CHARITO CROMATOGRAFÍA
102
1 I. INTRODUCCIÓN El suelo es un recurso natural renovable resultado de una mezcla de sólidos orgánicos e inorgánicos, aire, agua, y microorganismos. Un adecuado manejo de los suelos para cualquier actividad agrícola necesita tener previo conocimiento de la fertilidad de los suelos como medio propicio para el crecimiento, desarrollo y calidad de los cultivos aprovechando la productividad de una manera sostenible. Interpretar y predecir los efectos del manejo sobre la calidad del suelo a través de indicadores confiables y sensibles constituye una de las principales finalidades de la moderna ciencia del suelo. Hay necesidad de contar con indicadores para interpretar los diferentes datos de calidad de suelo como paso fundamental para definir sistemas de producción sustentables.
Transcript of CHARITO CROMATOGRAFÍA
1
I. INTRODUCCIÓN
El suelo es un recurso natural renovable resultado de una mezcla
de sólidos orgánicos e inorgánicos, aire, agua, y microorganismos. Un
adecuado manejo de los suelos para cualquier actividad agrícola necesita tener
previo conocimiento de la fertilidad de los suelos como medio propicio para el
crecimiento, desarrollo y calidad de los cultivos aprovechando la productividad
de una manera sostenible.
Interpretar y predecir los efectos del manejo sobre la calidad del
suelo a través de indicadores confiables y sensibles constituye una de las
principales finalidades de la moderna ciencia del suelo. Hay necesidad de
contar con indicadores para interpretar los diferentes datos de calidad de suelo
como paso fundamental para definir sistemas de producción sustentables.
Las técnicas de diagnóstico de la fertilidad del suelo están
orientados a la parte física y química, estos análisis son caros y difíciles de
manejar en una agricultura donde se plantea que para la sostenibilidad sea de
insumos inferiores ya que los agricultores manejan de 1 a 5 Ha, sus ingresos
económicos son bajos, lo que limita acceder a tecnologías de diagnóstico de
suelo tradicional.
2
Frente a estas limitantes se presenta un método sencillo que con
una práctica mínima cualquier persona puede realizarlo. “La cromatografía”, es
un método que sirve para hacer análisis cualitativos de tierras y compostas y
que puede ser realizado en cualquier lugar a bajo costo y de forma rápida.
Permite conocer, de manera inmediata y gráfica, la salud de las tierras y la
calidad de sus aspectos biológicos, físicos y químicos.
El presente estudio, “Uso de dos técnicas para diagnosticar la
fertilidad del suelo en el cultivo de café orgánico” se llevó a cabo en los predios
de los agricultores del sector Pusapno, Distrito de Chontabamba, Provincia de
Oxapampa, Región Pasco, con el propósito de contribuir hacia el camino de la
investigación, para determinar la calidad de sus suelos en los aspectos
biológicos, físicos y químicos.
Los agricultores del sector Pusapno, tienen como principales cultivo
el café, y practican el cultivo de manera orgánica, por lo que es necesario el
desarrollo de estudios sobre la fertilidad de los suelos para conocer la calidad
de suelo que presentan.
Por la disposición actual descrita, este trabajo ha realizado ensayos
con dos técnicas para determinar fertilidad de los suelos y se utilizó en
combinación con otros indicadores, tales como % de materia orgánica, valor del
humus y otros parámetros que proporcionan una idea más completa de la salud
del suelo y/o calidad.
3
1.1. Objetivos
1.1.1. General
- Evaluar dos técnicas de diagnóstico de la fertilidad del suelo
en el cultivo de café orgánico en los predios de los
agricultores del Sector Pusapno, Distrito de Chontabamba,
Provincia de Oxapampa, Región Pasco.
1.1.2. Específicos
- Realizar el análisis físico químico del suelo en los predios de
café orgánico de los agricultores del Sector Pusapno.
- Realizar el análisis cromatográfico del suelo en los predios
de café orgánico de los agricultores del Sector Pusapno.
- Correlacionar los resultados de los análisis físicos químicos
y cromatográfico.
4
II. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. Fertilidad de los suelos
La fertilidad del suelo es una cualidad resultante de la
interacción entre las características físicas, químicas y biológicas del
mismo y que consiste en la capacidad de poder suministrar condiciones
necesarias para el crecimiento y desarrollo de las plantas. En lo referente al
suministro de condiciones óptimas para el asentamiento de las plantas, estas
características no actúan independientemente, sino en armónica interrelación,
que en conjunto determinan la fertilidad del suelo. Por ejemplo, un suelo
puede estar provisto de suficientes elementos minerales fertilidad química,
pero que no está provisto de buenas condiciones físicas y viceversa
(ANDERSON y INGRAM 1993).
Igualmente, la fertilidad del suelo no es suficiente para el
crecimiento de las plantas; el clima juega un papel importante y determinante
en muchos casos. Por ejemplo se puede tener un suelo fértil y que dadas las
temperaturas extremas no es capaz de producir buenas cosechas, entonces
es un suelo fértil, no productivo. Respecto a su constitución, en general y
en promedio el volumen se encuentra en una proporción ideal y está dada
por 45 – 48 % de partículas minerales, 5 – 2 % de materia orgánica, 25 % de
5
aire y 25 % de agua (FUENTES, 1989).
2.2. Técnicas en el diagnóstico de la fertilidad del suelo
2.2.1. Análisis de suelo
El análisis de suelos es una herramienta valiosa del manejo de los
suelos. Un análisis de suelos hecho en un laboratorio bien controlado puede
determinar el contenido de nutrientes disponibles a la planta, así como la
capacidad nutritiva del suelo estudiado. Para que el agricultor haga un uso
óptimo de tierra y de sus condiciones climáticas para la producción de cultivos,
es importante que conozca la reacción del suelo y sus niveles nutritivos. Con
este conocimiento y con las recomendaciones dadas por el laboratorio de
suelos, el agricultor ya puede decidir cuánto debe gastar para obtener los
resultados deseados (HINRICH, 1993).
El informe del análisis de suelo contiene información sobre valores
del pH, del contenido de materia orgánica, de fósforo y potasio disponibles de
la planta. El laboratorio dará también contenidos del calcio y de magnesio en
los lugares donde se le requiera. La información de los análisis se
complementa con una interpretación que expresa los niveles de los nutrientes
individuales valorados como bajos, medios o altos. El informe acaba con
recomendaciones para el uso de fertilizantes para los cultivos en las tierras
investigadas. Aquí se incluyen también sugerencias relacionadas con los tipos
adecuados de fertilizantes, las cantidades de cal y fertilizante, y su correcta
aplicación.
6
Los análisis de suelos se realizan cada tres o cuatro años. Si éstos
son debidamente registrados proporcionan una información excelente sobre los
cambios en los niveles de fertilidad, sobre la existencia de nutrientes residuales
y sobre la probabilidad de un desbalance de nutrientes (FUENTES, 1989).
El análisis químico del suelo constituye una de las técnicas más
utilizadas para la recomendación de fertilizantes. Es una fuente de
información vital para el manejo de suelos y permite:
- Clasificar los suelos en grupos afines.
- Predecir las probabilidades de obtener respuesta positiva a la
aplicación de elementos nutritivos.
- Ayudar en la evaluación de la fertilidad del suelo.
- Determinar las condiciones específicas del suelo que pueden
ser mejoradas (HINRICH, 1993).
Se ha demostrado que dichos análisis constituyen una excelente
guía para el uso racional de los fertilizantes. Sin embargo, no debe olvidarse
que en la producción de cultivos, interviene un conjunto de factores de gran
importancia como: clima, variedades, control fitosanitario, manejo general y
otras, que podrían limitar el desarrollo adecuado de una planta si no se
encuentra en el grado óptimo requerido. De todas maneras, la eliminación de
las deficiencias nutricionales se considera la más decisiva, responsable en la
7
mayoría de los casos hasta aumentos de 50 % en el rendimiento. El resultado
del análisis de suelo indica la probabilidad de obtener una respuesta adicional
con el fertilizante que se utiliza.
En general, mientras más elevado sea el contenido de
nutrimentos en el suelo, menor será la probabilidad de obtener una respuesta
a la aplicación de fertilizantes. El uso de análisis químico del suelo como guía
para la adición de fertilizantes, involucra dos etapas: la interpretación de los
resultados y la recomendación. La interpretación se refiere a la estimación de
obtener respuesta mediante el empleo de fertilizantes, mientras que la
recomendación es la interpretación práctica de los resultados obtenidos para
aplicarla en la producción comercial de cultivos (ROMERA, 2009).
2.2.2. Cromatografía del suelo
2.2.2.1. Antecedentes de la cromatografía
Hace casi medio siglo, el Dr. Ehrenfried Pfeiffer, pensador y
estudioso de temas agrícolas y de la salud humana, desarrolló una serie de
métodos a los cuales llamó “Técnicas de formación de imágenes”. Entre dichas
técnicas se encuentran la cromatografía en papel circular, la cristalografía
sensible y la dinamólisis capilar, cuyo objetivo es obtener una imagen de la
“vitalidad” de las sustancias. En Innovak Global desde el año 2007 se ha
realizado una intensa investigación con la técnica de cromas en papel circular,
obteniendo buenos resultados en el monitoreo de suelos y tejidos vegetales,
comprobando mediante esta técnica una vez más que nuestros productos
8
amigables con la naturaleza son los únicos capaces de devolverle la vida a sus
suelos.
En este sentido y siempre motivados por mantenerlo informado de
temas innovadores, a continuación compartimos con usted información
relevante de nuestra experiencia con la prueba de cromas (COAS, 2011).
