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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
CARRERA DE BIOLOGÍA
TESIS DE GRADO PARA LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE BIÓLOGO
Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Tryponosoma cruzi) en
pacientes embarazadas del Centro de Referencia Nacional de Parasitología
INSPI-Guayaquil entre los meses de Julio-Septiembre del 2017
AUTOR:
RAMÍREZ APRAEZ BRYAN EFRAÍN
TUTOR:
Blgo. Williams Sánchez Arízaga Msc
GUAYAQUIL-ECUADOR-2017
i
©Derechos de Autor
BRYAN EFRAIN RAMIREZ APRAEZ
2018
ii
--------------------------------------------
Blgo. Williams Sánchez Arízaga, M.Sc.
DIRECTOR DE TESIS
iii
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
CARRERA DE BIÓLOGIA
Calificación que otorga El tribunal que recibe la Sustentación y Defensa del Trabajo Individual de
Titulación.
TESIS
Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Tryponosoma cruzi) en pacientes embarazadas del
Centro de Referencia Nacional de Parasitología INSPI-Guayaquil entre los meses de Julio-
Septiembre del 2017
Autor: Bryan Efraín Ramírez Apráez
Previo a obtener el título de BIÓLOGO
Miembros del Tribunal
Blga. Mónica Armas Soto, MSc.
PRESIDENTA DEL TRIBUNAL ………………..…………………………
Blga. Gabriela Vergara
MIEMBRO DEL TRIBUNAL ………………..…………………………
Blgo. Williams Sánchez Arízaga MSc
MIEMBRO DEL TRIBUNAL ………………..…………………………
SUSTENTACIÓN Y DEFENSA DEL TRABAJO INDIVIDUAL DE TITULACIÓN REALIZADA EN
SALAS DE SESIONES EDIFICIO ADMINISTRATIVO.
Fecha: _______________________________________________________CERTIFICO
Abg. Jorge Solórzano Cabezas
SECRETARIO FACULTAD
CALIFICACIÒN
(Número y Letra)
iv
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD CIENCIAS NATURALES
CARRERA BIOLOGÍA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Guayaquil, 5 de enero del 2018
Blga.
Mónica Armas Soto. Msc.
DIRECTOR DE LA CARRERA DE BIOLGÍA
FACULTAD CIENCIAS NATURALES
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
Ciudad.-
De mis consideraciones:
Envío a Ud. el Informe correspondiente a la tutoría realizada al Trabajo de Titulación
“Seroprevalencia de la Enfermedad de Chagas (Tripanosoma cruzi) en pacientes embarazadas del
Centro de Referencia Nacional de Parasitología INSPI – Guayaquil entre los meses de Julio –
Septiembre del 2017” del estudiante Bryan Efraín Ramírez Apràez, indicando ha cumplido con
todos los parámetros establecidos en la normativa vigente:
El trabajo es el resultado de una investigación.
El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.
El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.
El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.
Adicionalmente, se adjunta el certificado de porcentaje de similitud y la valoración del trabajo de
titulación con la respectiva calificación.
Dando por concluida esta tutoría de trabajo de titulación, CERTIFICO, para los fines pertinentes,
que el estudiante está apto para continuar con el proceso de revisión final.
Atentamente,
______________________________________
Blgo. Williams Sánchez Arízaga M.Sc
C.I. 0925010696
v
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES CARRERA BIOLOGIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrado Blgo. Williams Sánchez Arízaga M.Sc, tutor del trabajo de
titulación certifico que el presente trabajo de titulación ha sido elaborado por Bryan
Ramírez Apraez, cc 0919342857, con mi respectiva supervisión como requerimiento parcial
para la obtención del título de Biólogo.
Se informa que el trabajo de titulación: “Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas
(Tryponosoma cruzi) en pacientes embarazadas del Centro de Referencia Nacional de
Parasitología INSPI-Guayaquil entre los meses de Julio-Septiembre del 2017 ”, ha sido
orientado durante todo el periodo de ejecución en el programa antiplagio (indicar el
nombre del programa antiplagio empleado) quedando el 7 % de coincidencia.
https://secure.urkund.com/view/16964445-251036-988649#DccxDglxDADBv6
Blgo. Williams Sánchez Arízaga M.Sc
NOMBRE DEL DOCENTE TUTOR
C.I. 0925010696
vi
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES CARRERA BIOLOGIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO: Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Tryponosoma cruzi) en pacientes embarazadas del Centro de Referencia Nacional de Parasitología INSPI-Guayaquil entre los meses de Julio-Septiembre del 2017
AUTOR(ES) (apellidos/nombres): Ramírez Apráez Bryan Efraín
REVISOR(ES)/TUTOR(ES) (apellidos/nombres):
Blgo. Sánchez Arízaga Williams M.Sc
INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil
UNIDAD/FACULTAD: Facultad de Ciencias Naturales
MAESTRÍA/ESPECIALIDAD: Biología
GRADO OBTENIDO: Biólogo
FECHA DE PUBLICACIÓN: No. DE PÁGINAS: 66
ÁREAS TEMÁTICAS:
PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS:
Triatominos, técnica de Elisa, epidemiología
RESUMEN/ABSTRACT: La enfermedad de Chagas se transmite a través de las picaduras de insectos triatominos. La enfermedad se encuentra endémica en toda América Central, Sur y México, las características epidemiológicas van a variar dependiendo del endemismo donde se localice el vector, convirtiéndose en una amenaza continua para la gran mayoría de la población de América latina. El presente trabajo determinó la seroprevalencia de la enfermedad de Chagas en la población de mujeres embarazadas de la provincia del Guayas. La toma de muestras sanguíneas se realizó en el Centro de Referencia Nacional de Parasitología del INSPI-Guayaquil y provinieron de 3 localidades: Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan. Se analizó un total de 200 muestras de sangre por medio de la técnica de ELISA, que resultaron 100% no reactivas. A pesar de que las condiciones del hábitat favorecían la presencia de la enfermedad. Es importante destacar que el muestreo fue aleatorio a todas las mujeres embarazadas. El diseño transversal en cuanto a sus limitaciones brindo información tentativa sobre la presencia de la enfermedad en la provincia del Guayas, más no concluyente.
ADJUNTO PDF: SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono: 0968369971 E-mail: efrain_008@live.com
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN:
Nombre: Facultad de Ciencias Naturales
Teléfono: 3080777
E-mail: info@fccnnugye.com
x
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FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES CARRERA BIOLOGIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
Guayaquil, 7 de marzo del 2018
CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR
Habiendo sido nombrado Blga. Gabriela Vergara, tutor del trabajo de titulación
Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Tryponosoma cruzi) en pacientes
embarazadas del Centro de Referencia Nacional de Parasitología INSPI-Guayaquil entre los
meses de Julio-Septiembre del 2017 certifico que el presente trabajo de titulación,
elaborado por Bryan Ramirez Apraez, con C.I. No. 0919342857, con mi respectiva
supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de BIOLOGIA, en la
Carrera/Facultad, ha sido REVISADO Y APROBADO en todas sus partes, encontrándose apto
para su sustentación.
Blga. Gabriela Vergara
DOCENTE TUTOR REVISOR
C.I. No. ______________
viii
FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES
CARRERA BIOLOGIA
UNIDAD DE TITULACIÓN
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL
USO NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS
Yo, BRYAN EFRAIN RAMIREZ APRAEZ con C.I. No. 0919342857, certifico que los contenidos
desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título es “Seroprevalencia de la enfermedad de
Chagas (Tryponosoma cruzi) en pacientes embarazadas del Centro de Referencia Nacional de
Parasitología INSPI-Guayaquil entre los meses de Julio-Septiembre del 2017” son de mi absoluta
propiedad y responsabilidad Y SEGÚN EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA
SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia
gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no
académicos, en favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera
pertinente
NOMBRES Y APELLIDOS DEL ESTUDIANTE (S)
C.I. No.
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN (Registro Oficial
n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior
y centros educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas politécnicas,
institutos superiores técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los conservatorios superiores, e institutos públicos
de investigación como resultado de su actividad académica o de investigación tales como trabajos de titulación,
proyectos de investigación o innovación, artículos académicos, u otros análogos, sin perjuicio de que pueda existir
relación de dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales corresponderá a los autores. Sin embargo, el
establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la obra con fines
académicos.
ix
Dedicatoria
A mis padres por el gran esfuerzo que hicieron desde muy pequeño en darme siempre la
mejor educación, esta es mi manera de poder decirles gracias por tanto esfuerzo.
x
Agradecimiento
Con Dios lo primordial y el motor de mi vida quien puso pilares fundamentales en mi vida
como lo son mis padres, mi familia a esto se suma la ayuda de mi tutor el Blgo. Williams
Sánchez Arízaga MSc. quien fue mi tutor en este proceso de tesis y pudo orientar en todo
este tiempo, Bióloga Gabriela Vergara revisora de mi trabajo me ayudo bastante en este
proyecto en la orientación y también la ayuda de la bióloga Catty Carrera Analista del
departamento de parasitología del INSPI-Guayaquil por su tiempo brindado y su
asesoramiento en el tema, por cada amigo que de una u otra forma me ayudo a seguir en
este proceso desde los inicios de mi carrera.
