Anexos del informe sobre el incidente Veladero

ESTUDIO SOBRE LA CALIDAD DE LOS CUERPOS DE AGUA EN EL ÁREA DE INFLUENCIA DE LA MINA VELADERO, POSTERIOR AL INCIDENTE AMBIENTAL DEL 13/09/15

“INFORME ECCA”

ANEXOS

Programa de fortalecimiento de las capacidades de gestión y control ambiental del Gobierno de la Provincia de San Juan.

OFICINA DE LAS NACIONES UNIDAS DE SERVICIOS PARA PROYECTOS (UNOPS)

PROGRAMA DE LAS NACIONES UNIDAS PARA EL MEDIO

AMBIENTE (PNUMA)

San Juan, abril de 2016

ÍNDICE

I. Protocolos de análisis de laboratorio

II. Parámetros de campo

III. Informe Limnológico INALI

IV. Material cartográfico

V. Anexo fotográfico

VI. Términos de referencia aprobados

Anexo I – Protocolos de Análisis de Laboratorio

Anexo II – Parámetros de Campo

1. Listado de los puntos de muestreo UNOPS para el Informe ECCA

Tabla 1. Codificación, descripción y coordenadas de los puntos de muestreo UNOPS (Coordenadas geográficas WGS84)

ZONA SUB-ZONA

CIU MATRIZ RIO CÓDIGO

VEL. LONGITUD LATITUD

ALTITUD (m) DESCRIPCIÓN

ZONA 0

GWQ12 AGUA SUBT. Potrerillos GWQ12 -69°56'2,3" -29°23'0,97" 3889 Batería de pozos aguas abajo de los GWQ6




GWQ19 AGUA SUBT. Potrerillos GWQ19 -69°56'1,89" -29°22'51,05" 3867 Batería de pozos aguas abajo de la batería GWQ12-GWQ15

GWQ2P AGUA SUBT. Potrerillos GWQ2P -69°55'44,37" -29°22'13,1" 3785 Pozo profundo, antes de la confluencia con La Taguas

GWQ2S AGUA SUBT. Potrerillos GWQ2S -69°55'44,19" -29°22'13,06" 3785 Pozo superficial, antes de la confluencia con La Taguas

GWQ6C AGUA SUBT. Potrerillos GWQ6C -69°56'5,99" -29°23'3,65" 3892 Pozo aguas abajo pileta del subdren principal

GWQ6P AGUA SUBT. Potrerillos GWQ6-P -69°56'6,13" -29°23'3,72" 3896 Pozo profundo, aguas abajo pileta del subdren principal

GWQ6S AGUA SUBT. Potrerillos GWQ6-S -69°56'6" -29°23'3,63" 3893 Pozo superficial, aguas abajo pileta del subdren principal

GWQ7C AGUA SUBT. Potrerillos GWQ7C -69°56'0,67" -29°22'40,59" 3850 Pozo aguas abajo de la BCRP

GWQ7P AGUA SUBT. Potrerillos GWQ7P -69°56'1,58" -29°22'40,26" 3858 Pozo profundo, aguas abajo de la BCRP

GWQ7S AGUA SUBT. Potrerillos GWQ7S -69°56'0,74" -29°22'40,84" 3853 Pozo superficial, aguas abajo de la BCRP

PL-1 LIMNOLOGÍA Potrerillos -69°56'6,48" -29°23'3,61" 3888 SW-PO-11, Primera vega aguas abajo de la pileta de emergencia.

PL-2 LIMNOLOGÍA Potrerillos QP4 -69°55'59,17" -29°22'51,37" 3862 SW-PO-13, QP4 de Veladero.

PL-3 LIMNOLOGÍA Potrerillos -69°55'56,82" -29°22'29,82" 3838 SW-PO-16, aguas debajo de la BCRP

SL-PO-21 SUELO Potrerillos -69°56'8,34" -29°23'4,92" 3893 Suelo cercano al ojo de agua (SW-PO-21)

SS-CN-1 SEDIMENTO Potrerillos -69°56'10,3" -29°23'4" 3900 Sedimento en el Canal de Desvío Norte

SS-PO-11A SEDIMENTO Potrerillos -69°56'6,41" -29°23'3,51" 3888 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PO-11

SS-PO-11B SEDIMENTO Potrerillos -69°56'6,86" -29°23'3,55" 3887 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PO-11



SS-PO-12C SEDIMENTO Potrerillos -69°56'2,52" -29°23'0,06" 3891 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PO-12







ZONA SUB-ZONA














SW-PO-11 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'6,44" -29°23'3,62" 3888 Aguas abajo de la Pileta de Emergencia, brazo derecho del valle del Potrerillos, procedente del desague de la pileta SP.

SW-PO-12 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'2,85" -29°23'0,73" 3886 Río Potrerillos, junto a la batería de pozos GWQ12-GWQ15

SW-PO-13 AGUA SUP. Potrerillos -69°55'59,47" -29°22'52,48" 3869 Río Potrerillos, junto a la batería de pozo GWQ16-GWQ19

SW-PO-15 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'1,06" -29°22'41,2" 3847 Río Potrerillos, junto a la batería de pozos GWQ7

SW-PO-16 AGUA SUP. Potrerillos -69°55'57,4" -29°22'30,5" 3836 Río Potrerillos, aguas abajo del punto SW-PO-15

SW-PO-19 AGUA SUP. Potrerillos SW6 -69°55'45,06" -29°22'13,24" 3801 Río Potrerillos antes de la confluencia con río Taguas

SW-PO-20 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'7,23" -29°23'3,18" 3885 Brazo del Potrerillos al lado extremo izquierdo del valle, en la misma línea del SW-PO-11. Procede de la descarga del Canal Norte.

SW-PO-21 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'8,34" -29°23'4,92" 3893 Valle del Potrerillos, ojo de agua debajo de la Pileta de Emergencia.

SW-PO-21A AGUA SUP. Potrerillos -69°56'8,34" -29°23'4,92" 3888 Agua de color blanco que salió del subsuelo removiendo el sedimento del ojo de agua debajo de la Pileta de Emergencia (SW-PO-21).

SW-PO-22 AGUA SUP. Potrerillos -69°56'8,04" -29°23'5,54" 3895 Canal de descarga de la Pileta de Subdren, aguas debajo de la Pileta de Emergencia

ZONA 1

AP

AP-SL-1 SUELO Abanico Potrerillos

-69°55'45,04" -29°22'8,5" 3779 Suelo en el abanico Potrerillos

AP-SS-1 SEDIMENTO Abanico Potrerillos

-69°55'44,06" -29°22'8,46" 3781 Sedimento de la surgencia "ácida" en el abanico fluvial del río Potrerillos.


-69°55'44,04" -29°22'8,44" 3781 Sedimento de la pileta de agua formada en una depresión del abanico del Potrerillos, en la margen izquierda del río Las Taguas.


-69°55'42,88" -29°22'11,06" 3789 Sedimento del ojo de agua con evidencia de hidrocarburos en el abanico Potrerillos


-69°55'42,72" -29°22'11,74" 3790 Sedimento en el agua estancada en una zona escavada del abanico aluvial del río Potrerillos, aguas abajo de la alcantarilla debajo del camino

AP-SW-1 AGUA SUP. Abanico Potrerillos

-69°55'44,05" -29°22'8,44" 3781 Pileta de agua formada en una depresión del abanico del Potrerillos, en la margen izquierda del río Las Taguas.


-69°55'45,03" -29°22'8,51" 3779 Surgencia "ácida" en el abanico fluvial del río Potrerillos.


-69°55'42,9" -29°22'11,06" 3789 Ojo de agua con evidencia de hidrocarburos en el abanico Potrerillos


-69°55'42,77" -29°22'11,78" 3793 Agua estancada en una zona escavada del abanico aluvial del río Potrerillos, aguas abajo de la alcantarilla debajo del camino

1 PL-4 LIMNOLOGÍA Las Taguas RT-6 -69°54'58,18" -29°23'15,69" 3809 SW-LT-9, Las Taguas aguas debajo de la desembocadura del Guanaco

ZONA SUB-ZONA




Zonzo

PL-5 LIMNOLOGÍA Las Taguas -69°55'44,46" -29°22'7,49" 3776 SW-LT-11, Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, cerca de las galerías de infiltración

PM-LT1 AGUA SUBT. Las Taguas PM-LT1 -69°55'50,57" -29°21'53,45" 3783 Pozo entre Potrerillos y Turbio

SS-LT-11A SEDIMENTO Las Taguas -69°55'45,1" -29°22'7,86" 3776 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-LT-11

SS-LT-11B SEDIMENTO Las Taguas -69°55'43,19" -29°22'8,48" 3779 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-LT-11

SS-LT-11C SEDIMENTO Las Taguas -69°55'42,46" -29°22'9,57" 3780 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-LT-11







SW-LT-11 AGUA SUP. Las Taguas -69°55'43,21" -29°22'8,44" 3791 Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, cerca de las galerías de infiltración

SW-LT-13 AGUA SUP. Las Taguas LA-7 -69°54'44,97" -29°21'28,99" 3754 Las Taguas, aguas arriba de la desembocadura del río Turbio

SW-LT-9 AGUA SUP. Las Taguas -69°54'58,1" -29°23'15,36" 3809 Las Taguas aguas abajo de la confluencia con Guanaco Zonzo, correspondiente al punto limnología RT-6

WI-LT-1 CAPTACIÓN Las Taguas -69°55'49,85" -29°22'5,98" 3789 Toma en Las Taguas de las galerías de infiltración de Veladero

ZONA 2

ZONA 2A

PL-6 LIMNOLOGÍA Las Taguas -69°54'21,69" -29°20'52,51" 3737 SW-LT-14, Las Taguas entre Turbio y Los Amarillos

PL-7 LIMNOLOGÍA Las Taguas LT-8 -69°51'51,38" -29°18'9,46" 3686 SW-LT-16, Las Taguas, aguas abajo de Los Amarillo. LT-8 de Veladero (Vega La Yareta)

PM-LT2 AGUA SUBT. Las Taguas PM-LT2 -69°54'20,84" -29°20'49,35" 3748 Pozo entre Turbio y Los Amarillos









SW-LT-14 AGUA SUP. Las Taguas SW9 -69°54'21,09" -29°20'54,83" 3736 Las Taguas aguas abajo del río Turbio

SW-LT-15 AGUA SUP. Las Taguas LA-16 -69°53'0,88" -29°19'12,62" 3690 Aguas abajo de Los Amarillos

SW-LT-16 AGUA SUP. Las Taguas -69°51'51,38" -29°18'9,46" 3686 Aguas abajo del SW-LT-15, en la Vega La Yareta

ZONA 2B

SS-BO-10A SEDIMENTO Blanco -69°11'33,46" -29°33'37,15" 2182 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-BO-10

SS-BO-10B SEDIMENTO Blanco -69°11'33,79" -29°33'38,71" 2179 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-BO-10

SS-BO-10C SEDIMENTO Blanco -69°11'33,67" -29°33'39,45" 2180 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-BO-10

SW-BO-10 AGUA SUP. Blanco BLA-1 -69°11'33,42" -29°33'37,23" 2181 Blanco aguas abajo de la confluencia con La Palca.

ZONA SUB-ZONA




PL-8 LIMNOLOGÍA La Palca LP-1 -69°11'39,18" -29°33'29,16" 2172 SW-PA-10, LP-1 de Veladero, río La Palca antes de la confluencia con Blanco

SS-PA-10A SEDIMENTO La Palca -69°11'38,63" -29°33'29,99" 2182 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PA-10

SS-PA-10B SEDIMENTO La Palca -69°11'38,31" -29°33'30,25" 2179 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PA-10

SS-PA-10C SEDIMENTO La Palca -69°11'38,11" -29°33'30,43" 2182 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-PA-10

SW-PA-10 AGUA SUP. La Palca PAL-1 -69°11'39,72" -29°33'28,94" 2176 La Palca, antes de la confluencia con el río Blanco.

ZONA 3

PL-9 LIMNOLOGÍA Blanco -69°9'19,92" -29°43'22,26" 1994 SW-BO-11, Río Blanco en El Chinguillo




SS-BO-11D SEDIMENTO Blanco -69°9'19,92" -29°43'21,08" 1993 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-BO-11







SW-BO-11 AGUA SUP. Blanco BLA-2 -69°9'19,88" -29°43'19,6" 1996 Río Blanco en Chinguillo

SW-BO-12 AGUA SUP. Blanco -69°8'18,87" -29°54'22,67" 1819 Toma del Canal de Malimán en el río Blanco

SW-BO-13 AGUA SUP. Blanco BLA-4 -69°9'56,94" -29°61'26,18" 1668 Río Blanco en Angualasto (BLA-4)

WI-BO-1 CAPTACIÓN vertiente del Blanco

-69°9'43,3" -29°42'40,84" 2023 Toma de abastecimiento del Chinguillo

WI-BO-2 CAPTACIÓN Subterránea cuenca Blanco

-69°10'48,47" -29°57'29,72" 1768 Captación de agua para abastecimiento de Malimán

WI-BO-3 CAPTACIÓN vertiente del Blanco

-69°10'44,5" -29°63'41,34" 1726 Toma de bebida para ganado y agricultura de Angualasto

ZONA 4




SS-JA-10A SEDIMENTO Jáchal -69°2'28,52" -29°72'23,61" 1453 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-JA-10

SS-JA-10B SEDIMENTO Jáchal -69°2'27,34" -29°72'24,3" 1466 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-JA-10

SS-JA-10C SEDIMENTO Jáchal -69°2'23,53" -29°72'20,13" 1495 Sedimentos correspondientes al punto de AGUA SUP. SW-JA-10

SW-BO-14 AGUA SUP. Blanco -69°7'8,49" -29°68'35,02" 1503 Blanco, aguas arriba del embalse Cuesta del Viento.

SW-JA-10 AGUA SUP. Jáchal JA-1 -69°2'27,35" -29°72'24,26" 1471 Río Jáchal, aguas abajo del embalse Cuesta del Viento

2. Parámetros de campo tomados durante la campaña de muestreo del 5 al 10 de octubre 2015

Tabla 2. Caudales medidos (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA RIO Caudal (l/s) OBSERVACIÓN

0 Alcantarillas Potrerillos 08/10/2015 10:30 Potrerillos 18,77 Medición con correntómetro a la salida de las alcantarillas

SW-PO-19 08/10/2015 15:10 Potrerillos 34,10 Medición tomada con correntómetro en canaleta Parshall

1 SW-LT-11 06/10/2015 17:45 Las Taguas 1385,50 Medición con correntómetro

SW-LT-13 06/10/2015 14:50 Las Taguas 884,80 Medición tomada con un correntómetro en canaleta Parshall.

2

SW-LT-14 06/10/2015 13:50 Las Taguas 1089,00 Medición tomada con un correntómetro en canaleta Parshall

SW-LT-15 06/10/2015 10:50 Las Taguas 743,97 Medición tomada con correntómetro en canaleta Parshall

SW-LT-16 07/10/2015 16:10 Las Taguas 770,08 Medición con correntómetro

SW-PA-10 09/10/2015 11:30 La Palca 2555,93 Medición con correntómetro

4 SW-JA-10 09/10/2015 09:40 Jáchal 317,78 Medición con correntómetro

Tabla 3. Parámetros de campo de AGUA SUPERFICIAL. (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO LI T (°C) pH CE

(µS/cm) OD

(mg/l) Turb. (NTU)

MÁRGEN OBSERVACIÓN

0

SW-PO-11 07/10/2015 11:54 Z Potrerillos PL-1 6,5 5,85 962 7,7 28,8 Dx

SW-PO-12 07/10/2015 15:40 Z Potrerillos 4,6 8 1014 7,66 26,2 Dx Antes del aporte del arroyo que baja de la ladera derecha

SW-PO-13 08/10/2015 11:10 Z Potrerillos PL-2 2,8 7,86 1090 8,37 > 1000 Izq Color amarillento, turbia

SW-PO-15 08/10/2015 12:50 Z Potrerillos 1,3 8,12 1063 8,46 > 1000 Izq Color amarillento, turbia

SW-PO-16 08/10/2015 14:05 Z Potrerillos PL-3 1,5 7,86 972 8,44 > 1000 Dx

SW-PO-19 08/10/2015 15:10 Z Potrerillos 3,5 7,57 971 8,25 > 1000 Izq Color amarillento, turbia

SW-PO-20 07/10/2015 12:15 Z Potrerillos 3,8 7,98 1407 7,75 > 1000 Izq Agua turbia con sedimento, coloración té con leche, olor a materia orgánica. En este punto hay sedimentos de color rojizo y ocre.

SW-PO-21 07/10/2015 13:15 Z Potrerillos 6,6 6,39 1224 4,07 21,6 Centro En este punto se tomó también muestra con la pala (SL-PO-21)

SW-PO-21A 07/10/2015 13:40 Z Potrerillos 6,7 6,29 1259 4,94 2,93 Izq Al sacar la muestra de suelo con la pala (SL-PO-21) comenzó a salir agua de color blanca. Esa agua es la que se tomó para la muestra

SW-PO-22 07/10/2015 14:15 Z Potrerillos 5,4 8 953 7,65 30,1 Dx Tomada en la margen Dx del canal de descarga

1

AP-SW-1 06/10/2015 18:20 Z Abanico Potrerillos

PL-5 7,4 3,06 2250 6,46 12,8 -

Se tomó en una pileta de agua formada en una depresión del abanico del Potrerillos, en la margen izquierda del río Las Taguas, donde estudiaron la limnología. Se tomó SS en la misma pileta

AP-SW-2 06/10/2015 18:45 Z Abanico Potrerillos

3,9 3,17 2470 7,53 4,58

Se tomó muestra de suelo aguas abajo de la vertiente. (AP-SL-1). Substrato color rojizo y presencia de materia orgánica. Aquí se intentó replantar vegas pero su acidez no lo ha permitido.

AP-SW-3 08/10/2015 15:55 X Abanico Potrerillos

- - - - - -

Ojo de agua con evidencia de hidrocarburos en el abanico Potrerillos. No se tomaron parámetros de campo por la presencia de hidrocarburos. Toma de muestras con jeringa

AP-SW-4 08/10/2015 16:00 PC Abanico Potrerillos

2,1 7,04 1155 5,79 49,61 - Color blanquecinos, clara, espuma liviana. Se han tomado solamente parámetros de campo. Agua congelada

SW-LT-11 06/10/2015 17:45 Z Las Taguas PL-5 2,6 8,28 1803 8,01 473 Centro Color marrón, turbia. El márgen izq tiene hielo, se muestrea en el centro

SW-LT-13 06/10/2015 14:50 Z Las Taguas 3,1 7,81 1716 8,13 Dx Muestra tomada unos 70m guas arriba del Parshall

SW-LT-9 07/10/2015 18:15 Z Las Taguas PL-4 1,1 8,72 1702 8,77 260 Dx Color café, turbia, sin espuma

2

SW-BO-10 09/10/2015 13:05 Z Blanco 9 8,66 3050 2,88 577 Izq Muestra tomada con pescador de acero inox

SW-LT-14 06/10/2015 13:50 Z Las Taguas PL-6 4,5 7,41 1826 7,87 > 1000 Izq

SW-LT-15 06/10/2015 10:50 Z Las Taguas 0,7 7,79 1869 8,75 276 Centro/Dx

SW-LT-16 07/10/2015 16:10 Z Las Taguas PL-7 7,3 6,39 - 7,95 74 Izq Ancho total de 10m, banco de 4m. No se pudo medir la CE. Coloración marrón, turbia

SW-PA-10 09/10/2015 11:30 Z La Palca PL-8 5,5 8,31 1439 3,88 > 750 Izq

3

SW-BO-11 09/10/2015 15:00 Z Blanco PL-9 8,1 8,45 2335 2,16 > 750 Dx Muestra tomada con pescador de acero inox

SW-BO-12 09/10/2015 17:10 Z Blanco 8,2 8,38 2199 9,39 > 1000 Izq del canal

SW-BO-13 09/10/2015 14:10 Z Blanco 9,8 8,4 2111 9,21 > 1000 Dx Color marrón claro, turbia. Ancho: unos 15m

4 SW-BO-14 09/10/2015 12:35 Z Blanco 10,7 8,43 1941 9,18 > 1000 Dx

SW-JA-10 09/10/2015 09:40 Z Jáchal 6,9 8,42 2270 10,25 228 Dx Color amarillento, turbia

Tabla 4. Registros de campo de las muestras de SEDIMENTOS (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO SW LI T (°C) COLOR TEXTURA MÁRGEN OBSERVACIÓN

0

SS-CN-1 07/10/2015 12:30 Y Potrerillos Sedimento tomado en el Canal de Desvío Norte

SS-PO-11A 07/10/2015 13:10 Y Potrerillos SW-PO-11 PL-1 4 ocre limoso Dx Con muchos restos de pasto

SS-PO-11B 07/10/2015 13:00 Y Potrerillos SW-PO-11 PL-1 2,5 ocre limoso Centro

SS-PO-12A 07/10/2015 15:50 Y Potrerillos SW-PO-12 3,5 Marrón claro limoso Izq

SS-PO-12B 07/10/2015 16:35 Y Potrerillos SW-PO-12 4,8 Marrón claro limo-arenoso Izq estrato de 3/4 cm sobre materia orgánica muerta

SS-PO-12C 07/10/2015 16:45 Y Potrerillos SW-PO-12 1,4 Marrón claro limoso Dx estrato de 3/4 cm sobre materia orgánica muerta

SS-PO-13A 08/10/2015 11:40 Y Potrerillos SW-PO-13 0,2 ocre oscuro limo-arenoso Izq

SS-PO-13B 08/10/2015 11:20 Y Potrerillos SW-PO-13 0,2 ocre oscuro arenoso Izq

SS-PO-13C 08/10/2015 12:00 Y Potrerillos SW-PO-13 0,3 ocre oscuro limoso con piedras Dx

SS-PO-15A 08/10/2015 13:20 Y Potrerillos SW-PO-15 PL-2 0,4 ocre limo-arenoso Izq

SS-PO-15B 08/10/2015 13:10 Y Potrerillos SW-PO-15 PL-2 0,2 ocre limoso Dx

SS-PO-15C 08/10/2015 12:50 Y Potrerillos SW-PO-15 PL-2 0,6 ocre limoso Dx

SS-PO-16A 08/10/2015 14:10 Y Potrerillos SW-PO-16 PL-3 -0,1 marrón arenoso Dx

SS-PO-16B 08/10/2015 16:10 Y Potrerillos SW-PO-16 PL-3 0,5 ocre limoso Dx

SS-PO-16C 08/10/2015 14:20 Y Potrerillos SW-PO-16 PL-3 0,2 ocre limoso Dx

SS-PO-19A 08/10/2015 15:15 Y Potrerillos SW-PO-19 0,5 Marrón limo-arenoso Dx

SS-PO-19B 08/10/2015 15:30 Y Potrerillos SW-PO-19 0,5 Marrón limoso Dx

SS-PO-19C 08/10/2015 15:45 Y Potrerillos SW-PO-19 0,5 arenoso Dx

SS-PO-20A 07/10/2015 13:30 Y Potrerillos SW-PO-20 3 rojizo limoso-arenoso Izq Capa superior del sedimento limoso, capa inferior arenoso.

SS-PO-20B 07/10/2015 13:35 Y Potrerillos SW-PO-20 0,3 ocre claro limo-arenoso Izq

SS-PO-22A 07/10/2015 13:20 Y Potrerillos SW-PO-22 ocre limoso Dx

SS-PO-22B 07/10/2015 14:15 Y Potrerillos SW-PO-22 ocre limoso Dx

1

AP-SS-1 06/10/2015 18:55 Y Abanico Potrerillos

AP-SW-2 7 marrón arenoso - tomado en el arroyo creado por la surgencia ácida del abanico del río Potrerillos


AP-SW-1 PL-5 7,4 ocre Sedimento de la pileta en depresión del abanico Potrerillos


AP-SW-3 2 rojizo limoso -


AP-SW-4 0,2 Marrón limoso - Fondo del agua estancada aguas abajo de la alcantarilla del Potrerillos

SS-LT-11A 06/10/2015 18:25 Y Las Taguas SW-LT-11 PL-5 4,9 tierra oscuro arenoso Izq

SS-LT-11B 06/10/2015 19:20 Y Las Taguas SW-LT-11 PL-5 5,4 ocre oscuro limoso Izq

SS-LT-11C 06/10/2015 19:20 Y Las Taguas SW-LT-11 PL-5 9,4 ocre oscuro limoso Izq

SS-LT-13A 06/10/2015 15:05 Y Las Taguas SW-LT-13 4,3 ocre Izq

SS-LT-13B 06/10/2015 15:10 Y Las Taguas SW-LT-13 6,7 ocre Izq

SS-LT-13C 06/10/2015 15:25 Y Las Taguas SW-LT-13 7,8 marrón limo-arenoso Dx

SS-LT-9A 07/10/2015 18:50 Y Las Taguas SW-LT-9 PL-4 0,3 arenoso Dx

SS-LT-9B 07/10/2015 18:25 Y Las Taguas SW-LT-9 PL-4 0,7 marrón oscuro arenoso Dx

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO SW LI T (°C) COLOR TEXTURA MÁRGEN OBSERVACIÓN

SS-LT-9C 07/10/2015 19:45 Y Las Taguas SW-LT-9 PL-4 0,9 areno-limoso Dx

2

SS-BO-10A 09/10/2015 13:05 Y Blanco SW-BO-10 marrón limo-arenoso Izq Presencia de materia orgánica/algas

SS-BO-10B 09/10/2015 13:10 Z Blanco SW-BO-10 marrón arcilloso Izq Materia orgánica en proceso de descomposición

SS-BO-10C 09/10/2015 13:15 Y Blanco SW-BO-10 marrón oscuro arcilloso Dx Presencia de materia orgánica

SS-LT-14A 06/10/2015 13:20 Y Las Taguas SW-LT-14 PL-6 0,2 Izq

SS-LT-14B 06/10/2015 13:30 Y Las Taguas SW-LT-14 PL-6 0,2 marrón/ocre oscuro Izq

SS-LT-14C 06/10/2015 13:55 Y Las Taguas SW-LT-14 PL-6 2,1 marrón Izq

SS-LT-15A 06/10/2015 10:35 Y Las Taguas SW-LT-15 ocre Dx

SS-LT-15B 06/10/2015 10:45 Y Las Taguas SW-LT-15 ocre Dx

SS-LT-15C 06/10/2015 11:20 Y Las Taguas SW-LT-15 ocre limoso Dx

SS-LT-16A 07/10/2015 16:45 Y Las Taguas SW-LT-16 PL-7 marrón anaranjado arenoso Izq Presencia de patos

SS-LT-16B 07/10/2015 16:50 Y Las Taguas SW-LT-16 PL-7 marrón anaranjado arenoso Dx

SS-PA-10A 09/10/2015 12:10 Y La Palca SW-PA-10 PL-8 marrón limoso Izq

SS-PA-10B 09/10/2015 12:18 Y La Palca SW-PA-10 PL-8 marrón limo-arenoso Izq

SS-PA-10C 09/10/2015 12:20 Y La Palca SW-PA-10 PL-8 marrón limoso Izq presencia de arena fina y raices

3

SS-BO-11A 09/10/2015 15:25 Y Blanco SW-BO-11 PL-9 castaño/verde Dx Presencia de una pátina rojiza

SS-BO-11B 09/10/2015 15:30 Y Blanco SW-BO-11 PL-9 Amarillo limoso

SS-BO-11C 09/10/2015 15:35 Y Blanco SW-BO-11 PL-9 castaño/verde Dx

SS-BO-11D 09/10/2015 15:40 Y Blanco SW-BO-11 castaño/verde Dx

SS-BO-12A 09/10/2015 17:10 Y Blanco SW-BO-12 8 marrón, ocre y amarillento

limoso Dx En el río Blanco, aguas debajo de la toma del Canal de Malimán

SS-BO-12B 09/10/2015 17:20 Y Blanco SW-BO-12 11,6 marrón oscuro con partes negras

limoso Izq del Canal

En el Canal de Malimán

SS-BO-12C 09/10/2015 17:30 Y Blanco SW-BO-12 9,6 marrón limoso Izq de la toma

En la estructura de desvío del Canal de Malimán

SS-BO-13A 09/10/2015 14:00 Y Blanco SW-BO-13 9,4 marrón con protuberancias ocres

limoso Dx

SS-BO-13B 09/10/2015 14:15 Y Blanco SW-BO-13 12,1 marrón y negro limoso Dx

SS-BO-13C 09/10/2015 14:30 Y Blanco SW-BO-13 14,5 marrón y ocre limoso Dx

4

SS-BO-14A 09/10/2015 12:00 Y Blanco SW-BO-14 12 marrón limoso Dx Orilla derecha del brazo izquierdo del río Blanco

SS-BO-14B 09/10/2015 12:15 Y Blanco SW-BO-14 12,6 marrón oscuro limoso arriba y arenoso abajo

Orilla derecha del río Blanco

SS-BO-14C 09/10/2015 12:30 Y Blanco SW-BO-14 11,3 marrón limoso En una isla entre dos brazos del río Blanco

SS-JA-10A 09/10/2015 09:40 Y Jáchal SW-JA-10 6,4 marrón arenoso

SS-JA-10B 09/10/2015 09:50 Y Jáchal SW-JA-10 6,2 marrón sup/ocre abajo

arenoso arriba y limoso abajo

SS-JA-10C 09/10/2015 10:15 Y Jáchal SW-JA-10 7,2 marrón limoso

Tabla 6. Parámetros de campo de AGUA SUBTERRÁNEA (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015).

ZONA CIU FECHA HORA SUITE CUENCA Nivel inicial

(m) T (°C) pH

CE (µS)

OD (mg/l)

Turb. (NTU)

OBSERVACIÓN

0

GWQ12 07/10/2015 15:35 Z Potrerillos 3,315 3,6 7,43 840 6,66 9,9



GWQ15 08/10/2015 11:15 PC Potrerillos 1,51 2 7,12 780 7,64 6,93 Se tomaron solamente parámetros de campo

GWQ19 08/10/2015 11:40 PC Potrerillos 6 7,68 532 1,8 23 Pozo surgente, la muestra se toma a 1 m con bailer. Material en suspensión.