Mediante la cromatografía se puede obtener una visión profunda
del estado en que se encuentra su suelo e identificar las alteraciones o
perturbaciones que impiden que en este, la vida lleve a cabo funciones tan
importantes como: la fijación de nitrógeno atmosférico, la solubilización de
formas no solubles o no disponibles para las plantas de minerales existentes en
el suelo, la retención de humedad, la construcción de una estructura porosa,
etc. En los cromas el productor obtiene pautas que, respaldas por el
conocimiento de la condición natural y funciones de un suelo sano, coadyuvan
a la construcción de un plan de acción que lo lleve a regenerar la capacidad de
fertilidad natural de su suelo. Para el caso de las compostas, el uso de
cromatografías monitoreando la descomposición del material a lo largo del
proceso de compostaje se convierte en una herramienta invaluable que in situ
abre en horas acceso a información valiosa sobre la calidad y eficacia del
proceso facilitando la toma de decisiones.
Una cromatografía es información visual, gráfica de la salud del
suelo o composta que nos muestra su estado en el momento de realizar el
croma, pero mejor aún expresa el proceso en el que se encuentran los distintos
elementos que lo integran, mostrándonos el comportamiento de la biología, en
9
su interacción con la parte mineral del suelo, con la parte orgánica, y su efecto
en la física y química del suelo. Más la cromatografía no se limita al análisis
cualitativo de suelos y compostas, cada vez más productores y técnicos que
han aprendido esta técnica expande su aplicación. Algunos la usan ya para
determinar presencia de agroquímicos en frutos y hojas de plantas, para
identificar y evaluar el efecto negativo y dañino de los herbicidas en la fertilidad
del suelo, para evaluar concentración de ingredientes activos en plantas
medicinales y extractos preparados con estas, o en hierbas deshidratadas y
productos alimenticios, frescos, líquidos, secos o procesados. Otro grupo está
evaluando vitaminas y enzimas en los alimentos. Desde nuestra parte y
adicionalmente a lo anterior la investigación de (Consejo de expertos que
trabaja por el bienestar de la sociedad, promoviendo el equilibrio entre el
consumo y la regeneración de los recursos naturales), tiene una preferencia
sobre el potencial social de esta metodología: agregando a su utilidad como
herramienta en el aspecto técnico – agronómico de la producción agropecuaria,
su utilización como instrumento de autocertificación de calidad, al empoderar a
los productores para mostrar a los consumidores la calidad de su producto en
una forma gráfica que mientras evidencia de forma simple y clara las ventajas
de una producción natural sobre la producción industrial, no deja dudas sobre
la ética y el respeto del productor hacia las prácticas libres de venenos y
agroquímicos en su actividad productiva (COAS, 2011).
2.2.2.2. Análisis cromatográfico del suelo
La cromatografía es un método que sirve para hacer análisis
10
cualitativos de tierras y compostas y que puede ser realizado en cualquier
lugar a bajo costo y de forma rápida. Permite conocer, de manera
inmediata y gráfica, la salud de las tierras y la calidad de sus aspectos
biológicos, físicos y químicos.
También sirve para determinar el momento en el que compostas y
biofertilizantes obtienen su máximo potencial, asegurando con esto su calidad
y eficiencia. El método es tan sencillo que con una práctica mínima, cualquier
persona puede realizarlo (ICA, 1981).
Figura 1. Capacitación de agricultores en cromatografía de suelos.
2.2.2.3. Interpretación
El principio de la interpretación de la “prueba del croma” se basa
en el hecho de que el humus se forma durante el composteo o génesis del
suelo y que, a medida que el proceso avanza, las sustancias húmicas de
11
peso molecular relativamente bajo, producidas inicialmente, se polimerizan y
convierten en humus maduro menos soluble y macromolecular. Los cromas
se interpretan por la forma y color de las zonas central, transicional y
periférica. Varios son los colores a observar: blanco, rosa, violeta, verde,
amarillo y naranja; asimismo se analizan las formas tales como suave,
dentado o irregular (RODRIGUEZ, 2000).
La prueba del croma proporciona una idea visual de la salud del
suelo/composta en el momento en que se procesa la muestra. Sin embargo,
deberá considerarse que el proceso de composteo y la biología del suelo son
procesos dinámicos, de tal forma que los cromas hechos en diferentes
épocas del año o diferentes momentos en el proceso de compostaje pueden
variar enormemente. Por otro lado, debido a que los microorganismos del
suelo son responsables de la humificación de la materia orgánica cruda en
los suelos (o durante el proceso de composteo), la “prueba del croma” es un
buen indicador de la actividad microbiana en el suelo. Las sustancias
húmicas migran diferentes distancias por acción capilar dependiendo del
peso molecular que posean y la afinidad con el solvente y la fase estacionaria
(papel filtro).
El grado de humificación que presenten es también un indicador
del nivel de actividad microbiana. Para aprender a interpretar las imágenes
de la “prueba del croma” es fundamental iniciar con sustancias o muestras
conocidas y gradualmente formar con éstas una colección de cromas patrón
o estándares. A continuación se detallan los puntos más importantes a
12
considerar en un croma:
- Número, ancho y color de las diferentes zonas formadas, así
como la regularidad o irregularidad de su forma.
- Formación de anillos entre la zona media y la zona externa.
- Color de las zonas: el color café en diferentes tonalidades
distribuido en gran parte de la imagen se atribuye a una buena
formación de humus coloidal; el café oscuro se relaciona con
ácidos húmidos; las radiaciones de color violeta son
sustancias minerales o reducción de materia orgánica. En el
caso de extractos de plantas, preparaciones de vitaminas, etc.
la interpretación de los colores cambia considerablemente.
- Forma de la terminación de las radiaciones (terminación en
punta), número y color. Las radiaciones color violeta en la
zona interna son indicadores del proceso de descomposición
de minerales o mineralización. Las diferentes fases de
fermentación (1 – descomposición, 2 – formación de humus, 3
– mineralización y 4 – descomposición avanzada) están
claramente indicadas en los cromatogramas de suelos y
compostas (RODRIGUEZ, 2000).
13
Figura 2. Zonas que presenta un croma.
Figura 3. Tierra de valle con poca fertilidad y anegada.
Una arcilla pesada, café proveniente
de un prado húmedo, mal drenado
en un valle. Tiene un cultivo más o
menos bueno de pasto pero con
muchos ácidos grasos y una
población pobre de trébol. El humus
crudo era ácido. Observamos la
ausencia de una zona externa lo
cual indicará formación de humus
coloidal estable.
Zona centralZona de vida - oxigenación
Zona InternaZona mineral
Zona externa Zona protéica o materia orgánica
Zona enzimáticaZona de nutrición
Zona periféricaZona de manejo del croma
14
Figura 4. Tierra negra muy fértil.
Figura 5. Tierra fértil orgánica de pastizales.
Un suelo medio pesado, bueno para
pradera de pastoreo buenos pastizales, que
algunas veces se encuentra anegado pero
con una formación de humus razonable.
Este suelo ha sido mejorado durante un
periodo de 4 años desde un pH de 5,5 a 6,
desde un contenido de materia orgánica de
2,8 % a 4,5 %, la zona perimetral del
cromatograma indica el grado de formación
de humus, la zona intermedia y las puntas
muestran la influencia de un drenaje
incompleto hacia un grado leve.
15
Figura 6. Suelo bien aireado.
Figura 7. Compost de desechos de un basurero de ciudad.
Un suelo bien aireado, bien drenado
proveniente de la misma granja. Éste
terreno siempre ha producido buenas
cosechas.
El color café de la zona intermedia y
perimetral muestran un matiz ligeramente
diferente pero muy significativo, con
menos gris y más café y amarillo.
Cromatograma de una composta
elaborada con desechos de mala calidad
proveniente de un basurero citadino, con
bajo contenido d desechos orgánicos pero
con mucha ceniza y polvo.
En el cromatograma es notable la falta de
una zona perimetral en buenas
condiciones, la zona intermedia es café-
grisácea, con puntas deformes y más bien
abultadas.
La zona intermedia es grande, su
radiación violeta es una indicación del alto
contenido de materia mineral en ésta
composta.
16
Figura 8. Compost de desechos del mismo basurero pero con
tratamiento de microorganismos.
Figura 9. Composta hecha de estiercol de establo y desperdicios
de café.
Notamos la presencia de una zona
externa perimetral de color café claro, lo
que indica una buena formación de
humus. Las puntas de la zona intermedia
están claramente formadas y muestran un
color café vivo nada grisáceo. La zona
mineralizada del centro es ligeramente
café sobre la radiación violácea indicando
que la mineralización no ha avanzado
tanto como en la Figura 7. Aunque la
muestra de este cromatograma contiene
menos materia orgánica, contenía más
nitrógeno. Sus estado de humus, su
micro-vida y su valor biológico fueron
considerablemente mejores, los cual está
indicado por su alto contenido de
actinomicetos.
El cromatograma fue hecho de una
composta elaborada correctamente con la
ayuda de microorganismos, compuesta de
60 % estiercol de establo, 30 % desechos
de café y 10 % de tierra, incluyendo una
pequeña cantidad de basura. Aquí vemos
una formación de humus casi ideal con
una borde perimetral y una zona
intermedia de color café intenso, y con
pequeñas puntas bien formadas. Hasta la
zona central es café y todavía no muestra
la radiación violeta. La fase de
mineralización de la composta aún no
inicia.
17
Figura 10. Gallinaza fresca sin microorganismos.
Figura 11. Gallinaza con microorganismos.
