Universidad de CuencaFacultad de Ciencias Agropecuarias

Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia

Bacteriología y Micología

María Estela Encalada Paredes

Recipientes aprobados para desperdicios de riesgo biológico

Nivelesde Bioseguridad

1

2

3

4

RELACIÓN DE LOS GRUPOS DE RIESGO CON NIVELES DE BIOSEGURIDAD

TIPO DE LABORATORIO, PRÁCTICAS Y EQUIPOS

FASES EN LA REALIZACION

Fase Pre analítica

Fase Analítica

Fase Post analítica

FASE PRE-ANALITICA Evaluación del paciente o

especímenes

Solicitud de pruebas.

Selección del especimen: recolección, conservación, empaque, envío, transporte y recepción de muestras en el laboratorio

FASE ANALÍTICA

Revisión y ejecución de métodos y técnicas de laboratorio e interpretación de los resultados

FASE POST- ANALÍTICA

Introducción de resultados, mediante diferentes formas de producción científica: informes, ensayos, casos clínicos, monografía, tesina, tesis, etc.

Canalización de los resultados a diferentes instituciones, empresas, como también a profesionales con trabajo independiente.

Normas generales

Identificación de las muestras

Consideraciones generales

Historiaclínica

Vestimenta

Instrumental

Proce

dimiento

s

Especie Sitio de punción Calibre/Longitud (pulgadas)

Equinos V. Yugular 14 - 18/ 2.5 – 3.0

Bovinos V. Yugular, coxígea, ventral o subcutánea, abdominal

14 - 18/ 2.5 – 3.0

Ovinos V. Yugular 16 - 18/ 2.5 – 3.0

Caprinos V. Yugular 16 - 18/ 2.5 – 3.0

Porcinos V. Cava anterior, auricular externa 19 - 21/ 1.5 – 4.0

Aves Cardíaca, V. Radial 21 - 27/ 1.0

Hámster Cardíaca 22 – 25/ 1.5

Caninos Cefálica. Safena 20 – 22/ 1.5

Felinos Femoral. Cefálica. Safena 20 – 22/ 1.0

Conejos Cardíaca, V. Yugular, auricular 19 – 23/ 2.0

Cuyes Cardíaca 22 – 25/ 2.5

Conservación

Doble caja Externa e interna

Gel refrigerante

Hielo: seco, natural

Para coprocultivo

Para bacterias anaerobias

AMIESCarbón activado y sin carbón activado

TIOGLICOLATO SÓDICO

CARY BLAIR

FORMOL AL 10% AMORTIGUADO

Para histopatología

MEDIOS DE TRANSPORTE

Hisopo con muestra (medio Stuart)

MEDIOS DE TRANSPORTE

MEDIOS DE TRANSPORTE

Toma de muestras con hisopos cloacales para ver la prevalencia de Campylobacter en granjas de broilers

RECIPIENTES SEGÚN TIPO DE MUESTRAS PARA CULTIVO

Sangre: en botella de hemocultivo/ en tubo estéril con anticoagulante

Otros (LCR, articulares, pleurales, etc): en tubo estéril/ en medio de cultivo (BHI caldo)/ en jeringa estéril con aguja sellada (caucho o corcho).

Orina: frasco estéril en refrigeración

Leche: tubo estéril en refrigeración

Tejidos y órganos: frasco estéril en refrigeración/ solución estéril de glicerina al 50% en solución salina.

Coprocultivos: hisopo (cotonete) de heces en recipiente (tubo) con medio de CARY BLAIR

Bolsas de Riesgo Biológico

http://images.google.com.ec/imgres?imgurl=http://www.geroa.org/wp-content/uploads/635.jpeg&imgrefurl=http://www.geroa.org/?p=333&h=556&w=559&sz=77&hl=es&start=4&usg=__-tgmJQgs7GOYJJPaIG0n-CY23l0=&tbnid=Ro7VRSCPiZk73M:&tbnh=132&tbnw=133&prev=/images?q=ovino&gbv=2&hl=es

MUESTRAS PARA CULTIVO BACTERIOLÓGICO

Tejidos y órganos

Hisopos

Heces

Leche

Orina

Cerebro

ENFERMEDADES QUE REQUIEREN CONSIDERACIONES ESPECIALES

1. Antrax (carbón bacteridiano)2. Pierna negra (carbón sintomático)3. Edema maligno4. Metritis equina contagiosa5. Enterotoxemia clostridial6. Paratuberculosis (Enfermedad de

