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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y DE LA AGRICULTURA CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA TRABAJO DE TITULACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE INGENIERO EN BIOTECNOLOGÍA TEMA: IDENTIFICACIÓN DE BACTERIAS CAUSANTES DE INFECCIONES RESPIRATORIAS PRESENTES EN MATERIAL PARTICULADO PM10 EN EL DISTRITO METROPOLITANO DE QUITO” AUTOR: BENAVIDES CORREA DAVID LUIS DIRECTORA: M.Sc. KOCH KAISER ALMA SANGOLQUÍ 2017

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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y DE LA

AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

TRABAJO DE TITULACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL

TÍTULO DE INGENIERO EN BIOTECNOLOGÍA

TEMA: “IDENTIFICACIÓN DE BACTERIAS CAUSANTES DE

INFECCIONES RESPIRATORIAS PRESENTES EN MATERIAL

PARTICULADO PM10 EN EL DISTRITO METROPOLITANO DE

QUITO”

AUTOR: BENAVIDES CORREA DAVID LUIS

DIRECTORA: M.Sc. KOCH KAISER ALMA

SANGOLQUÍ

2017

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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y LA AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

CERTIFICACIÓN

Certifico que el trabajo de titulación, “IDENTIFICACIÓN DE BACTERIAS

CAUSANTES DE INFECCIONES RESPIRATORIAS PRESENTES EN

MATERIAL PARTICULADO PM10 EN EL DISTRITO METROPOLITANO DE

QUITO” realizado por DAVID LUIS BENAVIDES CORREA, ha sido revisado en su

totalidad y analizado por el software anti-plagio, el mismo cumple con los requisitos

teórico, científicos, técnicos, metodológicos y legales establecidos por la Universidad de

las Fuerzas Armadas-ESPE, por lo tanto me permito acreditarlo y autorizar al señor

DAVID LUIS BENAVIDES CORREA para que lo sustente públicamente.

Sangolquí ,06 de Enero 2017

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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y LA AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

AUTORÍA DE RESPONSABILIDAD

Yo, DAVID LUIS BENAVIDES CORREA, con Documento Nacional de Identificación

171950342-5, declaro que este trabajo de titulación “IDENTIFICACIÓN DE

BACTERIAS CAUSANTES DE INFECCIONES RESPIRATORIAS PRESENTES

EN MATERIAL PARTICULADO PM10 EN EL DISTRITO METROPOLITANO

DE QUITO”, ha sido desarrollado considerando los métodos de investigación existente,

así como también se ha respetado los derechos intelectuales de terneros considerándose

en las citas bibliográfica.

Consecuentemente declaro que este trabajo es de mi autoría en virtud de ello me declaro

responsable del contenido, veracidad y alcance de la investigación mencionada.

Sangolquí ,06 de Enero 2017

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DEPARTAMENTO DE CIENCIAS DE LA VIDA Y LA AGRICULTURA

CARRERA DE INGENIERÍA EN BIOTECNOLOGÍA

AUTORIZACIÓN

Yo, DAVID LUIS BENAVIDES CORREA, autorizo a la Universidad de las Fuerzas

Armadas ESPE publicar en la biblioteca Virtual de la institución el presente trabajo de

titulación, “IDENTIFICACIÓN DE BACTERIAS CAUSANTES DE

INFECCIONES RESPIRATORIAS PRESENTES EN MATERIAL

PARTICULADO PM10 EN EL DISTRITO METROPOLITANO DE QUITO” cuyo

contenido, ideas y criterios son de mi autoría y responsabilidad. .

Sangolquí ,06 de Enero 2017

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DEDICATORIA

La realización de mi proyecto de Titulación es dedicada a los motores de mi vida, los

mismos que han motivado a la culminación de mi proyecto, mis padres German Benavides

y Julia Correa, que gracias a su preocupación, confianza y “hostigamiento”, me fue posible

culminar mi tesis.

DAVID LUIS BENAVIDES CORREA

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AGRADECIMIENTO

Una vez más agradeciendo a mis padres ya que sin su apoyo no hubiese sido

posible culminar mis estudios.

A mi hermana Náthaly que me conoce más que a nadie y que junto a mi sobrino

Joaquín han sido mis cómplices desde el primer día.

A mis apoyos emocionales Marco V., Ricardo C., Jonathan R., Pamela F. y Carla

G. que con sus consejos y ocurrencias han sabido cómo mantenerme cuerdo.

A mi grupo universitario “Los Zuris” con los que hemos pasado un sinnúmero de

pruebas, y a pesar de no estar juntos todo el tiempo, hemos sabido mantener la amistad

hasta el final.

A mi Directora de Tesis Alma Koch, que más que docente, es Persona; mujer

admirable, llena de valores y virtudes. Gracias por toda la confianza y tiempo depositado

en mí, estoy seguro de que no será en vano.

A Candelaria que con su nariz húmeda ha sido mi compañera fiel en los más duros

momentos.

A la Secretaría de Ambiente del DMQ por la confianza depositada para llevar a

cabo la investigación en sus instalaciones.

Finalmente quiero agradecer de sobremanera a la Carrera de Ingeniería en

Biotecnología por ayudarme a entender que el mundo está lleno de personas egoístas y

maliciosas que sólo buscan su satisfacción personal, satisfacción que está sutilmente

disfrazada de buenas acciones; una vez más gracias por ayudarme a no ser parte de ello.

DAVID LUIS BENAVIDES CORREA

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ÍNDICE DE CONTENIDOS

CONTENIDO PÁGINA

Carátula……………………………………………………….…………………………. i

Legalización de firmas………………………….………………………………………. ii

Certificación………………………….………………………….…………...………… iii

Declaración de responsabilidad………………………….………………………..……. iv

Autorización…………………….………………………….…………………………….v

Dedicatoria……………………….………………………….…………………………..vi

Agradecimiento……………………….………………………….……………………. vii

Índice de contenidos ………………………….……………………………………... viii

Índice de figuras………………………….……………………………………………... x

Índice de tablas…………………………………………………….. …………………. xii

Índice de anexos………………………………….…………………………………… xiii

Listado de abreviaturas……………………………………………………………...…. xv

Resumen……………………………………………………………………………… xvi

Abstract……………………………………………………………………………… xvii

CAPÍTULO 1: INTRODUCCIÓN………………………...……………………………. 1

1.1 Formulación del problema…………………………………………………………... 1

1.2 Justificación del problema…………………………………...……………………… 1

1.3 Objetivos…………………………………………………………………………….. 2

1.3.1 Objetivo general…………………………………………………………………... 2

1.3.2 Objetivos específicos…………………………………………………………….... 2

1.4 Marco referencial……………………………………………………………………. 3

1.4.1 Descripción de la ciudad de Quito………………………………………………… 3

1.4.1.1 Meteorología de la ciudad de Quito…………………………………………….. 3

1.4.2 Contaminación en aire ambiente………………………………………………….. 4

1.4.2.1 Contaminantes comunes……………………………………………………….... 5

1.4.2.1.1 Material Particulado (PM)…………………………………………………….. 5

1.4.2.1.2 Óxidos de Nitrógeno (NOx)…………………………………………………... 5

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1.4.2.1.3 Dióxido de Azufre (SO2)……………………………………………………... 6

1.4.2.1.4 Monóxido de Carbono (CO)………………………………………………….. 6

1.4.2.1.5 Oxidantes Fotoquímicos………………………………………………………. 6

1.4.3 Material Particulado PM10…………………………………………………………7

1.4.3.1 Material Particulado en DMQ……………………………………………………7

1.4.4 Infecciones Respiratorias…………………………………………………………. 8

1.4.4.1 Principales bacterias causantes de Infecciones respiratorias……………………. 9

1.5 Hipótesis…………………………………………………………………………….10

CAPÍTULO 2: MATERIALES Y MÉTODOS…………………………………………11

2.1 Participantes………………………………………………………………………...11

2.2 Zona de estudio…………………………………………………………………….. 11

2.3 Período de Investigación…………………………………………………………....11

2.4 Selección de los puntos de muestreo en la localidad………………………………. 11

2.5 Recolección del Material Particulado PM10………………………………………. 13

2.6 Captación y purificación de bacterias……………………………………………… 13

2.7 Identificación de Bacterias………………………………………………………… 16

CAPÍTULO 3: RESULTADOS……………………………………………………….. 19

3.1 Cuantificación de Material Particulado PM10…………………………………….. 19

3.2 Cultivos obtenidos, clasificación…………………………………………………... 23

3.3 Pruebas Bioquímicas………………………………………………………………..27

3.4 Relación partícula-bacteria………………………………………………………….29

CAPÍTULO 4: DISCUSIÓN…………………………………………………………....34

CAPÍTULO 5: CONCLUSIONES…………………………………………………….. 42

CAPÍTULO 6: RECOMENDACIONES……………………………………………….43

CAPÍTULO 7: BIBLIOGRAFÍA……………………………………………………… 44

ANEXOS………………………………………………………………………………..50

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ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1: Ubicación de los puntos de ambiental de la Red automática del DMQ..….12

Figura 2: Esquematización de Muestreo (a), Obtención de Filtro muestreado (b),

Resuspensión de PM10 (c), y Siembra en medios de cultivo (d), de las

diferentes estaciones……………………………………………………….14

Figura 3a: Forma de aislamiento bacteriano a partir de caja Petri inicial……………15

Figura 3b: Ejemplo de cómo se obtiene el código de la cepa………………………..16

Figura 4: Estructura organizacional para la identificación de las bacterias de interés cvbcv

a partir de una bacteria desconocida……………………………………….17

Figura 5: Variación de la concentración de PM10 en datos de la Secretaría de fghf