Cromatograma de estiércol fresco de pollos
de engorde tal como llego a la planta de
compostaje que no utiliza microorganismos.
Este estiércol fue colectado de las granjas y
contenía los excrementos más una gran
cantidad de aserrín. La muestra mezclada
que se tomó fue obtenida por cuarteo, fue
molida en un molino de laboratorio se
extrajeron 5 g con 50 cm3 se usaron para
cada cromatograma.
La ilustración muestra que estamos lidiando
con material orgánica cruda y no con
compost o humus.
Este cromatograma muestra una condición
donde la fase de la segunda fermentación
se ha sobrepasado y la mineralización ha
avanzado moderadamente. Vemos, por lo
tanto, una zona perimetral ancha (humus),
la bien formada zona intermedia – ambas
ya con un color grisáceo – y la zona
interna violeta con un matiz ligeramente
café. Una zona mineralizada violeta en
este caso era esperada dada la adición de
roca mineral a la mezcla original. La
composta en esta etapa se ve como tierra
y huele a tierra.
18
Figura 12. Compost de estiércol de aves de corral.
2.2.2.4. Patrones cromatográficos de la evolución del
suelo
Figura 13. Fertilidad mala, actividad microbiana poca y estructura
mínima.
Composta del mismo material mezcla y
procedimientos de la Figura 11, pero en un
proceso de mineralización no tan
avanzado.
La ancha zona perimetral de color café
intenso indica la presencia de humus muy
bueno y estable.
La zona intermedia, aunque pequeña pero
todavía con un matiz ligeramente café (no
grisáceo), indica la etapa de transición
entre la segunda y tercera fase de
fermentación. La radiación intermedia aún
con un ligero matiz café claro, indica el
inicio de la mineralización, así como la
presencia de materia estrictamente
mineral. Nuestra sugerencia fue detener la
fermentación en una está aún más
temprana.
19
Figura 14. Situación del suelo inestable, actividad microbiológica
poca y fertilidad baja/media.
Figura 15. Actividad microbiológica desarrollada, estructura buena
y fertilidad del suelo buena/muy buena.
20
Figura 16. Evolución de una composta de estiércol.
2.2.2.5. Reactivos que se utilizan para la cromatografía
Nitrato de plata (AgNO3), se encuentra entre las sales de plata, es
una de las más que se obtiene disolviendo plata pura en ácido nítrico y
cristalizando la sal por evaporación. Es una sustancia blanca que funde sin
descomponerse; si se la solidifica en moldes cilíndricos se fabrican barritas
que tiene gran acción cáustica sobre las heridas.
La acción de la luz sobre las sales de plata: la fotografía. El
ennegrecimiento de las sales de plata por la acción de la luz fue aprovechado
por la fotografía. Las placas fotográficas son una película de celuloide
impregnadas con sales de plata entre otras sustancias. Para obtener la
fotografía se somete a la placa sensible a la luz por un tiempo muy pequeño
21
de 1/10 seg a 1/25 seg el cual es suficiente para que se produzca sobre la
película la imagen latente, que se pone de manifiesto cuando se le aplica un
revelador obteniendo de este modo el negativo (ARIET, 2005).
Hidróxido de sodio (NaOH), A temperatura ambiente, el hidróxido
de sodio es un sólido blanco cristalino sin olor que absorbe humedad del aire.
Es una sustancia manufacturada. Cuando se disuelve en agua o se neutraliza
con un ácido libera una gran cantidad de calor que puede ser suficiente como
para encender materiales combustibles. El hidróxido de sodio es muy
corrosivo. Generalmente se usa en forma sólida o como una solución de 50%.
Otro nombre común del hidróxido de sodio es soda cáustica.
El hidróxido de sodio liberado a la atmósfera se degrada
rápidamente por reacciones con otras sustancias químicas, en el agua el
hidróxido de sodio se separa en cationes de sodio (átomos de sodio con una
carga positiva) y el anión hidróxido (átomos de hidrógeno y oxígeno cargados
negativamente), lo que disminuye la acidez del agua. Si se libera al suelo, el
hidróxido de sodio se separará en cationes de sodio y aniones de hidróxido
cuando entre en contacto con la humedad del suelo. El hidróxido de sodio no
se acumula en la cadena alimentaria (NORIEGA, 2005).
2.3. Indicadores de la calidad del suelo
Una de las fases fundamentales para el desarrollo de estudios
sobre la calidad del suelo es la definición de la misma y la identificación y
22
selección de las propiedades que puedan servir como indicadores de esa
calidad.
En nuestro concepto, la definición de calidad del suelo para una
cierta zona o región no debe ser tomada de la literatura, sino deberá ser
“construida” o elaborada a partir de los usos y expectativas que los productores
tengan para ese suelo o agrosistema. Corresponde a ellos indicar al
investigador cuál es su concepto de calidad e identificar que características son
deseables o no deseables y como esto se refleja en sus cultivos, en sus
animales, en su ambiente y en el manejo que se aplica (BAUTISTA, et al.,
2004).
Las características deseables o no deseables que señalen los
productores y la prioridad que den a cada uno de ellos deben valorarse por
parte del investigador, dentro del marco conceptual de la calidad del suelo,
considerándolos como guía para desarrollar indicadores que así tendrán
justificación y validez para esa zona, permitiendo responder con cierta precisión
a la pregunta de ¿cuáles son los indicadores más relevantes para esa área de
estudio?.
Otra ventaja de este enfoque es que los indicadores resultantes
ensamblan el conocimiento tradicional del productor con el conocimiento del
investigador permitiendo proponer medidas efectivas para mejorar el manejo
del suelo, lo cual se relaciona con la sustentabilidad del recurso y por lo tanto
con el desarrollo agrícola sustentable (BAUTISTA et al., 2004).
23
2.4. La agricultura orgánica
La agricultura orgánica es un sistema de producción que trata de
utilizar al máximo los recursos de la finca, dándole énfasis a la fertilidad del
suelo y la actividad biológica y al mismo tiempo, a minimizar el uso de los
recursos no renovables y no utilizar fertilizantes y plaguicidas sintéticos para
proteger el medio ambiente y la salud humana.
La agricultura orgánica involucra mucho más que no usar
agroquímicos. En Centroamérica se está produciendo una gran variedad de
productos agrícolas orgánicos para exportación (GUERRERO, 1993).
2.5. Requerimientos de un suelo para el cultivo de “café” Coffe arabica
Los suelos para el cultivo de café deben ser de fertilidad media a
alta, dicha fertilidad se viene a definir par los niveles críticos de los elementos
que se encuentren en él, pero fundamentalmente el equilibrio de los minerales
en el suelo. También es importante el porcentaje de arcilla y los tipos de
minerales que constituyen esa arcilla, debido a que en los suelos donde
predominan caolinita/halosita se muestra mayor capacidad de fijación de
fósforo. La clase de mineral de la arcilla tiene que ver también con la fijación y
aprovechamiento del potasio (MONGE, 1999).
Referente al pH el café prefiere los suelos ligeramente ácidos, es
decir un pH 5,0 – 6,0. Aún así se pueden obtener buenos rendimientos en
suelos más ácidos, siempre que las propiedades físicas del suelo sean
24
adecuadas. En los suelos cafetaleros es común encontrar pH inferiores a 5.0,
por lo que la adición de calcio como corrector de acidez es una práctica común
en el manejo de una plantación de café.
El contenido de materia orgánica en los suelos disminuye a medida
que aumenta la temperatura media anual y disminuye la precipitación media
anual. La productividad primaria neta de un ecosistema es el producto de la
estabilidad dinámica y se fundamenta en el suministro continuo de hojarasca.
El contenido de materia orgánica en el suelo favorece el reciclaje de
nutrimentos, favorece el crecimiento y desarrollo de las raíces adventicias y
área de absorción radicular y disminuye la incidencia de problemas con
nematodos.
Es una práctica común en el cultivo orgánico de café la adición de
materia orgánica como broza de café, gallinaza, compost, abono bocashi y
otros, con el fin de elevar el contenido de materia orgánica del suelo. En
resumen los suelos deben ser profundos, permeables, friables, y de buena
textura, bien aireados y con contenidos adecuados de arcillas.
2.5.1. Nutrición del cultivo
Según la literatura, el café requiere un sustrato con las siguientes
características: P (10 – 30 ppm), K (0,2 me/100 g suelo), Ca (4 – 20 me/100 g
suelo), Mg (1 – 10 me/100 g suelo), AI (0,3 me/100 g suelo), Fe (10 – 50 ppm),
Cu (1 – 20 ppm), Zn (3 – 15 ppm) y Mn (5 – 50 ppm) (MONGE, 1999).
25
III. MATERIALES Y MÉTODOS
III.1. Ubicación de la zona de estudio
III.1.1. Lugar de ejecución
Para el presente trabajo de investigación se recolectaron muestras
del sector Pusapno en los predios donde se cultiva el café orgánico y se
encuentran entre 1000 a 2000 msnm. El distrito de Chontabamba cuenta con
una extensión de 44,266.37 ha siendo el sector Pusapno uno de sus sectores
de mayor extensión.
Para los análisis físico químico y análisis cromatográfico del suelo
se contará con el apoyo del Laboratorio de Análisis de suelos de la Universidad
Nacional Agraria de la Selva.
III.1.1.1. Ubicación política
Región : Pasco.
Provincia : Oxapampa.
Distrito : Chontabamba.
Sector : Pusapno.
26
III.1.2. Características ambientales de la zona de estudio
III.1.2.1. Clima
El clima del distrito de Chontabamba en promedio tiene una
temperatura de 17 °C, precipitación anual 1550 ml y humedad relativa de 90 %.