Johne)7. Micoplasmosis8. Disentería porcina9. Campilobacteriosis10.Brucelosis

Micosis superficiales

Micosis profundas

Muestras de alimentosCult

ivos

mic

óti

cos

HEMOCULTIVOS

CONDICIONES CLÍNICAS QUE SUGIEREN UNA INFECCIÓN POR ANAEROBIOS

• Exudados mal olientes.• Infecciones profundas causadas por la penetración de una mucosa o piel.• Tejido necrótico, gangrena o formación de una pseudomembrana.• Gas en el tejido o exudado.• Endocarditis con hemocultivo negativo.• Infección asociada con una condición maligna u otra enfermedad que

produce destrucción de tejido y afecta la circulación.• Heridas causadas por mordedura.• Abscesos o infecciones que no responden a terapia con gentamicina u

otros aminoglucósidos.• Pleuritis séptica, neumonía por aspiración.• Fracturas asociadas con trauma grave de tejidos.• Infecciones asociadas con cirugías del sistema gastrointestinal.• Procesos sépticos como el piometra.

CULTIVOS ANAEROBIOS

MUESTRAS ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIO

• Líquidos corporales normalmente estériles (pleural, peritoneal, LCR, bilis, líquido articular).

• Muestras quirúrgicas de lugares normalmente estériles.

• Muestras de abscesos y aspirados de heridas profundas.

• Aspirados trans-traqueales.

• Sangre recolectada apropiadamente.

Viales y tubos con atmósfera anaerobia y base de agar con indicador para transporte de líquidos o hisopos

RECIPIENTES PARA ANAEROBIOS

Hisopos con atmósfera anaerobia

Tubos con atmósfera anaerobia y medio de transporte prerreducido para líquidos e hisopos

MUESTRAS NO ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIO

• Saliva

• Muestras cervicales o vaginales.

• Heces.

• Exudados traqueales, naso traqueales y faríngeos.

• Efluentes de ileostomía y colestomía.

• Piel y exudados de heridas superficiales.

• Muestras de orina excepto las obtenidas por punción.

MUESTRA DEAGUA

Frascos estériles de boca ancha Evitando al máximo la contaminación

ANÁLISIS DE AGUA

Si el tiempo de traslado de la muestra de agua al laboratorio excede más de seis

horas, mantener a tº entre 6-10 ºC;

Esto evita valores falsos

ANÁLISIS DE AGUA

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE LECHE AL LABORATORIO

Para estudio bacteriológico:

• Lavar, enjuagar y secar la ubre.• Con una solución de alcohol al 70% desinfectarse las manos.• Con la misma solución y utilizando algodón desinfectar los pezones. Dejar

secar durante dos minutos.• Ordeñar recogiendo 3 mL aproximadamente, en un recipiente estéril sin

tocar los bordes, tomando proporcionalmente de todos los cuartos.• En casos de que la infección esté plenamente localizada en uno de los

cuartos, o se requiera localizar el cuarto afectado, siguiendo las mismas recomendaciones, tomar 2 a 3 mL de leche del cuarto afectado, o de cada uno por separado.

• Identificar las muestras correctamente y mantenerlas refrigeradas hasta su llegada al laboratorio.

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HERIDAS ABIERTAS Y EXUDADOS AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ABSCESOS, EDEMAS Y LÍQUIDO ARTICULAR AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE ÓRGANOS Y TEJIDOS AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE EXUDADO PREPUCIAL AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SEMEN AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE FETO Y PLACENTA AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SECRECIÓN VAGINAL AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HECES FECALES AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE TEJIDOS (HISTOPATOLOGÍA) AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ORINA AL LABORATORIO

TOMA Y ENVÍO DE SANGRE AL LABORATORIO

• Consideraciones generales para la toma de muestras de sangre.

• Para exámenes hematológicos.

• Frotis sanguíneo.

• Para estudio químico o serológico

• Para estudio bacteriológico

• Para pruebas de coagulación

Cerdos

Método para obtener sangre de la vena cava superior de un cerdo

VenaMarginal

Bovinos

Yugular

Coccígea

Ovinos

Yugular

1

2

3

5

4

6

Equinos

Yugular

Perros

Yugular

Método para obtener sangre de la vena yugular de un perro

Obtención de la sangre de la yugular del perro

Cefálica

Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro

Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro

Gatos

Femoral

Método para obtener sangre de la vena femoral de un gato

Conejos

Auricular

VENA MARGINAL DE LA OREJA DE CONEJO

Aves

Yugular

Radial

CubitalCutánea

Metatarsal

Animales silvestres

Se inclinan tubos

Sin anticoagulante

Norefrigeración

24 horas

CongelarSin coágulo

Varios días,suero

Correcta retracción del coágulo

ANEXOS

Disección Apertura de la cavidad torácica

Apertura de la cavidad abdominal.

Extracción de pulmones y traquea.

Intestino con extremos anudados

Toma de hígado ovino

Toma: contenido del cuajar ovino

Toma: líquido torácico ovino

Toma: muestra nasal, porcino

155

Muchas gracias