos

3 y 4).

Tabla 8. Características físicas de las semillas de las dos especies en estudio.

Especie Pureza (%) Numero de semillas /

kg. Contenido de humedad (%)

Caoba 99,44 2499 5,44

Guayacán amarillo 92,6 69389 6,90

6.2.2 Germinación.

Caoba (Swietenia macrophylla)

Para las semillas de Caoba (S. macrophylla) no se presentaron diferencias significativas

(P≤0.05) entre los tratamientos, al obtenerse estadísticos de contraste mayor a 0,13, lo

que permite no rechazar la hipótesis nula (Ver Anexo 17). Para las variables evaluadas:

Porcentaje de Germinación (PG), Tiempo Medio de Germinación (TMG), Energía de

Germinación (EG), Velocidad Media de Germinación (VMG) y Valor de Germinación (VG),

se determinó su comportamiento con relación a las diferentes concentraciones (H2O, 50

ppm, 100 ppm, 300 ppm de AG3), tal como se observa en la Tabla 9.

Tabla 9. Efecto de los diferentes tratamientos sobre el Porcentaje de Germinacion (PG), Tiempo Medio de

Germinacion (TMG), Energia germinativa (EG), Velocidad Media de Germinacion (VMG) y el Valor de Germinacion en

semillas de Swietenia macrophylla.

Los valores se expresan el promedio de las 3 replicas de 20 semillas ± 𝑺𝒙.

Tratamiento PG (%) TMG

(Días) EG (%)

VMG (Semillas

ger·día-1) VG

T0 (H2O·64 h) 63 ± 8,33 14 ± 0,59 35 ± 5,77 0,90 ± 0,08 18 ± 3,67

T1 (50 ppm AG3 ·64 h) 78 ± 12,02 10 ± 2,85 60 ± 5,77 0,96 ± 0,19 24 ± 6,36

T2 (100 ppm AG3 ·64 h) 68 ± 6,66 7 ± 2,44 47 ± 9,28 0,85 ± 0,08 18 ± 3,60

T3 (300 ppm AG3 ·64 h) 83 ± 8,82 8 ± 2,01 35 ± 8,66 1,00 ± 0,12 24 ± 5,04


42

Con la anterior información se pudo elaborar la Figura 17, en donde se observa el

comportamiento de las cinco variables evaluadas bajo el efecto de los tratamientos:

Porcentaje de Germinación (PG): El tratamiento 3 (300 ppm) demostró ser el

más efectivo para esta variable con un 83% de la germinación de las semillas

tratadas, seguido del tratamiento 1 (50 ppm) con un 78% de efectividad, el

tratamiento 2 (100 ppm) alcanzo un 68%, y por último el tratamiento 0 (H2O)

resulto ser el menos efectivo con tan solo 63% de las semillas germinadas.

Tiempo Medio De Germinación (TMG): En esta variable se evalúa cuantos días

se requieren en promedio para que las semillas germinen. Por ende, el

tratamiento 2 (100 ppm) demostró ser el más efectivo frente a los demás

tratamientos al lograr la germinación de las semillas en tan solo 7 días, le sigue el

tratamiento 3 (300 ppm) con una germinación de las semillas en 8 días, el

tratamiento 1 (50 ppm) logro la germinación en 10 días, y por último el

tratamiento 0 (H2O) fue el menos efectivo al lograr la germinación de las semillas

en 14 días.

Energía de Germinación (EG): Esta variable determina el porcentaje de semillas

germinadas al momento en que la cantidad de semillas que germinan por día

llega a su máximo. En este sentido, el tratamiento 1 (50 ppm) demostró ser el

mejor con un 60% al lograr una germinación de 12 semillas en el dieciseisavo día,

le sigue el tratamiento 2 (100 ppm) con un 47% logrando una germinación de 9

semillas en el dieciseisavo día, el tratamiento 0 (H2O) con un 35% logro la

germinación de 7 semillas en el treceavo día, y por último el tratamiento 3 (300

ppm) con un 35% logro la germinación de 7 semillas en el dieciseisavo día.

Velocidad Media de Germinación (VMG): Esta variable busca determinar el

número de semillas germinadas por día, a lo que se puede inferir que

aproximadamente por día se logra la germinación de una semilla. Para efectos

de entender cuál fue el mejor tratamiento, se puede determinar que el

tratamiento 3 (300 ppm) alcanzo la germinación de 1 semilla/día, le sigue el

tratamiento 1 (50 ppm) con una germinación de 0,96 semilla/día, el tratamiento

0 (H2O) logro una germinación de 0,90 semilla/día, y por último el tratamiento 2

(100 ppm) logro la germinación de 0,85 semilla/día.

Valor de Germinación (VG): Esta variable expresa la germinación total al término

del ensayo. Por lo que se puede observar que el tratamiento 3 (300 ppm) es el

mejor con 24±5,04%, le sigue el tratamiento 1 (50 ppm) con 24±6,36%, el

tratamiento 2 (100 ppm) con 18±3,60%, y por último el tratamiento 0 (H2O) con

18±3,67%.


43

Figura 17. Efecto de los tratamientos sobre: A: Porcentaje de germinacion (PG), B: Tiempo Medio de Germinacion

(TMG), C: Energia de Germinacion (EG), D: Velocidad Media de Germinacion y E: Valor de Germinacion (VG) en

semillas de Swietenia macrophylla.

En la Figura 18 se observa el porcentaje de germinación acumulada bajo el efecto de los

diferentes tratamientos a lo largo de los Días de Siembra (DDS) para las semillas de la

especie forestal Caoba (S. macrophylla). En tal sentido se logra determinar que el

tratamiento 0 (H2O) fue el que mostro el mejor comportamiento durante los primeros

quince días, pero a partir de este día el tratamiento 3 (300 ppm) demuestra tener un

crecimiento acelerado, logrando sobrepasar los demás tratamientos en el día

diecinueve, y ser el mejor al final del periodo de evaluación con un porcentaje de

Germinación acumulada de 83,3%.


44

Figura 18. Porcentaje de germinacion acumulada de las semillas de Swietenia macrophylla, sembradas durante 26 dias

bajo los cuatro tratamiento.

En la Figura 19 se observa el efecto de los tratamientos en la Velocidad de Germinación

Diaria (VGD) para la especie Caoba (S. macrophylla). Por lo tanto se logra determinar que

el tratamiento 0 (H2O) muestra un buen comportamiento durante los primeros quince

días, sin embargo el tratamiento 3 (300 ppm) demuestra tener una conducta parecida al

del Porcentaje de germinación acumulada, al mostrar un incremento acelerado a partir

del día quince, luego sobrepasa los demás tratamientos en el día veinte en donde alcanza

la germinación de 4 semillas, y finalmente concluye el periodo de evaluación como el

mejor con 3 semillas germinadas por día.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

10 13 16 19 22 25 28

% G

erm

inac

ion

Acu

mu

lad

a

DDST0 T1 T2 T3


45

Figura 19. Efecto de los diferentes tratamientos empleados en la Velocidad de Germinacion Diaria de las semillas de

Caoba (S. macrophylla).

En resumen, el uso de Giberelinas a 300 ppm (tratamiento 3) en la especie forestal Caoba

(S. macrophylla) demostró tener los mejores resultados en las variables evaluadas para

la germinación: El Porcentaje de germinación (PG) fue de 83% en las semillas tratadas al

termino de los 26 Días de Siembra (DDS), la Velocidad Media de Germinación (VMG) fue

de 1 semilla germinada al catorceavo, el Valor de Germinación (VG) fue de 24% al término

del ensayo, y la Velocidad de Germinación Diaria (VGD) fue de 4 semillas germinadas en

el día veinte.

Guayacán amarillo (Handroanthus chrysanthus)

Los tratamientos aplicados a las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus) no

presentaron diferencias significativas (P≤0.05) entre los tratamientos, al obtenerse

estadísticos de contraste mayores a 0,37 lo que permite no rechazar la hipótesis nula

(Ver Anexo 18). Para las variables evaluadas: porcentaje de germinación (PG), tiempo

medio de germinación (TMG), energía de germinación (EG), velocidad media de

germinación (VMG) y valor de germinación (VG), se determinó su comportamiento con

relación a las diferentes concentraciones (H2O, 50 ppm, 100 ppm, 300 ppm de AG3), tal

como se observa en la Tabla 10.