III.1.2.2. Suelos
Los suelos dedicados al cultivo de café, tienen un origen muy
variado; existen un marcado predominio de suelos derivados de origen residual
y coluvial y en menos proporción de aquellos aluviales formados por los ríos.
En cuanto a su clasificación se reconocen principalmente las
siguientes órdenes de acuerdo a importancia en área, rendimiento y calidad:
Alfisols, Incptisols y Entisols, siendo el más importante los Alfisols por reunir
muchas propiedades, físico químicas ideales para máximo rendimiento y
calidad del café.
Dada la complejidad de los suelos cabe esperar grandes
diferencias en las respuestas del cafeto. En principio, los suelos de mejor
respuesta para café en todo el país, han sido originados a partir de glauconitas,
argilitas y los coluviales con matrices de arcillas y caolinitas. Esta respuesta del
café al tipo de suelo, está determinado por la fertilidad natural del mismo.
Dicha fertilidad depende de una serie de factores de carácter físico y químico.
Que condicionan el desarrollo radicular y la disponibilidad de nutrientes, lo que
27
incide directamente en la capacidad de absorción y asimilación por parte del
cafeto, de los nutrientes y el agua.
III.1.2.3. Fisiografía
Se caracteriza por presentar pendientes que varían entre 20 % a
50 % es decir presentan una fisiografía de moderadas y pronunciadas
pendientes.
III.1.2.4. Accesibilidad
La vía de acceso principal a la zona de trabajo es a través de la
carretera afirmada Chontabamba – Pusapno, a 1 hora de recorrido en vehículo
motorizado.
III.2. Materiales
III.2.1. Materiales de campo
- GPS Garmin Etrex.
- Cámara digital Samsum 12.1 MP.
- Tubo muestreador.
- Bolsas.
- Ficha de caracterización de suelos.
- Libreta de campo.
28
III.2.2. Materiales de laboratorio
- Rodillo.
- Molienda.
- Marcadores indelebles.
- Etiquetas.
- Cuaderno de registro.
- Papel filtro # 4, # 40.
- Vaso de dispersión.
- Hidrómetro de Bouyoucos.
- Termómetro.
- Probetas de 1130 ml de capacidad.
- Matraz de Erlenmeyer de 250 ml.
- Buretas para titulación.
- Pipetas graduadas y volumétricas.
- Recipientes de agitación.
- Soporte universal.
- Piseta.
- Espátula.
- Vasos descartables.
- Papel toalla.
- Placas petri.
- Jeringas.
- Frasco de vidrio (forrado con papel negro).
29
III.2.3. Equipos
- Balanza digital.
- Agitador manual y eléctrico.
- pH – metro.
- Espectrofotómetro.
- Destilador.
- Cocina eléctrica.
III.2.4. Reactivos
- Hexametafosfato de sodio al 10 %.
- Alcohol isoamílico.
- Ácido Clorhídrico.
- Ácido fosfórico.
- 10 ml de Dicromato de Potasio 2N.
- Solución de KCl 1N.
- Sal de Morh 0,2 N Fé (NH4)2 (SO4)26H2O.
- Acido Sulfúrico Q. P 96 %.
- Indicador Difenilamina sulfúrica.
- Carbón activado.
- Acido sulfúrico al 6N.
- Nitrato de plata 0,5 %.
- Hidróxido de sodio 1 %.
30
III.2.5. Métodos de análisis
III.2.5.1. Metodología del análisis físico químico del suelo
en el cultivo de café orgánico
Los métodos para determinar el análisis de suelos se muestran en
el siguiente cuadro.
Cuadro 1. Metodologías en el análisis físico químico de suelos
Indicadores físicos Método de su determinación
Textura del suelo Método del hidrómetro de Bouyoucos
Materia orgánica Método de Walkley y Black
Reacción del suelo (pH) Método del potenciómetro relación suelo
agua 1:1
Aluminio intercambiable Absorción atómica
Nitrógeno Total % M.O. x 0,045
Fósforo disponible Método de Olsen Modificado. Extracto
NaHCO30,5M,Ph 8,5
Potasio disponible Método del Ácido sulfúrico 6N
Capacidad de Intercambio Catiónico (CIC) Método de Acetato de Amonio 1N. pH 7,0
(suelos com pH > 5,5).
Cálcio (Ca) Absorción atómica
Magnesio (Mg) Absorción atómica
Potasio (K) Absorción atómica
Sodio (Na) Absorción atómica
Capacidad de Intercambio Catiónico (CICe) Desplazamiento com KCl 1 N (Suelos en pH)
< 5,5)
Aluminio más Hidrógeno Método de Yuan
Calcio más magnesio Método de E.D.T.A (Versenato)
Fuente: DORAN (1999)
III.2.5.2. Metodología del análisis cromatográfico del
suelo en el cultivo de café orgánico
31
El análisis cualitativo de los cromas se describió de la siguiente
manera.
Cuadro 2. Características del análisis cromatográfico
Indicadores
Zonas
Central o de
OxigenaciónMineral Proteica
Actividad
microbiana o
Enzimática
Color Tabla MunsellTabla
Munsell
Tabla
MunsellTabla Munsell
Dimensión cm cm cm cm
Forma de las
zonas*
Regular o
Irregular
Regular o
Irregular
Regular o
Irregular
Regular o
Irregular
Presencia de
anillos**Si ó No Si ó No Si ó No Si ó No
Forma de
radiación***
Semidentado
ó dentado
Semidentad
o ó dentado
Semidentad
o ó dentado
Semidentado ó
dentado
Dimensión de
la radiacióncm cm cm cm
Número de
radiacióncantidad cantidad cantidad cantidad
Fuente: (Elaboración propia).
* Forma de las zonas: Regular (1) ó Irregular (2)** Presencia de anillos: Si (1) ó No (2)*** Forma de la Radiación: Semidentado (1) ó Dentado (2)
- Preparación de solución de nitrato de plata
32
Preparar una solución de nitrato de plata al 0,5 %, es decir, 0,5 g
por 100 cm3 de agua destilada o agua de lluvia recogida sin tocar techos ni
suelo (con un plástico y un balde), esta solución poner en un frasco oscuro o si
no forrarlo con papel y cinta negra.
- Preparación de solución de soda caustica
“sosa”
Preparar una solución de soda caustica al 1 %, es decir 1 g por
cada 100 cm3 de agua destilada. Preparar un litro cada vez, es más práctico.
- Uso del papel filtro
Usar papel filtro Whatman # 1 ó # 4, para suelos y compostas,
hasta biofertilizantes. Tomar un papel filtro # 4 para hacer los pivotes “cañitos o
pitillos” de 2 cm x 2 cm, con una regla y un lápiz, no rayar muy fuerte para que
el grafito no quede en el recorte, de un papel sale aproximadamente de 46 a 50
pivotes. Con la ayuda de un clavo que no esté oxidado, enrollar los pivotes y
reservarlo para correr, en primer lugar, la solución de nitrato de plata. Luego
con la ayuda de un troquel de más o menos 2 mm de diámetro, romper el papel
por el centro para dejar el espacio del pivote, aquí hacer una guía (un papel
similar al tamaño del papel filtro con la guía del centro y las una guía a 4 cm del
centro y a 6 cm del centro) con la ayuda de una aguja marcar para saber
hasta donde corre el nitrato y hasta donde corre la muestra de suelo en “sosa”
respectivamente (DELGADO, 2007).
33
- Acondicionamiento de la caja petri y
solución del nitrato de plata
Preparar una caja petri (o un plato, o un recipiente, una tapa de
plástico, etc.) que sea más alta que una caja petri, (ejemplo, una tapa de
gaseosa) y poner la solución de nitrato de plata en la tapa pequeña con una
jeringa (como 3 cm3 de solución se lleva cada papel o menos), ahora tomar un
papel filtro, poner el pivote y dejar que corra hasta los 4 cm, luego retirar y con
los dedos pulgar e índice tomar el pivote y echarlo en un recipiente o balde
para este fin (DELGADO, 2007).
- Protección del papel filtro con solución de
nitrato de plata
Colocar en un lugar oscuro (una maleta bien sellada, una caja
adaptada, un armario o un gabinete bien oscuro, cualquier filtración de luz pone
el papel oscuro, o sea que se vela el negativo, tener cuidado). Aquí poner en
un sándwich de la siguiente manera: abajo poner una hoja de papel bond,
luego una tira doble de papel higiénico blanco, no otro; ahora poner el papel
filtro con la solución de nitrato de plata y de nuevo papel higiénico y otra de
papel bond, y así puede acomodar encima de otro hasta cuatro o cinco
papeles, si son demasiados pueden manchar de nitrato por el peso. El papel
higiénico no volver a usar porque mancha los demás, usarlo para lo que está
hecho. En cuestión de unas horas según la humedad relativa este papel está
seco y listo para correr las muestras (DELGADO, 2007).
34
- Preparación de muestras
Una muestra de suelo tomarla en una calicata, es necesario
determinar lo que se quiere saber si es a profundidad o si es superficial, en
todo caso lo mejor es hacer repeticiones, para confirmar las fotos, esto es algo
que se debe hacer siempre, para tener certeza. Una por punto.
Luego poner esta muestra al sol hasta que esté bien seca, y luego
tamizarlo en un cernidor si es bien fino mucho mejor para que no pase
piedritas.
Ahora poner 10 g de la muestra tamizada en un mortero lo ideal
sería de cerámica aunque se consiguen de madera también pero no es el
ideal, y cuando esté bien en polvo pesar la muestra.