Ambiente (azul) y de los datos de Muestreo (rojo) respecto a los tres meses f

muestreo (abril, mayo, junio) en las estaciones Belisario (A), Jipijapa (B),

Tababela (C), Los Chillos (D) ……………………………………………..23

Figura 6: Colonias obtenidas en agar BCYE para Legionella sp después de dos ghfgh

semanas de incubación a 37ºC a partir de la solución con

PM10 suspendido………………………………………………………….24

Figura 7: Tinción Gram de la cepa “LC VI 2.2b”. Estafilococos Gram positivos

(S. aureus) 100X……………………………………………………….….25

Figura 8: Tinción Gram de la cepa “BE V 4.7”. Bacilos Gram negativos fgdfg

(E. coli) 100X…………………………………………………………..25

Figura 9: Tinción Gram de la cepa “LC II 8.1”. Bacilos Gram negativos dfsdf

(P. aeruginosa) 100X…………………………………………………...…26

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Figura 10: Tinción Gram de la cepa “TB III 4.1”. Bacilos Gram positivos jj

(bacteria desconocida) 100X…………………………………………..……26

Figura 11: Pruebas bioquímicas realizadas para la identificación de A. baumanii en

en software de identificación ABIS. ………………………………..……...28

Figura 12: Resultados de las pruebas bioquímicas para identificación de A. baumanii fgg

en el software de identificación ABIS. ………………………………….…29

Figura 13: Comparación mensual entre el número de cepas, la concentración de ghh

PM10 muestreado y la concentración de PM10 de datos de la Secretaría ghg

de Ambiente durante los tres meses de muestreo en las diferentes fgh

estaciones: Jipijapa (A), Belisario (B), Tababela (C) y Los Chillos (D)…..31

Figura 14: Comparación promedial entre estaciones, las variables consideradas ghg

son: No. de cepas, concentración de PM10 muestreado y concentración ggg

de PM10 de la Secretaría…………………………….……………………..32

Figura 15: Gráfica comparativa de la velocidad del viento en las cuatro estaciones fgff

durante tres meses de muestreo. Los datos de la estación Belisario y ghg

Jipijapa son las mismas……………………………………………………..35

Figura 16: Porcentaje de cepas identificadas durante toda la investigación, de un ghf

total de 357 cepas…………………………………………………………..37

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ÍNDICE DE TABLAS

Tabla 1: Identificación bacteriana mediante pruebas bioquímicas…………………….18

Tabla 2: Fecha, hora de muestreo y datos meteorológicos de cada muestreo…………20

Tabla 3: Peso y concentración de PM10 de filtros muestreados……………………….22

Tabla 4: Cepas identificadas en cada muestreo………………………………………...27

Tabla 5: Relación entre número de cepas y concentración de PM10………………….30

Tabla 6: Coeficientes de Correlación Spearman entre el número de Cepas asociadasx a

PM10, parámetros meteorológicos y contaminantes.………………………...33

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ÍNDICE DE ANEXOS

Anexo 1: Filtros muestreados a partir del segundo muestreo al sexto muestreo dfsd

(izquierda a derecha). (A) Estación Jipijapa, (B) Estación Belisario, ghg

(C) Estación Tababela, (D) Estación Los Chillos.…………………………..50

Anexo 2: Datos y variables tomados en consideración para el cálculo de laghgg

concentración de PM10 durante los meses de abril, mayo y junio de 2016, fgdf

en todas las estaciones ………………………………………………………51

Anexo 3: Resultado de pruebas bioquímicas todas las cepas con sus respectivos dfd

códigos de identificación, donde se muestran las cepas identificadas, fdf

las bacterias descartadas (resaltadas con rojo) y las bacterias desconocidas…55

Anexo 4a: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa control positivo dfd

de S. aureus…………………………………………………………………64

Anexo 4b: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa control positivo de fdgf

P. aeruginosa………………………………………………………………65

Anexo 4c: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa control positivo hhh

de E. coli……………………………………………………………………65

Anexo 4d: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa LC IV 7.1 dfdf

correspondiente a A. baumanii………………………………………………66

Anexo 4e: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa BE IV 7.4 ffg

correspondiente a E. coli…………………………………………………….66

Anexo 4f: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa BE VI 1.1 ddds

correspondiente a P. aeruginosa…………………………………………….67

Anexo 4g: Pruebas bioquímicas para identificación de la cepa LC IV 8.1 la cual dddd

resultó desconocida………………………………………………………..67

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Anexo 5: Datos otorgados por la Secretaría de Ambiente de la concentración de dfdd

PM10 normal (C) y en condiciones estándar (C*) durante los meses de dfddd

enero a septiembre de 2016………………………………………………..68

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LISTADO DE ABREVIATURAS

µg: micro gramo.

ABIS: Advanced Bacterial Identification Software.

BCYE: Buffered Charcoal Yeast Extract.

BE: Belisario.

COV: Compuestos Orgánicos Volátiles.

DMQ: Distrito Metropolitano de Quito.

EMB: Eosin Methylene Blue.

INEC: Instituto Nacional de Estadísticas y Censos.

IR: infecciones respiratorias.

JJ: Jipijapa.

LC: Los Chillos.

m.s.n.m.: Metros sobre el nivel del mar.

mbar: mili bar.

mL: mililitro.

NCBI: National Center for Biotechnology Information.

NECA: Norma de Calidad del Aire Ambiente.

NOx: Óxidos de nitrógeno.

OMS: Organización Mundial de la Salud.

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PM: Material particulado.

PM10: Material Particulado de tamaño menor a 10 µm.

RFLP: Restriction Fragment Length Polymorphism.

SOx: Óxidos de azufre.

TB: Tababela.

TSA: Tryptic Soy Agar.

TULAS: Unificado de Legislación Secundaria.

UNESCO: Organización de las Naciones Unidas para la Educación, la Ciencia y la

Cultura.

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RESUMEN

En el Ecuador, los estudios sobre la incidencia del material particulado (PM) en la salud

humana han sido poco tratados, así como también sobre los microrganismos presentes en

el mismo, por esta razón, se ha motivado a realizar una identificación de bacterias

causantes de Infecciones Respiratorias (IR) presentes en el PM10 en el Distrito

Metropolitano de Quito (DMQ), así como su relación con diferentes variables

(contaminantes del aire y condiciones meteorológicas). Muestreadores de alto volumen

semiautomáticos de PM10 y filtros de fibra de cuarzo fueron utilizados para recolectar

PM10 en cuatro estaciones dentro del DMQ. Los filtros fueron suspendidos en agua

peptonada y extendidos en la superficie de placas con medios de cultivo específicos para

que crezcan las bacterias de interés. Jipijapa es la estación que más concentración de PM10

generó durante toda la investigación, con un promedio de 56,572 µg.m-3. S. aureus fue la

bacteria asociada a PM10 más común en todas las estaciones, correspondiente al 7.56%

de todas las cepas, mientras que E. coli y E. cloacae fueron las que tuvieron menor

crecimiento compartiendo un 0,56% del total. La velocidad del viento es una variable

importante, ya que presenta una ligera correlación con bacterias asociadas a PM10

(r=0,218). Los procesos químicos y factores ambientales afectan a las propiedades y

estructura del PM y, por ende, también a los microorganismos relacionados.

Palabras Clave:

CONTAMINANTES DEL AIRE

CONDICIONES METEOROLÓGICAS.

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ABSTRACT

In Ecuador, studies on the incidence of Particulate Matter (PM) in human health have not

been treated yet, as well as microorganisms. For this reason, we have been motivated to

carry out an investigation that Identify airborne bacteria causing Respiratory Infections

(RI) present in PM10 inside Metropolitan District of Quito (DMQ), and their relationships

with variables such as air pollutants and meteorological conditions. Automatic high-

volume PM10 samplers and quartz fiber filters were used to collect PM10 at four DMQ

stations. Quartz filters were suspended in peptone water and spread plated onto the surface

of specific culture media for airborne bacterial growing. Jipijapa station showed the

highest PM10 concentration generated during the whole investigation, with an average of

56,572 μg.m-3. S. aureus was the most common PM10 associated bacterium found in all

stations, corresponding to 7.56% of all strains, whereas E. coli and E. cloacae were the

ones with the lowest growth, showing 0.56% of total bacteria. Wind speed is an important

variable, since it presented a slight correlation with bacteria associated to PM10 (r =

0.218). Chemical processes and environmental factors affected properties and structure of

PM, and also the microorganisms that are related to it.

Keywords:

AIR POLLUTANTS

WEATHER CONDITIONS.

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CAPÍTULO 1: INTRODUCCIÓN

1.1 Formulación del problema

En los últimos años, países latinoamericanos han estructurado planes de trabajo en

base a modelos de industrialización, con la finalidad de mejorar el desarrollo productivo

del país. Uno de los efectos colaterales de la expansión industrial, es el deterioro

ambiental, el cual afecta directa e indirectamente, ya sea por la invasión de espacio físico

o por la utilización de recursos naturales, generando inevitablemente en ambos casos,

diferentes tipos de residuos, entre los cuales se encuentra incluido el Material Particulado

(PM). Los efectos de dicha contaminación en muchos casos son inmediatos, y se

manifiesta en la salud de las personas. En Ecuador, un país en vías de desarrollo, el proceso

de transformación industrial avanza a pasos agigantados, pero a diferencia de los países

ya industrializados, las necesidades básicas no están al alcance de las manos y es común

encontrar personas con infecciones respiratorias (IR) causadas por bacterias patógenas

relacionadas con el material particulado. Las infecciones respiratorias son causantes de

muertes a nivel mundial, mayoritariamente de niños en edades de cero a cinco años,

quienes son los que presentan mayor vulnerabilidad. El número de muertes por

infecciones respiratorias agudas es de 3,5 millones cada año (Hernández, 2009).