Y todo lo que hacéis, sea de palabra o de hecho, hacedlo todo en el nombre del Señor
Jesús, dando gracias a Dios Padre por medio de él.
Colosenses 3:17
xi
Tabla de Contenido
Resumen .................................................................................................................................... xvxvxvi
Abstract ................................................................................................................................... xvixvixvii
Capítulo I ............................................................................................................................................. 1
1. Introducción ................................................................................................................................ 1
1.1 Planteamiento del Problema ............................................................................................. 4
1.2 Objetivo General................................................................................................................. 5
1.2.1 Objetivos Específicos .................................................................................................. 5
1.3 Justificación......................................................................................................................... 6
Capítulo II ............................................................................................................................................ 7
2. Antecedentes .............................................................................................................................. 7
2.1 Marco Teórico ........................................................................................................................... 9
2.1.1 Historia ............................................................................................................................... 9
2.1.2 Epidemiologia de la enfermedad de Chagas .................................................................... 9
2.1.3 Principales formas de transmisión de la enfermedad de Chagas .................................. 10
2.1.4 Otras formas de transmisión ........................................................................................... 11
2.1.5 Fases de la Enfermedad de Chagas ................................................................................. 12
2.1.6 Ciclo de Vida de Tryponosoma cruzi ............................................................................... 14
2.1.7 Triatominos en el Ecuador .............................................................................................. 16
2.1.8 Morfología de los Triatominos ........................................................................................ 17
xii
2.1.9 Ciclo de vida de los triatominos ...................................................................................... 18
Capítulo III ......................................................................................................................................... 20
3. Materiales y Métodos .............................................................................................................. 20
3.1. Área de estudio.................................................................................................................. 20
3.2. Toma de muestras sanguínea ........................................................................................... 21
3.3. Revisión de fichas epidemiológicas .................................................................................. 21
3.4 Análisis con la técnica de ELISA .......................................................................................... 21
Capítulo IV......................................................................................................................................... 25
4. Resultados................................................................................................................................. 25
4.1 Resultados del análisis de la muestras de sangre ............................................................. 25
4.2 Resultados de la no reactividad de la presencia de la enfermedad de Chagas ................ 25
5. Discusión ................................................................................................................................... 27
6. Conclusión ................................................................................................................................. 29
7. Recomendaciones ..................................................................................................................... 30
8. Referencias Bibliográficas ............................................................................................................ 31
Anexos ............................................................................................................................................... 40
xiii
Índice de Figura
Figura 1. Formas celulares de T. cruzi .................................................................................... 15
Figura 2. Triatomas de Ecuador ............................................................................................. 17
Figura 3. Estadios ninfales y adultos de T. carrioni ............................................................... 19
Figura 4. Mapa de los tres cantones Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan de donde se
obtuvieron muestras sanguíneas de mujeres embarazadas de Guayaquil (20), Simón
Bolívar (175) y Jujan (5) .......................................................................................................... 20
Figura 5. Valor promedio de cut-off de las muestras analizadas de julio-septiembre del
2017 ........................................................................................................................................ 26
xiv
Índice de Anexos
Anexo 1. Sectores de los tres cantones Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan ........................... 40
Anexo 2. Centrifugación de las muestras ............................................................................. 41
Anexo 3. Muestras de suero debidamente rotulados en los viales .................................... 41
Anexo 4. Ficha epidemiológica ............................................................................................. 42
Anexo 5. Muestras y activos a temperatura ambiente ........................................................ 43
Anexo 6. Agregando las muestras en cada pocillo ............................................................... 43
Anexo 7. Colocando las muestras en la estufa ..................................................................... 43
Anexo 8. Preparación del buffer de lavado .......................................................................... 44
Anexo 9. Revelador A- Revelador B ...................................................................................... 44
Anexo 10. Reactivo Stopper .................................................................................................. 44
Anexo 11. Leer muestras en espectrofotómetro ................................................................. 45
Anexo 12. Datos de las embarazadas del mes de julio del 2017 ......................................... 50
Anexo 13. Datos de las embarazadas del mes de agosto del 2017 ..................................... 53
Anexo 14. Datos de las embarazadas del mes de septiembre del 2017 ............................. 55
Anexo 15. Datos de las embarazadas del mes de septiembre del 2017 ............................. 57
xv
Resumen
Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Tryponosoma cruzi) en pacientes
embarazadas del Centro de Referencia Nacional de Parasitología INSPI-Guayaquil entre
los meses de Julio-Septiembre del 2017.
La enfermedad de Chagas se transmite a través de las picaduras de insectos triatominos.
La enfermedad se encuentra endémica en toda América Central, Sur y México, las
características epidemiológicas van a variar dependiendo del endemismo donde se
localice el vector, convirtiéndose en una amenaza continua para la gran mayoría de la
población de América latina. El presente trabajo determinó la seroprevalencia de la
enfermedad de Chagas en la población de mujeres embarazadas de la provincia del
Guayas. La toma de muestras sanguíneas se realizó en el Centro de Referencia Nacional de
Parasitología del INSPI-Guayaquil y provinieron de 3 localidades: Guayaquil, Simón Bolívar,
Jujan. Se analizó un total de 200 muestras de sangre por medio de la técnica de ELISA, que
resultaron 100% no reactivas. A pesar de que las condiciones del hábitat favorecían la
presencia de la enfermedad. Es importante destacar que el muestreo fue aleatorio a todas
las mujeres embarazadas. El diseño transversal en cuanto a sus limitaciones brindo
información tentativa sobre la presencia de la enfermedad en la provincia del Guayas, más
no concluyente.
Palabras clave: Triatominos, técnica de Elisa, epidemiología
xvi
Abstract
Seroprevalence of Chagas disease (Tryponosoma cruzi) in pregnant patients from the
National Center of Parasitology INSPI-Guayaquil between the months of July-September
of 2017.
Chagas disease is transmitted through the bites of triatomine insects. The disease is
endemic throughout Central and South America and Mexico, the epidemiological
characteristics will vary depending on the endemism where the vector is located,
becoming a continuous threat to the vast majority of the population of Latin America. The
present work determined the seroprevalence of Chagas disease in the population of
pregnant women of the province of Guayas. Blood samples were taken at the National
Reference Center of Parasitology of the INSPI-Guayaquil and came from 3 locations:
Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan. A total of 200 blood samples were analyzed by means of
the ELISA technique, which were 100% non-reactive. Although habitat conditions favored
the presence of the disease. It is important to note that the sampling was randomized to
all pregnant women. The transversal design in terms of its limitations provided tentative
information on the presence of the disease in the province of Guayas, but not
conclusively.
Key words: Triatomines, Elisa technique, epidemiology
1
Capítulo I
1. Introducción
Esta enfermedad es causada por el parásito Tryponosoma cruzi, que se transmite a través
de las picaduras de insectos triatóminos (Acha et al., 2003). En la actualidad, es una
amenaza continua para la gran mayoría de la población de América latina, ya que se
encuentra endémica en toda América Central, Sur y México (Beltrán et al., 2001). Entre las
áreas de endemismo en el Ecuador están las regiones de la Costa, Amazonía, la provincia
de Loja y zonas subtropicales de la Sierra. Se estima que en Ecuador, alrededor de 300.000
habitantes están infectados por el T. cruzi (Grijalva et al., 2012).
Las características epidemiológicas y signos clínicos de la enfermedad varían dependiendo
de sus fases. La etapa aguda está caracterizada por una infección asintomática y la etapa
crónica por severas complicaciones a nivel cardíaco, sistema digestivo y nervioso
(Monteiro et al., 2013).
El parásito T. cruzi tiene un ciclo de vida indirecto, teniendo como vectores biológicos
intermedios a insectos hematófagos, típicamente triatóminos (chinchorros), y como
hospedador definitivo, al hombre. La principal vía de trasmisión es la vectorial; sin
embargo, no se pueden descartar las otras vías de trasmisión como trasfusiones de
sangre, transmisión congénita o por trasplante de órganos (Yánez, 2011).
En Ecuador, la enfermedad de Chagas conlleva unos de los problemas más altos en salud
pública. Abad-Franch y Aguilar (2003) estimaron que la prevalencia de infección por T.
2
cruzi en la población general podría alcanzar el 1,38% (1.99% en la Costa; 0.65% en la
Sierra y 1.75% en la Amazonía).
En la Amazonía hay una gran amenaza de endemismo de la enfermedad de Chagas, que se
relaciona con un conjunto determinantes biológicos y sociales dado por la inmigración
desde áreas rurales a urbanas y la introducción del parásito y sus vectores hacia nuevas
áreas del país (Aguilar et al., 2001). Los primeros datos sobre esta infección en la
Amazonía se dieron entre los años 1987 y 1992 en las provincias de Orellana y Sucumbíos.
En estas zonas se pudieron identificar tres especies de triatominos, Panstrongylus
geniculatus, Rhodnius pictipes y R. robustus, infestados con formas epimastigote y
tripomastigotes de T. cruzi (Amunárriz et al., 2010).