Pesar 5 g de muestra de suelo en 50 cm3 de solución de soda
caustica, (medir con ayuda de una probeta) en un vaso de vidrio, o de plástico,
y mezclar 6 veces a un lado y 6 veces al otro, y dejas reposar. A los 15 minutos
repetir de nuevo lo mismo y dejar reposar, a los 30 minutos otra vez repetir lo
mismo y ahora dejar reposar por 5 horas aproximadamente. El detalle es que si
la muestra no corre en esta solución, se puede disolver la muestra al doble, es
decir 5 g de muestra en 100 cm3 de sosa, o al triple con 150, ejemplo 2,5 g en
50 cm3 de sosa para 2:1, o 2,5 g en 75 cm3 de sosa para 3:1. Más de aquí la
cromatografía pierde calidad "fotográfica" porque los colores son más tenues
pero sin embargo es válido experimentar; porque esto es común en suelos
pesados o muy bloqueados, especialmente con mucha materia orgánica.
35
Una vez que se tiene la muestra de suelo lista para correr poner
unos 3 cm3 del sobrenadante de la muestra en la caja de petri pequeña con la
ayuda de una jeringa, luego preparar un papel impregnado y seco de nitrato de
plata, poner el pivote (papel # 4) y poner a correr la muestra hasta la marca de
los 6 cm (que se hizo con la aguja) (DELGADO, 2007).
Cuando llegue a este punto levantar con cuidado porque está débil
por la humedad, tomar el pivote, retirarlo, y poner el papel sobre una hoja de
papel bond, en este punto marcar el papel con: # papel, nombre del productor
o predio, lugar, tipo de muestra (suelo, abono, biol, tejido), la concentración 1:1,
2:1, etc. y la fecha, si se desea algún otro detalle mejor.
Poner la muestra al sol por ambos lados y cuando seque se tiene la
imagen que se necesita. Esta muestra puede revelar color hasta pasados días
y hasta semanas después del revelado, así que se debe exponerla bien, con
cuidado de que no le de sombra en ningún lado del papel (DELGADO, 2007).
III.2.5.3. Análisis estadístico
El análisis estadístico que se aplicó para este estudio es el de
correlación, el cual determina el grado de relación existente entre dos o más
variables. Lo que se encontró es la relación entre X y Y. El cálculo del
coeficiente de correlación “r” se determinó mediante la fórmula:
r= n*∑ xy - ∑ x*∑ y
√ [ n*∑ x2 - (∑ x )2 ]∗[n*∑ y2 - (∑ y )2] *100
(1)
36
Cuando r es igual a + 1 indica una perfecta asociación positiva, y si
r es igual a – 1 indica una perfecta asociación negativa. Cuando r es igual a
cero indica que no hay asociación, es decir que existe total independencia
entre las dos variables. Para el cálculo del coeficiente de determinación “r2”, el
cual es una medida de la bondad del ajuste de la ecuación usada. Si se acerca
a 1, significa que la característica tomada del análisis químico del suelo es una
buena variable para estimar una de las características del croma en la
ecuación seleccionada.
r2= r * r(2)
1. Regresión múltiple
Las ecuaciones múltiples que se relacionaron fueron las variables
independientes: X1 (Nitrógeno), X2 (Fosforo), X3 (Potasio), Xn (Magnesio,
Calcio, Potasio disponible) con la variable dependiente Y (Número de
radiación, forma de las zonas y presencia de anillos), esta ecuación también es
fácil y práctica para su utilización. Su uso depende del grado de correlación que
exista entre las variables.
y= a + bx1+ cx2+ cx3+. ..+dxn (3)
2. Análisis de varianza
37
El siguiente cuadro muestra el análisis de varianza (ANVA), de las
ecuaciones que se obtuvieron en el estudio de investigación.
Cuadro 3. Análisis de varianza
Grados de
libertad
Suma de
cuadrados
Promedio de
los cuadradosFcalculado Ftabla
Regresión k SCRegresión SCRegresión / kSC Regresión / ( k-1)SC Residuos / (n-k )
F(F, k-1,
n-k)
38
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
IV.1. Análisis físico químico del suelo realizado
La Figura 17 y 18 representan el resultado de análisis del suelo
realizado (Anexo 1, Cuadro 12) el cual muestra los datos promedios obtenidos
de materia orgánica (M.O), pH, Nitrógeno (N), Fósforo (P), Potasio disponible
(K2O), Calcio (Ca) y Magnesio (Mg), agrupados como suelos de fertilidad media
y baja.
IV.1.1. Suelos de fertilidad media
La Figura 17 representa a las parcelas con fertilidad media, entre
estos se encuentran las parcelas con código 259; 260; 264; 265; 267; 277; 278
y 279 pertenecientes a los siguientes agricultores: Casimiro Guerra Williams,
Díaz Suarez Angel, Casimiro Tabori Valentin, Muñoz Barrientos Mario, Guerra
Asparrín Jerónimo, Minaya Cantalicio Gerta, Salazar Venegas Javier y Salazar
Venegas Fermín, respectivamente. Cuyas características en promedio de las
8 muestras se muestran en el Cuadro 4. Estos resultados nos indican que son
suelos de reacción ligeramente ácida, con un contenido alto de materia
orgánica y nitrógeno, medio en fósforo, y potasio, bajo en calcio y magnesio.
Circunscribiéndose como un suelo de fertilidad media, tal como lo caracteriza
39
CUM (2009) quien menciona que un suelo con fertilidad media es el que
presenta contenido medio de materia orgánica, fósforo y/o potasio.
Cuadro 4. Promedio de parcelas con fertilidad media
Indicador Promedio
% Materia orgánica 6,05
pH 6,03
% Nitrógeno total 0,27
Fósforo disponible (ppm) 10,80
Potasio disponible (Kg-K2O/ha) 367,00
Ca. (me/100g) 5,23
Mg. (me/100g) 0,80
Fuente: (Elaboración propia).
% Materia orgánica
pH
% Nitrógeno total
Fósforo disponible (ppm)Potasio disp. (Kg-K2O/ha)
Ca. (me/100g)
Mg. (me/100g)
0
100
200
Fertilidad alta Suelo ideal
Figura 17. Diagrama promedio de parcelas con fertilidad media
(259; 260; 264; 265; 267; 277; 278 y 279).
40
IV.1.2. Suelos de fertilidad baja
La Figura 18 representa a las parcelas con fertilidad baja, entre
estos tenemos a las parcelas con código (257; 258; 261; 262; 263; 266; 268;
270; 271; 273; 274; 276) pertenecientes a los siguientes agricultores: Vega
Condor Rafael, Rodriguez Flores Victor, Casimiro Salazar Ariana, Muñoz
Barrientos Mario, Verde Suarez Amilcar, Galindo Hueira Edwin, Aparicio
Cordova Crecencio, Rodrigues Flores Blas, Villcas Guizado Celestino, Minaya
Lagraver Isaias y Tito Cantalicio Ubdulia, respectivamente. Cuyas
características en promedio se muestran en el Cuadro 5. El resultado del
análisis de suelo en estas parcelas indican que tienen un alto contenido de
materia orgánica y nitrógeno, de reacción medianamente ácido, medio en el
contenido de fosforo y potasio es medio y bajo en el contenido de calcio y
magnesio. Estas características pueden estar influenciadas por el sistema de
cultivo que este caso es un cultivo asociado el “café” Coffe arabica con el
“pino” Pinus tecunumani.
Como lo menciona DIAZ (2005) la asociación de cultivos es una de
las técnicas más efectivas de la agricultura ecológica, y consiste en plantar dos
o más especies en relación de cierta cercanía provocando una especie de
relación competitiva y complementaria que no siempre puede ser positiva,
existen asociaciones que pueden ser negativas y con efecto amensalístico que
quiere decir que la interacción no produce resultados óptimos e incluso una de
las especies se ve afectada negativamente a mediano o largo plazo.
41
Cuadro 5. Promedio de parcelas con fertilidad baja
Indicador Promedio
% Materia orgánica 2,52
pH 5,17
% Nitrógeno total 0,132
Fósforo disponible (ppm) 9,46
Potasio disponible (Kg - K2O/ha) 212,63
Ca. (me/100g) 4,12
Mg. (me/100g) 0,64
Fuente: (Elaboración propia).
% Materia orgánica
pH
% Nitrógeno total
Fósforo disponible (ppm)Potasio disp. (Kg-K2O/ha)
Ca. (me/100g)
Mg. (me/100g)
0
100
200
Fertilidad baja Suelo ideal
Figura 18. Diagrama promedio de parcelas con fertilidad baja (257;
258; 261; 262; 263; 266; 268; 270; 271; 273; 274; 276).
IV.2. Análisis cromatográfico del suelo
Este análisis consiste en realizar las lecturas de los cromas en
forma cualitativa considerando características como el color, dimensiones,
42
forma, presencia de anillos, radiación, entre otras características que hacen del
croma un análisis dinámico y flexible (Anexo 2, Figuras del 19 al 30).
IV.2.1. Colores de la zonas en los cromas
El Cuadro 6 representa la frecuencia de los colores en las
diferentes zonas de los cromas. En la zona 1 podemos observar que 14
cromas que representan el 70 % pertenece a un color marrón muy pálido (very
pale brown) en cuatro tonalidades, 5 cromas que representan el 25 %
pertenece al color blanco (white) en dos tonalidades y un croma que es el 5 %
pertenece al color amarillo (yellow).