GWQ2P 08/10/2015 15:10 Z Potrerillos 0,23 14,5 4,95 2001 202 47,1 Pozo pinchado surgente a 10 cm del suelo

GWQ2S 08/10/2015 15:20 Z Potrerillos 0,79 9,1 5,37 1981 3,25 2,42

GWQ6C 08/10/2015 10:55 Z Potrerillos 1,77 2,3 6,85 1083 2,26 19,3

GWQ6P 07/10/2015 12:30 Z Potrerillos 1,62 5 7,47 1018 2,13 2

GWQ6S 07/10/2015 11:55 Z Potrerillos 1,52 1,4 7,09 1088 2 0,63

GWQ7C 08/10/2015 12:50 Z Potrerillos 2,97 4,8 6,98 919 3,88 677

GWQ7P 08/10/2015 13:40 Z Potrerillos 4,08 6,3 7,3 741 5,9 5,11

GWQ7S 08/10/2015 13:10 Z Potrerillos 2,37 0,9 7,4 918 9,02 54

1 PM-LT1 06/10/2015 16:25 Z Las Taguas 2,28 3,6 6,64 1778 7,04 0,11

2 PM-LT2 06/10/2015 13:15 Z Las Taguas 2,86 9,4 8,71 926 3,26 0,55 sin color, turbidez clara

Tabla 7. Registros de campo de las muestras de SUELO (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015).

ZONA CIU FECHA HORA SUITE CUENCA COLOR OBSERVACIÓN

0 AP-SL-1 06/10/2015 18:15 Y Abanico Potrerillos oscuro Excavación a 30 cm de profundidad

SL-PO-21 07/10/2015 13:40 Y Potrerillos Suelo tomado cerca del ojo de agua debajo de la Pileta de Emergencia

Tabla 8. Registros de campo de las muestra de CAPTACIÓN DE AGUA (Muestreo del 5 al 10 de octubre 2015).

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO T

(°C) pH

CE (µS/cm)

OD (mg/l)

Turb. (NTU)

OBSERVACIÓN

1 WI-LT-1 06/10/2015 16:55 Z Las Taguas 4,2 8,02 1711 8,08 211

3

WI-BO-1 09/10/2015 16:40 Z vertiente del río Blanco 8,1 8,62 601 8,8 15,1 Toma de la acequia antes del ingreso a los filtros

WI-BO-2 09/10/2015 18:50 Z Subterránea cuenca Blanco 11,5 7,5 500 8,59 0,58 Toma directa con botellas desde el tanque antes de ser tratada para el consumo

WI-BO-3 09/10/2015 19:20 Z vertiente del Blanco 13,8 8,3 359 8,6 2,73 Vertiente de agua usada para bebida de ganado y agricultura

3. Parámetros de campo tomados durante la campaña de monitoreo del 20 al 22 de octubre 2015

Tabla 9. Caudales medidos (Monitoreo del 20 al 22 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA RIO Aforo (l/s) OBSERVACIÓN

2 SW-PA-10 21/10/2015 11:15 La Palca 1332,25 Medición con correntómetro

Tabla 10. Parámetros de campo de AGUA SUPERFICIAL. (Monitoreo del 20 al 22 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO T (°C) pH CE (µS/cm) OD (mg/l) Turb. (NTU) MÁRGEN OBSERVACIÓN

2 SW-BO-10 21/10/2015 12:10 Z Blanco 10 8,44 2850 8,56 143 Izq Color amarillento, turbia

SW-PA-10 21/10/2015 11:15 Z La Palca 8,3 8,48 1396 8,99 339 Izq

3

SW-BO-11 21/10/2015 14:30 Z Blanco 14,8 8,41 2058 7,79 437 Dx

SW-BO-12 21/10/2015 17:30 Z Blanco 16,2 8,53 2076 7,67 560 Dx color marrón, turbia.

SW-BO-13 22/10/2015 09:45 Z Blanco 9,5 8,33 2044 9,23 613 Dx

4 SW-BO-14 22/10/2015 11:10 Z Blanco 14,1 8,46 1910 8,58 515 Dx color marrón, turbia

SW-JA-10 20/10/2015 19:23 Z Jáchal 11,6 8,35 2240 8,32 16,3 Dx

Tabla 11. Registros de campo de las muestra de CAPTACIÓN DE AGUA (Monitoreo del 20 al 22 de octubre 2015).

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO T (°C) pH CE

(µS/cm) OD

(mg/l) Turb. (NTU)

OBSERVACIÓN

3 WI-BO-1 21/10/2015 13:40 Z vertiente del Blanco 16 8,76 571 7,55 15,9 Toma de la acequia antes del ingreso a los filtros

3 WI-BO-2 21/10/2015 19:10 Z Subterránea cuenca Blanco

17,3 7,91 487 7,85 0,31 Toma directa con botellas desde el tanque antes de ser tratada para el consumo

3 WI-BO-3 22/10/2015 10:20 Z vertiente del Blanco 20,1 8,17 335 7,22 2,77 Vertiente de agua usada para bebida de ganado y agricultura

4. Parámetros de campo tomados durante la campaña de monitoreo del 27 de octubre 2015

Tabla 12. Parámetros de campo de AGUA SUPERFICIAL. (Monitoreo del 27 de octubre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA SUITE RIO T (°C) pH CE (µS/cm) OD (mg/l) Turb. (NTU) MÁRGEN OBSERVACIÓN

2

SW-BO-10 27/10/2015 14:35 Z Blanco 19,5 8,62 3430 6,02 560 Izq Color amarillento/café, turbia

SW-PA-10 27/10/2015 14:00 Z La Palca 15,3 8,85 1500 6,57 948 Izq Color café, turbia, tomada con pescador

3 SW-BO-12 27/10/2015 16:50 Z Blanco 18,3 8,91 2278 6,33 > 1000 Izq Color café, turbia

4 SW-BO-14 27/10/2015 19:35 Z Blanco 17,5 8,71 2128 6,5 957 Dx Color gris, turbia

SW-JA-10 27/10/2015 20:15 Z Jáchal 13,9 8,8 2415 6,9 14,6 Dx Transparente, sin color

Tabla 13. Registros de campo de las muestra de CAPTACIÓN DE AGUA (Monitoreo del 27 de octubre 2015).


(°C) pH

CE (µS/cm)

OD (mg/l)

Turb. (NTU)

OBSERVACIÓN

3

WI-BO-1 27/10/2015 11:55 Z vertiente del Blanco

11,6 8,93 630 5,67 17,1 Toma de la acequia antes del ingreso a los filtros

WI-BO-2 27/10/2015 17:55 Z Subterránea cuenca Blanco

16,9 8,59 520 7,11 0,86 Toma directa con botellas desde el tanque antes de ser tratada para el consumo

WI-BO-3 27/10/2015 18:45 Z vertiente del Blanco

19,9 8,43 357 5,61 1,79 Vertiente de agua usada para bebida de ganado y agricultura

5. Parámetros de campo tomados durante la campaña de monitoreo del 30 de octubre al 1 de noviembre 2015

Tabla 14. Caudales medidos (Monitoreo del 30 de octubre al 1 de noviembre 2015)

ZONA CIU FECHA HORA RIO Aforo (l/s) OBSERVACIÓN

0 Alcantarilla Potrerillos 31/10/2015 12:50 Potrerillos 14,00 Medición con correntómetro a la salida de las alcantarillas

SW-PO-19 30/10/2015 17:15 Potrerillos 29,45 Medición tomada con correntómetro en canaleta Parshall

1 SW-LT-11 30/10/2015 15:25 Las Taguas 1921,89 Medición con correntómetro


2



SW-LT-16 30/10/2015 10:20 Las Taguas 812,39 Medición con correntómetro. Se toma caudal en el curso principal del río, pegado a la vega. También fluía mucha agua en la vega.

Tabla 15. Parámetros de campo de AGUA SUPERFICIAL. (Monitoreo del 30 de octubre al 1 de noviembre 2015)


(°C) pH

CE (µS/cm)

OD (mg/l)

Turb. (NTU)

MÁRGEN OBSERVACIÓN

0

SW-PO-11 31/10/2015 09:25 W Potrerillos 3,6 7,55 1232 8,2 15,6 Dx Sin color, transparente.

SW-PO-12 31/10/2015 13:40 W Potrerillos 16,2 7,81 1532 5,74 538 Dx Antes del aporte del arroyo que baja de la ladera derecha. Color amarillento, turbia

SW-PO-13 31/10/2015 14:10 W Potrerillos 16 7,85 1252 5,81 >1000 Dx Color amarillento, turbia

SW-PO-15 31/10/2015 15:45 W Potrerillos 11,3 7,79 905 6,5 >1000 Dx Color café con leche, turbia

SW-PO-16 30/10/2015 17:48 W Potrerillos 5,9 7,76 988 7,62 >1000 Dx Color amarillento, turbia

SW-PO-19 30/10/2015 17:15 W Potrerillos 7,5 7,88 1110 7,41 >1000 Dx Color amarillento, turbia

SW-PO-20 31/10/2015 09:52 W Potrerillos 0,5 7,49 6430 8,26 >1000 Izq Color ocre/amarillento, turbio. Brazo izquierdo del Potrerillos (Canal Norte)

1 SW-LT-11 30/10/2015 15:25 W Las Taguas 9,5 8,25 1482 7,12 >1000 Centro Color chocolate y amarillento, turbia

SW-LT-13 30/10/2015 12:30 W Las Taguas 8,1 8,17 1517 7,44 >1000 Dx Color amarillento, turbia

2

SW-LT-14 30/10/2015 12:20 W Las Taguas 6,5 7,21 1331 7,6 472 Dx Color amarillento, turbia

SW-LT-15 30/10/2015 11:30 W Las Taguas 5,3 6,47 1476 7,68 285 Dx Color amarillento, turbia

SW-LT-16 30/10/2015 10:20 W Las Taguas 3 7,26 1469 8,38 298 Izq Tomado a 300m aguas arriba del punto de la campaña anterior (fecha 7-10-2015). Color amarillento, turbia

Tabla 16. Parámetros de campo de AGUA SUBTERRÁNEA (Monitoreo del 30 de octubre al 1 de noviembre 2015).

ZONA CIU FECHA HORA SUITE CUENCA Nivel inicial (al

casing) (m) T

(°C) pH

CE (µS/cm)

OD (mg/l) Turb. (NTU)

OBSERVACIÓN

0

GWQ12 31/10/2015 11:00 W Potrerillos 1,095 3,6 7,99 425 6,5 6,21

GWQ13 31/10/2015 11:25 W Potrerillos 2,46 2,6 7,45 827 3055 22,4

GWQ14 31/10/2015 12:10 W Potrerillos 2,288 3,6 7,21 877 3,59 207 Agua blanquecina

GWQ15 31/10/2015 12:25 W Potrerillos 1,27 2,3 7,06 757 6,99 58,2 Color gris, clara.

GWQ2P 30/10/2015 16:30 W Potrerillos 0,27 14,9 4,93 1965 1 21,1

GWQ2S 30/10/2015 16:55 W Potrerillos 1,8 10 5,2 1948 0,7 15,5

GWQ6C 31/10/2015 09:46 W Potrerillos 1,79 2 7,23 1069 1,5 8,6

GWQ6P 31/10/2015 09:10 W Potrerillos 1,61 9 7,19 939 1,71 1,51

GWQ6S 31/10/2015 10:27 W Potrerillos 1,57 1,1 7,1 1083 2,28 1,63

GWQ7C 31/10/2015 15:15 W Potrerillos 1,695 4,6 7,09 863 5,09 185 Color amarillento

GWQ7P 31/10/2015 16:00 W Potrerillos 2,68 6,2 7,36 664 4,68 1,68

GWQ7S 31/10/2015 15:20 W Potrerillos 1,695 1,3 7,2 879 3,94 27,4

1 PM-LT1 30/10/2015 14:45 W Las Taguas 2,5 5 6,81 1784 6,11 0,65

2 PM-LT2 30/10/2015 12:48 W Las Taguas 2,875 10,3 8,63 928 2,32 0,14

Anexo III – Informe Limnológico INALI

Estudio limnológico de ríos y arroyos en el área de influencia de la Mina Veladero 2015 1 / 72

Estudio limnológico de ríos y arroyos en

el área de influencia de la Mina

Veladero

2015

Instituto Nacional de Limnología

Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas

Universidad Nacional del Litoral


Director Instituto Nacional de Limnología y Responsable del Estudio Limnológico

Pablo Collins

Laboratorios y personal interviniente en el informe

Laboratorio de Plancton: Melina Devercelli, María Florencia Gutierrez, Florencia Rojas Molina, Magdalena

Licursi

Laboratorio de Bentos: Mercedes Marchese, Leticia Mesa, Luciana Montalto, Florencia Zilli, Vanesa López

van Oosterom, Miguel Saigo

Laboratorio de Macrocrustáceos: Pablo Collins, Leandro Negro

Personal de Campaña: Marcelo Piacenza

Redacción y edición del Informe: Pablo Collins, María de la Paz Ducommun, Lucrecia Valldeneu

http://www.inali.santafe-conicet.gov.ar/devercelli.html

http://www.inali.santafe-conicet.gov.ar/marchese.html

http://www.inali.santafe-conicet.gov.ar/mesa.html

http://www.inali.santafe-conicet.gov.ar/montalto.html

http://www.inali.santafe-conicet.gov.ar/zilli.html


INDICE

1 INTRODUCCIÓN 4

Mineria en Argentina 8

Reglamentación y Normativa 8

2 FUNDAMENTACION DEL ESTUDIO 10

Antecedentes de estudios 10

3 OBJETIVO DEL PRESENTE ESTUDIO 11

4 ÁREA DE ESTUDIO 11

5 MATERIAL Y MÉTODOS 13

5.1 Estrategia de muestreo 13

5.2 Factores físico-químicos 14

5.2.1 Temperatura del agua 14

5.2.2 Sales disueltas y pH 14

5.2.3 Oxígeno disuelto 14

5.3 Comunidades Biológicas 14

5.3.1 Plancton 14

5.3.1.1 Fitoplancton 14

5.3.1.2 Zooplancton 15

5.3.2 Ensambles bentónicos 15

5.3.2.1 Fitobentos 15

5.3.2.1.1 Análisis particular de Diatomeas del Fitobentos 16

5.3.2.2 Macroinvertebrados bentónicos 16

5.4 Análisis de datos 17

6 RESULTADOS Y DISCUSIÓN 20

6.1 Factores físico-químicos 22

6.2 Comunidades biológicas 24

6.2.1 Plancton 24

6.2.1.1 Fitoplancton 24

6.2.1.2 Zooplancton 34

6.2.2 Ensambles bentónicos 40

6.2.2.1 Fitobentos 40

6.2.2.1.1 Taxocenosis de diatomeas 48

6.2.2.2 Macroinvertebrados bentónicos 53

6.3 Riqueza, equitatividad y diversidad por zonas definidas en el área de estudio 59

6.4 Comparación con muestras realizadas en monitoreos previos 61

7 CONCLUSIONES 64

8 BIBLIOGRAFÍA 68


1 INTRODUCCIÓN

Los yacimientos de minerales son explotados de diferentes maneras obteniéndose de rocas

conformadas por diversos minerales que se originaron en los procesos geológicos. Estos pueden ser

extraídos de una cueva o caverna, o desgastando la superficie de la corteza terrestre.

Uno de los métodos extractivos es a partir de la excavación mecánica del terreno que forma el

yacimiento. Estas minas son rentables económicamente cuando se encuentran en superficie, cuando el

yacimiento se profundiza, la explotación se transforma en menos rentable. Por ello, cuando la

profundidad del yacimiento aumenta, la ventaja económica de la extracción a cielo abierto disminuye en

favor de la explotación a través de la minería subterránea.

Uno de los emprendimientos mineros en Argentina es el conocido como Veladero, este es una mina

ubicada en el departamento Iglesia, provincia de San Juan, aproximadamente a 350 kilómetros al

noroeste de la ciudad de San Juan y a una altura de entre 4.000 y 4.850 msnm en la Cordillera de los

Andes. Este emprendimiento es administrado y ejecutado por la empresa Barrick Gold.

El yacimiento explota principalmente oro y secundariamente plata. En este proceso de extracción

existen varias técnicas utilizadas en el mundo. Entre una de ellas, la cianuración se utiliza en zonas

donde se encuentran rocas que contienen oro. La solución de cianuro de sodio se mezcla con clastos

finos, ya que ha sido comprobado que pueden contener oro y/o plata, para lograr que se separen de

estos en forma de solución de cianuración de oro y/o cianuración de plata. Luego, se incorpora zinc a la

solución precipitando residuos de zinc y los metales buscados como son el oro y la plata.

La técnica con cianuro es muy simple y sencilla de aplicar, y también es un método muy popular en el

procesamiento del oro y plata de bajo grado. Como en la mayoría de los procesos químicos industriales,

existen riesgos ambientales que se presentan con este método de extracción, además de la alta

toxicidad del cianuro en sí.

El cianuro (CN-) es un compuesto químico que consiste de un átomo de carbono conectado a un átomo

de nitrógeno por tres enlaces (C≡N).

Este elemento puede encontrarse en forma natural o ser manufacturado. En la naturaleza existen varias

fuentes de cianuro, como por ejemplo en bacterias, algas, hongos, artrópodos, entre otros. Entre las

plantas superiores existen muchas frutas, verduras y semillas que lo contienen, entre ellas las nueces,

damascos, brotes de poroto, castañas, cerezas, maíz, lentejas, duraznos, maníes, pistachos, papas y soja

(Logsdon et al., 2001).

Aproximadamente la totalidad del cianuro de origen antropogénico tiene dos destinos.

La mayor proporción de este compuesto se utiliza en varios procesos (recuperación de metales,

realización de exámenes de laboratorio y en aplicaciones fotográficas) y constituye un componente de

elementos y objetos que las personas utilizan cotidianamente como son los plásticos (por ejemplo el


acrílico), telas, colorantes y pigmentos, suplementos alimenticios para perros, químicos para la

agricultura, gomas, productos farmacéuticos y de limpieza doméstica, entre otros.

El resto del cianuro manufacturado se utiliza para producir otros compuestos de los cuales los más

comunes son las sales simples de cianuro: cianuro de potasio (KCN) y de sodio (NaCN). A su vez, estas

sales son la base para la formación de cianuro gaseoso de hidrógeno (HCN). Aunque estas sustancias

pueden ser potentes tóxicos de acción rápida si se lo ingiere, inhala o absorbe en cantidades mayores al

límite permisible en los seres humanos y en otras especies, cuando están presentes en concentraciones

bajas no causan problemas crónicos en la salud de los organismos o en el ambiente.

Entre algunas de las industrias, como se mencionó antes, la minera utiliza el cianuro en sus procesos

productivos desde hace un largo período de tiempo (año 1887). Especialmente en la explotación del oro,

el cianuro se emplea casi exclusivamente en la lixiviación o recuperación de este metal ya que

constituye uno de los pocos reactivos químicos que, usado en soluciones a base de agua, es capaz de

disolver oro y de extraerlo de yacimientos pobres.

En el proceso de lixiviación, la solución resultante que contiene el oro extraído es la “solución cargada” a

la que luego se le agrega zinc o carbón activado para recuperarlo. La solución residual, que carece de

oro, es la “solución estéril” y puede recircularse para extraer más oro o enviarse a una instalación para

el tratamiento de residuos.

Entre los compuestos cianurados, el cianuro de sodio es el que, en soluciones muy diluidas, más se

utiliza en esta industria; a nivel mundial, aproximadamente el 95% de las operaciones de recuperación

del oro se realizada empleando esta sal.

Riesgos

La cianuración del oro (también conocida como el proceso de cianuro o el proceso de MacArthur-

Forrest) es una técnica metalúrgica de extracción de oro en rocas con baja calidad o cantidad de éste,

que busca convertir el oro (insoluble en agua) en aniones metálicos complejos de aurocianida, solubles

en agua. Este proceso y debido a la naturaleza tóxica del cianuro es una técnica controvertida y su uso

está prohibido en varios países y territorios.

El cianuro libre se descompone rápidamente cuando está expuesto a la luz del sol, los productos menos

tóxicos, como cianatos y tiocianatos, pueden persistir durante varios años. Entre los riesgos, los

derrames de cianuro pueden tener efectos sobre los ríos, afectando toda forma de vida acuática por

varios kilómetros. La intensidad de esto depende de factores existente en la región. Los peces son los

integrantes de la fauna más evidentes, pero en realidad las tramas tróficas pueden ser afectadas, desde

el fitoplancton hasta mamíferos y aves. Sin embargo, la toxicidad se enmascara en los sistemas fluviales

debido a los procesos de dilución y de flujo del agua existente además de la capacidad de que los

organismos emigren hacia las zonas no impactadas. Las zonas afectadas pueden ser repobladas, un


ejemplo es el río Somes en la región de Baia Mare, en el cual el plancton luego de un derrame de

solución de cianuro se recuperó luego de un par de semanas del accidente (Garvey et al., 2000).

Más de 90 minas en todo el mundo utilizan ahora un circuito de desintoxicación para convertir el

cianuro a una condición menos tóxico como es el cianato, antes de que los residuos se procesen. Esto

puede reducir las concentraciones de cianuro por debajo de 10 ppm cómo ordena la Directiva de

Residuos de Minería de la UE (Mining Waste Directive, 2006). Los restos de cianuro se descomponen

naturalmente en el estanque, mientras que los iones de cianato son naturalmente hidrolizados a iones

de amonio, y luego a nitrato. Estudios recientes muestran que el cianuro residual generado en las minas

de oro pueden provocar una fuga persistente de metales tóxicos (por ejemplo, mercurio) en las aguas

subterráneas y superficiales (Tom et al., 2006).

En el ambiente

Si bien el cianuro está presente en el ambiente y en varios animales y plantas, su toxicidad no se

extiende debido a varios factores. En primer lugar se reconoce que no persiste demasiado tiempo en el

medio ya que se elimina o transforma en otras sustancias químicas (menos tóxicas) mediante procesos

físicos, químicos y biológicos naturales.

La exposición a la luz del sol, pueden reducir la concentración de formas tóxicas de cianuro cuando estas

se encuentran formando parte de soluciones.

En el suelo, algunos compuestos de cianuro pueden formar cianuro de hidrógeno y evaporarse, mientras

que otros pueden ser transformados a otras sustancias por microorganismos.

La vida media del cianuro en el agua es muy variable y depende de los diferentes factores abióticos y

bióticos que rigen en el área, dentro de estos se conoce que una proporción puede ser transformada

por algunos microorganismos a sustancias menos perjudiciales o formar complejos con metales, pero la

mayor parte formará cianuro de hidrógeno.

Sin embargo, el cianuro es una sustancia muy tóxica para especies acuáticas, como algunos artrópodos y

peces. No obstante no se acumula en la mayoría de los organismos de animales, así lo demuestran, por

ejemplo, investigaciones realizadas con algunas especies de peces (Kovacs y Leduc, 1982; Cheng et al.,

1988; Mudder, 1998).

No se han hallado evidencias acerca de la biomagnificación de cianuro en las tramas tróficas, pero si se

trata de compuestos sintéticos que no se descomponen rápidamente, estos podrían acumularse en las

redes tróficas.

Para el cianuro y sus derivados, al igual que para otras sustancias químicas que se generan o utilizan en

diferentes procesos industriales, el conocimiento e implementación de los procedimientos adecuados

para su uso y manipulación son imprescindibles en la utilización segura de las mismas.


Por esta razón, la contención de esta sustancia es una de las preocupaciones primordiales de las minas

de oro en las que se utiliza el cianuro como agente para la lixiviación.

En general, se han dado pasos específicos para limitar aún más las concentraciones de cianuro, y por

ende reducir al máximo la exposición de los trabajadores a este compuesto y la posibilidad de derrames

accidentales al ambiente.

Las soluciones que contienen cianuro o su derivado cianuro de sodio se manejan en áreas restringidas

de los emplazamientos mineros. En la mayoría de las plantas mineras las soluciones que contienen

cianuro son bombeadas a un sistema de tratamiento para su tratamiento posterior.

Ambiente acuático

Una de las reacciones más importantes que afectan a la concentración de cianuro libre es la

volatilización de HCN, que al igual que la mayoría de los gases, se separa del agua y dispersa al aire. El

cianuro libre no es persistente en la mayoría de las aguas superficiales porque el pH de dichas aguas

generalmente es de 8, de modo que el HCN se volatiliza y dispersa. La volatilidad del cianuro de

hidrógeno y su posterior transformación en compuestos en el aire son importantes porque actúan como

un mecanismo natural que controla las concentraciones de cianuro libre en los efluentes residuales y de

los procesos en las minas.

El principal mecanismo de degradación natural es la volatilización con posteriores transformaciones

atmosféricas a sustancias químicas menos tóxicas. Otros factores como oxidación biológica,

precipitación y efectos de la luz solar también contribuyen a la degradación del cianuro. Las especies de

cianuro pueden ser adsorbidas sobre las superficies de los minerales o del desecho de carbono orgánico

en los suelos del terraplén de una laguna de lixiviación, en un recubrimiento de arcilla o a lo largo de una

vía de agua subterránea. En los suelos, las bacterias asimilan el cianuro mediante diversas reacciones

aeróbicas y anaeróbicas. En algunos casos, la combinación de estos procesos de degradación natural es

suficiente para satisfacer los requisitos que reglamentan la descarga de soluciones que contienen

cianuro de acuerdo al tiempo que requiere estos procesos.

Por otra parte, los procesos de oxidación química para el tratamiento del cianuro incluyen el proceso

con SO2/Aire (desarrollado por la compañía minera canadiense INCO) y el proceso de tratamiento con

H2O2 (peróxido de hidrógeno) (iniciado por Degussa).

Ambos métodos de oxidación química son capaces de producir concentraciones residuales de cianuro.

Estos exigen la realización de pruebas en muestras representativas de materiales específicos al sitio

antes de la radicación del emprendimiento.


La biodegradación del cianuro es la base de los sistemas de tratamiento de los efluentes residuales

industriales. Las condiciones aeróbicas son mucho más favorables para la degradación del cianuro que

las condiciones anaeróbicas.

Impacto

Las evaluaciones completas del riesgo exigen especificaciones detalladas de las condiciones inherentes

al sitio en relación a condiciones abióticas y bióticas de la región. En el caso del cianuro, su uso varía

tanto que el riesgo puede ser evaluado significativamente sólo si se consideran los procedimientos

operativos inherentes a un sitio en particular. No obstante, es posible describir los peligros que

representan el cianuro y las posibles exposiciones.

Mineria en Argentina

En el 2011, la Argentina era el país ubicado en el 6° lugar del mundo por su potencial minero debido a la

existencia de depósitos de oro, plata, cobre, plomo, estaño, zinc, molibdeno, cobalto, uranio, potasio,

litio, níquel y diversos minerales poco conocidos pero que son muy valiosos y muy utilizados en

diferentes industrias.

El 75 % por ciento de las regiones mineras de Argentina estaban aún inexploradas.

El 95 % de la minería a cielo abierto es llevado a cabo por empresas extranjeras, y la mayoría de los

minerales y metales obtenidos se exportan.

La mayoría de los emprendimientos se ubican en la región cordillerana. En dicha zona esos minerales no

se encuentran en condiciones de ser extraídos mediante la construcción de galerías o socavones por lo

cual esas explotaciones deben ser realizadas “a cielo abierto”.

Por otro lado, para obtener los metales se utiliza la lixiviación con cianuro, el cual se considera uno de

los métodos extractivos más rechazados entre las comunidades cercanas a la actividad.

Reglamentación y Normativa

Debido a la potencial toxicidad del cianuro, la aplicación del proceso de cianuración del oro es prohibido

en varios países:

• Alemania, en todo el territorio, desde 2002.

• Argentina, Provincias de Chubut (2003), Río Negro (2005), Tucumán, La Rioja y Mendoza (2007).

• Australia, Nueva Gales del Sur, desde 2000.

• Costa Rica, en todo el territorio, desde 2010.

• Ecuador, Ciudad Cotacachi, desde 2000.


• Estados Unidos, estado de Montana (plebiscito en 1998, ratificado en 2004) y condados de Gunnison

(2001), Costilla (2002) y Summit (2004) del estado de Colorado.

• Filipinas, provincia de Mindoro, 25 años de moratoria, en 2002.

• República Checa, en todo el territorio, desde 2000.

• Turquía, en todo el territorio, desde1997.

A la vez, existen numerosos emprendimientos en el mundo paralizados por la oposición de las

poblaciones. Los más conocidos se encuentran en Perú, Argentina, Chile, México, Ecuador, Honduras y

Rumania.

En la República Argentina la Constitución Nacional determina que la explotación de los recursos

naturales corresponde a las provincias. En este contexto, cada provincia (y municipio) tiene la

autonomía para reglamentar la actividad de las industrias mineras.

Chubut. La Ley Nº 5001 prohíbe el uso del cianuro en minería.

1. Epuyén. Ordenanza 519/02 de Prohibición de la utilización del procedimiento de lixiviación

con sustancias peligrosas en las actividades mineras.

2. Esquel. La Ordenanza 3/2003 prohíbe el uso en actividades mineras del procedimiento de

lixiviación con sustancias peligrosas.

Córdoba. La Ley Nº 9526 del 24/09/2008 prohíbe el uso del cianuro en minería.

La Pampa. La Ley Nº 2349 del 16/08/2007)

La Rioja. La prohibición del uso de cianuro en procesos mineros establecida por la Ley Nº 8137 del

08/03/2007 fue derogada por la gestión del gobernador Beder Herrara por el artículo 7 de la Ley

Nº 8355 del 26/09/2008.

Mendoza. La Ley Nº 7722 del 20/06/2007 prohíbe el uso del cianuro en minería.

Río Negro. La gestión del gobernador Miguel Saiz sancionó la Ley Nº 3981 de prohibición del uso de

cianuro en minería, que fue derogada por la Ley Nº 4738 de la gestión del gobernador Weretilnek

(véase Minería en la provincia de Río Negro).

1. El Bolsón. Ordenanza 222/2002 de Prohibición de la utilización del procedimiento de

lixiviación con sustancias peligrosas en las actividades mineras.

2. Maquinchao. Prohibición de la lixiviación con sustancias peligrosas por ordenanza.

3. Ramos Mexía. Prohibición de la lixiviación con sustancias peligrosas por ordenanza.

4. San Carlos de Bariloche. Ordenanza 1512-CM-2005 de prohibición de la minería metalífera.

5. Sierra Colorada. Prohibición de la lixiviación con sustancias peligrosas por Ordenanza

046/2004.

San Luis. La Ley Nº 634 del 1/10/2008 prohíbe el uso del cianuro en minería.

