Toma, conservación y envío de muestras de animales
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Universidad de Cuenca Facultad de Ciencias Agropecuarias Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia Bacteriología y Micología María Estela Encalada Paredes
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Toma, conservación y envío de muestras de animales
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Universidad de CuencaFacultad de Ciencias Agropecuarias
Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia
Bacteriología y Micología
María Estela Encalada Paredes
Recipientes aprobados para desperdicios de riesgo biológico
Nivelesde Bioseguridad
1
2
3
4
RELACIÓN DE LOS GRUPOS DE RIESGO CON NIVELES DE BIOSEGURIDAD
TIPO DE LABORATORIO, PRÁCTICAS Y EQUIPOS
FASES EN LA REALIZACION
Fase Pre analítica
Fase Analítica
Fase Post analítica
FASE PRE-ANALITICA Evaluación del paciente o
especímenes
Solicitud de pruebas.
Selección del especimen: recolección, conservación, empaque, envío, transporte y recepción de muestras en el laboratorio
FASE ANALÍTICA
Revisión y ejecución de métodos y técnicas de laboratorio e interpretación de los resultados
FASE POST- ANALÍTICA
Introducción de resultados, mediante diferentes formas de producción científica: informes, ensayos, casos clínicos, monografía, tesina, tesis, etc.
Canalización de los resultados a diferentes instituciones, empresas, como también a profesionales con trabajo independiente.
Normas generales
Identificación de las muestras
Consideraciones generales
Historiaclínica
Vestimenta
Instrumental
Proce
dimiento
s
Especie Sitio de punción Calibre/Longitud (pulgadas)
Equinos V. Yugular 14 - 18/ 2.5 – 3.0
Bovinos V. Yugular, coxígea, ventral o subcutánea, abdominal
14 - 18/ 2.5 – 3.0
Ovinos V. Yugular 16 - 18/ 2.5 – 3.0
Caprinos V. Yugular 16 - 18/ 2.5 – 3.0
Porcinos V. Cava anterior, auricular externa 19 - 21/ 1.5 – 4.0
Aves Cardíaca, V. Radial 21 - 27/ 1.0
Hámster Cardíaca 22 – 25/ 1.5
Caninos Cefálica. Safena 20 – 22/ 1.5
Felinos Femoral. Cefálica. Safena 20 – 22/ 1.0
Conejos Cardíaca, V. Yugular, auricular 19 – 23/ 2.0
Cuyes Cardíaca 22 – 25/ 2.5
Conservación
Doble caja Externa e interna
Gel refrigerante
Hielo: seco, natural
Para coprocultivo
Para bacterias anaerobias
AMIESCarbón activado y sin carbón activado
TIOGLICOLATO SÓDICO
CARY BLAIR
FORMOL AL 10% AMORTIGUADO
Para histopatología
MEDIOS DE TRANSPORTE
Hisopo con muestra (medio Stuart)
MEDIOS DE TRANSPORTE
MEDIOS DE TRANSPORTE
Toma de muestras con hisopos cloacales para ver la prevalencia de Campylobacter en granjas de broilers
RECIPIENTES SEGÚN TIPO DE MUESTRAS PARA CULTIVO
Sangre: en botella de hemocultivo/ en tubo estéril con anticoagulante
Otros (LCR, articulares, pleurales, etc): en tubo estéril/ en medio de cultivo (BHI caldo)/ en jeringa estéril con aguja sellada (caucho o corcho).
Orina: frasco estéril en refrigeración
Leche: tubo estéril en refrigeración
Tejidos y órganos: frasco estéril en refrigeración/ solución estéril de glicerina al 50% en solución salina.
Coprocultivos: hisopo (cotonete) de heces en recipiente (tubo) con medio de CARY BLAIR
Bolsas de Riesgo Biológico
MUESTRAS PARA CULTIVO BACTERIOLÓGICO
Tejidos y órganos
Hisopos
Heces
Leche
Orina
Cerebro
ENFERMEDADES QUE REQUIEREN CONSIDERACIONES ESPECIALES
1. Antrax (carbón bacteridiano)2. Pierna negra (carbón sintomático)3. Edema maligno4. Metritis equina contagiosa5. Enterotoxemia clostridial6. Paratuberculosis (Enfermedad de
Johne)7. Micoplasmosis8. Disentería porcina9. Campilobacteriosis10.Brucelosis
Micosis superficiales
Micosis profundas
Muestras de alimentosCult
ivos
mic
óti
cos
HEMOCULTIVOS
CONDICIONES CLÍNICAS QUE SUGIEREN UNA INFECCIÓN POR ANAEROBIOS
• Exudados mal olientes.• Infecciones profundas causadas por la penetración de una mucosa o piel.• Tejido necrótico, gangrena o formación de una pseudomembrana.• Gas en el tejido o exudado.• Endocarditis con hemocultivo negativo.• Infección asociada con una condición maligna u otra enfermedad que
produce destrucción de tejido y afecta la circulación.• Heridas causadas por mordedura.• Abscesos o infecciones que no responden a terapia con gentamicina u
otros aminoglucósidos.• Pleuritis séptica, neumonía por aspiración.• Fracturas asociadas con trauma grave de tejidos.• Infecciones asociadas con cirugías del sistema gastrointestinal.• Procesos sépticos como el piometra.