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

3,5

4

4,5

10 13 16 19 22 25 28

Ve

loci

dad

de

ge

rmin

ació

n

(se

mill

as·d

ía-1

)

DDST0 T1 T2 T3


46

Tabla 10. Efecto de los diferentes tratamientos sobre el Porcentaje de Germinacion (PG), Tiempo Medio de

Germinacion (TMG), Energia germinativa (EG), Velocidad Media de Germinacion (VMG) y el Valor de Germinacion en

semillas de Handroanthus chrysanthus.

Los valores se expresan en el promedio de las 3 replicas de 40 semillas ± 𝑺��.

Tratamiento PG (%) TMG (Días) EG (%)

VMG

(Semillas

ger·día-1)

VG

T0(H2O·12 h) 40 ± 8,04 14,86 ±

2,46

14 ± 2,20 1,18 ± 0,13 5,73 ± 1,53

T1 (50 ppm AG3·12

h)

28 ± 2,89 13,22 ± 0,16 15 ± 3,82 0,87 ± 0,09 3,04 ± 0,62

T2 (100 ppm

AG3·12 h)

44 ± 8,70 15,24 ± 0,77 20 ± 6,29 1,29 ± 0,30 7,57 ± 2,96

T3 (300 ppm AG3

·12 h)

33 ± 6,82 15,55 ± 0,76 11 ± 1,67 0,94 ± 0,18 4,1 ± 1,35

Con la anterior información se pudo elaborar la Figura 20, en donde se observa el

comportamiento de las cinco variables evaluadas bajo el efecto de los tratamientos:

Porcentaje de Germinación (PG): Esta variable demostró ser más efectiva para

el tratamiento 2 (100 ppm) con el 44% de la germinación de las semillas tratadas,

seguido del tratamiento o (H2O) con el 40% de efectividad en las semillas, el

tratamiento 3 (300 ppm) con 33% de las semillas germinadas, y por último el

tratamiento 1 (50 ppm) alcanzo a tener un 28% de efectividad en las semillas

germinadas.

Tiempo Medio De Germinación (TMG): Teniendo en cuenta que esta variable

evalúa los días que se requieren en promedio para que las semillas germinen, el

tratamiento 1 (50 ppm) demostró ser el mejor al lograr la germinación de sus

semillas en 13.22 días, en seguida se encuentra el tratamiento 0 (H2O) el cual

logro la germinación de sus semillas en 14.86 días, le sigue el tratamiento 2 (100

ppm) con la germinación de sus semillas en 15.24 días, y por último se encuentra

el tratamiento 3 (300 ppm) con la germinación de sus semillas a los 15.55 días.

Energía de Germinación (EG): Esta variable determina el mayor porcentaje de

semillas germinadas al momento en que la cantidad de semillas que germinan

por día llega a su máximo. En este sentido, el tratamiento 2 (100 ppm) demostró

ser el mejor con un 20% al lograr una germinación de 8 semillas en el catorceavo


47

día, le sigue el tratamiento 1 (50 ppm) con un 15% logrando una germinación de 6

semillas en el catorceavo día, el tratamiento 0 (H20) con un 14% logro la

germinación de 5 semillas en el doceavo día, y por último el tratamiento 3 (300

ppm) con un 11% logro la germinación de 4 semillas en el doceavo día.

Velocidad Media de Germinación (VMG): Esta variable busca determinar el

número de semillas germinadas por día. El tratamiento 2 (100 ppm) alcanzo la

germinación de 1,29 semillas/día, le sigue el tratamiento 0 (H2O) con una

germinación de 1,18 semillas/día, el tratamiento 3 (300 ppm) logro una

germinación de 0,94 semilla/día, y por último el tratamiento 1 (50 ppm) logro la

germinación de 0,87 semilla/día.

Valor de Germinación (VG): Esta variable expresa la germinación total al término

del ensayo. Por lo que se puede observar que el tratamiento 2 (100 ppm) es el

mejor con 7,57±2,96%, le sigue el tratamiento 0 (H2O) con 5,73±1,53%, el

tratamiento 3 (300 ppm) con 4,1±1,35%, y por último el tratamiento 1 (50 ppm)

con 3,04±0,62%.


48

Figura 20. Efecto de los tratamientos sobre: A: Porcentaje de germinacion (PG), B: Tiempo medio de Germinacion

(TMG), C: Energia de Germinacion (EG), D: Velocidad Media de Germinacion y E: Valor de Germinacion (VG) en

semillas de Handroanthus chrysanthus.


49

En la Figura 21 se observa el porcentaje de Germinación Acumulada bajo el efecto de los

diferentes tratamientos a lo largo de los Días de Siembra (DDS) para las semillas de la

especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus). Se logra reconocer que el

tratamiento 0 (H2O) mostro el mejor comportamiento durante los primeros 13 días,

aunque a partir de este momento el tratamiento 2 (100 ppm) demuestra tener mejor

comportamiento frente a los demás, siendo este el mejor tratamiento al final del periodo

de evaluación con un porcentaje de Germinación Acumulada de 44%.

Figura 21. Porcentaje de germinacion acumulada de las semillas de Handroanthus chrysanthus, incubadas durante 36

dias bajo los cuatro tratamiento.

En la Figura 22 se observa el efecto de los tratamientos en la Velocidad de Germinación

Diaria (VGD) para la especie Guayacán amarillo (H. chrysanthus). Por lo tanto, se logra

determinar que el tratamiento 0 (H2O) muestra un buen comportamiento durante los

primeros 12 días, a partir de este día el tratamiento 2 (100 ppm) pasa a ser el mejor hasta

el día dieciocho en donde alcanzo a tener 2 semillas germinadas por día. Se debe tener

en cuenta que en el día 19 empiece haber un declive en el comportamiento de los

tratamientos, infiriendo en este sentido algún tipo de afectación en las semillas y

plántulas conocido como Damping off (ver Figura 23).

00

05

10

15

20

25

30

35

40

45

7 10 13 16 19 22 25 28 31 34 37

% G

erm

inac

ion

Acu

mu

lad

a

DDST0 T1 T2 T3


50

Figura 22. Efecto de los diferentes tratamientos empleados en la Velocidad de Germinacion Diaria (VGD) de las

semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus).

Figura 23. Ataque Damping-off a la plantula de Guayacan amarillo (H. chrysanthus).

En resumen, el uso de AG3 a 100 ppm (tratamiento 2) en la especie forestal Guayacán

amarillo (H. chrysanthus) demostró tener los mejores resultados en las variables

evaluadas para la germinación: El Porcentaje de germinación (PG) fue de 44% en las

semillas tratadas, la Energía de Germinación (EG) fue de 8 semillas germinadas al

catorceavo día, el Valor de Germinación (VG) fue de 7,57±2,96%, el Porcentaje de

Germinación Acumulada fue de 44,17% al termino de los 36 Días de Siembra (DDS), y la

Velocidad de Germinación fue de 2 semillas germinadas en el doceavo día.

0,0

0,5

1,0

1,5

2,0

2,5

7 10 13 16 19 22 25 28 31 34 37

Ve

loci

dad

de

ge

rmin

ació

n

(se

mill

as·d

ía-1

)

DDST0 T1 T2 T3


51

Sin embargo, el tiempo en el que estas germinan no resulta ser el más óptimo, por lo que

cabe destacar que no es significante el uso de AG3 a diferentes concentraciones en la

especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), ya que el Testigo demostró ser el

segundo tratamiento más efectivo frente a las variables evaluadas y tener proximidad a

los valores aportados por el mejor tratamiento (T2).

6.3 PRUEBAS DE VIABILIDAD.

6.3.1 Prueba de corte.

Swietenia macrophylla

En la Tabla 11 se muestran los resultados obtenidos en la prueba de corte de las semillas

de Caoba (S. macrophylla), diferenciándolas en los grupos según su estado (1. Semillas

de aspecto completamente sano, 2. Semillas de aspecto dudoso y 3. Semillas en mal

estado o vanas). Para la categoría 1 se presentó el 100% de las semillas en las cuatro

repeticiones, esto se determinó al no tener en esta prueba semillas con endosperma de

aspecto lechoso, mohoso o podrido.

Tabla 11. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba de corte de las semillas de Caoba (S. macrophylla).