El vector más importante del Ecuador de la enfermedad es Triatoma dimidiata, que
abunda en las provincias del Guayas y Manabí; aunque, se ha reportado su presencia en
todas las provincias de la costa. Dicha especie fue introducida de manera artificial en el
Ecuador desde América Central durante la época colonial (Bargues et al, 2000; Bargues et
al, 2008), por lo que se la considera doméstica y esta condición permite su erradicación
(Abad-Franch y Aguilar, 2003). Desde su introducción, esta especie fue capaz infectar a
gran parte de la región costera del Ecuador (Abad-Franch et al., 2001). Esta especie
coloniza viviendas que tienen cierto tipo de características, entre las que se destacan,
presencia de animales domésticos, paredes rudimentarias (caña, barro, paja, etc.) y
carencia de higiene doméstica (Aguilar et al., 2001),
3
Otra especie causante de la transmisión de T. cruzi es Rhodnius ecuadoriensis,
especialmente en la costa occidental y de la región andina; mientras que, otras especies
de vectores son responsables de la infección en la región amazónica (Carrera et al, 2015).
Esta enfermedad representa un importante interés en salud pública en América, siendo
mucho más alta la infección que la propia malaria (Bern, 2015). El control y erradicación
del mal de Chagas es responsable de grandes costos sanitarios de hasta 24 millones de
dólares (Lee et al., 2013).
Se ha podido detectar una seroprevalencia del 3,8% en mujeres embarazadas de casos
reactivos, lo que indica un alto riesgo de transmisión congénita. Sin embargo, esto debe
ser ayudado con otro tipo de estudios que permitan establecer con exactitud el riesgo y
así poder implementar las directrices internacionales actuales para un diagnóstico,
tratamiento y atención de estos casos (Carrera et al, 2015).
La transmisión congénita es considerada actualmente unas de las vías importantes de
transmisión de T. cruzi, luego de la transmisión vectorial. Las estimaciones de la
Organización Mundial de la Salud (OMS) sugieren que en América, 1.800.000 mujeres
embarazadas están infectadas por T. cruzi y más de 14.000 casos de transmisión
congénita. En el Ecuador, las estimaciones son de 58.000 mujeres embarazadas infectadas
por el T. cruzi y 800 casos de transmisión congénita (Carrera et al., 2015).
4
1.1 Planteamiento del Problema
En el Ecuador la enfermedad de Chagas se mantiene de manera endémica, afectando a un
gran porcentaje de la población rural. Dentro de los factores biológicos que favorecen a la
distribución de la enfermedad están las altas tasas de reproducción del vector; a esto se
suman la pobreza, aspectos culturales, ambientales, presencia de reservorios del parásito
y materiales utilizados para la construcción de las viviendas.
Adicionalmente, la infección materna por T. cruzi puede ocurrir en cualquier momento de
la gestación, siendo más probable la infestación en el último trimestre. La vía de
transmisión congénita afecta al crecimiento y la madurez de los fetos infectados. Además,
puede causar aborto, prematuridad, crecimiento intrauterino retardado y malformaciones
fetales.
5
1.2 Objetivo General
Determinar la seroprevalencia de la enfermedad de Chagas en embarazadas del Centro de
Referencia Nacional de Parasitología del INSPI-Guayaquil entre los meses de julio-
septiembre del 2017.
1.2.1 Objetivos Específicos
Analizar las muestras de sangre de pacientes embarazadas de julio a septiembre
del 2017 en 3 zonas de la provincia del Guayas.
Establecer la no reactividad de la enfermedad de Chagas por serología IgG en
embarazadas que acuden al Centro Referencial INSPI-Guayaquil durante los meses
de julio a septiembre del 2017
6
1.3 Justificación
La distribución de la enfermedad de Chagas en el Ecuador es amplia y de carácter
endémico, donde se registran casos en áreas semiurbanas y rurales, dependiendo de las
condiciones para el desarrollo de los vectores y su contacto con el ser humano.
El estudio de la infección por T. cruzi en las poblaciones de embarazadas constituye un
importante avance epidemiológico que permitirá desarrollar programas de control para la
transmisión congénita. Adicionalmente, con este proyecto de investigación se deja bases
para nuevas investigaciones de la infección causante de la enfermedad de Chagas en el
Ecuador. Las muestras de sangre permitirán establecer la seroprevalencia de la
transmisión del parásito en mujeres embarazadas de los cantones de Guayaquil, Simón
Bolívar, Jujan de la provincia del Guayas.
7
Capítulo II
2. Antecedentes
En el trabajo realizado por Calderón (2013) se determinó la prevalencia de la enfermedad
de Chagas en la población escolar de la parroquia Juan Gómez Rendón (provincia del
Guayas) realizando la toma de muestras sanguíneas en 12 establecimientos educativos.
Las muestras fueron analizadas mediante la técnica de ELISA y posteriormente, se
realizaron pruebas de confirmación en el INSPI- Guayaquil a través de los métodos de
ELISA + HAI (Método de Hemaglutinación Indirecta), de un total de 1967 muestras
analizadas, 23 muestras fueron reactivas y 8 casos confirmados distribuidos en Progreso
(5), San Lorenzo (2) y Caimito (1). La prevalencia encontrada durante este estudio fue de
0.41 (Calderón, 2013).
Carrera (2015) detectó una seroprevalencia de anticuerpos anti-T. cruzi del 1,3% en
cantón de Loreto (provincia de Orellana) entre la población escolar y mujeres
embarazadas. Estos resultados indican la persistencia de una transmisión vectorial
constante y activa en la zona. Además, en este estudio se recolectaron un total de 1.923
chinchorros selváticos.
Adicionalmente, las altas tasas de infección por T. cruzi encontradas en las poblaciones de
chinchorros selváticos de R. ecuadoriensis en el sur de Ecuador podrían constituir un
riesgo para la reinfestación de las casas y la transmisión persistente de la enfermedad de
Chagas a largo plazo en la región (Grijalva et al., 2009).
En 1997 se dieron a conocer dos casos en las provincias de Loja y Morona Santiago de
pacientes con una enfermedad digestiva grave, de patología asociada a la enfermedad de
8
Chagas en fase crónica. Resultado confirmado por la reacción de la cadena de la
polimerasa (PCR). Sin embargo, en la región amazónica, principalmente en Pastaza y
Morona Santiago, todavía no se han realizado estudios en detalle sobre la prevalencia de
la infección dada por T. cruzi. Posteriormente, un estudio seroepidemiológico realizado en
las provincias de Morona Santiago y Pastaza determinó la prevalencia del 3% de la
enfermedad de Chagas, en tres comunidades: Arajuno, Yuwientsa y Makuma (Aguilar et
al., 2001).
En el estudio realizado por Amunárriz (2010) en el cantón Aguarico en la Amazonía se
obtuvieron 2.033 muestras, de las cuales 73 (3,6%) fueron reactivas para Chagas. Hubo
diferencias importantes en cuanto al porcentaje de muestras reactivas entre las diversas
comunidades de dicho cantón, con variaciones que oscilaron entre 1,4% y 13,3%. En 9 de
las 27 comunidades estudiadas hubo más de 7% de resultados reactivos, donde el 60,3%
de los casos reactivos se encontraron en el sexo femenino, sugiriendo que las mujeres son
más propensas a contraer la enfermedad.
Las áreas endémicas de la enfermedad se encuentran localizadas en las regiones de la
Costa y de la Amazonía, en la provincia de Loja y en las zonas subtropicales de las
provincias de la Sierra. Considerando su alta tasa de infección, se estima que el costo que
esta enfermedad que genera al país es de 20 millones de dólares al año. (Grijalva et al.,
2012)
9
2.1 Marco Teórico
2.1.1 Historia
La Tripanomiasis americana conocida como enfermedad de Chagas, fue descubierta en
Brasil en el año de 1909 por el Dr. Carlos Chagas. La enfermedad es endémica en la
mayoría de los países de América convirtiéndose en un serio problema de salud pública,
con un promedio de 20-25 millones de personas infestadas con el parásito y 6-8 millones
de ellos con alguna manifestación clínica de la forma crónica de la enfermedad. Esta
enfermedad es asintomática, el paciente, el personal de salud y la población en general
ignora la existencia del parásito; tanto en el periodo crónico como en el periodo agudo
(Garrido et al., 2007).
El método tradicional de detección de la enfermedad es a través de la técnica de ELISA
(Enzyme Linked Immunosorbent Assay). Esta técnica fue realizada por primera vez por los
investigadores suecos Eva Engvall y Peter Perlmann, quienes describieron el
procedimiento y lo publicaron en 1971.
2.1.2 Epidemiologia de la enfermedad de Chagas
Garrido et al., (2007) determinaron que el hombre y más de 150 especies de animales
domésticos y silvestres actúan como hospedadores del parásito, por lo cual se ha
considerado una zoonosis causada por T. cruzi, que al inicio se transmitía entre pequeños
mamíferos silvestres, luego fue transmitida a los animales domésticos y a los seres
humanos a través de triatominos. Este tipo de insectos se encuentran geográficamente
distribuidos en regiones tropicales y subtropicales de América, desde el sur de los Estados
Unidos hasta Chile y Argentina. De acuerdo con el trabajo de Garrido et al. (2007) se ha
10
podido demostrar que los ciclos de infestación son especialmente de tipo domiciliaria, el
cual involucra al hombre como huésped definitivo.