1.2 Justificación del problema

En la Provincia de Pichincha, la entidad ambiental encargada de generar políticas que

prioricen la prevención de malas prácticas ambientales es La Secretaría de Ambiente

DMQ, mediante el muestreo y análisis físico químico de descargas líquidas, emisiones

gaseosas a la atmósfera y calidad del aire (Secretaría de Ambiente DMQ, S/A).

En Latinoamérica son muy pocas las investigaciones que se han realizado en

microbiología del aire, sin embargo en países del Oriente Medio y Asia, existen varias

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2

publicaciones sobre los microorganismos presentes en el Material Particulado (Chen Cao

et al., 2014; Mansour Alghamdi et al., 2014). Hasta ahora, en el país no se ha realizado

análisis microbiológicos en material particulado, el cual por ser un conjunto de partículas

muy pequeñas, llevan consigo agentes patógenos causantes de infecciones respiratorias.

El Instituto Nacional de Estadísticas y Censos (INEC), 2009 las considera una de las

principales causas de morbilidad entre enfermedades de notificación obligatoria; en

Ecuador, la neumonía por organismo no especificado fue la primera causa de morbilidad

con una tasa de 24,2 por cada 10.000 personas.

Por esta razón, se ha motivado a desarrollar un proyecto que nos ayude a identificar

patógenos causantes de IR en el material particulado, con el propósito de disminuir a

futuro uno de los problemas del sector Salud. En este caso, las afecciones respiratorias son

causadas por altas concentraciones de material particulado en el aire. En el proceso de

análisis microbiológico, las muestras de material particulado se obtienen de diferentes

zonas del Distrito Metropolitano de Quito; y se espera encontrar una relación entre la

geografía de Quito, el movimiento de la partícula en el aire y el tipo de bacteria

identificada. De esta manera la salud ambiental, será observada desde un punto de vista

químico, y ahora, biológico.

1.3 Objetivos

1.3.1 Objetivo general

Identificar la comunidad bacteriana causante de Infecciones Respiratorias (IR)

presentes en material particulado PM10 en el Distrito Metropolitano de Quito.

1.3.2 Objetivos específicos

Determinar la cantidad de material particulado PM10 por metro cúbico de

aire.

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3

Utilizar métodos adecuados para el cultivo, crecimiento y desarrollo de

bacterias presentes en el material particulado PM10.

Identificar géneros bacterianos causantes de infecciones respiratorias

mediante diferentes técnicas de identificación bacteriana y técnicas

microscópicas.

Determinar la relación partícula-bacteria.

1.4 Marco referencial

1.4.1 Descripción de la ciudad de Quito

El Distrito Metropolitano de Quito (DMQ), denominado así por el Estado en el

año de 1993 debido a su particular condición demográfica y política, dividió

administrativa y físicamente el territorio en ocho administraciones zonales, que contienen

a sesenta y cinco parroquias: treinta y dos urbanas y treinta y tres rurales (DMQ, 2011).

Según el INEC, en el censo del año 2010, el DMQ albergaba a 1’639.853 habitantes en el

área urbana y 2’239.191 habitantes en todo el Distrito.

La ciudad de Quito se encuentra ubicada sobre la hoya de Guayllabamba en las

laderas occidentales del volcán Pichincha, a una altura entre 2.850 y 3.100 msnm en los

lugares más elevados (UNESCO, S/A). Por lo general, el DMQ presenta un relieve

heterogéneo, diverso con grandes potencialidades desde el punto de vista productivo. El

Distrito comprende una significativa diversidad de recursos naturales, pisos climáticos y

ecosistemas (DMQ, 2011).

1.4.1.1 Meteorología de la ciudad de Quito

Los regímenes agrícolas dentro del DMQ son influidos por la ubicación ecuatorial

que permite que existan dos estaciones climáticas, una seca y una lluviosa, que comprende

los meses de junio a septiembre y de octubre a mayo respectivamente, estableciendo

formas de relación específicas entre la geografía y la población (DMQ, 2011).

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Debido a la pluviosidad y a las variaciones de altura, el DMQ posee al menos

quince tipos de clima, que van desde el clima nival (temperaturas menores a 4ºC), hasta

el clima tropical lluvioso de los bosques noroccidentales (temperaturas promedio de

22ºC), mientras que en la zona más poblada ubicada a 2815 m.s.n.m. la temperatura

promedio es de 14ºC (Echanique, 2008, citado en DMQ, 2011).

1.4.2 Contaminación en aire ambiente

La contaminación del aire consiste en una mezcla de sólidos, gases, gotas líquidas o

cualquier sustancia introducida en la atmósfera por el hombre que tienen un efecto

perjudicial sobre los seres vivos y el ambiente (Airnow, 2015). Según la Secretaría de

Medio Ambiente y Recursos Naturales en México, 2014, las fuentes de contaminación

son aquellas que dan origen a la misma, y se las puede clasificar en cuatro grupos:

Puntuales, Móviles, De área y Naturales. Las fuentes puntuales: Son las fuentes de

contaminación de estaciones fijas o estacionarias, como las plantas energéticas,

industriales, petroleras, entre otras. El azufre (SO2) y material particulado (PM)

provenientes de la generación de energía eléctrica es una de las mayores preocupaciones

a nivel mundial, ya que su proceso consiste en la combustión de enormes cantidades de

combustibles fósiles. Las fuentes móviles: Incluyen a las diversas formas de transporte

como autos, camiones, aviones, donde la principal fuente de contaminación móvil son los

automóviles que producen enormes cantidades de monóxido de carbono (CO). Las fuentes

de área: Consiste en una serie de fuentes pequeñas dispersas que por su escasa cantidad

de emisión, no pueden ser incluidas en las fuentes puntuales, pero en conjunto pueden

afectar el aire considerablemente. Ejemplos de este tipo de fuentes son las imprentas,

estaciones de servicio, tintorerías, entre otras. Las fuentes naturales: El rol de la vida

humana, vegetal y fenómenos naturales juegan un papel crucial en el problema de

contaminación. En este tipo de emisiones atmosféricas encontramos a las emisiones

biogénicas, que comprenden a los pastos, cultivos, animales, bacterias, entre otras, y a las

emisiones de suelos que incluyen al óxido nitroso (N2O) que es producido naturalmente

en suelos en los procesos de desnitrificación.

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El problema de la contaminación atmosférica es uno de los más relevantes, tanto por

su magnitud como por la percepción de la comunidad. Al respecto, la probabilidad de que

se presenten efectos en la salud humana es grande (Barrios, Peña, & Osses, 2004).

El aumento de los niveles de contaminación en aire ambiente en las ciudades se ha

visto proyectado en un incremento en el registro de casos de enfermedades

cardiovasculares y pulmonares. Según la Organización Mundial de la Salud, 2015, la

mortandad ha aumentado a causa de la contaminación ambiental.

1.4.2.1 Contaminantes comunes

Según el Anexo IV, de la Reforma del Libro VI del Texto Unificado de Legislación

Ambiental Secundaria (TULAS), 2003, los principales contaminantes que inciden en la

contaminación del aire son: partículas sedimentables, material particulado, óxidos de

nitrógeno, dióxido de azufre, monóxido de carbono y oxidantes fotoquímicos.

1.4.2.1.1 Material Particulado (PM)

La mayoría de partículas de PM en la atmósfera son producto de reacciones

químicas entre contaminantes, es decir, entre partículas pequeñas y gotitas líquidas que se

mantienen en el aire. Al tener un tamaño menor a 10 micras y/o ser suficientemente

oscuro, lo vuelve casi imperceptible al ojo humano, como es el caso del polvo, la suciedad,

hollín o humo; mientras que el resto solo puede ser detectado mediante el uso de un

microscopio electrónico (EPA, 2016).

1.4.2.1.2 Óxidos de Nitrógeno (NOx)

Es uno de los grupos de gases altamente reactivos conocidos como óxidos de

nitrógeno (NOx). El ácido nítrico y el ácido nitroso se incluyen en el grupo de los NOx,

pero el más representativo es el dióxido de nitrógeno (NO2), el cual es usado como

indicador para el grupo más grande de los NOx. El NO2, se obtiene principalmente por la

quema de combustibles fósiles en: automóviles, camiones, plantas eléctricas y equipos

fuera de carretera (EPA, 2016).

1.4.2.1.3 Dióxido de Azufre (SO2)

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El SO2 resulta de la combustión de cualquier material que contenga azufre. Es uno

de los gases pertenecientes a un grupo denominado óxidos de azufre (SOx), y que, junto

con el NO2 (perteneciente a los NOx), son los de mayor importancia y preocupación para

la salud humana y el medio ambiente. Otros óxidos de azufre presentes en el ambiente son

el trióxido de azufre (SO3) que se encuentra en concentraciones mucho menores que SO2,

y el monóxido de azufre (SO) proveniente de procesos industriales como la extracción de

metales, fuentes volcánicas, locomotoras y equipo en general que utilice combustibles

azufrados (EPA, 2016).

1.4.2.1.4 Monóxido de Carbono (CO)

Los autos, camiones y demás maquinaria que quema combustibles fósiles son las

principales fuentes de producción de CO. Al ser un gas inodoro e incoloro puede llegar a

ser perjudicial para la salud cuando es inhalado en grandes cantidades, ya que al respirar

una alta concentración de CO, la cantidad de oxígeno disminuye. El oxígeno es necesario

para ser transportado por la sangre hacia los diferentes órganos vitales como son el

corazón y el cerebro (EPA, 2016).

1.4.2.1.5 Oxidantes Fotoquímicos

El Ozono (O3) cuando no se encuentra rodeando a la tierra es perjudicial para la

calidad del aire, a este ozono se lo considera “ozono malo”, y es producido por reacciones

entre NOx y Compuestos Orgánicos Volátiles (COV) en la presencia de luz solar. Las

emisiones de industrias y centrales eléctricas, los gases de los vehículos de motor, los

vapores de gasolina y solventes químicos son algunas de las principales fuentes de NOx

y COV (EPA, 2016).