Clasificación Categoría (% de semillas)

1 2 3

Semillas viables 100 - -

Semillas no viables - 0 0

Handroanthus chrysanthus

La Tabla 12 muestra los resultados obtenidos en la prueba de corte para las semillas de

Guayacán amarillo (H. chrysanthus). En la Categoría 1 que corresponde a las semillas

viables al presentar un aspecto completamente sano. El total de semillas no viables fue

del 24.75% al calificar las semillas en las Categorías 2 y 3, al presentar el embrión podrido,

ausente o de color negro.


52

Tabla 12. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba de corte de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus).


1 2 3

Semillas viables 75.25 ± 3.98 - -

Semillas no viables - 7.5 ± 1.97 17.25 ± 4.75

6.3.2 Prueba de tetrazolio.


En la Figura 24 se observa la representación del corte realizado a la semilla de Caoba (S.

macrophylla), con la finalidad de lograr exponer el embrión a la solución de tetrazolio.

Figura 24. Representación grafica de la morfologia de las semillas de Caoba.

A continuación, en la Tabla 13 se observan los patrones de tinción determinados en

laboratorio, para las semillas de Caoba (S. macrophylla).

Tabla 13. Patrones de tincion para la interpretacion de los resultados de la prueba de tetrazolio en semillas de Caoba

(Swietenia macrophylla).

CLASE VIABILIDAD DESCRIPCIÓN ILUSTRACIÓN

1 Viables

Embrión y endosperma con

tinción rojiza total. Semilla

con tejido homogéneo.

2 Viables

Áreas irregulares y

superficiales sin teñir a nivel

del endosperma, embrión

con tinción uniforme.


53

3 No viables Eje embrionario blanco o rojo

cereza. Endosperma teñido.

Teniendo en cuenta la clasificación de las semillas por su viabilidad, se generó la Tabla 14,

en donde se pudo determinar que el 95% de las semillas son viables (80% dentro de la

categoría 1, 15% dentro de la categoría 2) lo cual nos indica que es un alto porcentaje de

viabilidad para la especie forestal Caoba (S. macrophylla).

Tabla 14. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba topografica de tetrazolio de las semillas de Caoba (S.

macrophylla).


1 2 3

Semillas viables 80 ± 2.89 15 ± 2.89 -

Semillas no viables - - 5 ± 2.89


Para la semilla de Guayaca amarillo (H. chrysanthus), se retiró la testa dejando expuesto

el embrión, como se observa en la Figura 25.

Figura 25. Representación grafica de la morfologia de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus).

A continuación, en la Tabla 15 se observan los patrones de tinción determinados en

laboratorio, para las semillas de Guayacán amarillo (H. chrysanthus).


54

Tabla 15. Patrones de tincion para la interpretacion de los resultados de la prueba de tetrazolio en semillas de

Guayacán amarillo (Handroanthus chrysanthus)

CATEGORÍA VIABILIDAD DESCRIPCIÓN ILUSTRACIÓN

1 Viables

Embrión

totalmente

teñido.

2 Viables

Áreas

irregulares

sin teñir.

Extremo de la

radícula rojo

intenso.

3 Dudosas

Extremo de la

radícula sin

teñir, negra.

4 No viables

Más del 50%

del cotiledón

sin teñir.

5 No viables

Eje

embrionario

blanco o rojo

cereza.

6 No viables

Embrión

totalmente

blanco.

7 No viables

Embrión

totalmente

negro.

Teniendo en cuenta la clasificación de las semillas por su viabilidad, se generó la Tabla 16,

en donde se logró determinar que el 36,67 de las semillas son viables (26% dentro de la


55

categoría 1, 10% dentro de la categoría 2), indicando en este sentido una baja viabilidad

para esta especie forestal, al tener en cuenta que las semillas no viables alcanzaron un

63%.

Tabla 16. Porcentajes de viabilidad mediante la prueba topografica de tetrazolio de las semillas de Guayacan amarillo

(H. chrysanthus).


1 2 3 4 5 6 7

Semillas

viables 26.67 ± 6.01 10 ± 0.0 - - - - -

Semillas no

viables - - 18.33 ± 1.67 15 ± 5.77 3.3 ± 3.3 16.67 ± 6.67 10 ± 5

6.4. RELACIÓN PRUEBA DE GERMINACIÓN VS. PRUEBA DE VIABILIDAD.


Las diferentes pruebas permiten establecer una relación entre los resultados obtenidos

en las pruebas de germinación y viabilidad (corte y tetrazolio) para la especie forestal

Caoba (S. macrophylla). En la Figura 26, se puede observar que para el mejor

Tratamiento, siendo este el 3 (concentración de Giberelinas a 300 ppm) la prueba de

Corte sobrestima en 17% la prueba de Germinación, mientras que la prueba de Tetrazolio

sobrestima en un 12% los resultados obtenidos en la prueba de Germinación, además de

esto se puede reconocer que el tratamiento 3 es el mejor al alcanzar el mayor porcentaje

de germinación en comparación con los otros tratamientos.

De acuerdo con lo anterior, el análisis de Viabilidad demuestra ser fiable ante los

resultados obtenidos. Por ende, la prueba de Tetrazolio es factible emplearla para

determinar la viabilidad en las semillas de la especie forestal Caoba (S. macrophylla).


56

Figura 26. Porcentajes de germinacion de las semillas de Caoba (S. macrophylla) para cada prueba realizada.


En la Figura 27¡Error! No se encuentra el origen de la referencia., se puede observar los

porcentajes de germinación entre los diferentes tratamientos y la relación que estos

tienen con las pruebas de viabilidad (corte y tetrazolio) para la especie forestal Guayacán

amarillo (H. chrysanthus). Se infiere que el tratamiento 2 (concentración de AG3 a 100

ppm) es el que logra mayor porcentaje de germinación (44,17%) en comparación con los

otros tratamientos, además de ello se logra determinar que la prueba de Corte

sobreestima este resultado en un 31,08%, y la prueba de tetrazolio la subestima en un

8,17%.

Se debe reconocer que durante la prueba de Tetrazolio se presentó una oxidación en la

mayoría de las semillas evaluadas para la especie forestal Guayacán amarillo (H.

chrysanthus), lo que da muestra del bajo porcentaje en su evaluación (36%) y por ende

no es recomendable emplearla para esta especie. Por el contrario, la prueba de corte

demuestra ser más factible (75,25%) para determinar la viabilidad de las semillas.

T0 T1 T2 T3

PG (%) 63,33 78,33 68,33 83,33

PVcorte(%) 100 100 100 100

PVtz(%) 95,00 95,00 95,00 95,00

0,00

20,00

40,00

60,00

80,00

100,00

120,00

% D

E G

ER

MIN

AC

IÓN

PRUEBAS


57

Figura 27. Porcentajes de germinacion de las semillas de Guayacan amarillo (H. chrysanthus) para cada prueba

realizada.

T0 T1 T2 T3

PG (%) 40,00 27,50 44,17 33,33

PVcorte(%) 75,25 75,25 75,25 75,25

PVtz(%) 36,00 36,00 36,00 36,00

0,00

10,00

20,00

30,00

40,00

50,00

60,00

70,00

80,00

% D

E G

ER

MIN

AC

IÓN

PRUEBAS


58

VII. DISCUSIÓN

7.1 PRUEBA DE IMBIBICIÓN

Para la especie forestal Caoba (S. macrophylla), el presente estudio permitió evidenciar

por medio de la curva de imbibición que, a la primera hora de inmersión de las semillas

en agua, estas habían ganado más del 60% de su peso inicial, así mismo a las 64 horas las

semillas ganan el doble de su peso inicial lo que permite estimar que es ahí en donde se

debe establecer la fase de imbibición. Por su parte, Alvarenga & Flores (1988) evaluaron

la germinación de esta especie, determinando en su estudio que el tiempo de imbibición

de las semillas es de 48 horas, tiempo al cual la semilla aumenta de volumen y el micrópilo

y el hilo se ensanchan.

En el caso de la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), al inicio de la

evaluación se registró un peso inicial en las semillas de 0,50 gr, a la primera hora las

semillas absorbieron más del 70 % de su peso inicial, y es a las doce horas de inmersión

donde las semillas alcanzan un peso de 1,08 gr, ganando así aproximadamente el doble

de su peso inicial. En comparación, Castro & Roa (2006) trabajaron con las semillas de

Flor morado (Tabebuia rosea) especie forestal que también pertenece a la familia

Bignoniácea, determinando que al principio las semillas pesaron 0,34 gr y alcanzaron su

punto de estabilización en la prueba de imbibición al cabo de 19 de horas con un peso de

1,13 gr, por lo tanto la semillas ganaron un peso de 0,97 gr (285% del peso inicial) .