En el Ecuador se estima que alrededor de 30.000 y 50.000 personas están infectadas con
el parásito de T. cruzi, y que 3,8 millones están en riesgo de contraer la infección (WHO,
2002; Aguilar et al., 2001). Una de las principales causas para este elevado número de
casos en el Ecuador es la capacidad de los triatominos de poder propagarse en nuevos
ambientes, y la fragilidad de las viviendas en zonas rurales de las diferentes poblaciones
ecuatorianas (Nieto et al., 2015).
2.1.3 Principales formas de transmisión de la enfermedad de Chagas
2.1.3.1 Transmisión congénita
La principal vía de la transmisión vertical es la transplacentaria, que puede ocurrir en
cualquier fase de la enfermedad (Abad-Franch y Aguilar, 2000), y su incidencia varía entre
5 y 40% según el área geográfica (Noireau, 1999).
Este tipo de transmisión puede ocurrir en cualquier momento de la gestación, siendo más
probable en el último trimestre, u ocurrir al pasar por el canal del parto o por el contacto
de las mucosas del feto con la sangre de la madre positiva de la infección (Mazza et al.,
1936; Rassi et al., 2007). La infección materna por T. cruzi afecta al crecimiento y la
madurez de los fetos infectados y puede causar en la embarazada un aborto,
prematuridad, crecimiento intrauterino retardado y malformaciones fetales (Días, 2006).
Costales et al. (2015) determinaron en la región costa una seroprevalencia en mujeres
11
embarazadas del 0,1%, además, no se identificó la trasmisión en niños recién nacidos en la
muestra observada.
2.1.3.5 Transmisión Vectorial
La transmisión vectorial, es la principal vía de contagio de la enfermedad de Chagas, con
un alto índice de transmisión y con mayor número de casos. En este tipo de transmisión,
el insecto Triatomino (chinchorro) es el causante de la trasmisión del parásito T. cruzi
(Zeledón, 1981).
No todos los insectos de la subfamilia Triatominae poseen en sus intestinos T. cruzi, que es
un parásito hemoflagelado que llega al triatomino después de que éste se alimenta de
sangre de animales (silvestres y/o domésticos) o humanos infectados (Blanco et al., 2001).
2.1.4 Otras formas de transmisión
2.1.4.1 Trasmisión Transfusional de Sangre
Freitas et al. (1952) confirmó esta forma de trasmisión, al publicar los dos primeros casos
de pacientes infectados por esta vía. Fue considerada en ese año como la segunda forma
de propagación de la enfermedad en la que los casos fueron significativamente
numerosos.
El contagio por este medio depende de diversos factores: a) sangre donada al paciente, b)
el nivel de parasitemia en el momento de la transfusión, c) el estado del sistema
inmunológico del paciente que recibe la sangre donada y d) la temperatura a la que se
mantiene la sangre del donador (Grijalva et al., 2005 a).
12
2.1.4.2 Transmisión por trasplante de órganos
La Organización Mundial de la Salud (OMS) se ha encargado durante los últimos años de
hacer una observación directa a este tipo de vía de transmisión, debido al aumento de
pacientes donadores de órganos por nuevas leyes y reglamentos internos de cada país. Al
igual que la vía transfusional, esta forma de contagio también depende de varios factores
(Boletín de la Organización Mundial de la Salud, 2009).
El mayor índice de contagio de la enfermedad de Chagas es través de trasplantes de riñón,
con un 35% de incidencia, seguido de trasplantes hepáticos, cardíacos, médula ósea y,
más recientemente, de sangre de cordón umbilical (Márquez et al., 2013). En países de
América, donde la enfermedad es endémica y la incidencia de casos es tan elevada, todos
los órganos a ser trasplantados pasan por una exhaustiva serología para la infección. Lo
que resulta en que el diagnóstico de la infección sea lento, tomando el riesgo de que el
paciente pueda empeorar y su vida quede comprometida (Días y Santos, 2012).
2.1.5 Fases de la Enfermedad de Chagas
2.1.5.1 Fase Aguda de la Enfermedad de Chagas
Esta fase puede ocurrir en un periodo indeterminado de tiempo en el cual la infección es
asintomática, es decir, no presenta síntomas. Ésta se caracteriza por una alto índice de
parasitemia, con una duración aproximada de entre uno o dos meses. En algunos casos
(excepciones) puede presentar un cuadro febril prolongado y persistente, además de
visceromegalias (aumento de tamaño de los órganos internos que se encuentran en el
abdomen: hígado, bazo, estómago, riñones o páncreas). En niños de hasta 10 años, la
13
sintomatología es poco específica, después de pasar por este periodo la infección progresa
a una forma crónica (Nickerson et al; 1989).
En esta fase, se puede observar un nódulo cutáneo que se muestra como un
enrojecimiento de la piel. Generalmente es en el área donde picó el insecto y depositó el
parásito, y es denominado “chagoma” (Jones et al., 1993). Otra afección que puede se
puede presentar es conocida como “romaña”, este signo se observa como una
inflamación del ojo a consecuencia del ingreso del parásito por las heces infectadas de los
triatominos y la manipulación con la mano del paciente cerca del ojo. También puede
ocasionar conjuntivitis y linfadenitis preauricular (Lausi, 1979).
2.1.5.3 Fase indeterminada de la Enfermedad de Chagas
En esta etapa de la enfermedad, la infección es transitoria y la detección del parásito es
aleatoria. Ésta etapa puede durar de 10 a 25 años aproximadamente después de la etapa
aguda. La etapa indeterminada comienza con la reducción de los signos y síntomas de la
fase aguda, con la remisión del número de tripomastigote metacíclicos que se encuentran
en el torrente sanguíneo (Rojas, 2012). Todos los pacientes infectados atraviesan por este
fase indeterminada, pero sólo del 20% al 30% presentarán en su evolución evidencias
clínicas de la enfermedad (Freitas et al., 2005).
2.1.5.4 Fase crónica de la Enfermedad de Chagas
El paso de la fase indeterminada a la fase crónica depende de varios factores, entre los
que podemos mencionar: a) las condiciones de salud, b) la existencia de cepas de mayor
patogenicidad, c) la posibilidad de re-infectarse con diferentes cepas y la cantidad de
14
inoculaciones, d) el tipo de trabajo del paciente e) las condiciones inmunológicas f) el
estado nutricional g) factores de riesgo cardiovasculares agregados (alcoholismo,
tabaquismo, hipertensión arterial) (Kirchhoff, 2011).
Las afectaciones del cuerpo humano en esta fase crónica son principalmente la
cardiopatía, colopatía y esofagopatía. El compromiso de otros órganos es infrecuente,
tales como estómago, duodeno, vejiga, uréteres, etc. En esta etapa existe una parasitemia
baja, con títulos elevados de anticuerpos IgG (si el paciente es inmunocompetente). Se
estima que 30% de los chagásicos tendrían manifestaciones de la fase crónica. El número
de casos en esta fase podría aumentar al emplear métodos diagnósticos más sensibles
(Garrido, 2007).
2.1.6 Ciclo de Vida de Tryponosoma cruzi
T. cruzi es un protozoario hemoflagelado microscópico. En general su cuerpo tiene forma
alargada y está provisto de un flagelo y una membrana ondulante (Noyes, 1998; Barrett et
al., 2003).
Este parásito presenta un kinetoplasto compuesto de microtúbulos que van a lo largo del
soma (fig. 1). El parásito al penetrar al hospedero por lesiones en la piel o la mucosa,
puede invadir una gran variedad de células, donde se transforma para dar lugar al
amastigote, que es la forma reproductiva del parásito (Tay et al., 1991).
La forma amastigote, por lo general se encuentra en el interior de las células de
mamíferos (principalmente en células musculares y nerviosas); es una forma no infectiva,
pero si replicativa, en la cual poseen una forma esférica u ovalada (Miles, 1998). Estas
15
formas se multiplican por fisión binaria longitudinal, y deben darse un número mínimo de
divisiones dentro del tejido infectado, para que este salga de la célula. Cuando el
amastigote sale del tejido, puede tomar dos vías, una en la que se transforma en
tripomastigote, y puede convertirse en infectivo y la segunda que puede continuar como
amastigote e introducirse dentro de un nuevo tejido o célula, para repetir nuevamente su
ciclo (Telleria y Tibayrenc, 2010).
Finalmente, cuando el parásito ingresa al torrente sanguíneo del hospedero se lo conoce
como tripomastigote. Éste toma una apariencia alargada parecida al epimastigote, pero se
lo puede diferenciar por la posición del kinetoplasto posterior al núcleo. Esta fase
transmite la enfermedad debido a que puede diseminarse a otras células y tejidos,
constituyendo así la fase infecciosa del ciclo (Kirszenbaum y Stztein, 1994; Andrade y
Andrews 2005).
Figura 1. Formas celulares de T. cruzi
16
2.1.7 Triatominos en el Ecuador
En Ecuador se han identificado 16 especies de triatominos, de los cuales al menos 7 tienen
una importancia epidemiológica en la transmisión de la enfermedad de Chagas (Abad-
Franch et al., 2001). El último reporte de triatominos confirma la presencia en nuestro país
de R. barretti (Abad-Franch et al., 2013) (Figura 2). Los triatominos ocupan zonas
geográficas con un amplio rango climático, incluyendo zonas de pluviosidad desde 62.5-
125mm/año, en zonas de desierto tropical de hasta 2000-4000mm/año y en zonas de
bosque lluvioso. Sin embargo en los bosques montano bajo con temperaturas entre 12-
18ºC y en zonas costeras de bosques secos tropicales con temperaturas hasta 24-26ºC
(Abad-Franch et al., 2001).