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1.4.3 Material Particulado PM10

El material particulado (MP) es un conjunto de partículas constituidas por material

sólido o líquido que se encuentran flotando en la atmósfera, se origina desde fuentes

naturales continentales hasta emisiones a nivel urbano generado por el hombre (TULAS,

2003). Su diámetro aerodinámico varía desde 0,001 micrómetros hasta los 100

micrómetros, y su composición química incluye elementos como aluminio, silicio,

potasio, calcio, hierro, zinc, vanadio, plomo, entre otros (UC, S/A). Para fines regulatorios,

el material particulado se designa comúnmente como PM2.5 o PM10 lo que representa el

diámetro aerodinámico de la partícula, de 2,5 µm y 10 µm, respectivamente. Las partículas

de mayor interés son las partículas fácilmente respirables, es decir con diámetros menores

a 10 µm (Díaz & Páez, 2006); al ser fácilmente respirables pueden depositarse dentro de

los pulmones, e incluso puede llegar al torrente sanguíneo (EPA, 2016).

1.4.3.1 Material particulado en DMQ

Quito es una ciudad que se encuentra próxima a volcanes en actividad eruptiva y

explotación de minas. Debido a su irregularidad topográfica y al ubicarse a una altura

aproximadamente de 2.800 m.s.n.m. la quema de combustibles fósiles con alta cantidad

de azufre se ve limitada, obligando a los automotores a realizar mayores esfuerzos para

vencer dichas irregularidades y como resultado provoca altas emisiones de azufre y

material particulado. En 2005 se ubicaron 33 puntos de muestreo de material particulado

dentro y fuera del límite urbano. Esta red cuantifica el polvo sedimentable seco y húmedo

según el método Bergerhoff, acatándose a la legislación ecuatoriana (Díaz & Páez, 2006).

Actualmente la Secretaría de Ambiente es la entidad ambiental encargada de

generar políticas para la prevención de malas prácticas ambientales mediante el muestreo

y análisis fisicoquímico de descargas líquidas y emisiones gaseosas a la atmósfera,

manteniendo las emisiones en niveles deseables (Secretaría de Ambiente DMQ, S/A).

Bajo la Norma Ecuatoriana de Calidad del Aire, publicada en junio de 2011, en el Anexo

4 del Libro VI del TULAS del Ministerio de Ambiente, las concentraciones de PM10 que

definen los niveles de alerta, alarma y emergencia en la calidad del aire expresado en

µg.m-3 son 150, 250 y 350 respectivamente.

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1.4.4 Infecciones Respiratorias

En el Ecuador, al ser un país en vías de desarrollo, el proceso de transformación

industrial avanza a pasos agigantados, pero a diferencia de los países ya industrializados,

las necesidades básicas no están al alcance de las manos, y es común encontrar personas

con infecciones respiratorias (IR) causadas por bacterias patógenas relacionadas con el

material particulado. Las infecciones respiratorias son causantes de muertes a nivel

mundial, mayoritariamente de niños en edades de cero a cinco años, quienes son los que

presentan mayor vulnerabilidad. El número de muertes por infecciones respiratorias

agudas es de 3,5 millones cada año (Hernández, 2009).

Según se localización, se encuentran las infecciones respiratorias altas y bajas; las

altas, que son las que afectan al tracto respiratorio superior, y las bajas, al tracto

respiratorio inferior. De acuerdo a la etiología se pueden hacer dos tipos de clasificaciones:

a) infecciones bacterianas, virales, parasitarias y fúngicas; b) infecciones que son causadas

por un agente en particular (Maseos & Mateos, S/A).

El número de muertes en el mundo por infecciones respiratorias agudas es de 3,5

millones cada año (Hernández, 2009). Según las Guías de Práctica Clínica Basadas en la

Evidencia, 2011, una infección respiratoria aguda se define como el conjunto de

infecciones del aparato respiratorio causadas por microorganismos, ya sean virales,

bacterianos u otros, con un período inferior a 15 días, con la presencia de signos clínicos

como: tos, rinorrea, obstrucción nasal, odinofagia, otalgia, disfonía, respiración ruidosa,

dificultad respiratoria, entre otras.

Según Blanco, 2006, el material particulado no es el único responsable de las

afecciones respiratorias, sino también microorganismos presentes en el mismo que viaja

en corrientes de aire. Por lo tanto es necesario un estudio entre la relación bacteria-material

particulado, y su probabilidad de generar afecciones respiratorias.

A nivel mundial, las Infecciones Respiratorias toman el tercer lugar de causas de

enfermedad en pacientes de todas las edades, y no sólo a la población infantil, aunque esta

sea la más vulnerable. Entro los factores responsables de IR se encuentra la genética de la

persona, la edad, condiciones de vida, alimentación, entre otros, los cuales aportan al

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desarrollo de la enfermedad. No es novedad que el ambiente toma un papel crucial en el

desarrollo de las enfermedades respiratorias, pero no es claro si algunos contaminantes

toman un rol en la patología de las enfermedades respiratorias (Hernández, 2009).

1.4.4.1. Principales bacterias causantes de infecciones respiratorias

Dentro de las bacterias causantes de IR, encontramos las siguientes:

Acinetobacter baumanii: En las últimas décadas, el patógeno nosocomial ha

tomado relevancia al poder ser agente causal de infecciones como neumonía,

bacteriemia, meningitis (Diomedi, 2005). A. baumanii. Puede colonizar la cavidad

oral, faringe e intestino, siendo importantes reservorios epidemiológicos en brotes

nosocomiales (Marcos, S/A).

Corynebacterium spp: Es el principal causante de difteria respiratoria, la cual es

una enfermedad aguda que afecta al tracto respiratorio superior (mucosa nasal,

amígdalas, laringe o faringe) por una exotoxina causante de las manifestaciones

locales y de los efectos tóxicos sistémicos (sVEA, 2012).

Enterobacter cloacae: Es un patógeno oportunista que puede causar una variedad

de condiciones, incluyendo infecciones en ojos y piel, neumonía e infecciones en

el tracto urinario (Rogers, S/A). No es un patógeno primario de humanos, pero ha

sido considerado ser una importante causa de infecciones nosocomiales (Keller,

Pedroso, Ritchmann, & Silva, 1998).

Escherichia coli: La neumonía cavitada es poco frecuente, se produce por la

necrosis del parénquima pulmonar secundaria tanto a la invasión bacteriana como

a la respuesta inmunológica del huésped frente a las estructuras de la pared del

microorganismo (Bastidas, Ibarra, & Giraldo, 2012).

Klebsiella pneumoniae: Es considerado un agente causal de neumonía nosocomial

y no comunitaria (Guzmán, et al., Bacterias patógenas en infecciones del tracto

respiratorio. Servicio Autónomo Hospital Universitario “Antonio Patricio de

Alcalá”. Cumaná, Estado Sucre, 2005).

Legionella sp: Hay diversas especies de Legionella, de las que la más importante

es la Legionella pneumophila causante de la mayor parte de los casos de neumonía

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en humanos. Sin embargo existen otras 30 especies de Legionella con potencial

patógeno y dentro de ellas hay serogrupos (SADAR, 2009).

Pseudomonas aeruginosa: Afecta a los pacientes con bronquiectasias con peor

calidad de vida, coloniza a los que tienen peor funcionalidad pulmonar y mayor

número de tratamientos antimicrobianos. La colonización patogénica

broncopulmonar y las exacerbaciones que se derivan de ella constituyen las causas

más importantes del deterioro de la función pulmonar en los pacientes con

bronquiectasias (Cantón, Fernández, Gómez, & Meseguer, 2011).

Serratia marcescens: Puede encontrarse en la flora intestinal del hombre y

animales, en el ambiente y en reservorios pobres en nutrientes como el agua

potable, cañerías y llaves. Su adquisición es mayoritariamente nosocomial,

especialmente en unidades de cuidados intensivos, mediante secreciones

respiratorias, heridas y orina (Dossi, et al., 2002).

Staphylococcus aureus: La causa de neumonías en adultos son muy poco

frecuentes, excepto cuando van acompañadas de epidemias por virus Influenza,

sin embargo, en niños las infecciones en el tracto respiratorio son mucho más

frecuentes. En las poblaciones de pacientes hospitalizados, S. aureus y los bacilos

Gram negativos aerobios son una causa común de neumonía (Somogyi, Alfaro,

Herrera, & Herrera, 1998).

1.5 Hipótesis

El Material particulado PM10 del DMQ contiene bacterias causantes de

Infecciones Respiratorias en humanos.

La cantidad de material particulado PM10 que contiene bacterias causantes de

Infecciones Respiratorias supera los límites permisibles dispuestos por la

Secretaría de Ambiente en el DMQ.

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CAPÍTULO 2: MATERIALES Y MÉTODOS

2.1. Participantes

El proyecto de titulación fue realizado en el Laboratorio de Fisicoquímica de la

Secretaría de Ambiente del Distrito Metropolitano de Quito, con la colaboración del

laboratorio de Microbiología de la Universidad de las Fuerzas Armadas – ESPE.

La organización de la investigación, el trabajo experimental fueron realizados por el

Señor David Luis Benavides Correa, por dirección de MSc. Alma Koch, Directora de

Tesi,s e Ing. Pamela Freire, Asesora científica.

2.2. Zona de Estudio

El trabajo implica investigación de campo y de laboratorio, la investigación de campo

se llevó a cabo en la provincia de Pichincha, en el Distrito Metropolitano de Quito en los

sectores de Jipijapa, Belisario, Los Chillos y Tababela; mientras que la investigación de

laboratorio se la realizó en ciudad de Quito se realizó en el Laboratorio de Físico-Química

de la Secretaría de Ambiente del DMQ, ubicado en la Av. Rio Coca E6-85 e Isla

Genovesa, cantón Quito, provincia de Pichincha, Ecuador.