CULTIVOS ANAEROBIOS
MUESTRAS ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIO
• Líquidos corporales normalmente estériles (pleural, peritoneal, LCR, bilis, líquido articular).
• Muestras quirúrgicas de lugares normalmente estériles.
• Muestras de abscesos y aspirados de heridas profundas.
• Aspirados trans-traqueales.
• Sangre recolectada apropiadamente.
Viales y tubos con atmósfera anaerobia y base de agar con indicador para transporte de líquidos o hisopos
RECIPIENTES PARA ANAEROBIOS
Hisopos con atmósfera anaerobia
Tubos con atmósfera anaerobia y medio de transporte prerreducido para líquidos e hisopos
MUESTRAS NO ADECUADAS PARA CULTIVO ANAEROBIO
• Saliva
• Muestras cervicales o vaginales.
• Heces.
• Exudados traqueales, naso traqueales y faríngeos.
• Efluentes de ileostomía y colestomía.
• Piel y exudados de heridas superficiales.
• Muestras de orina excepto las obtenidas por punción.
MUESTRA DEAGUA
Frascos estériles de boca ancha Evitando al máximo la contaminación
ANÁLISIS DE AGUA
Si el tiempo de traslado de la muestra de agua al laboratorio excede más de seis
horas, mantener a tº entre 6-10 ºC;
Esto evita valores falsos
ANÁLISIS DE AGUA
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE LECHE AL LABORATORIO
Para estudio bacteriológico:
• Lavar, enjuagar y secar la ubre.• Con una solución de alcohol al 70% desinfectarse las manos.• Con la misma solución y utilizando algodón desinfectar los pezones. Dejar
secar durante dos minutos.• Ordeñar recogiendo 3 mL aproximadamente, en un recipiente estéril sin
tocar los bordes, tomando proporcionalmente de todos los cuartos.• En casos de que la infección esté plenamente localizada en uno de los
cuartos, o se requiera localizar el cuarto afectado, siguiendo las mismas recomendaciones, tomar 2 a 3 mL de leche del cuarto afectado, o de cada uno por separado.
• Identificar las muestras correctamente y mantenerlas refrigeradas hasta su llegada al laboratorio.
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HERIDAS ABIERTAS Y EXUDADOS AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ABSCESOS, EDEMAS Y LÍQUIDO ARTICULAR AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE ÓRGANOS Y TEJIDOS AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE EXUDADO PREPUCIAL AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SEMEN AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE FETO Y PLACENTA AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE SECRECIÓN VAGINAL AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE HECES FECALES AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE TEJIDOS (HISTOPATOLOGÍA) AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE MUESTRAS DE ORINA AL LABORATORIO
TOMA Y ENVÍO DE SANGRE AL LABORATORIO
• Consideraciones generales para la toma de muestras de sangre.
• Para exámenes hematológicos.
• Frotis sanguíneo.
• Para estudio químico o serológico
• Para estudio bacteriológico
• Para pruebas de coagulación
Cerdos
Método para obtener sangre de la vena cava superior de un cerdo
VenaMarginal
Bovinos
Yugular
Coccígea
Ovinos
Yugular
1
2
3
5
4
6
Equinos
Yugular
Perros
Yugular
Método para obtener sangre de la vena yugular de un perro
Obtención de la sangre de la yugular del perro
Cefálica
Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro
Método para obtener sangre de la vena cefálica de un perro
Gatos
Femoral
Método para obtener sangre de la vena femoral de un gato
Conejos
Auricular
VENA MARGINAL DE LA OREJA DE CONEJO
Aves
Yugular
Radial
CubitalCutánea
Metatarsal
Animales silvestres
Se inclinan tubos
Sin anticoagulante
Norefrigeración
24 horas
CongelarSin coágulo
Varios días,suero
Correcta retracción del coágulo
ANEXOS
Disección Apertura de la cavidad torácica
Apertura de la cavidad abdominal.
Extracción de pulmones y traquea.
Intestino con extremos anudados
Toma de hígado ovino
Toma: contenido del cuajar ovino
Toma: líquido torácico ovino
Toma: muestra nasal, porcino
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Muchas gracias
