Índice
• 1.- Amebas de vida libre.
• 1.1.- Naegleria fowleri.
• 1.2.- Acanthamoeba sp.
• 1.3.- Balamuthia mandrillaris.
• 2.- Epidemiología.
• 3. Control.
AMEBAS DE VIDA LIBRE (AVL) Amebas que viven libremente en el aire, aire
acondicionado, suelo, ambientes húmedos, en
cuerpos de agua dulce o salada; aguas
contaminadas y estancadas.
En forma natural se desarrollan como protozoarios
de vida libre; ocasionalmente llegan al hombre o
animales actuando como endoparásitos, se les
denomina «anfizoicos».
La patología humana se produce principalmente a
nivel del SNC.
La enfermedad ha sido descrita en hospederos
inmunocomprometidos e inmunocompetentes.
En Latinoamérica se han reportado pocos casos, en
estas últimas décadas su reporte va en aumento y
aún su verdadera prevalencia es desconocida.
Tres géneros AVL son reconocidas de importancia para el ser humano: 1. Naegleria N. fowleri, causa la meningoencefalitis amebiana primaria (MAP). 2. Acanthamoeba A. castellani, causa la encefalitis granulomatosa amebiana (EGA); queratitis amebiana y lesiones granulomatosas en piel, pulmones entre otros órganos. 3. Balamuthia B. mandrillaris, causa EGA y lesiones granulomatosas, principalmente, en piel y pulmones. Sappinia spp, de escasa importancia para el ser humano, encontrada en
animales.
Trofozoito de N. fowleri. Tomado
de Peters W, Gilles M. op.cit
Tofozoito de Acanthamoeba
culbertsoni. Tomado de Peters W,
Gilles M. op.cit.
Trofozoíto de B.
mandrillaris en cultivo.
Naegleria fowleri Estadios: trofozoíto y quiste.
Ameboflagelado termófilo, proliferan temperaturas 40
- 45ºC.
Los Trofozoítos miden 10 – 35µ, presentando dos
formas:
1. Ameboide: lobopodios, se dividen por fisión
binaria.
2. Flagelar: con dos flagelos anteriores
carentes de división y alimentación.
Un núcleo con nucléolo central, cromatina nuclear en
forma halo, citoplasma granular y vacuolado.,en cultivo
son muy activos y pleomórficos.
Los Quistes, pared delgada, un solo núcleo, mide
entre 8 -10µ resistente a la desecación. No forma
quistes en tejidos humanos.
Trofozoíto
Quiste
Ciclo biológico de Naegleria fowleri
Clase: Heterolobosea
Orden: Schyzopyrenida
Género: Naegleria
Patología y Sintomatología
Puerta entrada cavidad nasal,
trofozoítos o quistes pasan al SNC por
neuroepitelio olfatorio.
Periodo de incubación de 1-4 o 7–15
días, dependiendo del inóculo y la
virulencia de la cepa.
Cuadro clínico de inicio súbito, rápido
y fulminante.
La muerte a los 4-5 días de inicio de la
enfermedad.
El diagnóstico generalmente es
postmorten.
Sintomatología:
Cefalea frontal, bitemporal intensa.
Fiebre > a 40ºC.
Náusea, vómito y signo de irritación meníngea.
Rigidez de nuca.
Encefalitis.
Fotofobia.
Edema cerebral.
Convulsiones.
Hipertensión intracraneal.
Letargia, confusión y coma.
Paro cardiorrespiratorio y edema pulmonar.
Histopatología:
Los hallazgos patológicos incluyen meningoencefalitis difusa y leptomeningitis
purulenta que puede abarcar hasta médula espinal.
Hemorragias y edema corticales y necrosis de los bulbos olfatorios.
Se identifican trofozoítos en tejido, principalmente en zonas perivasculares, en
exudados purulentos de meninges, espacio subaracnoideo y LCR.
N. fowleri. Trofozoítos en cerebro.
SJ Upton, Kansas University. N. fowleri. Inmunofluorescencia
directa. CDC./ GS Visvesvara.
Diagnóstico:
Antecedentes, edad y cuadro clínico.
Observación en fresco de LCR recién extraído – trofozoítos móviles «gold
estándar», eritrocitos, leucocitosis, albúmina elevada, baja glucosa y ausencia
bacterias.
Flagelación de trofozoítos en agua destilada, solución salina o MPAS (Page’s
amoeba saline).
Biopsia y tinción (Tricrómica).
Cultivo en agar NN al 3% con E. coli a 37 ºC.
Pruebas serológicas e inoculaciones a ratones.
Inmunofluorescencia directa.
IFI con anticuerpos monoclonales.
PCR. Estandarizado hace años en laboratorios de referencia en EEUU.
(Visvesvara GS, CDC).
Acanthamoeba sp. Vía entrada e invasión al SNC es hematógena.
Foco primario en piel o tracto respiratorio.
Curso clínico insidioso, prolongado e igualmente fatal.
Patógeno oportunista.
Se desconoce el periodo de incubación.
Infecciones oculares en individuos portadores de lentes
de contacto.
Las más frecuentes son: A. castellani, A. culberstoni
A. polyphaga y A. astromyxis .
Trofozoítos miden ~ 20µ, pleomórficos, vacuola
contráctil, presentan acantopodios; núcleo con
nucléolo grande, prominente y central.
Quistes ~ 18µ, un solo núcleo, doble pared:
ectoquística arrugada y endoquística poligonal, poros
a intervalos.
Trofozoíto y quiste pueden encontrarse en tejidos.
Trofozoíto
Quiste
Ciclo biológico de Acanthamoeba sp.