2.3. Período de Investigación

La investigación se llevó a cabo en los meses de abril de 2016 hasta Octubre de

2016.

2.4. Selección de los puntos de muestreo en la localidad

La Secretaría de Ambiente del DMQ cuenta con cuatro muestreadores para material

particulado (PM10) ubicados en estaciones automáticas de monitoreo en Belisario,

Jipijapa, Los Chillos y Tababela (Figura 1), los cuales monitorean cada seis días durante

24 horas según la norma ecuatoriana (Díaz & Páez, 2006). El monitoreo de estos

contaminantes se realizan desde junio de 2003.

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Los puntos de muestreo fueron ubicados dentro y fuera del perímetro urbano

debido a que la ciudad de Quito se encuentra próxima a volcanes en actividad eruptiva,

explotación de minas y perímetro urbano con alta afluencia de vehículos.

Figura 1: Ubicación de los puntos de monitoreo (puntos rojos) ambiental de la Red

automática del DMQ.

Fuente: (Secretaría de Ambiente, 2015)

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2.5. Recolección del Material Particulado PM10

El PM10 fue recolectado en filtros de fibra de cuarzo de 203 x 254 mm marca

WhatmanTM que se esterilizaron por calor seco en una mufla a 200ºC por 1 h y

posteriormente fueron pesados. Una vez estériles, se almacenaron en fundas herméticas

hasta el momento de su muestreo. El muestreo se llevó a cabo en un muestreador semi

automático de PM10 marca “TISCH TE-600 Series” a un flujo de 1.019 a 1.699 m3.h-1

durante una hora. Pasada la hora de muestreo, el filtro se volvió a guardar en una funda

limpia hermética y se procedió a pesarlo en una balanza analítica.

La recolección de PM10 se realizó dos veces por mes durante los meses de abril, mayo

y junio, 2016. Se escogieron los filtros de fibra de cuarzo ya que son robustos e inertes

para sus diferentes usos fisicoquímicos.

Para la determinación de la cantidad de PM10 obtenida en cada muestra se

consideraron los parámetros indicados en el manual de operación del muestreador

automático de PM10 “TISCH TE-600 Series”: peso inicial y final del filtro muestreado,

peso inicial y final del filtro blanco de laboratorio, peso inicial y final del filtro blanco de

campo, presión de absorción, caudal de aire absorbido, presión barométrica, temperatura

del ambiente y junto con el tiempo de muestreo se determinó la concentración de PM10

en el filtro, el cual fue expresado en microgramos de PM10 por metro cúbico estándar de

aire (µg.m-3).

2.6. Captación y purificación de bacterias

Una vez obtenida la muestra de PM10 en los filtros de fibra de cuarzo, la mitad de la

lámina de fibra de cuarzo fue suspendida en 50 mL de solución madre que contiene agua

peptonada y Tween 80 al 0.05% p/v, la cual se mantuvo en agitación durante 30 a 60

minutos. Se realizó el mismo procedimiento con los filtros muestreados de todas las

estaciones (Figura 2).

Posteriormente se colocó 1,5 mL de solución madre de cada estación en seis medios

de cultivo: TSA, Agar MacConkey, Agar King B., EMB, Agar Sangre y Agar BCYE

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durante 18–48 h a 20–37 ºC, condiciones que son adecuados para el crecimiento de las

bacterias de interés.

Figura 2: Esquematización de Muestreo (a), Obtención de Filtro muestreado (b),

Resuspensión de PM10 (c), y Siembra en medios de cultivo (d), de las diferentes

estaciones.

Una vez que hubo crecimiento bacteriano, se procedió a aislar las colonias

bacterianas siguiendo los criterios de morfología y tipo de crecimiento en placa por el

método de estría. Se realizaron de dos a tres aislamientos de cada bacteria (Figura 3a)

basándose en su dificultad de purificación, se las guardó en medio TSA y finalmente se

las rotuló con un código en donde constaba: la estación de muestreo (Jipijapa “JJ”,

Belisario “BE”, Tababela “TB”, Los Chillos “LC”) seguido del número de muestreo en

números romanos (I – VI), seguido del medio de cultivo en el que creció (EMB “1 o 2”,

King B. “3 o 4”, Mac Conkey “5 o 6”, Agar Sangre “7 u 8”), seguido de un “punto” junto

al número de colonia aislada en el medio (.1, .2, .3, .4,…. .n) y finalmente de ser necesario

un segundo aislamiento, una letra minúscula (a, b, c, …z); se puede ver el ejemplo en la

Figura 3b. Finalmente su análisis en pruebas bioquímicas para su identificación.

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Figura 3a: Forma de aislamiento bacteriano a partir de caja Petri inicial.

Figura 3b: Ejemplo de cómo se obtiene el código de la cepa. La cepa corresponde a la

estación de Los Chillos (LC), muestreo 4 (LC IV), el segundo medio de cultivo King B.

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(LC IV 4), tercera colonia del primer aislamiento (LC IV 4.3), primera y segunda

colonia obtenida del segundo aislamiento (LC IV 4.3a y LC IV 4.3b respectivamente).

Benavides, 2016.

2.7. Identificación de bacterias

Una vez purificados los cultivos bacterianos, se procedió a determinar mediante la

tinción diferencial si fueron Gram positivos o Gram negativos. Las bacterias a identificar

fueron: Acinetobacter baumanii, Corynebacterium sp, Enterobacter cloacae, Escherichia

coli, Klebsiella pneumoniae, Legionella sp, Pseudomonas aeruginosa, Serratia

marcescens, Staphylococcus aureus. Mediante una serie de pasos, se inició la

identificación de género y/o especie basada en el diagrama de la Figura 4, donde las pre

pruebas bioquímicas Catalasa y Oxidasa, junto con la tinción Gram mantuvieron la clave

de clasificación y selección de pruebas bioquímicas a realizarse en cada caso.

Figura 4: Estructura organizacional para la identificación de las bacterias de interés a

partir de una bacteria desconocida. (Bacterias de interés: Acinetobacter baumanii,

Corynebacterium sp, Enterobacter cloacae, Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae,

Legionella sp, Pseudomonas aeruginosa, Serratia marcescens, Staphylococcus aureus)

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Una vez identificada la forma, tinción Gram y las pruebas Catalasa-Oxidasa, se

procedió a realizar las diferentes pruebas bioquímicas basándose en la anterior

clasificación. Las pruebas bioquímicas a realizarse, junto con su respectivo resultado se

resumen en la Tabla 1.

Tabla 1:

Identificación bacteriana mediante pruebas bioquímicas. Fuentes: Pérez, et al., 2007;

Public Health England, 2014; Patiño, et al., 2005).

Solo en el caso de que las cepas A. baumanii, Corynebacterium sp y Legionella sp,

cumplieran con las pruebas bioquímicas mostradas en la Tabla1, se procedería a realizar

un análisis RFLPs (Restriction Fragment Length Polymorphism), el cual al ser una

herramienta de biología molecular independiente de cultivo, se utiliza para determinar o

confirmar la fuente de una muestra de ADN y que junto a pruebas bioquímicas

previamente realizadas confirma la identificación de dichas bacterias.

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CAPÍTULO 3: RESULTADOS

3.1 Cuantificación de Material Particulado PM10

Durante tres meses, se realizaron seis muestreos, dos por cada mes en las cuatro

estaciones del DMQ tal y como se resume en la Tabla 2, además se incluye también las

condiciones ambientales de temperatura, presión barométrica, fecha y hora. Se procuró

muestrear en cada estación a la misma hora para tener una mayor exactitud en los datos.

Los datos de presión y temperatura de las estaciones Jipijapa y Belisario son las mismas,

ya que la estación meteorológica, ubicada en Jipijapa, cubre también la estación Belisario;

los datos de presión y temperatura de Tababela son otorgados por la estación

meteorológica ubicada en Tumbaco; y los datos de presión y temperatura de Los Chillos

son otorgados por la estación meteorológica ubicada en la misma estación.

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Tabla 2:

Fecha, hora de muestreo y datos meteorológicos de cada muestreo.

ESTACIÓN MES

2016 DÍA HORA

PRESIÓN

(mbar)

TEMPERATURA

(ºC)

JIPIJAPA ABRIL 22 8:30 726,710 18,385

29 8:30 726,253 17,100

MAYO 11 8:30 727,780 11,560

25 8:30 729,195 16,340

JUNIO 9 8:30 728,055 15,460

22 8:30 726,330 13,930

BELISARIO ABRIL 22 10:00 726,710 18,385

29 14:30 726,253 17,100

MAYO 11 10:00 727,780 11,560

25 10:00 729,195 16,340

JUNIO 9 10:00 728,055 15,460

22 10:00 726,330 13,930

TABABELA ABRIL 22 12:00 770,470 25,070

29 10:30 772,380 19,820

MAYO 11 12:00 772,380 19,490

25 12:00 772,380 24,210

JUNIO 9 12:00 772,380 22,500

22 12:00 771,900 21,300

LOS

CHILLOS

ABRIL 22 14:00 757,190 23,990

29 12:30 758,100 22,980

MAYO 11 14:00 757,940 22,100

25 14:00 758,830 21,030

JUNIO 9 14:00 758,840 22,110

22 14:00 757,860 21,820

Para el cálculo de la concentración de PM10 se deben tener tres datos: “blanco de

laboratorio”, de “blanco de campo” y “muestreado”. En donde el “blanco de laboratorio”

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es la media aritmética de dos veces su mismo peso. El “blanco de campo” es la media

aritmética de dos veces su mismo peso, considerando que el filtro se somete al mismo

trato que los filtros “muestreados”. El “muestreado” como su nombre lo indica, es el peso

después del muestreo. Se obtuvo un total de 24 filtros (Anexo 1), cada uno de ellos pesado

después del muestreo.