7.2 PRUEBAS DE CALIDAD DE SEMILLAS

7.2.1 Pureza, numero de semillas, contenido de humedad.

En la especie forestal Caoba (S. macrophylla), el estudio de estas pruebas de calidad

permite reconocer que las semillas presentan un alto porcentaje de Pureza debido a que

las semillas ya se encontraban des-aladas, el peso promedio en gramos de mil semillas

fue de 400 gr de manera que el Número de semillas puras por kg es de 2499, y el

Contenido de humedad para las semillas fue de 5,44%. Estos resultados se pueden

comparar con lo reportado por otros autores:

Peso: Según el CATIE (1997) el número de semillas por kg varía entre 1800 y 2500,

dato aproximado al que registra Cárdenas et al. (2015): un kg de semilla puede


59

contener alrededor de 1300 a 2000 semillas. Rodríguez & Nieto (1999)

determinan que el peso de 1000 semillas es de 771,64 gr y por kg son un total de

1283 semillas. Negreros et al. (2014) indican que el peso por semilla en promedio

es de 0,66 gr tomando como referente 1500 semillas por kilo.

Pureza: el CATIE (1997) reporta que el porcentaje de pureza es del 95 al 99%, al

igual que los resultados obtenidos por Samaniego et al. (1994) que fue de 98,85%.

En contraste Rodriguez & Nieto (1999) indican que el porcentaje de pureza es de

84,26%.

Contenido de humedad: Varía entre el 9 a 12 % (CATIE, 1997). Por otro lado

Rodriguez & Nieto (1999) registran que el contenido de humedad es de 59,19%, a

pesar de que Samaniego et al. (1994) reporta que el contenido de humedad es de

4,8%.

Para la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), los resultados encontrados

en este estudio dejan ver que la Pureza en las semillas fue de 92,6% en donde las

impurezas estaban determinadas por las alas de las semillas y las ramitas que venían con

ellas, el peso promedio en gramos de mil semillas fue de 14,4 gr, por lo que el Número de

semillas puras por kg fue de 69389, y el Contenido de humedad para las semillas fue de

6,90%. En tal sentido, los anteriores resultados se pueden comparar con lo reportado por

otros autores:

Peso: El CATIE (1999) reporta que por kilogramo hay de 40000 a 55000 semillas.

Siendo el peso de 1000 semillas de 21.9 gr.

Pureza: Según el CATIE (1999) la pureza de esta semilla es del 85 a 95%.

Contenido de humedad: Según el CATIE (1996), las semillas de H. chrysanthus

tienen un contenido de humedad del 7% a 9%. Sin embargo, Rodríguez & Nieto

(1999) reportan que el contenido de humedad es del 26.8%.

7.2.2 Germinación

Caoba (S. macrophylla)

El uso de Giberelinas a 300 ppm (tratamiento 3) en la especie forestal Caoba (S.

macrophylla) demostró tener los mejores resultados en las variables evaluadas para la

germinación: El Porcentaje de germinación (PG) fue de 83% en las semillas tratadas al

termino de los 26 Días de Siembra (DDS), la Velocidad Media de Germinación (VMG) fue

de 1 semilla germinada al catorceavo, el Valor de Germinación (VG) fue de 24% al término


60

del ensayo, y la Velocidad de Germinación Diaria (VGD) fue de 4 semillas germinadas en

el día veinte.

Los anteriores resultados, se pueden comparar con lo reportado por otros autores:

Samaniego et al. (1994), determinaron que para Caoba (S. macrophylla) el Porcentaje de

Germinación (PG) es de 77% al emplear agua durante 24 horas, el Valor de Germinación

(VG) es de 30,3% al término del ensayo empleando Giberelinas a 100 ppm, la Velocidad de

Germinación Diaria (VGD) es de 6 semillas germinadas en el día nueve al emplear

Giberelinas a 500 ppm.

Consecutivamente, otros autores evaluaron el Porcentaje de Germinación (PG) para

Caoba (S. macrophylla). CATIE (1997), determinaron que el PG es del 80% al 95% (sin

emplear nada en los tratamientos). Quinto et al. (2009), determinaron un PG de 76%

empleando un régimen de temperatura de 28/24 °C (día/noche) y 12 horas de luz. Acosta

et al. (2011), determinaron un PG de 92% empleando 3 ppm de Giberelinas (concentración

baja, que les dio un buen éxito).

Para Sautu et al. (1999), el Tiempo Medio de Germinación (TMG) es de 3 días, empleando

en su tratamiento sustrato de arena de rio esterilizada (100 °C por 24 horas).

Guayacán Amarillo (H. chrysanthus)

El uso de Giberelinas a 100 ppm (tratamiento 2) en la especie forestal Guayacán amarillo

(H. chrysanthus) demostró tener los mejores resultados en las variables evaluadas para

la germinación: El Porcentaje de germinación (PG) fue de 44% en las semillas tratadas, la

Energía de Germinación (EG) fue de 8 semillas germinadas al catorceavo día, el Valor de

Germinación (VG) fue de 7,57±2,96%, el Porcentaje de Germinación Acumulada fue de

44,17% al termino de los 36 Días de Siembra (DDS), y la Velocidad de Germinación fue de

2 semillas germinadas en el doceavo día.

Sin embargo, el tiempo en el que estas germinan no resulta ser el más óptimo, por lo que

cabe destacar que no es significante el uso de Giberelinas a diferentes concentraciones

en la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), ya que el Testigo demostró ser

el segundo tratamiento más efectivo frente a las variables evaluadas y tener proximidad

a los valores aportados por el mejor tratamiento (T2).


61

Los anteriores resultados, se pueden comparar con lo reportado por otros autores:

Para la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), Castro (2012) determinó que

el Porcentaje de Germinación (PG) en las semillas de esta especie es de 90% empleando

tierra agrícola. Por otro lado, Alcorcés (2002) determino que el PG en las semillas de esta

especie es de 65% al dejarlas durante 5 a 10 minutos en agua destilada, colocándolas en

capsulas de Petri con papel filtro húmedo.

Se debe mencionar que no se encontraron más referencias bibliográficas que hablen

sobre pruebas de germinación en Guayacán amarillo (H. chrysanthus), por lo tanto, se

puede hacer un análisis de las variables evaluadas en la germinación de esta especie con

las reportadas para otras especies de la familia Bignoniácea:

Handroanthus heptaphyllus: Duarte et al. (2014) obtuvieron un Porcentaje de

Germinación (PG) de 100% al poner las semillas en cámaras frías a una

temperatura de 4°C durante 1 mes, y un Tiempo Medio de Germinación (TMG) de

3,43 ± 0,92 en la germinación in vitro para las semillas almacenadas durante 24

meses.

Handroanthus albus: Shibata et al., (2012), determinaron un Porcentaje de

Germinación (PG) entre el 84% a 88%, en donde la semilla se vio favorecida por

períodos de almacenamiento de tres a seis meses.

Tabebuia rosea: Quinto et al. (2009), determinaron que el Porcentaje de

Germinación (PG) es de 37,7% empleando un régimen de temperatura de 28/24 °C

(día/noche) y 12 horas de luz. Además, Sautu et al. (1999), obtuvieron que el

Tiempo Medio de Germinación (TMG) para esta especie es de 1 día.

7.3 VIABILIDAD

7.3.1 Prueba de corte


La evaluación realizada en las semillas de la especie forestal Caoba (S. macrophylla) a

través de la prueba de corte, permitió determinar que el 100% de estas tienen un aspecto

completamente sano (categoría 1), al no tener en esta prueba, semillas con endospermo

de aspecto lechoso, mohoso o podrido. En contraste, Samaniego et al. (1994),


62

determinaron 81% de semillas viables a través de la prueba de corte, en donde evaluaron

la forma, turgencia, color y aspecto del embrión.

Guayacán amarillo (H. chrysanthus)

Para la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), la prueba de corte permitió

reconocer que las semillas evaluadas se pueden clasificar en las tres categorías

establecidas para este estudio, según su estado (1. Semillas de aspecto completamente

sano, 2. Semillas de aspecto dudoso y 3. Semillas en mal estado o vanas). Por lo anterior

se debe mencionar que el 75,25% de las semillas son viables (al estar dentro de la

categoría 1), y el 24,75% no son viables (al estar dentro de la categoría 2 y 3).