En la zona 2 se aprecia que 11 de los cromas representados por
el 55 % pertenecen al color amarillo pardusco (brownish yellow) en dos
tonalidades, 8 cromas representados por el 40 % pertenecen al color marrón
amarillento (yellowish brown) en dos tonalidades y uno de los cromas que
representa el 5 % pertenece al color marrón claro amarillento (ligth yellowish
brown).
En la zona 3 se muestra que 11 cromas representados por el 55 %
pertenecen al color amarillo pardusco (brownish yellow) en dos tonalidades, 7
cromas representados por el 30 % pertenecen al color marrón amarillento
(yellowish brown) en dos tonalidades, un croma representado por el 5 %
pertenece al color pardusco (brownish) y un croma representado por el 5 %
pertenece al color marrón claro amarillento (ligth yellowish brown).
43
En la zona 4 se aprecia que 14 cromas representados por el 70 %
pertenecen al color marrón amarillento (yellowish brown) en tres tonalidades y
6 cromas representados por el 30 % pertenecen al color amarillo pardusco
(brownish yellow).
RODRIGUEZ (2000) manifiesta que la primera zona es de
oxigenación agregando además que mientras más claro sea la zona 1 hay
mayor oxigenaciòn y nuestros resultados corroboran tal informaciòn
asociandose esta primera zona con la textura que se reporta en el anàlisis de
suelo (Anexo 1, Cuadro 12) predominando el porcentaje de arena en todas las
muestras, esta fuerte relación entre la textura y la oxigenación es confirmada
por RAMIREZ (2000) quien menciona que cuanto más arenosos son los suelos
más aireados son, por que las arenas desarrollan mayor macroporosidad, que
facilita el drenaje.
En la zona 2 llamada zona mineral predomina el color amarillo
pardusco posiblemente influenciadas por la presencia de los elementos
denominadas bases cambiables. En este análisis utilizamos el hidróxido de
sodio que actúa como un dispersante de los coloides, además se agregó el
nitrato de plata que actúa como anión; en este caso los elementos catiónicos,
estarían formando compuestos con el nitrato y se quedan en la zona 2 dando
el color que caracteriza a la zona.
La zona 3 llamada por RODRIGUEZ (2000) zona proteica,
predomina el color amarillo pardusco. Este color nos estaría indicando que los
44
compuestos presentes en esta zona son orgánicos, su presencia obedecería a
la naturaleza o propiedades de lo compuestos orgánicos de ser fácilmente
transportados por un medio y además al no tener forma de agruparse con
otros compuestos en el recorrido fueron desplazados a la zona 3, de ahí que
los colores son diferentes y poco más intensos que la zona 2.
En la zona 4 llamada zona de actividad microbiana y enzimática
predomina el color marrón amarillento esto se debe a que las proteínas siguen
migrando acumulándose en esta última zona.
Según ICA (1981) el recorrido del suelo previamente dispersado en
todas las zonas que presenta el croma se manifiesta en diversos colores
según la afinidad con el solvente y la fase estacionaria (papel filtro).
45
Zona 1 del croma Zona 2 del croma Zona 3 del croma Zona 4 del croma
Color de la zona
Frecuencia %Color de la
zonaFrecuencia %
Color de la zona
Frecuencia %Color de la
zonaFrecuencia %
Marrón muy pálido 7/4
8 40Amarillo pardusco 6/6
10 50Amarillo pardusco 6/6
8 40Amarillo pardusco 6/8
6 30
Marrón muy pálido 8/3
3 15Amarillo pardusco 6/8
1 5Pardusco 6/6
1 5Marrón amarillento 5/6
3 15
Marrón muy pálido 8/4
2 10Marrón claro amarillento
1 5Amarillo pardusco 6/8
3 15Marrón amarillento 5/8
10 50
Marrón muy pálido 8/5
1 5Marrón amarillento 5/6
5 25Marrón claro amarillento
1 5Marrón amarillento 6/8
1 5
Blanco 8/1 1 5Marrón amarillento 5/8
3 15Marrón amarillento 5/6
2 10
Blanco 8/2 4 20Marrón amarillento 5/8
5 20
Amarillo 8/6
1 5
Total 20 100 Total 20 100 Total 20 100 Total 20 100Cuadro 6. Frecuencia de colores en las zonas del croma
Fuente: (Elaboración propia).
46
44
IV.2.2. Dimensiones de las zonas en los cromas
En el Cuadro 7 se aprecia las dimensiones por zonas que
presentan los cromas.
En la zona 1 de los cromas tenemos que 15 cromas representados
por el 75 % presentan dimensiones que varían entre 0,5 mm y 0,9 mm.
En la zona 2 de los cromas tenemos 15 cromas representados por
el 75 % presentan dimensiones que varían entre 0,5 mm y 1,1 cm.
En la zona 3 de los cromas tenemos 12 cromas representados por
el 60 % presentan dimensiones que varían entre el 2,2 cm y 3,1 cm.
En la zona 4 de los cromas tenemos 13 cromas representados por
el 65 % presentan dimensiones que varían entre el 0,5 cm y 1,4 cm.
ARIET (2005) menciona que las distancias que se presentan en
las diferentes zonas se deben a que la “prueba del croma” es un buen
indicador de la actividad microbiana en el suelo y las sustancias húmicas
migran a diferentes distancias por acción capilar dependiendo del peso
molecular que posean y la afinidad con el solvente y la fase estacionaria
referido al papel filtro.
45
Cuadro 7. Frecuencia de dimensiones en las zonas del croma
Zona 1 del croma Zona 2 del croma Zona 3 del croma Zona 4 del croma
Dimensión Frecuencia % Dimensión Frecuencia % Dimensión Frecuencia % Dimensión Frecuencia %
0,4 1 5 0,5 6 30 0,9 1 5 0,2 1 5
0,5 3 15 0,6 3 15 1,5 1 5 0,5 2 10
0,6 2 10 0,7 2 10 1,7 1 5 0,7 1 5
0,7 4 20 0,9 2 10 1,8 1 5 0,8 1 5
0,8 2 10 1,1 2 10 2,1 1 5 0,9 1 5
0,9 4 20 1,3 1 5 2,2 2 10 1 2 10
1 1 5 1,4 1 5 2,3 1 5 1,1 2 10
1,1 1 5 1,6 1 5 2,4 3 15 1,2 3 15
1,2 1 5 2,4 1 5 2,5 1 5 1,3 2 10
1,5 1 5 2,7 1 5 2,8 3 15 1,4 1 5
2,9 2 10 1,6 1 5
3,1 2 10 1,7 2 10
3,3 1 5 2,1 1 5
Total 20 100 Total 20 100 Total 20 100 Total 20 100
Fuente: (Elaboración propia).
46
46
IV.2.3. Forma de las zonas en los cromas
En el Cuadro 8 se observa las frecuencias de forma en las zonas
del croma. La zona 1 indica que 13 cromas representados por el 65 % son de
forma regular y el restante de forma irregular, la zona 2 muestra que 16
cromas representados por el 80 % son de forma irregular, la zona 3 indica que
18 cromas representados por el 90 % son de forma regular y el 10 % de forma
irregular, la zona 4 indica que 17 cromas representados por el 85 % son de
forma regular.
NORIEGA (2005) menciona que la forma regular e irregular que
presentan las zonas es una característica importante en la lectura del croma
siendo la forma regular de los cromas la más factible.
Cuadro 8. Frecuencia de la forma en las zonas del croma
Formas de
las zonas
Zona 1 Zona 2 Zona 3 Zona 4
F* % F* % F* % F* %
regular 13 65 4 20 18 90 17 85
irregular 7 35 16 80 2 10 3 15
Total 20 100 20 100 20 100 20 100
Fuente: (Elaboración propia).
F* (Frecuencia).
IV.2.4. Anillos en la zona de los cromas
El Cuadro 9 muestra la presencia de anillos en las zonas del
47
croma. La zona 1; 2; 3 y 4 indican que 11 cromas representados por el 55 %
presentan anillos en sus zonas siendo el 45 % restante no presentan anillos.
Según la lectura del croma realizado encontramos que el 55 %
presentan anillos entre la zona 3 y 4, lo que es sustentado por NORIEGA
(2005) quien menciona que la formación de anillos se da entre la zona media
y la zona externa.
Cuadro 9. Frecuencia de anillos en las zonas del croma
Presenci
a de
anillos
Zona 1 Zona 2 Zona 3 Zona 4
F* % F* % F* % F* %
si 11 55 11 55 11 55 11 55
no 9 45 9 45 9 45 9 45
Total 20 100 20 100 20 100 20 100
Fuente: (Elaboración propia).
F* (Frecuencia).
IV.2.5. Radiaciones de los cromas
El Cuadro 10 muestra el código de las parcelas, tamaño de las
radiaciones con un promedio de 4,51 cm y el número de radiaciones que
presenta el croma con un promedio de 53.
RODRIGUEZ (2000) menciona que estas son una de las
48
características que se debe considerar de un croma, el tamaño y número de
las radiaciones son indicadores del proceso de descomposición de minerales
o mineralización. Las diferentes fases de fermentación (1 – descomposición, 2
– formación de humus, 3 – mineralización y 4 – descomposición avanzada)
están claramente indicadas en los cromatogramas de suelos.