17
Figura 2. Triatomas de Ecuador
Fuente: Abad-Franch, IREKANI, Anabel Padilla
2.1.8 Morfología de los Triatominos
Los triatominos al ser clasificados dentro de la clase Insecta poseen tres segmentos
corporales diferenciados, denominados tagmas, y son: cabeza, tórax y abdomen,
uniformemente recubiertas por un exoesqueleto (Argolo et al., 2008).
En la cabeza se encuentra el aparato bucal, que es también llamado probóscide o rostrum,
es un apéndice chupador que permite la succión de la sangre, y en el momento de
alimentarse toma un ángulo de 90 grados. El reconocimiento de especies hematófagas,
18
predadoras y fitófagas se puede determinar con tan solo ver la forma de la probóscide de
los insectos (Abad-Franch., et al 2001).
En el segundo segmento corporal (tórax) se encuentran las alas que son visibles cuando
estos completan su desarrollo biológico, estas no son tan útiles ya que estos insectos no
son hábiles para el vuelo. Finalmente, el tercer segmento corporal es el abdomen, que en
los adultos está compuesto de 11 segmentos. Los últimos segmentos forman las genitalias
de ambos sexos. La parte que bordea el abdomen muestra un patrón de manchas que
varía en color y formas según la especie.
2.1.9 Ciclo de vida de los triatominos
El ciclo de vida y la dinámica poblacional de los triatominos dependen de la interacción
con su alimento (huéspedes). Por tratarse de insectos hematófagos requieren ingestas de
sangre mensual o incluso semanal, dependiendo de su estadio ninfal. Es necesario que se
alimenten por lo menos una vez antes de cada periodo de muda (Villacís, et al., 2008).
Los triatominos para completar su ciclo biológico deben pasar por cinco estadios ninfales
(NI, NII, NIII, NIV, NV), sin incluir el estadio de huevo (Figura 3); durante los cuales no
presentan alas y son asexuados (inmaduros). Al culminar su proceso ninfal (NV) es decir,
en el estadio adulto, la diferenciación sexual es evidente y se completa el desarrollo alar.
Sin embargo, no son buenos insectos voladores y su desplazamiento es mucho más
efectivo por vía terrestre (Cáceres, 2005).
19
Figura 3. Estadios ninfales y adultos de T. carrioni
Fuente: Padilla A, 2014
20
Figura 4. Mapa de los tres cantones Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan de donde se obtuvieron muestras sanguíneas de mujeres embarazadas de Guayaquil (20), Simón Bolívar (175) y Jujan (5)
Capítulo III
3. Materiales y Métodos
3.1. Área de estudio
El presente estudio se realizó en el Centro de Referencia Nacional de Parasitología del
INSPI-Guayaquil. Se tomaron un total de 200 muestras de sangre de julio a septiembre del
2017, en pacientes embarazadas provenientes de 3 localidades de la provincia del Guayas
(figura 4), del cantón Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan (Anexo 1).
21
3.2. Toma de muestras sanguínea
Se colectó un total de 200 muestras de sangre en mujeres embarazadas. Este proceso
recibió la colaboración del personal del Centro de Referencia Nacional de Parasitología
del INSPI, que estuvieron a cargo de la fase pre analítica, que corresponde la extracción de
2 cc de sangre de cada paciente embarazada. Las muestras de sangre se colocaron en
tubos sin anticoagulante y debidamente rotulados.
Cada muestra se centrifugó (anexo 2) y una vez retraído el coágulo, se separó el suero (de
1ml a 1.5ml aproximadamente) y almacenó en viales rotulados con capacidad de 1.5ml
(anexo 3). Posteriormente, se las almacenó en congelación a – 20°C.
3.3. Revisión de fichas epidemiológicas
Se realizó la elaboración de fichas epidemiológicas de las mujeres embarazadas que
asistieron al laboratorio durante el periodo de muestreo (julio, agosto y septiembre del
2017) en busca de antecedentes clínicos relevantes durante el tiempo de gestación, con lo
que se determinó la presencia o ausencia de manifestaciones clínicas durante el período
de control prenatal (anexo 4).
3.4 Análisis con la técnica de ELISA
La técnica de ELISA es cualitativa, en la cual la muestra se diluye en el soporte en el que se
encuentran inmovilizados antígenos recombinantes, obteniéndose un método de tercera
generación. Estos antígenos se obtienen por técnica de ADN recombinante a partir de
proteínas específicas de los estadios epimastigote y tripomastigote del T. cruzi,
correspondientes a zonas altamente conservadas entre distintas cepas.
22
3.1.4.1 Procedimiento con la técnica de ELISA
Se llevó a temperatura ambiente los reactivos y las muestras de suero antes de iniciar la
prueba (anexo 5). Se procesaron simultáneamente 2 controles positivos (CP), 3 negativos
(CN) y los desconocidos (D). Al depositar la muestra y/o controles sobre el diluyente de
muestras, se aseguró de colocar los mismos en el seno del líquido y no sobre las paredes o
el fondo del pocillo.
En los pocillos de la policubeta se utilizó una micropipeta calibrada en 200 µm para
agregar el diluyente en cada pocillo, y con una micropipeta calibrada en 10 µm se
procedió a depositar la muestra de suero en cada pocillo (anexo 6).
Las muestras de la policubeta cargadas se mezclaron aplicando suaves golpes en los
laterales de cada tira. Para evitar la evaporación, se cubrió la placa e incubó en la estufa
30 minutos a 37°C (anexo 7). Luego se aspiró cuidadosamente el líquido de cada pocillo y
luego fueron descartados en un recipiente para desechos biológicos que contenga 5% de
hipoclorito sódico.
A continuación se procedió a lavar 5 veces cada pocillo con Buffer de lavado (anexo 8)
empleando aproximadamente 300 μL en cada lavado, durante este proceso el líquido se
descartó. Al finalizar el último lavado, se eliminó por completo el líquido residual.
Luego se agregó en cada pocillo 1 gota de conjugado, aplicando suaves golpes en los
laterales de la policubeta durante 10 segundos. Para evitar la evaporación, se cubrió la
placa y se dejó incubar durante 30 minutos en una estufa a 37°C Se aspiró el líquido de los
23
pocillos y fueron colocados en el recipiente con hipoclorito y lavar según se indicó
anteriormente.
Al finalizar el último lavado, se agregó en cada pocillo una gota de revelador A y B (anexo
9). Se mezcló aplicando suaves golpes en los laterales de la policubeta durante 10
segundos y se incubó por 30 minutos a temperatura ambiente.
Para detener la reacción se agregó una gota de Stopper (anexo 10), aplicando suaves
golpes en los laterales de la policubeta y se mezcló durante 10 segundos. Finalmente, se
procedió la lectura del nivel de absorbancia de la muestra con un espectrofotómetro de
densidad óptica a 450 nm o bicromática a 450/620-650 nm (Protocolo de Chagatest ELISA
recombinante v.3.0) (anexo 11).
3.1.4.2 Obtención de los datos
Con instrumento óptico: La presencia o ausencia de anticuerpos anti- T. cruzi se
determina relacionando la absorbancia de la muestra respecto al valor Cut-off.
Cut-off= CN +0,300 D.O.
Donde CN: Promedio de las lecturas del Control Negativo
Zona de indeterminación: Cut-off ± 10%
Muestras no reactivas: se consideran aquellas con absorbancias mayores al límite
superior de la zona de indeterminación.
Muestras indeterminadas: se consideran aquellas con absorbancias que caen dentro de la
zona de indeterminación. Estas muestras deben ser ensayadas nuevamente.
24
Interpretación visual: Si se opta por este tipo de interpretación debe considerarse No
reactiva toda muestra que no presente una coloración mayor que la de los Controles
Negativos. Por el contrario, una muestra netamente amarilla se considera Reactiva.
25
Capítulo IV
4. Resultados
4.1 Resultados del análisis de la muestras de sangre
Se analizó un total de 200 muestras de sangre de mujeres embarazadas que resultaron No
Reactivas para anticuerpos anti T. cruzi. Los resultados obtenidos fueron confirmados por
el personal del Centro de Referencia de Parasitología del INSPI-Guayaquil. Es decir, que no
se detectó la presencia de la enfermedad en los cantones estudiados.
En general, el mayor número de muestras provinieron del cantón Simón Bolívar (175),
seguido de Guayaquil (20) y finalmente Jujan (5).
En el tiempo de estudio, cada paciente llenó una ficha epidemiológica, en busca de
antecedentes clínicos que puedan dar mayor información sobre el paciente y descartar la
ausencia de la enfermedad. El 75% de las pacientes evaluadas no mencionó tener
síntomas de la enfermedad y desconocían del parásito, el 25% mencionó tener síntomas y
conocer de la enfermedad.
4.2 Resultados de la no reactividad de la presencia de la enfermedad de Chagas
Todos los valores obtenidos en las muestras de sangre en este estudio mostraron una
absorbancia por debajo del 10% de la Densidad Óptica del Cut-off que determinó
muestras No Reactivas (anexo 12 al 15).