Se debe tener en cuenta que, en la revisión de literatura no se encontraron referentes

para esta prueba de corte en la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus), por

lo que este estudio se considera un aporte al paquete tecnológico de la especie.

7.3.2 Prueba de tetrazolio


La prueba de tetrazolio realizada en la especie forestal Caoba (S. macrophylla) permitió

determinar que el 95% de las semillas son viables (80% dentro de la categoría 1, y 15%

dentro de la categoría 2) lo cual nos indica que es un alto porcentaje de viabilidad para

esta especie. Samaniego et al. (1994), obtuvieron un 82,5% de viabilidad a través de la

prueba de tetrazolio, en donde emplearon la tinción con tetrazolio al 0.1%, sumergiendo

las semillas en esta solución por 3 horas en un lugar oscuro a 30°C de temperatura. Por

otro lado, Quinto et al. (2009) obtuvieron un 94% de semillas viables al emplear la prueba

de tinción de tetrazolio al 1% en 100 semillas puras de esta especie, al exponerlas durante

24 horas en cajas de Petri, envueltas en papel aluminio e introducidas en una cámara de

ambiente controlado y temperatura constante de 30 °C.


En la especie forestal Guayacán amarillo (H. chrysanthus) la prueba de tetrazolio permitió

reconocer una baja viabilidad de sus semillas con 36,67% (26% dentro de la categoría 1,

10% dentro de la categoría 2), las semillas no viables alcanzaron un porcentaje de 63,33%.


63

De nuevo, cabe mencionar que no se encontraron referentes bibliográficos que en este

caso hablaran de la prueba de tetrazolio en la especie forestal Guayacán amarillo (H.

chrysanthus), destacándose nuevamente estos resultados como un aporte en el paquete

tecnológico de la especie para determinar su viabilidad con esta prueba. Esto nos

permite comparar los resultados obtenidos en este estudio, con lo reportado por otros

autores para otras especies de la familia Bignoniácea:

Tabebuia rosea: Castro & Roa (2006) determinaron que en la prueba de viabilidad

con Tetrazolio las semillas no imbibidas en agua destilada por 13 horas es de 53%

y en semillas imbibidas es de 83,3%. Quinto et al. (2009), obtuvieron un 99% de

semillas viables a través de la tinción con tetrazolio (1 %) sobre 100 semillas puras,

con exposición de 24 horas en cajas de petri, envueltas en papel aluminio e

introducidas en una cámara de ambiente controlado y temperatura constante de

30 °C.

Tabebuia aurea: Morbeck et al. (2006) establecieron que las semillas recién

cosechadas presentan una viabilidad de 94%, al ser evaluadas con la prueba de

tetrazolio al 0,1%, manteniéndolas durante 24 horas en la oscuridad y a una

temperatura de 28 °C.

Handroanthus heptaphyllus: Duarte et al. (2014), obtuvieron 100% de viabilidad

por medio de la prueba de tetrazolio.


64

VIII. CONCLUSIONES


La prueba de imbibición permite reconocer que en la primera hora las semillas

ganan el 61 % de su peso inicial, lo que da a entender que el embrión ya cuenta con

la rehidratación necesaria de proteínas, y por tanto las semillas están listas para

ser sembradas y así comenzar con la fase de germinación.

Se determina que el periodo de imbibición para esta especie es a las 64 horas.

Aunque no se presentaron diferencias significativas entre los tratamientos, se

logra determinar que el porcentaje de germinación se vio influenciado

positivamente con la imbibición de las semillas de Caoba (S. macrophylla) en AG3.

En este sentido, se obtuvo una germinación del 83% en las semillas tratadas con

300 ppm de AG3 (Tratamiento 3) durante 64 horas.

A través de la prueba de corte se determinó que el 100% de las semillas de esta

especie son viables, sobreestimando en un 17% los valores obtenidos en la prueba

de germinación (83%).

Mediante la prueba de tinción con Tetrazolio se reconoce que el 95% de las

semillas son viables, por lo que se sobreestima en un 12% los resultados obtenidos

en la prueba de germinación (83%).

Se determinaron tres patrones de tinción según la prueba de tetrazolio en esta

especie, siendo las clases 1 y 2 las que representan las semillas viables, y la clase 3

aquellas que no son viables.

Los patrones de tinción determinados en este estudio se ajustan a los valores de

germinación obtenidos para esta especie.


La prueba de imbibición permite reconocer que en la primera hora las semillas

ganan el 72 % de su peso inicial, lo que da a entender que el embrión ya cuenta

con la rehidratación necesaria de proteínas, y por tanto las semillas están listas

para ser sembradas y así comenzar con la fase de germinación.

Se determina que el periodo de imbibición para esta especie es a las 12 horas.

Los tratamientos implementados en las semillas de Guayacán amarillo (H.

chrysanthus) no presentaron diferencias significativas; sin embargo, el uso de AG3

a una concentración de 100 ppm (Tratamiento 2) durante 12 horas, genero el


65

mayor porcentaje de germinación (44%), resultado que no demuestra mayor

relevancia en comparación con el uso de agua (Tratamiento 0) que logró un

porcentaje de germinación de 40%, demostrando que el uso de AG3 en esta

especie es irrelevante.

A través de la prueba de corte se determina que el 75% de las semillas de esta

especie son viables, sobreestimando en un 31 % los valores obtenidos en la prueba

de germinación (44%).

A través de la prueba de tinción con Tetrazolio se reconoce que el 36% de las

semillas son viables, por lo que se subestima en un 8% los resultados obtenidos

en la prueba de germinación (44%).

La prueba de tinción con tetrazolio permitió determinar siete clases de tinción.

Siendo las clases 1 y 2 las que representan las semillas viables, la clase 3 las semillas

de aspecto dudoso, y las clases 4, 5, 6, y 7 aquellas que no son viables.

Los patrones de tinción determinados en este estudio, se ajustan a los valores de

germinación obtenidos para esta especie.


66

IX. RECOMENDACIONES


Se recomienda realizar ensayos que evalúen el porcentaje de germinación cuando

las semillas han sido imbibidas solamente una hora. Debido a que en este estudio

se pudo demostrar que las semillas ya habían ganado más de la mitad de su peso

inicial en una hora de inmersión.

Se sugiere continuar evaluando la incidencia que tiene el AG3 a diferentes

concentraciones para esta especie.

Se recomienda emplear el patrón de tinción con tetrazolio para el análisis de

viabilidad en las semillas de esta especie.


Se reconoce la necesidad de adelantar ensayos para esta especie, en donde se

evalúen los porcentajes de germinación alcanzados por las semillas cuando han

sido imbibidas una hora. Esto, considerando que en este estudio se logró

determinar que a la hora de imbibición las semillas habían ganado el 70% de su

peso inicial.

No se recomienda el uso de AG3 para esta especie, teniendo en cuenta que los

resultados derivados de este estudio permiten reconocer un comportamiento

similar entre el mejor tratamiento que empleo AG3 y el testigo que no las empleó.

Se recomienda emplear el patrón de tinción con tetrazolio para el análisis de

viabilidad en las semillas de esta especie.

Para evitar la afectación en las semillas por damping-off, se recomienda emplear

medidas de manejo que ayuden a controlar la humedad al interior del ensayo y se

sugiere realizar una adecuada esterilización de las herramientas empleadas en el

mismo.


67

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XI. ANEXOS

Anexo 1. Prueba de imbibicion semillas de Caoba.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE IMBIBICIÓN

NOMBRE CIENTÍFICO Swietenia macrophylla FECHA ANÁLISIS 09/11/2016

NOMBRE COMÚN Caoba INICIO ANÁLISIS 7:20:00 p. m.