Tucumán. La Ley Nº 7879 del 20/04/2007 prohíbe el uso del cianuro en minería.

http://www.hcdesquel.com.ar/index.php?option=com_content&view=article&id=348:3303-municipio-no-toxico&catid=49:salud&Itemid=71

http://cyt-ar.com.ar/cyt-ar/index.php/Miner%C3%ADa_en_la_provincia_de_R%C3%ADo_Negro

http://www.digestobariloche.gov.ar/ordenanzas/2005/O-05-1512.DOC


2 FUNDAMENTACION DEL ESTUDIO

En septiembre de 2015 se produjo un incidente en Veladero por la descarga al ambiente de una

solución de cianuro de la laguna de lixiviación.

A pesar de que existe un cúmulo considerable de información técnica para quienes producen,

transportan y utilizan el cianuro, hasta el momento no se ha brindado información que sea fácilmente

comprensible para un público menos técnico.

Aunque generalmente se piensa que el cianuro es una sustancia mortal es una sustancia química

ampliamente utilizada, esencial para el mundo moderno. La clave para su uso seguro es la

implementación de sólidas prácticas de manejo.

El manejo de los riesgos asociados al uso del cianuro implica una ingeniería sólida, un monitoreo

cuidadoso y buenas prácticas de manejo con el fin de evitar y mitigar los posibles escapes de cianuro al

ambiente. Comunicar la información sobre los riesgos del cianuro a los empleados y al público es

esencial para lograr sólidas prácticas de manejo.

El destino ambiental del cianuro ha sido bien estudiado. El cianuro está altamente normado y el manejo

de riesgo que implica está bien documentado. La comunicación de los riesgos brinda información sobre

el cianuro tanto dentro de la planta operativa como externamente al público. La comunicación de la

información al personal interno es el primer paso en la comunicación de la naturaleza y el alcance del

riesgo para el público en general. También se deben coordinar con las autoridades apropiadas

programas efectivos de comunicación y planificación para casos de emergencia

En caso de accidente, debe obligarse a las empresas, a facilitar a las autoridades competentes toda la

información pertinente para atenuar los daños reales o potenciales al ambiente.

Antecedentes de estudios

La empresa Barrick Gold en la mina Veladero realiza monitoreos anuales de diferentes aspectos

vinculados a la actividad minera, en ellos se incluyen estudios sobre algunas comunidades biológicas

acuáticas. Los puntos de muestreo están establecidos como así también la frecuencia.

Estos estudios se han sucedido desde 2003 previo a la explotación efectiva de la mina, generalmente en

primavera y otoño.


3 OBJETIVO DEL PRESENTE ESTUDIO

El objetivo de este estudio limnológico es la evaluación de los cuerpos de agua en el área de influencia

de la Mina Veladero provincia de San Juan Argentina posterior al incidente ambiental ocurrido en

septiembre de 2015 con solución de cianuro en los ríos Potrillos-Las Taguas-La Palca y su comparación

con observaciones realizadas en muestreos anteriores.

4 ÁREA DE ESTUDIO

La mina Veladero se ubica en provincia de San Juan, Argentina en la cercanía del límite con la

República de Chile en alturas cercanas a los 4000 msnm en la ecorregión denominada Altos Andes. Los

ambientes acuáticos que se encuentran en esta zona son principalmente lóticos de primer orden y/o

primeros órdenes. Estos no presentan vegetación riparia salvo en zonas donde se ubican las vegas las

cuales están caracterizadas por “pasto andino” (principalmente gramíneas). Se encuentra

representado por especies del genero Deyeuxia sp, Festuca sp y Puccinelia sp., además es de destacar

la presencia de Oxichlöe, entre otras. En las zonas de estudio más alejadas de la mina ocurren algunos

manchones de juncos (especies de la familia Juncaceae) en la zona riparia. Durante gran parte del año

estos ambientes pueden estar completamente cubiertos por hielo y nieve, como se observó durante el

muestreo. El aporte principal de agua de estos sistemas es a partir del deshielo que comienza a

producirse en primavera con el aumento de las temperaturas.

El área de estudio fue dividida en cuatro sectores según solicitud definida por UNOPS, las cuales

correspondían a potenciales diferentes áreas de impacto debido al incidente con solución de cianuro.

La zona 0 corresponde al área directamente afectada por la descarga y se encuentra allí el río

Potrerillos, sobre éste se ubicaron tres puntos de muestreo (PL1, PL2 y PL3) (Figura 1, Tabla 1).

La zona 1 se halla en el río Las Taguas y la desembocadura del río Potrerillos sobre el anterior citado.

En esta área se identificaron dos puntos de muestreo, el primero en el río Las Taguas previo a la

desembocadura del río Potrerillos (PL4), y el segundo se situó inmediatamente aguas debajo de la

desembocadura del río directamente afectado por la solución de cianuro (río Potrerillos) (PL5).

La zona 2 representó el área luego de que otros ambientes lóticos hicieran sus descargas sobre el río

Las Taguas, y además se halla luego de un recorrido mayor del río para poder identificar las

modificaciones en el espacio y tiempo de los efectos que potencialmente podría haber afectado el

incidente. Por tal motivo se ubicaron dos puntos de muestreo, el primero se ubicó sobre el río Las

Taguas aguas abajo de la descarga del río Turbio (PL6). Además y siguiendo el recorrido del río Las

Taguas, se ubicó el punto de muestreo PL7 luego de la descarga del arroyo Amarillo y en una zona en

donde se ubican algunos ambientes lénticos pequeños. La zona 2 se separó en 2A (PL6 y PL7) y 2B


(PL8). El PL8 está ubicado aproximadamente a 100 kilómetros aguas abajo, sobre el río La Palca previo

a su unión con el río Blanco.

La zona 3, representado por el PL9, corresponde al río Blanco en las cercanías del poblado Chinguillo

(Figura 1, Tabla1).

Figura 1: Area de estudio indicando aproximadamente las ubicaciones de los puntos de muestreos con los

principales ambientes acuáticos considerados.


Tabla 1: Identificación de las zonas, ambientes acuáticos, nomenclatura de los puntos de muestreos en el actual estudio y en los monitoreos anteriores, coordenadas geográficas y comunidades muestreadas. (PLB: parámetros limnológicos básicos (temperatura, pH, conductividad, oxígeno disuelto); FP: fitoplancton; ZP: zooplancton; FB: fitobentos; MI: macroinvertebrados bentónicos)

Zona Ambiente acuático

Punto de muestreo

Monitoreo anterior

Coordenadas geográficas

Muestras tomadas

Zona 0 Río Potrerillos PL1 ----- 29°23’02,75’’S;

69°56’05,30’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

PL2 ----- 29°22’46,20’’S;

69°56’02,81’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

PL3 QP-4 29°22’32,33’’S;

69°55’57,08’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

Zona 1 Río Las Taguas PL4 RT-6 29°23’17,84’’S;

69°54’58,89’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

PL5 ----- 29°22’08,10’’S;

69°55’43,77’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

Zona 2 PL6 ----- 29°21’24,24’’S;

69°54’35,40’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

PL7 LT-8 29° 18’ 09.46’’S

69° 51’ 51.38’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

Río La Palca PL8 PL-1 29°33’29,16’’S;

69°11’39,18’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

Zona 3 Río Blanco PL9 ----- 29°43’20,40’’S;

69°09’19,64’’O

PLB, FP, ZP, FB MI

5 MATERIAL Y MÉTODOS

5.1 Estrategia de muestreo

En todos los sitios de muestreo (Tabla 1) se obtuvieron parámetros físico-químicos “in situ” y muestras

subsuperficiales de agua para análisis de fitoplancton, zooplancton. Además, se muestreo fitobentos y

macroinvertebrados. En cada uno se muestrearon tres veces buscando representar la diversidad de

condiciones de cada punto a evaluar. Las muestras fueron cuantitativas y cualitativas permitiendo

aplicar índices ecológicos.


5.2 Factores físico-químicos

5.2.1 Temperatura del agua

La temperatura fue medida con un sensor digital en cada punto de muestreo establecido sobre los ríos

muestreados en la cercanía de la mina Veladero (Tabla 1).

5.2.2 Sales disueltas y pH

La concentración de sales disueltas, medidas a partir de la resistencia al paso de una corriente eléctrica, se

realizó en cada punto de muestreo con un conductímetro Hanna a una profundidad sub – superficial (Tabla 1).

La concentración de H+ considerados en la medición de pH fue realizado en cada punto durante el muestreo a

través de un pHmetro portátil digital (Tabla 1).

5.2.3 Oxígeno disuelto

La cantidad de oxígeno molecular presente en el agua fue determinada a partir de un sensor de

membrana. Este fue previamente calibrado debido a la altura y concentración salina existente en cada

sitio de muestreo. El sensor utilizado fue HANNAH.

5.3 Comunidades Biológicas

5.3.1 Plancton

5.3.1.1. Fitoplancton

Las muestras de fitoplancton se extrajeron de la zona subsuperficial de la columna de agua con botella de

250 ml y se fijaron “in situ” con solución ácida de lugol al 1%. Las muestras cualitativas se concentraron

con red de 25 μm de abertura de malla, y se fijaron con formol al 4%.

La cuantificación de las algas se efectuó con microscopio invertido Nikon Eclipse TS100 previa

sedimentación de un volumen conocido de la muestra en cámaras desmontables, siguiendo la

metodología detallada por Utermöhl (1958). Transcurridas las 24 hs de la sedimentación se realizaron los

conteos de los organismos a un aumento de 400x hasta alcanzar al menos 100 individuos de la especie

más abundante en la medida de lo posible y hasta que no aparecieran nuevas especies en la muestra. Los

organismos se contaron en la forma en que se presentaron en la naturaleza (células aisladas, cenobios,

colonias o filamentos), expresándose su densidad en individuos por mililitro (ind./mL). Las muestras

cualitativas se observaron con microscopio óptico binocular a un aumento de 400x y 1000x para la

identificación de las especies se siguieron claves y bibliografía específica de cada grupo taxonómico.

Las determinaciones taxonómicas del fitoplancton se realizaron siguiendo claves y bibliografía específica

de cada grupo algal como Biggs & Kilroy (2000), Bourrelly (1968), Komárek & Fott (1983), Komarek &

Anagnostidis (1999), Komárek & Anagnostidis (2005), Komárek (2013), Krammer & Lange-Bertalot (1986,

1988, 1991, 1991a), Tell & Conforti (1986), Zalocar Domitrovic & Maidana (1997).


5.3.1.2 Zooplancton

En cada estación de muestreo se obtuvieron muestras cuantitativas de zooplancton, filtrando un

volumen entre 30 y 100 L, de acuerdo a la condición del ambiente, con una red concentradora cónica

provista de una malla monofilamento de 55 μm de apertura y un recipiente colector tubular de acrílico.

Simultáneamente se tomaron en cada estación muestras cualitativas de volumen no establecido pero

muy superior al de las muestras cuantitativas, realizando las maniobras de colecta en la zona sub-

superficial mediante arrastres horizontales de la red mencionada anteriormente.

Las muestras, tanto cuantitativas como cualitativas, fueron fijadas “in situ” con una solución acuosa de

formalina al 10%. Todas las muestras fueron teñidas con eritrosina a fin de facilitar la visualización de los

organismos en el análisis microscópico.

El análisis de las muestras fue realizado en laboratorio con microscopio binocular utilizando cámaras

tipo Sedgwik-Rafter de 1 ml de capacidad para el recuento del microzooplancton (Rotíferos, larva

nauplios de copépodos), y otra tipo Bogorov de 5 ml de capacidad para el recuento del

macrozooplancton (Cladóceros y Copépodos, incluyendo larva copepoditos y adultos).

Las determinaciones taxonómicas se realizaron mediante el empleo de claves dilemáticas de varios

autores hasta el mayor nivel de definición taxonómica posible (Ruttner Kolisko 1974; Voigt 1978; Koste y

Shiel 1989; José de Paggi 1990; Paggi 1995; Modenutti et al. 1998).

En el caso de algunos rotíferos Monogononta, debido al escaso número de ejemplares que se

encontraron y/o su estado de contracción no fue posible hacer determinaciones a nivel de especie. Los

rotíferos de cuerpo blando y deformable precisan de un número más alto de individuos para las

disecciones (trophi) y observaciones de caracteres externos diagnósticos.

Los copépodos se registraron como estadios larvales (nauplios y copepoditos), por lo cual se realizó una

determinación taxonómica solo a nivel inferior de orden.

5.3.2 Ensambles bentónicos

5.3.2.1 Fitobentos

Las muestras cuantitativas de fitobentos se colectaron con un corer de 26,42 cm2 de superficie y se fijaron

con formol al 4%. Las muestras cualitativas se obtuvieron con corer realizando un pool de las distintas

formas del sedimento encontradas y se fijaron con formol al 4%.

Para la cuantificación de las algas se colocó una alícuota de muestra previamente homogeneizada en una

cámara de recuento de Sedgwick-Rafter (Gómez et al., 2009). El conteo se efectuó con microscopio óptico

a 400X. Los organismos se contaron en la forma en que se presentaron en la naturaleza (células aisladas,

cenobios, colonias o filamentos), expresándose su densidad en individuos por cm2 (ind./cm2). Las

muestras cualitativas se observaron con microscopio óptico binocular a un aumento de 400x y 1000x para

la identificación de las especies siguiendo claves y bibliografía específica de cada grupo taxonómico. Las


determinaciones taxonómicas del fitobentos se realizaron siguiendo la bibliografía señalada

anteriormente para el fitoplancton y publicaciones específicas de distintos autores.

5.3.2.1.1 Análisis particular de Diatomeas del Fitobentos

Para una identificación adecuada de las diatomeas es necesario eliminar todo el contenido de materia

orgánica celular o extracelular de la muestra exponiéndola a agentes oxidantes fuertes. Para limpiar los

frústulos de diatomeas se utilizó como oxidante peróxido de hidrógeno (H2O2) 100 volúmenes al 30%,

posteriormente las muestras fueron colocadas en estufa a 60°C durante 12 hs. Finalizada la oxidación de

la materia orgánica, las muestras fueron lavadas por centrifugación para eliminar los restos del agente

oxidante. Finalmente se realizaron preparaciones fijas para lo cual el material tratado fue montado en un

portaobjetos utilizando una resina sintética con índice de refracción superior a 1.6 (Naphrax®). Los

preparados fijos fueron observados en un microscopio LeicaDM2500 con contraste de fases, y una

magnificación de 1000X, contándose un total de 400 valvas en cada muestra con el fin de determinar la

abundancia relativa de cada taxón.

La identificación de las especies de diatomeas se realizó de acuerdo a los siguientes autores: Krammer y

Lange-Bertalot (1986, 1988, 1991a, b) Lange-Bertalot (2000) y Patrick y Reimer (1966, 1975).

A partir de las abundancias relativas de las especies se calculó el porcentaje de diatomeas móviles que es

un índice de sedimentación (“siltation index”, Bahls et al., 1992), expresado como la sumatoria de la

abundancia relativa de Navicula + Nitzschia + Surirella. Estos géneros son capaces de abrirse camino hacia

la superficie si son cubiertos por limos; es por ello que su abundancia se considera como un indicador de

la frecuencia y magnitud de la sedimentación (Barbour et al., 1999).

5.3.2.2 Macroinvertebrados bentónicos

La obtención de macroinvertebrados betónicos se realizó en cada punto de muestreo con red Surber,

con una abertura de malla de 200 m para análisis cuali-cuantitativo de macroinvertebrados

bentónicos, y además con red D se recolectó una muestra integrada para análisis cualitativo.

Las muestras fueron fijadas en campo con formol al 4%. En el laboratorio fueron teñidas con eritrosina

para favorecer la observación durante la extracción de los invertebrados del sedimento que fue

realizada en su totalidad bajo lupa a 4-10x.

Los invertebrados fueron luego conservados en alcohol al 70% y analizados cuali y cuantitativamente

bajo microscopio estereoscópico u óptico según el taxón a identificar. De toda el área de estudio se

analizaron un total de 36 muestras.

Para la identificación taxonómica se utilizaron las claves de Rossi y Claps (1991), Brinkhurst y Marchese

(1992), Merrit y Cummins (1984), Lopretto y Tell (1995), Dominguez y Fernandez (2009), Trivinho-

Strixino (2011).


5.4 Análisis de datos

Los datos de las variables abióticas y bióticas (físicos, químicos y biológicos) fueron comparados entre cada

punto de muestreo, y entre los sitios localizados en cada zona definida previamente mediante el test no

paramétrico de Kruskal Wallis con post test de comparación de a pares de Man-Whitney (Zar, 1996).

Análisis de datos de Fitoplancton y fitobentos

Tanto para el fitoplancton como para el fitobentos, se estimó la densidad total de individuos, riqueza de

taxa, diversidad específica con el índice de Shannon-Wiener, equitatividad y la tasa de recambio de

especies con el índice de diversidad Beta de Whittaker. Para el fitoplancton la densidad se expresó en

ind./mL y para el fitobentos en ind./cm2.

Además, se realizó un análisis de Cluster para el fitoplancton y otro para el fitobentos, calculando la matriz

de distancia entre taxa a partir del coeficiente de similitud de Gower a fin de obtener el agrupamiento de

estaciones de muestreo en función de la densidad de especies. Asimismo se realizó un análisis de Cluster

particular con la densidad de especies de diatomeas utilizando el coeficiente de Bray-Curtis. Estos análisis

fueron realizados con el programa Past Versión 3.

Análisis de datos del zooplancton

Para la confección de las matrices de zooplancton, la abundancia absoluta se expresó en individuos por

litro (ind./l). Además se calculó la riqueza de especies por sitio de muestreo y se identificaron especies

planctónicas, bentónicas e indicadoras ambientales.

Para cada sitio de muestreo, se realizaron estimaciones de la densidad, expresadas como individuos por

litro (ind/L), y de densidad relativa. Del mismo modo, para cada sitio de muestreo se calculó la riqueza

(diversidad alfa) expresada como número de especies y la diversidad específica como bits por individuos

calculada mediante el índice de diversidad específica de Shannon-Wiener. También se calculó la tasa de

recambio entre los sitios a través del índice de Whittaker (diversidad Beta). Para estas estimaciones se

utilizó el programa Past 3 (Hammer et al., 2001).

Análisis de datos de Macroinvertebrados bentónicos

Las muestras de macroinvertebrados se calcularon densidad (ind.m-2), densidad relativa, riqueza

taxonómica, índice de diversidad de Shannon-Wiener y equitatividad.


Análisis limnológico comparativo de variables biológicas en campañas previas realizadas por la empresa Barrick Gold

El informe evalúa además de manera comparativa y cualitativa las variables biológicas de los monitoreos realizados en las

campañas realizadas a pedido de la empresa desde los años 2005 a 2014.

En relación a los muestreos existen diferencias en las artes de captura entre los utilizados durante los monitoreos previos y

el trabajo actual solicitado al INALI. Estas se deben principalmente a la abertura de malla de los muestreadores. Por otra

parte, la metodología de observación en laboratorio presenta ciertas disimilitudes.

En los monitoreso previos solicitados por la empresa se utilizó la siguiente metodología:

Fitoplancton:

Muestras cuantitativas: frascos de 100 ml fijados en lugol

Muestras cualitativas: red de 80 µm de abertura de malla fijados en formol

Zooplancton:

Muestras cuantitativas: filtrado de 30 l en red de 80 µm de abertura de malla fijados en alcohol (reconocen que el

zooplancton más pequeño no podría muestrearse)

Muestras cualitativas: no indica

Fitobentos

Muestras cuantitativas: corer sin indicar el tamaño del mismo y fijados en alcohol

Muestras cualitativas: raspado de piedras

Macroinvertebrados

Muestras cuantitativas: con red surber no se indica la abertura de malla, cinco muestras integradas de 100 ml fijados en

alcohol

Muestras cualitativas: no indica

En laboratorio

Fitoplancton: recuentos en cámara de Neubauer bajo microscopio óptico convencional

Fitobentos: recuentos en cámara de Neubauer bajo microscopio óptico convencional

Zooplancton: tres submuestras obtenidas del submuestreador de Russell y recuentos en cámara de Bogorov de 5 ml bajo

microscopio estereoscópico con luz diascópica

Macroinvertebrados: filtrado con un tamiz de 200 µm

Muestreo realizado por el Instituto Nacional de Limnología

La metodología realizada es consitente con las sugerencias observadas en Lopretto &Tell (1995), Barbour et al. (1999); EEA

Technical report (2011), Anderson & Davis (2013), NYSDEC SOP 208-14 (2014).

Fitoplancton

Muestras cuantitativas: zona subsuperficial de la columna de agua con botella de 250 ml y se fijaron “in situ” con solución

ácida de lugol al 1%. El mayor volumen permite asegurar un conteo más efectivo. Muestras mas grandes o numero mayor de

replicas permite un conteo seguro.


Muestras cualitativas: se concentraron con red de 25 μm de abertura de malla, y se fijaron con formol al 4%. La trama de la

red seleccionada permite la captura de algas desde ese tamaño.

Observación: en laboratorio se realizan los conteos con microscopio binocular invertido, previa sedimentación de un

volumen conocido de la muestra en cámaras desmontables (Utermöhl, 1958). Transcurridas 24 h se cuentan los organismos

en la forma en que se presentaron en la naturaleza (células aisladas, cenobios, colonias o filamentos), expresándose su

densidad en individuos por mililitro (ind./ml), correspondientes a los taxa encontrados, grupos taxonómicos y fitoplancton

total. Las muestras cualitativas se observan con microscopio óptico binocular a un aumento de 400x y 1000x para la

identificación de las especies, siguiendo claves y bibliografía específica de cada grupo taxonómico.

Las determinaciones taxonómicas del fitoplancton se realizaron siguiendo claves y bibliografía específica de cada grupo algal

como Biggs & Kilroy (2000), Bourrelly (1968), Komárek & Fott (1983), Komarek & Anagnostidis (1999), Komárek &

Anagnostidis (2005), Komárek (2013), Krammer & Lange-Bertalot (1986, 1988, 1991, 1991a), Tell & Conforti (1986), Zalocar

Domitrovic & Maidana (1997).

Zooplancton

Muestras cuantitativas: filtrado de un volumen entre 30 y 100 L con una red concentradora cónica provista de una malla

monofilamento de 55 μm de apertura y un recipiente colector tubular de acrílico (30 L correspondieron a los lugares

cubiertos por hielo, en ellos no se pudieron obtener mas volumen de muestra sin afectar otras comunidades).

Muestras cualitativas: volumen no establecido pero muy superior al de las muestras cuantitativas, realizando las maniobras

de colecta en la zona sub-superficial mediante arrastres horizontales de la red mencionada anteriormente.

Las muestras, tanto cuantitativas como cualitativas, fueron fijadas “in situ” con una solución acuosa de formalina al 10%.

Todas las muestras fueron teñidas con eritrosina a fin de facilitar la visualización de los organismos en el análisis

microscópico.

Observación: las muestras cuantitativas son observadas bajo microscopios estereoscópico y convencional (los aumentos

utilizados corresponden entre 40 X y 400X). La identificación de los organismos y la estimación de la abundancia se deben

efectuar en cámaras de recuento sobre alícuotas extraídas de la muestra concentrada, previamente homogeneizada por

agitación. Las cámaras utilizadas deben ser de 1 cc (tipo Sedgwick-Rafter o Kolkwicz) para el “microzooplancton” y de 5 cc

(tipo Bogorov) para el ”macrozooplancton”, con los protocolos establecidos para disminuir el error de recuento (José de

Paggi y Paggi, 1995).

En algunos casos, debido al bajo número de individuos (copépodos adultos, rotíferos de cuerpo blando), las determinaciones

a nivel específico resultan poco factibles con el material proveniente de las muestras cuantitativas por lo cual es observable

a partir de muestras cualitativas como un medio para salvar este obstáculo.

Los valores de abundancia se expresan como individuos por litro.

Las determinaciones taxonómicas se realizaron mediante el empleo de claves dilemáticas de varios autores hasta el mayor

nivel de definición taxonómica posible (Ruttner Kolisko 1974; Voigt 1978; Koste y Shiel 1989; José de Paggi 1990; Paggi 1995;

Modenutti et al. 1998).

En el caso de algunos rotíferos Monogononta, debido al escaso número de ejemplares que se encontraron y/o su estado de

contracción no fue posible hacer determinaciones a nivel de especie. Los rotíferos de cuerpo blando y deformable precisan

de un número más alto de individuos para las disecciones (trophi) y observaciones de caracteres externos diagnósticos.

Los copépodos se registraron como estadios larvales (nauplios y copepoditos), por lo cual se realizó una determinación

taxonómica solo a nivel inferior de orden.

Ensambles bentónicos


Fitobentos

Muestras cuantitativas: se realizaron con un corer de 26,42 cm2 de superficie y se fijaron con formol al 4%.

Muestras cualitativas: se obtuvieron con corer realizando un pool de las distintas formas del sedimento encontradas y se

fijaron con formol al 4%.

Observación: laas muestras cualitativas se observaron con microscopio óptico binocular a un aumento de 400x y 1000x para

la identificación de las especies siguiendo claves y bibliografía específica de cada grupo taxonómico. Las determinaciones

taxonómicas del fitobentos se realizaron siguiendo la bibliografía señalada anteriormente para el fitoplancton y

publicaciones específicas de distintos autores.

Para la cuantificación de las algas se colocó una alícuota de muestra previamente homogeneizada en una cámara de

recuento de Sedgwick-Rafter (Gómez et al., 2009). El conteo se efectuó con microscopio óptico a 400X. Los organismos se

contaron en la forma en que se presentaron en la naturaleza (células aisladas, cenobios, colonias o filamentos),

expresándose su densidad en individuos por cm2 (ind./cm2).

Para las diatomeas se realiza un trabajo específico que ha sido explicado en extenso en el informe.

Macroinvertebrados bentónicos

Muestra cuantitativa: se realizó en cada punto de muestreo con red Surber, con una abertura de malla de 200 m

Muestra cualitativa: se realizó con red D de abertura de malla de 200 m.

Las muestras fueron fijadas en campo con formol al 4%.

Observación: en el laboratorio fueron teñidas con eritrosina para favorecer la observación durante la extracción de los

invertebrados del sedimento que fue realizada en su totalidad bajo lupa entre 40x y 100x. Los invertebrados fueron luego

conservados en alcohol al 70%. Las muestras fueron analizados cuali y cuantitativamente bajo microscopio estereoscópico u

óptico según el taxón a identificar.

Para la identificación taxonómica se utilizaron las claves de Rossi y Claps (1991), Brinkhurst y Marchese (1992), Merrit y

Cummins (1984), Lopretto y Tell (1995), Dominguez y Fernandez (2009), Trivinho-Strixino (2011).

6 RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Como se mencionó anteriormente, el muestreo se realizó durante los días 5 al 11 de octubre de 2015,

al inicio de la estación primavera. Esto es importante destacar debido a que en todos los puntos

excepto PL8 y PL9 (ríos Las Palcas y Blanco) tuvieron, en sus márgenes o en su totalidad, durante el

muestreo una capa de hielo, siendo más significativos los puntos PL3 y PL7 (Figura 2). Esta condición

es significativa debido a que la temperatura es un factor clave en el desarrollo de los organismos de

las diferentes comunidades acuáticas. La comparación con otros muestreos realizados en estos

ambientes en años anteriores es dificultosa debido a que esos muestreos se han realizado en meses

más alejados del invierno (primavera avanzada – verano – otoño).


Figura 2: Imágenes de las ambientes muestreados a) río Potrerillos (PL3); b) río Las Taguas inmediatamente debajo de la desembocadura del río Potrerrillos (PL5); c) río Las Taguas debajo de la desembocadura del río Turbio (PL6); d) río Las Taguas debajo de la desembocadura del río Amarillo; e) río Las Taguas en las inmediaciones del punto PL7; f) río Las Taguas; g) río Las Palcas en union con el río Blanco (aguas arriba de este se encuentra el punto PL8; i) río Blanco en el punto PL9


6.1 Factores físico-químicos

Los ambientes muestreados presentaron baja profundidad aunque fueron variables, siendo el menos

profundo el río Potrerillos con valores menores a los 30 cm en los lugares de muestreo, y el más profundo

correspondió al río La Palca que presentaba profundidades cercanas al metro en los lugares de muestreo.

La temperatura del agua osciló entre -0,9 °C y 7,8 °C, siendo los valores menores los correspondientes al

río Potrerillo y los mayores al río Blanco (Tabla 2). Esta temperatura corresponde a la que caracteriza el

inicio de primavera, y es diferente a la observada en los muestreos anteriores debido a que

correspondieron a otro momento del año (segunda quincena de noviembre, marzo, abril) (K-W: 14,8552;

p=0,0109994) (Tabla 2, Figura 3).

Los valores de pH correspondieron en general a aguas levemente alcalinas a alcalinas, siendo los valores más

altos los presentes en los ríos la Palca y Blanco, y el más bajo es el del río Las Taguas previo a la

desembocadura del río Potrerillos (Tabla 2). Estos son similares a los obtenidos en los muestreos anteriores

realizados por la Empresa Barrick Gold tanto en primavera como en verano -otoño (Figura 3).

En relación a la cantidad de sales disueltas medidas a partir de la conductividad eléctrica, los valores oscilaron

entre 1192 y 2497 µS/cm2, siendo los mayores valores los correspondientes al río Blanco y menores al río Las

Taguas posterior al río Amarillo (Tabla 2). Estos valores son similares a los observados en otros muestreos

excepto en el río Potrerillo durante el muestreo de primavera del 2008 (Figura 3).

Los valores de concentración de oxígeno estuvieron en todos los casos muy por encima del valor de

saturación (Tabla 2).

Tabla 2: Parámetros físico-químicos básicos limnológicos muestreados en los ríos cercanos a la Mina Veladero.

Zona Ambiente

acuático

Punto de

muestreo

Temperatura

°C pH

Conductividad

µS/cm2

Oxígeno disuelto

mg/L

Zona 0 Río Potrerillos PL1 -0,7 8,3 1710 13,4

PL2 -0,6 8,4 1780 15,4

PL3 -0,9 8,2 1805 16,7

Zona 1 Río Las Taguas PL4 4,6 8,6 1770 14,5

PL5 1,2 7,7 1671 12,4

Zona 2 PL6 4,4 8,2 1554 14,5

PL7 2,6 7,8 1192 18,3

Zona 3

Río La Palca PL8 6,1 8,8 1387 12,7

Río Blanco PL9 7,8 8,8 2497 15,4


Figura 3: Valores de temperatura, pH y conductividad realizados en los puntos nombrados RT6, QP4, LT8, LP1 en los monitoreos anteriores y corresponden a los puntos muestreados actuales PL3, PL4, PL7 y PL8.


6.2 Comunidades biológicas

6.2.1 Plancton

6.2.1.1 Fitoplancton

La densidad promedio del fitoplancton fue variable en los distintos sitios muestreados (Figura 4, Tabla 3).