Cuadro 10. Radiaciones que presenta el croma
Radiación del croma
Parcela Tamaño (cm) Número
257 4,9 43
258 4,6 55
259 5,3 59
260 4,1 44
261 5,3 53
262 4,4 53
263 5,2 49
264 4,6 53
265 3,9 58
266 4,2 55
267 4,9 50
268 5 54
270 4,2 50
271 4,1 48
273 4,5 56
274 4,1 50
276 4,9 54
277 3,9 54
278 4,6 60
279 3,6 48
Promedio 4,51 53
49
Fuente: (Elaboración propia)
IV.3. Correlación entre los análisis físico y cromatográfico
En este estudio los resultados del croma coincide con el análisis
físico químico del suelo al determinar que los suelos con código 259; 260; 264;
265; 267; 277; 278 y 279 pertenecen a suelos de fertilidad media. Y las
parcelas con código 257; 258; 261; 262; 263; 266; 268; 270; 271; 273; 274 y
276, pertenecen a suelos con fertilidad baja. Para lograr evaluar la relación
existente entre el análisis cromatográfico y el análisis químico se realizó una
prueba de correlación múltiple (Pearson) con un nivel de confianza 95 % y con
20 muestras de suelo, para el cual tomamos los datos que presentan
correlación significativa (Anexo 1, Cuadro 15).
Los datos obtenidos mediante la correlación múltiple entre la
variable dependiente Y= Número de radiación y las variables independientes
X1= Nitrógeno (%), X2= Fósforo (P), X3= Potasio (K) siendo un modelo de tres
entradas, donde participan las variables ya mencionadas en el cálculo del
número de radiación. En el Cuadro 11 se observa la ecuación múltiple siendo
su modelo: Y= 65,95 + 1,14x1 – 0,28x2 - 34,12x3, este modelo explica que el
número de radiaciones depende del aumento o disminución de los contenidos
de Fosforo (X2) y Potasio (X3) más no de la cantidad del Nitrógeno (X1). El
coeficiente de correlación del modelo es 0,59 y el coeficiente de determinación
de 0,35 se encuentra entre los rangos de moderado a alto significa que son
buenas variables para estimar el número de radicaciones en la ecuación
50
descrita.
En la segunda ecuación: y= 59,69 - 6,62x1 - 1,72x2 - 0,01x3 siendo
las variables relacionadas Y= Número de radiación, X1= Magnesio (Mg),
X2= Calcio (Ca), X3= Potasio disponible (K2O) con un coeficiente de correlación
de 0,59 y el coeficiente de determinación de 0,35 lo que indica que en el
cálculo del número de radiaciones se verá influenciada por el incremento o
disminución de los contenidos de Magnesio (Mg), Calcio (Ca) y Potasio
disponible (K2O).
La ecuación Y= Forma, X1= Nitrógeno (%), X2= Fósforo (P), X3=
Potasio (K), según su modelo: Y= 1,39 – 0,71x1 – 0,05x2 + 2,28x3 con un
coeficiente de correlación de 0,44 y un coeficiente de determinación de 0,19
estos datos revelan que la forma (Y) está influenciado por la presencia de
Potasio (K) esto quiere decir que aun un incremento o disminución del potasio
la forma varia y los contenidos de nitrógeno y fosforo no son influyentes en el
cálculo para esta ecuación.
En la ecuación cuyas variables relacionadas son: Y= Anillos, X1=
Calcio (Ca), X2= Potasio disponible (K2O), según su modelo y= 2,03 - 0,19x1 +
0,0009x2 con un coeficiente de correlación de 0,37 y un coeficiente de
determinación de 0,14 en esta ecuación se destaca la influencia del Calcio (X1)
en la presencia de anillos sobre el potasio disponible (X2). Cabe destacar en la
la Prueba F, el FCalculado es mayor que el Ftabla esto demuestra son
significativamente diferentes por lo tanto las variables utilizadas en las
51
ecuaciones son independientes. Para observar objetivamente el grado de
ajuste de los valores estimados mediante la ecuación con los valores reales,
muestra el siguiente cuadro:
Cuadro 11. Ecuaciones múltiples
Variables relacionadas: Y= Número de radiación, X1=
Nitrógeno (%), X2= Fósforo (P), X3= Potasio (K)Indicadores
Nombre Modelo Ecuación matemática R R2
Múltiple y= a + bx1 + cx2+ dx3
y= 65,95 + 1,14x1 – 0,28x2
- 34,12x3
0,59 0,35
Variables relacionadas: Y= Número de radiación, X1=
Magnesio (Mg), X2= Calcio (Ca), X3= Potasio disponible (K2O), Indicadores
Nombre Modelo Ecuación matemática R R2
Múltiple y= a + bx1 + cx2+ dx3
y= 59,69 - 6,62x1 - 1,72x2 -
0,01x3
0,59 0,35
Variables relacionadas: Y= Forma, X1= Nitrógeno (%),
X2= Fósforo (P), X3= Potasio (K) Indicadores
Nombre Modelo Ecuación matemática R R2
Múltiple y= a + bx1 + cx2+ dx3
y= 1,39 – 0,71x1 – 0,05x2 +
2,28x3
0,44 0,19
Variables relacionadas: Y= Anillos, X1= Calcio (Ca), X2=
Potasio disponible (K2O)Indicadores
Nombre Modelo Ecuación matemática R R2
Múltiple y= a + bx1 + cx2 y= 2,03 - 0,19x1 + 0,0009x2 0,37 0,14
Fuente: (Elaboración propia).
52
V. CONCLUSIÓN
1. En el análisis físico químico del suelo identificamos que el 40 % de los
suelos son de fertilidad media y el 60 % corresponde a suelos con
fertilidad baja.
2. En el análisis cromatográfico se describieron las siguientes
características: color de las zonas predominando en la zona 1 el color
marrón pálido con 14 cromas (70 %), en la zona 2 y 3 predomina el color
amarillo pardusco con 11 cromas (55 %) y en la zona 4 predomina el
color marrón amarillento con 14 cromas (70 %), las dimensiones
representativas de las zona 1; 2; 3 y 4 se encuentran entre los siguientes
rangos 0,5 mm – 0,9 mm; 0,5 mm – 1,1 cm; 2,2 cm – 3,1 cm y 0,5 cm –
1,4 cm respectivamente, con respecto a la forma predomina la regular, la
presencia de anillos indica que 11 cromas presentan anillos y finalmente
el tamaño promedio de las radiaciones es de 4, 51 cm y en promedio el
número de radiaciones es 53.
3. De los modelos de regresión múltiple que considera las variables Y=
Número de radiación y las variables independientes X1= Nitrógeno (%),
53
X2= Fósforo (P), X3= Potasio (K) se expresa en la siguiente ecuación Y=
65,95 + 1,14x1 – 0,28x2 - 34,12x3, con R 0,59 y R2 0,35. Para el cálculo
de forma del croma se consideró las variables Y= Forma, X1= Nitrógeno
(%), X2= Fósforo (P), X3= Potasio (K) siendo su modelo Y= 1,39 – 0,71x1
– 0,05x2 + 2,28x3 con un R de 0,44 y R2 de 0,19.
54
VI. RECOMENDACIONES
Realizar otras investigaciones conjuntamente con el estudio de la
actividad biológica del suelo.
Realizar más trabajos de investigación de cromatografía en
diferentes tipos de suelo y así determinar otros parámetros que aporten a la
interpretación del croma.
La cromatografía debe ser vista como un complemento que ayuda
a describir cualitativamente la actividad microbiana en el suelo.
55
VII. REFERENCIA BIBLIOGRÁFICA
ANDERSON, J. INGRAM, J. 1993. Tropical Soil Biology and Fertility: A
Handbook of Methods. CAB International, Wallingford, UK. 256 p.
ARIET, F. 2005. Manual de usos de sustancias tóxicas. [En línea]:
(http://www.minambiente.gov.co/documentos/Guia17.pdf; dctos. 20 de
Nov. del 2010).
BAUTISTA, C. ETCHEVERS, B; DEL CASTILLO, R; GUTIÉRREZ, C. 2004. La
calidad de los suelos y sus indicadores. [En línea]:
(http://www.aeet.org/ecosistemas/042/revision2.htm; dctos. 30 de Set.
del 2010).
CONSEJO DE EXPERTOS QUE TRABAJA POR EL BIENESTAR DE LA
SOCIEDAD, PROMOVIENDO EL EQUILIBRIO ENTRE EL CONSUMO
Y LA REGENERACIÓN DE LOS RECURSOS NATURALES. 2011. [En
línea]: COAS, (http://www.coas.com.mx/cms/home.html; dctos. 23 de
Mar. del 2011).
56
CLASIFICACIÓN DE SUELOS SEGÚN SU CAPACIDAD DE USO MAYOR,
2009. [En línea]: CUM, (http://www.cum.com.ka/suelo/pdf; dctos. 23 de
Mar. del 2011).
DELGADO, Y. 2007. Vida en el Suelo a partir de la Cromatografía. [En línea]:
(http://www.coas.com.mx/cms/coas/cromatografia.html; dctos 15 de Nov.
del 2010).
DIAZ, A. 2005. Sistemas agroforestales en el cultivo de café. [En línea]:
(http://www.abt.org/sistemas/agroforestales/revision2.htm; dctos. 20 de
Set. del 2010).
DORAN, J. 1999. Definición del suelo y cualidades para un desarrollo
sustentable. Soil Science Society of America, Inc. Special Publication.
Número 35. Madison, Wisconsin, USA.
FUENTES, L. 1989. “El suelo y los fertilizantes” 3era. Edición. Mundiprensa
S.A. México. 379 p.
GUERRERO, J. 1993. Agricultura convencional. Tecnología para el manejo de
suelos. Edit. R.A. Lima, Perú. 90 p.
HINRICH, B. 1993. “Química de los suelos”. 1era. Edición. Edit. Limusa.
México. 370p.
MONGE, L. 1999. Manejo de la nutrición y fertilización del cultivo del café
orgánico en Costa Rica. Edit. Suarez. Costa Rica 45p.