Repetición 1 Peso inicial 3,5 Repetición 2 Peso inicial 3,6032

# Hora Peso Final Tiempo Peso # Hora Peso Final Tiempo Peso

1 20:20:00 6,0599 1 2,5599 1 21:10:00 5,4643 1 1,8611

2 21:20:00 6,4686 2 2,9686 2 22:10:00 5,9098 2 2,3066

3 22:20:00 6,7218 3 3,2218 3 23:10:00 6,0923 3 2,4891

4 23:20:00 6,8892 4 3,3892 4 0:10:00 6,336 4 2,7328

5 0:20:00 7,038 5 3,538 5 1:10:00 6,5138 5 2,9106

6 1:20:00 7,2025 6 3,7025 6 2:10:00 6,6388 6 3,0356

7 2:20:00 7,324 7 3,824 7 3:10:00 6,7493 7 3,1461

8 3:20:00 7,4735 8 3,9735 8 4:10:00 6,8215 8 3,2183

9 4:20:00 7,5086 9 4,0086 9 5:10:00 6,8827 9 3,2795

10 5:20:00 7,6885 10 4,1885 10 6:10:00 6,9905 10 3,3873

11 6:20:00 7,7744 11 4,2744 11 7:10:00 7,0561 11 3,4529

12 7:20:00 7,864 12 4,364 12 8:10:00 7,1093 12 3,5061

13 8:20:00 7,9369 13 4,4369 13 9:10:00 7,1534 13 3,5502

14 9:20:00 8,0033 14 4,5033 14 10:10:00 7,2302 14 3,627

15 10:20:00 8,1508 15 4,6508 15 11:10:00 7,2881 15 3,6849

16 11:20:00 8,1313 16 4,6313 16 12:10:00 7,3334 16 3,7302

17 12:20:00 8,1836 17 4,6836 17 13:10:00 7,4678 17 3,8646

18 13:20:00 8,2809 18 4,7809 18 14:10:00 7,4782 18 3,875

19 14:20:00 8,3535 19 4,8535 19 15:10:00 7,6063 19 4,0031

20 15:20:00 8,4453 20 4,9453 20 16:10:00 7,7033 20 4,1001

21 16:20:00 8,5963 21 5,0963 21 17:10:00 7,7732 21 4,17

22 17:20:00 8,646 22 5,146 22 18:10:00 7,8963 22 4,2931

23 18:20:00 8,762 23 5,262 23 19:10:00 8,0118 23 4,4086

24 19:20:00 8,8461 24 5,3461 24 20:10:00 8,0385 24 4,4353


74

25 20:20:00 8,9132 25 5,4132 25 21:10:00 8,082 25 4,4788

26 21:20:00 8,9742 26 5,4742 26 22:10:00 8,2198 26 4,6166

27 22:20:00 9,1006 27 5,6006 27 23:10:00 8,3383 27 4,7351

28 23:20:00 9,2511 28 5,7511 28 7:10:00 8,6429 34 5,0397

35 7:20:00 9,6677 35 6,1677 35 8:10:00 8,6979 35 5,0947

36 8:20:00 9,626 36 6,126 36 9:10:00 8,704 36 5,1008

37 9:20:00 9,7587 37 6,2587 37 10:10:00 8,7833 37 5,1801

38 10:20:00 9,7675 38 6,2675 38 11:10:00 8,8286 39 5,2254

40 11:20:00 9,8796 40 6,3796 40 12:10:00 8,8793 40 5,2761

41 12:20:00 9,8664 41 6,3664 41 13:10:00 8,9504 41 5,3472

42 13:20:00 9,9155 42 6,4155 42 14:10:00 8,9668 42 5,3636

43 14:20:00 9,9514 43 6,4514 43 15:10:00 8,9745 43 5,3713

44 15:20:00 9,9557 44 6,4557 44 16:10:00 8,9997 44 5,3965

45 16:20:00 10,0145 45 6,5145 45 21:10:00 9,2067 49 5,6035

50 21:20:00 10,2452 50 6,7452 50 22:10:00 9,2339 50 5,6307

51 22:20:00 10,2788 51 6,7788 51 0:10:00 9,2747 52 5,6715

53 0:20:00 10,3414 53 6,8414 53 8:10:00 9,4276 60 5,8244

61 8:20:00 10,497 61 6,997 61 9:10:00 9,4791 61 5,8759

62 9:20:00 10,4855 62 6,9855 62 10:10:00 9,4648 62 5,8616

63 10:20:00 10,4991 63 6,9991 63 11:10:00 9,4872 63 5,884

64 11:20:00 10,5436 64 7,0436 64 12:10:00 9,492 64 5,8888

65 12:20:00 10,5444 65 7,0444 65 14:10:00 9,4662 66 5,863

67 14:20:00 10,5786 67 7,0786 67 16:10:00 9,5161 68 5,9129

69 16:20:00 10,576 69 7,076 69 18:10:00 9,5843 70 5,9811

71 18:20:00 10,7109 71 7,2109 71 22:10:00 9,664 74 6,0608

75 22:20:00 10,7189 75 7,2189 75 8:10:00 9,8301 85 6,2269

85 8:20:00 10,8959 85 7,3959 85 13:10:00 10,1543 89 6,5511

90 13:20:00 11,1638 90 7,6638 90 16:10:00 10,1139 92 6,5107

93 16:20:00 11,1816 93 7,6816 93 17:10:00 10,1458 93 6,5426

94 17:20:00 11,1813 94 7,6813 94 19:10:00 10,1838 95 6,5806

96 19:20:00 11,2641 96 7,7641 96 23:10:00 10,2075 99 6,6043

100 23:20:00 11,2681 100 7,7681 100 10:10:00 10,3359 110 6,7327

111 10:20:00 11,3971 111 7,8971 111 11:10:00 10,3231 111 6,7199

112 11:20:00 11,3565 112 7,8565 112 12:10:00 10,3437 112 6,7405

113 12:20:00 11,3957 113 7,8957 113 14:10:00 10,3565 114 6,7533


75

115 14:20:00 11,3991 115 7,8991 115 15:10:00 10,3464 115 6,7432

116 15:20:00 11,396 116 7,896 116 16:10:00 10,3712 116 6,768

117 16:20:00 11,4342 117 7,9342 117 17:10:00 10,3906 117 6,7874

118 17:20:00 11,4913 118 7,9913 118 18:10:00 10,4292 118 6,826

119 18:20:00 11,4775 119 7,9775 119 19:10:00 10,4063 119 6,8031

120 19:20:00 11,4835 120 7,9835 120 20:10:00 10,4588 120 6,8556

121 20:20:00 11,5148 121 8,0148 121 21:10:00 10,4941 121 6,8909

122 21:20:00 11,5233 122 8,0233 122 23:10:00 10,4847 123 6,8815

123 22:20:00 11,5329 123 8,0329 123 6:10:00 10,592 130 6,9888

124 23:20:00 11,5797 124 8,0797 124 8:10:00 10,558 132 6,9548

131 6:20:00 11,6421 131 8,1421 131 9:10:00 10,5555 133 6,9523

133 8:20:00 11,6446 133 8,1446 133 10:10:00 10,492 134 6,8888

134 9:20:00 11,6828 134 8,1828 134 11:10:00 10,5039 135 6,9007

135 10:20:00 11,6199 135 8,1199 135 12:10:00 10,5657 136 6,9625

136 11:20:00 11,6539 136 8,1539 136 13:10:00 10,5058 137 6,9026

137 12:20:00 11,6184 137 8,1184 137 15:10:00 10,5957 139 6,9925

138 13:20:00 11,5931 138 8,0931 138 16:10:00 10,6113 140 7,0081

140 15:20:00 11,7164 140 8,2164 140 17:10:00 10,56 141 6,9568

141 16:20:00 11,6616 141 8,1616 141 18:10:00 10,5993 142 6,9961

142 17:20:00 11,6775 142 8,1775 142 19:10:00 10,645 143 7,0418

143 18:20:00 11,7041 143 8,2041 143 20:10:00 10,59 144 6,9868

144 19:20:00 11,728 144 8,228 144 7:10:00 10,6804 155 7,0772

145 20:20:00 11,7139 145 8,2139 145 8:10:00 10,6641 156 7,0609

156 7:20:00 11,8267 156 8,3267

157 8:20:00 11,7551 157 8,2551


76

Anexo 2. Prueba de imbibicion semillas de Guayacan amarillo.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE IMBIBICIÓN

NOMBRE CIENTÍFICO Handroanthus chrysanthus FECHA ANÁLISIS 17/11/2016

NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo INICIO ANÁLISIS 10:30:00 a. m.