En el punto de muestreo PL7 se encontraron los mayores valores de densidad (24459 ind./mL) seguidos

por el sitio PL1 con valores de un orden de magnitud menores (5930 ind./mL). En las lugares PL2, PL3 y

PL8 se registraron las menores abundancias (76 a 234 ind./mL).

Figura 4. Densidad promedio (ind./mL) del fitoplancton registrada en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar.


Tabla 3. Riqueza de taxa, diversidad de Shannon-Wiener (ind./bits), equitatividad y densidad promedio (x) y desvíos estándar (DS) del fitoplancton total y de los grandes grupos taxonómicos (ind./mL) registrados en cada estación de muestreo.

PL1 PL2 PL3 PL4 PL5 PL6 PL7 PL8 PL9

x DS x DS x DS x DS x DS x DS x DS x DS x DS

Riqueza 44 9 15 40 47 30 58 26 26

Shannon-Wiener

(bits/ind.) 1,89 1,97 2,45 2,54 2,60 2,88 2,78 2,91 2,37

Equitatividad 0,15 0,80 0,77 0,32 0,29 0,59 0,28 0,71 0,41

FITOPLANCTON

TOTAL 5930 7733 155 16 76 33 1366 426 473 633 460 40 24270 6049 235 118 1034 400

CYANOBACTERIA 482 390 48 29 18 12 82 63 43 59 72 54 768 570 50 17 19 27

Chroococcales 22 15 11 16 3 5 32 45 17 24 4 6 17 24 0 0 0 0

Nostocales 66 93 0 0 0 0 0 0 0 0 8 12 10 15 0 0 0 0

Oscillatoriales 394 282 37 12 14 8 51 18 26 36 59 60 740 560 50 17 19 27

CHLOROPHYTA 80 27 51 7 22 22 76 18 23 27 13 18 861 633 38 33 13 18

Volvocales 0 0 0 0 0 0 0 0 4 6 0 0 362 317 8 11 6 9

Chlorococcales 80 27 51 7 22 22 32 9 5 5 13 18 499 317 31 22 6 9

Microsporales 0 0 0 0 0 0 25 18 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Ulotrichales 0 0 0 0 0 0 19 27 14 17 0 0 0 0 0 0 0 0

ZYGNEMATOPHYCEAE 18 21 0 0 8 11 0 0 1 1 0 0 52 24 4 5 0 0

CHRYSOPHYTA 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 103 49 0 0 0 0

EUGLENOPHYTA 0 0 0 0 0 0 0 0 4 6 0 0 45 63 0 0 0 0

RODOPHYTA 0 0 0 0 0 0 0 0 4 6 1 2 0 0 0 0 0 0

BACILLARIOPHYTA 5346 7301 57 38 29 13 1208 381 396 537 370 119 21615 7481 143 63 1002 355

La riqueza de especies varió entre 9 y 58 taxa en los distintos lugares de muestreo (Figura 5). El mayor

número se registró en el punto PL7, mientras que los menores valores se observaron en los sitios PL2,

PL3, PL8 y PL9. De los taxa registrados, la mayoría perteneció a Bacillariophyta y Cyanobacteria (Tabla 4),

estos fueron los grupos más abundantes en el fitoplancton de los sitios analizados. El resto correspondió

a Chlorophyta, Zygnematophyceae, Chrysophyta, Euglenophyta y Rodophyta En la Tabla 4 se observa la

abundancia de los taxa en cada estación de muestreo y los grupos taxonómicos a los que pertenecen.


Figura 5. Riqueza de taxa del fitoplancton registrada en cada estación de muestreo.

La diversidad específica según el índice de Shannon-Wiener varió entre 1,89 y 2,91 (Figura 6). El mínimo

correspondió al punto de muestreo PL1 y se asoció a una baja equitatividad dada por la elevada densidad

de unas pocas especies.


Tabla 4: Densidades promedio de las taxas de fitoplancton

ind./mL PL1 PL2 PL3 PL4 PL5 PL6 PL7 PL8 PL9

CYANOBACTERIA

Chroococcales

Aphanocapsa holsatica (Lemm.) Cronb. & Kom. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Aphanocapsa sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Aphanothece nebulosa Skuja 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chamaesiphon sp. 0 0 0 0 4,26 0 0 0 0

Chroococcal n.i.1 0 0 0 18,9 4,26 4,21 0 0 0

Chroococcal n.i.2 4,1725 11,365 3,2943 0 0 0 0 0 0

Chroococcus minutus (Kütz.) Näg. 17,862 0 0 0 0 0 0 0 0

Gloeothese sp. 0 0 0 0 4,26 0 0 0 0

Merismopedia glauca (Ehrenberg) Kutzing 0 0 0 6,31 0 0 0 0 0

Pleurocapsa sp. 0 0 0 0 0 0 17,2 0 0

Synechococcus cf. elongatus (Nâgeli) Nâgeli 0 0 0 6,31 0 0 0 0 0

Synechocystis aquatilis Sauvageau 0 0 0 0 4,49 0 0 0 0

Woronichinia sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nostocales

Anabaena sp. 65,886 0 0 0 0 8,42 10,3 0 0

Oscillatoriales

Borzia sp. 2,7817 3,7884 0 0 0 0 0 0 0

Heteroleiblenia sp. 268,59 0 3,6731 6,31 12,8 29,5 465 19,1 0

Komvophoron sp. 0 0 3,7884 0 0 0 34,4 7,67 6,39

Leptolyngbya cf. carnea (Kutzing et Lemm.) Anag. et Kom. 0 0 0 0 0,22 0 0 0 0

Limnothrix lauterbornii (Schmidler) Anagnostidis 1,3908 0 0 0 0 0 0 0 0

Lyngbya sp. 0 0 0 12,6 0 4,21 17,2 7,58 0

Oscillatorial n.i.1 52,196 0 0 0 0 0 0 0 0

Oscillatorial n.i.2 0 0 0 0 8,53 0 0 0 0

Oscillatoria sp.1 44,069 32,85 3,6731 0 4,26 8,42 0 15,3 12,8

Oscillatoria sp.2 1,3908 0 0 0 0 0 0 0 0

Phormidion sp.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Phormidion sp.2 4,1725 0 0 18,9 0 0 0 0 0

Planktolynbya minor (Geitler) Komárek et Cronberg 0 0 0 0 0 4,21 34,4 0 0

Planktolyngbya (Lemme) Komárková-Legnerová & Cronbe 0 0 3,2943 6,31 0 0 172 0 0

Plectonema sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Pseudoanabaena catenata Lauterborn 0 0 0 6,31 0 0 17,2 0 0

Pseudoanabaena sp. 19,253 0 0 0 0 0 0 0 0

Romeria elegans (Woloszyńska) Geitler 0 0 0 0 0,22 12,6 0 0 0



CHLOROPHYCEAE

Volvocales

Carteria sp. 0 0 0 0 0 0 224 0 0

Chlamydomonas sp. 0 0 0 0 0,22 0 0 0 0

Volvocal n.i.1 0 0 0 0 4,26 0 0 3,84 6,39

Volvocal n.i.2 0 0 0 0 0 0 138 3,84 0

Chlorococcales

Chlorococcal n.i. 19,253 0 0 0 0 0 0 0 0

Chlorella sp. 19,253 36,639 22,236 18,9 0,89 8,42 68,9 7,58 0

Dictyosphaerium sp. 0 0 0 0 0 0 34,4 0 0

Ecdysichlamys sp. 2,7817 0 0 0 0 0 0 0 0

Eutetramorus sp. 0 0 0 6,31 0 0 0 0 0

Monoraphidium minutum (Näg.) Kom.-Legn. 2,7817 0 0 0 0 0 0 0 0

Oocystis solitaria Wittrock in Wittrock & Nordstedt 9,7358 13,908 0 6,31 4,26 0 68,9 23 6,39

Oocystis sp. 0 0 0 0 0 0 224 0 0

Oocystis elliptica West 26,207 0 0 0 0 0 0 0 0

Oonephris obesa (W.West) Fott 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Pediastrum cf. boryanum (Turpin) Meneghini 0 0 0 0 0 0 34,4 0 0

Scenedesmus ecornis (Ehr.) Chod. 0 0 0 0 0 4,21 0 0 0

Scenedesmus sp.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Scenedesmus sp.2 0 0 0 0 0 0 68,9 0 0

Chaetophorales

Chaetophora sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Microsporales

Microspora sp. 0 0 0 25,3 0 0 0 0 0

Ulotrichales

Ulotrix sp. 0 0 0 18,9 13,7 0 0 0 0

ZYGNEMATOPHYCEAE

Cosmarium granatum Brébisson ex Ralfs 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Closterium sp. 17,862 0 0 0 0 0 0 0 0

Mougeotia sp. 0 0 7,5769 0 0,89 0 51,7 3,84 0

CHRYSOPHYTA

Chromulina sp. 0 0 0 0 0 0 51,7 0 0

Flagelado n.i. 0 0 0 0 0,67 0 51,7 0 0

CRYPTOPHYTA

Cryptomonas sp. 4,1725 0 0 0 0 4,21 827 0 0

EUGLENOPHYTA

Euglena sp. 0 0 0 0 0,22 0 34,4 0 0

Trachelomonas sp. 0 0 0 0 4,26 0 10,3 0 0



RODOPHYTA

Chroodactylon sp. 0 0 0 0 4,26 1,26 0 0 0

XANTOPHYTA

Vaucheria sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

BACILLARIOPHYTA

Achnanthidium minutissimum (Kützing ) Czarnecki 70,277 0 3,2943 25,3 9,19 21 4081 3,84 133

Amphora coffeaeformis (Agardh) Kützing var. coffeaeformis 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Amphora veneta Kützing 17,862 0 0 12,6 13 4,21 68,9 3,84 41,7

Caloneis molaris (Grunow) Krammer 35,724 0 0 0 0 0 17,2 7,67 0

Cocconeis placentula Ehrenberg var. placentula 0 0 0 0 0 0 1825 0 0

Craticula citrus (Krasske) Reichardt 0 0 0 6,31 0 0 0 0 6,39

Craticula sp. 1,3908 0 0 0 0 0 51,7 0 0

Cyclotella sp. 32,943 0 0 6,31 0,22 0 10,3 0 6,39

Cymbella cistula (Ehrenberg) Kirchner 0 0 0 0 0 0 258 0 25,6

Cymbella helvetica Kützing 0 0 0 6,31 0 4,21 155 22,8 32

Cymbella hustedtii Krasske var. hustedtii 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Cymbella sp. 0 0 0 12,6 0 0 0 0 0

Denticula kuetzingii Grunow var. kuetzingii 1,3908 0 0 0 0 0 0 0 6,39

Denticula mesolepta (Grunow in Van Heurck) Meister 0 0 0 0 0 8,42 0 0 0

Denticula thermalis Kützing 34,334 0 0 18,9 0 0 86,1 0 0

Diatoma moniliformis Kützing 0 0 0 0 0 0 0 0 13,9

Diploneis elliptica (Kützing) Cleve 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Encyonema minutum (Hilse in Rabh.) D.G. Mann 17,862 0 0 0 0 0 0 0 0

Encyonema silesiacum (Bleisch in Rabh.) D.G. Mann 0 0 0 0 0 0 51,7 0 0

Epitemia adnata (Kützing) Brébisson 0 0 0 6,31 4,49 4,21 0 0 0

Eunotia exigua (Brebisson ex Kützing) Rabenhorst 0 0 0 0 4,49 0 0 0 0

Fragilaria capucina Desmazieres var. capucina 175,84 0 0 0 0 0 293 0 0

Fragilaria capucina Desmazieres var. vaucheriae (Kützing) Lange-Bertalot 74,231 13,908 3,7884 18,9 5,15 50,5 499 11,4 260

Fragillaria ulna (Nitzsch.) Lange-Bertalot var. acus (Kützing) Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Frustulia spicula Amosse 0 0 0 0 0 0 0 7,58 0

Frustulia vulgaris (Thwaites) De Toni 0 0 0 0 0 0 0 7,58 0

Gomphonema angustatum (Kützing) Rabenhorst 0 0 0 0 4,26 12,6 482 0 6,39

Gomphonema angustum Agardh 0 0 0 0 0 0 121 3,84 0

Gomphonema clavatum Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Gomphonema micropus Kützing var. micropus 0 0 0 0 0,22 0 68,9 0 6,39

Gomphonema minutum (Agargh) Agardh f. minutum 16,471 0 0 12,6 8,75 0 0 0 0



Gomphonema olivaceum (Hornemann) Brebisson var. olivaceum 0 0 0 0 0 0 138 7,67 126

Gomphonema parvulum (Kützing ) Kützing var. parvulum f. parvulum 0 0 0 12,6 8,53 0 0 0 0

Gomphonema pseudoaugur Lange-Bertalot 0 0 0 0 4,26 0 172 0 0

Gomphonema truncatum Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 68,9 0 0

Gyrosigma acuminatum (Kützing )Rabenhorst 0 0 0 0 0,22 0 0 0 0

Hantzschia virgata (Roper) Grunow in CLM var. virgata 0 0 0 0 0 0 0 0 6,39

Hippodonta hungarica (Grunow) Lange-Bertalot Metzeltin & Witkowski 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Luticola nivalis (Ehrenberg) D.G. Mann 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Luticola ventricosa (Kützing) D.G. Mann 0 0 0 6,31 17,3 4,21 0 0 0

Navicula arvensis Hustedt 0 0 0 0 4,26 0 0 0 0

Navicula cincta (Ehr.) Ralfs in Pritchard 0 0 0 50,5 8,97 21 0 3,84 0

Navicula cryptocephala Kützing 0 0 0 0 0 0 51,7 0 0

Navicula cryptotenella Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 138 0 0

Navicula gregaria Donkin 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula libonensis Schoeman 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula sp.1 665,81 11,365 0 0 0 0 689 0 0

Navicula sp.2 0 0 0 12,6 0 0 34,4 0 0

Navicula tenelloides Hustedt 0 0 0 0 0 0 0 3,84 6,39

Navicula tripunctata (O.F.Müller) Bory 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula veneta Kützing 0 0 0 0 0 0 0 0 6,39

Nitzschia amphibia Grunow f. amphibia 0 0 0 56,8 12,8 16,8 0 0 0

Nitzschia bergii Cleve-Euler 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia capitellata Hustedt in A. Schmidt & al. 0 0 0 0 4,49 0 310 0 0

Nitzschia constricta (Kützing) Ralfs 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia fonticola Grunow in Cleve et Müller 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia frustulum (Kützing)Grunow var.frustulum 0 0 0 25,3 8,53 0 34,4 3,84 0

Nitzschia hantzschiana Rabenhorst 3125,6 0 3,7884 25,3 0,67 4,21 1016 0 0

Nitzschia inconspicua Grunow 0 0 0 6,31 8,53 12,6 103 0 6,39

Nitzschia intermedia Hantzsch ex Cleve & Grunow 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia linearis(Agardh) W.M.Smith var.linearis 16,471 0 3,2943 25,3 8,53 0 1154 0 12,8

Nitzschia microcephala Grunow in Cleve & Moller 0 0 0 0 0 0 0 0 0



Nitzschia palea (Kützing) W.Smith 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nupela sp. 742,6 0 0 0 0 0 86,1 0 0

Pinnularia gibba Ehrenberg 0 0 0 0 4,26 0 0 0 0

Pinnularia microstauron (Ehrenberg) Cleve var. microstauron 82,357 0 3,7884 25,3 8,75 21 34,4 0 0

Pinnularia subcapitata Gregory var. subcapitata 0 0 0 0 0,45 0 0 0 0

Pinnularia viridiformis Krammer var. viridiformis 19,253 0 0 37,9 0 0 103 3,84 0

Planothidium lanceolatum (Brebisson ex Kützing) Lange-Bertalot 16,471 0 0 0 0 0 0 0 0

Planothidium rostratum (Oestrup) Lange-Bertalot 4,1725 0 0 12,6 4,71 21 121 0 6,39

Pseudostaurosira brevistriata (Grun. in Van Heurck) Williams & Round 0 27,817 3,2943 606 211 114 1412 42,2 212

Rhopalodia musculus (Kützing) O. Müller 115,3 0 3,7884 0 0 0 0 0 0

Sellaphora pupula (Kützing) Mereschkowksy 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Skeletonema sp. 16,471 0 0 0 0 0 17,2 0 0

Staurosira construens Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 0 0 6,39

Staurosirella pinnata (Ehrenberg) Williams & Round 1,3908 3,7884 0 107 25,8 16,8 1550 3,79 34,2

Surirella brebissonii Krammer & Lange-Bertalot var. brebissonii 8,345 0 0 0 0 0 0 0 0

Surirella minuta Brebisson 32,943 0 0 0 0 0 0 0 0

Surirella peisonis Pantocsek 0 0 0 0 0 12,6 0 0 0

Surirella sp. 0 0 0 0 0 0 10,3 3,79 0

Surirella turgida W.M. Smith 0 0 0 1,89 0 0 0 0 0

Tryblionella hungrica (Grunow) D.G. Mann 0 0 0 37,9 0 8,42 0 0 0

Ulnaria ulna (Nitzsch.) Compere 20,644 0 3,7884 31,6 4,26 12,6 6303 1,92 39,5

En cuanto a la densidad de los grupos taxonómicos, Bacillariophyta fue el grupo dominante en todos los

puntos de muestreo con aportes de 60 % a 97 % a la densidad total del fitoplancton. Los grupos

subdominantes fueron Chlorophyta y Cyanobacteria, y ambos se encontraron mejor representados en

PL2 y PL8 (Figura 7).


Figura 6. Diversidad específica (Shannon-Wiener, expresada como ind.bits-1) y equitatividad del fitoplancton para cada estación de muestreo.

La diversidad Beta (índice de Whittaker) indicó un valor global de reemplazo de microalgas de 2,6486.

Entre los sitios PL4, PL5 y PL6 el reemplazo fue de 43 a 45 %. En el resto de los lugares muestreados, el

reemplazo superó el 53 %, y fue máximo entre el sitio PL2 y el resto de los lugares (Tabla 5).


Figura 7. Densidad relativa de los diferentes grupos algales fitoplanctónicos para cada estación de muestreo.

La clasificación de los sitios basada en la abundancia de los taxa de fitoplancton mostró una mayor

distancia de la estación PL7 respecto del resto de los ambientes (Figura 8).

Figura 8. Agrupamiento de CLUSTER realizado a partir de las densidades de los taxa del fitoplancton en los sitios estudiados. Se aplicó el índice de Gower a los datos transformados con Box-Cox. Método de agrupamiento Groupaverage.


Tabla 5. Diversidad beta (Índice de Whittaker) del fitoplancton obtenido entre estaciones de muestreo.

Los índices marcados señalan el mayor reemplazo de taxa entre las estaciones.

6.2.1.2 Zooplancton

En la totalidad de las muestras se registró una riqueza de 30 taxones, entre los que se incluyen, además

de Rotifera, Cladocera y Copepoda (estos tres representados por 20 taxones), otros organismos de

hábitat preferentemente litoral-bentónico como Ostracoda, Nematoda, Insecta (Chironomidae),

Tardigrada y Amoebozoa (Tabla 6). Este atributo varió entre 3 (PL9) y 13 (PL5) en las estaciones

muestreadas (Figura 9).

Los rotíferos estuvieron representados por 15 taxones de los cuales el 50 % correspondió a especies

planctónicas. Entre éstas, Notholca acuminata fue la especie con mayor frecuencia de aparición (en el

78 % de los puntos de muestreo).

En el caso de los cladóceros sólo estuvieron presentes en los lugares PL1, PL5 y PL7, representados por

dos géneros de hábito litoral-bentónicos.


PL1 0 0,7 0,63 0,6 0,67 0,65 0,55 0,69 0,69

PL2 0 0,58 0,8 0,79 0,74 0,82 0,66 0,71

PL3 0 0,64 0,65 0,6 0,68 0,56 0,66

PL4 0 0,45 0,43 0,56 0,58 0,61

PL5 0 0,45 0,55 0,62 0,59

PL6 0 0,6 0,57 0,61

PL7 0 0,53 0,6

PL8 0 0,5

PL9 0


Figura 9: Riqueza promedio en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar.

Tabla 6: Lista de taxa registrados en cada estación de muestreo y densidad promedio de cada una de ellas

(ind/L). NI: no identificado.


Los copépodos estuvieron representados por los órdenes Cyclopoida y Calanoida, no pudiendo llegar a

mayores niveles de resolución taxonómica debido a que la mayoría de los individuos correspondían a

estadios inmaduros de desarrollo (Tabla 6). El cambio de estación del año, invierno a primavera, puede

estar manifestada con la aparición de los estadios larvales de este grupo, sumado al incidente ocurrido

en la mina Veladero.

La abundancia total de organismos exclusivamente zooplancónicos (rotíferos, cladóceros y copépodos)

fue muy variable entre los puntos de muestreo, oscilando entre 3,4 y 160,8 ind/L (Figura 10). El punto de

muestreo PL7 registró la máxima abundancia, mientras que los lugares PL1 (río Potrerillo) y PL5 (río Las

Taguas-bajo la desembocadura del río Potrerillo) registraron abundancias intermedias (17,58 y 14,8

ind/L, respectivamente). Por otra parte, el resto de las estaciones registraron las menores abundancias,

que variaron entre 1,9 y 6,7 ind/L (Figura 10). Entre los taxones más abundantes se encontraron

Colurella adriatica (particularmente muy abundante en PL7), los rotíferos bdelloideos (principalmente

en PL1), Notholca acuminata (especialmente en PL7), nauplios de copépodos (principalmente en PL1 y

PL7), seguidos por copépodos harpacticoideos (principalmente en PL1 y PL5) (Tabla 6).

Figura 10: Densidad total del zooplancton obtenida en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar.

Por otro lado, los nemátodos, los tardígrados y las amebas tecadas fueron abundantes en los puntos de

muestreo PL1, PL7 y PL9, respectivamente.

Los copépodos y rotíferos constituyeron los grupos de mayor importancia relativa del zooplancton

(Figura 11 y 12). A excepción de los lugares PL1, PL4 y PL6, los rotíferos constituyeron más del 50 % del

zooplancton (Figura 12). Dentro de este grupo, la presencia constante de Bdelloideos (en el 100 % de las


muestras) fue importante en casi todas los puntos de muestreo (excepto en PL3 y PL7), representando

más del 45 % del total de los rotíferos. El aumento de este porcentaje se observó en PL1

correspondiendo al punto inmediatamente debajo de la descarga de la laguna de lixiviación alcanzando

un 92 % (Figura 13). Respecto a los copépodos, estos estuvieron representados principalmente por

estadios larvales (nauplios) y juveniles (copepoditos) de Harpacticoidea.

Figura 11: Densidad de Rotifera, Cladocera y Copepoda obtenida en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar.

Figura 12: Importancia relativa de los principales grupos del zooplancton en cada estación de muestreo.

Las altas proporciones de Bdelloidea y Harpacticoidea mencionadas anteriormente, sumado a las altas

densidades de otros organismos de hábitat litoral-bentónico (C. adriática, nemátodos, tardígrados y

amebas tecadas) se observaron en los ríos Potrerillos, Las Taguas, La Palca y Blanco. Estos representaron


más del 60 % de los organismos registrados en cada una de los puntos muestreadas, por lo que las

especies estrictamente planctónicas presentaron una baja importancia relativa (Figura 14).

Figura 13: Importancia relativa de Monogononta y Bdelloidea en el total de Rotifera en cada estación de muestreo.

Figura 14: Importancia relativa de organismos de habito planctónico (P) y litoral-bentónico (LB) en cada estación de muestreo.

La diversidad (Shannon-Wiener) fue menor en el punto PL9 (0,96) y mayor en el lugar PL5 (1,9) (Figura

15). A excepción de PL7, la equitatividad fue similar en todas las estaciones, variando entre 0,75 (PL8) y

0,93 (PL6) (Figura 15).


Figura 15: Índice de diversidad de Shannon-Wiener y equitatividad en cada estación de muestreo.

Los sitios de muestreo más similares según el índice Bray-Curtis fueron PL2 y PL4; y PL1 y PL5. El resto de

los puntos de muestreo mostró baja similitud, separándose PL7 del resto de los sitios (Figura 16).

Figura 16: Dendrograma obtenido de la aplicación del índice de similitud de Bray-Curtis a los datos obtenidos en cada estación de muestreo. Método de agrupamiento UPGMA.


La diversidad Beta (índice de Whittaker) o reemplazo de taxa global incluyendo todos los ambientes fue

relativamente baja (2,906). La mayor tasa de recambio se detectó en PL5 (con respecto a los lugares PL1,

PL2, PL4, PL6, PL7, PL8 y PL9) seguida por los lugares en los ríos La Palca (PL8), Blanco (PL9) y último sitio

muestreado aguas abajo del río Las Taguas (PL7) (Tabla 7).

Tabla 7. Diversidad beta (Índice de Whittaker) obtenido entre estaciones de muestreo.


PL1 0,000 0,455 0,333 0,273 0,529 0,200 0,429 0,556 0,429

PL2 0,000 0,600 0,500 0,667 0,455 0,600 0,556 0,429

PL3 0,000 0,400 0,500 0,333 0,385 0,250 0,333

PL4 0,000 0,556 0,263 0,467 0,600 0,500

PL5 0,000 0,529 0,524 0,625 0,714

PL6 0,000 0,429 0,556 0,429

PL7 0,000 0,385 0,636

PL8 0,000 0,667

PL9 0,000

6.2.2 Ensambles bentónicos

6.2.2.1 Fitobentos

El fitobentos presentó una variabilidad muy amplia en cuanto a su densidad en los distintos sitios

muestreados (Figura 17, Tabla 8). Las abundancias en el punto de muestreo PL7 fueron superiores a los

3.000.000 ind./cm2 seguidas en abundancia por el sitio PL1 con alrededor de 600.000 ind./cm2. En cambio,

en los lugares PL2 y PL3 se observaron las menores densidades.


Figura 17.Densidad promedio (ind./cm2) del fitobentos registrada en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar.

Tabla 8.Riqueza de taxa, diversidad de Shannon-Wiener (ind./bits), equitatividad y densidad promedio (x) y desvíos estándar (DS en los casos que fue posible calcular) del fitobentos total y de los grandes grupos taxonómicos (ind./cm2) registrados en cada estación de muestreo.

LP1 LP2 LP3 LP4 LP5 LP6 LP7 LP8 LP9

x DS x x DS x x DS x Ds x x x

Riqueza 29 7 5 10 33 20 40 19 18

Shannon-Wiever 2,59 1,75 1,55 1,91 2,61 2,61 1,98 2,74 2,64

Equitatividad 0,46 0,83 0,94 0,67 0,42 0,68 0,18 0,81 0,78

DENSIDAD (ind./cm2)

FITOBENTOS TOTAL 613815 153010 38564 7499 4545 51419 201391 143920 98553 103016 3567711 119978 72844

CYANOBACTERIA 55704 0 8570 1071 1515 0 18211 25754 0 0 241294 2142 0

Chroococcales 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 138896 0 0

Nostocales 21425 30299 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oscillatoriales 34279 30299 8570 1071 1515 0 18211 25754 0 0 102398 2142 0

CHLOROPHYTA 4285 6060 12855 1071 1515 0 4285 3030 0 0 65900 0 0

Volvocales 4285 6060 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chlorococcales 0 0 12855 1071 1515 0 2142 3030 0 0 65900 0 0

Chaetophorales 0 0 0 0 0 0 2142 0 0 0 0 0 0

ZYGNEMATOPHYCEAE 2142 3030 0 0 0 0 13926 19694 2142 3030 0 0 0

CHRYSOPHYTA 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

EUGLENOPHYTA 0 0 0 0 0 0 3214 4545 0 0 0 0 0

XANTOPHYTA 10712 15149 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0

BACILLARIOPHYTA 540971 146950 17140 5356 7575 51419 161756 83322 96411 99987 3240240 117835 72844


La riqueza de especies varió de 5 a 40 taxa por sitio (Figura 18). El ambiente con mayor número de taxa

fue PL7 seguido por PL5 y PL1 (>29 taxa), y nuevamente PL2 y PL3 con los menores valores de riqueza (<7

taxa). Al igual que para el fitoplancton, éstos pertenecieron principalmente a Bacillariophyta y

Cyanobacteria (Tabla 9). También se encontraron unos pocos representantes de Chlorophyta,

Zygnematophyceae, Chrysophyta, Euglenophyta y Xantophyta. En la Tabla 9 se observa la abundancia de

los taxa en cada estación de muestreo y los grupos taxonómicos a los que pertenecen.

Figura 18. Riqueza de taxa del fitobentos registrada en cada estación de muestreo.