26
Figura 5. Valor promedio de cut-off de las muestras analizadas de julio-septiembre del 2017
27
5. Discusión
La Enfermedad de Chagas tiene una alta incidencia en zonas rurales, así como en zonas
urbanas, donde existe el riesgo de transmisión vectorial, sino también mediante
transfusiones de sangre y trasmisión congénita.
En el presente estudio se analizó un total de 200 muestras de sangre de mujeres
embarazadas aplicando la técnica serológica de ELISA IGg. Los datos obtenidos fueron no
reactivos para la presencia de anticuerpos de T. cruzi. Lo que sugiere la efectividad de las
campañas de erradicación y fumigación del vector de la enfermedad en la provincia del
Guayas y específicamente en los cantones estudiados, a pesar de que las condiciones del
hábitat favorecían la presencia de la enfermedad.
Sin embargo, el presente estudio difiere con el trabajo de Jiménez (2013) realizado en las
comunidades del cantón Villamil Playas (provincia del Guayas) donde se detectaron 25
casos positivos de la enfermedad durante este estudio. Adicionalmente, se determinó que
el 72.33% de los triatominos de la zona estaban infectados de T. cruzi.
Los factores socio-culturales juegan un papel importante en la prevención y control de la
enfermedad de Chagas. El desconocimiento sobre los métodos de transmisión, el vector,
signos clínicos y consecuencias relacionadas con la enfermedad se pudo constatar durante
este estudio. Estos resultados concuerdan con Castro (2011) en el trabajo realizado en el
cantón Manta (provincia de Manabí), donde se realizaron investigaciones sobre los
diferentes patrones culturales que actúan como factores de riesgo predisponentes para
sufrir la enfermedad de Chagas, lo que se afirma en este estudio por medio de fichas
epidemiológicas se obtuvo que el 75% de las pacientes desconocían de la enfermedad y
28
no tenían síntomas y el 25% de las pacientes conocían de la enfermedad y tenían síntomas
de la enfermedad.
29
6. Conclusión
El T. cruzi es el principal parásito causante de la enfermedad de Chagas que tiene
alta incidencia en la población humana. En este estudio mediante pruebas
serológicas en 200 muestras de sangre en un periodo de julio a septiembre no se
determinó la seroprevelancia de la infección por Elisa IgG en mujeres
embarazadas.
Las muestras obtenidas fueron realizadas mediante la técnica de Elisa, para la
interpretación de los resultados de la determinación de la no reactividad se
relacionó los datos de absorbancia de las muestras de sangre con el valor de cut-
off para indicar la ausencia de anticuerpos anti T. cruzi, sobre un panel de 75
muestras con xenodiagnostico y serología negativa la especificidad es del 98,7%,
no obstante la sensibilidad del método, sus resultados al igual que lo de cualquier
método serológico solo constituye un dato auxiliar para el diagnóstico. Es por esta
razón que los informes deben ser considerados en términos de probabilidad, en
este caso mayor o menor probabilidad de parasitosis por T. cruzi.
30
7. Recomendaciones
Continuar en un tiempo prolongado este tipo de investigación para determinar un
índice de prevalencia de la enfermedad de Chagas en embarazadas en los cantones
de Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan.
Determinar los índices de infección por T. cruzi en los recién nacidos de madres
positivas a Chagas.
Realizar un censo en las viviendas para determinar la presencia u ausencia del
vector.
Determinar la prevalencia de la enfermedad de Chagas en otro tipo de población,
hombres y niños.
Elaborar medidas de control vectorial con la aplicación de insecticidas de acción
residual con el objetivo de eliminar el vector de las viviendas.
31
8. Referencias Bibliográficas
• Abad-Franch F & Aguilar V. MH. (2000). Control de la enfermedad de Chagas en el
Ecuador. Datos y reflexiones para una política de estado. Revista del Instituto Juan Cesar
García 10(1/2):12-32
• Abad-Franch, F; Palomeque, Fs & Aguilar, Hm. (2001). Control de la transmisión
vectorial de la enfermedad de Chagas en el Ecuador. S.e. 63p.
• Abad-Franch F, Pavan M. G., Jaramillo N, Palomeque F. S., Dale C., Chaverra D.,
Monteiro F A. (2013). Rhodnius barretti, a new species of Triatominae (Hemiptera:
Reduviidae) from western Amazonia. Mem Inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro, 108(Suppl.
I): 92-99
• Acha P.N., Szyfres B. (2003). [Pan American Health Organization (PAHO)]. Zoonoses
and communicable diseases common to man and animals. Volume 3. Parasitoses. 3rd ed.
Washington DC: PAHO; Scientific and Technical Publication No. 580. Chagas disease; p. 23
-34.
• Aguilar, H.M., Abad-Franch F., Guevara, A.G., Racines, V. J., Briones, L.A., Reyes,
L.V. (2001). Guía operacional para el control de la enfermedad de Chagas en el Ecuador.
FASBASE- Ministerio de Salud Pública del Ecuador, Quito, Ecuador.
• Amunárriz M, Quito S, Tandazo V, López M. (2010). Seroprevalencia de la
enfermedad de Chagas en el cantón Aguarico, Amazonía ecuatoriana. Rev Panam Salud
Pública.
32
• Andrade L. & Andrews N. (2005). The Trypanosoma cruzi host-cell interplay:
location, invasion, retention. Nat. Rev. Microbiol: 10: 819-23.
• Beltrán M; Duque S.; Guhl F.; Herrera C.; López M.; Moreno A.; Nicholls S &
Santacruz M. (2001). Manual de procedimientos para el diagnóstico de la enfermedad de
Chagas. Eds. F Guhl y S Nicholls. 1 ed. S.e. 98p.
• Bargues M., Marcilla A., Ramsey J., Dujardin J., Schofield C. (2000). Nuclear rDNA-
based molecular clock of the evolution of triatominae (Hemiptera: Reduviidae), vectors of
Chagas disease. Mem. Inst. Oswaldo Cruz 95, 567–573.
• Bargues M., Klisiowicz D., Gonzalez C., Ramsey J., Monroy C., Ponce C., Salazar S.,
Panzera F., Abad F., Sousa O., Schofield C., Dujardin J., Guhl F. (2008). Phylogeography 28
and genetic variations of Triatoma dimidiata, the main Chagas disease vector in Central
America, and its position within the genus Triatoma. PLoS Negl. Trop. Dis. 2, e233.
• Barrett M.P., Burchmore A., Stich J., Lazzari A., Frasch J., Cazzulo S., Krishna. (2003).
The trypanosomiases. Lancet 362: 1469–1480.
• Bern C., (2015). Chagas disease. N. Engl. J. Med. 373, 456–466.
• Boletín de la Organización Mundial de la Salud. (2009). Recopilación de artículos.
Volumen 87., 485-564.
• Blanco S., Catalá S, Rodriguez C, Audisio, Martinez M. (2001). Programa Nacional
de Chagas en Argentina. Coordinación Nacional de Control de vectores. VIGI⁺A. Ministerio
de Salud.
33
• Cáceres A., (2005). Manual de procedimientos de identificación de triatominos
(Hemíptera: Reduviidae) de Perú. Centro Nacional de Salud, Lima, Perú.
• Carrasco F. (1970). Contribución al estudio de Triatoma infestans (Reduviidae,
Heteroptera) en el Perú. Revista Peruana de Entomología; 13(1):9-14.
• Carrera V., C., Narváez O., Muzzio A., Shiguango G., Robles M., Herrera C.,
Dumonteil E., (2015). Seroprevalence of Trypanosoma cruzi infection in school children
and in pregnant women from an Amazonian region in Orellana province, Ecuador.
Am.J.Trop. Med. Hyg. 93, 774–778.
• Calderón S. G., (2013). Seroprevalencia de la enfermedad de Chagas (Trypanosoma
cruzi) en la población escolar e incidencia parasitaria del Triatoma dimidiata en la
parroquia Juan Gómez Rendón, provincia del Guayas.
• Costales J A., Sánchez G. A., Silva A. L. C., Cevallos W, Tamayo S., Yumiseva C A.,
Jerry O. Jacobson, Luiggi M., Carrera C., and Grijalva M J., (2015). A National Survey to
Determine Prevalence of Trypanosoma cruzi Infection among Pregnant Women in
Ecuador. Am. J. Trop. Med. Hyg., 92(4), pp. 807–810
• Defranc I. M., (1982). Enfermedad de Chagas. Casa de la Cultura, Núcleo del
Guayas. 273p.
• Días J.C., (2006). Notas sobre Trypanosoma cruzi y sus características bio-
ecológicas, como agente de enfermedades transmitidas por alimentos. Rev. Soc. Bras
Medicina Tropical 39: 370-5.
34
• Días G. E. & Santos E. S., (2012). Mecanismos de Transmisión del Mal de Chagas.
Profesoras Asociadas de la Facultad de Medicina/UFMG, Ambulatorio de Enfermedad de
Chagas. En línea: http://www.pilarmateo.com/index.php/mecanismos-del-chagas
• Elliot A., Cáceres I., Guillén Z., & Nakashima I. (1989) Identificación de los chinches
triatominos (Hemiptera, Reduviidae) conocidos del Perú. Revista Peruana de Entomología;
31:18-20.
• Fernández T., (2010). Rhodnius ecuadoriensis en transmisión intradomiciliar de
Trypanosoma cruzi, Edu Quil (Ecuador).