El cálculo de la concentración de material particulado PM10 se realizó según las

especificaciones del manual de operaciones del muestreador semi automático de PM10

marca “TISCH TE-600 Series”. En el Anexo 2 se muestran todos los datos y variables

tomadas en cuenta para el cálculo de la concentración de PM10.

En la Tabla 3 se resume el peso inicial y final de los filtros en gramos, desviación

estándar, diferencia de peso y la concentración de PM10 expresado en microgramos por

metro cúbico de aire muestreado de cada uno de los filtros. En la estación Jipijapa se

registra la mayor cantidad de PM10 y en Belisario se registra la menor cantidad de PM10

con 210,852 y 3,423 µg.m-3 respectivamente.

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Tabla 3:

Peso y concentración de PM10 de filtros muestreados.

M Estación Filtro Po (g) So Pf (g) Sf Pf-Po C (µg.m-3)

I Jipijapa 1 4,39480 1,03608 4,39970 0,00007 0,00490 50,07266

Belisario 2 4,39300 1,01139 4,39850 0,00306 0,00550 58,78450

Tababela 3 4,41040 0,98864 4,41520 0,00697 0,00480 47,18867

Los Chillos 4 4,41030 0,91088 4,41156 0,00821 0,00126 3,64426

II Jipijapa 5 4,39510 1,13695 4,41070 0,00000 0,01560 210,85202

Belisario 8 4,41110 1,06257 4,41533 0,02538 0,00423 42,16727

Tababela 6 4,43530 1,10579 4,43970 0,01562 0,00440 43,78264

Los Chillos 7 4,41270 1,07646 4,41720 0,01406 0,00450 45,57609

III Jipijapa 9 4,40270 0,00005 4,40500 0,00000 0,00230 33,76612

Belisario 10 4,38746 0,01235 4,38972 0,01415 0,00226 33,04833

Tababela 11 4,37867 0,01850 4,37980 0,02036 0,00113 15,73094

Los Chillos 12 4,37395 0,02004 4,37511 0,02042 0,00116 16,29136

IV Jipijapa 13 4,37537 0,00015 4,37630 0,00000 0,00093 15,71211

Belisario 14 4,36823 0,00926 4,36955 0,00904 0,00132 21,41586

Tababela 15 4,36420 0,01017 4,36519 0,00876 0,00099 16,06822

Los Chillos 16 4,36620 0,01048 4,36886 0,01006 0,00266 40,79080

V Jipijapa 17 4,38660 0,00000 4,38760 0,00000 0,00100 13,69843

Belisario 18 4,38211 0,00472 4,38468 0,00432 0,00257 36,89331

Tababela 19 4,37597 0,01069 4,37774 0,01255 0,00177 24,37013

Los Chillos 20 4,38040 0,00000 4,37851 0,01109 -0,00189 -

VI Jipijapa 21 4,36380 0,00000 4,36529 0,01219 0,00149 15,33403

Belisario 22 4,36312 0,00340 4,36541 0,01135 0,00229 3,42348

Tababela 23 4,35765 0,00914 4,36321 0,01224 0,00556 43,87754

Los chillos 24 4,36124 0,01038 4,36426 0,01196 0,00302 7,29430

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Con la finalidad de observar la variación de PM10 durante los meses de muestreo,

se procedió a comparar los datos de PM10 de la Secretaría de Ambiente DMQ con los

datos obtenidos del muestreo (Figura 5), donde el pico de máxima cantidad de PM10 es

en Jipijapa en el mes de abril. Se debe tomar en consideración que el tiempo de muestreo

de la Secretaría de Ambiente fue de veinticuatro horas, mientras que los datos de Muestreo

fueron de una hora según la metodología aplicada.

Figura 5: Variación de la concentración de PM10 en datos de la Secretaría de Ambiente

(azul) y de los datos de Muestreo (rojo) respecto a los tres meses de muestreo (abril,

mayo, junio) en las estaciones Belisario (A), Jipijapa (B), Tababela (C), Los Chillos (D).

3.2 Cultivos obtenidos, clasificación

Pasadas 48 horas de la siembra del filtro muestreado cuyas partículas de PM10

fueron resuspendidas en solución madre, se procedió a observar las colonias encontradas

en cada uno de los medios sembrados: EMB, King B., Mac Conkey, Sangre y BCYE. En

la Figura 6 se puede observar 12 colonias en agar BCYE, de las cuales se aislaron 4

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colonias morfológicamente diferentes, las mismas que fueron sometidas a pruebas

bioquímicas, siguiendo el procedimiento de la Figura 3.

Figura 6: Colonias obtenidas en agar BCYE para Legionella sp después de dos semanas

de incubación a 37ºC a partir de la solución con PM10 suspendido.

Las cepas puras obtenidas del aislamiento se sometieron a tinción diferencial Gram

para observar su morfología, tipo de tinción y así clasificarlas según los criterios de la

Figura 4. En las siguientes figuras vistas al microscopio se observa la tinción Gram y la

morfología de algunas cepas.

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Figura 7: Tinción Gram de la cepa “LC VI 2.2b”. Estafilococos Gram positivos (S.

aureus) 100X.

Figura 8: Tinción Gram de la cepa “BE V 4.7”. Bacilos Gram negativos (E. coli) 100X.

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Figura 9: Tinción Gram de la cepa “LC II 8.1”. Bacilos Gram negativos (P. aeruginosa)

100X.

Figura 10: Tinción Gram de la cepa “TB III 4.1”. Bacilos Gram positivos (bacteria

desconocida) 100X.

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26

3.3 Pruebas Bioquímicas

Durante toda la investigación, se obtuvo un total de 349 cepas, de las cuales 59 fueron

identificadas, 30 fueron descartadas y 261 fueron desconocidas. En el Anexo 3 se muestra

una tabla con todas las cepas identificadas, descartadas y desconocidas que se obtuvieron

en toda la investigación, junto con el resultado de las pruebas bioquímicas sometidas a

todas las cepas; mientras que en el Anexo 4 se muestran las imágenes de las pruebas

bioquímicas positivas y negativas para algunas de las cepas.

La Tabla 4 muestra las cepas identificadas en cada una de las estaciones junto con el

número de cepas encontradas en cada estación. Al no contar con suficiente medio de

cultivo BCYE necesario para identificar Legionella sp se procedió a sembrar solo en un

medio de cultivo para cada estación durante el Muestreo VI, se realizó el aislamiento de

las mismas en medio BCYE y una vez aisladas, se procedió a realizar las pruebas

bioquímicas pertinentes, en el Anexo 4 también se muestra el aislamiento en el medio

BCYE junto con las pruebas bioquímicas necesarias para Legionella sp.

Tabla 4:

Cepas identificadas en cada muestreo.

*Se sometió a más pruebas para su identificación.

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Las cepas Corynebacterium sp y Legionella spp al no cumplir con las pruebas

bioquímicas necesarias para realizar el análisis RFLP, se las dio por ausentes en los filtros

muestreados. Para la identificación molecular de A. baumanii fue necesario corroborar las

pruebas bioquímicas en el Software Avanzado de Identificación Bacteriana “ABIS online”

versión 12 (Stoica, 2016).

Los resultados del software de identificación bacteriana ABIS para la

identificación de A. baumanii (Figura 11 y Figura 12) mostraron que la cepa puede tratarse

de A. haemolyticus, A. johnsonii, A. rudis y S. maltophilia con un porcentaje de similitud

de 79, 70, 70 y 69% respectivamente; mientras que A. baumanii no se encontró en la lista

de posibles bacterias identificadas.

Figura 11: Pruebas bioquímicas realizadas para la identificación de A. baumanii en el

software de identificación ABIS.

Fuente: (Stoica, 2016)

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Figura 12: Resultados de las pruebas bioquímicas para identificación de A. baumanii en

el software de identificación ABIS.

Fuente: (Stoica, 2016)

3.4 Relación partícula-bacteria

La prueba de correlación del coeficiente no paramétrico de Spearman fue utilizado

para determinar la relación entre la concentración de PM10 y los microorganismos

asociados a este. Se utilizó el método no paramétrico debido a que los datos no se

distribuían normalmente, es decir, que dichos valores afectan el coeficiente de correlación

de Pearson. En la Tabla 5 y Figura 13 se muestra el número de cepas junto con la

concentración de PM10 existentes en cada estación durante los meses de muestreo.

Adicionalmente en la Figura 14 se observa un gráfico promedial de las variables: número

de cepas, concentración de PM10 muestreado y concentración de PM10 de la Secretaría;

donde la mayor cantidad de cepas se observó en la estación Tababela, mientras que en

Jipijapa se encontró la mayor concentración de PM10 de los datos muestreados, mas en

los datos de la secretaría, muestran constancia.

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29

Tabla 5:

Número de cepas encontradas respecto a la concentración de PM10 calculado.

ESTACIÓN MES No.

CEPAS

[PM10]

MUESTREADO

jipijapa abril 19 130,46234

mayo 24 24,739115

junio 32 14,51623

Belisario abril 17 50,475885

mayo 22 27,232095

junio 33 20,158395

Tababela abril 31 45,485655

mayo 50 15,89958

junio 39 34,123835

Los Chillos abril 28 24,610175

mayo 26 28,54108

junio 21 18,000965

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Figura 13: Comparación mensual entre el número de cepas, la concentración de PM10

muestreado y la concentración de PM10 de datos de la Secretaría de Ambiente durante

los tres meses de muestreo en las diferentes estaciones: Jipijapa (A), Belisario (B),

Tababela (C) y Los Chillos (D).