Tabla 9: Densidades promedio de taxa del fitbentos

ind./cm2 PL1 PL2 PL3 PL4 PL5 PL6 PL7 PL8 PL9

CYANOBACTERIA

Chroococcales

Aphanocapsa holsatica (Lemm.) Cronb. & Kom. 0 0 0 0 0 0 50692 0 0

Aphanocapsa sp. 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Aphanothece nebulosa Skuja 0 0 0 0 0 0 2028 0 0

Chamaesiphon sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chroococcal n.i.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chroococcal n.i.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chroococcus minutus (Kütz.) Näg. 0 0 0 0 0 0 5069 0 0

Gloeothese sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Merismopedia glauca (Ehrenberg) Kutzing 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Pleurocapsa sp. 0 0 0 0 0 0 30415 0 0

Synechococcus cf. elongatus (Nâgeli) Nâgeli 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Synechocystis aquatilis Sauvageau 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Woronichinia sp. 0 0 0 0 0 0 40554 0 0

Nostocales

Anabaena sp. 21425 0 0 0 0 0 0 0 0

Oscillatoriales

Borzia sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0



Heteroleiblenia sp. 24638 8569,8 0 0 10712 0 60831 0 0

Komvophoron sp. 0 0 0 0 5356,1 0 0 0 0

Leptolyngbya cf. carnea (Kutzing et Lemm.) Anag. et

Kom. 0 0 0 0 0 0 6083 0 0

Limnothrix lauterbornii (Schmidler) Anagnostidis 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Lyngbya sp. 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Oscillatorial n.i.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oscillatorial n.i.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oscillatoria sp.1 9641,1 0 0 0 0 0 5069 2142,5 0

Oscillatoria sp.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Phormidion sp.1 0 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Phormidion sp.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Planktolynbya minor (Geitler) Komárek et Cronberg 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Planktolyngbya (Lemme) Komárková-Legnerová &

Cronbe 0 0 1071,2 0 0 0 0 0 0

Plectonema sp. 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Pseudoanabaena catenata Lauterborn 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Pseudoanabaena sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Romeria elegans (Woloszyńska) Geitler 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

CHLOROPHYCEAE

Volvocales

Carteria sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chlamydomonas sp. 4284,9 0 0 0 0 0 0 0 0

Volvocal n.i.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Volvocal n.i.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chlorococcales

Chlorococcal n.i. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Chlorella sp. 0 12855 1071,2 0 0 0 10138 0 0

Dictyosphaerium sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Ecdysichlamys sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Eutetramorus sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Monoraphidium minutum (Näg.) Kom.-Legn. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oocystis solitaria Wittrock in Wittrock & Nordstedt 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Oocystis sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oocystis elliptica West 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Oonephris obesa (W.West) Fott 0 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Pediastrum cf. boryanum (Turpin) Meneghini 0 0 0 0 0 0 30415 0 0

Scenedesmus ecornis (Ehr.) Chod. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Scenedesmus sp.1 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Scenedesmus sp.2 0 0 0 0 0 0 5069 0 0

Chaetophorales

Chaetophora sp. 0 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Microsporales

Microspora sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Ulotrichales

Ulotrix sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

ZYGNEMATOPHYCEAE

Cosmarium granatum Brébisson ex Ralfs 2142,5 0 0 0 0 0 0 0 0

Closterium sp. 0 0 0 0 0 2142,5 0 0 0

Mougeotia sp. 0 0 0 0 13926 0 0 0 0

CHRYSOPHYTA

Chromulina sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Flagelado n.i. 0 0 0 0 0 0 0 0 0



CRYPTOPHYTA

Cryptomonas sp. 0 0 0 0 0 0 20277 0 0

EUGLENOPHYTA

Euglena sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Trachelomonas sp. 0 0 0 0 3213,7 0 0 0 0

RODOPHYTA

Chroodactylon sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

XANTOPHYTA

Vaucheria sp. 10712 0 0 0 0 0 0 0 0

BACILLARIOPHYTA

Achnanthidium minutissimum (Kützing ) Czarnecki 104981 4284,9 0 2142,46 3213,7 5356,1 1571455,6 10712 6427,4

Amphora coffeaeformis (Agardh) Kützing var.

coffeaeformis 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Amphora veneta Kützing 0 0 0 0 2142,5 2142,5 0 2142,5 4284,9

Caloneis molaris (Grunow) Krammer 8569,8 0 0 0 0 0 0 0 0

Cocconeis placentula Ehrenberg var. placentula 0 0 0 0 0 0 2028 0 0

Craticula citrus (Krasske) Reichardt 0 0 0 2142,46 0 0 0 2142,5 0

Craticula sp. 0 0 0 0 0 2142,5 0 0 0

Cyclotella sp. 1071,2 0 0 0 0 0 466367 0 0

Cymbella cistula (Ehrenberg) Kirchner 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Cymbella helvetica Kützing 1071,2 0 0 0 2142,5 3213,7 10138 2142,5 2142,5

Cymbella hustedtii Krasske var. hustedtii 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Cymbella sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Denticula kuetzingii Grunow var. kuetzingii 5356,1 0 0 2142,46 1071,2 2142,5 0 0 0

Denticula mesolepta (Grunow in Van Heurck)

Meister 0 0 0 0 0 2142,5 0 0 0

Denticula thermalis Kützing 56775 0 1071,2 0 0 0 750243 4284,9 0

Diatoma moniliformis Kützing 0 0 0 0 0 0 0 0 6427,4

Diploneis elliptica (Kützing) Cleve 0 0 0 0 1071,2 0 0 0 0

Encyonema minutum (Hilse in Rabh.) D.G. Mann 1071,2 2142,5 0 0 0 0 0 0 0

Encyonema silesiacum (Bleisch in Rabh.) D.G. Mann 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Epitemia adnata (Kützing) Brébisson 19282 0 0 0 0 0 20277 0 0

Eunotia exigua (Brebisson ex Kützing) Rabenhorst 0 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Fragilaria capucina Desmazieres var. capucina 53561 0 0 0 0 0 20277 0 2142,5

Fragilaria capucina Desmazieres var. vaucheriae

(Kützing) Lange-Bertalot 24638 4284,9 2142,5 4284,92 13926 6427,4 30415 10712 12855

Fragillaria ulna (Nitzsch.) Lange-Bertalot var. acus

(Kützing) Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Frustulia spicula Amosse 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Frustulia vulgaris (Thwaites) De Toni 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Gomphonema angustatum (Kützing) Rabenhorst 0 0 0 0 0 3213,7 0 0 0

Gomphonema angustum Agardh 6427,4 0 0 0 0 0 0 4284,9 0

Gomphonema clavatum Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Gomphonema micropus Kützing var. micropus 0 0 0 0 5356,1 0 2028 2142,5 0

Gomphonema minutum (Agargh) Agardh f. minutum 4284,9 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Gomphonema olivaceum (Hornemann) Brebisson

var. olivaceum 13926 0 0 0 0 0 0 8569,8 10712

Gomphonema parvulum (Kützing ) Kützing var.

parvulum f. parvulum 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Gomphonema pseudoaugur Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Gomphonema truncatum Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Gyrosigma acuminatum (Kützing )Rabenhorst 0 0 0 0 0 0 0 0 0



Hantzschia virgata (Roper) Grunow in CLM var.

virgata 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Hippodonta hungarica (Grunow) Lange-Bertalot

Metzeltin & Witkowski 0 0 0 0 0 0 0 8569,8 0

Luticola nivalis (Ehrenberg) D.G. Mann 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Luticola ventricosa (Kützing) D.G. Mann 0 0 0 0 2142,5 0 0 0 0

Navicula arvensis Hustedt 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula cincta (Ehr.) Ralfs in Pritchard 0 0 0 0 25710 4284,9 0 14997 0

Navicula cryptocephala Kützing 0 0 0 0 0 0 30415 0 0

Navicula cryptotenella Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 50692 0 0

Navicula gregaria Donkin 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula libonensis Schoeman 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula sp.1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula sp.2 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula tenelloides Hustedt 0 0 0 0 0 0 0 12855 0

Navicula tripunctata (O.F.Müller) Bory 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Navicula veneta Kützing 0 0 0 0 0 0 0 4284,9 0

Nitzschia amphibia Grunow f. amphibia 0 0 0 0 1071,2 7498,6 0 0 0

Nitzschia bergii Cleve-Euler 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Nitzschia capitellata Hustedt in A. Schmidt & al. 1071,2 0 0 0 2142,5 0 0 4284,9 0

Nitzschia constricta (Kützing) Ralfs 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia fonticola Grunow in Cleve et Müller 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia frustulum (Kützing)Grunow var.frustulum 0 0 0 0 1071,2 4284,9 0 12855 0

Nitzschia hantzschiana Rabenhorst 138189 0 2142,5 4284,92 5356,1 2142,5 0 4284,9 0

Nitzschia inconspicua Grunow 3213,7 0 0 2142,46 1071,2 2142,5 10138 0 2142,5

Nitzschia intermedia Hantzsch ex Cleve & Grunow 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia linearis(Agardh) W.M.Smith var.linearis 9641,1 0 0 2142,46 4284,9 0 10138 0 2142,5

Nitzschia microcephala Grunow in Cleve & Moller 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nitzschia palea (Kützing) W.Smith 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Nupela sp. 20353 0 0 0 0 0 10138 0 0

Pinnularia gibba Ehrenberg 0 0 0 0 1071,2 0 0 0 0

Pinnularia microstauron (Ehrenberg) Cleve var.

microstauron 0 0 0 0 1071,2 1071,2 0 4284,9 0

Pinnularia subcapitata Gregory var. subcapitata 0 0 0 0 3213,7 0 0 0 0

Pinnularia viridiformis Krammer var. viridiformis 1071,2 0 0 6427,38 0 0 70969 0 0

Planothidium lanceolatum (Brebisson ex Kützing)

Lange-Bertalot 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Planothidium rostratum (Oestrup) Lange-Bertalot 4284,9 0 0 0 1071,2 0 0 0 0

Pseudostaurosira brevistriata (Grun. in Van Heurck)

Williams & Round 0 4284,9 0 21424,6 64274 27852 50692 0 0

Rhopalodia musculus (Kützing) O. Müller 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Sellaphora pupula (Kützing) Mereschkowksy 0 0 0 0 0 0 10138 0 0

Skeletonema sp. 0 0 0 0 0 0 2028 0 0

Staurosira construens Ehrenberg 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Staurosirella pinnata (Ehrenberg) Williams & Round 3213,7 0 0 4284,92 12855 7498,6 101384 4284,9 6427,4

Surirella brebissonii Krammer & Lange-Bertalot var.

brebissonii 5356,1 0 0 0 0 0 0 0 0

Surirella minuta Brebisson 0 0 0 0 0 0 0 0 2142,5

Surirella peisonis Pantocsek 0 0 0 0 0 2142,5 0 0 0

Surirella sp. 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Surirella turgida W.M. Smith 0 0 0 0 1071,2 0 0 0 0

Tryblionella hungrica (Grunow) D.G. Mann 0 0 0 0 0 6427,4 0 0 0

Ulnaria ulna (Nitzsch.) Compere 53561 2142,5 0 0 1071,2 4284,9 10138 0 2142,5


La diversidad específica según el índice de Shannon-Wiener varió (Figura 19) y fue más baja en los sitios

de muestreo correspondientes al río Potrerillo (PL2 y PL3). En PL7, si bien presentó el mayor número de

especies, la dominancia de algunas especies determinó una baja equitatividad disminuyendo los valores

de diversidad específica.

Figura 19.Diversidad específica (Shannon-Wiener, expresada como ind./bits) y equitatividad del

fitobentos para cada estación de muestreo.

En cuanto a la estructura del fitobentos, Bacillariophyta fue el grupo ampliamente dominante. Su

porcentaje de participación en las distintas estaciones de muestreo fue del 80 al 100% de la densidad

total, excepto en PL2 en donde su densidad relativa fue de alrededor del 40% (Figura 20). En este sitio

(PL2) y en PL3 fue donde se encontraron los mayores porcentajes de Cyanobacteria y Chlorophyta.


Figura 20. Densidad relativa de los diferentes grupos algales del fitobentos para cada estación de

muestreo.

La diversidad Beta (índice de Whittaker) indicó un valor global de reemplazo de microalgas de 3,4751. Los

porcentajes de reemplazo de taxa fueron altos entre todos los sitios de muestreo, pero particularmente

entre el sitio PL3 y el resto de los sitios (Tabla 10).

Tabla 10. Diversidad beta (Índice de Whittaker) del fitobentos obtenido entre estaciones de muestreo.

Los índices marcados señalan el mayor reemplazo de taxa entre las estaciones


PL1 0 0,72 0,82 0,59 0,58 0,67 0,57 0,58 0,62

PL2 0 0,67 0,65 0,75 0,7 0,74 0,85 0,76

PL3 0 0,73 0,89 0,84 0,87 0,75 0,91

PL4 0 0,63 0,53 0,72 0,66 0,64

PL5 0 0,47 0,7 0,58 0,69

PL6 0 0,77 0,54 0,63

PL7 0 0,76 0,72

PL8 0 0,68

PL9 0


La clasificación de los sitios basada en la abundancia de los taxa del fitobentos mostró una mayor distancia

en el sitio PL7 respecto del resto de los ambientes (Figura 21). El lugar de muestreo inmediatamente

debajo de la zona de descarga (PL1) fue el siguiente sitio en cuanto a distancia. El resto de los sitios

conformaron un subgrupo, con una mayor similitud dada entre los sitios PL2, PL3, PL8 y PL9.

Figura 21. Agrupamiento de CLUSTER realizado a partir de las densidades de los taxa del fitoplancton en los sitios estudiados. Se aplicó el índice de Gower luego de transformar los datos con Box-Cox. Método de agrupamiento Groupaverage.

6.2.2.1.1 Taxocenosis de diatomeas

Teniendo en cuenta que las diatomeas representaron más del 70 % en la mayoría de los sitios analizados

(ver Figura 20) se realizó un análisis pormenorizado de esta taxocenosis. En las muestras de fitobentos

fueron identificadas un total de 75 especies de diatomeas, cuyas abundancias relativas promedio se

presentan en la Tabla 11.


Tabla 11. Abundancia relativa promedio de cada especie de diatomea en las distintas estaciones de muestreo.


Especie Acrónimo

Amphoracoffeaeformis (Agardh) Kützingvar.

Coffeaeformis ACOF 0 0 0 0 0 0 0 0 0.18

Achnanthidiumminutissimum (Kützing ) Czarnecki ADMI 11.5 9.24 16.7 14.8 5.12 16.4 18.6 3.64 16.7

AmphoravenetaKützing AVEN 0 0 0 1.85 2.09 2.04 0.61 1.22 6.66

Caloneismolaris (Grunow) Krammer CMOL 2 6.8 0 0.3 0 0 0 1.09 0.86

CocconeisplacentulaEhrenbergvar. placentula CPLA 0 0 0 0 0 0.14 1.53 0 0.31

Craticula citrus (Krasske) Reichardt CRCI 0 0 0 0.15 0 0 0 0.54 0.31

Craticulasp. CRAT 0 0 0 0 0 0.14 0 0 0

Cymbellacistula(Ehrenberg) Kirchner CCIS 0 0 0 0 0 0 0 0 0.18

CymbellahelveticaKützing CHEL 0 0 0 0 0.14 0.29 0 3.65 1.53

CymbellahustedtiiKrasske var. hustedtii CHUS 0 0 0 0 0 0 0 0 0.26

DenticulakuetzingiiGrunow var. kuetzingii DKUE 3.92 0 0 0.14 0.27 0 0 0 0.36

Denticulamesolepta (Grunow in Van Heurck) Meister DEME 0 0 0 0 0 0.14 0 0 0

DenticulathermalisKützing DTHE 10 0 0 0.14 0 0 8.36 0.68 0

DiatomamoniliformisKützing DMON 0 0 0 0 0 0 0 0 1.71

Diploneiselliptica (Kützing) Cleve DELL 0 0 0 0 0.14 0 0 0 0

Encyonemaminutum (Hilse in Rabh.) D.G. Mann ENMI 2.46 8.02 5 0 0 0 0 0 0.58

Encyonemasilesiacum (Bleisch in Rabh.) D.G. Mann ESLE 0 0 0 0 0 0.14 0.11 0 0.18

Eunotia exigua (Brebisson ex Kützing) Rabenhorst EEXI 0 0 0 0 1.7 0 0 0 0

FragilariacapucinaDesmazieresvar.capucina FCAP 5.94 0 0 0.45 0 0 0.87 0.26 0.84

FragilariacapucinaDesmazieresvar.vaucheriae(Kützing)

Lange-Bertalot FCVA 2.66 11.5 5 16 4.71 15.6 2.62 48.1 32.8

Fragillaria ulna (Nitzsch.) Lange-Bertalot var. acus

(Kützing) Lange-Bertalot FUAC 0 0 0 0 0 0 0 0 0.79

FrustuliaspiculaAmosse FSPI 0 0 0 0 0 0 0 3.84 0

Frustuliavulgaris (Thwaites) De Toni FVUL 0 0 0 0 0 0 0 2.79 0

Gomphonemaangustatum (Kützing) Rabenhorst GANG 0 0 0 0 0 2.91 0 0 0.72

GomphonemaangustumAgardh GANT 0 0 0 0 0 0 0 0.4 0

GomphonemaclavatumEhrenberg GCLA 0 0 0 0 0 0 0 0 0.26

GomphonemamicropusKützingvar. micropus GMIC 0 0 0 0 1.56 0.44 0.31 0 0.72

Gomphonemaminutum (Agargh) Agardhf.minutum GMIN 2.27 4.88 21.7 0.44 1.39 0 0 0 0

Gomphonemaolivaceum (Hornemann) Brebissonvar.

Olivaceum GOLI 4.31 0 0 0 0 0 0 6.56 24.7

Gomphonemaparvulum (Kützing ) Kützing var.

parvulum f. parvulum GPAR 0 0 0 0.14 0 0 0 0 0.18

GomphonemapseudoaugurLange-Bertalot GPSA 0 0 0 0 0.14 0.43 0 0 0

Gyrosigmaacuminatum (Kützing )Rabenhorst GYAC 0 0 0 0.14 0 0 0 0 0

Hantzschiavirgata (Roper) Grunow in CLM var. virgata HVIR 0 0 0 0 0 0 0 0 0.18

Hippodontahungarica(Grunow) Lange-

BertalotMetzeltin&Witkowski HHUN 0 0 0 0 0 0 0 1.91 0.18

Luticolanivalis (Ehrenberg) D.G. Mann LNIV 0 1.22 0 0 0 0 0 0 0

Luticolaventricosa (Kützing) D.G. Mann LVEN 0 0 0 0 0.14 0.14 0 0 0

NaviculaarvensisHustedt NARV 0 0 0 0 0.14 0 0 0 0



Especie Acrónimo

Naviculacincta (Ehr.) Ralfs in Pritchard NCIN 0 4.88 0 0 3.52 2.63 0 4.37 0

NaviculacryptocephalaKützing NCRY 0 0 0 0 0 0 0.11 0 0

NaviculacryptotenellaLange-Bertalot NCTE 0 0 0 0.15 0 0 0.33 0 0

NaviculagregariaDonkin NGRE 0 0 5 0 0 0 0 0 0

NaviculalibonensisSchoeman NLIB 0 8.54 0 0 0 0 0 0 0

NaviculatenelloidesHustedt NTEN 0 0 0 0 0 0 0 4.35 0.18

Naviculatripunctata(O.F.Müller) Bory NTPT 0 0 0 0 0 0 0 0 0.13

NaviculavenetaKützing NVEN 0 0 0 0 0 0 0 1.23 0.31

NitzschiaamphibiaGrunow f. amphibia NAMP 0 0 0 2.13 0.68 1.3 0 0 0

NitzschiabergiiCleve-Euler NBRG 0 0 0 0.14 0 0 0 0.68 0.71

NitzschiacapitellataHustedt in A. Schmidt & al. NCPL 0 1.92 0 0 0.28 0 0 1.09 0

Nitzschiaconstricta (Kützing) Ralfs NCOT 0 0 0 0 0 0 0 0.68 0.18

NitzschiafonticolaGrunow in Cleve et Müller NFON 0 0 0 0.28 0 0 0 0 0

Nitzschiafrustulum (Kützing)Grunowvar.frustulum NIFR 0.22 0 0 2.54 2.86 1.16 0 3.96 0

NitzschiahantzschianaRabenhorst NHAN 41.4 18.2 25 2.41 0.57 0.14 0 0.14 0

NitzschiainconspicuaGrunow NINC 0.59 0 0 1.04 0.56 2.05 0.31 0 0.58

Nitzschia intermedia Hantzsch ex Cleve&Grunow NINT 0 0 0 0.14 0 0 0 0 0

Nitzschialinearis (Agardh) W.M.Smithvar.linearis NLIN 0.39 0 0 2.27 0.54 0 0.15 0.26 0.13

NitzschiamicrocephalaGrunow in Cleve & Moller NMIC 0 0 0 0 0 0 0 0.94 0

Nitzschiapalea (Kützing) W.Smith NPAL 0 1.92 0 0 0 0 0 0 0

Nupelasp. NUPE 4.58 0 0 0 0 0 0.33 0 0

PinnulariagibbaEhrenberg PGIB 0 1.92 0 0 0.14 0 0 0 0

Pinnulariamicrostauron(Ehrenberg) Clevevar.

Microstauron PMIC 0 0 0 0 0.14 0.44 0 0 0.13

Pinnulariasubcapitata Gregory var. subcapitata PSCA 0 0 0 0 5.1 0 0 0 0

PinnulariaviridiformisKrammervar. viridiformis PVIF 0 0 0 0 0 0 0.11 0 0

Planothidiumlanceolatum (Brebisson ex Kützing)

Lange-Bertalot PTLA 0.33 0 0 0 0 0 0 0 0.26

Planothidiumrostratum (Oestrup) Lange-Bertalot PRST 1.59 0 16.7 1.74 2.21 1.46 0.31 0.68 1.04

Pseudostaurosirabrevistriata (Grun. in Van Heurck)

Williams & Round PSBR 0 15.4 0 36.1 55.3 47.7 44.9 2.51 1.09

Rhopalodiamusculus (Kützing) O. Müller RMUS 0 0 0 0 0 0 0 0 0.31

Sellaphorapupula (Kützing) Mereschkowksy SPUP 0 0 0 0 0 0 0.11 0.53 0

StaurosiraconstruensEhrenberg SCON 0.11 0 0 0 0 0 0 0 0.91

Staurosirellapinnata (Ehrenberg) Williams & Round SPIN 0.89 2.44 0 15.2 10.3 3.36 18.9 3.73 1.71

SurirellabrebissoniiKrammer&Lange-Bertalotvar.

Brebissonii SBRE 1.96 0 0 0.28 0 0 0 0 0

SurirellaminutaBrebisson SUMI 0 0 0 0 0 0 0 0 0.18

SurirellapeisonisPantocsek SPEI 0 0 0 0 0 0.29 0 0 0

Surirellaturgida W.M. Smith STUR 0 0 0 0.15 0.14 0 0 0 0

Tryblionellahungrica (Grunow) D.G. Mann THUN 0 0 0 0.71 0 0 0 0 0

Ulnariaulna (Nitzsch.) Compere UULN 2.94 3.14 5 0.14 0.14 0.58 1.44 0.13 0.94


El análisis de Cluster realizado a partir de la composición específica de la taxocenosis de diatomeas

(Figura 22) evidenció el agrupamiento de los sitios PL1, PL2 y PL3 (río Potrerillos) por un lado, separados

del resto de los sitios que a su vez se agruparon en dos subgrupos (PL8-PL9).

Figura 22. Agrupamiento de CLUSTER realizado a partir de las abundancias relativas de diatomeas en los sitios analizados, aplicando el índice de similitud de Bray Curtis. Método de agrupamiento Group average.

La similitud observada entre los sitios PL4, PL5, PL6 y PL7 (río Las Taguas) estuvo relacionada

principalmente con la abundancia relativa de Pseudostaurosira brevistriata y de Staurosirella pinnata. En

los sitios PL1, PL2 y PL3 (río Potrerillos) estuvo muy bien representada Nitzschia hantzschiana, mientras

que los sitios PL8 y PL9 (río La Palca y río Blanco respectivamente) se caracterizaron por presentar mayores

abundancias de Fragilaria capucina var. vaucheriae y Gomphonema olivaceum (Figura 23).


Figura 23. Abundancia relativa de las especies diatomeas más representadas en el fitobentos de los sitios analizados. PSBR: Pseudostaurosirabrevistriata, FCVA: FragilariacapucinaDesmazieresvar. vaucheriae, ADMI: Achnanthidiumminutissimum, NHAN: Nitzschiahantzschiana, SPIN: Staurosirellapinnata, GOLI: Gomphonemaolivaceum, GMIN: Gomphonemaminutum, PRST: Planothidiumrostratum, DTHE: Denticulathermalis, Otras: suma de las restantes especies presentes en la muestra.

El porcentaje de especies móviles fue considerablemente mayor en los sitios PL1, PL2 y PL3 (río Potrerillos

(Figura 24), alcanzando valores de hasta el 43 %. Estos resultados estarían indicando la existencia de

mayores cargas de sedimentos en suspensión en la columna de agua, lo que reduciría la disponibilidad de

luz para la comunidad fitobentónica.


Figura 24. Porcentaje de diatomeas móviles del fitobentos de cada estación de muestreo, calculado de acuerdo a Bahls et al. (1992)

6.2.2.2 Macroinvertebrados bentónicos

Análisis Cuali y Cuantitativo

La densidad promedio osciló entre 48 (±60,5) y 5166 (±5913,03) ind.m-2, con la menor densidad en el sitio

PL7 (río Las Taguas) y la mayor en el punto de muestreo PL1 correspondiente al río Potrerillos debajo de

la laguna de lixiviación. La riqueza taxonómica total fue de 37 taxa y varió entre 7 (PL7) y 16 taxa (PL1),

mientras que la diversidad (Shannon-Wiener) fue menor en PL5 (1,23) y equitatividad en PL2 (0,50),

mientras que la mayor diversidad ocurrió en el río Blanco (PL9) (2,129) y la equitatividad en PL6

correspondiendo al río Las Taguas después del aporte del rio Turbio (0,88) (Figura 25, Tabla 12).

Los taxa más representativos fueron Copepoda Harpacticoida (en PL1, PL5 y PL6), Diptera Chironomidae

Orthocladiinae (en PL3, PL4, PL5, y PL7), Oligochaeta Enchytraeidae (en PL1, PL2, PL6, PL7, y PL8),

Trichoptera Hydropsichidae (en PL9), Tardigrada y Nematoda (en PL1), Amphipoda Hyalellidae (en PL6),

otros Diptera (principalmente Muscidae en PL8) (Figura 26, Tabla 12, Tabla 13).


Figura 25. Densidad promedio (ind.m-2), riqueza de taxa, índice de diversidad de Shannon-Wiener y equitatividad de macroinvertebrados bentónicos obtenida en cada estación de muestreo. Las barras indican los desvíos estándar

Tabla 12: Lista de taxa registrados en cada estación de muestreo y densidad promedio (ind.m-2).



Tardigrada 1023 12 6 3 0 3 0 0 0

Macrobiotidae

Platyhelminthes

Temnocephalidae 3 0 0 0 0 0 0 0 24

Turbellaria 300 0 3 0 0 0 0 0 0

Nematoda 531 3 6 9 9 0 3 0 9

Hirudinea 0 3 0 0 0 0 0 0 0

Oligochaeta

Megadrili 48 0 0 0 0 0 0 0 0

Enchytraeidae 831 255 15 9 15 15 12 72 54

Naidinae 276 3 0 3 6 6 3 0 0

Acari

Hydrachnidae 0 0 6 3 0 0 0 0 0

Ephemeroptera

Baetidae 0 0 0 6 6 3 0 6 60

Trichoptera

Hydroptilidae (pupa) 0 0 0 3 0 3 0 3 0

Hydrobiosidae 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Hydropsichidae 0 0 0 0 0 0 0 6 69

Diptera

Tabanidae 0 3 0 0 0 0 0 6 6

Muscidae 117 0 3 0 0 3 0 0 0

Ephydridae 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Empididae 33 0 0 0 0 0 0 0 3

Dolichopodidae 3 0 0 0 0 0 0 0 0

Stratyomidae 6 0 0 0 0 0 0 3 0

Tipulidae 0 0 0 0 0 0 0 0 3

Simulidae 0 12 0 0 3 0 0 15 6

Ceratopogonidae 0 3 0 3 0 6 3 0 0

Chironomidae

Orthocladiinae 51 39 132 51 111 6 21 15 12

Chironominae 0 6 0 3 0 0 0 0 6

Tanypodinae 0 0 0 0 0 0 0 0 3

Coleoptera

Elmidae (larva) 0 6 6 9 24 0 3 3 36

Elmidae (adulto) 0 6 0 0 0 0 0 3 0

Copepoda

Harpacticoida 1785 18 9 3 243 18 0 0 0

Cyclopidae 24 0 12 3 0 0 0 0 0

Cladocera 9 0 0 0 0 0 0 0 0

Ostracoda 126 6 0 0 0 0 0 0 0

Amphipoda

Hyalellidae 0 0 0 0 3 21 3 0 0

Decapoda Anomura

Aegla scamosa 0 0 0 0 0 0 0 0 6


La diversidad Beta (índice de Whittaker) o reemplazo de taxa global incluyendo todos los ambientes fue

de 1.89, siendo el mayor reemplazo de taxa obtenido entre la PL1, PL8 y PL9 con el resto de las estaciones

(Tabla 14).

Figura 26. Densidad relativa de los taxa más representativos en cada estación de muestreo.


Tabla 13: Cuadro comparativo de métricas obtenidas en cada estación de muestreo


Riqueza taxonómica 16 14 10 13 9 10 7 10 14

Diversidad (Shannon) 1.89 1.32 1.33 1.93 1.23 2.03 1.58 1.59 2.12

Equitatividad (J) 0.68 0.50 0.58 0.75 0.56 0.88 0.81 0.69 0.80

Densidad (ind.m-2) 5166 375 198 108 420 84 48 132 297

Abundancia relativa (%)

Tardigrada 20 3.2 3 3 0 3 0 0 0

Platyhelmenthes 6 0 1.5 0 0 0 0 0 8

Nematoda 10 0.8 3 8 2 0 6 0 3

Hirudinea 0 0.8 0 0 0 0 0 0 0

Oligochaeta 22 69 8 11 5 26 31 55 18

Acari 0 0 3 3 0 0 0 0 0

Ephemeroptera 0 0 0 6 1 3 0 4 20

Trichoptera 0 0 0 3 0 3 0 7 23

Diptera-Chironomidae 1 12 66 51 26 7 45 11 7

Diptera-Otros 3 4.8 1.5 3 0.5 11 6 18 6

Coleoptera 0 3.2 3 8 7 0 6 5 12

Copepoda 36 4.2 11 4 58 22 0 0 0

Ostracoda 2 2 0 0 0 0 0 0 0

Amphipoda 0 0 0 0 0.5 25 6 0 0

Anomura 0 0 0 0 0 0 0 0 3

Tabla 14. Diversidad beta (Índice de Whittaker) obtenido entre estaciones de muestreo. Los índices

marcados señalan el mayor reemplazo de taxa entre las estaciones.


PL1 0 0.56 0.42 0.55 0.63 0.57 0.68 0.78 0.64

PL2 0 0.50 0.40 0.47 0.58 0.52 0.50 0.53

PL3 0 0.30 0.47 0.50 0.52 0.70 0.69

PL4 0 0.36 0.30 0.40 0.56 0.59

PL5 0 0.36 0.25 0.47 0.52

PL6 0 0.41 0.60 0.77

PL7 0 0.65 0.65

PL8 0 0.46

PL9 0


Análisis Cualitativo

Como resultado de los análisis cualitativos de muestras integradas, además de los taxa registrados en las

muestras cuantitativas, se encontraron ejemplares de Chironomidae Podonominae, Trichoptera

Hydrobiosidae, pupas de Chironomidae Orthocladiinae y Ceratopogonidae y Oligochaeta Tubificinae

(Tubifex) (Tabla 15).