• Freitas J., Amato V., Sonntnag R., Biancalana A., Nussenszweig V., Barreto J.,
(1952). Primeiras verificacöes de transmissäo accidental da molestia de Chagas ao homem
por transfusäo de sangre. Rev Paul Med; 40:36-40.
• Freitas H., Chizzola P., Paes A., Lima A., Mansur A., (2005). Risk stratification in a
Brazilian hospital based cohort of 1220 outpatients with heart failure: role of Chagas heart
disease.Int J Cardiol: 102:239–47
• Garrido F., Córdova J., Rivas L. & Montiel L., (2007). Guía para el diagnóstico,
manejo y tratamiento de enfermedad Chagas en fase aguda a nivel de los
establecimientos de salud (en línea). Consultado 2 de oct. 2013. Disponible en
http://www.fundabiomed.fcs.uc.edu.ve/guia_chagas2007.pdf
• Guevara A., Richard D., Atherton, Michael A., Wauters, Vicuña Y.,Nelson P., Prado
J., Hirotomo K., Manuel H., Calvopiña & Yoshihisa Hashiguchi (2013). Tropical Medicine
35
and Health Vol. 41 No. 1, pp. 21-25 doi:10.2149/tmh.2012-31. Estudio Seroepidemiológico
de la Enfermedad de Chagas en el Amazonas Sur Región del Ecuador
• Guhl F., Nichols R., Montoya R., Rosas F., Velasco V., Mora E., Herrera C., Santa
Cruz M., Pinto N., Aguilera G., Salcedo P., Zipa N., Florez J., Olarte A., Castillo G., (2008).
Rápida negativización serológica después del tratamiento etiológico para enfermedad de
Chagas en un grupo de escolares colombianos. Curso de Diagnóstico, Manejo y
Tratamiento de la enfermedad de Chagas OPS/MSF/SSA. 205-212. Consultado en
línea://www.mex.ops-oms.org/documentos/chagas/Capitulo%202.pdf.
• Grijalva Mario J., Chiriboga R., Hans V. & Arcos T., (2005). Improving the safety of
the blood supply in Ecuador through external performance evaluation of serological
screening of blood donors. Journal of Clinical Virology 34 Suppl. 2: S47–S52
• Grijalva M. & Villacis A., (2009). Presence of Rhodnius ecuadoriensis in sylvatic
habitats in the southern highlands (Loja Province) of Ecuador. J. Med. Entomol. 46, 708–
711.
• Grijalva M., Suarez D., Villacis A., Mayorga O. & Dangles O., (2012). Ecological
factors related to the widespread distribution of sylvatic Rhodnius ecuadoriensis
populations in southern Ecuador. Parasit Vectors. 5,17.
• Hoft D.F., (1996). Differential mucosal infectivity of different life stages of
Trypanosoma cruzi. Am J Trop Med Hyg. 55: 360-4.
36
• Jones E., Colley D., Tostes S., Lopes E., Vnencak J. & McCurley T. (1993).
Amplification of a Trypanosoma cruzi DNA sequence from inflammatory lesions in human
chagasic cardiomyopathy. Am J Trop Med Hyg 48, 348-57?
• Kirszenbaum F. & Stztein M. (1994). Chagas´ disease (American Trypanosomiasis),
Parasitic Infection of the Immune System, Cap. 2, 53-85
• Kirchhoff L. (2011). Chagas’ disease. In: Goldman L, Schafer AI, eds. Cecil Medicine.
24th ed. Philadelphia, Pa: Saunders Elsevier; chap 355.
• Lausi L. (1979). II Jornadas de entomoepidemiologia Argentina, 3, Buenos Aires
1965 y 39’ Lugones y Ledesma Anales Nestle, parasitosis, 134: 124, Buenos Aires.
• Larreategui D., (2011). Obtenido de Enfermedad de Chagas en el Ecuador 100 años
de historia. Actualización 2011: http://es.scribd.com/doc/50321101/Revision-Chagas-100-
años-en-Ecuador
• Lee B., Bacon K., Bottazzi M. & Hotez P., (2013). Global economic burden of Chagas
disease: a computational simulation model. Lancet Infect. Dis. 13, 342–348.
• Márquez E., Crespo M., Mir M., Pérez S., Salvador Q., Barbosa F., Pascual J., (2013).
Enfermedad de Chagas y donación renal. Chagas' disease and kidney donation. Servicio de
Nefrología, Hospital del Mar, Passeig Marítim, 25-29, 08003, Barcelona.
• Mazza S., Montana A., Benitez C. & Juzin E., (1936). Transmisión de
"Schizotrypanum cruzi" al niño por leche de la madre con enfermedad de Chagas. Misión
de Estudios de Patología Regional Argentina (MEPRA) 28: 41-46.
37
• Miles M. (1998). New World Trypanosomiasis, pp. 238-302 en (Collier L, Balows A,
Sussman M Ed.) Microbiology and Microbial Infections, Vol. 5: Parasitology, 9th Edition,
Topley & Wilson’s, Reino Unido.
• Monteiro W., Margioto A., Gruendling A., Reis D., Gomes M., Marquez A.,
Terezinha M., Laylah K., De Oliveira J., Silveira H., Ornelas M., & Vale M., (2013).
Trypanosoma cruzi I and IV stocks from brazilian amazon are divergent in terms of
biological and medical properties in mice. Plos Negl Trop Dis. Vol. 7(2):e2069.
• Nieto S., Baus E., Guerrero D., & Grijalva M., (2015). Positive deviance study to
inform a Chagas disease control program in southern Ecuador. Mem Inst Oswaldo Cruz.
110: 299–309.
• Nickerson P., Orr P., Schroeder J., Sekla L., & Johnston J., (1989). Transfusion-
associated Trypanosoma cruzi infection in a non-endemic area. Ann Intern Med; 111:851-
3
• Noireau F., (1999). La Enfermedad de Chagas y sus particularidades
epidemiológicas en Bolivia. En: Chagas. La enfermedad de Bolivia. Conocimientos
científicos al inicio del programa de control (1998-2002). (J. Cassab, F. Noireau, G. Guillén,
eds). Ediciones Gráficas, La Paz, Bolivia.
• Noyes H. (1998). Can Trypanosoma trees be trusted? Parasitol, 14:49–50.
• Organización Panamericana de la Salud, (2009). Guía para vigilancia, prevención,
control y manejo clínico de la enfermedad de Chagas aguda transmitida por alimentos.
38
• Rassi A., & Luquetti A., (2007). Specific treatment for Trypanosoma cruzi: lack of
efficacy of allopurinol in the human chronic phase of Chagas disease. Am J Trop Med Hyg.
76:58–61.
• Rojas P., (2012). Boletín epidemiológico de eventos transmitidos por vectores y
zoonosis No. 10. Secretaría de Salud Municipal. Cali- Colombia
• Rodríguez J., (1959). Epidemiología de la enfermedad de Chagas en la república del
Ecuador. Rev. Ecuat. de Hig. y Med. Trop. Vol. 16 (3): 158-180.
• Tay J., Lara R., Velazco O., & Gutiérrez M., (1991). Parasitología Médica 5a. ed.
México; Méndez Cervantes;. p. 112-22.
• Telleria J., & Tibayrenc M. (2010). American Trypanosomiasis Chagas Disease One
Hundred Years of Research. Elsevier 32 Jamestown Road London NW1 7BY. 14: 339-352
• Villacís A., Arcos T., & Grijalva M., (2008). Life cycle, feeding and defecation
patterns of Rhodnius ecuadoriensis (Lent & León 1958) (Hemiptera: Reduviidae:
Triatominae) under laboratory conditons. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 103: 690-
695.
• World Health Organization (WHO). (2002). Control of Chagas disease. Second
report of the WHO Expert, committee. WHO Technical Report Series, 905, VI+109 pp.
• World Health Organization (WHO). (2015). La enfermedad de Chagas
(Tripanosomiasis americana. Nota descriptiva N°340.Consultado en línea:
http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs340/es/14/08/2015
39
• Yánez E., (2011). Estudio de las alteraciones tisulares en placentas de madres con
enfermedad de Chagas crónica asintomática, Santiago-Chile.
• Zeledón R. (1981). Vectores de la enfermedad de Chagas y sus características eco
fisiológicas. Interciencia 8: 384-394.
40
Anexos
CANTONES SECTORES
Guayaquil
Mapasingue este, coop. Pancho Jácome, coop
Cordillera el Cóndor, Valerio Estacio, coop. Reinaldo
Quiñonez, coop. Sergio Toral, coop Leónidas Proaño,
El Fortín, Francisco Jácome, la Florida, horizontes del
Fortín, las Acacias, Urbanor, las Rocas.