Figura 14: Comparación promedial entre estaciones, las variables consideradas son:

número de cepas, concentración de PM10 muestreado y concentración de PM10 de la

Secretaría.

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31

En la Tabla 6 se muestran los coeficientes de correlación de Spearman entre el

número de cepas con los datos de: PM10 Muestreado, PM10 Secretaría, Presión

Barométrica y Temperatura. Un pequeño valor del coeficiente no revela que no exista

correlación ya que las variables pueden presentar una relación no lineal (Pita & Pértega,

2001). La correlación entre número de cepas y ambas concentraciones de PM10 tanto

Muestreado como de Secretaría parecen ser independientes, en este caso, el valor del

coeficiente es de – 0,4895 y -0,1818 respectivamente, es decir que existe una correlación

negativa y una correlación negativa no significativa entre el número de cepas y las

concentraciones de PM10. Mientras que la relación entre el número de cepas y los

parámetros meteorológicos son correlaciones positivas.

Tabla 6:

Coeficientes de Correlación Spearman entre el número de Cepas asociadas a PM10,

parámetros meteorológicos y contaminantes.

VARIABLES VARIABLE

No. CEPAS

[PM10] MUESTREADO -0,4895105

[PM10] SECRETARÍA -0,1818182

DIÓXIDO DE AZUFRE -0,3269231

DIÓXIDO DE NITRÓGENO -0,7458333

HUMEDAD RELATIVA -0,0209790

MONÓXIDO DE CARBONO -0,5458333

MONÓXIDO DE NITRÓGENO -0,6291667

ÓXIDOS DE NITRÓGENO TOTALES -0,6791667

OZONO 0,7080420

RADIACION SOLAR 0,6101399

VELOCIDAD DEL VIENTO 0,2185315

PRESIÓN BAROMÉTRICA 0,7220280

TEMPERATURA 0,6451049

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32

CAPÍTULO 4: DISCUSIÓN

Quito es una ciudad que se encuentra próxima a volcanes en actividad eruptiva y

explotación de minas. Debido a ubicarse a una altura aproximadamente de 2.800 m.s.n.m.

la quema de combustibles fósiles con alta cantidad de azufre se ve limitada, obligando a

los automotores a realizar mayores esfuerzos para vencer dichas irregularidades,

provocando altas emisiones de azufre y material particulado. Según Díaz, 2006, citando a

la Organización Mundial de la Salud, 2003, la erosión del suelo, la explotación de las

canteras y la quema de combustibles fósiles son las mayores fuentes de material

particulado. De todas las estaciones, según los datos otorgados por la Secretaría de

Ambiente (Anexo 5), los niveles de PM10 varían constantemente, es decir, que ninguna

de las estaciones presenta siempre mayor concentración sobre las otras estaciones.

Cabe mencionar una pequeña descripción de las estaciones de muestreo. La

estación Jipijapa y Belisario se encuentran dentro del perímetro urbano de la ciudad de

Quito, ambas estaciones se encuentran en lugares donde existe gran afluencia de carros en

horas pico. La estación Jipijapa está dentro de la Secretaría de Ambiente, mientras que la

estación Belisario se halla dentro de un instituto de educación secundaria, a 50 metros se

localiza una clínica privada. Las estaciones Tababela y Los Chillos se sitúan fuera del

perímetro urbano de la ciudad de Quito. La estación Tababela se encuentra dentro de una

Unidad educativa, junto a terrenos que se dedican a la agricultura y ganadería a pequeña

escala, la afluencia de carros es mínima; mientras que la estación Los Chillos, está dentro

de una institución privada de telecomunicaciones, donde no hay gran afluencia de carros,

rodeada de viviendas, locales comerciales pequeños y terrenos baldíos.

Durante los meses de muestreo abril, mayo y junio de 2016 se observó que la

concentración de PM10 muestreado se comportó similar que la concentración de PM10

de Secretaría de Ambiente, es decir, que existió un factor común que permite captar mayor

cantidad de partículas de PM10, según Díaz, 2016, las mayores concentraciones de PM10

coincidieron con la velocidad promedio de vientos durante la época monitoreada, en la

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Figura 15 y en la Tabla 13, existió un ligero aumento de la concentración de PM10 de

Secretaría de Ambiente en el mes de mayo con respecto a los meses de abril y junio de

2016.

Figura 15: Gráfica comparativa de la velocidad del viento en las cuatro estaciones

durante tres meses de muestreo. Los datos de la estación Belisario y Jipijapa son las

mismas. Fuente: (Secretaría de Ambiente, 2016)

La OMS establece que cada país tiene la potestad de considerar normas de calidad

de aire acorde a su realidad social, técnica y económica, para lo cual, el gobierno

ecuatoriano debe realizar un estudio cuidadoso de las condiciones locales propias, antes

de adoptar las guías directamente como normas con validez jurídica (Secretaría de

Ambiente, 2016). La Norma de Calidad del Aire Ambiente (NECA) es la referencia

nacional obligatoria para evaluar el estado de la contaminación atmosférica, publicada

como parte constituyente del Texto Unificado de la Legislación Ambiental Secundaria

(TULAS), Libro IV De la calidad Ambiental, Anexo 4, en el cual se incluyen los límites

máximos permitidos por el contaminante. En este caso el Material Particulado, cuyos

promedio aritmético de monitoreo continuo durante 24 h, no debe exceder de 100 µg.m3.

Dentro de este rango encontramos los niveles deseables (entre 0 – 50 µg.m3) y aceptables

(entre 51 – 100 µg.m3) (Secretaría de Ambiente, 2016). Los datos obtenidos de PM10

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muestreado indican que dos de las estaciones rebasaron el límite deseables, la primera en

Belisario en el Muestreo I y el segundo en Jipijapa en el Muestreo II con valores de 58,785

y 210,852 respectivamente; este último valor puede deberse a un error en la manipulación

del filtro o un error en la lectura de datos; mientras que con el otro valor, como ya se

mencionó anteriormente pudo ser por la gran afluencia de carros en esa zona. Además en

el Muestreo V en la estación Los Chillos, el peso del filtro muestreado disminuyó,

probablemente porque a que al momento de muestrear, una corriente de aire desprendió

un pedazo del filtro, el cual no pudo ser recuperado.

Ecuador, al ser un país en vías de desarrollo, el proceso de transformación

industrial avanza a pasos agigantados, pero a diferencia de los países ya industrializados,

las necesidades básicas no están al alcance de las manos, y es común encontrar personas

con infecciones respiratorias (IR) causadas por bacterias patógenas relacionadas con el

material particulado (Hernández, 2009).

EL material particulado ha sido extensamente estudiado a nivel físicoquímico

(Cao, 2014, citando a He K., 2001), sin embargo es poco lo que se conoce a nivel

microbiológico. Hasta ahora, no se ha demostrado concluyentemente que ningún

componente del PM sea inofensivo (Cao, 2014, citando a Fowler D., 2013). Estudios de

Clifton, 2010, y Eames, 2009, muestran que los bioaerosoles contienen patógenos

responsables de causar infecciones respiratorias. La mayoría de estudios realizados a

bacterias del aire se llevan a cabo en ambientes hospitalarios.

Se identificaron cinco de las diez bacterias de interés causantes de infecciones

respiratorias a lo largo de la investigación por medio de pruebas bioquímicas: S. aureus,

P. aeruginosa, E. coli, K. pneumoniae, E. cloacae. Aparentemente A. baumanii pudo

identificarse bioquímicamente, pero al someterla a pruebas extras junto a la herramienta

de identificación bacteriana online ABIS versión 12 (Figura 12), se pudo descartar su

posterior identificación por técnicas moleculares.

Staphylococcus aureus puede causar diferentes formas de infecciones, sean

lesiones localizadas en piel, incluso infecciones profundas como osteomielitis y

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endocarditis. A nivel hospitalario, S. aureus se ha convertido en la mayor causa de

infecciones nosocomiales (Foster, 1996), lo cual representa un serio problema de salud

debido a que su distribución se extiende a nivel mundial. Estos brotes están surgiendo de

manera alarmante en la mayoría de los países industrializados (Zandejas, Avalos, & Soto,

2014). Staphylococcus aureus se encuentran ampliamente distribuido en el aire, leche,

agua potable, aguas residuales. En la Figura 16 se observa el porcentaje de cepas

identificadas durante toda la investigación, en donde S. aureus es la cepa que más se logró

identificar con un 7,56% del total, siguiendo P. aeruginosa con un 6,72% del total, luego

E. cloacae con 0,84% y finalmente E. coli y K. pneumoniae con un 0,56%. A partir de la

década de los 80 el número de infecciones a causa de S. aureus ha incrementado tanto en

comunidades como en hospitales, los cual puede ser explicado por el aumento de la

supervivencia de la población general (Zandejas, 2014, citando a Tibavizco, 2007) y como

se corrobora en el Anexo 3, las cepas S. aureus y P. aeruginosa fueron identificadas en

todas las estaciones.

Figura 16: Porcentaje de cepas identificadas durante toda la investigación, de un total

de 357 cepas. Donde solo un 16,246% pudieron ser identificadas.

0,840%

0,560%0,560%

6,723%

7,563%

83,754%

E. cloacae

E. coli

K. pneumoniae

P aeruginosa

S. aureus

Otro

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El género Klebsiella es un huésped habitual saprófito del hombre y animales, se

encuentra difundido ampliamente en la naturaleza, principalmente en ambientes acuáticos,

suelo, aguas superficiales, efluentes de industrias y vegetación (Bagley, 1985). Dentro del

DMQ se pudo identificar a dos cepas, correspondientes a las estaciones de Jipijapa y

Belisario, las cuales se encuentran dentro del perímetro urbano. Klebsiella pneumoniae es

ocasionalmente asociada con bacteriemia, a menudo con una alta tasa de mortalidad, y es

considerada como una de las mayores causas de infecciones nosocomiales (Percival, y

otros, 2004).