Tabla 15. Lista de taxa registrados en las muestras integradas cualitativas. Las x representan presencia en cada estación de muestreo


Tardigrada x x x

Nematoda x x x

Turbellaria x x

Oligochaeta

x

Megadrili Enchytraeidae x x x x Naidinae x x x x x Tubificinae x

Amphipoda x

x

Hyalellidae x x

Copepoda x

x

x

x Harpacticoida

Cyclopidae x

Ostracoda x

Ephemeroptera x

x

x

Baetidae x

Trichoptera x x

x

Hidroptilidae (pupa) Hydrobiosidae x Hydropsichidae x

Diptera x

x x x

Tabanidae (larva) Muscidae (larva) x x Ephydridae x Empididae x Dolichopodidae x Stratyomidae x Ceratopogonidae (pupa) x Chironomidae

x x x x x Orthocladiinae (larva) Orthocladinae (pupa) x Chironominae (larva) x x Podonominae x

Coleoptera x x x

x

Elmidae (larva) Elmidae (adulto) x


6.3 Riqueza, equitatividad y diversidad por zonas definidas en el área de estudio

La riqueza de especies difirió entre la zona 0 del resto de las zonas (p<0,05). Además, únicamente los

valores correspondientes a los puntos de muestreo dentro de la zona 0 fueron distintos

estadísticamente (p<0,05). El resto de los puntos no difirieron intra zona ni entre zona (p>0,05) (Figura

27). La mayor riqueza estuvo representada por las algas, ya sean diferenciadas en las muestras del

plancton, bentos y particularmente diatomeas.

Figura 27. Riqueza de especies agrupada por zona. Primer columna: fitoplancton, segunda: zooplancton,

tercera: fitobentos, cuarta: diatomeas bentónicas, quinta: macroinvertebrados.

La diversidad de especies a partir del índice de Shannon en comunidad fitobentónica,la zona 0

disminuye en sus puntos de muestreo desde el área de impacto inicial (PL1) y las siguientes, antes de

alcanzar el río Las Tagüas (PL2 y PL3). Esta disminución es significativa estadísticamente (p<0,05), la

variación se observa principalmente en estas comunidades, especialmente en las diatomeas, y en

macroinvertebrados (Figura 28). En esta zona se registran los menores valores de diversidad de algas

planctónicas y bentónicas. El punto de muestreo PL1 de la zona 0 no difiere estadísticamente del resto

de los puntos ubicados en las otras zonas incluyendo la considerada control (p>0,05). El resto de las

zonas presentan valores de diversidad similares entre sí (p>0,05). Las diferencias en los valores de

diversidad dentro de las zonas no son diferentes significativamente (p>0,05).


Figura 28. Diversidad de especies agrupada por zona. Primer columna: fitoplancton, segunda:

zooplancton, tercera: fitobentos, cuarta: diatomeas bentónicas, quinta: macroinvertebrados.

Los valores de equitatividad (J) evaluados en su conjunto no difirieron entre las zonas (p>0,05) (Figura

29). Sin embargo, los valores en los puntos de muestreo de las zonas 0 y 2 fueron significativamente

diferentes (p<0,05). El punto PL3 de la zona 0 es disímil al PL1 en el río Potrerillos (p < 0,05), mientras

que en la zona 2, el PL7 difiere del PL8en el río Las Tagüas (p<0,05).

En la zona 0 se obtuvo el valor mínimo y máximo de equitatividad del fitoplancton (PL1 y PL2

respectivamente), estos difieren al obtenido en el punto control (Figura 29). El zooplancton presenta en

la zona 2 el valor mínimo y máximo de equitatividad (PL7 y PL6, respectivamente). Por otra parte, los

valores de equitatividad de algas bentónicas, y disgregadas de ésta las diatomeas, fueron menores en la

zona 2. Mientras que los mayores valores de fitobentos y diatomeas correspondieron a la zona 0 (PL3 y

PL2, respectivamente). Los valores menores de equitatividad en la comunidad de macroinvertebrados

se obtuvieron en la zona 0 y 1. Por otra parte, los valores correspondientes a las otras zonas son

similares al observado en el control (p>0,05) (Figura 29).


Figura 29. Equitatividad (J) agrupada por zona. Primer columna: fitoplancton, segunda: zooplancton,

tercera: fitobentos, cuarta: diatomeas bentónicas, quinta: macroinvertebrados.

6.4 Comparación con muestras realizadas en monitoreos previos

Esta comparación resulta difícil de realizar debido a diferentes factores. En primer lugar la época del año

difiere significativamente entre el momento muestreado en esta oportunidad y la de los monitoreos realizados

por la empresa Barrick Gold. Esto se evidenció principalmente en la temperatura del agua (ver sección

parámetros físico-químicos).

Por otra parte podría haber diferencias metodológicas en el trabajo de campo como de laboratorio que

motiven diferencias en los resultados.

Con relación a los monitoreos realizados en otoño, la suma de la riqueza de especies da las comunidades

observadas (fitoplancton, zooplancton, fitobentos y macroinvertebrados) en los puntos comunes con los

muestreos actuales (RT6 (PL4); QT4 (PL3); LP8 (PL7); y PL1 (PL8)) osciló entre 0 y 55 siendo en general el punto

RT6 el sitio de mayor riqueza (excepto otoño 2008) (Figura 30).

Mientras que en las muestras de primavera – verano, la riqueza de especies fue en general mayor en el sitio

RT6 y QP4 disminuyendo significativamente en los otros puntos de muestreo (Figura 30).

En general los valores de riqueza han sido menores durante los monitoreos previos.


Figura 30: Valores de riqueza de especies en cuatro puntos de muestreo coincidente con puntos muestreados en esta campaña limnológica realizados en lso monitoreos solicitados por la empresa Barrick Gold.


Tabla 16: Cuadro comparativo tomado del informe de monitoreo anual 2012-2013, 2014, de la comunidad de macroinvertebrados.

Primavera 2012 Verano 2013

Indice BLA4 BLA2 RT6 RD10 QP4 LT8 QG7 BLA4 BLA2 RT6 RD10 QP4 LT8 QP7

Shannon (H`) 0,74 0,82 0,67 0,67 0,58 0,80 0,75 0,1 0,5 0,5 0,7 0,2 0,5 0,6

Riqueza específica 6 7 8 7 5 5 6 4 4 5 9 4 3 9

Densidad total

(ind.m-2)

556 478 2700 1089 911 1078 889 522 100 3611 6078 3367 400 2411

%Ephemeroptera 10 16 39 30 59 31 34 2 11 58 49 17 19 41

%Trichoptera 48 26 0,4 0 0 0 0 94 44 0 9 0 0 1

%Coleoptera 26 23 35 49 34 26 40 2 33 21 12 82 42 49

%Diptera 16 30 14 6 4 37 25 2 11 17 9 1 39 8

%EPT* 58 42 40 30 59 31 34

*Observación: no fue registrado Plecoptera, por lo tanto se infiere que se utilizó en el análisis solamente a Ephemeroptera y

Trichoptera

Primavera 2013

Indice RT6 LT8 RD10 QG7 QP4 BLA2 BLA4 JA1

Shannon (H`) 0,82 0,00 1,73 0,61 0,70 1,54 1,22 1,06

Riqueza específica 3 1 7 4 2 6 4 3

Densidad total (ind.m-2) 533,33 22,22 2044,44 1844,44 222,22 1488,89 1800 1800

%Ephemeroptera 0 0 42 77 50 3 1 0

%Trichoptera 0 0 1 0 0 6 48 0

%Coleoptera 4 0 5 5 50 3 1 0

%Diptera 92 100 46 18 0 84 41 32

%Crustacea 4 0 5 0 0 0 0 12


7 CONCLUSIONES

Las comunidades expresan las características del ambiente en donde se desarrollan, sean naturales o

modificadas por el hombre y sus actividades. Por ello es importante comprender cómo se manifiestan y

cambian dinámicamente. En este estudio se evaluaron las comunidades planctónicas (fitoplancton y

zooplancton) y bentónicas (fitobentos y macroinvertebrados bentónicos). Si bien ésta identifica a grupos

de taxas con características particulares, en estos tipos de ambientes que fluyen con potencia, la

separación en estas comunidades puede ser indefinida. Los ríos evaluados fueron de primer orden o de

primeros órdenes.

El fitoplancton estuvo compuesto por un gran número de especies ticoplanctónicas o de deriva

provenientes del fitobentos, y unos escasos representantes de algas euplanctónicas. La similitud con las

especies encontradas en el fitobentos indican los aportes de este ensamble al plancton y el permanente

intercambio entre los organismos de la columna de agua y los bentónicos o adheridos a diferentes

sustratos. Esto se debe al arrastre ocasionado por el flujo de los ríos en una columna de agua de escasa

profundidad, sumado a otros disturbios que podrían ocasionar el desprendimiento de la flora perifítica.

Por otro lado, las bajas tasas de residencia del agua estarían impidiendo el desarrollo de un verdadero

potamoplancton en estos ambientes caracterizando a una zona ritrónica.

El fitoplancton y fitobentos estuvieron compuestos en su mayoría por Bacillariophyta. Este grupo

dominó ampliamente ambos ensambles en todos los sitios estudiados, tanto en composición como en

abundancia. Las diatomeas poseen estrategias morfológicas y fisiológicas que les permite sobrevivir y

adaptarse a las condiciones de turbulencia y escasez de luz desarrollándose exitosamente, aún en

ambientes con condiciones adversas.

En los sitios PL1, PL2 y PL3 (río Potrerillos) donde ocurrió el incidente con solución cianurada se

registraron los mayores porcentajes de especies móviles de diatomeas. Esto caracteriza a ambientes que

estarían relacionados con algún tipo de disturbio físico en la zona. Las especies de diatomeas que

presentan movilidad tienen una ventaja competitiva sobre las especies que viven adheridas al sustrato,

ya que pueden exponerse de forma activa a las condiciones de luz óptima y evitar daños por oxidación

en condiciones de hipersaturación de irradiancia (Cohn y Weitzell, 1996; Cartaxana y Serodio, 2008;

Barnett et al., 2015; Licursi et al., 2015). Asimismo, estas especies pueden moverse a microhábitats más

ricos en nutrientes cuando estos están limitando el crecimiento (Hoagland et al., 1982; Hoagland, 1983;

Svensson et al., 2014). De esta manera, las formas móviles pueden evitar el estrés por perturbaciones

físicas así como situaciones en que los recursos son limitantes (Passy, 2007). En consecuencia, gran

abundancia de especies móviles han sido reportadas asociadas a alteraciones físicas por sedimentación

en hábitats bentónicos de ríos (Bahls et al., 1992; Fore y Grafe, 2002; Licursi y Gómez, 2009; Pan et al.,

2012).


Por otro lado, la Cyanobacteria fue el segundo grupo en importancia en cuanto a la composición y

densidad del fitoplancton y fitobentos. La mayoría de sus representantes fueron especies del Orden

Oscillatoriales bentónicas, con capacidad de adherirse a los sustratos o de formar tapetes que favorecen

la colonización de otras especies. Muchas de ellas poseen paredes gruesas o vainas mucilaginosas que

les permiten sobrellevar períodos de desecación, bajas temperaturas, congelamiento u otras

condiciones adversas y estresantes.

En cuanto a la caracterización de las zonas, los sitios de muestreo PL4, PL5 y PL6 (control, zona 1 y 2: río

Las Taguas) fueron más similares entre sí. El sitio PL7 (zona 2) se presentó como el más diverso en

cuanto a taxa y con abundancias elevadísimas tanto de fitoplancton como de fitobentos. Los lugares

muestreados del río Potrerillo (PL2 y PL3), como así también las muestras del río La Palca (PL8) fueron

las más pobres en cuanto al desarrollo algal, y se diferenciaron del resto de los sitios por la mayor

proporción de Cyanobacteria y Chlorophyta. Las diferencias en estos sitios podrían ser indicadoras de

algún disturbio tal como el aporte de agua proveniente de otras cuencas como modificaciones locales

producidas en los ambientes o diferencias en la estructura del hábitat.

Cabe señalar que las microalgas y cianobacterias son muy sensibles a cambios en las condiciones

ambientales y responden rápidamente a dichas variaciones. Por otro lado, poseen una alta tasa de

reproducción respecto de otros organismos lo cual les permite recuperarse rápidamente, si las

modificaciones ocasionadas en el ambiente no resultan permanentes. Un derrame de cianuro y metales

pesados en Baia Mares ocasionó la eliminación completa del plancton de uno de los tributarios del

Danubio, el río Tisza en Hungría, pero transcurrido un tiempo el fitoplancton y el zooplancton

evidenciaron una recuperación (László, 2006; Begoña, 2007). Este proceso de recuperación estuvo

acompañado por un período de inundación que evidentemente resultó favorable para el plancton.

Ensayos de laboratorio con poblaciones naturales de algas mostraron que concentraciones de 0,1 y 0,2

mg/L de cianuro afectaron levemente su crecimiento, mientras que concentraciones de 0,3 y 0,4 mg/L

produjeron un efecto inhibitorio (Salwa et al., 1988). Al cuarto día de la exposición, las especies más

resistentes comenzaron a recuperar su tasa de crecimiento. Por otro lado, las microalgas también

poseen la capacidad de degradar bajas concentraciones de cianuro lo cual está acompañado por la

aclimatación que los organismos posean a la exposición al cianuro (Shahalam y Mansour, 1985).

En el caso del zooplancton se puede resaltar que la dominancia de rotíferos y de estadios larvales de

copépodos encontrada se corresponde con características típicas de ambientes lóticos con elevada

turbidez y velocidad de corriente.

Por otra parte, la composición del zooplancton estuvo representada por especies de la región

Neotropical. Además, las muestras se caracterizaron por la alta frecuencia de Notholca, la cual se podría

relacionar con ambientes característicos de regiones frías y secas con considerable altitud de la región

Neotropical.


En general, los organismos planctónicos presentaron menor riqueza e importancia relativa respecto a

organismos de hábito litoral-bentónico, entre los cuales los rotíferos bdelloideos, nemátodos y

tardígrados fueron particularmente abundantes.

En estas muestras, como también ocurrió con el fitoplancton y fitobentos, la presencia de diversos

integrantes que caracaterizan a la zona litoral-bentónica en las muestras de zooplancton se podría deber

al arrastre en suspensión por la corriente.

En el sitio PL7, el punto de muestreo aguas abajo del aporte del arroyo Amarillo sobre el río Las Taguas

registró un pico de densidad de Colurella adriática. Con relación a esto, es importante mencionar que el

género Colurella ha sido caracterizado como típico de muestras con abundante detritus. Este sitio se

caracteriza por una mayor extensión del valle presentando zonas inundadas con materia orgánica en

abundancia.

Los valores de riqueza, abundancia y diversidad obtenidos en el presente muestreo fueron mayores a los

valores registrados en el estudio previo de primavera de 2014 (Mina de Veladero. Limnología. Informe

Estacional de Monitoreo Limnológico e Ictiológico, 2014). No obstante, éstas podrían deberse a las

diferencias en los métodos de muestreo (ejemplo: tamaño de abertura de malla) y recuento de los

organismos utilizados para el mencionado informe y el presente.

En relación a los macroinvertebrados bentónicos, los resultados obtenidos en estos muestreos revelaron

mayor riqueza taxonómica y diversidad en comparación a los informes previos (Tablas 13 y 16,

respectivamente). La densidad fue en general menor que los resultados obtenidos previamente a

excepción del sitio PL1 en el río Potrerillos inmediatamente debajo de la laguna de lixiviación donde se

registró alta densidad. En relación a los grupos taxonómicos registrados con mayor representatividad

también se encuentran diferencias entre los resultados del presente estudios y los previos. En tal

sentido, cabe señalar que se obtuvo una alta abundancia de organismos de pequeños tamaños como

tardígrados, turbelarios, nematodes, oligoquetos y harpacticoideos bentónicos que sólo pueden ser

observados en el sedimento cuando son previamente teñidos. Caso contrario es muy difícil su

visualización. Por lo tanto, algunas diferencias podrían deberse a cuestiones metodológicas. La mayor

densidad y riqueza taxonómica encontradas en PL1 podría deberse a las características del sustrato con

grano más fino que en el resto de las estaciones de muestreo. No obstante, la mayor diversidad y

equitatividad fueron registradas en las estaciones PL6 (río Las Taguas luego de la desembocadura del río

Turbio) y PL9 (río Blanco).

Las observaciones realizadas indican una rápida recuperación de las diferentes comunidades en los sitios

directamente impactados. Esto se observa con una alta tasa de reemplazo de especies.


La diferenciación en zonas de la región de estudio permitió comparar espacialmente el estrés provocado

por el incidente con solución cianurada. El impacto en la zona 0 se observa a través de la disminución de

la riqueza de especies de las distintas comunidades muestreadas en los puntos PL2 y PL3,

principalmente en esta última. El sitio en la zona 0 que recibió inicialmente la solución cianurada

muestra un estado de recuperación incipiente con aumentos de riqueza de especies por encima de lo

observado en los otros puntos de la zona 0 (PL2 y PL3). En el resto de las zonas, los valores de riqueza en

general son similares estadísticamente a los observados al sitio considerado blanco en el río Las Tagüas.

La diversidad de especies indicó también los efectos ocurridos en el río Potrerillos. En la zona

correspondiente a este río (zona 0) se registró en general una disminución de la diversidad desde el sitio

PL1, siendo en alguna comunidad mas importante que otra. Este sitio (PL1) de la zona 0 muestra

recuperación en todas las comunidades observadas en relación a la expresión conjunta de densidad y

riqueza. En el resto de las zonas corresponde valores similares al sitio control pudiendo representar la

manifestación de cierto grado de recuperación. Esta posiblemente ocurre en las diferentes comunidades

debido al mayor caudal de agua que presenta el río Las Tagüas y el aporte de nuevas entidades desde la

zona blanco (río Las Tagúas aguas arriba de la desembocadura del río Potrerillos) o no impactadas.

Las diferentes zonas presentan similitudes en relación a la equitatividad, aunque algunos sitios tienen

valores diferentes, particularmente en las comunidades de algas planctónicas y bentónicas. Estas

diferencias se observan principalmente en la zona 0 y en menor medida en el sitio PL7 de la zona 2.

El sitio PL7 de la zona 2 muestra diferencias con el resto de las zonas debido principalmente a que existe

un cambio en el tipo de ambiente acuático desarrollado, como la mayor amplitud de la zona del valle

aluvial con ambientes lénticos asociados y mayor cantidad de materia orgánica.

Lo observado en riqueza de especies, diversidad y equitatividad indica que el río Potrerillo durante el

muestreo registra aún signos de estrés, mientras que en la misma zona, el sitio inicialmente impactado

evidencia una rápida recuperación. Esto puede ser debido a entidades biológicas con capacidad de

generar estructuras de resistencia y su posterior eclosión para el repoblamiento del sitio. Las zonas 1, 2

y 3, salvo algunas particularidades antes mencionadas, se encuentran en recuperación. Esto

posiblemente se deba al mayor volumen del río Las Tagüas, y que este proviene de zonas no impactadas

por el incidente. El agua de este río sin polutos diluye los diferentes elementos generados y arrastrados

durante el incidente. Por otra parte, este río estaría aportando nuevas entidades biológicas a las zonas

antes mencionadas estableciendo la recuperación que se observa en las diferentes comunidades.

Las observaciones realizadas indican una rápida recuperación de las diferentes comunidades en el sitio

directamente impactado, PL1 de la zona 0. Mientras que en los otros puntos de esta zona (PL2 y PL3) aún

existe signos de estrés. Los otros puntos correspondientes a las otras zonas no muestran, en el momento


de muestreo, efectos en los diferentes atributos medidos. Por ello, el sistema acuático directamente

influenciado por las actividades de la mina Veladero a partir de la observación de las comunidades del

fitoplancton, zooplancton, fitobentos y macroinvertebrados se encuentran en recuperación. El río

Potrerillos (zona 0) es el que aún presente signos de estrés aunque el punto mas cercano a la descarga

muestra valores de recuperación.

El muestreo limnológico realizado corresponde a un momento del año en los ríos y arroyos en el área de

influencia de la Mina Veladero, por ello para observar cambios en el tiempo y velocidades de recuperación

se debería hacer otros muestreos en otros momentos del año que expresen estacionalidad o cambios

sucesionales.


8 BIBLIOGRAFÍA

Al, T.A., Leybourne M.I., Maprani A.C., MacQuarie K.T., Dalziel J.A., Fox D. y Yeats P.A. 2006. Effects of acid-sulfate weathering and cyanide-containing gold tailings on the transport and fate of mercury and other metals in Gossan Creek: Murray Brook mine, New Brunswick, Canada. Applied Geochemistry 21: 1969 - 1985.

Alba-Tercedor, J., Sanchez-Ortega, A. 1988. Unmétodo rápido y simple para evaluar la calidad biológica de las auas basado en el de Hellawell (1978). Limnética 4:51-56.

Anderson J.T y Davis C.A. 2013. Wetland Techniques: Volume 2: Organisms. Springer Science+Business Media Dordrecht DOI 10.1007/978-94-007-6931-1_5

Barbour, M.T., J. Gerritsen, B.D. Snyder, and J.B. Stribling. 1999. Rapid Bioassessment Protocols for Use in Streams and Wadeable Rivers: Periphyton, Benthic Macroinvertebrates and Fish, Second Edition. EPA 841-B-99-002. U.S. Environmental Protection Agency; Office of Water; Washington, D.C.

Bellotti, M.L. 2011. Minería a cielo abierto versus glaciares en alerta roja en Argentina. Revista de Derecho de Daños, “Daño Ambiental”, 29 pp.

Bourrelly, P. 1968. Notes sur les Péridiniens d'eau douce. Protistologica 4: 5-14.

Bourrelly, P. 1970. Les algues d'eau douce. Initiation à la systématique. Tome III: Les Algues bleues et rouges. Les Eugléniens, Peridiniens et Cryptomonadines. pp. 1-512, 5 figs, 138 plates. Paris: Boubée & Cie.

Bourrelly, P., 1972. Les algues d’eau douce. Initiation a la systematique. Editions N. Boubée Cie. pp. 1-512.

Brinkhurst, R.O. y Marchese, M .1992. Guía para la identificación de oligoquetos acuáticos continentales de Sud y Centroamérica. Climax Nº 6. Segunda Edición. Asoc. Cienc. Nat. Litoral. Santo Tomé.

Brower J.E. y J.H. Zar, 1977. Field and laboratory Methods for General Ecology. Wm. C. Brown, Dubuque, 194 p.

Cheng, S.K. y Ruby, S.M. 1981. Effect of Pulse Exposure to Sublethal Levels of Hydrogen Cyanide on Reproduction of American Flagfish, Arch. Environ. Contam. Toxicology 10: 105-116.

Domínguez & H. R. Fernández (eds.). 2009. Comunicaciones de la Sociedad Malacológica del Uruguay, vol. 9, núm. 92, p. 211 Sociedad Malacológica del Uruguay Montevideo, Uruguay

Domínguez E. & H. R. Fernández (eds.). 2009. Macroinvertebrados bentónicos sudamericanos. Sistemática y biología. Fundación Miguel Lillo, Tucumán, Argentina, 656 pp.

EEA 2011. Hazardous substances in Europe's fresh and marine waters An overview. EEA Technical report No 8/2011, 66pp.

Ezcurra de Drago, I.; Marchese, M. & L. Montalto. 2007. Benthic Invertebrates. Cap. 10. In: Iriondo, M; Paggi, J. C. y Parma, J. E. (eds). The Middle Paraná River: Limnology of Subtropical Wetland. Springer Verlag, Heidelberg. 251-271

Fernandez, H.R., Dominguez, E., Romero, F. y Cuezoo, G. 2006. La calidad del agua y la bioindicación en los ríos de montaña del noroeste argentino. Serie Conservación de la Naturaleza, nst. Miguel Lillo, Tucumán, Argentina Nº 16, 5-31

Garvey Chairman T.; Barlund Kaj; Mara, L.; Marinov, E.; Morvay, K.; Verstrynge, J. y Weller, P. 2000. Report of the international task force for assessing the baia mare accident. Recuperado el 23 de


octubre de 2015. Disponible en: https://www.google.com.ar/search?q=BAIA+MARE+TASK+FORCE&rlz=1C1GGGE_esAR403AR403&oq=BAIA+MARE+TASK+FORCE&aqs=chrome..69i57.40383j0j8&sourceid=chrome&es_sm=93&ie=UTF-8.

Hammer, Ø., Harper, D. A. T. & Ryan, P. D., 2001: PAST:paleontological statistics software package for educationand data analysis. Palaeontologia Electronica 4: 9.Available at: http://palaeo-lectronica.org/20011/past/issue1_01.htm. Accessed 24 April 2009.

José de Paggi, S. y J.C. Paggi, 1995. Determinación de la abundancia y biomasa zooplanctónica. En E. Lopretto y G. Tell (eds). Ecosistemas de Aguas Continentales. Metodologías para su estudio, Tomo I. Ediciones Sur, Bs. As.

Komárek J. & Anagnostidis K. 2005: Cyanoprokaryota 2. Teil/ 2nd Part: Oscillatoriales. - In: BÜDEL B., KRIENITZ L., GÄRTNER G. & SCHAGERL M. (eds): Süsswasserflora von Mitteleuropa 19/2, Elsevier/Spektrum, Heidelberg, 759 pp.

Koste, W. & R. J. Shiel 1989. Rotifera from Australia inland waters. 111. Euchlanidae, Mytilinidae and Trichotriidae. Trarzs. R. Soc. S. Ausr. 113: 85-1 14.

Kovacs, T. G. and Leduc, G. 1982. Sub-lethal Toxicity Of Cyanide To Rainbow Trout (Salmo gairdneri) At Different Temperatures. Can. Journal Fish. Aquat. Sci. 39:1389-1395.

Krammer, K. & H. Lange-Bertalot.1988. Bacillariophyceae. 2. Teil: Bacillariaceae, Epithemiaceae, Surirellaceae. In: ETTL, H., J. GERLOFF, H. HEYNIG & D. MOLLENHAUER (eds.), Süsswasserflora von Mitteleuropa, G. Fischer, Jena.

Krammer, K .& H. Lange-Bertalot. 1991. Bacillariophyceae. 3. Teil: Centrales, Fragilariaceae, Eunotiaceae. In: ETTL, H., J. GERLOFF, H. HEYNIG & D. MOLLENHAUER (eds.), Süsswasserflora von Mitteleuropa , G. Fischer, Jena Süsswasserflora von Mitteleuropa Bd. 2/3: Stuttgart, Gustav Fischer Verlag.

Krammer, K. Y H. Lange-Bertalot. 1986. Bacillariophyceae 1. Teil: Naviculaceae. In: ETTL, H., J. GERLOFF, H. HEYNIG & D. MOLLENHAUER (eds.), Süsswasserflora von Mitteleuropa , G. Fischer, Jena.

Krammer, K. Y H. Lange-Bertalot. 2004. Bacillariophyceae. 4. Teil: Achnanthaceae Kritische Ergänzungen zu Navicula(Lineolatae) und Gomphonema. En: ETTL, H., J. GERLOFF, H. HEYNIG & D. MOLLENHAUER (eds.), Süsswasserflora von Mitteleuropa, G. Fischer, Jena.

Kuhlmann, M.L., G.Johnscher-Fornasero, L.L. Ogura, H. R.V. Imbimbo 2012. Protocolo para o biomonitoramento com as comunidades bentônicas de rios e reservatórios do estado de São Paulo. CETESB, São Paulo. 113 p.

Logsdon, M.J.; Hagelstein, K. y Mudder, T.I. 2001. El manejo del cianuro en la extracción de oro. Consejo Internacional de Metales y Medio ambiente. 41 pp.

Lopretto, E. y Tell, G. 1995. Ecosistemas de aguas continentales. Metodologías para su estudio. Ediciones Sur.

Marchese, M. & I. Ezcurra de Drago. 2006. Bentos como indicador de condiciones tróficas del sistema del río Paraná Medio En: J. Tundisi, T. Matsumura Tundisi & C. Sidagis Galli (Ed.) Eutrofização na América do Sul: Causas, Consequências e Tecnologias de Gerenciamento e Controle.pp 297-316

Merritt, R.W. & Cummins, K.W., 1966. An introdution to the aquatic insects of North America. 3ª ed., Dubuque, Kendall/Hunt. 862 p.

Merritt, R.W. & Cummins, K.W., 1984. An introdution to the aquatic insects of North America. 2ª ed., Dubuque, Kendall/Hunt. 722 p.


Metzeltin, D., H. Lange-Bertalot Y F. García Rodríguez. 2005. Diatoms of Uruguay. Compared with other taxa from South America and elsewhere. A.R.G. Gantner Verlag 736 p.

Mining Journal Books, The Mining Journal Ltd., Londres, Reino Unido.

Modenutti Be, Eg Balseiro, Mc Diéguez, Cp Queimaliños & R Albariño (1998) Heterogeneity of freshwater Patagonian ecosystems. Ecología Austral (Argentina) 8: 155-165

Mudder, T., Derivation of Aquatic Life Criteria for Total and Iron Cyanide in The Cyanide. Mudder, T.I. (Ed.), 1998. The Cyanide Monograph [Monografía sobre el cianuro].

NYSEC SOP 208-14, 2014. Standard Operating Procedure: Biological Monitoring of Surface Waters in New York State. Stream Biomonitoring Rev. 3.0, 171 pp.

Ocon, C.S., A. Rodrigues Capítulo, A.C. Paggi. 2008. Evaluation of zoobenthic assemblages and recovery following petroleum spill in a coastal area of Río de la Plata estuarine system, South America. Environmental Pollution 156: 82-89

Paggi, J. 1995. Cladocera. Pp. 909 - 951. En: Lopretto, E. y Tell, G. (eds) Ecosistemas de aguas contientales. Metodologías para su estudio. Ediciones Sur, La Plata.

Patrick, R. Y. C.W Reimer. 1966. The diatoms of the United States (exclusive of Alaska and Hawaii). Vol. 1. Acad. Nat. Sci. Philadelphia Monogr. 13: 1-688.

Patrick, R. Y. C.W Reimer. 1975. The diatoms of the United States (exclusive of Alaska and Hawaii). Vol.2. Acad. Nat. Sci. of Philadelphia Monogr. 13: 1-213.

Red de Acción en Plaguicidas y sus Alternativas para América Latina (RAP-AL). 2012. Mercurio, cianuro, minería y contaminación. 2012. Recuperado el 23 de octubre de 2015. Disponible en: http://www.rapaluruguay.org/agrotoxicos/COPs/Prensa/Mercurio_cianuro_mineria_contaminacion.pdf

Rodrigues Capítulo, A., Paggi, A., Cesar, I., Tassara, M., Bauer, D., 1995.Evaluación de la calidad de las aguas de la cuenca Matanza-Riachuelo a partir de la comunidad bentónica. Indices bióticos. Informe INCYTH-CETUAA-ILPLA.