Simón Bolívar.
rcto el Arenero, rcto San Antonio, cdla San Pedro de
Venecia, rcto Los Ángeles, cdla Santa Martha, rcto
Soledad, coop Primero de Mayo, cab Jujan, rcto Tres
Postes, cdla Barrio Lindo, rcto La Providencia, rcto La
Porfia, cdla Laureles 1, cdla Miraflores, rcto San José,
rcto Las Agujas, rcto Manuel Wole, rcto Pajonal
Norte, rcto el Achiote, rcto Mamanica, rcto la
Toquilla, coop. 10 de Abril, cdla 3 de Septiembre,
cdla Manuelita Sáenz, rcto Mata de plátano, rcto Flor
del Limonal, rcto San Luis, rcto Palo de leche, cdla
San Jacinto, rcto La Toquilla, rcto las Aguas, barrio El
Malecón, cdla 12 de Octubre, rcto el Azote, rcto el
Rosario, rcto Dos puertas, rcto el Carmen, rcto el
Paraíso, rcto Ñauza, rcto Soledad
Jujan Jujan
Anexo 1. Sectores de los tres cantones Guayaquil, Simón Bolívar, Jujan
41
Anexo 3. Muestras de suero debidamente rotulados en los viales
Anexo 2. Centrifugación de las muestras
42
Anexo 4. Ficha epidemiológica
43
Anexo 5. Muestras y activos a temperatura ambiente
Anexo 6. Agregando las muestras en cada pocillo
Anexo 7. Colocando las muestras en la estufa
44
Anexo 8. Preparación del buffer de lavado
Anexo 10. Reactivo Stopper
Anexo 9. Revelador A- Revelador B
45
Anexo 11. Leer muestras en espectrofotómetro
46
CODIGO SEXO EDAD DIRECCION CIUDAD TECNICA MUESTRA D.O RESULTADOS
1062 F 31 Mapasingue este Guayaquil ELISA SUERO 0.002 NR
1070 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1071 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1072 F 32 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1073 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1074 F 29 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1076 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1077 F 17 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1078 F 26 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.146 NR
1079 F 14 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.078 NR
1080 F 33 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1081 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1082 F 26 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1083 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1084 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1085 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1086 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.002 NR
1087 F 27 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.002 NR
1088 F 22 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.199 NR
47
1089 F 17 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1090 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1091 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1092 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1093 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1094 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1095 F 24 Guayaquil Guayaquil ELISA SUERO 0.004 NR
1096 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.118 NR
1097 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1101 F 25 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1102 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.002 NR
1103 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.117 NR
1104 F 36 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1106 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1107 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1108 F 22 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1109 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1110 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
1111 F 35 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1112 F 18 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.010 NR
1113 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
48
1114 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1115 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1116 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1117 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1118 F 17 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1119 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1120 F 27 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1121 F 31 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1122 F 28 Rcto. El Arenero Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1123 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1124 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1125 F 39 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1126 F 32 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1127 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1128 F 36 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1129 F 22 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1130 F 18 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1131 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1135 F 32 Mapasingue este Guayaquil ELISA SUERO 0.002 NR
1136 F 17 Coop. Pancho Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1143 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
49
1144 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1145 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1146 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1147 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1148 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1149 F 19 Coop. Cordillera el cóndor Guayaquil ELISA SUERO 0.007 NR
1150 F 21 Valerio Estacio Guayaquil ELISA SUERO 0.004 NR
1154 F 21 Mapasingue este Guayaquil ELISA SUERO 0.003 NR
1156 F 15 Coop. Reinaldo Quiñonez Guayaquil ELISA SUERO 0.006 NR
1157 F 34 Coop. Reinaldo Quiñonez Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1158 F 15 Mapasingue este Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1160 F 17 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1161 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1162 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1163 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
1164 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1165 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1166 F 27 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1167 F 27 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1168 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1169 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
50
1170 F 25 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1171 F 26 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1172 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.011 NR
1173 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1174 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1175 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1176 F 22 Rcto. San Antonio Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
Anexo 12. Datos de las embarazadas del mes de julio del 2017
51
CODIGO SEXO EDAD DIRECCION CIUDAD TECNICA MUESTRA D.O RESULTADOS
1189 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1190 F 34 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1191 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.010 NR
1192 F 17 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1193 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1194 F 37 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1195 F 20 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1196 F 24 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1197 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1198 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1199 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1200 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
1201 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1202 F 15 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1203 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1204 F 16 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1210 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1211 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1212 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
1220 F 25 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
52
1221 F 25 Cdla. San Pedro de
Venecia Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1222 F 15 Rcto. Los Ángeles Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1223 F 21 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1224 F 29 Cdla. Santa Martha Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1225 F 22 Rcto. Soledad Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1226 F 20 Coop. 1ro de Mayo Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1227 F 30 Cab. Jujan Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1228 F 16 Rcto. Tres Postes Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1229 F 29 Cdla. Barrio Lindo Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1230 F 30 Rcto. La Providencia Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1231 F 21 Rcto. La Porfia Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1232 F 24 Rcto. La Porfia Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1235 F 37 Coop. Sergio Toral Guayaquil ELISA SUERO 0.003 NR
1238 F 20 Coop. Leónidas Proaño Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1239 F 34 El Fortín Guayaquil ELISA SUERO 0.007 NR
1241 F 23 Francisco Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1246 F 35 Cdla. Laureles 1 Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1247 F 31 Cdla. Miraflores Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1248 F 21 Rcto. San José Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1249 F 17 Rcto. Las Guajas Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
53
1250 F 32 Rcto. Manuel Wole Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1253 F 37 Rcto. Pajonal Norte Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1256 F 29 Coop. Cordillera del Cóndor Guayaquil ELISA SUERO 0.009 NR
1261 F 24 Pancho Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.007 NR
Anexo 13. Datos de las embarazadas del mes de agosto del 2017
54
CODIGO SEXO EDAD DIRECCION CIUDAD TECNICA MUESTRA D.O RESULTADOS
1271 F 30 Mapasingue Este Guayaquil ELISA SUERO 0.003 NR
1276 F 20 Coop. Sergio Toral Guayaquil ELISA SUERO 0.004 NR
1277 F 34 La Florida Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1278 F 17 Horizontes del Fortín Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1279 F 37 Mapasingue Este Guayaquil ELISA SUERO 0.003 NR
1291 F 17 Rcto. El Achiote Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1292 F 38 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1293 F 20 Rcto. Mamanica Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1294 F 14 La Toquilla Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1295 F 20 Coop. 10 de Abril Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1296 F 18 Rcto. La Providencia Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1297 F 32 Cdla. 3 de
Septiembre Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1298 F 15 Cdla. Manuelita
Sáenz Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1299 F 23 Rcto. Mata de
Plátano Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1300 F 16 Rcto. Flor del Limonal Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1305 F 40 Pancho Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1306 F 26 Las Acacias Guayaquil ELISA SUERO 0.007 NR
1313 F 18 Fco. Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.009 NR
55
1315 F 20 Urbanor Guayaquil ELISA SUERO 0.003 NR
1317 F 21 Cab. Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1318 F 17 Rcto. San Luis Simón Bolívar ELISA SUERO 0.007 NR
1319 F 36 Cdla. Miraflores Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1320 F 24 Palo de Leche Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1321 F 32 Cdla. San Jacinto Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1322 F 20 Rcto. Mamanica Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1323 F 20 Rcto. La Toquilla Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1324 F 20 Rcto. Las Aguas Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1325 F 28 Av. 16 de Febrero Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1326 F 22 Barrio Apolo Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1327 F 23 Rcto. La Facundo Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1328 F 20 Cab. Jujan Simón Bolívar ELISA SUERO 0.008 NR
1329 F 14 Barrio El Malecón Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1332 F 22 Las Rocas Guayaquil ELISA SUERO 0.004 NR
Anexo 14. Datos de las embarazadas del mes de septiembre del 2017
56
CODIGO SEXO EDAD DIRECCION CIUDAD TECNICA MUESTRA D.O RESULTADOS
1341 F 29 Cdla. 12 de Octubre Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1342 F 16 Rcto. El Azote Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1343 F 22 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1344 F 21 Rcto. El Rosario Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1345 F 17 Rcto. Mamanica Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1346 F 32 Rcto. Mamanica Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1347 F 21 Jujan Jujan ELISA SUERO 0.004 NR
1348 F 17 Rcto. Dos Puertas Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1349 F 34 Jujan Jujan ELISA SUERO 0.006 NR
1350 F 16 Jujan Jujan ELISA SUERO 0.006 NR
1351 F 18 Rcto. El Carmen Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1352 F 20 Rcto. El Paraíso Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1353 F 24 Tres Postes Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1354 F 14 Ñauza Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1355 F 24 Jujan Jujan ELISA SUERO 0.003 NR
1356 F 15 Jujan Jujan ELISA SUERO 0.005 NR
1357 F 19 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1358 F 26 Soledad Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1359 F 23 Soledad Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
57
1360 F 22 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.004 NR
1372 F 21 Cdla. Las Acacias Guayaquil ELISA SUERO 0.004 NR
1373 F 26 Fco. Jácome Guayaquil ELISA SUERO 0.005 NR
1379 F 17 Rcto. Tres Postes Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1380 F 22 Coop. 10 de Abril Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1381 F 35 Coop. Jujan Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1382 F 27 San Pedro Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1383 F 19 Cdla. Las Malvinas Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1384 F 23 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.003 NR
1385 F 26 Cab. Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1386 F 19 Cdla. 3 de
Septiembre Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
1387 F 19 Rcto. Puente de
Ñauza Simón Bolívar ELISA SUERO 0.010 NR
1388 F 20 Rcto. Soledad Simón Bolívar ELISA SUERO 0.006 NR
1389 F 30 Simón Bolívar Simón Bolívar ELISA SUERO 0.005 NR
1390 F 34 Cdla. Miraflores Simón Bolívar ELISA SUERO 0.009 NR
Anexo 15. Datos de las embarazadas del mes de septiembre del 2017