Clase: Lobosea
Orden: Hartmannellida
Género: Acanthamoeba.
Patología y Sintomatología
Vías de entrada trofozoítos: piel, aparato
respiratorio bajo, nasal, cornea.
SNC: Encefalitis granulomatosa subaguda y
crónica. Células inflamatorias que conforman un
granuloma.
Piel: dermatitis, ulceraciones granulomatosas.
Cornea: queratitis A. castellanii en ~ 94% de los
casos como agente etiológico de la queratitis de
origen amibiano.
Periodo incubación aprox. 10 días.
Alteraciones estado mental.
Sintomatología neurológicos.
Aumento de citocinas proinflamatorias.
Serin-proteasas alteran la integridad de la barrera
hematoencefálica.
Inducción de apoptosis.
Lesiones cutáneas por Acanthamoeba sp. en
paciente infectado por HIV. Original de H. A.
Kessler.
Acanthamoeba sp.
Trofozoítos de Acanthamoeba
sp. De cultivo. CDC
Trofozoíto de Acanthamoeba
sp. Tinción hematoxilina –
Eosina. CDC
Acanthamoeba sp.
Quistes de Acanthamoeba sp.
De cultivo. CDC
Quiste de Acanthamoeba sp.
Tinción hematoxilina – Eosina.
CDC
Balamuthia mandrillaris
Aislada como patógenos en humanos en
1993 del cerebro de mono.
Los trofozoítos y quistes son similares a
Acanthamoeba.
Trofozoítos: 15-60µ, con un núcleo grande
con nucleolo central, presencia de una zona
clara que los distingue de las otras amebas
de vida libre.
Quistes: 10-30µ, un solo núcleo, pared
compuesta por tres capas, la interior
ondulada, la media, fibrilar, y la exterior
delgada e irregular, con protrusiones.
Trofozoíto en tejido cerebral.
DPDx/CDC.
Quiste. Tinción de H-E que muestra
la presencia de esférula de 30 µ.
Balamuthia mandrillaris Ciclo biológico
Clase: Lobosea
Orden: Leptomyxa
Género: Balamuthia.
EGA muy similar por Acanthamoeba.
Se adquiere usualmente vía nasal, oral, piel.
de quistes o trofozoítos.
SNC vía hematógena o neuroepitelio olfatorio.
Se ha detectado en pacientes sometidos a
transplantes.
Los estudios patológicos en SNC se ha
estudiado en casos fatales.
Curso rápido y fatal 2 y 12 semanas.
La identificación pre-mortem de B. mandrillaris
no es sencilla.
Se ha demostrado que no es posible
recomendar aún un esquema de tratamiento
único.
.
Balamuthia mandrillaris
Trofozoítos de cultivo - CDC
Balamuthia mandrillaris
Quiste de B. mandrillaris tinción
Hematoxilina – Eosina. Imagen
de la Universitad de Kentucky
Hospital, Lexington, Kentucky.
Quistes de B. mandrillaris tinción
Hematoxilina – Eosina. Hospital
Texas.
CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS
DE AMEBAS DE VIDA LIBRE
Características del LCR
Epidemiología AÑO AUTOR AVL
1979 Arce y Asato. Acanthamoeba sp.
1996 Narvaez (4 casos). Acanthamoeba sp
1996 - 2005 Hospital Nacional Dos de Mayo (4 casos). Acanthamoeba sp
Instituto de Medicina Tropical UNMSM Acanthamoeba sp
Hasta 1996 10 casos. Acanthamoeba sp
2000 1 caso. Acanthamoeba sp
2002 3 casos. Acanthamoeba sp
1995 - 2006 Instituto Nacional de Salud (3 casos). Acanthamoeba sp.
1999 Hospital Cayetano Heredia (15 casos). Acanthamoeba sp.
2002 Suarez y col. (31 muestras 11+) 35,5%. Acanthamoeba sp
2007 Náquira (aguas superficiales). Naegleria sp.
2008 Garaycochea y col. (83 muestras 40+) 31,3% Acanthamoeba sp
Prevención Es difícil establecer medidas de prevención por la amplia distribución de las
AVL en el ambiente.
Descontaminación de agua de piscinas con cloro, asociado al no buceo en
áreas sospechosas.
Inspecciones periódicas de los estanques de agua caliente, filtro de agua,
sistemas de cañerías, filtros para purificar el suministro de agua potable.
Limpieza adecuada de lentes de contacto.
Recuperación:
Terapia.
Estado inmunológico.
Dosis infectiva.
Virulencia de la cepa.
Diagnóstico.
Iniciar terapia.
Fuentes de información Fuentes bibliográficas
Botero, D y Restrepo, M. 2012. Parasitosis Humanas. Texto y Atlas. Quinta
edición. Colombia.
Córdova, E., Neira, M., Liu, M., Vásquez, L., Martínez, E., Ayaqui, R., y Ruelas,
N. 2009. Parasitología Humana. Arequipa-Perú. Ediciones Independencia.
Segunda edición.
Fuentes hemerográficas
• David Oddó B. Infecciones por amebas de vida libre. Comentarios históricos,
taxonomía y nomenclatura, protozoología y cuadros anátomo-clínicos. Rev Chil
Infect 2006; 23 (3): 200-214.
• Mónica Liliana Peralta Rodríguez et al. Amibas de vida libre en seres humanos.
2009.Salud Uninorte. Barranquilla (Col.) 25 (2): 280-292
Fuentes electrónicas
• http://www.scielo.org.co/pdf/inf/v13n2/v13n2a05.pdf
• http://amebasdevidalibre.blogspot.com/
• http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/amibas-vida-
libre.html.
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