Rosenberg, D.M. y V. H. Resh. 1993. Freshwater Biomonitoring and Benthic Macroinvertebrates. Chapman y Hall, Inc. 488 pp.

Rumrich U., Lange-Bertalot, H. Y Rumrich, M., 2000. Iconographia Diatolmologica 9. Diatomeen der Anden von Venezuela bis Patagonien/Tierra del Fuego . En: LANGE-BERTALOT,H. (ed) A.R.G. Gantner Verlag K. G. Germany.

Ruttner-Kolisko, A. 1974. Plankton rotifers. Biology and taxonomy. Traducción al Inglés de Die Binnengewasser v. 26, part 1. 146 p.

Servicio de Sanidad Ambiental. 2008. Riesgo químico - Accidentes graves cianuro de sodio. Dirección General de Salud Pública, Consejería de Sanidad, Región de Murcia. 15 pp. Recuperado el 23 de octubre de 2015. Disponible en

Traunspurger, W., C. Drews. 1996. Toxicity analysis of freshwater and marine sediments with meio and macrobenthic organisms: A review. Hydrobiologia, 328, 215-261.

Trivinho-Strixino, S. 2011. Larvas de Chironomidae. Guía de identificaçao. Laboratorio de Entomologia aquatica. Universidade Federal de Sao Carlos, San Carlos. 371 pp.

Utermöhl, H. 1958. Zur Vervollkommnung der quantitativen Phytoplankton Methodik. Mitt.Int.Ver Limnol., 9: 1-38.

Voigt, M. y Koste, W. 1978. Rotatoria. Die Rädertiere Mitteleuropas. Überordnung Monogononta. I. Textband, II. Tafe l band Gebrüder Borntraeger. Berlin, 675 + 476 pp.


Wilhm, J.F, Dorris, T. C. 1968. Biological parameters of water quality. Bioscience 18:447-481.

Zar, J.H. 1996. Biostatistical Analysis. Prentice Hall, New York.

Zilli, F.L., L. Montalto 2011.Benthic Invertebrates in the Middle Paraná River Floodplain

Anexo IV – Material Cartográfico

&

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Junta dela Jarilla

Junta deLa Palca

Las Flores

Cuesta del Viento

Río La Palca

Río Jáchal

Río V

alledel C

ura

Río Las Taguas

Río Los Despoblados

Río Turbio

A.Los Amarillos

RodeoTudcúm

Iglesia

San José de Jáchal

R. L a vadero

&

&&

&

Río Blanco

Source: Esri, DigitalGlobe, GeoEye, Earthstar Geographics, CNES/Airbus DS, USDA, USGS, AEX,Getmapping, Aerogrid, IGN, IGP, swisstopo, and the GIS User Community

68°51'0"W

68°51'0"W

69°0'0"W

69°0'0"W

69°9'0"W

69°9'0"W

69°18'0"W

69°18'0"W

69°27'0"W

69°27'0"W

69°36'0"W

69°36'0"W

69°45'0"W

69°45'0"W

69°54'0"W

69°54'0"W

29°6'0"S 29°6'0"S

29°15'0"S 29°15'0"S

29°24'0"S 29°24'0"S

29°33'0"S 29°33'0"S

29°42'0"S 29°42'0"S

29°51'0"S 29°51'0"S

30°0'0"S 30°0'0"S

30°9'0"S 30°9'0"S

30°18'0"S 30°18'0"S

30°27'0"S 30°27'0"SARGENTINA

CHILE

Reserva de la Biosfera San Guillermo

Zona 0

Zona 1Zona 2

Zona 3

Zona 4

0 10 205 km±Sistema de coordenadas geográficas WGS84

R.Potrer i llos

Río San Guiller mo

Estudio sobre la calidad de los cuerpos de aguaen el área de influencia de la Mina Veladero posterior al incidente

ambiental del 13/09/15

UBICACIÓN DE LAS ZONAS DE ESTUDIO

Mapa: n° 1 Fecha: Abril 2016

Leyenda

Curso de aguaPermanenteNo permanente

Rutas nacionalesLimite Internacional

& Localidades

!A!A!A!(!(#*#*!(!(

#*

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Río Potre

rillos

Río Las Taguas

Pileta SP

Pileta de Emergencia

Bomba de Contigencia

Río Potrerillos

Canal de Desvío Norte

Muro del SLV

Vertedero de lapileta SP

PL-1

PL-2

PL-3

GWQ15

GWQ2SGWQ2P

GWQ7P

GWQ7S

GWQ7C

GWQ19

GWQ14

GWQ13GWQ12

GWQ6PGWQ6C

GWQ6SSS-CN-1

SL-PO-21SW-PO-21

SW-PO-19

SW-PO-16

SW-PO-15

SW-PO-12

SW-PO-22

SW-PO-21A

SS-PO-15A

SS-PO-19CSS-PO-19BSS-PO-19A

SS-PO-16C

SS-PO-16A

SS-PO-15B

SS-PO-15C

SS-PO-12B

SW-PO-13

SW-PO-20

SW-PO-11

SS-PO-12C

SS-PO-22BSS-PO-22A

SS-PO-16B

SS-PO-13C

SS-PO-13A

SS-PO-13B

SS-PO-12A

SS-PO-20B

SS-PO-20A

SS-PO-11B

SS-PO-11A

69°55'30"W

69°55'30"W

69°55'40"W

69°55'40"W

69°55'50"W

69°55'50"W

69°56'0"W

69°56'0"W

69°56'10"W

69°56'10"W

69°56'20"W

69°56'20"W

69°56'30"W

69°56'30"W

29°22'0"S 29°22'0"S

29°22'10"S 29°22'10"S

29°22'20"S 29°22'20"S

29°22'30"S 29°22'30"S

29°22'40"S 29°22'40"S

29°22'50"S 29°22'50"S

29°23'0"S 29°23'0"S

29°23'10"S 29°23'10"S

29°23'20"S 29°23'20"S

0 150 30075 m±Sistema de coordenadas geográficas WGS84

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&



PUNTOS DE MUESTREO ZONA 0


Campaña de muestreo del 05 al 10 de octubre del 2015Leyenda

Zonas de estudio

Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4Canalización

Puntos de muestreo

Agua superficial (SW)#*Sedimentos (SS)!(

!.Suelo (SL)

Agua subterránea (GW)!A

[¡Limnología (PL)

#*!(!(

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!. Cuenca R.Las Taguas

Río Potrerillo

s

Río Las Taguas

RíoTurbio

Galerías de infiltración

Río Las Taguas

PL-5

PL-4

PM-LT1

SW-LT-9

WI-LT-1

SS-LT-9BSS-LT-9C

SS-LT-9A

SW-LT-11

SW-LT-13

SS-LT-11CSS-LT-11B

SS-LT-13C

SS-LT-13A

SS-LT-11A

SS-LT-13B

AP-SS-3

AP-SW-4

AP-SW-2AP-SS-1

AP-SS-2

AP-SS-4

AP-SW-3

AP-SW-1

AP-SL-1


69°54'30"W

69°54'30"W

69°55'0"W

69°55'0"W

69°55'30"W

69°55'30"W

69°56'0"W

69°56'0"W

29°21'0"S 29°21'0"S

29°21'30"S 29°21'30"S

29°22'0"S 29°22'0"S

29°22'30"S 29°22'30"S

29°23'0"S 29°23'0"S

29°23'30"S 29°23'30"S

0 300 600150 m±Sistema de coordenadas geográficas WGS84

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&

A. Gu

anac

o Zon

zo

LeyendaPuntos de muestreoZonas de estudio

Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4





Campaña de muestreo del 05 al 10 de octubre del 2015

Captación de agua (WI)

Agua subterránea (GW)Sedimentos (SS)!(

!A

Agua superficial (SW)#*

[¡ Limnología (PL)!. Suelo (SL)

#*!(!(!(

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!(!(

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Rio Bl

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PL-8

SW-BO-10

SW-PA-10

SS-BO-10C

SS-BO-10BSS-BO-10A

SS-PA-10C

SS-PA-10B

SS-PA-10A

Source: Esri, DigitalGlobe, GeoEye, Earthstar Geographics,CNES/Airbus DS, USDA, USGS, AEX, Getmapping, Aerogrid, IGN,IGP, swisstopo, and the GIS User Community

69°11'10"W69°11'20"W69°11'30"W69°11'40"W69°11'50"W69°12'0"W

29°33'20"S

29°33'30"S

29°33'40"S

29°33'50"S

#*!(

!A!(!(

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!(

Río Las Taguas

A. Los Amarillos

Río Las Taguas

R.TurbioPL-6

PL-7

PM-LT2

SW-LT-16

SW-LT-14

SW-LT-15

SS-LT-15A

SS-LT-16BSS-LT-16A

SS-LT-14C

SS-LT-15B

SS-LT-14B

SS-LT-15C

SS-LT-14A

69°52'0"W69°52'30"W69°53'0"W69°53'30"W69°54'0"W69°54'30"W

29°18'0"S

29°18'30"S

29°19'0"S

29°19'30"S

29°20'0"S

29°20'30"S

29°21'0"S

29°21'30"S

69°10'0"W69°20'0"W69°30'0"W69°40'0"W69°50'0"W

29°10'0"S

29°20'0"S

29°30'0"S

Zona 2A

Zona 2B 0 750 1.500375m

0 150 30075m

Río La Palca

Junta deLa Palca

± Sistema de coordenadas geográficas WGS84


Zona 2A

Zona 2B

R.Potreri llos

0 5 102,5 km

Estudio sobre la calidad de los cuerpos de agua en el área de influencia de la Mina Veladero posterior al incidente



Mapa: n°4 Fecha: Abril 2016

Campaña de muestreo del 05 al 10 de octubre del 2015Zona 0Zona 1Zona 2Zona 3

Agua superficial (SW)#*Agua subterránea (GW)!ASedimentos (SS)!(

R. Las Taguas

R. La Palca R. Blanco

[¡ Limnología (PL)

#*!(!(

#*!(!(!(

!(

#*!(!(!(!([¡

A A`

B B`

C C`

PL-9

WI-BO-1

WI-BO-3

WI-BO-2

SW-BO-11

SW-BO-12

SW-BO-13

SS-BO-11DSS-BO-11B

SS-BO-13C

SS-BO-12ASS-BO-12CSS-BO-12B

SS-BO-13BSS-BO-13A

SS-BO-11CSS-BO-11A

RioBl

anco


69°5'0"W

69°5'0"W

69°10'0"W

69°10'0"W

69°15'0"W

69°15'0"W

69°20'0"W

69°20'0"W

29°40'0"S 29°40'0"S

29°45'0"S 29°45'0"S

29°50'0"S 29°50'0"S

29°55'0"S 29°55'0"S

30°0'0"S 30°0'0"S

30°5'0"S 30°5'0"S

0 2 41 Km±Sistema de coordenadas geográficas WGS84

El Chinguillo

Malimán

Angualasto

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&






Puntos de muestreoZonas de estudio

Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4


[¡Limnología (PL)Captación de agua (WI)Cortes topográficos(sección 3.1.5.2)

#*!(!(!(

!(#*!(!(

Río Jáchal

Rio Blanco

SW-BO-14

SW-JA-10

SS-BO-14C

SS-JA-10C

SS-BO-14A

SS-BO-14B

SS-JA-10A

SS-JA-10B

&


69°2'0"W

69°2'0"W

69°4'0"W

69°4'0"W

69°6'0"W

69°6'0"W

69°8'0"W

69°8'0"W

30°6'0"S 30°6'0"S

30°8'0"S 30°8'0"S

30°10'0"S 30°10'0"S

30°12'0"S 30°12'0"S

30°14'0"S 30°14'0"S

0 1 20,5 km±

CUESTA DEL VIENTO

Rodeo

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&

Sistema de coordenadas geográficas WGS84






Puntos de muestreoZonas de estudio

Localidades!(

Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4


#*

#*

#*#*

#*

#*

#*

nullnull

WI-BO-2

WI-BO-1

WI-BO-3

SW-BO-14

SW-BO-12

SW-BO-11

SW-BO-10SW-PA-10

SW-BO-13

SW-JA-10

RioBlanco

Río J ácha l

Rio La Palca

RODEOTUDCUM


68°50'0"W

68°50'0"W

68°55'0"W

68°55'0"W

69°0'0"W

69°0'0"W

69°5'0"W

69°5'0"W

69°10'0"W

69°10'0"W

69°15'0"W

69°15'0"W

69°20'0"W

69°20'0"W

29°30'0"S 29°30'0"S

29°35'0"S 29°35'0"S

29°40'0"S 29°40'0"S

29°45'0"S 29°45'0"S

29°50'0"S 29°50'0"S

29°55'0"S 29°55'0"S

30°0'0"S 30°0'0"S

30°5'0"S 30°5'0"S

30°10'0"S 30°10'0"S

30°15'0"S 30°15'0"S

El Chinguillo

Malimán

Angualasto

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&

Cuesta delViento

0 5 102,5 km±Sistema de coordenadas geográficas WGS84


Localidades



PUNTOS DE MUESTREO ZONAS 2B, 3 Y 4


Campaña de monitoreo del 20 al 22 de octubre del 2015Agua superficial (SW)#*

Captación de Agua (WI)Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4

#*

#*#*

#*

#*

Río Blanco

Río Jáchal

Río La Palca

WI-BO-2

WI-BO-1

WI-BO-3

SW-BO-14

SW-BO-12

SW-BO-10SW-PA-10

SW-JA-10

RODEOTUDCUM


68°50'0"W

68°50'0"W

68°55'0"W

68°55'0"W

69°0'0"W

69°0'0"W

69°5'0"W

69°5'0"W

69°10'0"W

69°10'0"W

69°15'0"W

69°15'0"W

69°20'0"W

69°20'0"W29°30'0"S 29°30'0"S

29°35'0"S 29°35'0"S

29°40'0"S 29°40'0"S

29°45'0"S 29°45'0"S

29°50'0"S 29°50'0"S

29°55'0"S 29°55'0"S

30°0'0"S 30°0'0"S

30°5'0"S 30°5'0"S

30°10'0"S 30°10'0"S

30°15'0"S 30°15'0"S

El Chinguillo

Malimán

Angualasto

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&

0 5 102,5 km±Sistema de coordenadas geográficas WGS84




PUNTOS DE MUESTREO ZONAS 2B, 3 Y 4


Campaña de monitoreo del 27 de octubre del 2015

Cuesta del Viento

Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4


Captación de Agua (WI)

Localidades

#*

#*

#*!A

#*

!A

#*

!A!A#*

#*

!A#*!A!A#*!A!A!A!A#*

#*

!A!A#*!A


Rajo Argenta

Truck Shop

GWQ7PGWQ7SGWQ7C

GWQ2S

GWQ2P

PM-LT1

PM-LT2

SW-PO-15SW-PO-13SW-PO-16

SW-PO-19

SW-LT-11

SW-LT-13

SW-LT-14

SW-LT-15

SW-LT-16

GWQ15

GWQ14GWQ13

GWQ12GWQ6SGWQ6C

GWQ6P

SW-PO-12SW-PO-20SW-PO-11

Río Las Taguas

R. Turbio

R.Potr

erillo

sA. Los Amarillos

A. Canito

A. Guanaco Zonzo

R ío Las Taguas


69°52'0"W

69°52'0"W

69°53'0"W

69°53'0"W

69°54'0"W

69°54'0"W

69°55'0"W

69°55'0"W

69°56'0"W

69°56'0"W

69°57'0"W

69°57'0"W29°17'0"S 29°17'0"S

29°18'0"S 29°18'0"S

29°19'0"S 29°19'0"S

29°20'0"S 29°20'0"S

29°21'0"S 29°21'0"S

29°22'0"S 29°22'0"S

29°23'0"S 29°23'0"S

29°24'0"S 29°24'0"S

Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Rodeo

Iglesia&

&

0 820 1.640410 m±Sistema de coordenadas geográficas WGS84


Zona 1Zona 0

Zona 2Zona 3Zona 4

Agua superficial (SW)#*Estudio sobre la calidad de los cuerpos de agua

en el área de influencia de la Mina Veladero posterior al incidenteambiental del 13/09/15

PUNTOS DE MUESTREO ZONA 0, 1 Y 2A


Campaña de monitoreo del 30/10 al 01/11 del 2015Agua subterránea (GW)!A

Anexo V – Anexo Fotográfico

ANEXO V Página 1

ZONA 0

1. AGUA SUPERFICIAL

SW-PO-11 LATITUD -29°23'3,62" ALTITUD (m) 3888

LONGITUD -69°56'6,44" RÍO Potrerillos

LIMNOLOGÍA PL-1

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 5 al 10 de octubre del 2015



LIMNOLOGÍA

Imágen tomada durante la campaña de muestreo del 5 al 10 de octubre del 2015

ANEXO V Página 2



LIMNOLOGÍA PL-2

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 30/10 al 1/11 de 2015



LIMNOLOGÍA

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 30/10 al 1/11 (izquierda) y del 5 al 10 de octubre de 2015 (derecha)

ANEXO V Página 3



LIMNOLOGÍA PL-3

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 30/10 al 1/11 de 2015



LIMNOLOGÍA

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 30/10 al 1/11 (izquierda) y del 5 al 10 de octubre del 2015 (derecha)

ANEXO V Página 4



LIMNOLOGÍA

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 29 al 30 d octubre del 2015



LIMNOLOGÍA


ANEXO V Página 5

SW-PO-21A LATITUD -29°23'4,92" ALTITUD (m) 3888


LIMNOLOGÍA



LONGITUD -69°56'8,04" RÍO Canal de descarga de la pileta SP

LIMNOLOGÍA


ANEXO V Página 6

2. SEDIMENTOS

*Las coordenadas corresponde a uno de los puntos muestreados

SS-CN-1 LATITUD* -29°23'4" ALTITUD (m) 3900

LONGITUD* -69°56'10,3" RÍO Canal de Desvío Norte

AGUA SUP. Nº MUESTRAS 1


SS-PO-11 LATITUD* 29°23'3,51" ALTITUD (m) 3888

LONGITUD* 69°56'6,41" RÍO Potrerillos

AGUA SUP. SW-PO-11 Nº MUESTRAS 2


ANEXO V Página 7

SS-PO-12

LATITUD* 29°23'0,73" ALTITUD (m) 3886

LONGITUD* -69°56'3,18" RÍO Potrerillos

AGUA SUP. SW-PO12 Nº MUESTRAS 3


SS-PO-13

LATITUD* -29°22'51,7" ALTITUD (m) 3868




ANEXO V Página 8

SS-PO-15 LATITUD* -29°22'43,05" ALTITUD (m) 3847




SS-PO-16





ANEXO V Página 9





SS-PO-20





ANEXO V Página 10


LONGITUD* -69°56'8,03" RÍO Canal de descarga de la pileta SP



3. AGUA SUBTERRÁNEA

GWQ12 LATITUD -29°23'0,97" ALTITUD (m) 3889

LONGITUD -69°56'2,3" CUENCA Potrerillos


ANEXO V Página 11




GWQ14

LATITUD -29°23'0,61" ALTITUD (m) 3882


Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del del 5 al 10 de octubre del 2015

ANEXO V Página 12




GWQ19




ANEXO V Página 13

GWQ2P LATITUD -29°22'13,1" ALTITUD (m) 3785



GWQ2S




ANEXO V Página 14

GWQ6C LATITUD -29°23'3,65" ALTITUD (m) 3892



GWQ6P




ANEXO V Página 15

GWQ6S LATITUD -29°23'3,63" ALTITUD (m) 3893

LONGITUD -69°56'6" CUENCA Potrerillos


GWQ7C




ANEXO V Página 16

GWQ7P LATITUD -29°22'40,26" ALTITUD (m) 3858



GWQ7S LATITUD -29°22'40,84" ALTITUD (m) 3853



ANEXO V Página 17

4. SUELO

SL-PO-21 LATITUD -29°23'4,92" ALTITUD (m) 3893



5. LIMNOLOGÍA

PL-1 LATITUD -29°23'3,61" ALTITUD (m) 3888


AGUA SUP. SW-PO-11


ANEXO V Página 18



AGUA SUP. SW-PO-13




AGUA SUP. SW-PO16


ANEXO V Página 19

ZONA 1

1. AGUA SUPERFICIAL

SW-LT-9 LATITUD -29°23'15,36" ALTITUD (m) 3809

LONGITUD -69°54'58,1" RÍO Las Taguas

LIMNOLOGÍA PL-4




LIMNOLOGÍA PL-5


ANEXO V Página 20



LIMNOLOGÍA


AP-SW-1


LONGITUD -69°55'44,05" RÍO Abanico Potrerillos

LIMNOLOGÍA PL-3


ANEXO V Página 21

AP-SW-2

LATITUD - 29°22'8,51 " ALTITUD (m) 3779

LONGITUD - 69°55'45,03" RÍO Abanico Potrerillos

LIMNOLOGÍA


AP-SW-3 LATITUD -29°22'11,06" ALTITUD (m) 3789


LIMNOLOGÍA


ANEXO V Página 22

AP-SW-4 LATITUD 29°22'11,78" ALTITUD (m) 3793

LONGITUD 69°55'42,77" RÍO Abanico Potrerillos

LIMNOLOGÍA


2. SEDIMENTOS


AP-SS-1 LATITUD 29°22'8,46" ALTITUD (m) 3781


AGUA SUP. AP-SS-2 Nº MUESTRAS 1


ANEXO V Página 23

AP-SS-2 LATITUD -29°22'8,44" ALTITUD (m) 3781


AGUA SUP. AP-SW-1 Nº MUESTRAS 1


AP-SS-3



AGUA SUP. AP-SW-3


ANEXO V Página 24

AP-SS-4 LATITUD -29°22'11,74" ALTITUD (m) 3790


AGUA SUP. AP-SW-4 Nº MUESTRAS 1


SS-LT-9 LATITUD* -29°23'16,12" ALTITUD (m) 3812

LONGITUD* -69°54'57,86" RÍO Las Taguas

AGUA SUP. SW-LT-9 Nº MUESTRAS 3


ANEXO V Página 25









ANEXO V Página 26


PM-LT1 LATITUD -29°21'53,45" ALTITUD (m) 3783

LONGITUD -69°55'50,57" CUENCA Las Taguas

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo 5 al 10 de octubre del 2015

4. SUELO

AP-SL-1 LATITUD 29°22'8,5" ALTITUD (m) 3779



ANEXO V Página 27

5. LIMNOLOGÍA



AGUA SUP. SW-LT-9




AGUA SUP. SW-LT-11


ANEXO V Página 28

6. CAPTACIÓN DE AGUA

WI-LT-1 LATITUD -29°22'5,98" ALTITUD (m) 3789



ANEXO V Página 29

ZONA 2

1. AGUA SUPERFICIAL



LIMNOLOGÍA PL-6




LIMNOLOGÍA


ANEXO V Página 30



LIMNOLOGÍA PL-6


SW-PA-10 LATITUD -29°33'28,94" ALTITUD (m) 2176

LONGITUD -69°11'39,72" RÍO La Palca

LIMNOLOGÍA PL-8

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 20 de octubre del 2015

ANEXO V Página 31

SW-BO-10 LATITUD -29°33'37,23" ALTITUD (m) 2181

LONGITUD -69°11'33,42" RÍO Blanco

LIMNOLOGÍA


2. SEDIMENTOS






ANEXO V Página 32









ANEXO V Página 33

SS-BO-10 LATITUD* -29°33'37,15" ALTITUD (m) 2182

LONGITUD* -69°11'33,46" RÍO Blanco

AGUA SUP. SW-BO-10 Nº MUESTRAS 3


SS-PA-10 LATITUD* -29°33'29,99" ALTITUD (m) 2182

LONGITUD* -69°11'38,63" RÍO La Palca

AGUA SUP. SW-PA-10 Nº MUESTRAS 3


ANEXO V Página 34


PM-LT2 LATITUD -29°20'49,35" ALTITUD (m) 3748

LONGITUD -69°54'20,84" CUENCA Las Taguas


4. LIMNOLOGÍA



AGUA SUP. SW-LT-14


ANEXO V Página 35

PL-7 LATITUD 29°18'9,46" ALTITUD (m) 3686

LONGITUD 69°51'51,38" RÍO Las Taguas

AGUA SUP. SW-LT-16



LONGITUD 69°11'39,18" RÍO La Palca

AGUA SUP. SW-PA-10


ANEXO V Página 36

ZONA 3

1. AGUA SUPERFICIAL



LIMNOLOGÍA PL-9




LIMNOLOGÍA


ANEXO V Página 37



LIMNOLOGÍA


2. SEDIMENTOS






ANEXO V Página 38





SS-BO-13 LATITUD* 29°61'23,39" ALTITUD (m) 2172

LONGITUD* 69°9'56,66" RÍO Blanco



ANEXO V Página 39

3. CAPTACIÓN DE AGUA

WI-BO-1 LATITUD -29°42'40,84" ALTITUD (m) 2023

LONGITUD -69°9'43,3" RÍO Vertiente del río Blanco


WI-BO-2 LATITUD 29°57'29,72" ALTITUD (m) 1768

LONGITUD 69°10'48,47" RÍO Agua subterránea


ANEXO V Página 40

WI-BO-3

LATITUD 29°63'41,34" ALTITUD (m) 1726

LONGITUD 69°10'44,5" RÍO Vertiente del río Blanco


4. LIMNOLOGÍA


LONGITUD 69°9'19,92" RÍO Blanco


ANEXO V Página 41

ZONA 4

1. AGUA SUPERFICIAL



LIMNOLOGÍA


SW-JA-10 LATITUD -29°72'24,26" ALTITUD (m) 1471

LONGITUD -69°2'27,35" RÍO Jáchal

LIMNOLOGÍA

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 20 de octubre (izquierda) y del 5 al 10 de octubre del 2015 (derecha)

ANEXO V Página 42

2. SEDIMENTOS






SS-JA-10 LATITUD* -29°72'23,61" ALTITUD (m) 1453

LONGITUD* -69°2'28,52" RÍO Jáchal

AGUA SUP. SW-JA-10 Nº MUESTRAS 3

Imágenes tomadas durante la campaña de muestreo del 5 al 10 de octubre del 2015 (derecha)

Anexo VI – Términos de referencia (TDR)

Actividad complementaria: ESTUDIO SOBRE LA CALIDAD DE LOS CUERPOS DE AGUA EN EL ÁREA DE INFLUENCIA DE LA MINA VELADERO, POSTERIOR AL INCIDENTE AMBIENTAL DEL 13/09/15

1. ANTECEDENTES

El 16 de septiembre la empresa Minera Argentina Gold Sociedad Anónima (MAGSA) operadora del emprendimiento Veladero presentó un informe preliminar1 al Ministerio de Minería, mediante el cual reporta la ocurrencia de un incidente ambiental fechado el pasado 13 de septiembre, presuntamente a las 10 horas, y consistente en la fuga de solución rica del sistema valle de lixiviación con motivo de la falla de una válvula de venteo en la tubería de transporte de solución rica, produciendo el deslizamiento de parte del talud del valle hacia el Canal Norte.

Si bien la empresa estimó el momento de ocurrencia del incidente ambiental a las 10 horas de la mañana del día 13 de septiembre, el informe preliminar presentado deja en claro que el último control operativo de las válvulas tuvo lugar el 12 de septiembre a las 18 horas.

De acuerdo a la información inicialmente difundida por la empresa, la solución rica liberada habría alcanzado los 224 m3. Posteriormente esta información fue corregida por la propia empresa para llevar el volumen total oficialmente declarado a los 1072 m3.

El Informe preliminar también da cuenta de medidas preventivas adoptadas por la compañía, consistentes en el suministro de agua potable a las poblaciones de Angualasto, Chinguillo y Malimán, así como el agregado controlado de hipoclorito de sodio para neutralizar cualquier posible presencia de cianuro.

En ese marco, el conocimiento del incidente a la opinión pública a través de filtraciones de información difundidas por mensajería instantánea (Whatsapp) durante la noche del domingo 13 de septiembre, sumado a los datos variables sobre el volumen de solución enriquecida que se habría liberado al Canal Norte, generó fundadas preocupaciones en las poblaciones aledañas, especialmente en Jáchal (aproximadamente 20.000 habitantes), situada aguas abajo del punto de ocurrencia del incidente ambiental.

A partir del conocimiento de la situación, el Ministerio de Minería cursó una solicitud de asistencia técnica complementaria a UNOPS en fecha 17 de septiembre a fin de elaborar un informe sobre la situación de los cuerpos de agua dentro del área del incidente ambiental.

Desde el Proyecto AuMin San Juan se brindó respuesta inmediata, movilizando recursos, iniciando la elaboración de una propuesta y organizando una misión de campo el día 18 de septiembre a la zona potencialmente afectada con motivo del incidente, liderada por el Asesor Regional de Medio Ambiente, el Asesor Regional de Auditorías Ambientales, la Asesora Técnica Principal del proyecto AuMin junto con

1 Informe preliminar presentado por la empresa Minera Argentina Gold SA (MAGSA) en fecha de 16 de Septiembre 2015.

Proyecto AuMin San Juan Página 1

Actividad complementaria Incidente Ambiental 13/09/2015

TERMINOS DE REFERENCIA

algunos miembros del equipo técnico multidisciplinario y un técnico de laboratorio para la toma de muestras preliminares.

La misión realizada tuvo por objeto tomar muestras de agua superficial; una en la localidad de Angualasto (a unos 180 km aguas abajo del punto de ocurrencia del incidente) y otra en el río Blanco aguas arriba del dique Cuesta del Viento, considerando que aguas abajo se encuentra la población de Jáchal como cabecera del departamento homónimo. También se realizaron algunas entrevistas con pobladores de Angualasto y Malimán a fin de advertir si hubieran notado comportamiento anormal de las aguas de la zona en términos de caudal, olor, sabor o color y dejar los datos de contacto de los responsables del proyecto AuMin.

Con posterioridad a la misión de campo, el día 25 de septiembre fue presentada la “Propuesta para el estudio sobre la calidad de los cuerpos de agua en el área de influencia de la Mina Veladero, posterior al incidente ambiental del 13/09/15”.

En fecha 29 de septiembre fue recibida por parte de UNOPS una comunicación de la Dirección de Coordinación Administrativa del Ministerio de Minería, informando el visto bueno del Ministro de Minería a la propuesta y solicitando se presente con carácter urgente una cuantificación de la misma.

El 2 de octubre fue presentada la estimación preliminar de recuperación de costos asociada a la propuesta de actividad complementaria, mientras que el 5 de octubre fue recibida la conformidad del Ministerio de Minería tanto a la propuesta técnica como a la estimación preliminar de recuperación de costos, solicitando a UNOPS disponer los pasos necesarios para proceder con la instrumentación correspondiente.