57
NORIEGA, A. 2005. Manual de seguridad de sustancias tóxicas. [En Línea]:
(http://www.cvs.saude.sp.gov.br/pdf/toxfaq122.pdf; dctos. 16 de Nov. del
2010).
NATIONAL RESOURCE CONSERVATION SOIL. 2004. What is soil quality.
[En línea]: NRCS (http://soils.usda.gov/sqi/soil_quality/what_is/; dctos, 15
de Ene. del 2010).
RAMIREZ, J. 2000. Propiedades físicas y químicas del suelo. [En línea]: USDA
(
http://www.agronet.gov.co/www/docs_si2/20061024153344_Caracteristic
as%20del%20suelo%20propiedades%20fisico-quimicos.pdf; 18 de Ene.
del 2010).
RODRIGUEZ, V. 2000. Cromas, una interesante mirada a la vida de suelos y
cultivos. [En línea]:
(http://www.innovakglobal.com/periodicos/periodico_innovak_abril09.pdf;
dctos. 16 de Nov. del 2010).
ROMERA, M. 2009. La agricultura ecológica como solución a los problemas
planteados por la agricultura convencional. [En línea]: INFOAGRO.
(http://www.infoagro.com/agricultura_ecologica/agricultura_ecologica.htm
; dctos. 17 de Nov. del 2010).
58
ANEXO
59
60
Anexo 1. Cuadros
Cuadro 12. Análisis del suelo
61
Fuente: Facultad de Agronomía, Laboratorio de análisis de suelo – UNAS.
Cuadro 13. Indicadores químicos y biológicos de un suelo ideal Vs. Las parcelas de estudio
IndicadorSuelo
ideal
*Par.
257
Par.
258
Par.
259
Par.
260
Par.
261
Par.
262
Par.
263
Par.
264
Par.
265
Par.
266
Par.
267
Par.
268
Par.
270
Par.
271
Par.
273
Par.
274
Par.
276
Par
277
Par.
278
Par.
279
% Materia orgánica
3,6 7,34 4,45 5,78 5,12 4,00 1,33 6,45 6,00 5,72 3,56 6,45 2,22 4,89 4,23 3,11 4,67 5,34 6,4 6,890 6,0
100% 203,8 60,63 129,8 88,58 78,13 33,25 484,9 93,02 95,33 62,24 181,1 34,42 95,51 86,50 51,83 150,1 96,04 120,8 106,8 87,0
pH
6,8 6,45 5,65 6,47 5,56 5,10 6,38 4,38 5,33 6,05 4,77 6,47 4,37 4,71 5,18 5,17 4,70 5,01 6,3 6,2 5,7
100% 94,85 87,60 114,5 85,94 91,73 125,1 68,65 121,6 113,5 78,84 135,6 67,54 87,06 109,9 90,70 90,91 88,83 126,5 98,7 91,8
% Nitrógeno total
0,2 0,33 0,20 0,26 0,23 0,18 0,06 0,29 0,27 0,26 0,16 0,29 0,10 0,22 0,19 0,14 0,21 0,24 0,2 0,3 0,2
100% 165,0 60,61 130,0 88,46 78,26 33,33 483,3 93,10 96,30 61,54 181,2 34,48 95,65 86,36 51,85 150,0 96,00 120,8 106,8 87,0
Fósforo disponible (ppm)
11 12,30 7,70 11,70 10,20 7,60 12,10 9,90 12,20 8,60 6,30 10,70 8,50 4,00 11,10 9,40 9,20 7,20 11,4 11,9 9,7
100% 111,8 62,60 151,9 87,18 74,51 159,2 81,82 123,2 70,49 73,26 169,8 79,44 52,63 277,5 87,85 97,87 61,02 158,3 104,3 81,5
Potasio disp. (Kg-K2O/ha)
350 219,0 446,0 446,0 296,0 220,0 180,0 460,0 420,0 398,0 342,0 266,0 8,50 296,0 302,0 320,0 318,0 410,0 414,0 286,0 410,0
100% 62,57 203,6 100,0 66,37 74,32 81,82 255,5 91,30 94,76 85,93 77,78 3,20 103,5 102,0 76,19 99,38 74,82 100,9 69,1 143,3
Ca. (me/100g)
10 5,60 3,48 5,22 6,90 4,48 4,00 4,04 5,26 5,20 4,02 5,07 4,38 4,94 4,56 4,08 4,80 5,56 3,1 4,2 6,8
100% 56,00 62,14 150,0 132,1 64,93 89,29 101,0 130,2 98,86 77,31 126,1 86,39 96,48 92,3 79,69 117,6 75,14 57,0 133,1 161,1
Mg. (me/100g)
1,5 0,84 0,50 0,70 0,95 0,64 0,66 0,65 0,86 0,90 0,56 0,96 0,72 0,72 0,60 0,62 0,68 0,72 0,5 0,5 0,9
100% 56,00 59,52 140,0 135,7 67,37 103,1 98,48 132,3 104,6 62,22 171,4 75,00 101,4 83,3 62,63 109,6 74,23 75,0 96,2 182,6
62
Fuente: (Elaboración propia).
* Parcela
Cuadro 14. Características de los cromas
63
Fuente: (Elaboración propia).
Cuadro 15. Correlación Pearson
64
Anillos Forma Tamaño Numero N P K Ca Mg KI Na Arena Limo Arcilla
Anillos
Correlación de
Pearson1 -,302 -,090 ,278 ,158 ,181 ,140 -,434* ,000 -,715 -,407 ,180 -,164 -,154
Sig. (bilateral) ,196 ,706 ,235 ,505 ,444 ,604 ,151 ,999 ,058 ,243 ,448 ,490 ,517
N 20 20 20 20 20 20 16 20 20 10 10 20 20 20
Forma
Correlación de
Pearson-,302 1 ,175 -,608** -,792* -,771* -,470* ,096 ,121 ,403 -,128 -,068 ,086 ,000
Sig. (bilateral) ,196 ,461 ,004 ,740 ,237 ,067 ,688 ,611 ,249 ,724 ,776 ,719 1,000
N 20 20 20 20 20 20 16 20 20 10 10 20 20 20
Tamaño
Correlación de
Pearson-,090 ,175 1 ,158 ,028 ,084 ,028 -,176 -,137 -,231 -,347 ,015 -,035 ,040
Sig. (bilateral) ,706 ,461 ,506 ,908 ,726 ,918 ,459 ,565 ,521 ,327 ,951 ,883 ,867
N 20 20 20 20 20 20 16 20 20 10 10 20 20 20
Numero
Correlación de
Pearson,278 -,608** ,158 1 -,608** ,710* -,452* -,494* -,474* -,640* -,130 -,205 ,107 ,370
Sig. (bilateral) ,235 ,004 ,506 ,487 ,727 ,593 ,027 ,035 ,046 ,721 ,386 ,653 ,108
N 20 20 20 20 20 20 16 20 20 10 10 20 20 20
Fuente: (Elaboración propia).
**. La correlación es significativa al nivel 0,01 (bilateral).
*. La correlación es significante al nivel 0,05 (bilateral).
65
Cuadro 16. Análisis de varianza entre número de radiaciones, Nitrógeno,
Fósforo y Potasio
Grados de
libertad
Suma de cuadrados
Promedio de los cuadrados
FtabuladoValor crítico de Fcalculado
Regresión 3 136,816 45,605 2,830 0,071
Residuos 16 257,383 16,086
Total 19 394,2
Fuente: (Elaboración propia).
Cuadro 17. Análisis de varianza entre número de radiaciones Magnesio, Calcio
y Potasio disponible
Grados de
libertad
Suma de cuadrados
Promedio de los cuadrados
FtabuladoValor crítico de Fcalculado
Regresión 3 138,637 46,212 2,893 0,067
Residuos 16 255,562 15,9726
Total 19 394,2
Fuente: (Elaboración propia).
Cuadro 18. Análisis de varianza entre forma, Nitrógeno Fósforo y Potasio
Grados de
libertad
Suma de cuadrados
Promedio de los cuadrados
FtabuladoValor crítico de Fcalculado
Regresión 3 0,946 0,315 1,245 0,326
Residuos 16 4,053 0,253
Total 19
Fuente: (Elaboración propia).
66
Cuadro 19. Análisis de varianza entre anillos, Calcio y Potasio disponible
Grados de
libertad
Suma de cuadrados
Promedio de los cuadrados
FtabuladoValor crítico de Fcalculado
Regresión 2 0,680 0,340 1,354 0,284
Residuos 17 4,269 0,251
Total 19 4,95
Fuente: (Elaboración propia).
67
Anexo 2. Fotografías
Figura 19. Parcela de cultivo de café orgánico.
Figura 20. Unidades de muestreo realizado en las parcelas.
68
Figura 21. Papel filtro impregnado con nitrato de plata.
Figura 22. Papel filtro # 4 preparado para las corridas.
69
Figura 23. Unidades de suelo (5 g en cada vaso).
Figura 24. Agitando 5 g de muestra en 50 ml de hidróxido de
sodio.
70
Figura 25. Corridas de cromas.
Figura 26. Croma 257 (a), 258 (b), 259 (c), 260 (d).
71
Figura 27. Croma 261 (e), 262 (f), 263 (g), 264 (h).
Figura 28. Croma 265 (i), 266 (j), 267 (k), 268 (l).
72
Figura 29. Croma 270 (m), 271 (n), 273 (o), 274 (p).
Figura 30. Croma 276 (q), 277 (r), 278 (s), 279 (t).