Según la investigación de Blanco, 2005, sobre la caracterización de PM como

factor de riesgo sobre la salud en una localidad de Colombia, se identificó E. coli en el

material particulado de una zona residencial. Similarmente en la presente investigación la

aparición de E. coli corrobora los resultados obtenidos por Blanco, a diferencia de que las

estaciones Los Chillos y Tababela se ubican fuera del perímetro urbano, y que ambas están

próximas a terrenos ya sean baldíos o sembríos, con abonos orgánicos y agua de riego. E.

coli comúnmente no tiene relevancia en el campo de enfermedades respiratorias, pero sí

lo tiene en el campo de enfermedades gastrointestinales. En el caso de infecciones, la

neumonía cavitada es poco frecuente, en este tipo de infecciones se produce por la necrosis

del parénquima pulmonar secundaria tanto a la invasión bacteriana como a la respuesta

inmunológica del huésped frente a las estructuras de la pared del microorganismo

(Bastidas, Ibarra, & Giraldo, 2012).

E. cloacae se encuentra distribuida en la naturaleza, ya sea en el agua, aguas

residuales, suelo y alimentos. Se origina como un comensal en la microflora intestinal de

animales y humanos, también es patógeno en plantas e insectos. La diversidad de hábitats

se ve reflejada en la variedad genética (Davin, 2015, citando a Mezzatesta et al.., 2012).

Jipijapa fue la única estación en las que se encontró E. cloacae. Respecto a su

patogenicidad, es oportunista y que puede causar una variedad de condiciones, incluyendo

infecciones en ojos y piel, neumonía e infecciones en el tracto urinario (Rogers, S/A). No

es un patógeno primario de humanos, pero ha sido considerado una importante causa de

infecciones nosocomiales (Keller, Pedroso, Ritchmann, & Silva, 1998).

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37

A. baumanii, Corynebacterium sp, Legionella spp y S. marcescens no pudieron

ser identificadas con pruebas bioquímicas, por lo tanto, tampoco fue posible realizar una

posterior identificación por técnicas moleculares.

Los organismos pertenecientes al género Acinetobacter se encuentran a menudo

difundidos por naturaleza y pueden ser recolectados de casi todas las muestras de agua

superficial y de suelo (Howard, O'Donoghue, Geeney, & Sleator, 2012). Sin embargo, su

forma patógena tiene como objetivo a los tejidos húmedos como membranas mucosas o

áreas de la piel expuestas, normalmente esto sucede en la unidad de cuidados intensivos

en hospitales a nivel mundial. Según el sistema nacional de vigilancia epidemiológica del

Ministerio de salud MINSAL, 2003, A. baumanii es el principal patógeno causante de

neumonía asociada a ventiladores mecánicos en hospitales.

Algunas cepas de Corynebacterium habitan en el ambiente, sin embargo,

preferentemente se las encuentra en las mucosas de mamíferos y flora normal de la piel.

No suelen distribuirse uniformemente y en ocasiones ocupan nichos específicos

(Fernández, 2010).

Distintas especies de Legionella son encontradas en fuentes ambientales,

principalmente fuentes acuáticas; asociadas sobre todo a la existencia de lodos y materia

orgánica, donde Legionella crece intracelularmente en protozoos dentro de biofilms que

están dispersos en la naturaleza y también en dispositivos médicos (University of

Louisville, 1999). La detección de Legionella es complicada debido a sus requerimientos

de L-cisteína y pirofosfato férrico necesarios para su crecimiento, su habilidad para entrar

en un estado viable no cultivable, su asociación con protozoos y la aparición en biofilms

(University of Louisville, 1999). En el caso de la identificación de Legionella spp al no

disponer de suficiente cantidad de agar BCYE, se procedió a solo realizar un aislamiento

a partir del Muestreo VI, del cual se llevaron a cabo las pruebas bioquímicas. No se detectó

Legionella en ninguno de los medios de cultivo.

Especies de Serratia son fácilmente encontradas en el ambiente, específicamente

S, marcescens es comúnmente encontrada en agua, suelo, animales, insectos y plantas; y

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cuya patogenicidad se presenta en humanos, animales e insectos (Mahlen, 2011). El agua

parece ser el ambiente natural predilecto de S. marcescens, como lo menciona Mahlen,

2011, citando a Grimont, 2006, en una investigación en donde S. marcescens es la especie

predominante en el agua de un río. En ninguno de los muestreos fue posible identificar S.

marcescens, esto puede deberse a que los muestreadores semiautomáticos se encuentran

a más de 3 m sobre el nivel del suelo, dificultando la entrada de partículas se suelo o

bioaerosoles; esto en las estaciones de Tababela y Los Chillos; mientras que en las

estaciones de Belisario y Jipijapa al encontrarse en medio de la ciudad, es poco probable

que partículas de suelo o bioaerosoles ingresen al muestreador.

La correlación de Spearman entre número de cepas y ambas concentraciones de

PM10 (tanto Muestreado como de Secretaría) parecen ser independientes, en este caso, el

valor del coeficiente es de – 0,4895 y -0,1818 respectivamente, es decir que existe una

correlación negativa y una correlación negativa no significativa entre el número de cepas

y las concentraciones de PM10. Las concentraciones de PM10 asociadas a bacterias

fueron altamente variables, lo cual puede atribuirse a la acción antropogénica y a cambios

atmosféricos (Alghamdi, 2014, citando a Kellogg, 2004).

Mientras que la correlación entre el número de cepas y los parámetros

meteorológicos resultan variables, donde la humedad relativa es el parámetro que menos

correlación presenta. Sin embargo la humedad relativa puede causar agrupamiento de

partículas biológicas y no biológicas, causando un aumento en la capacidad de

supervivencia y a la rápida sedimentación y eliminación de partículas del aire.

Di Giorgio et al., (1996), encontraron que la humedad relativa no tuvo efecto significativo

sobre las partículas viables. El ozono es conocido como un oxidante fototóxico, y se

encontró una correlación positiva con las baterías asociadas a PM10, lo cual puede

atribuirse al bajo tiempo de retención entre el O3 y el PM10 para matar microorganismos

o reaccionar con componentes del PM10, es decir que una considerable cantidad de PM10

pudo haber sido transferida al lugar de muestreo desde fuentes lejanas, por lo que los

microorganismos pudieron tener tiempo para llegar a ser afectados.

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La velocidad del viento está ligeramente correlacionada con bacterias asociadas a

PM10, y actúa como un factor de dilución. La velocidad de decaimiento de bacterias en

el aire aumenta a medida que incrementa el tiempo de vida del aerosol, ya que la velocidad

del viento ayuda al transporte de los bioaerosoles de la fuente al sitio de muestreo y al

mismo tiempo disminuye la concentración neta de los aerosoles debido a la difusión.

Durante el tiempo de vida del aerosol, éste sufre transformaciones fisicoquímicas en la

atmósfera, tales como coagulación, reordenación estructural, evaporación, adsorción y

absorción, que pueden aumentar o disminuir la supervivencia de los microorganismos

(Alghamdi, y otros, 2014).

Según Alghamdi et al., (2014), citando a Hood, 1973 y a Handley-Webster, 1995,

los efectos de contaminantes y factores meteorológicos asociados a PM son complejos, ya

que las fracciones biológicas (microorganismos) asociadas a PM son atribuidas a diversos

factores como: la composición del PM, parámetros meteorológicos, tipo contaminación,

transformaciones fisicoquímicas, características geográficas, entre otras; de las cuales, la

composición del PM puede afectar la viabilidad de las bacterias.

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CAPÍTULO 5: CONSLUSIONES

La estación Jipijapa fue la única estación en donde uno de los valores de la

concentración de PM10 sobrepasó los límites de la norma de Calidad del

Aire, con 210,85 µg.m-3.

La correlación entre la concentración de bacterias en el PM10 no fue

significativa.

S. aureus fue la bacteria mayormente identificada en todas las estaciones,

en un segundo lugar P. aeruginosa; principalmente en Tababela.

A. baumanii, Corynebacterium sp, Legionella spp y S. marcescens no se

encontraron en el PM10.

La concentración de microorganismos asociados a PM10 tuvo gran

variabilidad debido a que se encuentran influenciados por condiciones

meteorológicas, contaminantes del aire, y otras.

El O3 tiene una alta correlación positiva con el PM, mientras que la

velocidad del viento ayuda a la supervivencia de los microorganismos

aerotransportados así como también a la dilución de la concentración de

PM10.

Esta investigación ayuda a entender qué factores intervienen en la

supervivencia, movilidad y viabilidad de no solo las bacterias, sino los

microorganismos en general.

La información sobre la fuente de las bacterias transmitidas por el aire

puede ser de importancia al momento de realizar una planificación urbana

para reducir la contaminación por PM10 y la propagación de infecciones

por bacterias en el aire.

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CAPÍTULO 6: RECOMENDACIONES

Es necesario ampliar la información sobre el Material Particulado, incentivando a

la investigación de este tipo de contaminación, ya que no existe mayor información

disponible sobre bioaerosoles.

Se debe aumentar el número de estaciones en el DMQ, ya que las cuatro estaciones

no abarcan a todo el DMQ, sino una parte de él.

Se deben realizar estudios sobre la dinámica de los bioaerosoles, ya que así se

podría predecir posibles infecciones respiratorias.

Es necesario complementar la información con herramientas de biología molecular

para identificar no solo bacterias, sino también virus y hongos.

Investigar sobre el movimiento de los bioaerosoles dentro y entre Instituciones de

salud.

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