Para finalizar cabe destacar la urgencia dispensada para la formulación y puesta en marcha de esta actividad complementaria, considerando la dinámica que es inherente a la dispersión de contaminantes por vía acuática así como la preocupación creada a nivel social con motivo de las posibles implicancias del incidente ambiental.

2. OBJETO

El objeto de esta intervención complementaria consiste en evaluar técnicamente y de forma independiente por parte de UNOPS con la participación del PNUMA, si los cuerpos de agua dentro del área potencialmente afectada por el incidente ambiental han sufrido impactos como consecuencia del evento ocurrido en la mina Veladero, ubicada en el Departamento de Iglesia, Provincia de San Juan, Argentina el pasado 13 de septiembre del 2015.

3. PROPUESTA METODOLÓGICA

3.1. Estrategia de intervención Para cumplir con el objeto de este estudio, primeramente se procederá a reconocer el sitio de descarga del derrame al cuerpo receptor, determinando cuáles han sido los cuerpos de agua afectados por el evento y recopilando la mayor cantidad de información sobre el incidente; principalmente respecto al volumen y a la composición del derrame.



Posteriormente, se buscará comprender la situación actual de los cuerpos de agua identificados, desarrollando para ello las siguientes actividades a lo largo de dos fases de estudio diferenciadas. Primera fase – Muestreo -

a) Toma de 121 muestras de agua superficial y subterránea, y de sedimentos en puntos escogidos por UNOPS-PNUMA.

b) Muestreos y estudios limnológicos a fin de determinar eventuales modificaciones de los ambientes lóticos en 9 sitios considerados.

c) Toma de muestras de suelos en áreas circundantes a los cuerpos de agua, que pudieran haber sido impactados.

d) Tratamiento analítico de las muestras de agua, sedimentos y suelos en laboratorios acreditados, para evaluar eventuales cambios en los parámetros físico-químicos de los distintos sitios considerados.

e) Comparación de los resultados obtenidos en este muestreo con los resultados del muestreo independiente realizado por UNOPS-PNUMA en mayo del 2015 y otros estudios antecedentes disponibles que pudieran ser utilizados como línea de base.

Segunda fase – Monitoreo -

a) Implementación de una campaña de muestreo en las zonas 0, 1 y 2A comprendiendo la toma de muestras de agua superficial y subterránea (en el orden de 40 puntos). Esta campaña servirá para evaluar la evolución de los parámetros físico-químicos en el área geográfica próxima a la zona del incidente.

b) Monitoreo y seguimiento a través de dos campañas de muestreo, que comprenden las zonas 2B, 3 y 4, (en el orden de 10 puntos, cada una). Incluyendo el análisis de las fuentes de agua para bebida humana en 3 poblaciones localizadas en dichas zonas.

Criterios para la selección de puntos de muestreo y monitoreo: Primera fase – Muestreo -

Los siguientes criterios fueron tenidos en cuenta para la selección de los puntos de muestreo:

a) La posible ruta de dispersión del derrame con base en la información oficial recibida de parte del Ministerio de Minería y su relación con los puntos de muestreo existentes, considerando: Pozos de monitoreo de agua subterránea existentes en el área de

influencia. Puntos del programa de monitoreo independiente desarrollados por el

Proyecto AuMin San Juan durante la fase de auditoría de campo en el emprendimiento Veladero.

Línea de base de monitoreo ambiental, aprobada por la Declaración de Impacto Ambiental y sus actualizaciones.



Incorporación de puntos representativos en la Zona Núcleo de la Reserva de la Biósfera San Guillermo, con base al estudio desarrollado por el Proyecto AuMin San Juan durante la fase de auditoría de campo en el emprendimiento Veladero.

b) Tomas de agua para abastecimiento humano en las poblaciones aguas abajo del incidente.

Segunda fase – Monitoreo -

Los siguientes criterios fueron tenidos en cuenta para la selección de los puntos de monitoreo:

a) Puntos que, por su cercanía y por encontrarse en la ruta de dispersión del derrame, se consideren de especial interés por su vulnerabilidad a potenciales impactos, requiriendo por ello un seguimiento temporal para analizar su evolución.

b) Puntos de captación de agua de las poblaciones de Angualasto, Maliman y Chinguillo, que por su ubicación aguas abajo del sitio del incidente serían las poblaciones principalmente afectadas.

Se seleccionarán entre los puntos de muestreo considerados en la primera fase, cuyos resultados presenten al menos dos condiciones: i) concentraciones de sustancias que sobrepasen los valores guía para las aguas usando como referencia el anexo IV de la ley 24585 y ii) valores anómalos desde el punto de vista de la geoquímica ambiental.

No obstante, el número de muestras en la primera fase podrán variar en función de la valoración que el equipo técnico de UNOPS-PNUMA realice finalmente in situ. De igual manera el número de muestras comprendidas en la segunda fase dependerá de los resultados que arroje la campaña de muestreo de la primera fase.

3.2. Delimitación de zonas:

Las actividades propuestas comprenden los ríos Potrerillos, Las Taguas, La Palca, Blanco y Jáchal, los cuales fueron agrupados en cuatro (4) zonas.

Zona 0: Tramo del río Potrerillos, desde aguas arriba del Sistema de Lixiviación en Valle hasta la desembocadura del río Potrerillos con el río de las Taguas.

Zona 1: Tramo del río Las Taguas, desde antes de la confluencia del río Potrerillos hasta su confluencia con el río Turbio.

Zona 2: Curso del río Las Taguas, desde su confluencia con el río Turbio hasta su desembocadura en el río La Palca y curso del río La Palca hasta su confluencia con río Blanco. Por cuestiones operativas esta zona ha sido dividida en:

• Zona 2A, zona cordillerana (junto al área de concesión minera)

• Zona 2B, zona de valle del rio Blanco



Zona 3: Curso del río Blanco desde aguas abajo de la confluencia con el río La Palca hasta aguas arriba del dique Cuesta del Viento. Esta zona incluye además las captaciones de aguas de las localidades Chinguillo, Malimán y Angualasto.

Zona 4: Río Blanco aguas arriba del dique Cuesta del Viento y el tramo del río Jáchal ubicado aguas abajo del dique

El Mapa 1 muestra la ubicación de las zonas de estudio.



Angualasto

Malimán

El Chinguillo

Junta dela Jarilla

Junta deLa Palca

Cuesta del Viento

Río La Palca

Río Jáchal

Río V

alledel

Cura

Río Las Taguas Río S an Guillermo

Río Lavadero

Río Los Despoblados

Río Turbio

A.Los Amarillos

Río Blanco

RodeoTudcúm

Iglesia

San José de Jáchal

R. Potr erillos

&

&&

&


ARGENTINA

CHILE

Reserva de la Biosfera San Guillermo

±

0 10 205 km

Propuesta para el estudio sobre la calidad de los cuerpos de agua en el área de influencia de Mina Veladero posterior al incidente


UBICACIÓN DE LAS ZONAS DE ESTUDIO

Mapa: n° 1 Fecha: Septiembre 2015

Zona 0Zona 1

Zona 2

Zona 3

Zona 4

3.3. Tipo y cantidad de muestras

Sobre la base del análisis previo, se contempla la toma de 121 muestras en la campaña de muestreo, de las cuales 24 muestras corresponden a la matriz agua superficial; 15 a agua subterránea; 78 muestras a la matriz sedimentos de corriente; 4 captaciones de agua y 9 estudios limnológicos. De igual manera, se considerará la toma de muestras de suelos en el caso que tras una inspección visual se estime conveniente su estudio y análisis posterior. Esta cantidad de muestras, así como el programa de monitoreo, será ajustado luego de la identificación in situ del sitio de descarga del derrame al cuerpo receptor y análisis de la información sobre el incidente.

Aguas superficiales: Las muestras de agua superficial serán tomadas en aquellos puntos que han sido identificados previamente como posibles receptores del derrame. Dependiendo de las características geomorfológicas y de la evaluación de campo realizada por los profesionales encargados del muestreo, se contempla la posibilidad de tomar más de una muestra en cada punto de muestreo.

Aguas subterráneas: Estas muestras serán tomadas en los pozos existentes que forman parte de la red de monitoreo de la empresa. En estos pozos se tomarán una o más muestras de acuerdo a las características hidrogeológicas del área.

Sedimentos: En cada sitio de muestreo de aguas superficiales se tomarán muestras de sedimentos de corriente. La ubicación y cantidad de estas muestras estará determinada en el campo y para su selección, se tomarán en cuenta los factores hidrosedimentológicos y morfológicos presentes en el cauce del río.

Captaciones de agua: En cada uno de los sitios de captación de agua se tomarán una o más muestras con una periodicidad a determinar en campo; esto con el fin de obtener mayor representatividad de la calidad de agua que ingresa al sistema de distribución.

Estudios limnológicos: Se han seleccionado distintos sitios desde aguas abajo del incidente para realizar análisis ecológicos y estadísticos respecto de las variaciones en las comunidades de fitoplancton, zooplancton, fitobentos y macroinvertebrados bentónicos y su comparación respecto a los monitoreos anteriores al incidente, para establecer eventuales relaciones de causa-efecto.

Muestras de suelos: Debido a las características físico-químicas del material derramado, su volumen y su caudal, se ha creído necesario evaluar la posibilidad de que estas sustancia haya impactado el suelo cercano a los cauces directamente afectados, por ese motivo se han seleccionado distintos sitios aguas abajo del incidente para realizar muestreos de suelos.



Agua superficial

Cuenca Zona N° AGUAS SUP.

N° CAPTACIONES

LB UNOPS

LB VELADERO Descripción

Potrerillos Zona 0

1 SW-PO-1 SW11E Río Potrerillos. Aguas arriba del Valle de Lixiviación.

1 ---- ---- Aguas abajo de la Pileta de Emergencia y aguas arriba del 1er tramo de la vega. 1 ---- ---- Entre los pozos GWQ15 y GWQ17 1 ---- ---- Antes del pozo GWQ19 1 ---- ---- Entre el pozo GWQ19 y el BCRP 1 ---- ---- Aguas abajo del BCRP 1 ---- ---- 200m aguas abajo del punto anterior 1 ---- ---- 200m aguas abajo del punto anterior 1 ---- ---- 200m aguas abajo del punto anterior

1 SW-PO-4 SW6 Antes de la confluencia con río Taguas

Las Taguas Zona 1

1 SW-LT-3 SW5 Las Taguas, entre Guanaco Zonzo y Potrerillos. 1 ---- ---- Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, cerca de los lechos de infiltración. 1 ---- ---- Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, entre los lechos de infiltración y el LA-7 1 ---- ---- Captación de agua en Las taguas de las galerías de infiltración de Veladero

1 SW-LT-4 LA-7 Punto de cumplimiento de Veladero. En Las Taguas, aguas arriba de la desembocadura del río Turbio.

Las Taguas

Zona 2

1 SW-LT-5 SW9 Aguas abajo del río Turbio 1 SW-LT-6 LA-16 Punto de cumplimiento de Lama. Aguas abajo de Los Amarillos 1 ---- ---- Aguas abajo del LA-16

La Palca 1 SW-PA-2 PAL-1 La Palca, antes de la confluencia con el río Blanco.

Blanco 1 SW-BO-2 BLA-1 Blanco aguas abajo de la confluencia con La Palca.

Blanco Zona 3

1 ---- ---- Captación de agua del Chinguillo 1 ---- ---- Captación de agua de Angualasto

1 SW-BO-3 BLA-2 Río Blanco en Chinguillo

1 ---- ---- Río Blanco en Malimán 1 ---- ---- Río Blanco en Angualasto

Blanco Zona 4 1 SW-BO-5 ---- Blanco, aguas arriba del Dique.

Jáchal 1 ---- JA-1 Río Jáchal, aguas abajo del Dique TOTAL 24 3



Agua subterránea

Cuenca Zona N° MUESTRAS AGUAS SUBT.

N° MUESTRAS CAPTACIONES LB UNOPS LB

VELADERO Descripción

Potrerillos Zona 0

1 GW-PO-1 GA-4A Aguas arriba del Valle de Lixiviación. 1 GW-PO-2 GWQ10 Aguas abajo del muro del Valle de Lixiviación 1 GW-PO-3 GWQ11 Aguas abajo del muro del Valle de Lixiviación 1 GW-PO-6 GWQ6-S Pozo superficial, aguas abajo pileta del subdren principal 1 GW-PO-7 GWQ6-P Pozo superficial, aguas abajo pileta del subdren principal 1 GW-PO-8 GWQ12 Pozo aguas abajo de los GWQ6 1 GW-PO-9 GWQ19 Pozo aguas abajo de los GWQ6 1 GW-PO-10 BCRP Bomba de Contingencia Río Potrerillos 1 GW-PO-11 GWQ7-P Pozo profundo, aguas abajo del BCRP 1 GW-PO-12 GWQ7-S Pozo superficial, aguas abajo del BCRP 1 GW-PO-13 GWQ2-S Pozo superficial, antes de la confluencia con La Taguas 1 GW-PO-14 GWQ2-P Pozo profundo, antes de la confluencia con La Taguas

Las Taguas Zona 1 1 GW-LT-4 PM-LT1 Pozo entre Potrerillos y Turbio

Las Taguas Zona 2 1 GW-LT-5 PM-LT2 Pozo entre Turbio y Los Amarillos (Punto de cumplimiento de Veladero)

1 GW-LT-6 PM-LT3 Pozo aguas abajo de Los Amarillos (Punto de cumplimiento de Lama) Blanco Zona 3 1 ---- ---- Captación de agua de Malimán

TOTAL 15 1

Sedimentos

Ubicación Zona N° MUESTRAS LB UNOPS Descripción

Potrerillos Zona 0

3 SS-PO-1 Río Potrerillos. Aguas arriba del Valle de Lixiviación. 3 ---- Salida de la pileta SP 3 ---- Salida de la Pileta de Emergencia 3 ---- Aguas abajo de la Pileta de Emergencia y aguas arriba del 1er tramo de la vega. 3 ---- Entre los pozos GWQ15 y GWQ17 3 ---- Antes del pozo GWQ19 3 ---- Entre el pozo GWQ19 y el BCRP 3 ---- Aguas abajo del BCRP 3 ---- 200m aguas abajo del punto anterior 3 ---- 200m aguas abajo del punto anterior 3 ---- 200m aguas abajo del punto anterior 3 SS-PO-2 Antes de la confluencia con río Taguas

Las Taguas Zona 1 3 ---- Las Taguas, entre Guanaco Zonzo y Potrerillos. 3 ---- Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, cerca de los lechos de infiltración.



3 ---- Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, entre los lechos de infiltración y el LA-7 3 SS-LT-4 Punto de cumplimiento de Veladero. En Las Taguas, aguas arriba de la desembocadura del río Turbio.

Las Taguas Zona 2

3 SS-LT-5 Aguas abajo del río Turbio 3 SS-LT-6 Punto de cumplimiento de Lama. Aguas abajo de Los Amarillos 3 ---- Aguas abajo del LA-16

La Palca 3 SS-PA-1 La Palca, antes de la confluencia con el río Blanco. Blanco 3 ---- Blanco aguas abajo de la confluencia con La Palca.

Blanco Zona 3 3 ---- Río Blanco en Chinguillo 3 ---- Río Blanco en Malimán 3 ---- Río Blanco en Angualasto

Blanco Zona 4

3 SS-BO-2 Blanco, aguas arriba del Dique. Jáchal 3 ---- Río Jáchal, aguas abajo del Dique

TOTAL 78

Limnología

Ubicación Zona N° MUESTRAS

LB UNOPS LB VELADERO Descripción

Potrerillos Zona 0 1 PL1 ---- Primera vega aguas abajo de la pileta de emergencia. 1 PL3 QP4 QP4 de Veladero. 1 PL2 ---- Entre PU-1 y QP4.

Las Taguas Zona 1 1 PL5 ---- Las Taguas, entre Potrerillos y Turbio, cerca de los lechos de infiltración. 1 PL4 RT6 Las Taguas, antes de la confluencia con el rio Protrerillos

Las Taguas Zona 2

1 PL7 LT-8 Las Taguas, aguas debajo de Los Amarillo. LT-8 de Veladero Las Taguas 1 PL6 Las Taguas, aguas abajo del canal de desvio 3

La Palca 1 PL8 LP-1 LP-1 de Veladero, río La Palca antes de la confluencia con Blanco Blanco Zona 3 1 PL9 Rio Blanco, cerca de la localidad de Chinguillo

TOTAL 9



ZONA 0: • Muestras de agua superficial: 10 • Muestras de agua subterránea: 12 • Muestras de sedimento: 36 • Muestras limnológicas: 3 estudios

ZONA 1:

• Muestras de agua superficial: 4 • Captación de agua: 1 • Muestras de agua subterránea: 1 • Muestras de sedimento: 12 • Muestras limnológicas: 2 estudio

ZONA 2:

• Muestras de agua superficial: 5 • Muestras de agua subterránea: 2 • Muestras de sedimento: 15 • Muestras limnológicas: 3 estudios

• ZONA 3:

• Muestras de agua superficial: 3 • Muestras de sedimento: 9 • Captaciones de agua: 3 • Muestras limnológicas: 1 estudio

• ZONA 4:

• Muestras de agua superficial: 2 • Muestras de sedimento: 6

El total de muestras se presenta en la siguiente tabla:

Tipo de Muestra Cantidad Aguas superficiales 24 Aguas subterráneas 15 Sedimentos 78 Captaciones de agua 4

Estudios limnológicos 9 TOTAL 130



3.4. Ubicación de los puntos de muestreo A continuación se adjuntan los mapas de ubicación de las cuatro zonas y áreas de captación de aguas en estudio (Mapas de 2 a 6).



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Planta de ProcesoVeladero

Rajo Amable

Escombrera Sur

Sistema de Lixiviaciónen Valle (SLV)

Río Potrerillo

s

Río Las Taguas

Pileta SP


Bomba de Contigencia Río Potrerillos

69°55'30"W

69°55'30"W

69°57'0"W

69°57'0"W

29°22'30"S 29°22'30"S



UBICACIÓN PRELIMINAR DE LOS PUNTOS DE MUESTREO ZONA 0

Mapa: N°2 Fecha: Septiembre 2015

LeyendaPuntos de muestreo


[¡

Sedimentos (SS)!(

Agua Subterránea (GW)!A

Limnología (LI)

0 200 400 600 800100 m±Sistemas de coordenadas geográficas WGS84

#*

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#*!(

Río Potrerillo

s

Río Las Taguas

RíoTurbio

Galerías de infiltración

69°54'30"W

69°54'30"W

69°55'0"W

69°55'0"W

69°55'30"W

69°55'30"W

69°56'0"W

69°56'0"W

29°21'30"S 29°21'30"S

29°22'0"S 29°22'0"S



UBICACIÓN PRELIMINAR DE LOS PUNTOS DE MUESTREO: ZONA 1

Mapa: n°3 Fecha: Septiembre 2015



Limnología (LI)[¡


Sedimentos (SS)!(

Captación de agua!(

0 130 260 390 52065 m±Sistemas de coordenadas geográficas WGS84

!(#*#*!(

[¡

Rio La Palca Rio Bl

anco

Rio Blanco



UBICACIÓN PRELIMINAR DE LOS PUNTOS DE MUESTREO:ZONA 2

Mapa: n°4 Fecha: Septiembre 2015



Limnología (LI)[¡

Sedimentos (SS)!(


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#*!A!(

!(#*

[¡

Río Las Taguas

A. Los Amarillos

Río Las Taguas

Río Turbio

RioLa P alca

RioSan Guillermo

RioB

lanco

Rio Valle del Cur a

Río L

asTa

guas

Rio La vadero

Río Las Taguas

Detalle 1

Detalle 2

Detalle 1: Zona 2A

Detalle 2: Zona 2B

± Sistemas de coordenadas geográficas WGS84

0 640 1.280320m

0 390 780195m

0 5 102,5km

#*!(

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nu ll

Rio Blanco


69°0'0"W

69°0'0"W

69°5'0"W

69°5'0"W

69°10'0"W

69°10'0"W

69°15'0"W

69°15'0"W

29°45'0"S 29°45'0"S

29°50'0"S 29°50'0"S

29°55'0"S 29°55'0"S

30°0'0"S 30°0'0"S





0 1 2 3 40,5 km±Sistemas de coordenadas geográficas WGS84


El Chinguillo


Captación de agua!(

Malimán

Angualasto

#*!(

#*!( Río Jáchal

Rio Blanco


69°5'0"W

69°5'0"W

30°5'0"S 30°5'0"S

30°10'0"S 30°10'0"S

30°15'0"S 30°15'0"S





0 0,6 1,2 1,8 2,40,3 km±Sistemas de coordenadas geográficas WGS84



CUESTA DEL VIENTO

Rodeo

3.5. Procedimientos técnicos

3.5.1. Muestras de agua superficial, subterránea y sedimentos

Se realizarán las mediciones en campo sobre las matrices agua superficial y agua subterránea. Los parámetros ambientales a medir en campo son los siguientes: temperatura (T), potencial de hidrógeno (pH), turbidez (t), conductividad eléctrica (CE), concentración de oxígeno disuelto (OD), caudal en cuerpos de agua superficial y nivel piezométrico en pozos de agua.

Los parámetros a medir en laboratorio sobre las matrices de agua superficial y subterránea y captaciones de agua son:

Parámetros agua superficial, subterránea y captaciones Alcalinidad Total

Al dis

Fe dis

Tl total

Dureza Total

Al total

Fe total

U dis EC

Sb dis

Hg dis

U total

pH

Sb total

Hg total

V dis STD

As dis

Pb dis

V total

STS

As total

Pb total

Zn dis Bicarbonatos

Ag dis

Li dis

Zn total

Cl -

Ag total

Li total F- Total

Ba dis

Mg dis

SO4

Ba total

Mg total Sulfuro

Be dis

Mn dis

CN libre

Be total

Mn total CN total

B dis

Mo dis

CN WAD

B total

Mo total Tiocianatos

Cd dis

Na dis

Cianatos

Cd total

Na total P T

Ca dis

Ni dis

Cloraminas

Ca total

Ni total Nitrógeno Total

Cr dis

K dis

NH4

Cr total

K total NO2

Cr VI dis

Se dis

NO3

Cr VI total

Se total

Fenoles Totales

Co dis

SiO2 Aceites y grasas

Co total

Pd total

Detergentes (SAAM)

Cu dis

Pd dis Hidrocarburos Totales

Cu total

Tl dis

Los parámetros a medir en laboratorio sobre la matriz de sedimentos son: Parámetros suelos

Ag total

Ni total As total

Pb total

B total

pH Ba total

Sb total

Be total

Se total Cd total

Sn total

CN total

TPH Co total

V total

Cr total

Zn total Cu total

Fe total

Hg total

Mn total Mo total

SCN total



En la primera fase de muestreo para las matrices agua y sedimentos, se realizarán respectivamente, 85 y 25 determinaciones analíticas correspondientes a parámetros fisicoquímicos, inorgánicos, orgánicos y metales disueltos y totales.

La toma de muestras será realizada por los equipos UNOPS-PNUMA con el apoyo del Laboratorio acreditado por la OAA y que fue seleccionado competitivamente de acuerdo a las normas de UNOPS siguiendo procedimientos y metodologías reconocidas internacionalmente.

Los procedimientos y normas de referencia utilizados son los siguientes: • Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater 22°

Edition • US.EPA - Water Quality Assesment, A Screening Procedure for Toxic and

Coventional Pollutants in Surface and Ground Water. EPA/600/6-6-85/002 a-b, Septiembre 1985.

• US.EPA - Handbook for Sampling and Sample Preservation of Water and Wastewater EPA/600/4-82/029 Septiembre 1982.

• ISO 5667-3 / IRAM 29012-3 Guía para la preservación y manipuleo de las muestras.

• ISO 5667-12 Guía para muestreo de sedimentos de Fondo.

Las determinaciones analíticas se realizarán utilizando metodologías establecidas en el Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater (SM) y/o aquellas desarrolladas o aprobadas por las siguientes organizaciones:

• Environmental Protection Agency (EPA) • American Society for Testing and Materials (ASTM)

Aseguramiento y Control de Calidad

La toma de muestras será supervisada por personal de UNOPS, de forma de garantizar el cumplimiento de los procedimientos de muestreo, el uso de preservantes y envases adecuados según las determinaciones analíticas a realizar, las condiciones de limpieza de los envases y de las conservadoras, el correcto sellado de los envases haciendo uso de precintos y garantía de asepsia en los utensilios y equipos utilizados para esta actividad.

El aseguramiento y control de la calidad del muestreo y posterior análisis en laboratorio, se realizará mediante la toma de muestras de control en campo y posterior evaluación de los resultados analíticos. Las muestras control corresponden a un 19% del total de muestras de agua y sedimentos.

Se tomarán las siguientes muestras control:

Blanco de campo: Agua destilada (desmineralizada o des ionizada) tratada como una muestra. Se utiliza para identificar errores o contaminación en la recogida y análisis de muestras.

Blanco de viaje: Agua destilada que tratada como una muestra. Se utiliza para identificar errores o contaminación en la recogida y análisis de muestras.



Blanco de equipo: Agua proveniente del enjuague del equipo de muestreo luego de su descontaminación. Se utiliza para detectar cualquier contaminación asociada con el equipo de muestreo.

Duplicado de campo: muestra que se divide en dos sub-muestras en el campo. Se analiza cada una y se comparan los resultados. Se utilizan para probar la precisión de las mediciones de laboratorio.

Análisis de resultados

Los resultados de este estudio serán comparados con los resultados del Programa de Monitoreo Independiente realizado por UNOPS –PNUMA en mayo 2015, en el marco del proyecto AuMin San Juan, previo al incidente ambiental.

Complementariamente, se tomarán en consideración otros antecedentes como son los monitoreos y la línea de base en estos sitios, efectuada por el concesionario minero en el marco de los compromisos asumidos en sus Informes de Impacto Ambiental y sus correspondientes Declaraciones de Impacto Ambiental.

3.5.2. Estudios y muestras limnológicas

Se realizarán los análisis limnológicos de las comunidades fitoplanctónicas, zooplanctónicas, fitobentónicas y de macroinvertebrados bentónicos.

Se tendrá en consideración la metodología utilizada en los monitoreos antecedentes en los sitios previstos para el análisis limnológicos comparativo de variables biológicas, de las campañas realizadas en las primaveras 2007-2014.

En todos los sitios se tomarán parámetros físico-químicos in situ y muestras subsuperficiales de agua para análisis de fitoplancton, zooplancton, fitobentos y macroinvertebrados bentónicos.

En todos los puntos de muestreo limnológico se realizarán mediciones de parámetros ambientales in situ: potencial de hidrogeno (pH), conductividad eléctrica (CE), oxígeno disuelto (OD), turbidez (t), temperatura del agua y del ambiente (T).

Se tomarán muestras de flora y fauna limnológica conforme procedimientos estandarizados de los distintos grupos biológicos, los cuales serán posteriormente estudiados cuantitativamente mediante recuento en el laboratorio: fitoplancton, fitobentos, zooplancton, macroinvertebrados bentónicos.

Se realizará el análisis ecológico y estadístico y se calcularán los índices de diversidad específica de Shannon (H), de Dominancia de Simpson (λ) y de similitud de Jaccard, con el objetivo de determinar características estructurales de las comunidades.

4. EQUIPO DE TRABAJO

El Equipo Técnico Multidisciplinario del Proyecto AuMin, bajo la coordinación de su Asesor Técnico Principal, tendrá a cargo la ejecución de los trabajos comprendidos por la presente actividad complementaria conforme a los insumos que se desprenden



de los contenidos de la propuesta elaborada. Se mantendrá el apoyo de los Asesores regionales en materia ambiental, infraestructura y auditoría, respectivamente.

De la misma manera se contará con el apoyo de los laboratorios identificados en procesos de adquisición desarrollados por UNOPS durante las etapas preliminares.

5. CRONOGRAMA Y PLAZOS DE EJECUCIÓN

El trabajo se realizará en dos etapas que, en su conjunto, totalizarán sesenta (60) días, computados desde el 5 de octubre hasta el 5 de diciembre respectivamente, habiéndose realizado actividades preliminares desde el 18 de septiembre en que se realizó la primera misión de reconocimiento y toma de dos (2) muestras preliminares con posterioridad a la ocurrencia del incidente ambiental.

La primera etapa corresponde al estudio de la calidad de los cuerpos de agua a través de los resultados analíticos de su muestreo y análisis en los 130 puntos previstos. Esta campaña se desarrollará a partir del 5 de octubre y se espera tener los resultados durante los primeros días de noviembre.

La segunda etapa corresponde al monitoreo semanal para el seguimiento de la calidad del agua aquellos puntos seleccionados sobre la base de los resultados obtenidos en la primera etapa. Esta segunda etapa se desarrollará durante el mes de octubre y espera tener un informe completo para los primeros días de diciembre.



Cronograma de actividades

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60

SEPTIEMBRE OCTUBRE 2015 NOVIEMBRE 2015 DICIEMBRE 201512 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15

Campaña de reconocimientoPreparación de LogisticaEntrega de resultados Cpña. de reconocimientoAnálisis de resultados Cpña. ReconocimientoCampaña de Muestreo Análisis de documentaciónEntrega resultados Cpña. MuestreoAnálisis de los resultadosEntrega de informe de resultados de MuestreoMonitoreo Campaña 1Entrga de resultados Cpña.1Jornada de información preliminarMonitoreo Campaña 2Entrga de resultados Cpña.2Análisis de los resultadosEntrega de informe de resultados de MonitoreoJornada de información final


Actividad complementaria incidente ambiental 13/09/2015

6. COMUNICACIÓN

El trabajo contempla la realización de dos (2) talleres informativos a medida que obtengan los resultados de las mediciones con el propósito de informar a las comunidades cercanas y a la sociedad civil en general sobre los resultados de la actividad de muestreo y monitoreo.

La calendarización de ambas actividades se encuentra sujeta a la disposición de los resultados de las mediciones y elaboración de los informes. Estimativamente se espera realizar estas actividad para mediados de noviembre y mediados de diciembre, respectivamente, conforme figura en el calendario presentado en el punto anterior.

El objeto de esta actividad será brindar transparencia sobre los resultados obtenidos y permitir un seguimiento de los hallazgos por parte de todos los actores.

En paralelo a la realización de los talleres se compartirá la información disponible a través del sitio web del proyecto AuMin San Juan.


Actividad complementaria incidente ambiental 13/09/2015

Anexos del informe sobre el incidente Veladero

Economy & Finance

Transcript of Anexos del informe sobre el incidente Veladero