Repetición 1 Peso inicial 0,5042 Repetición 2 Peso inicial 0,5054

# Hora Peso Final Tiempo Peso # Hora Peso Final Tiempo Peso

1 11:30:00 0,8339 1 0,3297 1 11:30:00 0,9051 1 0,3997

2 12:30:00 0,9474 2 0,4432 2 12:30:00 0,9682 2 0,4628

3 13:30:00 1,1005 3 0,5963 3 13:30:00 1,0532 3 0,5478

4 14:30:00 1,1942 4 0,69 4 14:30:00 1,1614 4 0,656

5 15:30:00 1,26 5 0,7558 5 15:30:00 1,239 5 0,7336

6 16:30:00 1,3491 6 0,8449 6 16:30:00 1,3177 6 0,8123

7 17:30:00 1,461 7 0,9568 7 17:30:00 1,4206 7 0,9152

8 18:30:00 1,5068 8 1,0026 8 18:30:00 1,4441 8 0,9387

9 19:30:00 1,542 9 1,0378 9 19:30:00 1,4845 9 0,9791

10 20:30:00 1,5391 10 1,0349 10 20:30:00 1,5185 10 1,0131

11 21:30:00 1,5883 11 1,0841 11 21:30:00 1,5525 11 1,0471

12 22:30:00 1,5864 12 1,0822 12 22:30:00 1,6187 12 1,1133

13 6:30:00 1,8011 20 1,2969 13 6:30:00 1,5021 20 0,9967

14 7:30:00 1,7785 21 1,2743 14 7:30:00 1,5026 21 0,9972

15 8:30:00 1,8758 22 1,3716 15 8:30:00 1,5122 22 1,0068

16 9:30:00 1,7905 23 1,2863 16 9:30:00 1,5287 23 1,0233

17 10:30:00 1,8171 24 1,3129 17 10:30:00 1,5301 24 1,0247

18 11:30:00 1,8513 25 1,3471 18 11:30:00 1,5466 25 1,0412

19 12:30:00 1,8668 26 1,3626 19 12:30:00 1,5628 26 1,0574

20 16:30:00 1,847 30 1,3428 20 16:30:00 1,5431 30 1,0377

21 19:30:00 1,8602 33 1,356 21 19:30:00 1,5832 33 1,0778

22 21:30:00 1,8691 35 1,3649 22 21:30:00 1,6251 35 1,1197

23 8:30:00 1,8854 46 1,3812 23 8:30:00 1,7287 46 1,2233

24 16:30:00 1,9489 54 1,4447 24 16:30:00 1,5801 54 1,0747

25 16:30:00 1,9559 79 1,4517 25 16:30:00 1,6837 79 1,1783


77

Anexo 3. Resultados y procesamiento de prueba de calidad fisica de semillas de Caoba

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE CALIDAD FÍSICA

NOMBRE CIENTÍFICO Swietenia macrophylla NOMBRE COMÚN Caoba

PUREZA PESO DE MIL SEMILLAS CONTENIDO DE HUMEDAD

Repetición A B Repetición X X^2 Muestra PH Ps

Peso inicial (gr) 50,07 49,99 1 40,7 1653,2 A 5,12 4,85

Componentes Gram. % Gram. % 2 37,5 1407,8 B 5 4,72

Semilla pura 49,79 99,44 49,61 99,23 3 40,5 1638,6

Mat. Inerte 0,28 0,55 0,38 0,76 4 39,3 1546,8 Repeticiones % del peso original

SUMA 50,07 100 49,99 100 5 40,0 1596,0 A 5,27%

Diferencia entre A y B (%) 0,20 6 40,4 1628,9 B 5,60%

Tolerancia ISTA 4 7 39,7 1576,9 Promedio 5,44%

Nuevo análisis Si No 8 42,0 1764,0 Diferencia 0,33%

X Suma 320,0 12812,3 Nuevo análisis Si No X

% PROMEDIO 99,34031544 Promedio 40,0 1601,5

(Suma X)2 102406,4001

Varianza 1,6402125

Desvesta 1,280707812

C. variación 3,201669478

C.v ≤ a 4 Si X No

Peso de mil semillas (gr) 400,01

NO. DE SEMILLAS PURAS / kg. NO. SEMILLAS PURAS + IMPUREZAS / kg.

2500 2483


78

Anexo 4. Resultados y procesamiento de prueba de calidad fisica de semillas de G. amarillo.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE CALIDAD FÍSICA

NOMBRE CIENTÍFICO Handroanthus chrysanthus NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo

PUREZA PESO DE MIL SEMILLAS CONTENIDO DE HUMEDAD

Repetición A B Repetición X X^2 Muestra PH Ps

Peso inicial (g) 5 5 1 1,421 2,018 A 5 4,65

Componentes Gram. % Gram. % 2 1,544 2,383 B 5 4,66

Semilla pura 4,63 92,6 4,55 91 3 1,406 1,977

Mat. Inerte 0,37 7,4 0,45 9 4 1,362 1,856 Repeticiones % del peso original

SUMA 5 100 5 100 5 1,463 2,139 A 7,00%

Diferencia entre A y B (%) 1,60 6 1,430 2,044 B 6,80%

Tolerancia ISTA 4 7 1,415 2,002 Promedio 6,90%

Nuevo análisis Si No 8 1,489 2,218 Diferencia 0,20%

X Suma 11,5 16,6 Nuevo análisis Si No X

% PROMEDIO 91,8 Promedio 1,4 2,1

(Suma X)2 132,9224526

Varianza 0,003134523

Desvesta 0,05598681

C. variación 3,884870393

C.v ≤ a 4 Si X No

Peso de mil

semillas (g.) 14,41

NO. DE SEMILLAS PURAS / kg. NO. SEMILLAS PURAS + IMPUREZAS / kg.

69389 63699


79

Anexo 5. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de Caoba, T0.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE GERMINACIÓN

NOMBRE

CIENTÍFICO Swietenia macrophylla

FECHA

ANÁLISIS 18/05/2017

NOMBRE COMÚN Caoba TRATAMIENTO T0 (H2O)

Fecha 18-may 19-may 20-may 21-may 22-may 23-may 24-may 25-may 26-may

Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0

Fecha 27-may 28-may 29-may 30-may 31-may 01-jun 02-jun 03-jun 04-jun

Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 0 2 3 2 1 3 2 2

B 0 0 3 4 0 0 4 0 0

C 0 0 5 4 0 0 0 0 2

Total 0 0 10 11 2 1 7 2 4

Promedio 0,0 0,0 3,3 3,7 0,7 0,3 2,3 0,7 1,3

Fecha 05-jun 06-jun 07-jun 08-jun 09-jun 10-jun 11-jun 12-jun 13-jun

Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 0 0 0 1 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 1 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


80



NOMBRE


FECHA


NOMBRE COMÚN Caoba TRATAMIENTO T1 (50 ppm)


Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 2 0 1 1 0 6 1 0

B 0 0 1 3 1 1 8 0 1

C 0 0 0 3 4 2 3 0 3

Total 0 2 1 7 6 3 17 1 4

Promedio 0,0 0,7 0,3 2,3 2,0 1,0 5,7 0,3 1,3


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 2 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 1 0 0 2 1 0 0 0

Total 2 1 0 0 2 1 0 0 0

Promedio 0,7 0,3 0,0 0,0 0,7 0,3 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


81



NOMBRE


FECHA




Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 2 1 4 1 1 4 0 1

B 0 0 3 0 2 1 3 2 2

C 0 0 0 3 0 0 4 2 0

Total 0 2 4 7 3 2 11 4 3

Promedio 0,0 0,7 1,3 2,3 1,0 0,7 3,7 1,3 1,0


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 1 0 0 0 0 0 0 0 0

B 2 1 0 0 0 0 0 0 0

C 1 0 0 0 0 0 0 0 1

Total 4 1 0 0 0 0 0 0 1

Promedio 1,3 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


82



NOMBRE


FECHA




Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 0 0 0 2 0 2 6 0

B 0 0 1 2 1 0 3 2 2

C 0 0 1 1 0 2 6 2 5

Total 0 0 2 3 3 2 11 10 7

Promedio 0,0 0,0 0,7 1,0 1,0 0,7 3,7 3,3 2,3


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 1 1 0 1 0 1 0 0 0

B 2 2 0 1 0 0 0 0 0

C 3 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 6 3 0 2 0 1 0 0 0

Promedio 2,0 1,0 0,0 0,7 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


83

Anexo 9. Resultados diarios para prueba de germinacion de las semillas de G. amarillo, T0.


NOMBRE

CIENTÍFICO

Handroanthus

chrysanthus

FECHA


NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo TRATAMIENTO T0 (H2O)


Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 1 2

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 1

Total 0 0 0 0 0 0 0 1 3

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3 1,0

Fecha 26-may 27-may 28-may 29-may 30-may 31-may 01-jun 02-jun 03-jun

Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 3 0 0 1 1 2 0 0 0

B 4 0 2 4 0 3 1 0 1

C 2 1 3 1 2 0 2 0 0

Total 9 1 5 6 3 5 3 0 1

Promedio 3,0 0,3 1,7 2,0 1,0 1,7 1,0 0,0 0,3


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 2 0 0 0 0 0 0 0 0

C 2 0 0 1 0 0 0 0 0

Total 4 0 0 1 0 0 0 0 0

Promedio 1,3 0,0 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 1 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 1 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


84



NOMBRE

CIENTÍFICO

Handroanthus

chrysanthus

FECHA


NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo TRATAMIENTO T1 (50 ppm)


Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 1

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 1

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 2 0 1 2 3 1 0 0 0

B 5 0 1 0 2 0 1 2 2

C 1 1 2 2 0 1 2 0 0

Total 8 1 4 4 5 2 3 2 2

Promedio 2,7 0,3 1,3 1,3 1,7 0,7 1,0 0,7 0,7


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 1 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 1 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


85



NOMBRE

CIENTÍFICO

Handroanthus

chrysanthus

FECHA




Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 2

Total 0 0 0 0 0 0 0 0 2

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,7


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 3 0 1 2 1 0 0 0

B 3 0 3 1 4 0 2 1 1

C 3 1 4 4 1 2 1 1 2

Total 6 4 7 6 7 3 3 2 3

Promedio 2,0 1,3 2,3 2,0 2,3 1,0 1,0 0,7 1,0


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 3 1 0 0 0 0 0 0 0

B 1 0 0 0 0 0 0 0 0

C 1 0 0 1 0 0 0 0 0

Total 5 1 0 1 0 0 0 0 0

Promedio 1,7 0,3 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 1 0

B 0 1 0 0 0 0 0 0 0

C 0 1 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 2 0 0 0 0 0 1 0

Promedio 0,0 0,7 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3 0,0


86



NOMBRE

CIENTÍFICO

Handroanthus

chrysanthus

FECHA




Días 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 1 0

B 0 0 0 0 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Total 0 0 0 0 0 0 0 1 0

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3 0,0


Días 10 11 12 13 14 15 16 17 18

Replicas

A 0 4 1 1 2 1 0 1 2

B 0 3 0 2 0 1 0 0 0

C 0 1 4 1 3 0 1 0 0

Total 0 8 5 4 5 2 1 1 2

Promedio 0,0 2,7 1,7 1,3 1,7 0,7 0,3 0,3 0,7


Días 19 20 21 22 23 24 25 26 27

Replicas

A 1 0 0 1 0 0 0 0 0

B 1 0 0 0 0 0 0 0 0

C 2 1 3 0 0 0 0 0 0

Total 4 1 3 1 0 0 0 0 0

Promedio 1,3 0,3 1,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0


Días 28 29 30 31 32 33 34 35 36

Replicas

A 0 0 0 0 0 0 0 0 0

B 0 0 0 1 0 0 0 0 0

C 0 0 0 0 0 0 0 0 1

Total 0 0 0 1 0 0 0 0 1

Promedio 0,0 0,0 0,0 0,3 0,0 0,0 0,0 0,0 0,3


87

Anexo 13. Registros prueba de corte de las semillas de Caoba.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE VIABILIDAD. CORTE

NOMBRE CIENTÍFICO Swietenia macrophylla NOMBRE COMÚN Caoba

Núm. Semillas / Rep. 25

# Semilla

Repetición 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12

1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

3 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

4 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

# Semilla

Repetición 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25

1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

3 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

4 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1

Categorías

1 Semillas de aspecto completamente sano.

2 Semillas de aspecto dudoso.

3 Semillas en mal estado o vanas.


88

Anexo 14. Registros prueba de corte de las semillas de Guayacán amarillo.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE VIABILIDAD. CORTE

NOMBRE CIENTÍFICO Handroanthus chrysanthus NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo

Núm. semillas / Rep. 25

# Semillas

Repetición 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12

1 1 1 1 1 1 1 3 1 1 1 2 1

2 1 1 1 1 1 1 3 1 1 3 2 1

3 2 1 1 1 1 1 1 1 1 3 1 2

4 1 1 1 1 1 1 3 1 1 1 1 3

# Semillas

Repetición 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25

1 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 3 1 1

2 1 1 3 3 1 1 3 1 3 1 3 1 1

3 1 1 1 3 3 3 1 1 1 1 2 1 1

4 3 1 1 1 1 1 1 3 1 1 1 1 1

Categorías

1 Semillas de aspecto completamente sano.

2 Semillas de aspecto dudoso.

3 Semillas en mal estado o vanas.


89

Anexo 15. Registros prueba de tetrazolio de las semillas de Caoba.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE VIABILIDAD. TETRAZOLIO

NOMBRE CIENTÍFICO Swietenia macrophylla

NOMBRE COMÚN Caoba

Núm. de semillas / Rep. 20

1

# Categoría

Observaciones 1 2 3

1 x Embrión totalmente teñido









10 x Eje Embrión blanco. Cotiledón

teñido

11 x Áreas irregulares sin teñir










2

# Categoría

Observaciones 1 2 3


teñido





90





teñido













3

# Categoría

Observaciones 1 2 3






















91

Anexo 16. Registros prueba de tetrazolio de las semillas de Guayacán amarillo.

REGISTRÓ ANÁLISIS DE LABORATORIO. PRUEBA DE VIABILIDAD. TETRAZOLIO

NOMBRE CIENTÍFICO Handroanthus chrysanthus

NOMBRE COMÚN Guayacán amarillo

Núm. de semillas / Rep. 20

1

# Categoría

Observaciones 1 2 3


2 x Extremo de la radícula sin teñir, negra



5 x Extremo de la radícula rojo intenso

6 x Embrión totalmente blanco

7 x Más del 50% del cotiledón sin teñir



10 x Eje Embrionario blanco o rojo cereza





15 x Embrión totalmente negro

16 x Eje Embrionario blanco o rojo cereza





2

# Categoría

Observaciones 1 2 3








92















3

# Categoría

Observaciones 1 2 3






















93

Anexo 17. Resultados del analisis de varianza para las diferentes variables analizadas para las semillas de Caoba (S.

macrophylla).

a. Porcentaje de Germinacion (PG); b. Tiempo Medio de Germinacion (TMG); c. Energia germinativa (EG); d.

Velocidad Media de Germinacion (VMG) y e. Valor de Germinacion (VG)

Fuente de Variación gl Sum Sq Mean Sq F value Pr(>F) SIG

a Tratamientos 3 750 250 0.992 0.444 NS

Residuales 8 2017 252.1 - - -

b Tratamientos 3 98.07 32.69 2.364 0.147 NS

Residuales 8 110.63 13.63 - - -

c Tratamientos 3 1275 425 2.488 0.135 NS

Residuales 8 1367 170.8 - - -

d Tratamientos 3 0.0407 0.01357 0.286 0.835 NS

Residuales 8 0.3799 0.04748 - - -

e Tratamientos 3 114.1 38.04 0.55 0.662 NS

Residuales 8 553.6 69.2 - - - gl - grados de libertad

Sum Sq - Suma de Cuadrados

Mean Sq – Cuadrado medio

NS – No Significativo

Anexo 18. Resultados del analisis de varianza para las diferentes variables analizadas para las semillas de Guayacan

amarillo (H. chrysanthus).

a. Porcentaje de Germinacion (PG); b. Tiempo Medio de Germinacion (TMG); c. Energia germinativa (EG); d.

Velocidad Media de Germinacion (VMG) y e. Valor de Germinacion (VG).

Fuente de Variación gl Sum Sq Mean Sq F value Pr(>F) SIG

a Tratamientos 3 468.9 156.3 1.044 0.424 NS

Residuales 8 1198 149.8 - - -

b Tratamientos 3 9.67 3.22 0.495 0.695 NS

Residuales 8 52 6.5 - - -

c Tratamientos 3 129.2 43.06 0.929 0.47 NS

Residuales 8 370.8 46.35 - - -

d Tratamientos 3 0.3590 0.1197 1.106 0.402 NS

Residuales 8 0.8655 0.1082 - - -

e Tratamientos 3 35.25 11.75 1.175 0.378 NS

Residuales 8 80.02 10 - - - gl - grados de libertad

Sum Sq - Suma de Cuadrados

Mean Sq – Cuadrado medio

NS – No Significativo

DETERMINACIÓN DE LOS PATRONES DE TINCIÓN Y...

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